RU2067002C1 - Living cultural vaccine against carnivorous plague - Google Patents
Living cultural vaccine against carnivorous plague Download PDFInfo
- Publication number
- RU2067002C1 RU2067002C1 RU94031758A RU94031758A RU2067002C1 RU 2067002 C1 RU2067002 C1 RU 2067002C1 RU 94031758 A RU94031758 A RU 94031758A RU 94031758 A RU94031758 A RU 94031758A RU 2067002 C1 RU2067002 C1 RU 2067002C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- vaccine
- vol
- plague
- carnivorous
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к и ветеринарии и может быть использовано для профилактики чумы плотоядных. The invention relates to veterinary medicine and can be used to prevent carnivore plague.
Известна живая культуральная вакцина против чумы плотоядных, содержащая вируссодержащую жидкость вакцинного штамма "ЭПМ" вируса чумы с биологической активностью 103,5ТПД50/мл и стабилизатор сорбит и желатозу [1]
Однако известная вакцина содержит высокую концентрацию гетерологичных белков (около 7 мг/мл), что вызывает побочные реакции у животных после вакцинации. Кроме того, пик напряженности иммунитета достигается на 30-й день.Known live culture vaccine against carnivore plague containing the virus-containing liquid of the vaccine strain "EPM" of the plague virus with biological activity of 10 3.5 TPD 50 / ml and a stabilizer sorbitol and gelatin [1]
However, the known vaccine contains a high concentration of heterologous proteins (about 7 mg / ml), which causes adverse reactions in animals after vaccination. In addition, the peak of immunity tension is reached on the 30th day.
Задачей изобретения является разработка вакцины со сниженной концентрацией гетерологичных белков (до 0,3 мг/мл вируссодержащей жидкости) и биологической активностью вируса 103,7±0,2ТЦД50/мл, обеспечивающей длительный напряженный иммунитет. Кроме того, в качестве стабилизатора используют смесь сорбита, полиглюкина и желатозы, взятых в об. ч. 0,05, 0,05 и 0,2 на 0,7 об. ч. вируссодержащей жидкости (ВСЖ).The objective of the invention is to develop a vaccine with a reduced concentration of heterologous proteins (up to 0.3 mg / ml of virus-containing liquid) and biological activity of the virus 10 3.7 ± 0.2 TTCD 50 / ml , providing long-term intense immunity. In addition, as a stabilizer, a mixture of sorbitol, polyglucin and gelatose taken in vol. hours 0.05, 0.05 and 0.2 to 0.7 vol. including virus-containing fluid (VSL).
Технический результат, получаемый в результате решения данной задачи, выражается в снижении реактогенности вакцины и повышении напряженности иммунитета после вакцинации. The technical result obtained by solving this problem is expressed in reducing the reactogenicity of the vaccine and increasing immunity after vaccination.
Пример 1. Получение вакцины. Example 1. Obtaining a vaccine.
Для приготовления вакцины используют однослойную трипсинизированную культуру клеток тканей эмбрионов японского перепела, полученную в роллерных установках при скорости вращения 2 об/мин. Трипсинизированные клетки суспендируют в ростовой среде, состоящей из среды Игла с добавлением 8% сыворотки КРС или 2% эмбриональной сыворотки и антибиотиков В-лактамазного ряда. Взвесь разливают в ролллерные бутыли и вносят вирус в дозе не менее 100 тыс. ТЦД50/мл на бутыль.To prepare the vaccine, a single-layer trypsinized tissue culture of Japanese quail embryo tissue cells obtained in roller units at a rotation speed of 2 rpm is used. Trypsinized cells are suspended in a growth medium consisting of Eagle medium supplemented with 8% cattle serum or 2% fetal serum and B-lactamase antibiotics. The suspension is poured into roll bottles and the virus is introduced in a dose of at least 100 thousand TCD 50 / ml per bottle.
Инкубацию зараженной вирусом культуры клеток проводят в роллерных установках при 35oС при скорости вращения 2 об/мин. На 5 сут после образования монослоя среду сливают и добавляют свежую ростовую среду без сыворотки. На 8 сут после заражения собирают ВСЖ во флаконы. Ко всем стерильным индивидуальным вирусным сборам с биологической активностью вируса 103,7ТЦД50/мл добавляют стабилизатор из расчета 0,7 об. ч. ВСЖ и 0,3 об.ч. стабилизатора. В качестве стабилизатора используют смесь сорбита, полиглюкина и желатозы из расчета их содержания в 0,3 об.ч. 0,05, 0,05 и 0,2 об.ч. соответственно.Incubation of the virus-infected cell culture is carried out in roller units at 35 ° C. at a rotation speed of 2 rpm. 5 days after the formation of the monolayer, the medium is drained and fresh growth medium without serum is added. At 8 days after infection, VSL is collected in vials. To all sterile individual viral collections with biological activity of the virus 10 3,7 TCD 50 / ml add a stabilizer at the rate of 0.7 vol. hours VSJ and 0.3 vol.h. stabilizer. A mixture of sorbitol, polyglucin and gelatose is used as a stabilizer based on their content of 0.3 vol.h. 0.05, 0.05 and 0.2 vol.h. respectively.
После разлива вакцины в ампулы или флаконы ее подвергают лиофилизации и контролю на стерильность, антигенную активность и специфичность по ЦПД и БОЕ, безвредность и иммуногенность. Одна ампула содержит одну прививочную дозу вакцины 0,5 мл. After the vaccine is poured into ampoules or vials, it is subjected to lyophilization and control for sterility, antigenic activity and specificity for CPD and PFU, harmlessness and immunogenicity. One ampoule contains one vaccination dose of 0.5 ml vaccine.
Пример 2. Испытание вакцины. Example 2. Testing a vaccine.
Вакцина испытана на 300 тыс. тхорзофретках. Данный вид животных выбран в качестве модели как наиболее чувствительный к данной инфекции по сравнению с другими видами животных (лисицы, песцы и др.), что позволяет получить более достоверные данные. The vaccine was tested on 300 thousand thorsophrenics. This type of animal was chosen as the model as the most sensitive to this infection compared to other animal species (foxes, arctic foxes, etc.), which allows more reliable data to be obtained.
В результате обследования иммунизированных тхорзофреток получены данные, свидетельствующие об отсутствии патологических реакций за счет уменьшения в вакцине концентрации гетерологичных белков до 0,3 мг/мл ВСЖ, т.е. вакцина ареактогенна. As a result of the examination of immunized thorzofrets, data were obtained indicating the absence of pathological reactions due to a decrease in the concentration of heterologous proteins in the vaccine to 0.3 mg / ml VSL, i.e. vaccine areactogenic.
В сыворотках крови вакцинированных животных антитела появляются на 7-й день после вакцинации. Вируснейтрализующую активность антител изучают в реакции нейтрализации на первичной культуре клеток эмбрионов японского перепела. Результаты представлены в табл.1. In the serum of vaccinated animals, antibodies appear on the 7th day after vaccination. The neutralizing activity of antibodies is studied in the neutralization reaction on a primary culture of Japanese quail embryo cells. The results are presented in table 1.
У всех иммунизированных животных выявлены вируснейтрализующие антитела к вирусу чумы плотоядных, т.е. наблюдается практически 100% сероконверсия. In all immunized animals, neutralizing antibodies to the carnivorous plague virus were detected, i.e. almost 100% seroconversion is observed.
Однако титры антител, указывающие на наличие сероконверсии у животных, не всегда гарантируют полноту иммунитета, т.е. невосприимчивость животных к последующему заражению полевым вирулентным вирусом. Поэтому оценка вакцины только по показателю титра антител является неполноценной и, как правило, должна дополняться методом прямой защиты. However, antibody titers indicating the presence of seroconversion in animals do not always guarantee the completeness of immunity, i.e. the immunity of animals to subsequent infection with a field virulent virus. Therefore, the evaluation of the vaccine only in terms of antibody titer is incomplete and, as a rule, should be supplemented by direct protection.
Иммуногенную активность изучали на тхорзофретках при заражении их вирулентным вирусом "Снайдер Хилл" подкожно. У вакцинированных животных после введения вирулентного штамма вируса не наблюдалось признаков заболеваний, в то время как контрольные животные погибли при наличии типичной клиники чумы. Данные исследований приведены в табл.2. Immunogenic activity was studied on thorsophrenics when they were infected subcutaneously with the virulent Snyder Hill virus. Vaccinated animals showed no signs of disease after the introduction of the virulent strain of the virus, while control animals died in the presence of a typical plague clinic. The research data are given in table.2.
Таким образом, полученная вакцина обладает специфической иммуногенной активностью, сниженной реактогенностью и обеспечивает длительный напряженный иммунитет. ТТТ1 Thus, the resulting vaccine has a specific immunogenic activity, reduced reactogenicity and provides long-term intense immunity. TTT1
Claims (1)
Сорбит 0,05
Полиглюкин 0,05
Желатоза 0,2Virus-containing liquid of the vaccine strain "EPM" of the plague virus with a concentration of heterologous proteins up to 0.3 mg / ml of the virus-containing liquid with biological activity 10 3.7 ± 0.2 TCD 50 / ml 0.7
Sorbitol 0.05
Polyglukin 0.05
Gelatose 0.2
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU94031758A RU2067002C1 (en) | 1994-09-06 | 1994-09-06 | Living cultural vaccine against carnivorous plague |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU94031758A RU2067002C1 (en) | 1994-09-06 | 1994-09-06 | Living cultural vaccine against carnivorous plague |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2067002C1 true RU2067002C1 (en) | 1996-09-27 |
| RU94031758A RU94031758A (en) | 1996-11-10 |
Family
ID=20160139
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU94031758A RU2067002C1 (en) | 1994-09-06 | 1994-09-06 | Living cultural vaccine against carnivorous plague |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2067002C1 (en) |
-
1994
- 1994-09-06 RU RU94031758A patent/RU2067002C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Селиванов А.В., Сулимов А.А., Груздев К.Н. Сравнительное изучение иммуногенности вакцин против чумы плотоядных. Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции "Разработка, апробация и государственный контроль ветеринарных препаратов". Селиванов А.В.,Сулимов А.А., Груздев К.Н. Чума плотоядных и меры борьбы с ней. Ветеринария, 1984, N 7, c. 36-39. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU94031758A (en) | 1996-11-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4386065A (en) | Vaccine against EAE | |
| RU2145236C1 (en) | Mixed vaccine against rota-, corona-, herpesviral and escherichia diarrhea in newborn calves | |
| RU2159127C1 (en) | Vaccine for preventing pseudomonosis of fur-bearing animals | |
| RU2067002C1 (en) | Living cultural vaccine against carnivorous plague | |
| RU2378017C2 (en) | Emulsion inactivated associated vaccine against cattle rednose and coronoviral infection | |
| RU2134590C1 (en) | Method of preparing inactivated vaccine against rabies in animals | |
| JP2892767B2 (en) | Canine coronavirus vaccine | |
| RU2127602C1 (en) | Strain "bg" of avian infection bursitis virus and vaccine against avian infection bursitis | |
| RU2045960C1 (en) | Vaccine for prevention of plague, infectious hepatitis, adenovirosis, parvoviral enteritis and canine leptospirosis | |
| RU2194530C1 (en) | Associated vaccine for preventing diseases in furred animals | |
| RU2147609C1 (en) | Strain of virus canine parvovirus "riel" for preparing vaccine against parvoviral infection in carnivores and vaccine "vladivak" against viral diseases in carnivores based on said | |
| RU2184567C1 (en) | Strain feline calicivirus used for control of immunogenic activity of vaccines, preparing specific curative-prophylaxis and diagnostic biopreparations | |
| RU2035918C1 (en) | Method for producing duck virus hepatitis vaccine | |
| RU2032423C1 (en) | Vaccine against mink viral enteritis, botulism and pseudomonosis | |
| HU181994B (en) | Process for preparing inactivated peritonitis vaccine | |
| RU2457859C1 (en) | Cattle viral diarrhoeia vaccine | |
| RU2077583C1 (en) | Strain of blue-tongue virus febris infecthiosa catarhaliss ovium used for vaccine preparing | |
| RU2056861C1 (en) | Mixed vaccine against anthrax and foot-and-mouth and a method of anthrax and foot-and-mouth prophylaxis | |
| RU2158304C2 (en) | Strain "vnivip-dep" for preparing vaccine against reoviral tendinous synovitis in chickens | |
| RU2269361C2 (en) | Associated emulsion inactivated vaccine against porcine reproductive and respiratory syndrome (prrs) and porcine parvovirus infection (ppvi) | |
| RU2515058C1 (en) | Associated inactivated emulsion bovine viral diarrhoea, rotavirus and coronavirus infections vaccine | |
| RU2504400C1 (en) | Inactivated emulsion associated vaccine for cattle parainfluenza-3, infectious rhinotracheitis and viral diarrhoea | |
| RU2242247C2 (en) | Marked virus-vaccine against aujeszky's disease | |
| RU2279474C1 (en) | Strain of infection bovine rhinotracheitis (ibr) virus for production of vaccine and diagnostic preparations | |
| RU2283136C2 (en) | Inactivated sorbed vaccine against bird infectious bursal disease |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PD4A | Correction of name of patent owner |