[go: up one dir, main page]

RU2067002C1 - Living cultural vaccine against carnivorous plague - Google Patents

Living cultural vaccine against carnivorous plague Download PDF

Info

Publication number
RU2067002C1
RU2067002C1 RU94031758A RU94031758A RU2067002C1 RU 2067002 C1 RU2067002 C1 RU 2067002C1 RU 94031758 A RU94031758 A RU 94031758A RU 94031758 A RU94031758 A RU 94031758A RU 2067002 C1 RU2067002 C1 RU 2067002C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
vaccine
vol
plague
carnivorous
Prior art date
Application number
RU94031758A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU94031758A (en
Inventor
В.М. Дорофеев
В.М. Колышкин
В.И. Уласов
Original Assignee
Товарищество с ограниченной ответственностью "Биоцентр"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Товарищество с ограниченной ответственностью "Биоцентр" filed Critical Товарищество с ограниченной ответственностью "Биоцентр"
Priority to RU94031758A priority Critical patent/RU2067002C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2067002C1 publication Critical patent/RU2067002C1/en
Publication of RU94031758A publication Critical patent/RU94031758A/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: veterinary. SUBSTANCE: vaccine strain "ЭПМ" of carnivorous plague virus is used for preparing living cultural vaccine against carnivorous plague. Strain is grown on Eagle medium with KPC serum or with foetal serum and antibiotics. Repeated virus growing is carried out on serumless medium that ensures to decrease concentration of heterologic proteins up to 0.3 mg/ml "ВСЖ". 0.7 vol. p.p. "ВСЖ" at biological virus activity 103,7-0,2ТЦД50/мл is mixed with 0.3 vol. p.p. stabilizing agent that is a mixture of sorbitol, polyglucine and gelatose (0.05; 0.05 and 0.2 vol. p.p., respectively). Vaccine is poured into ampoules or small bottles (by 0.5 ml) and lyophilized. Vaccine can be used for prophylaxis against carnivorous plague. EFFECT: improved method of vaccine preparing. 2 tbl

Description

Изобретение относится к и ветеринарии и может быть использовано для профилактики чумы плотоядных. The invention relates to veterinary medicine and can be used to prevent carnivore plague.

Известна живая культуральная вакцина против чумы плотоядных, содержащая вируссодержащую жидкость вакцинного штамма "ЭПМ" вируса чумы с биологической активностью 103,5ТПД50/мл и стабилизатор сорбит и желатозу [1]
Однако известная вакцина содержит высокую концентрацию гетерологичных белков (около 7 мг/мл), что вызывает побочные реакции у животных после вакцинации. Кроме того, пик напряженности иммунитета достигается на 30-й день.
Known live culture vaccine against carnivore plague containing the virus-containing liquid of the vaccine strain "EPM" of the plague virus with biological activity of 10 3.5 TPD 50 / ml and a stabilizer sorbitol and gelatin [1]
However, the known vaccine contains a high concentration of heterologous proteins (about 7 mg / ml), which causes adverse reactions in animals after vaccination. In addition, the peak of immunity tension is reached on the 30th day.

Задачей изобретения является разработка вакцины со сниженной концентрацией гетерологичных белков (до 0,3 мг/мл вируссодержащей жидкости) и биологической активностью вируса 103,7±0,2ТЦД50/мл, обеспечивающей длительный напряженный иммунитет. Кроме того, в качестве стабилизатора используют смесь сорбита, полиглюкина и желатозы, взятых в об. ч. 0,05, 0,05 и 0,2 на 0,7 об. ч. вируссодержащей жидкости (ВСЖ).The objective of the invention is to develop a vaccine with a reduced concentration of heterologous proteins (up to 0.3 mg / ml of virus-containing liquid) and biological activity of the virus 10 3.7 ± 0.2 TTCD 50 / ml , providing long-term intense immunity. In addition, as a stabilizer, a mixture of sorbitol, polyglucin and gelatose taken in vol. hours 0.05, 0.05 and 0.2 to 0.7 vol. including virus-containing fluid (VSL).

Технический результат, получаемый в результате решения данной задачи, выражается в снижении реактогенности вакцины и повышении напряженности иммунитета после вакцинации. The technical result obtained by solving this problem is expressed in reducing the reactogenicity of the vaccine and increasing immunity after vaccination.

Пример 1. Получение вакцины. Example 1. Obtaining a vaccine.

Для приготовления вакцины используют однослойную трипсинизированную культуру клеток тканей эмбрионов японского перепела, полученную в роллерных установках при скорости вращения 2 об/мин. Трипсинизированные клетки суспендируют в ростовой среде, состоящей из среды Игла с добавлением 8% сыворотки КРС или 2% эмбриональной сыворотки и антибиотиков В-лактамазного ряда. Взвесь разливают в ролллерные бутыли и вносят вирус в дозе не менее 100 тыс. ТЦД50/мл на бутыль.To prepare the vaccine, a single-layer trypsinized tissue culture of Japanese quail embryo tissue cells obtained in roller units at a rotation speed of 2 rpm is used. Trypsinized cells are suspended in a growth medium consisting of Eagle medium supplemented with 8% cattle serum or 2% fetal serum and B-lactamase antibiotics. The suspension is poured into roll bottles and the virus is introduced in a dose of at least 100 thousand TCD 50 / ml per bottle.

Инкубацию зараженной вирусом культуры клеток проводят в роллерных установках при 35oС при скорости вращения 2 об/мин. На 5 сут после образования монослоя среду сливают и добавляют свежую ростовую среду без сыворотки. На 8 сут после заражения собирают ВСЖ во флаконы. Ко всем стерильным индивидуальным вирусным сборам с биологической активностью вируса 103,7ТЦД50/мл добавляют стабилизатор из расчета 0,7 об. ч. ВСЖ и 0,3 об.ч. стабилизатора. В качестве стабилизатора используют смесь сорбита, полиглюкина и желатозы из расчета их содержания в 0,3 об.ч. 0,05, 0,05 и 0,2 об.ч. соответственно.Incubation of the virus-infected cell culture is carried out in roller units at 35 ° C. at a rotation speed of 2 rpm. 5 days after the formation of the monolayer, the medium is drained and fresh growth medium without serum is added. At 8 days after infection, VSL is collected in vials. To all sterile individual viral collections with biological activity of the virus 10 3,7 TCD 50 / ml add a stabilizer at the rate of 0.7 vol. hours VSJ and 0.3 vol.h. stabilizer. A mixture of sorbitol, polyglucin and gelatose is used as a stabilizer based on their content of 0.3 vol.h. 0.05, 0.05 and 0.2 vol.h. respectively.

После разлива вакцины в ампулы или флаконы ее подвергают лиофилизации и контролю на стерильность, антигенную активность и специфичность по ЦПД и БОЕ, безвредность и иммуногенность. Одна ампула содержит одну прививочную дозу вакцины 0,5 мл. After the vaccine is poured into ampoules or vials, it is subjected to lyophilization and control for sterility, antigenic activity and specificity for CPD and PFU, harmlessness and immunogenicity. One ampoule contains one vaccination dose of 0.5 ml vaccine.

Пример 2. Испытание вакцины. Example 2. Testing a vaccine.

Вакцина испытана на 300 тыс. тхорзофретках. Данный вид животных выбран в качестве модели как наиболее чувствительный к данной инфекции по сравнению с другими видами животных (лисицы, песцы и др.), что позволяет получить более достоверные данные. The vaccine was tested on 300 thousand thorsophrenics. This type of animal was chosen as the model as the most sensitive to this infection compared to other animal species (foxes, arctic foxes, etc.), which allows more reliable data to be obtained.

В результате обследования иммунизированных тхорзофреток получены данные, свидетельствующие об отсутствии патологических реакций за счет уменьшения в вакцине концентрации гетерологичных белков до 0,3 мг/мл ВСЖ, т.е. вакцина ареактогенна. As a result of the examination of immunized thorzofrets, data were obtained indicating the absence of pathological reactions due to a decrease in the concentration of heterologous proteins in the vaccine to 0.3 mg / ml VSL, i.e. vaccine areactogenic.

В сыворотках крови вакцинированных животных антитела появляются на 7-й день после вакцинации. Вируснейтрализующую активность антител изучают в реакции нейтрализации на первичной культуре клеток эмбрионов японского перепела. Результаты представлены в табл.1. In the serum of vaccinated animals, antibodies appear on the 7th day after vaccination. The neutralizing activity of antibodies is studied in the neutralization reaction on a primary culture of Japanese quail embryo cells. The results are presented in table 1.

У всех иммунизированных животных выявлены вируснейтрализующие антитела к вирусу чумы плотоядных, т.е. наблюдается практически 100% сероконверсия. In all immunized animals, neutralizing antibodies to the carnivorous plague virus were detected, i.e. almost 100% seroconversion is observed.

Однако титры антител, указывающие на наличие сероконверсии у животных, не всегда гарантируют полноту иммунитета, т.е. невосприимчивость животных к последующему заражению полевым вирулентным вирусом. Поэтому оценка вакцины только по показателю титра антител является неполноценной и, как правило, должна дополняться методом прямой защиты. However, antibody titers indicating the presence of seroconversion in animals do not always guarantee the completeness of immunity, i.e. the immunity of animals to subsequent infection with a field virulent virus. Therefore, the evaluation of the vaccine only in terms of antibody titer is incomplete and, as a rule, should be supplemented by direct protection.

Иммуногенную активность изучали на тхорзофретках при заражении их вирулентным вирусом "Снайдер Хилл" подкожно. У вакцинированных животных после введения вирулентного штамма вируса не наблюдалось признаков заболеваний, в то время как контрольные животные погибли при наличии типичной клиники чумы. Данные исследований приведены в табл.2. Immunogenic activity was studied on thorsophrenics when they were infected subcutaneously with the virulent Snyder Hill virus. Vaccinated animals showed no signs of disease after the introduction of the virulent strain of the virus, while control animals died in the presence of a typical plague clinic. The research data are given in table.2.

Таким образом, полученная вакцина обладает специфической иммуногенной активностью, сниженной реактогенностью и обеспечивает длительный напряженный иммунитет. ТТТ1 Thus, the resulting vaccine has a specific immunogenic activity, reduced reactogenicity and provides long-term intense immunity. TTT1

Claims (1)

Живая культуральная вакцина против чумы плотоядных, содержащая вируссодержащую жидкость вакцинного штамма "ЭПМ" вируса чумы плотоядных с примесью гетерологичных белков, сорбит и желатозу, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит полиглюкин, вируссодержащую жидкость она содержит с концентрацией гетерологичных белков до 0,3 мг/мл вируссодержащей жидкости и биологической активностью вируса 103,7±0,2 ТЦД 50/мл при следующем количественном соотношении компонентов, об.ч.Live culture vaccine against carnivorous plague, containing the virus-containing liquid of the vaccine strain "EPM" of the virus of the carnivorous plague virus with an admixture of heterologous proteins, sorbitol and gelatin, characterized in that it additionally contains polyglucin, the virus-containing liquid with a concentration of heterologous proteins up to 0.3 mg / ml of virus-containing liquid and biological activity of the virus 10 3.7 ± 0.2 TCD 50 / ml in the following quantitative ratio of components, vol.h. Вируссодержащая жидкость вакцинного штамма "ЭПМ" вируса чумы с концентрацией гетерологичных белков до 0,3 мг/мл вируссодержащей жидкости с биологической активностью 103,7±0,2 ТЦД50/мл 0,7
Сорбит 0,05
Полиглюкин 0,05
Желатоза 0,2
Virus-containing liquid of the vaccine strain "EPM" of the plague virus with a concentration of heterologous proteins up to 0.3 mg / ml of the virus-containing liquid with biological activity 10 3.7 ± 0.2 TCD 50 / ml 0.7
Sorbitol 0.05
Polyglukin 0.05
Gelatose 0.2
RU94031758A 1994-09-06 1994-09-06 Living cultural vaccine against carnivorous plague RU2067002C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94031758A RU2067002C1 (en) 1994-09-06 1994-09-06 Living cultural vaccine against carnivorous plague

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94031758A RU2067002C1 (en) 1994-09-06 1994-09-06 Living cultural vaccine against carnivorous plague

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2067002C1 true RU2067002C1 (en) 1996-09-27
RU94031758A RU94031758A (en) 1996-11-10

Family

ID=20160139

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU94031758A RU2067002C1 (en) 1994-09-06 1994-09-06 Living cultural vaccine against carnivorous plague

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2067002C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Селиванов А.В., Сулимов А.А., Груздев К.Н. Сравнительное изучение иммуногенности вакцин против чумы плотоядных. Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции "Разработка, апробация и государственный контроль ветеринарных препаратов". Селиванов А.В.,Сулимов А.А., Груздев К.Н. Чума плотоядных и меры борьбы с ней. Ветеринария, 1984, N 7, c. 36-39. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU94031758A (en) 1996-11-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4386065A (en) Vaccine against EAE
RU2145236C1 (en) Mixed vaccine against rota-, corona-, herpesviral and escherichia diarrhea in newborn calves
RU2159127C1 (en) Vaccine for preventing pseudomonosis of fur-bearing animals
RU2067002C1 (en) Living cultural vaccine against carnivorous plague
RU2378017C2 (en) Emulsion inactivated associated vaccine against cattle rednose and coronoviral infection
RU2134590C1 (en) Method of preparing inactivated vaccine against rabies in animals
JP2892767B2 (en) Canine coronavirus vaccine
RU2127602C1 (en) Strain "bg" of avian infection bursitis virus and vaccine against avian infection bursitis
RU2045960C1 (en) Vaccine for prevention of plague, infectious hepatitis, adenovirosis, parvoviral enteritis and canine leptospirosis
RU2194530C1 (en) Associated vaccine for preventing diseases in furred animals
RU2147609C1 (en) Strain of virus canine parvovirus "riel" for preparing vaccine against parvoviral infection in carnivores and vaccine "vladivak" against viral diseases in carnivores based on said
RU2184567C1 (en) Strain feline calicivirus used for control of immunogenic activity of vaccines, preparing specific curative-prophylaxis and diagnostic biopreparations
RU2035918C1 (en) Method for producing duck virus hepatitis vaccine
RU2032423C1 (en) Vaccine against mink viral enteritis, botulism and pseudomonosis
HU181994B (en) Process for preparing inactivated peritonitis vaccine
RU2457859C1 (en) Cattle viral diarrhoeia vaccine
RU2077583C1 (en) Strain of blue-tongue virus febris infecthiosa catarhaliss ovium used for vaccine preparing
RU2056861C1 (en) Mixed vaccine against anthrax and foot-and-mouth and a method of anthrax and foot-and-mouth prophylaxis
RU2158304C2 (en) Strain "vnivip-dep" for preparing vaccine against reoviral tendinous synovitis in chickens
RU2269361C2 (en) Associated emulsion inactivated vaccine against porcine reproductive and respiratory syndrome (prrs) and porcine parvovirus infection (ppvi)
RU2515058C1 (en) Associated inactivated emulsion bovine viral diarrhoea, rotavirus and coronavirus infections vaccine
RU2504400C1 (en) Inactivated emulsion associated vaccine for cattle parainfluenza-3, infectious rhinotracheitis and viral diarrhoea
RU2242247C2 (en) Marked virus-vaccine against aujeszky's disease
RU2279474C1 (en) Strain of infection bovine rhinotracheitis (ibr) virus for production of vaccine and diagnostic preparations
RU2283136C2 (en) Inactivated sorbed vaccine against bird infectious bursal disease

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner