PL68854Y1 - Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego - Google Patents
Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznegoInfo
- Publication number
- PL68854Y1 PL68854Y1 PL123395U PL12339512U PL68854Y1 PL 68854 Y1 PL68854 Y1 PL 68854Y1 PL 123395 U PL123395 U PL 123395U PL 12339512 U PL12339512 U PL 12339512U PL 68854 Y1 PL68854 Y1 PL 68854Y1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- container
- supply
- chamber
- liquid
- observation
- Prior art date
Links
- 230000010412 perfusion Effects 0.000 title claims abstract description 9
- 238000011534 incubation Methods 0.000 title claims description 9
- 239000000463 material Substances 0.000 title claims description 9
- 239000012620 biological material Substances 0.000 title claims description 6
- 239000012530 fluid Substances 0.000 title 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 14
- 238000007789 sealing Methods 0.000 claims abstract description 8
- 239000011344 liquid material Substances 0.000 claims abstract description 7
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 10
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 8
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 4
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 claims description 4
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 4
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 claims description 2
- 238000011437 continuous method Methods 0.000 claims 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 claims 1
- 238000007599 discharging Methods 0.000 claims 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 claims 1
- 238000003780 insertion Methods 0.000 claims 1
- 230000037431 insertion Effects 0.000 claims 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 claims 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 claims 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 claims 1
- 238000000399 optical microscopy Methods 0.000 claims 1
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 3
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 2
- 238000012606 in vitro cell culture Methods 0.000 description 2
- 239000012780 transparent material Substances 0.000 description 2
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 1
- VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N Methyl methacrylate Chemical compound COC(=O)C(C)=C VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920005372 Plexiglas® Polymers 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical group [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 239000006059 cover glass Substances 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 1
- 238000005286 illumination Methods 0.000 description 1
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000007689 inspection Methods 0.000 description 1
- 238000013507 mapping Methods 0.000 description 1
- 230000004066 metabolic change Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 210000000287 oocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 1
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego charakteryzuje się tym, że ma postać szczelnie zamykanego od góry zatyczką uszczelniającą (1) pojemnika (2) z dnem w postaci przeźroczystej płytki (3), mocowanej korzystnie trwale z pojemnikiem (2), przy czym w zatyczce uszczelniającej (1) umieszczone są elementy zasilająco-odprowadzające (4 i 5) połączone z przewodami zasilająco-odprowadzającymi (6 i 7).
Description
Opis wzoru
Przedmiotem wzoru użytkowego jest komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego. Komora mikroinkubacyjna według wzoru użytkowego znajduje przykładowo zastosowanie przy obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału biologicznego w mikroskopie fluorescencyjnym, z wysoką rozdzielczością. Z opisu wzoru użytkowego PL 59703Y1 znana jest komora do badania komórkowych hodowli in vitro, służąca do oceny hodowanych komórek pod mikroskopem optycznym w jałowych warunkach, z zachowaniem stałej temperatury. Komora ta zbudowana jest z dwóch płaskich ścian, wykonanych z przezroczystego materiału np. szkło, pleksi oddzielonych uszczelką dystansującą o grubości poniżej 1 mm. Komora połączona jest z hodowlą komórkową i pompą wymuszającą obieg za pomocą kapilarnych rurek.
Szczelinowata komora usytuowana jest na górnej ścianie nieco większej komory płaszcza wodnego, której ściany również zbudowane są z przezroczystego materiału. Płaszcz wodny połączony jest z termostatem wodnym i pompą wymuszającą obieg za pomocą przewodów zasilających.
Funkcjonowanie przepływowej komory do badania hodowli komórkowych in vitro polega na tym, że do płaszcza wodnego, rurką napływa ogrzana woda z termostatu i odpływa rurką z powrotem do termostatu. Jednocześnie z hodowli komórek in vitro zostaje przepompowana do komory porcja zawiesiny komórek, której temperaturę odczytuje czujnik. W przypadku obniżenia temperatury poniżej zamierzonej, intensyfikuje się przepływ wody w rurkach. Komory podświetlone są od spodu źródłem światła, natomiast do ściany górnej komory zostaje przystawiony obiektyw mikroskopu. Szczelinowate światło komory (poniżej 1 mm) umożliwia łatwe ogniskowanie optyki i zastosowanie do przeglądu nawet obiektywu imersyjnego. Z opisu wzoru użytkowego PL 61795Y1 znana jest również komora mikromanipulacyjna przeznaczona do mikromanipulacji na oocytach, zygotach i zarodkach. Komora mikromanipulacyjna składa się ze szkiełka mikroskopowego o wymiarach 76,2 mm x 25,4 mm, grubości 1 mm lub 2 mm, które stanowi podstawę komory, dwóch szklanych suportów zamocowanych na niej naprzeciwległe, o wymiarach 25,4 mm x 3,0 mm, grubości 2 mm, oraz umieszczonej na nich uchylnie pokrywie, którą stanowi szkiełko mikroskopowe nakrywkowe o wymiarach 22 mm x 22 mm.
Obecnie preparatyka mikroskopowa zmierza w kierunku stworzenia metod pozwalających na obserwacje przyżyciowe organizmów z możliwością odwzorowania ich rzeczywistej struktury. Materiał biologiczny przygotowywany jest zazwyczaj do obserwacji przez umieszczenie na szkiełku podstawowym i przykrycie szkiełkiem nakrywkowym, o ściśle określonej grubości.
Zachowanie struktury materiału, na przykład zagęszczonej półpłynnej lub płynnej biomasy i zapewnienie fizjologicznych warunków obserwacji w takim układzie stanowi problem. Oświetlenie małej objętości cieczy w preparacie powoduje podnoszenie temperatury cieczy i przesychanie preparatu. W przypadku żywych komórek, prowadzi to do zmian osmotycznych i zmian turgoru, co w konsekwencji doprowadza do obkurczania lub pęcznienia komórek. Dodatkowo w takich warunkach panuje ograniczona wymiana tlenu ze środowiskiem. W przypadku żywych kultur, prowadzi to do zmian warunków tlenowych w preparacie, a to z kolei wpływa na zmiany metaboliczne obserwowanego materiału. Preparat taki nie pozwala na kontrolowaną wymianę pożywki, a tym samym na przeciwdziałanie powyższym zmianom. W konsekwencji uzyskiwany jest nierzeczywisty obraz obserwowanych obiektów. Utrudnione jest również modyfikowanie podłoża w trakcie prowadzonych badań. Wymaga to wyjęcia obserwowanego preparatu spod mikroskopu, otwarcia preparatu i powtórnego zamknięcia. Procedura ta powoduje nierównomierną dyspersję składników analizowanego podłoża.
Większość powyższych problemów można wyeliminować lub znacznie ograniczyć prowadząc obserwację na szalkach Petriego oraz w komorach hodowlanych z dnem o zdefiniowanej przejrzystości, przykładowo szklanym lub plastikowym. Takie urządzenia jednak wymagają dużej ilości materiału biologicznego tj. pożywki lub podłoża. Nie zapewniają także w łatwy sposób możliwości szczelnego zamknięcia obserwowanego materiału.
Odpowiedzią na powyższe problemy, jest komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego, według zgłaszanego wzoru użytkowego.
Istotą komory mikroinkubacyjnej do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego jest to, że ma postać szczelnie zamykanego od góry zatyczką uszczelniającą pojemnika, z dnem w postaci przeźroczystej płytki, mocowanej korzystnie trwale z pojemnikiem, przy czym w zatyczce uszczelniającej umieszczone są elementy zasilająco-odprowadzające, połączone
Claims (8)
- z przewodami zasilająco-odprowadzającymi, umożliwiające wprowadzenie, mieszanie i odprowadzenie materiału do/z pojemnika metodą ciągłą lub poprzez iniekcję. Korzystnie, pojemnik ma kształt cylindra zwężającego się ku dołowi. Korzystnie, pojemność pojemnika wynosi od 0,1 x 109 m3 do 3 x 10'6 m3. Korzystnie, pojemnik wykonany jest z tworzywa sztucznego. Korzystnie, płytka wykonana jest ze szkła. Korzystnie, płytka ma kształt prostokąta. Korzystnie, elementy zasilająco-odprowadzające mają postać rurek. Korzystnie, elementy zasilająco-odprowadzające wykonane są ze szkła. Przedmiot wzoru użytkowego został ukazany na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schemat komory mikroinkubacyjnej w postaci zamkniętej. Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego, ma postać szczelnie zamykanego od góry zatyczką uszczelniającą 1 pojemnika 2 w kształcie cylindra zwężającego się ku dołowi. Dno pojemnika 2 stanowi szklana, przeźroczysta płytka 3 w kształcie prostokąta, mocowana trwale z pojemnikiem 2. Pojemnik 2 wykonany jest z tworzywa sztucznego. Pojemność pojemnika 2 mieści się w zakresie od 0,1 x 10'9 m3 do 3 x 10'6 m3. Materiał do obserwacji umieszcza się we wnętrzu pojemnika 2. W zatyczce uszczelniającej 1 umieszczone są elementy zasilająco-odprowadzające 4 i 5, w postaci szklanych rurek, połączone z przewodami zasilająco-odprowadzającymi 6 i 7. Elementy zasilająco-odprowadzające 4 i 5, umożliwiają wprowadzanie, mieszanie i odprowadzanie materiału do/z komory metodą ciągłą lub poprzez iniekcję. Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego, według zgłaszanego wzoru użytkowego umożliwia wykonywanie preparatów mikroskopowych z półpłynnego lub płynnego materiału biologicznego o objętości od 0,1 x 10'9 m3 do 3 x 10'6 m3. Komora umożliwia utrzymanie zdefiniowanych warunków pomiaru w trakcie obserwacji, z wykorzystaniem wysokorozdzielczej mikroskopii optycznej. Pozwala na przyżyciowe obserwacje materiału biologicznego z możliwością utrzymania zdefiniowanego składu medium, bezproblemowe modyfikacje podłoża poprzez wprowadzenie dodatkowych czynników, przy zapewnieniu ich równomiernej dyspersji w badanym preparacie, włączając w to ciągłą perfuzję materiału, daje możliwość szczelnego zamknięcia obserwowanego materiału. Zastrzeżenia ochronne1. Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego, znamienna tym, że ma postać szczelnie zamykanego od góry zatyczką uszczelniającą (1) pojemnika (2) z płaskim dnem w postaci przeźroczystej płytki (3), mocowanej trwale z pojemnikiem (2), przy czym w zatyczce uszczelniającej (1) umieszczone są elementy zasilająco--odprowadzające (4 i 5), połączone z przewodami zasilająco-odprowadzającymi (6 i 7).
- 2. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że pojemnik (2) ma kształt cylindra zwężającego się ku dołowi.
- 3. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że pojemność pojemnika (2) wynosi od 0,1 x 10'9 m3 do 3 x10'6 m3.
- 4. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że pojemnik (2) wykonany jest z tworzywa sztucznego.
- 5. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że płytka (3) wykonana jest ze szkła.
- 6. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że płytka (3) ma kształt prostokąta.
- 7. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że elementy zasilająco-odprowadzające (4 i 5) mają postać rurek.
- 8. Komora według zastrz. 1, znamienna tym, że elementy zasilająco-odprowadzające (4 i 5) wykonane są ze szkła.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL123395U PL68854Y1 (pl) | 2012-11-19 | 2012-11-19 | Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL123395U PL68854Y1 (pl) | 2012-11-19 | 2012-11-19 | Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL123395U1 PL123395U1 (pl) | 2015-03-30 |
| PL68854Y1 true PL68854Y1 (pl) | 2017-01-31 |
Family
ID=52727906
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL123395U PL68854Y1 (pl) | 2012-11-19 | 2012-11-19 | Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL68854Y1 (pl) |
-
2012
- 2012-11-19 PL PL123395U patent/PL68854Y1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL123395U1 (pl) | 2015-03-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kolanowski et al. | Enhanced structural maturation of human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes under a controlled microenvironment in a microfluidic system | |
| Yuan et al. | Analyzing microalgal biofilm structures formed under different light conditions by evaluating cell–cell interactions | |
| CN104862226A (zh) | 显微生物培养箱 | |
| CN206396228U (zh) | 细胞培养平台和细胞培养系统 | |
| CN102115776B (zh) | 一种微藻筛选方法及系统 | |
| WO2014102527A1 (en) | A bioreactor | |
| Ferraro et al. | A Low‐Cost, User‐Friendly Rheo‐Optical Compression Assay to Measure Mechanical Properties of Cell Spheroids in Standard Cell Culture Plates | |
| US20130045535A1 (en) | Niche system for biological culturing | |
| WO2005095576A2 (en) | Controlled temperature water (or other fluid)-jacket co2 microscope stage incubator | |
| US6602701B2 (en) | Three-dimensional cell growth assay | |
| PL68854Y1 (pl) | Komora mikroinkubacyjna do perfuzji i obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego | |
| Barile | Gram staining technique | |
| PL68727Y1 (pl) | Komora mikroinkubacyjna do obserwacji półpłynnego lub płynnego materiału, zwłaszcza biologicznego | |
| JP2010011814A (ja) | 培養細胞観察用チャンバー及びその使用 | |
| Park et al. | Plant array chip for the germination and growth screening of Arabidopsis thaliana | |
| Liu et al. | Microcosm fabrication platform for live microscopy of plant-soil systems | |
| CN201495225U (zh) | 一种微生物在线观测装置 | |
| PL238379B1 (pl) | Urządzenie do perfuzyjnych hodowli komórkowych | |
| RU82457U1 (ru) | Многоячейковое устройство для культивирования и проведения экспериментов с микроводорослями | |
| CN2863808Y (zh) | 一种细胞多槽培养器 | |
| CN103756899B (zh) | 可用于稳态强磁场效应研究的生物连续培养及显微成像装置 | |
| US10545169B2 (en) | Top-cover for a controlled environmental system, top-cover-set and controlled environmental system compatible with probe based techniques and procedure to control the environment for a sample | |
| CN204644368U (zh) | 一种显微镜下细胞培养用温控装置 | |
| KR100745110B1 (ko) | 계속적 현미경 관찰이 가능한 세포 배양장치 | |
| Picard et al. | A micro-incubator for cell and tissue imaging |