[go: up one dir, main page]

RU2040265C1 - Method for preparing of biologically active extract - Google Patents

Method for preparing of biologically active extract Download PDF

Info

Publication number
RU2040265C1
RU2040265C1 SU5065600A RU2040265C1 RU 2040265 C1 RU2040265 C1 RU 2040265C1 SU 5065600 A SU5065600 A SU 5065600A RU 2040265 C1 RU2040265 C1 RU 2040265C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chloroform
aconite
production
allapinin
extract
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Викторовна Хомова
Светлана Дмитриевна Гусакова
Анна Ивановна Глушенкова
Зайнаб Абдурахмановна Хушбактова
Фархад Набиевич Джахангиров
Алимджан Заирович Садиков
Хамидулла Нигматович Арипов
Шамансур Шахсаидович Сагдуллаев
Original Assignee
Институт химии растительных веществ АН Республики Узбекистан
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт химии растительных веществ АН Республики Узбекистан filed Critical Институт химии растительных веществ АН Республики Узбекистан
Priority to SU5065600 priority Critical patent/RU2040265C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2040265C1 publication Critical patent/RU2040265C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: chemical and pharmaceutical industry. SUBSTANCE: liquid wastes of production of allapinine is extracted three times with the help of chloroform, chloroform being separated and washed to neutral reaction. Said wastes are prepared during production of allapinine of aconite rhizome. The process is followed by evaporation. Thus prepared boiled down concentrate or resin wastes of preparing allapinine of above ground part of aconite are treated by 98 ethanol. Thus prepared extract is allowed to stand, supernatant liquid being decanted and filtered. EFFECT: simplifies the method. 5 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к химико-фармацевтической промышленности и касается способа получения биологически активных экстрактов. The invention relates to medicine, namely to the pharmaceutical industry and relates to a method for producing biologically active extracts.

Для придания косметическим препаратом и средствам бытовой химии лечебно-профилактических свойств в их состав вводят разнообразные биологически активные добавки: витамины, белковые гидролизаты, липиды, настои и экстракты лекарственных трав. Среди них особое внимание в последние годы привлекает группа липидов с высокой биологической активностью: фосфо- и гликолипиды, которые способны стимулировать иммунитет, облегчать транспорт питательных веществ через кожу, восстанавливать клеточные мембраны и нормализовывать нарушенные обменные процессы в коже, а также обладают свойствами природных эмульгаторов (Степанов А.Е. Краснопольский Ю.М. Швец В.И. Физиологически активные липиды. М. Наука, 1991, с. 135; Заявка РСТ N 86/00015, кл. А 61 К 7/48, 35/12, 35/685, 1986). To impart therapeutic and prophylactic properties with a cosmetic product and household chemicals, a variety of biologically active additives are introduced into their composition: vitamins, protein hydrolysates, lipids, infusions and herbal extracts. Among them, special attention in recent years has been attracted by a group of lipids with high biological activity: phospho- and glycolipids, which are able to stimulate immunity, facilitate the transport of nutrients through the skin, restore cell membranes and normalize impaired metabolic processes in the skin, and also have the properties of natural emulsifiers ( Stepanov A.E. Krasnopolsky Yu.M. Shvets V.I. Physiologically active lipids.M. Nauka, 1991, p. 135; PCT Application N 86/00015, class A 61 K 7/48, 35/12, 35 / 685, 1986).

Известны способы получения биоактивных веществ из растительного сырья путем экстракции гексаном (Авт. св. СССР N 11784449, кл. A 61 K 35/78, 1985), этиловым спиртом различной концентрации (Войцеховская А.Л. Вольфензон И.И. Косметика сегодня. М. Химия, 1988, с. 175; Патент СССР N 1375112, кл. A 61 K 7/00, 1988), либо водой, СО2 и маслами (Фридман Р.А. Технология косметики. M. Пищевая промышленность, 1964, с. 326), при этом степень извлечения фосфо- и гликолипидов определяется в основном типом экстрагента.Known methods for producing bioactive substances from plant materials by extraction with hexane (Aut. St. USSR N 11784449, class A 61 K 35/78, 1985), ethanol of various concentrations (Wojciechowska A.L. Wolfenzon I.I. Cosmetics today. M. Chemistry, 1988, p. 175; USSR Patent N 1375112, class A 61 K 7/00, 1988), either with water, CO 2, and oils (Fridman R.A. Cosmetics Technology. M. Food Industry, 1964, p. 326), while the degree of extraction of phospho- and glycolipids is determined mainly by the type of extractant.

Наиболее близким к предлагаемому является способ выделения биологически активных веществ из растительного сырья, выбранного нами за прототип. Closest to the proposed one is a method of isolating biologically active substances from plant materials that we have chosen for the prototype.

Этот способ осуществляется путем обработки растительного сырья смесью двух растворителей на первой стадии и затем добавления к смеси норкового жира и дальнейшей экстракции при определенных режимах, отстаивания, фильтрации и обработки этиловым спиртом. This method is carried out by treating plant materials with a mixture of two solvents in the first stage and then adding mink fat to the mixture and further extraction under certain conditions, settling, filtering and treating with ethanol.

Недостатками известного способа являются трудоемкость и сложность технологического процесса, применение больших количеств дорогостоящих и дефицитных экстрагентов низкоплавкой фракции норкового жира и хладона-113. Кроме того, использование фторированных и хлорированных углеводородов в настоящее время резко сокращается ввиду их экологической вредности. Известным способом из растительного сырья удается извлечь витамины А, Е, С, В1, В2, Р, эфирное масло, азулен, смолы, бальзамы и камеди, а биологически активные фосфо- и гликолипиды не извлекаются.The disadvantages of this method are the complexity and complexity of the process, the use of large quantities of expensive and scarce extractants low melting fractions of mink fat and HFC-113. In addition, the use of fluorinated and chlorinated hydrocarbons is currently sharply reduced due to their environmental hazards. In a known manner, it is possible to extract vitamins A, E, C, B 1 , B 2 , P, essential oil, azulene, resins, balms and gums from plant materials, and biologically active phospho- and glycolipids are not extracted.

Цель изобретения упрощение и удешевление способа и получение экстракта биологически активных веществ, обогащенных фосфо- и гликолипидами. The purpose of the invention is the simplification and cheapening of the method and obtaining an extract of biologically active substances enriched in phospho- and glycolipids.

Цель достигается тем, что в качестве исходного сырья используют жидкие отходы производства лекарственного препарата антиаритмического действия "аллапинин" из корневищ растений рода Aconitum, либо смолообразные отходы производства этого препарата из надземной части растений данного рода (Авт. св. СССР N 1196004, кл. A 61 K 35/78, 1985). The goal is achieved by using liquid waste from the production of the antiarrhythmic drug “allapinin” from the rhizomes of plants of the genus Aconitum, or resinous waste from the aerial parts of plants of this genus (Aut. St. USSR N 1196004, class A 61 K 35/78, 1985).

По предлагаемому способу к получаемым при переработке корневищ жидким отходам, представляющим собой смесь водно-щелочного и хлороформенного маточников, добавляют при первой экстракции хлороформ до соотношения объемов водная щелочь-хлороформ 1:(0,3-0,5), вторую и третью экстракции проводят при таком же соотношении водной щелочи и хлороформа, экстрагируя каждый раз по 24 ч при 20-25оС с периодическим перемешиванием. Хлороформные извлечения отделяют, промывают водой до нейтральной среды, упаривают, а остаток после удаления хлороформа, либо смоляной отход производства аллапинина из надземной части обрабатывают 96%-ным этанолом их разбавлением до концентрации сухого остатка 2-2,5 мас. и очистку проводят отстаиванием полученного экстракта в течение 12-15 ч при 20-25оС и надосадочную жидкость отделяют декантацией и фильтруют.According to the proposed method, to the liquid waste resulting from the processing of rhizomes, which is a mixture of water-alkaline and chloroform mother liquors, chloroform is added during the first extraction to an aqueous alkali-chloroform volume ratio of 1: (0.3-0.5), the second and third extraction are carried out at the same ratio of aqueous alkali and chloroform extracting each time of 24 hours at 20-25 ° C with occasional agitation. Chloroform extracts are separated, washed with water to a neutral medium, evaporated, and the residue after removal of chloroform, or tar waste from the production of allapinin from the aerial part is treated with 96% ethanol and diluted to a dry residue concentration of 2-2.5 wt. and purification is carried out by settling the obtained extract for 12-15 hours at 20-25 ° C and the supernatant was separated by decanting and filtered.

П р и м е р 1. К жидким отходам производства аллапинина из корневищ аконита северного смеси водно-щелочного маточника, получаемого при осаждении алкалоидов, и хлороформенного маточника, получаемого при промывке осадка алкалоидов, в количестве 5 л добавляют 0,5 л хлороформа. Экстракцию проводят 24 ч при 20-25оС с периодическим перемешиванием. Вторую и третью экстракции проводят, добавляя по 1,5 л хлороформа, при тех же условиях, что и первую. Хлороформный слой отделяют, промывают водой до нейтральной среды и полностью упаривают в вакуум-выпарном аппарате при температуре не выше 50оС. Остаток (36 г) разбавляют 700 мл 96%-ного этанола при перемешивании, получая 730 мл экстракта с концентрацией сухого остатка 2,5 мас. Для удаления веществ, малорастворимых в этаноле, полученный экстракт отстаивают в течение 12 ч при 20-25оС, затем жидкую фазу отделяют декантацией и фильтруют. Получают препаративную форму экстракта аконита (целевой продукт) в количестве 710 мл, содержащего 51,0% фосфо- и гликолипидов от массы сухого остатка.Example 1. To the liquid waste from the production of allapinin from the rhizomes of aconite of the northern mixture of the water-alkaline mother liquor obtained by the precipitation of alkaloids and the chloroform mother liquor obtained by washing the precipitate of alkaloids, 0.5 l of chloroform is added in an amount of 5 l. The extraction is carried out for 24 hours at 20-25 about With periodic stirring. The second and third extraction is carried out by adding 1.5 l of chloroform, under the same conditions as the first. The chloroform layer was separated, washed with water until neutral pH and completely evaporated in a vacuum evaporator at a temperature not exceeding 50 C. The residue (36 g) was diluted with 700 ml of 96% ethanol with stirring to obtain 730 ml of extract with a concentration of dry residue 2 5 wt. To remove substances slightly soluble in ethanol, the extract is settled for 12 hours at 20-25 ° C, then the liquid phase was separated by decanting and filtered. Get the formulation of the extract of aconite (target product) in an amount of 710 ml containing 51.0% of phospho- and glycolipids by weight of the dry residue.

П р и м е р 2. Смолообразные отходы производства аллапинина из надземной части аконита белоустого в количестве 0,5 кг разбавляют 96%-ным этанолом (9,5 л) с перемешиванием, получая концентрацию сухого остатка 2,0 мас. Полученные 990 мл экстракта отстаивают в течение 15 ч при комнатной температуре с последующим отделением декантацией жидкой фазы, которую фильтруют и получают препаративную форму биологически активного экстракта в количестве 970 мл, содержащего 58,0% фосфо- и гликолипидов от массы сухого остатка. PRI me R 2. The resinous waste from the production of allapinin from the aerial part of white-haired aconite in the amount of 0.5 kg is diluted with 96% ethanol (9.5 l) with stirring, obtaining a concentration of solids of 2.0 wt. The obtained 990 ml of the extract was sedimented for 15 hours at room temperature, followed by separation by decantation of the liquid phase, which was filtered and the formulation of the biologically active extract was obtained in the amount of 970 ml containing 58.0% phospho- and glycolipids by weight of the dry residue.

Преимуществами предлагаемого способа по сравнению с прототипом является следующее:
упрощение процесса, т.е. в известном способе осуществляется 11 операций, в предлагаемом 6 при переработке корневищ и 3 при переработке надземной части, в известном способе 2-я стадия процесса экстракции проводится в течение 24 ч при 50-60оС, в предлагаемом весь процесс ведется при температуре окружающей среды, за исключением кратковременного (30-40 мин) повышения температуры до 50оС при отгоне хлороформа;
удешевление процесса за счет исключения больших количеств дорогостоящих и дефицитных экстрагентов низкоплавкой фракции норкового жира и хладона-113;
утилизация отходов и, следовательно, более комплексное использование растительной биомассы и экологическое улучшение технологии получения аллапинита, в известном способе в качестве исходного сырья используют надземную часть лекарственных растений, в предлагаемом водно-щелочной и хлороформенный маточники, а также смолу отходы производства, получаемого при выделении аллапинина из корневищ аконита северного и из надземной части аконита белоустого;
предлагаемый способ позволяет получить комплекс биологически активных веществ, присутствующих в растениях рода Аконит, представляющих собой концентрат биоактивных липидных и липофильных компонентов, обогащенных фосфо- и гликолипидами (табл. 1).
The advantages of the proposed method compared to the prototype is the following:
simplification of the process, i.e. in the known method is carried out 11 operations, the proposed 6 when processing rhizomes and 3 when processing the aerial parts of the known process 2nd process stage extraction is carried out for 24 hours at 50-60 ° C, in the proposed entire process is conducted at ambient temperature , with the exception of a short-term (30-40 min) increase in temperature to 50 about With the distillation of chloroform;
cheaper process due to the exclusion of large quantities of expensive and scarce extractants low-melting fraction of mink fat and HFC-113;
waste disposal and, therefore, a more comprehensive use of plant biomass and environmental improvement of the technology for producing allapinite, in the known method, the aerial part of medicinal plants is used as a feedstock, in the proposed water-alkaline and chloroform mother liquors, as well as the resin from the waste generated by the allocation of allapinin from the rhizomes of the northern aconite and from the aerial part of the white aconite;
the proposed method allows to obtain a complex of biologically active substances present in plants of the genus Aconite, which are a concentrate of bioactive lipid and lipophilic components enriched in phospho- and glycolipids (table. 1).

Состав жирных кислот двух экстрактов, полученных предлагаемым способом и приведенный в табл. 2, свидетельствуют об их обогащенности полиеновыми жирными кислотами (витамином F) и о наличии других высокоактивных жирных кислот, например олеиновой и пальмитолеиновой. Известно, что эти кислоты способствуют образованию гранул при регенерационных процессах. Витамин F при накожном применении положительно влияет на углеводный обмен, усиливает липолитическую активность. The composition of the fatty acids of the two extracts obtained by the proposed method and are given in table. 2, indicate their enrichment with polyenic fatty acids (vitamin F) and the presence of other highly active fatty acids, for example, oleic and palmitoleic. It is known that these acids contribute to the formation of granules during regeneration processes. Vitamin F for cutaneous use has a positive effect on carbohydrate metabolism, enhances lipolytic activity.

Таким образом, экстракты из растений рода Аконит, полученные предлагаемым способом, благодаря высокому содержанию биологически активных липидных и липорастворимых соединений, благотворно действующих на кожу, могут успешно применяться в составе рецептур косметики и бытовой химии. Исследования активности полученного экстракта, проведенные на животных в лаборатории фармакологии ИХРВ АН РУз, показали, что экстракт аконита белоустого оказывает благоприятное воздействие на обменные процессы кожи, а именно увеличивает содержание в ней гликогена, снижает уровень молочной кислоты, способствует увеличению окислительно-восстановительного потенциала кожи и приводит к отрицательным величинам избыточного лактата, повышает эластичность кожи вследствие снижения содержания холестерина, триглицеридов и повышения фосфолипидов, оказывает противовоспалительное действие. Положительное влияние липидного концентрата аконита белоустого (ЛКАБ) на метаболические процессы кожи и наличие противовоспалительного эффекта иллюстрируются следующими примерами. Thus, extracts from plants of the genus Aconite obtained by the proposed method, due to the high content of biologically active lipid and liposoluble compounds that have beneficial effects on the skin, can be successfully used in cosmetics and household chemicals. Studies of the activity of the extract obtained, conducted on animals in the pharmacology laboratory of the Institute of Chemical Physics, Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan, showed that the extract of aconite whitefin has a beneficial effect on the metabolic processes of the skin, namely, it increases the glycogen content in it, reduces the level of lactic acid, and helps to increase the redox potential of the skin and leads to negative excess lactate, improves skin elasticity due to lower cholesterol, triglycerides and increased phospholi ide, anti-inflammatory effect. The positive effects of white lipid aconite lipid concentrate (LAB) on skin metabolic processes and the presence of an anti-inflammatory effect are illustrated by the following examples.

П р и м е р 1. В данной серии экспериментов изучалось противовоспалительное действие ЛКАБ на модели формалинового и овальбуминового воспаления. Формалиновый отек воспроизводили на белых мышах массой 18-20 г путем внутримышечного введения в правое бедро 0,1 мл 0,5%-ного раствора формалина. Оценку противовоспалительной активности проводили через сутки после введения формалина по разнице между воспаленной и невоспаленной лапками. ЛКАБ вводили в дозах 25 и 50 мг/кг орально за 4 ч до и через 5 и 18 ч после инъекции формалина. Овальбуминовый отек воспроизводили на белых крысах массой 180-200 г путем субплантарного введения овальбумина (0,1 мл) в правую заднюю лапку. ЛКАБ вводили в вышеуказанных дозах в течение трех дней до инъекции овальбумина и через 30 мин после инъекции овальбумина. Оценку противовоспалительной активности проводили через 2 ч после введения овальбумина по разнице объема между воспаленной и невоспаленной лапками. Полученные результаты на белых мышах показали, что прирост массы воспаленной лапки по отношению к невоспаленной в контроле составлял 28% тогда как введение ЛКАБ в дозе 25 мг/кг способствовало угнетению отека на 16,1% а в дозе 50 мг/кг на 23,6% (табл. 3). EXAMPLE 1. In this series of experiments, the anti-inflammatory effect of LAB on the formalin and ovalbumin inflammation models was studied. Formalin edema was reproduced on white mice weighing 18-20 g by intramuscular injection of 0.1 ml of a 0.5% formalin solution into the right thigh. Evaluation of anti-inflammatory activity was carried out one day after the introduction of formalin by the difference between the inflamed and non-inflamed paws. LAB was administered at doses of 25 and 50 mg / kg orally 4 hours before and 5 and 18 hours after formalin injection. Ovalbumin edema was reproduced on white rats weighing 180-200 g by subplant implantation of ovalbumin (0.1 ml) in the right hind paw. LAB was administered at the above doses for three days before ovalbumin injection and 30 minutes after ovalbumin injection. Evaluation of anti-inflammatory activity was performed 2 hours after the administration of ovalbumin according to the difference in volume between the inflamed and non-inflamed paws. The results obtained on white mice showed that the weight gain of the inflamed paw relative to the non-inflamed in the control was 28%, while the administration of LKAB at a dose of 25 mg / kg contributed to the inhibition of edema by 16.1% and at a dose of 50 mg / kg by 23.6 % (table. 3).

Из данных этого эксперимента видно, что ЛКАБ обладает противовоспалительной активностью. From the data of this experiment it can be seen that LKAB has anti-inflammatory activity.

Во второй серии экспериментов изучения противовоспалительной активности ЛКАБ было установлено, что трехдневное введение его выраженно препятствовало развитию воспаления и отека. Так, если в контрольной группе объем лапок после введения овальбумина увеличивался на 0,65 см3, то предварительное введение ЛКАБ в дозе 25 мг/кг препятствовало возрастанию отека на 20% а в дозе 50 мг/кг на 38% (табл. 4).In the second series of experiments studying the anti-inflammatory activity of LKAB, it was found that a three-day administration of it clearly prevented the development of inflammation and edema. So, if in the control group the paw volume after administration of ovalbumin increased by 0.65 cm 3 , then the preliminary administration of LKAB at a dose of 25 mg / kg prevented an increase in edema by 20% and at a dose of 50 mg / kg by 38% (Table 4) .

Таким образом, профилактически-лечебное введение ЛКАБ препятствует развитию формалинового и овальбуминового воспаления и отека. Thus, the prophylactic and therapeutic administration of LAB inhibits the development of formalin and ovalbumin inflammation and edema.

П р и м е р 2. В данной серии экспериментов изучалось влияние ЛКАБ на компоненты углеводного и липидного обменов в коже подопытных животных. Example 2. In this series of experiments, the effect of LABA on the components of carbohydrate and lipid metabolism in the skin of experimental animals was studied.

Исследования проводились на 96 белых крысах массой 180-220 г. Исследуемые экстракты наносили в течение 30 дней на предварительно эпилированный участок кожи (2,5х2,5 см2) один раз в сутки в 0,5%-ной и 5%-ной концентрациях в растительном масле. Экспериментальные животные были разделены на 3 группы. Первая группа животных контрольная, вторая обрабатывалась ЛКАБ в концентрации 0,5%-ного раствора, третья группа 5%-ным раствором ЛКАБ. Животных декапитировали через сутки после последней аппликации. Лоскут кожи каждого животного эпилировали, тщательно очищали и замораживали в жидком азоте. В гомогенате кожи определяли содержание гликогена, молочной кислоты (МК), пировиноградной кислоты (ПВК) по методам Фридмана, Гутмана, Лоу, Райскина, значения окислительно-восстановительного потенциала системы молочная-пировиноградная кислота (ОВП

Figure 00000001
) и избыточного лактата получили расчетным путем, содержание общих липидов, холестерина, фосфолипидов и триглицеридов определяли общепринятыми методами.The studies were carried out on 96 white rats weighing 180-220 g. The studied extracts were applied for 30 days to a previously epilated skin area (2.5x2.5 cm 2 ) once a day in 0.5% and 5% concentrations in vegetable oil. Experimental animals were divided into 3 groups. The first group of animals was control, the second was treated with LAB at a concentration of 0.5% solution, the third group with a 5% solution of LAB. Animals were decapitated one day after the last application. The flap of the skin of each animal was epilated, thoroughly cleaned and frozen in liquid nitrogen. The content of glycogen, lactic acid (MK), pyruvic acid (PVA) was determined in the skin homogenate according to the methods of Friedman, Gutman, Low, Raiskin, and the values of the redox potential of the lactic-pyruvic acid (ORP) system
Figure 00000001
) and excess lactate were obtained by calculation, the content of total lipids, cholesterol, phospholipids and triglycerides was determined by conventional methods.

Полученные результаты представлены в табл. 5, из данных которой видно, что однократное нанесение на кожу в течение 30 дней исследуемого ЛКАБ способствует положительным сдвигам как в углеводном, так и в липидном обменах кожи. Из данных табл. 5 видно, что увеличение гликогена в коже под действием 0,5% -ного раствора ЛКАБ составляет 28% а под действием 5%-ного раствора 30% т.е. большого содержания гликогена не наблюдалось при повышении концентрации испытуемого раствора. При этом наблюдается увеличение концентрации ПВК (под действием 0,5%-ного раствора на 9% а под действием 5%-ного раствора на 16%) и уменьшение содержания МК в коже (под действием 0,5 и 5%-ных растворов и на 9-13% соответственно). Расчет отношений МК и ПВК показывает, что при использовании исследуемых концентраций ЛКАБ коэффициент соотношения уменьшается на 19,6-26,9% Снижение содержания МК, увеличение уровня ПВК способствует увеличению окислительно-восстановительного потенциала кожи на 2,5-4,7 мВ и приводит к отрицательным величинам избыточного лактата. Со стороны липидного обмена при применении 5%-ных концентраций ЛКАБ наблюдается увеличение общих липидов на 12% Содержание же холестерина и триглицеридов при этом уменьшается на 12 и 30% соответственно, а уровень фосфолипидов увеличивается на 27% Увеличение уровня фосфолипидов и уменьшение холестерина в коже влечет за собой снижение коэффициента соотношения холестерина к фосфолипидам на 23% что способствует улучшению эластичности кожи. The results are presented in table. 5, from the data of which it can be seen that a single application of the studied LAB to the skin during 30 days promotes positive changes in both carbohydrate and lipid metabolism of the skin. From the data table. Figure 5 shows that the increase in glycogen in the skin under the influence of a 0.5% solution of LAB is 28% and under the influence of a 5% solution of 30% i.e. high glycogen content was not observed with increasing concentration of the test solution. In this case, there is an increase in the concentration of PVC (under the influence of a 0.5% solution by 9% and under the influence of a 5% solution by 16%) and a decrease in the content of MK in the skin (under the influence of 0.5 and 5% solutions and by 9-13%, respectively). Calculation of the relationship between MK and PVA shows that when using the studied concentrations of LKAB, the ratio coefficient decreases by 19.6-26.9%. A decrease in the content of MK, an increase in the level of PVK contributes to an increase in the redox potential of the skin by 2.5-4.7 mV and leads to to negative values of excess lactate. On the part of lipid metabolism, when applying 5% concentrations of LAB, an increase in total lipids is observed by 12%. The content of cholesterol and triglycerides decreases by 12 and 30%, respectively, and the level of phospholipids increases by 27%. An increase in the level of phospholipids and a decrease in cholesterol in the skin entails a decrease in the ratio of cholesterol to phospholipids by 23%, which helps to improve skin elasticity.

Таким образом, липидный концентрат аконита белоустого по выявленным фармакологическим свойствам оказывает благоприятное воздействие на обменные процессы кожи. Thus, the lipid concentrate of white aconite, according to the identified pharmacological properties, has a beneficial effect on the metabolic processes of the skin.

Исследования токсиколого-гигиенических свойств экстракта аконита белоустого, проведенные на животных в лаборатории токсикологии ИХРВ АНРУз, показали, что он не токсичен, не обладает раздражающим, аллергизирующим и фотосенсибилизирующим действием. Параметры острой токсичности экстракта аконита белоустого для белых мышей составили: ДЛ16 10000 мг/кг, ДЛ5014375 мг/кг, ДЛ84= 18875 мг/кг, для белых крыс и кроликов дозы 10000 мг/кг и 20000 мг/кг веса животных не вызывали гибели.Studies of the toxicological and hygienic properties of the white aonite extract carried out on animals in the toxicology laboratory of the Institute of Chemical Remediation of the ANRUz have shown that it is non-toxic, does not have irritating, allergenic and photosensitizing effects. The parameters of acute toxicity of white aconite extract for white mice were: DL 16 10,000 mg / kg, DL 50 14375 mg / kg, DL 84 = 18875 mg / kg, for white rats and rabbits doses of 10,000 mg / kg and 20,000 mg / kg of animal weight did not cause death.

Claims (1)

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОГО ЭКСТРАКТА путем обработки растительного сырья органическим растворителем и последующей очистки, отличающийся тем, что в качестве растительного сырья используют жидкие либо смолообразные отходы производства аллапинина из растений рода Aconitum, перед обработкой органическим растворителем жидкие отходы, смесь водно-щелочного и хлороформенного маточников при производстве аллапинина из корневищ аконита северного экстрагируют трехкратно хлороформом при соотношении сырья и растворителя 1 0,3 0,5 в течение 24 ч, при 20 25oС с периодическим перемешиванием, хлороформенные извлечения отделяют, промывают водой до нейтральной среды, упаривают, а остаток после удаления хлороформа либо смоляной отход производства аллапинина из надземной части аконита белоустого обрабатывают 96%-ным этанолом их разбавлением до концентрации сухого остатка 2 2,5 мас. и очистку проводят отстаиванием полученного экстракта в течение 12 15 ч при 20 25oС, надосадочную жидкость отделяют декантацией и фильтруют.METHOD FOR PRODUCING A BIOLOGICALLY ACTIVE EXTRACT by treating plant materials with an organic solvent and subsequent purification, characterized in that liquid or resinous wastes from the production of allapinin from plants of the genus Aconitum are used as plant materials, liquid wastes before treatment with an organic solvent, a mixture of water-alkaline and chloroform mother the production of allapinin from the rhizomes of northern aconite is extracted three times with chloroform with a ratio of raw material and solvent 1 0.3 0.5 for 24 h, at 20 25 o С with periodic stirring, the chloroform extracts are separated, washed with water to a neutral medium, evaporated, and the residue after removal of chloroform or tar waste from the production of allapinin from the aerial part of white-leaved aconite is treated with 96% ethanol and diluted to concentration dry residue 2 2.5 wt. and purification is carried out by settling the obtained extract for 12 15 h at 20 25 o C, the supernatant is separated by decantation and filtered.
SU5065600 1992-10-13 1992-10-13 Method for preparing of biologically active extract RU2040265C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5065600 RU2040265C1 (en) 1992-10-13 1992-10-13 Method for preparing of biologically active extract

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5065600 RU2040265C1 (en) 1992-10-13 1992-10-13 Method for preparing of biologically active extract

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2040265C1 true RU2040265C1 (en) 1995-07-25

Family

ID=21614858

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5065600 RU2040265C1 (en) 1992-10-13 1992-10-13 Method for preparing of biologically active extract

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2040265C1 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2236844C2 (en) * 2002-04-17 2004-09-27 Ставропольское научно-производственное объединение "Пульс" Anti-inflammatory agent for external application and method for its preparing
RU2238103C1 (en) * 2003-08-13 2004-10-20 Закрытое акционерное общество "Фармцентр ВИЛАР" Method for preparing allapinine
RU2295355C2 (en) * 2004-09-17 2007-03-20 Геннадий Инджитаевич Тугунтаев Method for production of lappaconitine hydrobromide
RU2404789C2 (en) * 2009-01-29 2010-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Читинский государственный университет (ЧитГУ) Method for production of biologically active extract from pallas milkwort root
RU2518742C2 (en) * 2012-03-15 2014-06-10 Закрытое акционерное общество "Фармцентр ВИЛАР" Method of industrial allapininum manufacturing

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N 997684, кл. A 61K 35/78, 1983. *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2236844C2 (en) * 2002-04-17 2004-09-27 Ставропольское научно-производственное объединение "Пульс" Anti-inflammatory agent for external application and method for its preparing
RU2238103C1 (en) * 2003-08-13 2004-10-20 Закрытое акционерное общество "Фармцентр ВИЛАР" Method for preparing allapinine
RU2295355C2 (en) * 2004-09-17 2007-03-20 Геннадий Инджитаевич Тугунтаев Method for production of lappaconitine hydrobromide
RU2404789C2 (en) * 2009-01-29 2010-11-27 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Читинский государственный университет (ЧитГУ) Method for production of biologically active extract from pallas milkwort root
RU2518742C2 (en) * 2012-03-15 2014-06-10 Закрытое акционерное общество "Фармцентр ВИЛАР" Method of industrial allapininum manufacturing

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE1900959C3 (en)
US4684628A (en) Pharmaceutical composition containing pure San-Mai-Sen
RU2241475C2 (en) Tanacetum parthenium extract
CH650404A5 (en) ZEDRACHBORK EXTRACT WITH ANTINEOPLASTIC EFFECTIVENESS AND METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF.
RU2040265C1 (en) Method for preparing of biologically active extract
CH642085A5 (en) METHOD FOR OBTAINING THE POLAR FRACTION WITH ANTIPSORIATIC EFFECTIVENESS OF AN EXTRACT FROM FERNPLANTS, AND A PREPARATION PRODUCED ACCORDING TO THIS METHOD.
EP0894094A1 (en) Process for extraction of a growth factor complex
RU2137479C1 (en) Immunomodulating agent
RU2112524C1 (en) Composition of components for drug
RU2005478C1 (en) Method for production of concentrated sapropel
US4906471A (en) Pharmaceutical composition for the reducing both hyperlipidemia and platelet-aggregation (PHP)
KR100451567B1 (en) the processing method of chlorophyll drink
JPS6233123A (en) Medicine for treating vital neoplastic phenomena and treating tumor, leukaemia and multiple-sclerosis and manufacture
DE3111056A1 (en) METHOD FOR OBTAINING A MEDICINAL EFFECTING ARTHRITIS AND OTHER DISEASES OF THE OSTEOLOCOMOTORIC SYSTEM
RU2163133C1 (en) Method of preparing butyric extract of garlic
DE3225597A1 (en) METHOD FOR PRODUCING A TISSUE PREPARATION
Sultana et al. Pharmacological evaluation of Vernonia elaeagnifolia (Asteraceae) leaves in hyperlipidemic albino rabbits
RU2005485C1 (en) Method for production of medicine against animal skin diseases
WO1996032953A1 (en) A propolis extract and a process for its preparation
RU2062106C1 (en) Method of preparing agent showing antiinflammatory and wound-healing action
RU2122414C1 (en) Method of preparing a preparation based on himatomelanoic acids of low-mineralized silt sulfide dirt for physiotherapy
RU2033801C1 (en) Method for producing agent having antianaphylactic activity
RU2034556C1 (en) Method of preparing copper derivatives of chlorophyll
DE2827066A1 (en) METHOD FOR THE PRODUCTION OF A SUBSTANCE AGAINST COLLAGEN CHANGES AND PRODUCTS PRODUCED BY THE METHOD
KR810000333B1 (en) Method to Extract and Purify Flavonoid Compounds from Ginkgo Biloba