RU2014335C1 - Method of bovine serum albumin purification - Google Patents
Method of bovine serum albumin purificationInfo
- Publication number
- RU2014335C1 RU2014335C1 SU5012648A RU2014335C1 RU 2014335 C1 RU2014335 C1 RU 2014335C1 SU 5012648 A SU5012648 A SU 5012648A RU 2014335 C1 RU2014335 C1 RU 2014335C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bsa
- bovine serum
- serum albumin
- trypsin
- albumin
- Prior art date
Links
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 title claims abstract description 19
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 title claims abstract description 19
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 238000000746 purification Methods 0.000 title abstract description 6
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 13
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 13
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 claims abstract description 12
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 claims abstract description 12
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 claims abstract description 12
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 claims abstract description 8
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 claims abstract description 6
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 claims abstract description 6
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 claims abstract description 6
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 claims abstract description 4
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 claims abstract description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 4
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 claims 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 10
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 9
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 9
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 3
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 3
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 2
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 2
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 2
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 2
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 1
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 1
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 description 1
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 238000001742 protein purification Methods 0.000 description 1
- 238000005185 salting out Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биологической химии и может быть использовано для повышения степени гомогенности коммерческих препаратов бычьего сывороточного альбумина (БСА). The invention relates to biological chemistry and can be used to increase the degree of homogeneity of commercial preparations of bovine serum albumin (BSA).
БСА широко применяют в биохимической и иммунологической практике с целью подавления неспецифической адсорбции антител, для стабилизации антигенов, в качестве белка-маркера и т.п. Чистота используемого альбумина, определяемая степенью его гомогенности, является одним из факторов, влияющих на качество проводимых исследований. BSA is widely used in biochemical and immunological practice to suppress non-specific adsorption of antibodies, to stabilize antigens, as a marker protein, etc. The purity of the used albumin, determined by the degree of its homogeneity, is one of the factors affecting the quality of the research.
В настоящее время для выделения БСА из плазмы используют следующие основные способы: высаливание неорганическими солями (обычно сульфатом аммония), осаждение органическими растворителя при пониженной температуре, избирательная денатурация с последующим осаждением посторонних протеинов. Дальнейшую очистку альбумина с целью повышения степени его гомогенности осуществляют, используя методы препаративного электрофореза, гель-фильтрации, хроматографии, в том числе аффинной и др. Currently, the following main methods are used to isolate BSA from plasma: salting out with inorganic salts (usually ammonium sulfate), precipitation by organic solvents at low temperatures, selective denaturation followed by precipitation of foreign proteins. Further purification of albumin in order to increase its homogeneity is carried out using preparative electrophoresis, gel filtration, chromatography, including affinity and others.
Целью изобретения является дополнительная очистка коммерческих препаратов БСА, первоначально выделенных из плазмы, что достигается ферментативным протеолизом посторонних белков с помощью трипсина с последующим разделением альбумина, трипсина и продуктов протеолиза на сефадексе. The aim of the invention is the additional purification of commercial BSA preparations initially isolated from plasma, which is achieved by enzymatic proteolysis of extraneous proteins using trypsin, followed by separation of albumin, trypsin and proteolysis products at Sephadex.
Сущность заявленного способа дополнительной очистки БСА заключается в том, что к 1-3% раствору альбумина в 01, М бикарбонатном буфере (рН 7,8) добавляют кристаллический трипсин (или эквивалентное по активности количество аморфного трипсина), исходя из соотношения белок:фермент, равном 50:1, выдерживают при 37оС 1 ч и затем раствор пропускают через колонку с сефадексом, при этом альбумин (М=69000) выходит из колонки раньше, чем трипсин (М= 21000) и продукты протеолиза. При необходимости получения белка в свободном состоянии проводят диализ для удаления солей и лиофильную осушку. При выборе оптимальных условий проведения протеолиза (концентрация, температура, рН) руководствуются апробированными данными.The essence of the claimed method for additional purification of BSA is that crystalline trypsin (or equivalent in activity amount of amorphous trypsin) is added to a 1-3% solution of albumin in 01, M bicarbonate buffer (pH 7.8), based on the ratio of protein: enzyme, equal to 50: 1, is maintained at 37 ° C for 1 hour and then the solution was passed through a column of Sephadex, wherein the albumin (M = 69000) comes off the column before trypsin (M = 21000) and proteolysis products. If it is necessary to obtain protein in a free state, dialysis is performed to remove salts and freeze drying. When choosing the optimal conditions for proteolysis (concentration, temperature, pH) are guided by proven data.
Для контроля за степенью чистоты альбумина выполняли диск-электрофорез белкового раствора в полиакриламидном геле на приборе ПЭФА-1 до и после протеолиза. Значения рН разделяющего геля и буферного раствора составляли 8,9 и 8,3 соответственно, окрашивание белковых зон в геле осуществляли красителем амидо-черным. Следует отметить, что при указанных значениях рН молекулы трипсина заряжены положительно (изоэлектрическая точка 10,5) и мигрировать в геле к положительному электроду не будут, что исключает влияние фермента на результаты электрофореза. To control the purity of albumin, we performed disk-electrophoresis of a protein solution in a polyacrylamide gel on a PEFA-1 device before and after proteolysis. The pH values of the separating gel and buffer solution were 8.9 and 8.3, respectively, the staining of the protein zones in the gel was carried out with an amide-black dye. It should be noted that at the indicated pH values the trypsin molecules are positively charged (isoelectric point 10.5) and will not migrate in the gel to the positive electrode, which excludes the effect of the enzyme on the results of electrophoresis.
На чертеже представлены электрофореграммы исходного препарата БСА (а) и белка, подвергшегося воздействию трипсина (б). The drawing shows electrophoregrams of the initial preparation BSA (a) and protein exposed to trypsin (b).
Как видно, в результате обработки ферментом достигается существенное повышение степени гомогенности белкового препарата. As can be seen, as a result of treatment with the enzyme, a significant increase in the degree of homogeneity of the protein preparation is achieved.
Для сравнения предложенного способа гомогенизации БСА с ранее известными была выполнена тепловая денатурация посторонних белков, для чего 1%-ный раствор альбумина в дистиллированной воде инкубировали при 70оС до появления легкого помутнения, фильтровали и проводили электрофорез. Как видно из электрофореграммы, представленной на чертеже (в), полного удаления посторонних протеинов достичь не удалось, вместе с тем уменьшается интенсивность белковой зоны альбумина, что свидетельствует о частичной потере полезного компонента.To compare the proposed method with BSA homogenization prior art thermal denaturation extraneous protein has been performed, which 1% albumin solution in distilled water was incubated at 70 ° C until a slightly cloudy, was filtered and electrophoresed. As can be seen from the electrophoregram shown in drawing (c), complete removal of extraneous proteins could not be achieved, however, the intensity of the albumin protein zone decreases, which indicates a partial loss of the useful component.
Пример конкретной процедуры очистки коммерческого препарата бычьего сывороточного альбумина. An example of a specific purification procedure for a commercial bovine serum albumin preparation.
Оборудование:
1. Термостат лабораторный. 2. Прибор для электрофореза ПЭФА-1, ТУ 5-375-4231-77. 3. Стеклянная колонка l=50 см, d=1 см с сефадексом G=75 (LКВ, Швеция).Equipment:
1. Laboratory thermostat. 2. The device for electrophoresis PEFA-1, TU 5-375-4231-77. 3. Glass column l = 50 cm, d = 1 cm with Sephadex G = 75 (LKV, Sweden).
Реактивы и материалы: 1. БСА марки Б производства Олайнского завода, ТУ 6-09-10-342-75. 2. Трипсин производства Ленинградского мясокомбината. 3. 0,1 М бикарбонатный буфер, рН 7,8. 4. Набор реактивов для проведения диск-электрофореза (по паспорту к прибору ПЭФА-1). Reagents and materials: 1. BSA grade B produced by the Olaine plant, TU 6-09-10-342-75. 2. Trypsin produced by the Leningrad meat processing plant. 3. 0.1 M bicarbonate buffer, pH 7.8. 4. A set of reagents for conducting disk electrophoresis (according to the passport to the device PEFA-1).
Ход выполнения процедуры: 1 г БСА растворяют в 100 мл бикарбонатного буфера, фильтруют для удаления осадка. Отбирают пробу раствора белка и выполняют диск-электрофорез в соответствии с методикой, приведенной в паспорте на прибор ПЭФА-1 (3), электрофореграмма исходного раствора БСА приведена на чертеже (а). К раствору БСА добавляют 20 мг трипсина, перемешивают и выдерживают в термостате при 37оС в течение 1 ч. Повторяют электрофорез, результаты приведены на чертеже (б). Для отделения трипсина и продуктов протеолиза раствор пропускают через колонку с сефадексом, фракция очищенного альбумина выходит из колонки первой.Procedure: 1 g of BSA is dissolved in 100 ml of bicarbonate buffer, filtered to remove sediment. A sample of a protein solution is taken and disk electrophoresis is performed in accordance with the procedure described in the passport for the PEFA-1 device (3), the electrophoregram of the initial BSA solution is shown in drawing (a). To a solution of BSA was added 20 mg of trypsin, stirred and incubated at 37 ° C for 1 hour. The electrophoresis was repeated, the results are shown in the drawing (b). To separate trypsin and proteolysis products, the solution is passed through a Sephadex column, the fraction of purified albumin leaves the column first.
Технико-экономическая или иная эффективность. Предлагаемый способ дополнительной очистки белка является эффективным средством гомогенизации коммерческих препаратов бычьего сывороточного альбумина. Feasibility or other efficiency. The proposed method for additional protein purification is an effective means of homogenizing commercial preparations of bovine serum albumin.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5012648 RU2014335C1 (en) | 1991-11-26 | 1991-11-26 | Method of bovine serum albumin purification |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5012648 RU2014335C1 (en) | 1991-11-26 | 1991-11-26 | Method of bovine serum albumin purification |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2014335C1 true RU2014335C1 (en) | 1994-06-15 |
Family
ID=21589567
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU5012648 RU2014335C1 (en) | 1991-11-26 | 1991-11-26 | Method of bovine serum albumin purification |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2014335C1 (en) |
-
1991
- 1991-11-26 RU SU5012648 patent/RU2014335C1/en active
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4217339A (en) | Glycoprotein and process for isolating it | |
| Huneeus et al. | Fibrillar proteins from squid axons: I. Neurofilament protein | |
| Udaka et al. | Further purification of a protease inhibitor from rabbit skin with healing inflammation | |
| EP0442026B1 (en) | Method to extract and purify human genomic DNA | |
| Connell et al. | The purification of haptoglobin | |
| CA2060314C (en) | Low electroendosmosis agarose | |
| US4857163A (en) | High resolution electrophoretic gel and method for separating serum proteins | |
| IE47092B1 (en) | New glycoprotein and process for isolating it | |
| EP0002139A1 (en) | Nerve growth factor and process for obtaining it | |
| Bernheimer et al. | Isoelectric analysis of cytolytic bacterial proteins | |
| Karn et al. | Immunological relationships and post-translational modifications of human salivary amylase (Amy1) and pancreatic amylase (Amy2) isozymes | |
| US4751078A (en) | Process for the purification of gamma interferon | |
| Moroz et al. | Isolation and characterization of a neurotoxin from Vipera palestinae venom | |
| ATE449843T1 (en) | ELECTROPHORETIC SEPARATION OF NUCLEIC ACIDS FROM BIOLOGICAL SAMPLES AT LOW PH | |
| RU2014335C1 (en) | Method of bovine serum albumin purification | |
| Chianese et al. | Discovery of an ovine αs2-casein variant | |
| Roberts et al. | The preparation and purification of individual human pepsins by using diethylaminoethyl-cellulose | |
| Hjertén et al. | Polyacrylamide gel electrophoresis: Recovery of non-stained and stained proteins from gel slices | |
| Holler et al. | Non‐disruptive detection of DNA polymerases in nondenaturing polyacrylamide gels | |
| Kolar et al. | Proteose-peptone fraction of bovine milk: distribution in the protein system | |
| Glass et al. | Properties of nerve growth factor from the venom of Bothrops atrox | |
| Purkayastha et al. | Location of the carbohydrate-containing fraction of κ-Casein after gel electrophoresis | |
| WO2003013702A1 (en) | Separation of components from milk sources | |
| Edwards et al. | Method for improved protein separation in human and animal sera | |
| Litwiller et al. | Identification and isolation of vitamin K-dependent proteins by HPLC |