RU2168175C1 - Способ диагностики инфекций - Google Patents
Способ диагностики инфекций Download PDFInfo
- Publication number
- RU2168175C1 RU2168175C1 RU2000102542A RU2000102542A RU2168175C1 RU 2168175 C1 RU2168175 C1 RU 2168175C1 RU 2000102542 A RU2000102542 A RU 2000102542A RU 2000102542 A RU2000102542 A RU 2000102542A RU 2168175 C1 RU2168175 C1 RU 2168175C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antigen
- solution
- polarogram
- blood cells
- cacl
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 19
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 title claims abstract description 6
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims abstract description 45
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims abstract description 45
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims abstract description 45
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 24
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 21
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 claims abstract description 20
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 12
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 11
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 9
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 13
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 9
- 201000010099 disease Diseases 0.000 claims description 6
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 claims description 6
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 claims description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims 1
- JPVYNHNXODAKFH-UHFFFAOYSA-N Cu2+ Chemical compound [Cu+2] JPVYNHNXODAKFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 9
- 229910001431 copper ion Inorganic materials 0.000 abstract description 9
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 abstract description 3
- 241000700605 Viruses Species 0.000 abstract description 2
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 abstract 1
- -1 Cu++ ion Chemical class 0.000 abstract 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 abstract 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 abstract 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 abstract 1
- 238000003969 polarography Methods 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 30
- 239000010949 copper Substances 0.000 description 14
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 9
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 5
- RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N Copper Chemical compound [Cu] RYGMFSIKBFXOCR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 206010014909 Enterovirus infection Diseases 0.000 description 4
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 description 4
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 description 4
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 4
- 229910052802 copper Inorganic materials 0.000 description 4
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 4
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 4
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 4
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 3
- 241000709661 Enterovirus Species 0.000 description 3
- 241000607768 Shigella Species 0.000 description 3
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 3
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 3
- 230000000405 serological effect Effects 0.000 description 3
- 208000004998 Abdominal Pain Diseases 0.000 description 2
- 206010019233 Headaches Diseases 0.000 description 2
- 101710154606 Hemagglutinin Proteins 0.000 description 2
- 101710093908 Outer capsid protein VP4 Proteins 0.000 description 2
- 101710135467 Outer capsid protein sigma-1 Proteins 0.000 description 2
- 101710176177 Protein A56 Proteins 0.000 description 2
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 2
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 208000001848 dysentery Diseases 0.000 description 2
- 231100000869 headache Toxicity 0.000 description 2
- 239000000185 hemagglutinin Substances 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 206010022000 influenza Diseases 0.000 description 2
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 2
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 241000272814 Anser sp. Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 208000035143 Bacterial infection Diseases 0.000 description 1
- 241000988556 Enterovirus B Species 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 241000606701 Rickettsia Species 0.000 description 1
- 241000710771 Tick-borne encephalitis virus Species 0.000 description 1
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 description 1
- 208000022362 bacterial infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000003748 differential diagnosis Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 230000035931 haemagglutination Effects 0.000 description 1
- 230000000521 hyperimmunizing effect Effects 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 239000012086 standard solution Substances 0.000 description 1
- 239000012085 test solution Substances 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине, в частности, к инфекционным болезням. Способ обеспечивает ускорение и упрощение исследования при высокой чувствительности и специфичности. Исследование проводят с кровью больного, определяя косвенным образом полярографическим методом количество антигена микробов, связанного клетками крови, в сравнении с контрольными исследованиями по степени уменьшения величины волны ионов меди, связанных этим антигеном. При этом к смеси форменных элементов крови и хлорида натрия добавляют раствор исследуемого антигена при их объемном соотношении 1:1, полученную смесь инкубируют в течение 3-5 мин при 37-37,5oС с последующим центрифугированием. После этого снимают полярограмму микроконцентрации ионов Си++ в 30% растворе СаСl2 после добавления надосадочной жидкости и сравнивают с эталонной полярограммой. Способ позволяет диагностировать острые вирусные и бактериальные инфекции в течение 25-30 мин от начала обследования больного. 5 ил.
Description
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для диагностики острых вирусных и бактериальных инфекций.
В лабораторной практике с целью диагностики инфекций для регистрации активности антигенов до и после контакта с эритроцитами обычно используются коммерческие тест-системы - РТПГА для антигенов бактерий и риккетсий, РГА для вирусных антигенов (Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982). Применяемые серологические методы, несмотря на простоту и относительную доступность, не лишены определенных недостатков.
Во-первых, они достаточно трудоемки и длительны (необходимость выполнения ручных манипуляций раститровки рабочей сыворотки и антигена, внесения эритроцитарного диагностикума или эритроцитов, проведения 30-минутной (минимум) инкубации раствора иммунной сыворотки с определяемым антигеном перед раститровкой в РТПГА).
Во-вторых, указанные серологические методы, основанные на феноменах прямой или пассивной гемагглютинации, являются полуколичественными. Кроме того, сам учет реакций по общепринятой системе 4-х крестов носит субъективный характер и с трудом поддается объективизации.
В-третьих, применяемые методы не являются экспрессными: от окончания постановки реакции до их учета проходит от 1-1,5 часов (вирусная ГА) до 2 - 2,5 или 12-14 часов (РТПГА в микро- или макроварианте).
Наконец, постановка используемых реакций требует постоянного наличия ингредиентов для РТПГА - дорогостоящих специфических гипериммунных сывороток и стабильных антигенных эритроцитарных диагностикумов и для РГА - свежих куриных (для исследования гриппозного гемагглютинина) и гусиных (для исследования гемагглютинина вируса клещевого энцефалита) эритроцитов. Даже при наиболее точной постановке реакции микрометодом с наконечниками однократного применения объемами на 0,5 или 0,25 мл наблюдается большой расход ингредиентов, затрудняющий рентабельное проведение большого числа исследований в короткие сроки. При работе микрометодом с применением микродозатора Такачи из-за большого разброса воспроизводимости уменьшаются точность и достоверность исследования. Поэтому особый интерес представляют аппаратные методы определения степени связывания антигенов.
Изобретение направлено на решение задачи: ускорение, упрощение способа при высокой чувствительности и специфичности.
Сущность изобретения: указанная задача достигается тем, что диагностическое исследование производят с кровью больного, определяя косвенным образом полярографическим методом количество антигена микробов, связанного клетками крови в сравнении с контрольными исследованиями по степени уменьшения величины волны ионов меди, связанных этим антигеном.
Исследование не плазмы, а чувствительности клеток крови к различным антигенам микробов обеспечивает диагностику инфекционных заболеваний даже в самые ранние сроки от момента заражения.
Известно, что полярографически неактивные вещества можно обнаружить, если ввести в испытуемое соединение активную группу либо определять косвенно по уменьшению волны восстанавливающего вещества, дающего с испытуемым соединением осадок или комплекс.
Полярографическое исследование позволяет количественно (после составления калибровочной кривой) определить степень связывания антигена клетками крови по убыли микроколичества количества ионов меди. В свою очередь, сравнение полярограмм здоровых контрольных доноров и больных лиц позволяет поставить диагноз.
В качестве фонового раствора используют 30%-ный CaCl2 в объеме 4,0 мл. В электролизер добавляют 10 гамма двухвалентной меди (0,1 мл стандартного раствора с концентрацией 100 гамма меди в 1 мл) и после перемешивания производят трехкратную запись полярограммы.
После этого непосредственно в электролизер добавляют 0,1 мл исследуемого раствора; перемешивают и производят запись полярограммы, измеряя величину полуволны в мм. На основании заранее произведенной калибровки рассчитывают количество антигена, оставшегося в растворе после взаимодействия с эритроцитами, и диагностируют заболевание.
Способ поясняется рисунками полярограмм, где на фиг. 1а показана полярограмма фонового раствора 30% CaCl2;
- фиг. 1б - совмещенная полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 2 - полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 3 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена;
- фиг. 4 полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена после контакта с кровью здоровых лиц;
- фиг. 5 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена после контакта с кровью больных лиц.
- фиг. 1б - совмещенная полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 2 - полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 3 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена;
- фиг. 4 полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена после контакта с кровью здоровых лиц;
- фиг. 5 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена после контакта с кровью больных лиц.
Способ осуществляют следующим образом.
Для исследования берут 0,1 мл крови донора, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9% раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9% растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 0,1 мл этой взвеси с 0,01 мл исследуемого антигена (гриппа, энтеровируса Коксаки В, шигелл Флекснер, Зонне, Ньюкестл или др.), инкубируют полученную смесь 3-5 мин в термостате при температуре 37-37,5oC, центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30% CaCl2, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости, вновь снимают полярограмму, и разницу в величине этих полярограмм принимают за эталон. У здоровых лиц связывание антигена клетками крови не превышает 5-20%.
Первоначально составляют калибровочную кривую-эталон при всегда одинаковых параметрах. Ячейка электролизера полярографа предварительно заполнена фоновым раствором 30% CaCl2. При подаче напряжения на электроды электролизера в фоновом растворе ячейки полярографа появляется электрический ток, который регистрируется самописцем полярографа в виде стандартной кривой (фиг. 1а), а при внесении в электролизер 10 гамма Cu++ наблюдается отклонение в виде полуволны (фиг. 1б).
Величина тока зависит от количества электропроводящих ионов в растворе ячейки электролизера полярографа, каковыми в нашем исследовании являются ионы CaCl2 фонового раствора и добавляемое микроколичество двухвалентных ионов меди - 10 гамма Cu++ (фиг. 2). Самописец полярографа графически отображает величину тока между электродами ячейки полярографа на бумажной ленте. Определяют зависимость между величиной электрического тока между электродами ячейки по степени отклонения пера самописца на бумаге и количеством добавленных в ячейку ионов меди. На этом основании составляют калибровочную кривую, измеряя величину отклонения пера самописца полярографа после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена, который, связывая ионы меди, уменьшает величину волны (фиг. 3). Величина, на которую уменьшилась длина волны, принимается за 100% расчетной величины степени связывания антигена - нулевая отметка.
После составления калибровочной кривой исследуют способность клеток крови здоровых лиц связывать на своей поверхности исследуемый антиген. Для этого клетки крови разводят в 0,9% растворе хлористого натрия, добавляют исследуемый антиген и после инкубации в термостате клеток крови с антигеном эту смесь центрифугируют. Надосадочную жидкость отсасывают микропипеткой и вносят в ячейку электролизера ртутно-капельного полярографа, в которую заранее внесен фоновый раствор 30% CaCl2 с 10 гамма Cu++. При подаче напряжения на электроды электролизера в растворе появляется электрический ток, который вызывает отклонение пера самописца от стандартной кривой фонового раствора. Параметры исследования всегда являются постоянными. В этом случае величина тока зависит от количества электропроводящих ионов в растворе ячейки электролизера полярографа, какими в нашем исследовании являются ионы Cu++. Самописец полярографа графически отображает на бумажной ленте величину тока между электродами ячейки электролизера, показывая зависимость между величиной электрического тока между электродами ячейки электролизера и количество ионов меди, оставшейся после взаимодействия с антигеном, контактировавшим с клетками крови здоровых людей (фоновый раствор и микроколичество ионов меди всегда постоянны). Для определения степени связывания исследуемого антигена клетками крови здоровых лиц величину электрического тока по степени отклонения пера самописца на бумаге в миллиметрах делят на величину в мм, полученную при определении эталона, и определяют процент связывания количества антигена в данном исследовании. У здоровых лиц степень связывания эритроцитами антигена не превышает 20% добавленного антигена, а оставшийся антиген связывает ионы меди, уменьшая величину волны, например, со 165 до 110 мм (фиг. 4).
При добавлении к микроколичеству меди надосадочной жидкости, содержащей антиген после контакта с кровью больного человека, величина волны составила 140 мм (фиг. 5).
Пример расчета:
а) величина волны полярограммы 10 гамма меди в 30% CaCl2=165 мм;
б) эта величина сократилась после добавления антигена до 100 мм, таким образом, при добавлении 0,1 мл исследуемого антигена волна уменьшилась на 65 мм что принимается за 100% переменной величины при добавлении антигена;
в) при записи полярограммы здорового человека величина волны составила 110 мм, соответственно 110 - 100 = 10 мм : 65 мм = 15,3% (здоровый донор);
г) при записи полярограммы больного человека величина волны составила 140 мм, соответственно 140 - 100 = 40 мм : 65 мм = 61,5% (больной человек).
а) величина волны полярограммы 10 гамма меди в 30% CaCl2=165 мм;
б) эта величина сократилась после добавления антигена до 100 мм, таким образом, при добавлении 0,1 мл исследуемого антигена волна уменьшилась на 65 мм что принимается за 100% переменной величины при добавлении антигена;
в) при записи полярограммы здорового человека величина волны составила 110 мм, соответственно 110 - 100 = 10 мм : 65 мм = 15,3% (здоровый донор);
г) при записи полярограммы больного человека величина волны составила 140 мм, соответственно 140 - 100 = 40 мм : 65 мм = 61,5% (больной человек).
Примеры конкретного выполнения
Пример 1.
Пример 1.
Б-ной И-нов (43 года) поступил в инфекционное отделение ОКБ с жалобами на высокую температуру, головную боль, боли в животе. Болен 3-й день. Предварительный диагноз: Энтеровирусная инфекция. Берут 0,1 мл крови больного, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9% раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9% растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 0,1 мл этой взвеси с 0,01 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В), инкубируют полученную смесь 3-5 мин в термостате при температуре 37-37,5oC, повторно центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30% CaCl2 (величина волны 165 мм) и, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости, вновь снимают полярограмму (величина волны 135 мм). Величина волны с 0,01 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В) 105 мм, таким образом, эритроцитами больного связано 135-105 = 30 мм : 65 мм • 100% = 46,1%.
Заключение: у больного энтеровирусная инфекция (диагноз позднее был подтвержден серологически и клинически).
Пример 2.
Донор С-кин (52 года). Берут 0,1 мл крови больного, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9% раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9% растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 0,1 мл этой взвеси с 0,01 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В), инкубируют полученную смесь 3-5 мин в термостате при температуре 37-37,5oC, повторно центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30% CaCl2 (величина волны 168 мм) и, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости, вновь снимают полярограмму (величина волны 103 мм). Величина волны с 0,01 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В) 115 мм, таким образом, эритроцитами больного связано 115-103=12 мм: 65 мм • 100% = 18,5%.
Заключение: у обследуемого энтеровирусной инфекции нет.
Пример 3.
Б-ной И-нов (43 года) поступил в инфекционное отделение ОКБ с жалобами на высокую температуру, головную боль, боли в животе. Болен 3-й день. Предварительный диагноз: Энтеровирусная инфекция. Берут 0,1 мл крови больного, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9% раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9% растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 0,1 мл этой взвеси с 0,016 мл исследуемого антигена (дизентерийный антигенный диагностикум шигелл Флекснер), инкубируют полученную смесь 3-5 мин в термостате при температуре 37-37,5oC, повторно центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30% CaCl2 (величина волны 165 мм) и, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости, вновь снимают полярограмму (величина волны 110 мм). Величина волны с 0,01 мл исследуемого антигена (антигенный диагностикум шигелл Флекснер) 100 мм, таким образом, эритроцитами больного связано 110 - 100 = 10 мм : 65 мм • 100% = 15,4%.
Заключение: у больного дизентерии Флекснер нет.
Заключение: учитывая, что основными методами диагностики инфекций являются клинические и серологические методы, результаты которых имеет лишь ретроспективное значение (определение степени нарастания титров антител в "парных" сыворотках производится через 10-15 дней от начала заболевания), либо выделение и идентификация возбудителя в материале от больного человека (что весьма трудоемко и занимает большой промежуток времени), а заявляемый способ позволяет поставить диагноз заболевания в течение 25-30 мин от начала обследования больного и может быть использован для дифференциальной диагностики от сходных с ним по клиническим признакам заболеваний.
Предлагаемый способ точен, т.к. при повторных полярографических исследованиях результаты были практически одинаковыми.
Предлагаемый способ объективен, т.к. заключение о наличии заболевания делается на основании величины полярографической волны антигена надосадочной жидкости, что осуществляется простым замером с помощью миллиметровой линейки, исключая всякий субъективизм в оценке результатов.
Предлагаемый способ значительно уменьшает трудоемкость и повышает производительность труда по сравнению с аналогами.
Claims (1)
- Способ диагностики инфекций, включающий забор пробы крови, получение форменных элементов крови с последующим добавлением к ним 0,9% раствора хлорида натрия, а затем раствора исследуемого антигена, инкубирование полученной смеси и определение диагностически значимого показателя, отличающийся тем, что к смеси форменных элементов крови и хлорида натрия добавляют раствор исследуемого антигена при их объемном соотношении 1:1, полученную смесь инкубируют в течение 3-5 мин при 37-37,5°С с последующим центрифугированием, после чего снимают полярограмму микроконцентрации ионов Cu++ в 30%-ном растворе СаCl2 после добавления надосадочной жидкости, сравнивают с эталонной полярограммой, которую снимают после добавления в ячейки электролизера с микроконцентрацией ионов Cu++ в фоновом растворе 30%-ного СаCl2 стандартного количества исследуемого антигена, и при увеличении отклонения пера самописца от нулевой отметки более чем на 20% по сравнению с величиной отклонения пера самописца от нулевой отметки на эталонной полярограмме диагностируют заболевание.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2000102542A RU2168175C1 (ru) | 2000-02-01 | 2000-02-01 | Способ диагностики инфекций |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2000102542A RU2168175C1 (ru) | 2000-02-01 | 2000-02-01 | Способ диагностики инфекций |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2168175C1 true RU2168175C1 (ru) | 2001-05-27 |
Family
ID=20230134
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2000102542A RU2168175C1 (ru) | 2000-02-01 | 2000-02-01 | Способ диагностики инфекций |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2168175C1 (ru) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2187811C1 (ru) * | 2001-07-05 | 2002-08-20 | Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П.Павлова | Способ прогнозирования течения дизентерии |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU92009198A (ru) * | 1992-12-01 | 1995-04-20 | Туркменский научно-исследовательский институт профилактической и клинической медицины | Способ диагностики ротавирусной инфекции |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2077056C1 (ru) * | 1993-06-08 | 1997-04-10 | Ростовский научно-исследовательский институт акушерства и педиатрии | Способ диагностики постнатальной цитометаловирусной и токсоплазменной инфекции |
| RU2084895C1 (ru) * | 1993-11-09 | 1997-07-20 | Уральский научно-исследовательский институт дермато-венерологии и иммунопатологии | Способ диагностики хламидийной инфекции у женщин |
-
2000
- 2000-02-01 RU RU2000102542A patent/RU2168175C1/ru active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU92009198A (ru) * | 1992-12-01 | 1995-04-20 | Туркменский научно-исследовательский институт профилактической и клинической медицины | Способ диагностики ротавирусной инфекции |
| RU93029220A (ru) * | 1993-06-08 | 1996-04-20 | Ростовский НИИ акушерства и педиатрии МЗ РФ | Способ прогнозирования постнатальной цитомегаловирусной и токсоплазменной инфекции |
| RU93050831A (ru) * | 1993-11-09 | 1997-01-27 | Свердловский научно-исследовательский кожно-венерологический институт МЗ РФ | Способ диагностики хламидийной инфекции у женщин |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| БИРГЕР М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. - М.: Медицина, 1982, с. 211. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2187811C1 (ru) * | 2001-07-05 | 2002-08-20 | Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П.Павлова | Способ прогнозирования течения дизентерии |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| LEWIS et al. | Hemagglutination in the diagnosis of toxoplasmosis and amebiasis | |
| JPH06507969A (ja) | 蛍光団補助型炭水化物電気永動診断 | |
| WO2024001044A1 (zh) | 一种与肺癌相关的生物标志物组合、含其的试剂盒及其用途 | |
| CN111273017A (zh) | 一种快速检测新型冠状病毒的荧光免疫层析试剂盒 | |
| RU2168175C1 (ru) | Способ диагностики инфекций | |
| CN113999841A (zh) | 蛋白质支架oval100及其在放射配体法中的应用 | |
| CN101680894A (zh) | 检测待测物的试剂及其方法 | |
| RU2095814C1 (ru) | Способ диагностики клещевого энцефалита | |
| JPS6345563A (ja) | 細胞分析方法 | |
| CN208060540U (zh) | 一种用于脓毒症快速定量检测的多指标胶体金试剂盒 | |
| CN1871519A (zh) | 用于诊断阿尔茨海默氏病的快速检测方法 | |
| RU2176794C2 (ru) | Способ иммунодиагностики инфекций | |
| RU2203499C1 (ru) | Способ постановки диагностической реакции при бруцеллезе | |
| RU2008684C1 (ru) | Способ диагностики иерсиниоза | |
| CN103675293B (zh) | Rv3872、Rv0164和/或Rv1926c蛋白在制备诊断活动性肺结核的产品中的用途 | |
| RU2757078C1 (ru) | Способ потенциометрической диагностики лейкоза крупного рогатого скота | |
| CN108387745B (zh) | Cd4+t淋巴细胞特征蛋白在鉴定潜伏结核感染和活动性肺结核中的应用 | |
| CN105891193A (zh) | 呼吸道合胞病毒化学发光免疫检测试剂盒及其制备方法 | |
| SU1681258A1 (ru) | Способ диагностики активных форм туберкулеза легких | |
| CN105606596A (zh) | 一种化学发光免疫检测脑型脂肪酸结合蛋白用试剂盒及其制备方法 | |
| KR102739746B1 (ko) | 바르토넬라 헨셀라이 유래 세포외 소포체를 이용한 바르토넬라 감염증 진단 방법 | |
| CN102890154A (zh) | 丙型肝炎病毒核心抗原时间分辨免疫荧光分析法及检测试剂盒 | |
| RU2826338C1 (ru) | Способ диагностики аутоиммунного тиреоидита | |
| WO2024220055A1 (en) | Biosensors and methods for the determination of the monkeypox and chickenpox viruses belonging to the genus orthopoxvirus | |
| RU2415430C1 (ru) | Способ определения циркулирующих иммунных комплексов |