[go: up one dir, main page]

RU2086646C1 - Nutrient medium for anaerobs culturing - Google Patents

Nutrient medium for anaerobs culturing Download PDF

Info

Publication number
RU2086646C1
RU2086646C1 SU5061177A RU2086646C1 RU 2086646 C1 RU2086646 C1 RU 2086646C1 SU 5061177 A SU5061177 A SU 5061177A RU 2086646 C1 RU2086646 C1 RU 2086646C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sodium
medium
casein
yeast
agar
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
И.З. Курбанова
В.И. Кочеровец
Original Assignee
Научно-производственное объединение "Питательные среды"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственное объединение "Питательные среды" filed Critical Научно-производственное объединение "Питательные среды"
Priority to SU5061177 priority Critical patent/RU2086646C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2086646C1 publication Critical patent/RU2086646C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: microbiology. SUBSTANCE: medium has glucose, cysteine, hemin, menadione, agar, yeast-base source of vitamins of group B, tryptic or peptic casein hydrolyzate, aminopeptide, potassium dihydrogen phosphate, potassium hydrogen phosphate, ammonium sulfate, magnesium sulfate, sodium chloride, sodium pyruvate, sodium succinate, sodium carbonate, starch, maltose, arabinose, fructose, polyglucin and distilled water taken at the definite ratio of components. EFFECT: increased yield of colonies, decreased cost, simplified use of medium. 4 tbl

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при получении первичной питательной среды для культивирования и выделения анаэробов в клинико-диагностической лаборатории. The invention relates to biotechnology and can be used to obtain a primary nutrient medium for the cultivation and isolation of anaerobes in a clinical diagnostic laboratory.

Для культивирования анаэробных бактерий используют среду Вилкинса-Чалгрена, включающую панкреализаты казеина и желатина, дрожжевой экстракт, глюкозу, хлористый натрий, l-агринин, пируват натрия, агар, гемин, витамин K1 и дистиллированную воду [1] среду Клаузена, содержащую триптон, дрожжевой экстракт, соевый пептон, глюкозу, хлориды натрия, кальция и магния, динатрийфосфат, цитрат, дитионат и бифосфат натрия, l-цистин, l-аспарагин, лецитин, сульфаты магния, кобальта, железа и цинка, твин-80, агар и дистиллированную воду [2]
Однако данные среды содержат дефицитные и дорогие ингредиенты.
For the cultivation of anaerobic bacteria, the Wilkins-Chalgren medium is used, including casein and gelatin pancreases, yeast extract, glucose, sodium chloride, l-agrinin, sodium pyruvate, agar, hemin, vitamin K1 and distilled water [1] Clausen medium containing tryptone, yeast extract, soy peptone, glucose, sodium, calcium and magnesium chlorides, disodium phosphate, citrate, dithionate and sodium bisphosphate, l-cystine, l-asparagine, lecithin, magnesium, cobalt, iron and zinc sulfates, tween-80, agar and distilled water [2]
However, these media contain scarce and expensive ingredients.

Известно также использование для культивирования анаэробов среды Шадлера [3] содержащей панкреализат сои, пептон, дрожжевой экстракт (в качестве источника витаминов группы B), глюкозу, цистеин, гемин, агар, трис-буфер и дистиллированную воду при следующих соотношениях ингредиентов, г/л:
Панкреализат сои 10,0
Ппептон 5,0
Дрожжевой экстракт 5,0
Глюкоза 5,0
Цистеин 0,4
Гемин 0,01
Агар 13,5
Трис-буфер 0,75
Дистиллированная вода Остальное
При использовании этой среды в нее дополнительно ex tempore стерильно вносят 10 мкг/мл менадиона (витамина K1) и 5 об. крови (Каталог фирмы Oxoid, Великобритания, 1991; Morello G.A. Graves M.H. Clinical Anaerobik Bacteriology. -Laboratory Management, 1977, 15, 4, 20-21, 24-25, 51), что и является ее недостатком. Кроме того, на данной среде имеет место низкий рост некоторых видов анаэробов (B.fragilis, B.thetaiotamicron и др.).
It is also known to use for the cultivation of anaerobes Schadler's medium [3] containing soya pancrealizate, peptone, yeast extract (as a source of B vitamins), glucose, cysteine, hemin, agar, Tris buffer and distilled water in the following ratios of ingredients, g / l :
Soya Pancreatate 10.0
Pepeton 5.0
Yeast Extract 5.0
Glucose 5.0
Cysteine 0.4
Gemin 0.01
Agar 13.5
Tris buffer 0.75
Distilled Water Else
When using this medium, 10 μg / ml of menadione (vitamin K1) and 5 vol. blood (Catalog of the company Oxoid, UK, 1991; Morello GA Graves MH Clinical Anaerobik Bacteriology. Laboratory Management, 1977, 15, 4, 20-21, 24-25, 51), which is its drawback. In addition, in this medium there is a low growth of some types of anaerobes (B.fragilis, B.thetaiotamicron, etc.).

Целью изобретения является повышение удобства использования среды. The aim of the invention is to improve the usability of the environment.

Указанная цель достигается тем, что питательная среда для культивирования анаэробов, включая глюкозу, цистеин, гемин, менадион, агар, источник витаминов группы B на основе дрожжей и дистиллированную воду, дополнительно содержит триптический и пептический гидролизаты казеина, аминопептид, дигидрофосфат и гидрофосфат калия, сульфаты аммония и магния, хлорид, пируват, сукцинат и карбонат натрия, крахмал, мальтозу, арабинозу, фруктозу и полиглюкин при следующих соотношениях ингредиентов,г/л:
Глюкоза 1±0,5
Цистеин 2±1
Гемин 0,2±0,1
Менадион 0,001±0,0005
Агар 11±2
Источник витаминов группы B на основе дрожжей 9±4
Триптический гидролизат казеина (ТГК) 15±3
Пептический гидролизат казеина (ПГК) 8±3
Аминопептид 3±1
Дигидрофосфат калия 0,5±0,2
Гидрофосфат калия 0,5±0,2
Сульфат аммония 0,5±0,2
Сульфат магния 0,2±0,1
Хлорид натрия 0,8±0,3
Пируват натрия 1,5±0,5
Сукцинат натрия 1,2±0,2
Карбонат натрия 2,3±0,4
Крахмал 1±0,5
Мальтоза 1±0,5
Арабиноза 1±0,5
Фруктоза 1±0,5
Полиглюкин 5±1
дистиллированная вода остальное.
This goal is achieved in that the nutrient medium for the cultivation of anaerobes, including glucose, cysteine, hemin, menadione, agar, a source of B vitamins based on yeast and distilled water, additionally contains tryptic and peptic hydrolysates of casein, aminopeptide, dihydrogen phosphate and potassium hydrogen phosphate, sulfates ammonium and magnesium, chloride, pyruvate, succinate and sodium carbonate, starch, maltose, arabinose, fructose and polyglucin in the following ratios of ingredients, g / l:
Glucose 1 ± 0.5
Cysteine 2 ± 1
Gemin 0.2 ± 0.1
Menadione 0.001 ± 0.0005
Agar 11 ± 2
Source of B vitamins based on yeast 9 ± 4
Tryptic Casein Hydrolyzate (THC) 15 ± 3
Peptic Casein Hydrolyzate (PGC) 8 ± 3
Aminopeptide 3 ± 1
Potassium dihydrogen phosphate 0.5 ± 0.2
Potassium hydrogen phosphate 0.5 ± 0.2
Ammonium Sulfate 0.5 ± 0.2
Magnesium Sulfate 0.2 ± 0.1
Sodium Chloride 0.8 ± 0.3
Sodium pyruvate 1.5 ± 0.5
Sodium succinate 1.2 ± 0.2
Sodium carbonate 2.3 ± 0.4
Starch 1 ± 0.5
Maltose 1 ± 0.5
Arabinose 1 ± 0.5
Fructose 1 ± 0.5
Polyglukin 5 ± 1
distilled water the rest.

В качестве источника витаминов группы B на основе дрожжей может использоваться экстракт кормовых дрожжей (ЭКД), как в прототипе, либо триптический гидролизат кормовых дрожжей (ТГКД). As a source of vitamins of group B on the basis of yeast, extract of fodder yeast (ECD) can be used, as in the prototype, or tryptic hydrolyzate of fodder yeast (THCD).

В предлагаемой прописи принципиально одновременное использование триптического и пептического гидролизатов казеина. В противном случае имеет место низкий рост микробных культур анаэробов, что происходит, по-видимому, из-за различного аминокислотного состава этих гидролизатов и поясняется данными табл.1. In the proposed recipe, the concurrent use of tryptic and peptic casein hydrolysates is essentially. Otherwise, there is a low growth of microbial cultures of anaerobes, which occurs, apparently, due to the different amino acid composition of these hydrolysates and is explained by the data in Table 1.

В табл.1 проиллюстрирована также неприемлемость использования кислотного гидролизата казеина. Table 1 also illustrates the unacceptability of using casein acid hydrolyzate.

Содержание аминного азота в сухих гидролизатах казеина, мас. The content of amino nitrogen in dry casein hydrolysates, wt.

Кислотном 3,0
Триптическом 3,2
Пептическом 1,5
Посевная доза 1 млн./мл. Содержание остальных ингредиентов среды равно номинальным значениям, указанным на с.2. Микробные культуры выращивают в анаэростате в газовой среде азота (80%), водорода (10%) и углекислого газа (10%) в течение двух суток при 37oC.
Acid 3.0
Tryptic 3.2
Peptic 1.5
Sowing dose of 1 million / ml. The content of the remaining ingredients of the medium is equal to the nominal values specified in p.2. Microbial cultures are grown in an anaerostat in a gaseous environment of nitrogen (80%), hydrogen (10%) and carbon dioxide (10%) for two days at 37 o C.

Способ получения гидролизата казеина влияет также на морфологию микробных колоний. При использовании смеси триптического и пептического гидролизатов колонии находятся в S-форме, тогда как при использовании кислотного гидролизата 60-70% колоний имеют R-форму. The method for producing casein hydrolyzate also affects the morphology of microbial colonies. When using a mixture of tryptic and peptic hydrolysates, the colonies are in S-form, while when using an acid hydrolyzate, 60-70% of the colonies are R-shaped.

Пример 1. Готовят пять вариантов питательной среды путем смешивания в шаровой мельнице следующих сухих ингредиентов: пептического и триптического гидролизатов казеина (с вышеуказанным содержанием аминного азота), экстракта кормовых дрожжей, аминопептида, дигидрофосфата и гидрофосфата калия, сульфатов аммония и магния, пирувата, сукцината и хлорида натрия, глюкозы, крахмала, мальтозы, арабинозы, фруктозы, цистеина, полиглюкина, гемина, менадиона и агара с последующим растворением в дистиллированной воде. Ингредиенты смешивают из расчета получения вариантов среды, указанных в табл.2. Среды стерилизуют автоклавированием при 121oC в течение 15 мин.Example 1. Prepare five options for a nutrient medium by mixing in a ball mill the following dry ingredients: peptic and tryptic hydrolysates of casein (with the above content of amine nitrogen), extract of fodder yeast, aminopeptide, dihydrogen phosphate and hydrogen phosphate, potassium sulfates of ammonium and magnesium, pyruvate, succinate and sodium chloride, glucose, starch, maltose, arabinose, fructose, cysteine, polyglucin, hemin, menadione and agar, followed by dissolution in distilled water. The ingredients are mixed based on the preparation of medium options listed in table 2. The media is sterilized by autoclaving at 121 ° C. for 15 minutes.

На данные среды, разлитые в чашки Петри, засевают по 0,1 мл анаэробных культур с концентрацией микробных клеток 0,1 млн./мл. Микробные культуры выращивают анаэростате в газовой среде азота (80%), водорода (10%) и углекислого газа (10%) в течение двух суток при 37oC. Для каждой культуры используют по три чашки Петри. Выросшие культуры окрашивают по Граму и микроскопируют.On these media, poured into Petri dishes, 0.1 ml of anaerobic cultures are inoculated with a concentration of microbial cells of 0.1 million / ml. Microbial cultures are grown with anaerostat in a gas medium of nitrogen (80%), hydrogen (10%) and carbon dioxide (10%) for two days at 37 o C. For each culture, three Petri dishes are used. Grown cultures are stained with Gram and microscopic.

Результаты культивирования приведены в табл.3. The cultivation results are given in table.3.

Как видно из данных табл.3, интенсивный рост колоний имеет место только при заявленном диапазоне концентраций ингредиентов питательной среды (среды NN 2-4), тогда как при запредельных концентрациях (среды NN 1 и 5) количество выросших колоний существенно меньше. As can be seen from the data in Table 3, intensive colony growth occurs only with the claimed range of concentrations of nutrient medium ingredients (media NN 2-4), while at transcendental concentrations (media NN 1 and 5) the number of colonies grown is significantly less.

Пример 2. Предлагаемую среду готовят, как в примере 1, при номинальном значении концентраций ингредиентов (указаны на с.2). В качестве источника витаминов группы B здесь используют триптический гидролизат кормовых дрожжей (ТГКД). Example 2. The proposed environment is prepared, as in example 1, at a nominal value of the concentrations of the ingredients (indicated on p.2). The source of B vitamins is the tryptic hydrolyzate of fodder yeast (THKD).

Посевной материал засевают в чашки Петри с приготовленной средой и средой Шадлера (контроль), используя по три чашки на каждую культуру. Концентрации ингредиентов в прототипной среде Шадлера, в том числе добавляемых ex tempore крови и менадиона, указаны на с.1. На чашки засевают анаэробные культуры в низких дозах: 1 тыс. кл. для B. fragilis и Cl. perfringens, 100 тыс. кл. для B. asaccharalyticus и 10 тыс. кл. для остальных микробов. Условия культивирования как в примере 1. Seed is seeded in Petri dishes with cooked medium and Chadler's medium (control), using three cups for each culture. The concentrations of the ingredients in the prototype Schadler’s environment, including those added ex tempore blood and menadione, are indicated on page 1. Anaerobic cultures are sown on cups in low doses: 1 thousand cells. for B. fragilis and Cl. perfringens, 100 thousand cells for B. asaccharalyticus and 10 thousand cells for the rest of the germs. Cultivation conditions as in example 1.

Результаты выращивания приведены в табл.4. The results of the cultivation are given in table.4.

Как видно из данных табл.4, предлагаемая питательная среда обеспечивает большой выход колоний по сравнению с прототипом (за исключением пептострептококка). Повышение выхода колоний статистически значимо по методу парных сравнений при p=0,05. As can be seen from the data of table 4, the proposed nutrient medium provides a large yield of colonies in comparison with the prototype (with the exception of peptostreptococcus). The increase in the yield of colonies is statistically significant by the method of pairwise comparisons at p = 0.05.

Другим преимуществом предлагаемой среды является отсутствие в ее рецептуре дефицитного компонента крови. Кроме того, обеспечена возможность заблаговременного приготовления среды, тогда как в прототипе кровь и менадион вносят ex tempore. Another advantage of the proposed environment is the absence of a deficient blood component in its formulation. In addition, it is possible to prepare the medium in advance, while in the prototype blood and menadione are introduced ex tempore.

К преимуществу предлагаемой среды относится также расширение источников используемого для ее приготовления непищевого сырья. The advantage of the proposed environment also includes the expansion of the sources used for its preparation of non-food raw materials.

Указанные виды положительного эффекта обеспечивают удобство использования предлагаемой питательной среды. These types of positive effect provide ease of use of the proposed nutrient medium.

Claims (1)

Питательная среда для культивирования анаэробов, включающая глюкозу, цистеин, гемин, менадион, агар, источник витаминов группы В на основе дрожжей и дистиллированную воду, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит триптический и пептический гидролизаты казеина, аминопептид, дигидрофосфат калия, гидрофосфат калия, сульфат аммония, сульфат магния, хлорид натрия, пируват натрия, сукцинат натрия, карбонат натрия, крахмал, мальтозу, арабинозу, фруктозу и полиглюкин при следующих соотношениях ингредиентов, г/л:
Глюкоза 0,5-1,5
Триптический гидролизат казеина 12-18
Цистеин 1-3
Гемин 0,1-0,3
Менадион 0,0005-0,0015
Агар 9-13
Источник витаминов группы В на основе дрожжей 5-15
Пептический гидролизат казеина 5-11
Аминопептид 2-4
Дигидрофосфат калия 0,3-0,7
Гидрофосфат калия 0,3-0,7
Сульфат аммония 0,3-0,7
Сульфат магния 0,1-0,3
Хлорид натрия 0,5-0,11
Пируват натрия 1-2
Сукцинат натрия 1-1,4
Карбонат натрия 1,9-2,7
Крахмал 0,5-1,5
Мальтоза 0,5-1,5
Арабиноза 0,5-1,5
Фруктоза 0,5-1,5
Полиглюкин 4-6
Дистиллированная вода До 1 л5
Nutrient medium for culturing anaerobes, including glucose, cysteine, hemin, menadione, agar, a source of B vitamins based on yeast and distilled water, characterized in that it additionally contains tryptic and peptic hydrolysates of casein, aminopeptide, potassium dihydrogen phosphate, potassium hydrogen phosphate, sulfate ammonium, magnesium sulfate, sodium chloride, sodium pyruvate, sodium succinate, sodium carbonate, starch, maltose, arabinose, fructose and polyglucin in the following ratios of ingredients, g / l:
Glucose 0.5-1.5
Casein hydrolyzate 12-18
Cysteine 1-3
Gemin 0.1-0.3
Menadione 0.0005-0.0015
Agar 9-13
A source of B vitamins based on yeast 5-15
Casein peptic hydrolyzate 5-11
Aminopeptide 2-4
Potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.7
Potassium hydrogen phosphate 0.3-0.7
Ammonium Sulfate 0.3-0.7
Magnesium Sulfate 0.1-0.3
Sodium Chloride 0.5-0.11
Sodium pyruvate 1-2
Sodium succinate 1-1.4
Sodium Carbonate 1.9-2.7
Starch 0.5-1.5
Maltose 0.5-1.5
Arabinose 0.5-1.5
Fructose 0.5-1.5
Polyglukin 4-6
Distilled water Up to 1 L5
SU5061177 1992-09-01 1992-09-01 Nutrient medium for anaerobs culturing RU2086646C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5061177 RU2086646C1 (en) 1992-09-01 1992-09-01 Nutrient medium for anaerobs culturing

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5061177 RU2086646C1 (en) 1992-09-01 1992-09-01 Nutrient medium for anaerobs culturing

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2086646C1 true RU2086646C1 (en) 1997-08-10

Family

ID=21612771

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5061177 RU2086646C1 (en) 1992-09-01 1992-09-01 Nutrient medium for anaerobs culturing

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2086646C1 (en)

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2193061C1 (en) * 2001-05-04 2002-11-20 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutrient medium for tuberculosis mycobacterium culturing (mbt-broth)
RU2198920C2 (en) * 2001-01-05 2003-02-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Аллерген" Nutrient medium for treponema biomass culturing
RU2201965C2 (en) * 2001-05-04 2003-04-10 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutritive medium for isolating bacillus cereus
RU2203939C2 (en) * 2001-07-04 2003-05-10 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutrient medium for differential diagnosis of clostridium perfringens
RU2245920C2 (en) * 2002-08-12 2005-02-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации Nutrient medium for production of bacteriophages and method for its preparing
RU2267530C2 (en) * 2004-01-05 2006-01-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации Broth for enteric bacterium accumulation
RU2268298C2 (en) * 2003-10-16 2006-01-20 Любовь Викторовна Домотенко Kit for examination of drug sensitivity and primary identification of tuberculosis mycobacteria
RU2381278C1 (en) * 2008-06-25 2010-02-10 Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ) Culture medium for determining common coliform bacteria and e coli in test samples
RU2384613C2 (en) * 2008-03-26 2010-03-20 ГУ Сибирского отделения Российской академии медицинских наук Научно-исследовательский институт Эпидемиологии и микробиологии (НИИ ЭМ СО РАМН) Nutritional medium for cultivating bacteria

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Antimicrob. Ag. Chemother, 1976, v.10, N 6, р.926-928. 2. Каталог фирмы Oxoid, 1991. 3. Morello B.A., Vraves M.H. Slinical Anaerobil Bacteriology/Zaborotory Mannagement, 1977, v. 15, N 4, р.20-25. *

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2198920C2 (en) * 2001-01-05 2003-02-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Аллерген" Nutrient medium for treponema biomass culturing
RU2193061C1 (en) * 2001-05-04 2002-11-20 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutrient medium for tuberculosis mycobacterium culturing (mbt-broth)
RU2201965C2 (en) * 2001-05-04 2003-04-10 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutritive medium for isolating bacillus cereus
RU2203939C2 (en) * 2001-07-04 2003-05-10 Научно-производственное объединение "Питательные среды" Nutrient medium for differential diagnosis of clostridium perfringens
RU2245920C2 (en) * 2002-08-12 2005-02-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации Nutrient medium for production of bacteriophages and method for its preparing
RU2268298C2 (en) * 2003-10-16 2006-01-20 Любовь Викторовна Домотенко Kit for examination of drug sensitivity and primary identification of tuberculosis mycobacteria
RU2267530C2 (en) * 2004-01-05 2006-01-10 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации Broth for enteric bacterium accumulation
RU2384613C2 (en) * 2008-03-26 2010-03-20 ГУ Сибирского отделения Российской академии медицинских наук Научно-исследовательский институт Эпидемиологии и микробиологии (НИИ ЭМ СО РАМН) Nutritional medium for cultivating bacteria
RU2381278C1 (en) * 2008-06-25 2010-02-10 Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ) Culture medium for determining common coliform bacteria and e coli in test samples

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2086646C1 (en) Nutrient medium for anaerobs culturing
CN115595279A (en) A kind of Helicobacter pylori solid culture medium
EP0468411B1 (en) A mutant of bacterium Clostridium histolyticum, a process for the obtaining thereof, and its use in the production of clostripain-free collagenase
CN114836342B (en) Lactic acid bacteria GS-3 and application thereof in selenium enrichment
EP1600514A2 (en) Selective culture medium for the isolation and/or detection of species in the streptococcus genus
Leviton et al. Microbiological synthesis of vitamin B12 by propionic acid bacteria
RU2333655C2 (en) Method for obtaining selenium-containing biologically active additive
KR100902396B1 (en) Microbial cultivation method using sterile nutrient composition and its microorganism growth substrate
CN117264852A (en) Method for cultivating probiotics composite flora by simulating human intestinal microecology co-evolution
CN109439576B (en) Novo fusobacterium culture medium and preparation method thereof
CN101270335A (en) Multipurpose microorganism additive agent
JPH03272657A (en) Production of fermented material effective in imparting resistance to alcohol and fermented food effective in imparting resistance to alcohol
JP2002218970A (en) Method for producing liquid koji
CN106479930A (en) A kind of improved formulations of TSA culture medium
US3282794A (en) Method of producing citrulline by bacterial fermentation
Dermoumi et al. Isolation and antimicrobial susceptibility testing of fecal strains of the archaeon Methanobrevibacter smithii
EP1196625B1 (en) Composition and method for detecting and early and differentiated counting of gram-negative microorganisms
JP2637470B2 (en) Mushroom artificial cultivation method
RU2216587C2 (en) Nutrient medium for culturing lactobacillus
SE461532B (en) ANTI-CANCER AND IMMUNACTIVE SUBSTANCES (SPF-100)
Ng Colourless agar for enhancing colour contrast between microbial colonies and agar
RU2214453C2 (en) Nutrient medium for accumulation of anthrax microbe
RU2722071C1 (en) Nutrient medium for cultivation of bacillus subtilis vkpm b-12079
RU2179582C2 (en) Nutritive medium to isolate pathogenic enterobacteria
SU1717035A1 (en) Nutrient medium for cultivating tetrahymena pyriformis infusoria