[go: up one dir, main page]

RU2180115C2 - Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных - Google Patents

Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных Download PDF

Info

Publication number
RU2180115C2
RU2180115C2 RU2000111315A RU2000111315A RU2180115C2 RU 2180115 C2 RU2180115 C2 RU 2180115C2 RU 2000111315 A RU2000111315 A RU 2000111315A RU 2000111315 A RU2000111315 A RU 2000111315A RU 2180115 C2 RU2180115 C2 RU 2180115C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
dna
aujeszky
probe
virus
disease virus
Prior art date
Application number
RU2000111315A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2000111315A (ru
Inventor
А.Г. Глотов
С.Ф. Орешкова
В.Н. Кувшинов
А.А. Ильичев
Original Assignee
Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН, Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" filed Critical Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока СО РАСХН
Priority to RU2000111315A priority Critical patent/RU2180115C2/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2180115C2 publication Critical patent/RU2180115C2/ru
Publication of RU2000111315A publication Critical patent/RU2000111315A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к генетической инженерии и может быть использовано в ветеринарной вирусологии для выявления заболеваний сельскохозяйственных животных, а именно: болезни Ауески. Фрагмент ДНК вируса болезни Ауески клонируют в векторную плазмиду рUC18. Полученную конструкцию метят биотином путем химической модификации ДНК по цитозиновым звеньям. Изобретение позволяет повысить уровень чувствительности выявления вирусной ДНК по сравнению с известными методиками. 2 табл.

Description

Изобретение относится к генетической инженерии и может быть использовано в ветеринарной вирусологии для выявления инфекционных заболеваний, а именно болезни Ауески (Aujezsky's disease), вызываемой вирусом (Suid herpesvirus I, SHV-1).
До настоящего времени основным методом диагностики болезни Ауески являлась длительная и достаточно трудоемкая процедура биопробы на кроликах и изоляции вируса в чувствительной культуре клеток. Более перспективным методом диагностики является метод гибридизации нуклеиновых кислот, основанный на использовании ДНК-зондов.
Известен способ выявления вируса болезни Ауески в пробах биоматериала от свиньи, основанный на использовании ДНК-зонда, при конструировании которого Hind111-фрагмент ДНК вируса клонировали в плазмиду, а мечение ДНК осуществляли ник-трансляцией радиоактивным фосфором (см. McFarlane R.G., Thawley D. G. . DNA hybridisation procedure to detect pseudorabies virns DNA in swine tissue.// Amer. J. Vet. Res.-1985.-V.46, N 5.-P.1133-1136).
Однако зонды, меченные радиоактивной меткой, нестабильны (период полураспада составляет около двух недель), и проведение анализов с их использованием небезопасно для персонала лабораторий.
Известен способ выявления вируса, основанные на использовании ДНК-зонда, при конструировании которого фрагменты ДНК вируса клонировали в плазмиду. При этом мечение полученного зонда проводили нерадиоактивным способом - путем введения биотина с последующим выявлением ДНК вируса в фиксированных формалином и залитых в парафин срезах тканей (Belak К., Funa К., Kelly R., Belak S. Rapid diagnosis of Aujezsky's disease in pigs by improved in situ hybridization using biotinilated probes on paraffin embedded tissue sections// J. Veter. Med, Reihe В.- 1989. - V. 36, 1.-P. 4793).
Однако методика постановки реакции с использованием такого зонда предусматривает трудоемкую процедуру подготовки тканей: фиксацию формалином и заливку их парафином.
Наиболее близким решением, принятым за прототип, является известный способ выявления ДНК вируса болезни Ауески сельскохозяйственных животных, наиболее близкий к заявляемому по технической сущности и достигаемому эффекту. Способ включает клонирование Hind111 и Pstl фрагментов ДНК в плазмидный вектор pBR325. Мечение полученного зонда осуществляют ник-трансляцией с био-11-dUTP. Однако полученный таким методом нерадиоактивно меченный ДНК-зонд обладает недостаточно высокой чувствительностью выявления ДНК вируса - 10-100 пкг (Chan V. T.W., Fleming K.A., McGee J.O'D. Detection of subprogram quantities of specific DNA sequences on blot hybridization with biotinylated probes.//Nucl. Acids Res.- 1985.-V.13, N22.-P.8083-8091).
Сущность изобретения заключается в конструировании рекомбинантного зонда на основе двунитиевого вектора путем клонирования Pstl-фрагмента вирусного генома длиной 300 п.н. в плазмиду pUC18. В качестве метки используется биотин, который вводится в ДНК-зонд путем химической модификации ДНК по цитозиновым звеньям.
Технический результат изобретения заключается в проведении анализа на наличие вируса болезни Ауески в пробах от животных с высокой чувствительностью и специфичностью.
Пример 1. Выделение ДНК вируса болезни Ауески сельскохозяйственных животных из инфицированной культуры клеток RK13 и из проб от животных. Клетки осаждают центрифугированием, к супернатанту добавляют 50%-ный ПЭГ до концентрации 6% и 5М NaCl до концентрации 2,8%. Смесь оставляют на ночь при 4oС, затем центрифугируют. Осадок ресуспендируют в ТЕ-буфере, добавляют IМ трис-НСl рН 8,0 до 0,01М, 0,1М ЭДТА до 1мМ, 5М NaCI до 0,15М, SDS до 1%, протеиназу К до концентрации 0,1 мг/мл и выдерживают при 37oС в течение 3 ч. После этого к смеси добавляют равный объем 52%-ной сахарозы и ведут депротеинизацию раствора с помощью фенола и хлороформа. На конечной стадии вирусную ДНК очищают на колонке (0,9х21 см) с Sepharose CL 4В и осаждают этанолом.
При выделении вирусной ДНК из проб от животных к образцу добавляют IM трис-НСI рН 8,0 до 0,01М, 0,1М ЭДТА до 1мМ, NaCI до 0,15М, SDS до 1%, протеиназу до 0,1 мг/мл и выдерживают при 37oС в течение 3 ч. Далее вирусную ДНК выделяют, обрабатывая пробы фенолом и хлороформом и осаждая этанолом.
Пример 2. Клонирование фрагментов ДНК вируса болезни Ауески в плазмиде pUC18. ДНК, выделенную из вируса, расщепляют рестриктазой PstI. Этой же рестриктазой расщепляют ДНК плазмиды pUC18. Гидролизаты ДНК вируса и плазмиды соединяют и проводят сшивку ДНК-лигазой фага Т4. Продуктами сшивки трансформируют E. coIi JM 103. Отбор клонов проводят по фенотипу: белый фенотип имеют клоны, содержащие плазмиду pUC18 со вставками. ДНК позитивных клонов анализируют рестрикционным анализом. Клон 16РН содержит вставку фрагмента ДНК вируса длиной 300 п.н. Для проверки специфичности сконструированного зонда проводят выделение ДНК из нового "урожая" вируса, фиксируют ее на нитроцеллюлозном фильтре и проводят гибридизацию с зондом 16РН, меченным радиоактивным фосфором. В качестве контролей используют фиксированные на фильтре ДНК вируса инфекционного ринотрахеита, аденовируса крупного рогатого скота, ДНК из тимуса теленка и препарат из неинфицированной культуры клеток RK13, в которой размножали вирус болезни Ауески. Зонд 16РН активно гибридизуется только с ДНК вируса болезни Ауески.
Пример 3. Нерадиоактивное мечение ДНК-зонда pUC18-SHVl-16PH. К 30-40 мкг ДНК pUC18-SHVl-16PH в 50 мкл дистиллированной воды добавляют 50 мкл IМ аминооксибутиламина и прогревают смесь на кипящей водяной бане 7 мин с последующим охлаждением во льду. Процедуру повторяют еще раз, затем раствор наносят на колонку (1 мл) со смолой Sephadex G-50 и ведут гель-фильтрацию ДНК в дистиллированной воде. К ДНК после гель фильтрации (объем 150-170 мкл) добавляют IM NaHCO3 до концентрации 0,1М и 30 мкл 0,1М раствора N-гидроксисуксинимидного эфира аминокапроил-биотина ("активированного биотина"). Смесь выдерживают при комнатной температуре 1,5 ч, затем отделяют биотинилированную ДНК от избытка эфира биотина гель фильтрацией на Sephadex G-50. Выход меченой ДНК составляет 70-80 %, она электрофоретически однородна в 1%-ном агарозном геле.
Пример 4. Гибридизация биотинилированного ДНК-зонда с вирусной ДНК. Вирусную ДНК, выделенную из инфицированной культуры клеток, наносят точками на капроновые фильтры и ведут гибридизацию с биотин-меченным ДНК-зондом pUC18-SHVl-16PH в концентрации 200 нг/мл. Раствор для предгибридизации и гибридизации содержит 6xSSC, 5хДенхардта, 0,5% SDS, 100 мкг/мл денатурированной ДНК лосося. Гибридизацию ведут 16 ч при 60oС, фильтры отмывают 2 раза в 2xSSC, 0,1% SDS и 2 раза в 0,2xSSC, 0,1% SDS при температуре гибридизации.
Пример 5. Выявление биотинилированного ДНК-зонда на фильтрах после гибридизации. После гибридизации с биотинилированным ДНК-зондом и отмывки от зонда фильтры обрабатывают блокирующим буфером в течение 30 мин при комнатной температуре (блокирующий буфер: 0,1 М трис-НСl рН 7,5; 0,1 М NaCl; 3mM MgCl2; 0,5% твин-20). После стадии блокирования фильтр помещают на 5 мин в реакционный буфер, затем переносят его на чистый лист лавсана и смачивают разбавленным в 1000 раз конъюгатом стрептавидина со щелочной фосфатазой. На фильтр размером 10х10 см необходимо 2 мл разбавленного в 1000 раз реакционным буфером конъюгата (реакционный буфер: 0,1 М трис-НСl рН 7,5; 0,1 М NaCI, 3mM MgCl2, 0,05% твин-20). Фильтр накрывают вторым листом лавсана, убирают пузырьки воздуха между листами и оставляют на 30 мин, затем отмывают от избытка конъюгата 3 раза по 5 мин блокирующим буфером и 1 раз 5 мин АР-буфером (АР-буфер: 0,1М трис-НСl рН 9,5, 0,1 М NaCl, 5 mM MgCl2). После этого фильтр помещают в раствор красителей для фосфатазы, который готовят непосредственно перед использованием следующим образом: навески 2,5 мг 5-бром-3-индолилфосфата и 4 мг нитротетразолевого синего растворяют каждую отдельно в 50 мкл диметилформамида, растворы переносят в пробирку с 15 мл АР-буфера и перемешивают. Окраска пятен или полос, содержащих биотиновые производные ДНК, развивается в течение нескольких часов в темноте.
Таким образом, сконструирован ДНК-зонд pUC18-SHVl-16PH на основе плазмидной ДНК pUC18 путем клонирования Pstl- фрагмента вирусного генома длиной 300 п. н. Нерадиоактивно меченный двунитевой ДНК-зонд содержит биотиновые звенья, ковалентно связанные с цитозиновыми основаниями.
Проведены исследования по определению чувствительности и специфичности биотинилированного ДНК-зонда pUC18-SHVl-16PH, полученного на основе двунитиевой плазмидной ДНК в сравнении с ДНК-зондом, меченным радиоактивным фосфором. Оба зонда содержали один и тот же фрагмент вирусного генома. Гибридизацию с зондами вели на ДНК вируса болезни Ауески, выделенной из инфицированной культуры клеток. В качестве контроля аналогичные опыты проводили с ДНК вируса инфекционного ринотрахеита и аденовируса крупного рогатого скота 1-го типа. Результаты опытов представлены в таблице 1.
Приведенные в таблице данные показывают, что чувствительность выявления вирусной ДНК с помощью биотинилированного плазмидного ДНК-зонда pUC18-SHVl-16PH составляет 1-10 пкг, что в 10 раз превышает чувствительность аналогичного ДНК-зонда, меченного радиоактивным фосфором. Полученный ДНК-зонд специфичен к ДНК вируса болезни Ауески сельскохозяйственных животных и не гибридизуется с другими вирусными ДНК.
Заявленный способ выявления вируса болезни Ауески был испытан на пробах биоматериала от больных животных (см. таблицу 2).
В работе использовали (с учетом положительных или отрицательных результатов биопробы и вирусологических исследований): суспензии внутренних органов кролика, двух павших поросят с признаками болезни Ауески, проб внутренних органов павшей свиньи, мозг и легкие норок с признаками поражения центральной нервной системы при жизни, а также лисы после положительных или отрицательных результатов анализа. Всего тремя методами исследовали 15 проб.
Результаты экспериментов показали, что созданный ДНК-зонд позволяет выявлять ДНК вируса у инфицированных животных и может использоваться для диагностики заболевания. Так, результаты гибридизации полностью совпали с результатами выделения вируса в культуре клеток и биопробы при исследовании 5 проб, полученных от павших поросят, лисы, а также внутренних органов кроликов, зараженных биоматериалом от них. При этом были получены наиболее сильные сигналы гибридизации.
Результаты исследования проб биоматериала от норки (мозг, легкие) были отрицательными по всем методам. В дальнейшем у этих животных в зверосовхозе установили другой диагноз - фузариотоксикоз.
При исследовании 6 проб внутренних органов свиньи, павшей с признаками поражения центральной нервной системы, результаты биопробы были отрицательными по всем пробам, вирус удалось изолировать только из легких, но все исследуемые пробы дали положительный сигнал в гибридизации. По всей вероятности, это связано со способностью метода молекулярной гибридизации - выявлять не только инфекционные (способные реплицироваться в чувствительной системе), но и неинфекционные частицы вируса.
Таким образом, сконструирован плазмидный (биотинилированный) ДНК- зонд, специфичный к ДНК вируса болезни Ауески.
Проведены испытания данного способа выявления вируса болезни Ауески на пробах от животных. Они показали достаточно высокую чувствительность и специфичность метода при выявлении ДНК вируса. Этот способ может применяться для диагностики вируса болезни Ауески в животноводческих хозяйствах, при этом время анализа составляет 30 часов, что по срокам постановки диагноза превосходит метод выделения вируса в культуре клеток в 36 раз, а метод биопробы на кроликах - в 18 раз.
Данный способ может быть использован в ветеринарной практике для экспресс-диагностики различных форм проявления болезни Ауески во время эпизоотии как в хозяйствах промышленного типа, так и в частных. Использование ДНК-зонда, полученного таким способом, более чем на 1 порядок повышает чувствительность выявления вирусной ДНК по сравнению с двунитиевым ДНК-зондом, полученным на основе клонирования Hind111-фрагмента в плазмиду pBR325, и является более перспективным для проведения гибридизационного анализа.

Claims (1)

  1. Способ выявления вируса болезни Ауески сельскохозяйственных животных, предусматривающий выделение вирусной ДНК, конструирование ДНК-зонда, мечение ДНК-зонда биотином, гибридизацию на фильтре ДНК-зонда с вирусной ДНК с последующим выявлением вирусной ДНК по появлению окрашенных пятен, отличающийся тем, что ДНК-зонд конструируют путем клонирования Pstl-фрагмента вирусного генома длиной 300 п. н. в плазмидный вектор рUC18, а мечение зонда биотином осуществляют путем модификации цитозиновых звеньев.
RU2000111315A 2000-05-06 2000-05-06 Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных RU2180115C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000111315A RU2180115C2 (ru) 2000-05-06 2000-05-06 Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000111315A RU2180115C2 (ru) 2000-05-06 2000-05-06 Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2180115C2 true RU2180115C2 (ru) 2002-02-27
RU2000111315A RU2000111315A (ru) 2002-07-10

Family

ID=20234302

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000111315A RU2180115C2 (ru) 2000-05-06 2000-05-06 Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2180115C2 (ru)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2116364C1 (ru) * 1993-07-30 1998-07-27 Завод "Эластик" Способ извлечения ртути и других цветных металлов из отработанных гальванических элементов и/или отходов их производства

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2116364C1 (ru) * 1993-07-30 1998-07-27 Завод "Эластик" Способ извлечения ртути и других цветных металлов из отработанных гальванических элементов и/или отходов их производства

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Burr et al. Detection of canine herpesvirus 1 in a wide range of tissues using the polymerase chain reaction
Molitor et al. Polymerase chain reaction (PCR) amplification for the detection of porcine parvovirus
Rishi et al. Genomic cloning of human Echinococcus granulosus DNA: isolation of recombinant plasmids and their use as genetic markers in strain characterization
Gow et al. Studies on enterovirus in patients with chronic fatigue syndrome
Clewley et al. Detection of parvovirus B19 DNA, antigen, and particles in the human fetus
CN110499393A (zh) 犬腺病毒、犬腺病毒i型和犬腺病毒ii型的实时荧光定量pcr检测及鉴别引物和探针
Pritchard et al. Development of a polymerase chain reaction to detect Vietnamese isolates of duck virus enteritis
Todd et al. Dot blot hybridization assay for chicken anemia agent using a cloned DNA probe
Tham et al. Detection of chicken anaemia agent DNA sequences by the polymerase chain reaction
Limn et al. Detection of goose parvovirus genome by polymerase chain reaction: distribution of goose parvovirus in Muscovy ducklings
CN106566895B (zh) 一种同时检测鲤科疱疹病毒ι型、ⅱ型和ⅲ型的pcr引物、试剂盒及用途
CN118147369A (zh) 牛病毒性腹泻病毒RAA检测引物组合、crRNA分子、反应体系及应用
CN101418351B (zh) 虾白斑综合症病毒病检测试剂盒及检测方法
CN111154915A (zh) 一种猪圆环病毒4型与3型pcr鉴别诊断试剂盒及其检测方法
Jarrett et al. Alimentary fibropapilloma in cattle: a spontaneous tumor, nonpermissive for papillomavirus replication
RU2180115C2 (ru) Способ выявления вируса болезни ауески сельскохозяйственных животных
CN101418352B (zh) 一种虾白斑综合症病毒病检测试剂盒
RU2054487C1 (ru) Способ выявления вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота
Belák et al. Rapid detection of Aujeszky's disease (pseudorabies) virus infection of pigs by direct filter hybridisation of nasal and tonsillar specimens
Nel et al. A comparison of different cloned genome segments of epizootic haemorrhagic disease virus as serogroup-specific probes
Wójcik et al. Sister chromatid exchange in selected horse breeds (Equus caballus)
Arnauld et al. Development of a PCR-based method coupled with a microplate colorimetric assay for the detection of porcine parvovirus and application to diagnosis in piglet tissues and human plasma
RU2728342C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и зондов и способ выявления пестивируса Н крупного рогатого скота
CN110184385B (zh) 淡水小龙虾线头病毒pcv-87r特异性序列及应用
Jacobs et al. Detection of wild-type Aujeszky's disease virus by polymerase chain reaction in sheep vaccinated with a modified live vaccine strain