[go: up one dir, main page]

RU2043110C1 - Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов - Google Patents

Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов Download PDF

Info

Publication number
RU2043110C1
RU2043110C1 RU93012924A RU93012924A RU2043110C1 RU 2043110 C1 RU2043110 C1 RU 2043110C1 RU 93012924 A RU93012924 A RU 93012924A RU 93012924 A RU93012924 A RU 93012924A RU 2043110 C1 RU2043110 C1 RU 2043110C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
composition
cytochrome
inactivation
activity
phospholipid
Prior art date
Application number
RU93012924A
Other languages
English (en)
Other versions
RU93012924A (ru
Inventor
Александр Иванович Арчаков
Алексей Сергеевич Иванов
Галина Ивановна Бачманова
Сергей Сергеевич Маркин
Галина Геннадьевна Ковалева
Original Assignee
Александр Иванович Арчаков
Алексей Сергеевич Иванов
Галина Ивановна Бачманова
Сергей Сергеевич Маркин
Галина Геннадьевна Ковалева
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Александр Иванович Арчаков, Алексей Сергеевич Иванов, Галина Ивановна Бачманова, Сергей Сергеевич Маркин, Галина Геннадьевна Ковалева filed Critical Александр Иванович Арчаков
Priority to RU93012924A priority Critical patent/RU2043110C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2043110C1 publication Critical patent/RU2043110C1/ru
Publication of RU93012924A publication Critical patent/RU93012924A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

Использование: в биохимии, медицине, фармакологии. Сущность: композиция, содержащая обогащенную фракцию из семян подсолнечника и тринатриевую соль глицирризиновой кислоты в физиологически приемлемых концентрациях, пригодна для таблетирования. Полученная композиция обладает свойством репарировать мембраны гепатоцитов. 6 табл.

Description

Изобретение относится к медицине, биохимии и фармакологии. Предлагаемая фосфолипидная композиция обладает свойством восстанавливать структуру и функцию поврежденных мембран гепатоцитов и может быть впоследствии использована для лечения заболеваний печени.
При заболеваниях печени вне зависимости от их этиологии происходит повреждение мембран гепатоцитов с потерей их основных структурных компонентов фосфолипидов и инактивацией ферментных систем, участвующих в биосинтетических и детоксикационных процессах. Экспериментально показано, что структура и функция поврежденных мембран клеток печени может быть восстановлена путем введения фосфолипидов в составе лекарственного средства.
Наиболее распространенными и применяемыми в клинической практике препаратами для лечения заболеваний печени таких, как гепатит и цирроз, являются глицирам, ликвиритон, флакарбин (Машковский М.Д. Москва, "Медицина", т.1, с. 302, 361, 362, 1988).
Эссенциале (форте) (Машковский М.Д. т.2, 1988), выбранный нами в качестве прототипа, представляет собой смесь фосфатидилхолина и солей желчных кислот. Как известно, производные желчных кислот, в частности, дезоксихолат, являются сильными детергентами и оказывают побочные токсические эффекты.
Техническим результатом данного изобретения является создание композиции, обладающей способностью репарировать мембраны гепатоцитов, но не оказывающей побочного токсического воздействия. Присутствующая в предлагаемой композиции в качестве эмульгатора тринатриевая соль глицирризиновой кислоты помимо мягкого детергентного и гепатопротекторного действия обладает противовоспалительным, противоаллергическим, противовирусным эффектом (Ехреrientia, v. 36, р.304, 1980; Sсand. Gastrienterol. v.17, р.412, 1982; S.Nagoya City Univ. Меd. Аssoc. v.30, р.333-356, 1979).
Другим техническим результатом является расширение форм препарата. Полученная таблетированная форма позволяет избегать инъекций и избавляет больных от посторонней помощи при введении лекарств. Для больных хроническими формами заболевания становится доступным амбулаторное лечение. Этот результат достигается благодаря использованию в качестве источника фосфолипидов семян подсолнечника.
Авторами был проведен сравнительный анализ различных исходных материалов продуктов переработки семян подсолнечника и был сделан вывод, что дробленые ядра семян подсолнечника позволяют выделить фракцию фосфолипидов, пригодную для получения таблетированной формы препарата.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.
Способ получения обогащенной фракции фосфолипидов из продуктов переработки семян подсолнечника.
1. Исходный материал (дробленые ядра семян подсолнечника) в количестве 10 г экстрагируется 30 мл этанола в течение 15 мин.
2. Твердую массу отжимают через два слоя марли. Экстракт фильтруется (широкопористая фильтровальная бумага). Твердый остаток промывается на воронке этанолом 3 раза по 30 мл.
3. Спиртовой экстракт упаривается на роторном испарителе до объема 10 мл, добавляется 50 мл ледяного ацетона и оставляется на 2 ч при 4оС.
4. Осадок отделяется центрифугированием при 7000 об/мин в течение 15 мин на центрифуге К-24 (ротор 6х30 мл) и высушивается в вакууме.
Характеристика обогащенной фракции фосфолипидов из продуктов переработки семян подсолнечника.
Продукт представляет собой светло-желтый порошок со следующими характеристиками:
Фракция, нераст-
воримая в холодном ацетоне не менее 98%
Содержание нейт- ральных липидов не более 2%
Растворимость в толуоле 100%
Индекс окислен- ности 0,28
Выход продукта не менее 200 мг из 10 г исходного сырья.
Чистоту выделенной фракции фосфолипидов контролировали с помощью тонкослойной хроматографии на пластинках с "Силуфол" в системе метанол-хлороформ-вода (25:65:4), проявление хроматограмм 10% фосфорномолибденовой кислотой в этиловом спирте. Содержание фосфатидилхолина ≈70%
Как видно из представленных данных табл.1 имеется значительное отличие в содержании 16:0 жирной кислоты, входящей в фосфолипидные фракции, получаемые из подсолнечника и сои. Именно эти различия, очевидно, влияют на физико-химические свойства фосфатидилхолина из семян подсолнечника, который получают в виде порошка бледно-желтого цвета, в то время как соевый фосфатидилхолин имеет консистенцию застывшего масла.
Способ получения фосфолипидной композиции.
Заявленную композицию получают путем смешивания фосфолипидов из семян подсолнечника и тринатриевой соли глицирризиновой кислоты (производство формы Rhone-Роulenc Rorer), взятых в порошкообразном состоянии; затем полученную смесь подвергают таблетированию.
Композиция имеет следующий количественный состав: в расчете на одну таблетку фосфолипиды из семян подсолнечника 250 мг, глицирризиновая кислота 100 мг.
Биологическую активность заявляемой композиции исследовали на модельной системе in vitro и в экспериментах in vivo.
1) Исследование влияния фосфолипидных препаратов на инактивацию изолированного очищенного цитохрома Р450 микросом печени кроликов.
Цитохром Р450 является ключевым ферментом микросомальной монооксигеназной системы печени, участвующей в окислении многих чужеродных соединений и таким образом выполняющей детоксицирующую функцию. Данный гемопротеин является мембранным ферментом и обладает способностью быстро инактивироваться при различных воздействиях на мембраны. Стабилизировать данный гемопротеин в активной форме возможно путем добавления к нему фосфолипидов. В связи с этим мы использовали регистрацию инактивации изолированного очищенного цитохрома Р450 в присутствии и отсутствии фосфолипидных препаратов в качестве модельной системы для выделения их стабилизирующего эффекта.
В основе метода регистрации инактивации цитохрома Р450 лежит переход цитохрома Р450 в цитохром Р420, являющейся неактивной формой цитохрома Р450. Снижение содержания цитохрома Р450, являющееся показателем процесса инактивации цитохрома Р450, определяли по разности оптического поглощения при длинах 450 и 490 нм, и увеличение содержания цитохрома Р420 при 420 и 490 нм (Биохимия, вып. 46, с. 280-286, 1981). Влияние фосфолипидных препаратов на инактивацию цитохрома Р450 исследовали после преинкубации гемопротеина с фосфолипидными препаратами (соотношение цитохрома и фосфолипида составляло 1 нмоль и 1 мг, соответственно) в течение 15 мин при 4оС. Затем объем смеси доводили до 6 мл 100 мМ трис-НСl буфером, рН 7,4, и разливали ее в спектрофотометрические кюветы по 3 мл. В кювету измерения пропускали в течение 1 мин СО, добавляли затем в обе кюветы несколько кристалликов дитионита натрия и регистрировали дифференциальные спектры цитохрома Р450 в диапазоне длин волн 400-500 нм в течение 20 мин при 30оС. Расчет инактивации цитохрома Р450 проводили по методу, приведенному в ж. "Биохимия", вып.46, с.280-286. Данные по измерению инактивации гемопротеина приведены в табл.2. Показано, что время полуинактивации цитохрома Р450 в отсутствии препаратов составляет 3,4 мин, добавление к белку исследуемого препарата приводило к замедлению инактивации гемопротеина и время полуинактивации (5 мин) увеличивалось. В то же время инкубация цитохрома с Эссенциале приводило к ускорению инактивации цитохрома и время полуинактивации снижалось до 1,7 мин. Ускорение инактивации белка в присутствии Эссенциале объясняется наличием в этом препарате производных желчных кислот, в частности дезоксихолата, который является сильным детергентом и может инактивировать мембранные белки в системах in vitro. В системах in vivo дестабилизирующий эффект Эссенциале на белки нивелируется путем резкого разведения дезоксихолата в организме. Таким образом предлагаемая композиция обладает способностью стабилизировать цитохром Р450 и замедлять его инактивацию in vitro.
2) Изучение влияния фосфолипидных препаратов на инактивацию цитохрома Р450 микросом печени крыс с токсическими гепатитами после введения животным фосфолипидных препаратов.
Модель острого токсического гепатита получали одноразовым введением внутрибрюшинно гепатотоксина, четыреххлористый углерод, в дозе 0,2 мл на 100 г массы крысам-самцам. Эффект действия фосфолипидных препаратов при гепатите оценивали после внутрибрюшинного введения препаратов в течение 3 дней в дозе 20 мг на 100 г массы тела. Затем животных забивали и выделяли из печени микросомальную фракцию стандартным методом, как описано в ж. "Биохимия", вып.44, с.1049-1057, 1979.
Для регистрации инактивации цитохрома Р450 суспензию микросом, полученных из трех групп животных (1 группа токсический гепатит; 2 группа токсический гепатит с последующим введением исследуемого препарата; 3 группа токсический гепатит с последующим введением Эссенциале) с содержанием 6 нмолей гемопротеина разводили в 6 мл 100 мМ трис-НСl буфера, рН 7,4, и регистрировали дифференциальные спектры в течение 20 мин при 37оС. Время полуинактивации рассчитывали, как описано выше. Как видно из данных табл.3 при токсическом гепатите время полуинактивации составляло 4,8 мин. Введение животным фосфолипидных препаратов приводило к замедлению инактивации цитохрома Р450, наиболее выраженный стабилизирующий эффект имел место в случае использования исследуемой композиции (время полуинактивации составляло 18 мин и приближалось к таковому для интактных животных).
3) Изучение влияния фосфолипидных препаратов на ферментный состав и N-деметилазную и n-гидроксилазную активности в микросомах печени крыс с токсическим гепатитом после введения животным фосфолипидных препаратов.
Для оценки репарирующего эффекта фосфолипидных препаратов в мембранах микросом печени 3-х экспериментальных групп крыс (см. выше) в суспензии микросом определяли содержание цитохрома Р450, активности НАДФН-цитохром с редуктазы, НАДН-феррицианид редуктазы и N-деметилазную и n-гидроксилазную активности с использованием аминопирина и анилина, соответственно.
Определение содержания цитохрома Р450 в микросомах основано на измерении величины поглощения комплекса восстановленного цитохрома Р450 с СО при 450 нм (J.Biol.Chem. v.239, р.2370-2378, 1964). Активность НАДФН-цитохром с редуктазы определяли по скорости восстановления цитохрома с при 550 нм, активность НАДН-феррицианид редуктазы по скорости восстановления феррицианида калия при 420 нм (Вiochemistry, v.16, р.1116-1123, 1977). N-деметилазную активность в микросхемах определяли по количеству образовавшегося в реакции окисления аминопирина формальдегида, выявляемого по образованию окрашенного продукта в присутствии реактива Наше при 412 нм (Аrch.Biochem.Bioрhys. v. 298, р.403-412, 1992). n-Гидроксилазную активность определяли по количеству образовавшегося при окислении анилина n-аминофенола, выявляемого колориметрически по реакции с фенолом и Nа2СО3, при 630 нм (Аrch.Вiochem.Вiорhys. v. 298, р.403-412).
Данные по определению в микросомах 3-х групп, указанных выше параметров, приведены в табл.4. Показано, что при токсическом гепатите происходит падение содержания цитохрома Р450, активности редуктаз и активности деметилазы и гидроксилазы. Введение животным с гепатитом фосфолипидных препаратов приводило к увеличению величин исследуемых параметров и они приближались к величинам для микросом из группы интактных животных. Таким образом, предложенная композиция обладает способностью реактивировать ферментные системы после инактивации их при токсическом гепатите.
4) Изучение влияния фосфолипидных препаратов на активность ферментов сыворотки крыс с токсическим гепатитом после введения животным фосфолипидных препаратов.
Для оценки биологической активности фосфолипидных препаратов в сыворотке крови 3-х групп экспериментальных животных определяли активность аспартат- и аланин-трансфераз, щелочной фосфатазы и гамма-глютамилтрансферазы, по уровню активности которых определяют функциональное состояние печени. При многих заболеваниях печени уровень активности данных ферментов в сыворотке резко возрастает. Активность ферментов определяли с использованием стандартных наборов Воehringer Маnheim (Германия) на автоанализаторе FР-90 Labsystem (Финляндия).
Данные по определению активности указанных ферментов представлены в табл. 5. Видно, что по сравнению с контрольным уровнем при гепатите происходит резко увеличение активности данных ферментов с сыворотке крови, что говорит о повреждении органа. Введение животным фосфолипидных препаратов сопровождается снижением активности печеночных ферментов и их уровень становится сравнимым с таковым для интактных крыс. Следовательно, заявляемая композиция обладает высокой биологической активностью и способствует нормализации функционального состояния пораженной печени.
5) Изучение влияния фосфолипидных препаратов на выживаемость крыс с токсическим гепатитом после введения животным фосфолипидных препаратов.
Токсический гепатит и введение фосфолипидных препаратов осуществляли как указано выше (см. пункт 2). Как видно из табл.6 в группе крыс с токсическим гепатитом погибало 40% животных, введение фосфолипидных препаратов увеличивало выживаемость животных и она составляла 90-95% от общего количества крыс в группе.
Таким образом, заявляемая композиция обладает способностью реактивировать и репарировать мембранные ферментные системы печени, улучшает ее функциональное состояние и увеличивает выживаемость животных при токсическом поражении печени.

Claims (1)

  1. КОМПОЗИЦИЯ, ОБЛАДАЮЩАЯ СВОЙСТВОМ РЕПАРИРОВАТЬ МЕМБРАНЫ ГЕПАТОЦИТОВ, содержащая в физиологически приемлемых концентрациях фосфолипиды и детергент, отличающаяся тем, что композиция в качестве фосфолипидов содержит обогащенную фракцию фосфолипидов подсолнечника, а в качестве детергента тринатриевую соль глицирризиновой кислоты.
RU93012924A 1993-03-10 1993-03-10 Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов RU2043110C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93012924A RU2043110C1 (ru) 1993-03-10 1993-03-10 Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93012924A RU2043110C1 (ru) 1993-03-10 1993-03-10 Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2043110C1 true RU2043110C1 (ru) 1995-09-10
RU93012924A RU93012924A (ru) 1996-02-20

Family

ID=20138459

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93012924A RU2043110C1 (ru) 1993-03-10 1993-03-10 Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2043110C1 (ru)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2133122C1 (ru) * 1998-10-14 1999-07-20 Научно-исследовательский институт биомедицинской химии РАМН Композиция, обладающая свойствами репарировать биологические мембраны
RU2168336C2 (ru) * 1999-09-08 2001-06-10 Новокузнецкий государственный институт усовершенствования врачей Способ стимуляции репаративной регенерации и гипертрофии печени при моделировании ее механического повреждения в эксперименте
RU2196585C2 (ru) * 2001-03-06 2003-01-20 Научно-исследовательский институт биомедицинской химии РАМН Средство для комплексного лечения хронических дерматозов: псориаза, атопического дерматита, экземы и кератодермий и способ лечения хронических дерматозов
RU2304431C2 (ru) * 2005-08-12 2007-08-20 Александр Иванович Арчаков Способ получения капсулированной лекарственной формы фосфолипидного препарата "фосфоглив" для лечения и профилактики острых и хронических заболеваний печени
RU2304430C2 (ru) * 2005-08-12 2007-08-20 Александр Иванович Арчаков Способ получения инъекционной лекарственной формы фосфолипидного препарата "фосфоглив" для лечения и профилактики острых и хронических заболеваний печени

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
М.Д. Машковский. Лекарственные средства. М.: Медицина, 1986, т.2, с.46. *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2133122C1 (ru) * 1998-10-14 1999-07-20 Научно-исследовательский институт биомедицинской химии РАМН Композиция, обладающая свойствами репарировать биологические мембраны
RU2168336C2 (ru) * 1999-09-08 2001-06-10 Новокузнецкий государственный институт усовершенствования врачей Способ стимуляции репаративной регенерации и гипертрофии печени при моделировании ее механического повреждения в эксперименте
RU2196585C2 (ru) * 2001-03-06 2003-01-20 Научно-исследовательский институт биомедицинской химии РАМН Средство для комплексного лечения хронических дерматозов: псориаза, атопического дерматита, экземы и кератодермий и способ лечения хронических дерматозов
RU2304431C2 (ru) * 2005-08-12 2007-08-20 Александр Иванович Арчаков Способ получения капсулированной лекарственной формы фосфолипидного препарата "фосфоглив" для лечения и профилактики острых и хронических заболеваний печени
RU2304430C2 (ru) * 2005-08-12 2007-08-20 Александр Иванович Арчаков Способ получения инъекционной лекарственной формы фосфолипидного препарата "фосфоглив" для лечения и профилактики острых и хронических заболеваний печени

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Deng et al. Molecular mechanisms of ferroptosis and relevance to inflammation
Johri et al. Piperine-mediated changes in the permeability of rat intestinal epithelial cells: the status of γ-glutamyl transpeptidase activity, uptake of amino acids and lipid peroxidation
US4698360A (en) Plant extract with a proanthocyanidins content as therapeutic agent having radical scavenger effect and use thereof
Lankin et al. Antioxidants decreases the intensification of low density lipoprotein in vivo peroxidation during therapy with statins
Babizhayev et al. Nα-Acetylcarnosine is a prodrug of L-carnosine in ophthalmic application as antioxidant
Belkner et al. The oxygenation of cholesterol esters by the reticulocyte lipoxygenase
Relling et al. Human cytochrome P450 metabolism of teniposide and etoposide.
Lukivskaya et al. Antioxidant mechanism of hepatoprotection by ursodeoxycholic acid in experimental alcoholic steatohepatitis
Huh et al. Effect of sex hormones on lipid peroxidation in rat liver
Paradies et al. Age-dependent decrease in the cytochrome c oxidase activity and changes in phospholipids in rat-heart mitochondria
Nguyen et al. Hypouricemic effects of acacetin and 4, 5-o-dicaffeoylquinic acid methyl ester on serum uric acid levels in potassium oxonate-pretreated rats
Hennig et al. Protection by vitamin E against endothelial cell injury by linoleic acid hydroperoxides
Sulumer et al. Protective effect of bromelain on some metabolic enzyme activities in tyloxapol‐induced hyperlipidemic rats
RU2043110C1 (ru) Композиция, обладающая свойством репарировать мембраны гепатоцитов
Romaschin et al. Subcellular distribution of peroxidized lipids in myocardial reperfusion injury
Takayama et al. Effects of anti-free radical intervention on phosphatidylcholine hydroperoxide in plasma after ischemia-reperfusion in the liver of rats
Hong et al. Effects of N-acetyl-L-cysteine and glutathione on antioxidant status of human serum and 3T3 fibroblasts
Carvalho et al. Quercetin treatment regulates the Na+, K+-ATPase activity, peripheral cholinergic enzymes, and oxidative stress in a rat model of demyelination
WO1994027594A2 (en) Stable copper(i) complexes and methods related thereto
Chiu et al. Edema formation and degranulation of mast cells by a basic phospholipase A2 purified from Trimeresurus mucrosquamatus snake venom
Kahl Experiments on the metyrapone reducing microsomal enzyme system
Cooper et al. The effect of lithocholic acid on red cell membranes in vivo
Marche et al. Aminoglycoside–induced alterations of phosphoinositide metabolism
EP1827136B1 (en) Formulation for oral administration having a health-promoting effect on the cardiovascular system
Savolainen et al. Neurochemical and behavioural effects of extended exposure to isopropanol vapour with simultaneous ethanol intake