[go: up one dir, main page]

RU2014335C1 - Method of bovine serum albumin purification - Google Patents

Method of bovine serum albumin purification

Info

Publication number
RU2014335C1
RU2014335C1 SU5012648A RU2014335C1 RU 2014335 C1 RU2014335 C1 RU 2014335C1 SU 5012648 A SU5012648 A SU 5012648A RU 2014335 C1 RU2014335 C1 RU 2014335C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bsa
bovine serum
serum albumin
trypsin
albumin
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Игорь Иванович Геращенко
Николай Борисович Луцюк
Александр Алексеевич Пентюк
Original Assignee
Игорь Иванович Геращенко
Николай Борисович Луцюк
Александр Алексеевич Пентюк
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Игорь Иванович Геращенко, Николай Борисович Луцюк, Александр Алексеевич Пентюк filed Critical Игорь Иванович Геращенко
Priority to SU5012648 priority Critical patent/RU2014335C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2014335C1 publication Critical patent/RU2014335C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

FIELD: biochemistry, biotechnology. SUBSTANCE: bovine serum albumin (BSA) is isolated from blood plasma by precipitation with ethanol, by change of pH and ionic strength. Proteolysis of extrinsic proteins is carried out additionally with trypsin in bicarbonate buffer, pH 7.8. BSA is separated by gel-filtration on Sephadex G-75. EFFECT: improved method of purification. 1 dwg

Description

Изобретение относится к биологической химии и может быть использовано для повышения степени гомогенности коммерческих препаратов бычьего сывороточного альбумина (БСА). The invention relates to biological chemistry and can be used to increase the degree of homogeneity of commercial preparations of bovine serum albumin (BSA).

БСА широко применяют в биохимической и иммунологической практике с целью подавления неспецифической адсорбции антител, для стабилизации антигенов, в качестве белка-маркера и т.п. Чистота используемого альбумина, определяемая степенью его гомогенности, является одним из факторов, влияющих на качество проводимых исследований. BSA is widely used in biochemical and immunological practice to suppress non-specific adsorption of antibodies, to stabilize antigens, as a marker protein, etc. The purity of the used albumin, determined by the degree of its homogeneity, is one of the factors affecting the quality of the research.

В настоящее время для выделения БСА из плазмы используют следующие основные способы: высаливание неорганическими солями (обычно сульфатом аммония), осаждение органическими растворителя при пониженной температуре, избирательная денатурация с последующим осаждением посторонних протеинов. Дальнейшую очистку альбумина с целью повышения степени его гомогенности осуществляют, используя методы препаративного электрофореза, гель-фильтрации, хроматографии, в том числе аффинной и др. Currently, the following main methods are used to isolate BSA from plasma: salting out with inorganic salts (usually ammonium sulfate), precipitation by organic solvents at low temperatures, selective denaturation followed by precipitation of foreign proteins. Further purification of albumin in order to increase its homogeneity is carried out using preparative electrophoresis, gel filtration, chromatography, including affinity and others.

Целью изобретения является дополнительная очистка коммерческих препаратов БСА, первоначально выделенных из плазмы, что достигается ферментативным протеолизом посторонних белков с помощью трипсина с последующим разделением альбумина, трипсина и продуктов протеолиза на сефадексе. The aim of the invention is the additional purification of commercial BSA preparations initially isolated from plasma, which is achieved by enzymatic proteolysis of extraneous proteins using trypsin, followed by separation of albumin, trypsin and proteolysis products at Sephadex.

Сущность заявленного способа дополнительной очистки БСА заключается в том, что к 1-3% раствору альбумина в 01, М бикарбонатном буфере (рН 7,8) добавляют кристаллический трипсин (или эквивалентное по активности количество аморфного трипсина), исходя из соотношения белок:фермент, равном 50:1, выдерживают при 37оС 1 ч и затем раствор пропускают через колонку с сефадексом, при этом альбумин (М=69000) выходит из колонки раньше, чем трипсин (М= 21000) и продукты протеолиза. При необходимости получения белка в свободном состоянии проводят диализ для удаления солей и лиофильную осушку. При выборе оптимальных условий проведения протеолиза (концентрация, температура, рН) руководствуются апробированными данными.The essence of the claimed method for additional purification of BSA is that crystalline trypsin (or equivalent in activity amount of amorphous trypsin) is added to a 1-3% solution of albumin in 01, M bicarbonate buffer (pH 7.8), based on the ratio of protein: enzyme, equal to 50: 1, is maintained at 37 ° C for 1 hour and then the solution was passed through a column of Sephadex, wherein the albumin (M = 69000) comes off the column before trypsin (M = 21000) and proteolysis products. If it is necessary to obtain protein in a free state, dialysis is performed to remove salts and freeze drying. When choosing the optimal conditions for proteolysis (concentration, temperature, pH) are guided by proven data.

Для контроля за степенью чистоты альбумина выполняли диск-электрофорез белкового раствора в полиакриламидном геле на приборе ПЭФА-1 до и после протеолиза. Значения рН разделяющего геля и буферного раствора составляли 8,9 и 8,3 соответственно, окрашивание белковых зон в геле осуществляли красителем амидо-черным. Следует отметить, что при указанных значениях рН молекулы трипсина заряжены положительно (изоэлектрическая точка 10,5) и мигрировать в геле к положительному электроду не будут, что исключает влияние фермента на результаты электрофореза. To control the purity of albumin, we performed disk-electrophoresis of a protein solution in a polyacrylamide gel on a PEFA-1 device before and after proteolysis. The pH values of the separating gel and buffer solution were 8.9 and 8.3, respectively, the staining of the protein zones in the gel was carried out with an amide-black dye. It should be noted that at the indicated pH values the trypsin molecules are positively charged (isoelectric point 10.5) and will not migrate in the gel to the positive electrode, which excludes the effect of the enzyme on the results of electrophoresis.

На чертеже представлены электрофореграммы исходного препарата БСА (а) и белка, подвергшегося воздействию трипсина (б). The drawing shows electrophoregrams of the initial preparation BSA (a) and protein exposed to trypsin (b).

Как видно, в результате обработки ферментом достигается существенное повышение степени гомогенности белкового препарата. As can be seen, as a result of treatment with the enzyme, a significant increase in the degree of homogeneity of the protein preparation is achieved.

Для сравнения предложенного способа гомогенизации БСА с ранее известными была выполнена тепловая денатурация посторонних белков, для чего 1%-ный раствор альбумина в дистиллированной воде инкубировали при 70оС до появления легкого помутнения, фильтровали и проводили электрофорез. Как видно из электрофореграммы, представленной на чертеже (в), полного удаления посторонних протеинов достичь не удалось, вместе с тем уменьшается интенсивность белковой зоны альбумина, что свидетельствует о частичной потере полезного компонента.To compare the proposed method with BSA homogenization prior art thermal denaturation extraneous protein has been performed, which 1% albumin solution in distilled water was incubated at 70 ° C until a slightly cloudy, was filtered and electrophoresed. As can be seen from the electrophoregram shown in drawing (c), complete removal of extraneous proteins could not be achieved, however, the intensity of the albumin protein zone decreases, which indicates a partial loss of the useful component.

Пример конкретной процедуры очистки коммерческого препарата бычьего сывороточного альбумина. An example of a specific purification procedure for a commercial bovine serum albumin preparation.

Оборудование:
1. Термостат лабораторный. 2. Прибор для электрофореза ПЭФА-1, ТУ 5-375-4231-77. 3. Стеклянная колонка l=50 см, d=1 см с сефадексом G=75 (LКВ, Швеция).
Equipment:
1. Laboratory thermostat. 2. The device for electrophoresis PEFA-1, TU 5-375-4231-77. 3. Glass column l = 50 cm, d = 1 cm with Sephadex G = 75 (LKV, Sweden).

Реактивы и материалы: 1. БСА марки Б производства Олайнского завода, ТУ 6-09-10-342-75. 2. Трипсин производства Ленинградского мясокомбината. 3. 0,1 М бикарбонатный буфер, рН 7,8. 4. Набор реактивов для проведения диск-электрофореза (по паспорту к прибору ПЭФА-1). Reagents and materials: 1. BSA grade B produced by the Olaine plant, TU 6-09-10-342-75. 2. Trypsin produced by the Leningrad meat processing plant. 3. 0.1 M bicarbonate buffer, pH 7.8. 4. A set of reagents for conducting disk electrophoresis (according to the passport to the device PEFA-1).

Ход выполнения процедуры: 1 г БСА растворяют в 100 мл бикарбонатного буфера, фильтруют для удаления осадка. Отбирают пробу раствора белка и выполняют диск-электрофорез в соответствии с методикой, приведенной в паспорте на прибор ПЭФА-1 (3), электрофореграмма исходного раствора БСА приведена на чертеже (а). К раствору БСА добавляют 20 мг трипсина, перемешивают и выдерживают в термостате при 37оС в течение 1 ч. Повторяют электрофорез, результаты приведены на чертеже (б). Для отделения трипсина и продуктов протеолиза раствор пропускают через колонку с сефадексом, фракция очищенного альбумина выходит из колонки первой.Procedure: 1 g of BSA is dissolved in 100 ml of bicarbonate buffer, filtered to remove sediment. A sample of a protein solution is taken and disk electrophoresis is performed in accordance with the procedure described in the passport for the PEFA-1 device (3), the electrophoregram of the initial BSA solution is shown in drawing (a). To a solution of BSA was added 20 mg of trypsin, stirred and incubated at 37 ° C for 1 hour. The electrophoresis was repeated, the results are shown in the drawing (b). To separate trypsin and proteolysis products, the solution is passed through a Sephadex column, the fraction of purified albumin leaves the column first.

Технико-экономическая или иная эффективность. Предлагаемый способ дополнительной очистки белка является эффективным средством гомогенизации коммерческих препаратов бычьего сывороточного альбумина. Feasibility or other efficiency. The proposed method for additional protein purification is an effective means of homogenizing commercial preparations of bovine serum albumin.

Claims (1)

СПОСОБ ОЧИСТКИ БЫЧЬЕГО СЫВОРОТОЧНОГО АЛЬБУМИНА, включающий осаждение плазмы этанолом при низкой температуре, изменение рН, ионной силы, удаление посторонних белков, отличающийся тем, что дополнительно осуществляют протеолиз примесных белков с помощью трипсина в бикарбонатном буфере, рН 7,8, при 37oС и отделяют бычий сывороточный альбумин путем гельфильтрации через сефадекс G-75.METHOD FOR CLEANING BOBYE SERUM ALBUMINE, including plasma precipitation with ethanol at low temperature, changing pH, ionic strength, removing foreign proteins, characterized in that they additionally carry out the proteolysis of impurity proteins with trypsin in bicarbonate buffer, pH 7.8, at 37 ° C and bovine serum albumin is separated by gel filtration through Sephadex G-75.
SU5012648 1991-11-26 1991-11-26 Method of bovine serum albumin purification RU2014335C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5012648 RU2014335C1 (en) 1991-11-26 1991-11-26 Method of bovine serum albumin purification

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5012648 RU2014335C1 (en) 1991-11-26 1991-11-26 Method of bovine serum albumin purification

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2014335C1 true RU2014335C1 (en) 1994-06-15

Family

ID=21589567

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5012648 RU2014335C1 (en) 1991-11-26 1991-11-26 Method of bovine serum albumin purification

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2014335C1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4217339A (en) Glycoprotein and process for isolating it
Huneeus et al. Fibrillar proteins from squid axons: I. Neurofilament protein
Udaka et al. Further purification of a protease inhibitor from rabbit skin with healing inflammation
EP0442026B1 (en) Method to extract and purify human genomic DNA
Connell et al. The purification of haptoglobin
CA2060314C (en) Low electroendosmosis agarose
US4857163A (en) High resolution electrophoretic gel and method for separating serum proteins
IE47092B1 (en) New glycoprotein and process for isolating it
EP0002139A1 (en) Nerve growth factor and process for obtaining it
Bernheimer et al. Isoelectric analysis of cytolytic bacterial proteins
Karn et al. Immunological relationships and post-translational modifications of human salivary amylase (Amy1) and pancreatic amylase (Amy2) isozymes
US4751078A (en) Process for the purification of gamma interferon
Moroz et al. Isolation and characterization of a neurotoxin from Vipera palestinae venom
ATE449843T1 (en) ELECTROPHORETIC SEPARATION OF NUCLEIC ACIDS FROM BIOLOGICAL SAMPLES AT LOW PH
RU2014335C1 (en) Method of bovine serum albumin purification
Chianese et al. Discovery of an ovine αs2-casein variant
Roberts et al. The preparation and purification of individual human pepsins by using diethylaminoethyl-cellulose
Hjertén et al. Polyacrylamide gel electrophoresis: Recovery of non-stained and stained proteins from gel slices
Holler et al. Non‐disruptive detection of DNA polymerases in nondenaturing polyacrylamide gels
Kolar et al. Proteose-peptone fraction of bovine milk: distribution in the protein system
Glass et al. Properties of nerve growth factor from the venom of Bothrops atrox
Purkayastha et al. Location of the carbohydrate-containing fraction of κ-Casein after gel electrophoresis
WO2003013702A1 (en) Separation of components from milk sources
Edwards et al. Method for improved protein separation in human and animal sera
Litwiller et al. Identification and isolation of vitamin K-dependent proteins by HPLC