PL236142B1 - Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych - Google Patents
Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych Download PDFInfo
- Publication number
- PL236142B1 PL236142B1 PL420021A PL42002116A PL236142B1 PL 236142 B1 PL236142 B1 PL 236142B1 PL 420021 A PL420021 A PL 420021A PL 42002116 A PL42002116 A PL 42002116A PL 236142 B1 PL236142 B1 PL 236142B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- lactide
- copolymer
- sirolimus
- coating
- working solution
- Prior art date
Links
- 238000000576 coating method Methods 0.000 title claims description 37
- 230000002792 vascular Effects 0.000 title claims description 32
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 title claims description 29
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 title claims description 29
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 title claims description 12
- 229940124302 mTOR inhibitor Drugs 0.000 title description 5
- 239000003628 mammalian target of rapamycin inhibitor Substances 0.000 title description 5
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title 2
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N Dichloromethane Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 92
- QFJCIRLUMZQUOT-HPLJOQBZSA-N sirolimus Chemical compound C1C[C@@H](O)[C@H](OC)C[C@@H]1C[C@@H](C)[C@H]1OC(=O)[C@@H]2CCCCN2C(=O)C(=O)[C@](O)(O2)[C@H](C)CC[C@H]2C[C@H](OC)/C(C)=C/C=C/C=C/[C@@H](C)C[C@@H](C)C(=O)[C@H](OC)[C@H](O)/C(C)=C/[C@@H](C)C(=O)C1 QFJCIRLUMZQUOT-HPLJOQBZSA-N 0.000 claims description 53
- ZAHRKKWIAAJSAO-UHFFFAOYSA-N rapamycin Natural products COCC(O)C(=C/C(C)C(=O)CC(OC(=O)C1CCCCN1C(=O)C(=O)C2(O)OC(CC(OC)C(=CC=CC=CC(C)CC(C)C(=O)C)C)CCC2C)C(C)CC3CCC(O)C(C3)OC)C ZAHRKKWIAAJSAO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 52
- 229960002930 sirolimus Drugs 0.000 claims description 52
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 31
- 239000012224 working solution Substances 0.000 claims description 27
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 25
- HKVAMNSJSFKALM-GKUWKFKPSA-N Everolimus Chemical compound C1C[C@@H](OCCO)[C@H](OC)C[C@@H]1C[C@@H](C)[C@H]1OC(=O)[C@@H]2CCCCN2C(=O)C(=O)[C@](O)(O2)[C@H](C)CC[C@H]2C[C@H](OC)/C(C)=C/C=C/C=C/[C@@H](C)C[C@@H](C)C(=O)[C@H](OC)[C@H](O)/C(C)=C/[C@@H](C)C(=O)C1 HKVAMNSJSFKALM-GKUWKFKPSA-N 0.000 claims description 19
- 229960005167 everolimus Drugs 0.000 claims description 19
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 claims description 18
- 230000037361 pathway Effects 0.000 claims description 18
- 238000007654 immersion Methods 0.000 claims description 16
- 102000013530 TOR Serine-Threonine Kinases Human genes 0.000 claims description 15
- 108010065917 TOR Serine-Threonine Kinases Proteins 0.000 claims description 15
- 125000003258 trimethylene group Chemical group [H]C([H])([*:2])C([H])([H])C([H])([H])[*:1] 0.000 claims description 13
- 238000007334 copolymerization reaction Methods 0.000 claims description 12
- 238000013270 controlled release Methods 0.000 claims description 7
- 239000003999 initiator Substances 0.000 claims description 7
- -1 zirconium alkoxide Chemical class 0.000 claims description 7
- JJTUDXZGHPGLLC-IMJSIDKUSA-N 4511-42-6 Chemical compound C[C@@H]1OC(=O)[C@H](C)OC1=O JJTUDXZGHPGLLC-IMJSIDKUSA-N 0.000 claims description 6
- 238000007598 dipping method Methods 0.000 claims description 6
- YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N trimethylene carbonate Chemical compound O=C1OCCCO1 YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N lactide Chemical compound CC1OC(=O)C(C)OC1=O JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 4
- DUNKXUFBGCUVQW-UHFFFAOYSA-J zirconium tetrachloride Chemical compound Cl[Zr](Cl)(Cl)Cl DUNKXUFBGCUVQW-UHFFFAOYSA-J 0.000 claims description 4
- YOBOXHGSEJBUPB-MTOQALJVSA-N (z)-4-hydroxypent-3-en-2-one;zirconium Chemical compound [Zr].C\C(O)=C\C(C)=O.C\C(O)=C\C(C)=O.C\C(O)=C\C(C)=O.C\C(O)=C\C(C)=O YOBOXHGSEJBUPB-MTOQALJVSA-N 0.000 claims description 3
- 229920003232 aliphatic polyester Polymers 0.000 claims description 2
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 claims description 2
- 239000000155 melt Substances 0.000 claims description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 2
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims description 2
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 claims description 2
- 238000007142 ring opening reaction Methods 0.000 claims description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 2
- 229910052726 zirconium Inorganic materials 0.000 claims description 2
- GBNDTYKAOXLLID-UHFFFAOYSA-N zirconium(4+) ion Chemical class [Zr+4] GBNDTYKAOXLLID-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 claims 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 claims 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 34
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 34
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N Argon Chemical compound [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 22
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 11
- 229920002988 biodegradable polymer Polymers 0.000 description 11
- 239000004621 biodegradable polymer Substances 0.000 description 11
- 229920001432 poly(L-lactide) Polymers 0.000 description 11
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 8
- 208000037803 restenosis Diseases 0.000 description 8
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 7
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000005865 ionizing radiation Effects 0.000 description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 6
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 5
- 239000000047 product Substances 0.000 description 5
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L Carbonate Chemical compound [O-]C([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 3
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 3
- 239000000956 alloy Substances 0.000 description 3
- 229910045601 alloy Inorganic materials 0.000 description 3
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 3
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 3
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 3
- 238000007151 ring opening polymerisation reaction Methods 0.000 description 3
- RBMHUYBJIYNRLY-UHFFFAOYSA-N 2-[(1-carboxy-1-hydroxyethyl)-hydroxyphosphoryl]-2-hydroxypropanoic acid Chemical compound OC(=O)C(O)(C)P(O)(=O)C(C)(O)C(O)=O RBMHUYBJIYNRLY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N Glycolic acid Chemical compound OCC(O)=O AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- JVTAAEKCZFNVCJ-REOHCLBHSA-N L-lactic acid Chemical compound C[C@H](O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 2
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N Lactic Acid Natural products CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920000954 Polyglycolide Polymers 0.000 description 2
- 238000002399 angioplasty Methods 0.000 description 2
- 230000001028 anti-proliverative effect Effects 0.000 description 2
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000003937 drug carrier Substances 0.000 description 2
- 230000003511 endothelial effect Effects 0.000 description 2
- 230000003628 erosive effect Effects 0.000 description 2
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 2
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 2
- 229920001434 poly(D-lactide) Polymers 0.000 description 2
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 2
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 2
- 208000004476 Acute Coronary Syndrome Diseases 0.000 description 1
- 201000000054 Coronary Restenosis Diseases 0.000 description 1
- 206010056489 Coronary artery restenosis Diseases 0.000 description 1
- LQLQDKBJAIILIQ-UHFFFAOYSA-N Dibutyl terephthalate Chemical compound CCCCOC(=O)C1=CC=C(C(=O)OCCCC)C=C1 LQLQDKBJAIILIQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000035519 G0 Phase Effects 0.000 description 1
- 230000010190 G1 phase Effects 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- ZDZOTLJHXYCWBA-VCVYQWHSSA-N N-debenzoyl-N-(tert-butoxycarbonyl)-10-deacetyltaxol Chemical compound O([C@H]1[C@H]2[C@@](C([C@H](O)C3=C(C)[C@@H](OC(=O)[C@H](O)[C@@H](NC(=O)OC(C)(C)C)C=4C=CC=CC=4)C[C@]1(O)C3(C)C)=O)(C)[C@@H](O)C[C@H]1OC[C@]12OC(=O)C)C(=O)C1=CC=CC=C1 ZDZOTLJHXYCWBA-VCVYQWHSSA-N 0.000 description 1
- 229930012538 Paclitaxel Natural products 0.000 description 1
- 102100027913 Peptidyl-prolyl cis-trans isomerase FKBP1A Human genes 0.000 description 1
- 108091000080 Phosphotransferase Proteins 0.000 description 1
- 108010006877 Tacrolimus Binding Protein 1A Proteins 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- 208000024248 Vascular System injury Diseases 0.000 description 1
- 208000012339 Vascular injury Diseases 0.000 description 1
- 229910007932 ZrCl4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 1
- 230000003110 anti-inflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 description 1
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- BSDOQSMQCZQLDV-UHFFFAOYSA-N butan-1-olate;zirconium(4+) Chemical compound [Zr+4].CCCC[O-].CCCC[O-].CCCC[O-].CCCC[O-] BSDOQSMQCZQLDV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000022131 cell cycle Effects 0.000 description 1
- 239000011247 coating layer Substances 0.000 description 1
- 238000013267 controlled drug release Methods 0.000 description 1
- 238000007887 coronary angioplasty Methods 0.000 description 1
- 208000029078 coronary artery disease Diseases 0.000 description 1
- 239000000824 cytostatic agent Substances 0.000 description 1
- 230000001085 cytostatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 1
- 229960003668 docetaxel Drugs 0.000 description 1
- 239000003640 drug residue Substances 0.000 description 1
- 230000009977 dual effect Effects 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 239000003018 immunosuppressive agent Substances 0.000 description 1
- 229940124589 immunosuppressive drug Drugs 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 208000028867 ischemia Diseases 0.000 description 1
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 1
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 1
- 210000004165 myocardium Anatomy 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 229960001592 paclitaxel Drugs 0.000 description 1
- 102000020233 phosphotransferase Human genes 0.000 description 1
- 229920001515 polyalkylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 1
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 1
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 1
- 230000002028 premature Effects 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 230000000250 revascularization Effects 0.000 description 1
- 210000002460 smooth muscle Anatomy 0.000 description 1
- DKPFODGZWDEEBT-QFIAKTPHSA-N taxane Chemical class C([C@]1(C)CCC[C@@H](C)[C@H]1C1)C[C@H]2[C@H](C)CC[C@@H]1C2(C)C DKPFODGZWDEEBT-QFIAKTPHSA-N 0.000 description 1
- RCINICONZNJXQF-MZXODVADSA-N taxol Chemical compound O([C@@H]1[C@@]2(C[C@@H](C(C)=C(C2(C)C)[C@H](C([C@]2(C)[C@@H](O)C[C@H]3OC[C@]3([C@H]21)OC(C)=O)=O)OC(=O)C)OC(=O)[C@H](O)[C@@H](NC(=O)C=1C=CC=CC=1)C=1C=CC=CC=1)O)C(=O)C1=CC=CC=C1 RCINICONZNJXQF-MZXODVADSA-N 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- YYSFXUWWPNHNAZ-PKJQJFMNSA-N umirolimus Chemical compound C1[C@@H](OC)[C@H](OCCOCC)CC[C@H]1C[C@@H](C)[C@H]1OC(=O)[C@@H]2CCCCN2C(=O)C(=O)[C@](O)(O2)[C@H](C)CC[C@H]2C[C@H](OC)/C(C)=C/C=C/C=C/[C@@H](C)C[C@@H](C)C(=O)[C@H](OC)[C@H](O)/C(C)=C/[C@@H](C)C(=O)C1 YYSFXUWWPNHNAZ-PKJQJFMNSA-N 0.000 description 1
- 150000003755 zirconium compounds Chemical class 0.000 description 1
- 229950009819 zotarolimus Drugs 0.000 description 1
- CGTADGCBEXYWNE-JUKNQOCSSA-N zotarolimus Chemical compound N1([C@H]2CC[C@@H](C[C@@H](C)[C@H]3OC(=O)[C@@H]4CCCCN4C(=O)C(=O)[C@@]4(O)[C@H](C)CC[C@H](O4)C[C@@H](/C(C)=C/C=C/C=C/[C@@H](C)C[C@@H](C)C(=O)[C@H](OC)[C@H](O)/C(C)=C/[C@@H](C)C(=O)C3)OC)C[C@H]2OC)C=NN=N1 CGTADGCBEXYWNE-JUKNQOCSSA-N 0.000 description 1
- PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N ε-Caprolactone Chemical compound O=C1CCCCCO1 PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR, zwłaszcza sirolimusu lub ewerolimusu, na polimerowych stentach naczyniowych, biostabilnych lub biodegradowalnych, stosowanych w zabiegach angioplastyki naczyniowej i zapobiegających restenozie.
Implantacja stentu podczas zabiegu angioplastyki wieńcowej jest uznaną metodą leczenia ostrych zespołów wieńcowych, a także stabilnej choroby wieńcowej u pacjentów z istotnym niedokrwieniem obszaru mięśnia sercowego zaopatrywanego przez zwężoną tętnicę. Najważniejszym ograniczeniem skuteczności tej metody, zwłaszcza w przypadku stosowania stentów metalowych jest zjawisko restenozy, polegające na nawrocie zwężenia leczonej tętnicy. Dlatego też coraz powszechniej w kardiologii inwazyjnej wykorzystywane są stenty uwalniające lek (DES, z ang. Drug Eluting Stents), zwykle pokryte powłokami stanowiącymi układ nośnika z lekiem. Jak opisano w publikacji D.M. Sun i in. pt. „Coronary drug-eluting stents: From design optimization to newer strategies”, J Biom ed Mater Res A, 102 (2014) 1625-1640, zastosowanie DES pozwala na znaczną redukcję częstości restenozy po implantacji stentu z 20-30% do 3-20% oraz ponowną rewaskularyzację.
Do powszechnie stosowanych leków zapobiegających restenozie, jak wskazano m.in. w publikacji Y.Y. Huang i in. pt. „Drug-eluting biostable and erodible stents”, Journal of Controlled Release, 193 (2014) 188-201, zalicza się inhibitory mTOR tj. sirolimus, ewerolimus, zotarolimus i biolimus. Wiążą się one z białkiem FKBP12, tworząc kompleks, który hamuje aktywację kinaz regulatorowych zwanych mTOR (mammalian Target of Rapamycin), stanowiących podstawowe regulatory procesów wzrostu i proliferacji wielu typów komórek. W efekcie dochodzi do zablokowania cyklu komórkowego w fazie G0/G1, zahamowanie proliferacji i migracji komórek, głównie mięśni gładkich.
Jako nośniki leków coraz częściej stosowane są polimery biodegradowalne co zostało opisane m.in. w publikacji A. Ta, i in. pt. „Inception to actualization: Next generation coronary stent coatings incorporating nanotechnology:, J Biotechnol, 164 (2013) 151-170. Zastosowanie polimerów biodegradowalnych umożliwia dodatkową kontrolę uwalniania leku poprzez erozję matrycy powodowaną przez degradację hydrolityczną polimeru. Ponadto, równoczesny przebieg erozji polimeru i dyfuzji leku zapobiega utrzymywaniu się pozostałości leku w tkance.
Znane jest ze zgłoszenia WO2009112741 A2 urządzenie medyczne m.in. stent naczyniowy, zawierające składnik aktywny lub lek korzystnie zapobiegający restenozie oraz zabezpieczającą go biodegradowalną hydrofobową powłokę polimerową wytworzoną np. z glikolu polialkilenowego lub poliwinylopirolidonu.
Ze zgłoszenia PL402235 A1 znany jest układ powłok i powlekane urządzenie medyczne, korzystnie stent naczyniowy metalowy lub polimerowy, które charakteryzuje się tym, że co najmniej na części swojej powierzchni zawiera układ biokompatybilnych, polimerowych powłok biodegradowalnych, składający się z co najmniej dwóch powłok: jednej hydrofitowej i jednej hydrofobowej. Układ powłok korzystnie zawiera powłoki na bazie polimerów wybranych z grupy obejmującej poli(glikol etylenowy) PEG, poli(kwas mlekowy) PLA, poli(kwas glikolowy) PGA, kopolimery PGA-PLA, kopolimery kwasu mlekowego lub glikolowego z ε-kaprolaktonem PCL. Co najmniej jedna z powłok zawiera przynajmniej jedną substancję czynną korzystnie wybraną z grupy obejmującej leki antyproliferacyjne, przeciwzapalne, przeciwzakrzepowe, leki o działaniu cytostatycznym i/lub immunosupresyjnym. Korzystnie substancję czynną stanowi lek wybrany z grupy obejmującej rapamycynę, pochodne rapamycyny, ich analogi i prekursory albo paklitaksel, docetaksel, ich analogi, prekursory oraz inne pochodne z grup taksanów.
W wielu badaniach nadal obserwowane są efekty uboczne zastosowania DES takie jak reakcje zapalne, późna zakrzepica w stencie, czy późna restenoza. Jak wskazano w publikacji K. Park pt. „Dual drug-eluting stent”, Journal of Controlled Release, 159 (2012) 1-1, efekty te spowodowane są przede wszystkim nieodpowiednim dostosowaniem dawki leku uwalnianego z DES, co istotnie wpływa na jego skuteczność. Przedwczesne uwalnianie leku z DES może zmniejszyć efektywność jego działania, a z kolei niekontrolowane wyrzuty leku lub nagłe uwolnienie zbyt dużej dawki może opóźniać regenerację śródbłonka i zwiększyć ryzyko wystąpienia działań niepożądanych. Potwierdzają to wyniki randomizowanych badań klinicznych opisanych np. w publikacji G. Acharya, K. Park pt. „Mechanisms of controlled drug release from drug-eluting stents”, Adv Drug Deliver Rev, 58 (2006) 387-401, które wskazują, że jedynie optymalna kinetyka uwalniania leku zapobiega restenozie i zapewnia prawidłowy proces odbudowy śródbłonka.
Celem niniejszego wynalazku jest opracowanie sposobu wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR, zwłaszcza sirolimusu lub ewerolimusu, na polimerowych stentach naczyniowych, z której to powłoki inhibitor mTOR uwalniany jest do organizmu w sposób kontrolowany i dopasowany do procesu naprawy urazu naczyniowego.
Istota sposobu wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR, zwłaszcza sirolimusu lub ewerolimusu, na polimerowych stentach naczyniowych, w którym to sposobie na powierzchnię stentu nanosi się roztwór roboczy, zawierający kopolimer będący produktem procesu kopolimeryzacji komonomerów: L-laktydu lub D,L-laktydu i węglanu trimetylenu, przebiegającego na drodze otwarcia pierścienia, w stopie, w obecności inicjatora kopolimeryzacji, którym są związki cyrkonu (IV), charakteryzuje się tym, że kopolimer stanowiący składnik roztworu roboczego otrzymuje się przez ciągłe mieszanie komonomerów w postaci węglanu trimetylenu i laktydu w stosunku molowym w zakresie 0,15-0,6 mola węglanu trimetylenu i 0,4-0,85 mola laktydu w temperaturze 110-200°C, korzystnie 120-150°C, przez 6-96 godzin stosując jako inicjator reakcji kopolimeryzacji acetyloacetonian cyrkonu i/lub chlorek cyrkonu i/lub alkoholan cyrkonu o wzorze ogólnym Zr(OR)4, w którym R oznacza grupy alkilowe o ogólnym wzorze CnH2n+1, przy zachowaniu stosunku molowego sumy użytych komonomerów do inicjatora kopolimeryzacji w zakresie od 300:1 do 1200:1. Z tak uzyskanego kopolimeru poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu) o bezładnej mikrostrukturze łańcucha i średniej długości mikrobloków laktydylowych niższych od wartości 3,5 jednostek oraz o zawartości molowej laktydylu 10-90%, a korzystnie 75%, wytwarza się roztwór roboczy poprzez rozpuszczenie go w chlorku metylenu, oczyszcza i suszy w warunkach podciśnienia 8-12 kPa w temperaturze 20-60°C przez 48-80 godzin do uzyskania stałej masy. Suchy kopolimer rozpuszcza się w chlorku metylenu, tak aby uzyskać roztwór o stężeniu 0,5-5,0% wagowych, korzystnie 1-2 % wagowych, dodaje do niego uprzednio przygotowany roztwór inhibitora szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w chlorku metylenu o stężeniu 1-13 % wagowo-objętościowych i całość homogenizuje się. Roztwór roboczy zawierający poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu) oraz inhibitor szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w chlorku metylenu, nanosi się na polimerowy stent naczyniowy biostabilny lub biodegradowalny, w temperaturze 4-30°C, poprzez zanurzanie w nim stentu, przy ilości cykli 1-50, z szybkością zanurzania 40-3000 mm/min, przez 0,1-30 s, a czas trwania zanurzenia/wynurzenia wynosi 0,2-50 s/cykl. Utworzoną powłokę o korzystnej grubości 0,8-5,0 μm, zawierającą po usunięciu rozpuszczalnika 5-40 % wagowych zdyspergowanego w niej inhibitora szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w stosunku do poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu), a korzystnie 20-30 % wagowych, suszy się, utwardza i na koniec sterylizuje, korzystnie z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
Korzystnie naniesioną z roztworu roboczego na stent powłokę suszy się w temperaturze 25°C przez 48 godzin, a następnie w warunkach podciśnienia 8-12 kPa przez kolejne 72 godziny.
Korzystnie roztwór roboczy nanosi się na polimerowy stent naczyniowy metodą zanurzeniową, z szybkością zanurzania 1000-3000 mm/min.
Korzystne jest, gdy w przypadku nanoszenia roztworu roboczego na polimerowy stent naczyniowy wykonany z alifatycznych poliestrów, czas trwania zanurzenia wynosi 0,2-3 s/cykl, a najlepiej 1-3 s/cykl, przy ilości cykli 1-4 i odstępie między cyklami 5-10 minut.
Korzystne jest także, gdy w przypadku nanoszenia roztworu roboczego na polimerowy stent naczyniowy wykonany poli(tereftalanu etylenu), czas trwania zanurzenia/wynurzenia wynosi 5-30 s/cykl, a najlepiej 5-15 s/cykl, przy ilości cykli 5-30 i odstępie między cyklami 20 s - 5 minut.
Sposób według wynalazku prowadzi do uzyskania produktu w postaci powłoki stanowiącej układ kopolimer-inhibitor szlaku mTOR, korzystnie sirolimus lub ewerolimus, która po naniesieniu na polimerowy stent naczyniowy w sposób kontrolowany uwalnia lek do organizmu, przez co zwiększa skuteczność zapobiegania restenozie po zabiegach angioplastyki naczyniowej.
Dobór komonomerów w postaci węglanu trimetylenu i laktydu oraz wykorzystanie nietoksycznych związków cyrkonu jako inicjatora kopolimeryzacji umożliwia otrzymanie kopolimeru o bezładnej mikrostrukturze łańcucha, co zapewnia jego równomierną degradację i stabilne uwalnianie inhibitor szlaku mTOR po wszczepieniu do organizmu pacjenta. Ilość leku od 5 do 50% wagowych masy całkowitej kopolimeru zapewnia wymaganą kinetykę jego uwalniania i właściwe działanie antyproliferacyjne.
Odpowiedni dobór polimeru, leku oraz metody nanoszenia pokryć na stenty umożliwia uzyskanie kinetyki uwalniania leku, która obecnie uważana jest za najwłaściwszą i polega na szybszym uwalnianiu w pierwszym tygodniu, a następnie na równomiernym poziomie przez co najmniej miesiąc po implantacji
PL 236 142 B1 stentu. Ponadto, dobór polimeru i leku oraz metody nanoszenia pokryć opisany w sposobie według niniejszego wynalazku gwarantuje jednakowy profil uwalniania leku niezależny od grubości warstwy pokrywającej oraz ilości leku w matrycy. Dzięki temu wyeliminowano ryzyko niekontrolowanego uwalniania leku po wszczepieniu stentu, co w praktyce stanowi główną przyczynę niebezpiecznych powikłań. Jak wykazały badania in vitro, w pierwszych 3 dniach z powłoki w uzyskanej sposobem wg. niniejszego wynalazku uwalniane jest w zależności od zastosowanego układu 41-47% leku, a 69-79 % w czasie kolejnych 21 dni, po czym utrzymuje się na równomiernym poziomie przez co najmniej kolejny miesiąc, tym samym spełniając wymogi kliniczne wskazane m.in. w publikacji T.Z. Hu, J.L. Yang, I in. pt. “Controlled Slow-Release Drug-Eluting Stents for the Prevention of Coronary Restenosis: Recent Progress and Future Prospects”, Acs Appl Mater Inter, 7 (2015) 11695-11712.
Sposób według wynalazku pozwala na uzyskanie powłok o różnej grubości i zawartości leku. Jak wykazały przeprowadzone badania, mechanizm uwalniania leku nie zależy od grubości nałożonej na stent warstwy, co stanowi z technologicznego punktu widzenia dodatkową zaletę wynalazku.
Wytworzone sposobem wg wynalazku powłoki wykazują ponadto dobrą przyczepność i charakteryzuje je duża elastyczność. Nie ulegają one uszkodzeniu nawet przy dużych odkształceniach mechanicznych stentu.
Rozwiązanie według wynalazku przedstawiono poniżej w przykładach objaśniających realizację sposobu wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych. Przykładów tych nie należy jednak uważać za ograniczające istotę lub zawężające zakres ochrony, gdyż stanowią one jedynie ilustrację wynalazku.
Na rysunku przedstawiono wyniki badań kinetyki uwalniania sirolimusu w okresie 70 dni w warunkach in vitro, w temperaturze 37°C w soli fizjologicznej:
fig. 1 - z powłoki zawierającej 20% wagowych sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu), utworzonej z 2% (w/w) roztworu roboczego kopolimeru w chlorku metylenu zawierającego sirolimus, naniesionej na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm (oznaczonej jako 2%PLLA/TMC);
fig. 2 - z powłoki zawierającej 20% wagowych sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu), utworzonej z 1% (w/w) roztworu roboczego kopolimeru w chlorku metylenu zawierającego sirolimus, naniesionej na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm (oznaczonej jako 1%PLLA/TMC);
fig. 3 - z powłoki zawierającej 20% wagowych sirolimusu w stosunku do poli(D,L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu), utworzonej z 2% (w/w) roztworu roboczego kopolimeru w chlorku metylenu zawierającego sirolimus, naniesionej na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm (oznaczonej jako 2%PDLA/TMC);
fig. 4 - z powłoki zawierającej 20% wagowych sirolimusu w stosunku do poli(D,L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu), utworzonej z 1% (w/w) roztworu roboczego w chlorku metylenu zawierającego sirolimus, naniesionej na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydo-ko-glikolidu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm (oznaczonej jako 1%PDLA/TMC);
fig. 5 - z powłoki zawierającej 20% wagowych ewerolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-kowęglanu trimetylenu), utworzonej z 2% (w/w) roztworu roboczego w chlorku metylenu zawierającego ewerolimus, naniesionej na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm.
P r z y k ł a d 1
Najpierw wytworzono kopolimer w reakcji kopolimeryzacji z otwarciem pierścienia w stopie z 0,15 mola cyklicznego węglanu trimetylenu i 0,85 mola L-laktydu. Odmierzoną ilość komonomerów dodano do reaktora laboratoryjnego zaopatrzonego w mieszadło, króćce doprowadzające argon i podłączenie do membranowej pompy próżniowej. Zawartość stopiono w temperaturze 150°C, włączono mieszanie, podłączono pompę próżniową i oddestylowywano możliwe zanieczyszczenia przez 20 min. Po tym czasie wyłączono pompę, wprowadzono argon a następnie dodano 0,001 mola acetylacetonianu cyrkonu (IV). Reakcję kopolimeryzacji prowadzono w zakresie temperatur od 140°C do 160°C przez 48 godzin pod lekkim nadciśnieniem argonu. Po tym czasie gorący produkt rozpuszczono w chloroformie i niezwłocznie wytrącono z zimnego metanolu. Otrzymany precypitat suszono do stałej masy w warunkach podciśnienia 8-12 kPa w temperaturze 45°C, otrzymując czysty poli(L-laktyd-ko-weglan trimetylenu) o zawartości 83% mol. laktydylu z wydajnością 92% wagowych, o średniej liczbowo masie cząsteczkowej 48000 g/mol i średniej długości mikrobloków laktydylowych 2,5 jednostek laktydylowych.
Następnie odważono 0,266 g suchego poli(L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór sirolimusu otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0665 g sirolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 2% (w/w) roztwór roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający sirolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTL-OV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1500 mm/min., czasie zanurzenia 1 s i 1 cyklu zanurzania. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 1,8 gm i gęstości pokrycia 170 gg/cm2 , o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu). W końcowym etapie stent z powłoką poddano sterylizacji z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
Zbadano kinetykę uwalniania sirolimusu z powłoki w warunkach in vitro, w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C, mierząc uwalniane dobowe dawki leku. Uzyskane wyniki przedstawiono na fig. 1. Badania wykazały, że sirolimus uwalnia się po 1 dniu w ilości 35,9 %, po 3 dniach w ilości 50,3 %, a po 7 dniach w 62,6 %. Pozostała ilość leku uwalniała się równomiernie w okresie od 8 do 70 dni, ale już w mniejszej ilości.
P r z y k ł a d 2
Odważono 0,133 g suchego kopolimeru poli(L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) otrzymanego w przykładzie 1 i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór sirolimusu otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0332 g sirolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 1% (w/w) roztwór roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający sirolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli (L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTLOV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1500 mm/min., czasie zanurzenia 1 s i 1 cyklu zanurzania. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 1,6 gm i gęstości pokrycia 140 gg/cm2, o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu). W końcowym etapie stent z powłoką poddano sterylizacji z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
Zbadano kinetykę uwalniania sirolimusu z powłoki w warunkach in vitro, w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C, mierząc uwalniane dobowe dawki leku. Uzyskane wyniki przedstawiono na fig. 2. Badania wykazały, że sirolimus uwalnia się po 1 dniu w ilości 36,9%, po 3 dniach w ilości 44,3%, a po 7 dniach w 66,2%. Pozostała cześć leku uwalniała się równomiernie w okresie od 8 do 70 dni, w mniejszej ilości, przy czym po 70 dniach zaobserwowano prawie całkowite uwolnienie leku w ilości 97%.
P r z y k ł a d 3
W pierwszej kolejności wytworzono kopolimer w reakcji kopolimeryzacji z otwarciem pierścienia w stopie z 0,2 mola cyklicznego węglanu trimetylenu i 0,8 mola D,L-laktydu. Odmierzoną ilość komonomerów dodano do reaktora laboratoryjnego zaopatrzonego w mieszadło, króćce doprowadzające argon i podłączenie do membranowej pompy próżniowej. Zawartość stopiono w temperaturze 150°C, włączono mieszanie, podłączono pompę próżniową i oddestylowywano możliwe zanieczyszczenia przez 20 min. Po tym czasie wyłączono pompę, wprowadzono argon a następnie dodano 0,001 mola butanolanu cyrkonu (IV) Zr(CHsCH2CH2CH2O)4 w 2 ml toluenu. Zamknięto dopływ argonu i po podłączeniu pompy oddestylowano toluen. Ponownie wyłączono pompę i wprowadzono argon. Reakcję kopolimeryzacji prowadzono w zakresie temperatur od 150°C do 180°C przez 12 godzin pod lekkim nadciśnieniem argonu. Po tym czasie gorący produkt rozpuszczono w chloroformie i niezwłocznie wytrącono z zimnego metanolu. Otrzymany precypitat suszono do stałej masy w warunkach podciśnienia 8-12 kPa w temperaturze 45°C, otrzymując czysty poli(D,L-laktyd-ko-weglan trimetylenu) o zawartości 75% mol. laktydylu z wydajnością 89% wagowych, o średniej liczbowo masie cząsteczkowej 34000 g/mol i średniej długości mikrobloków laktydylowych 2,5 jednostek laktydylowych.
Następnie odważono 0,266 g suchego poli(D,L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór sirolimusu otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0665 g sirolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 2% (w/w) roztwór
PL 236 142 B1 roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający sirolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTL-OV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1500 mm/min., czasie zanurzenia 1 s i 1 cyklu zanurzania. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 8-10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 1,6 μm i gęstości pokrycia 120 μg/cm2, o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(D,L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu). W końcowym etapie stent z powłoką poddano sterylizacji z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
Zbadano kinetykę uwalniania sirolimusu z powłoki w warunkach in vitro, w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C, mierząc uwalniane dobowe dawki leku. Uzyskane wyniki przedstawiono na fig. 3. Badania wykazały, że sirolimus uwalnia się po 1 dniu w ilości 33,3%, po 3 dniach w ilości 47,3%, a po 7 dniach w 76,2%. Pozostała cześć leku uwalniała się równomiernie w okresie od 8 do 70 dni, w mniejszej ilości, przy czym po 70 dniach zaobserwowano prawie całkowite uwolnienie leku w ilości 97,6%.
P r z y k ł a d 4
Odważono 0,133 g suchego kopolimeru poli(D,L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) otrzymanego w przykładzie 3 i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór sirolimusu otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0332 g sirolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 1% (w/w) roztwór roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający sirolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydo-ko-glikolidu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTL-OV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1500 mm/min., czasie zanurzenia 1 s i 1 cyklu zanurzania. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 1,2 μm i gęstości pokrycia 100 μg/cm2, o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(D,L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu). W końcowym etapie stent z powłoką poddano sterylizacji z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
Zbadano kinetykę uwalniania sirolimusu z powłoki w warunkach in vitro, w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C, mierząc uwalniane dobowe dawki leku. Uzyskane wyniki przedstawiono na fig. 4. Badania wykazały, że sirolimus uwalnia się po 1 dniu w ilości 38,8 %, po 3 dniach w ilości 41,5%, a po 7 dniach w 66,9 %. Pozostała cześć leku uwalniała się równomiernie w okresie od 8 do 70 dni, w mniejszej ilości, przy czym po 70 dniach zaobserwowano prawie całkowite uwolnienie leku w ilości 98,4%.
P r z y k ł a d 5
Odważono 0,266 g suchego kopolimeru poli(L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) otrzymanego w przykładzie 1 i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór ewerolimusa otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0665 g ewerolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 2% (w/w) roztwór roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający ewerolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTLOV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1500 mm/min., czasie zanurzenia 1 s i 1 cyklu zanurzania. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 1,8 μm i gęstości pokrycia 170 μg/cm2, o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu). W końcowym etapie stent z powłoką poddano sterylizacji z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego. Zbadano kinetykę uwalniania ewerolimusu z powłoki w warunkach in vitro, w soli fizjologicznej w temperaturze 37°C, mierząc uwalniane dobowe dawki leku. Uzyskane wyniki przedstawiono na fig. 5. Badania wykazały, że po 21 dniach uwolnione zostało 75% ewerolimusu, a po 91 dniach 83,2%.
P r z y k ł a d 6
Najpierw wytworzono kopolimer w reakcji kopolimeryzacji z otwarciem pierścienia w stopie z 0,5 mola cyklicznego węglanu trimetylenu i 0,5 mola D,L-laktydu. Odmierzoną ilość komonomerów dodano do reaktora laboratoryjnego zaopatrzonego w mieszadło, króćce doprowadzające argon i podłączenie do membranowej pompy próżniowej. Zawartość stopiono w temperaturze 150°C, włączono mieszanie, podłączono pompę próżniową i oddestylowywano możliwe zanieczyszczenia przez 20 min. Po tym czasie wyłączono pompę, wprowadzono argon a następnie dodano 0,001 mola chlorku cyrkonu (IV) ZrCl4. Reakcję kopolimeryzacji prowadzono w zakresie temperatur od 110°C do 130°C przez 48 godzin pod lekkim nadciśnieniem argonu. Po tym czasie gorący produkt rozpuszczono w chloroformie i niezwłocznie wytrącono z zimnego metanolu. Otrzymany precypitat suszono do stałej masy w warunkach podciśnienia 8-12 kPa w temperaturze 45°C, otrzymując czysty poli(D,L-laktyd-ko-weglan trimetylenu) o zawartości 55% mol. laktydylu z wydajnością 92% wagowych, o średniej liczbowo masie cząsteczkowej 65000 g/mol i średniej długości mikrobloków laktydylowych 1,8 jednostek laktydylowych.
Następnie odważono 0,133 g suchego poli(D,L-laktydo-ko-węglano trimetylenu) i rozpuszczono w 9 ml chlorku metylenu, po czym dodano uprzednio przygotowany roztwór sirolimusu otrzymany poprzez rozpuszczenie 0,0332 g sirolimusu w 1 ml chlorku metylenu. Całość mieszano w szczelnie zamkniętej fiolce przez 1 godzinę z użyciem mieszadła magnetycznego. Otrzymano 1% (w/w) roztwór roboczy kopolimeru w chlorku metylenu zawierający sirolimus, który naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(tereftalanu butylu) o średnicy 4 mm i długości 20 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTL-OV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 400 mm/min., ilość cykli - 10, czas zanurzenia: pierwszy cykl 20 s, następne cykle 1 s, czas pomiędzy cyklami 20 s. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 2,6 pm i gęstości pokrycia 310 pg/cm2, o zawartości 40% sirolimusu w stosunku do poli(D,L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu).
P r z y k ł a d 7
Roztwór roboczy wytworzony w przykładzie 5 naniesiono na biodegradowalny polimerowy stent naczyniowy z poli(L-laktydu) o średnicy 4 mm i długości 30 mm. Roztwór naniesiono metodą zanurzeniową z wykorzystaniem urządzenia Dip Coater PTL-OV6P, MTI CORPORATION, przy szybkości zanurzania 1800 mm/min., czasie zanurzenia 2 s, stosując 3 identyczne cykle zanurzania, z zastosowaniem 4 minutowego czasu przerwy pomiędzy cyklami. Pokryte roztworem stenty suszono przez 48 godzin na powietrzu w temperaturze 25°C, a następnie przez 72 godziny w warunkach podciśnienia 10,5 kPa. Uzyskano jednorodne pokrycie całej powierzchni stentu o średniej grubości warstwy 2,5 pm i gęstości pokrycia około 290 pg/cm2, o zawartości 20% sirolimusu w stosunku do poli(L-laktydo-ko-węglanu trimetylenu).
Claims (5)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR, zwłaszcza sirolimusu lub ewerolimusu, na polimerowych stentach naczyniowych, w którym to sposobie na powierzchnię stentu nanosi się roztwór roboczy, zawierający kopolimer będący produktem procesu kopolimeryzacji komonomerów: L-laktydu lub D,L-laktydu i węglanu trimetylenu, przebiegającego na drodze otwarcia pierścienia, w stopie, w obecności inicjatora kopolimeryzacji, którym są związki cyrkonu (IV), znamienny tym, że kopolimer stanowiący składnik roztworu roboczego otrzymuje się przez ciągłe mieszanie komonomerów w postaci węglanu trimetylenu i laktydu w stosunku molowym w zakresie 0,15-0,6 mola węglanu trimetylenu i 0,4-0,85 mola laktydu w temperaturze 110-200°C, korzystnie 120-150°C, przez 6-96 godzin stosując jako inicjator reakcji kopolimeryzacji acetyloacetonian cyrkonu i/lub chlorek cyrkonu i/lub alkoholan cyrkonu o wzorze ogólnym Zr(OR)4, w którym R oznacza grupy alkilowe o ogólnym wzorze CnH2n+1, przy zachowaniu stosunku molowego sumy użytych komonomerów do inicjatora kopolimeryzacji w zakresie od 300:1 do 1200:1, po czym z tak uzyskanego kopolimeru poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu) o bezładnej mikrostrukturze łańcucha i średniej długości mikrobloków laktydylowych niższych od wartości 3,5 jednostek oraz o zawartości molowej laktydylu 10-90%, a korzystnie 75%, wytwarza się roztwór roboczy poprzez rozpuszczenie go w chlorku metylenu, oczyszcza i suszy w warunkach podciśnienia 8-12 kPa w temperaturze 20-60°C przez 48-80 godzin do uzyskania stałej masy, a następnie suchy kopolimer rozpuszcza się w chlorku metylenu, tak aby uzyskać roztwór o stężeniu 0,5-5,0 % wagowych, korzystnie 1-2% wagowych, dodaje doPL 236 142 B1 niego uprzednio przygotowany roztwór inhibitora szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w chlorku metylenu o stężeniu 1-13% wagowo-objętościowych i całość homogenizuje się, po czym roztwór roboczy zawierający poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu) oraz inhibitor szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w chlorku metylenu, nanosi się na polimerowy stent naczyniowy biostabilny lub biodegradowalny, w temperaturze 4-30°C, poprzez zanurzanie w nim stentu, przy ilości cykli 1- 50, z szybkością zanurzania 40-3000 mm/min, przez 0,1-30 s, a czas trwania zanurzenia/wynurzenia wynosi 0,2-50 s/cykl, po czym utworzoną powłokę o korzystnej grubości 0,8-5,0 gm, zawierającą po usunięciu rozpuszczalnika 5-40% wagowych zdyspergowanego w niej inhibitora szlaku mTOR, którym jest sirolimus lub ewerolimus, w stosunku do poli(laktydo-ko-węglan trimetylenu), a korzystnie 20-30% wagowych, suszy się, utwardza i na koniec sterylizuje, korzystnie z wykorzystaniem promieniowania jonizacyjnego.
- 2. Sposób, według zastrz. 1, znamienny tym, że naniesioną z roztworu roboczego na stent powłokę suszy się w temperaturze 25°C przez 48 godzin, a następnie w warunkach podciśnienia 8-12 kPa przez kolejne 72 godziny.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że roztwór roboczy nanosi się na polimerowy stent naczyniowy metodą zanurzeniową, z szybkością zanurzania 1000-3000 mm/min.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w przypadku nanoszenia roztworu roboczego na polimerowy stent naczyniowy wykonany z alifatycznych poliestrów, czas trwania zanurzenia wynosi 0,2-3 s/cykl, a najlepiej 1-3 s/cykl, przy ilości cykli 1-4 i odstępie między cyklami 5-10 minut.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w przypadku nanoszenia roztworu roboczego na polimerowy stent naczyniowy wykonany poli(tereftalanu etylenu), czas trwania zanurzenia/wynurzenia wynosi 5-30 s/cykl, a najlepiej 5-15 s/cykl, przy ilości cykli 5-30 i odstępie między cyklami 20 s-5 minut.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL420021A PL236142B1 (pl) | 2016-12-29 | 2016-12-29 | Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL420021A PL236142B1 (pl) | 2016-12-29 | 2016-12-29 | Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL420021A1 PL420021A1 (pl) | 2018-07-02 |
| PL236142B1 true PL236142B1 (pl) | 2020-12-14 |
Family
ID=62705281
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL420021A PL236142B1 (pl) | 2016-12-29 | 2016-12-29 | Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL236142B1 (pl) |
-
2016
- 2016-12-29 PL PL420021A patent/PL236142B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL420021A1 (pl) | 2018-07-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP2291431B1 (en) | Bio-degradable block co-polymers for controlled release | |
| EP1808167B1 (en) | Drug-eluting articles with improved drug release profiles | |
| EP1549276B1 (en) | Drug eluting coatings for medical implants | |
| US20060198868A1 (en) | Biodegradable coating compositions comprising blends | |
| US20060147491A1 (en) | Biodegradable coating compositions including multiple layers | |
| ES2400252T3 (es) | Copolímeros tribloque biodegradables para dispositivos implantables | |
| US20090232863A1 (en) | Biodegradable Carbon Diazeniumdiolate Based Nitric Oxide Donating Polymers | |
| US20100119578A1 (en) | Extracellular matrix modulating coatings for medical devices | |
| US7264822B2 (en) | Conjugated drug-polymer coated stent | |
| KR101406121B1 (ko) | 전기-접합된 프라이머 코팅을 가지는 생분해성 용출 층을 가지는 약물 용출 스텐트 | |
| US20070288088A1 (en) | Drug eluting stent with a biodegradable release layer attached with an electro-grafted primer coating | |
| EA011822B1 (ru) | Медицинский продукт, покрытый биологически стабильным полисульфоновым слоем, и способ нанесения покрытия | |
| US20050064006A1 (en) | Stents | |
| US20160074562A1 (en) | Drug eluting stent with a biodegradable release layer attached with electro-grafted primer coating | |
| PL236142B1 (pl) | Sposób wytwarzania z układu kopolimer-inhibitor szlaku mTOR powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania inhibitora szlaku mTOR na polimerowych stentach naczyniowych | |
| CN108338989B (zh) | 冠脉药物洗脱支架的复合抗再狭窄药物及其控释系统 | |
| ES2458225T3 (es) | Revestimientos para dispositivos implantables que comprenden polímeros de ácido láctico y métodos para fabricar los mismos | |
| PL232131B1 (pl) | Sposób wytwarzania układu kopolimer-paklitaksel, przeznaczonego do pokrywania polimerowych stentów naczyniowych i zastosowanie układu kopolimer-paklitaksel do wytwarzania powłoki o kontrolowanej kinetyce uwalniania paklitakselu na polimerowych stentach naczyniowych | |
| HK1221918B (en) | Mtor inhibitor eluting medical device |