PL207835B1 - Sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych oraz wzrostu populacji mięczaków w systemach wodnych - Google Patents
Sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych oraz wzrostu populacji mięczaków w systemach wodnychInfo
- Publication number
- PL207835B1 PL207835B1 PL361808A PL36180801A PL207835B1 PL 207835 B1 PL207835 B1 PL 207835B1 PL 361808 A PL361808 A PL 361808A PL 36180801 A PL36180801 A PL 36180801A PL 207835 B1 PL207835 B1 PL 207835B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- water
- methyl
- chemical compound
- population
- aquatic
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 33
- 230000008635 plant growth Effects 0.000 title 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 53
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims abstract description 33
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 claims abstract description 32
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 15
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims abstract description 11
- KETQAJRQOHHATG-UHFFFAOYSA-N 1,2-naphthoquinone Chemical class C1=CC=C2C(=O)C(=O)C=CC2=C1 KETQAJRQOHHATG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 22
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 claims description 12
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 claims description 12
- 125000004435 hydrogen atom Chemical group [H]* 0.000 claims description 12
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 10
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 claims description 8
- -1 chloro, acetonyl Chemical group 0.000 claims description 6
- MJVAVZPDRWSRRC-UHFFFAOYSA-N Menadione Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C(C)=CC(=O)C2=C1 MJVAVZPDRWSRRC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N Plumbagin Natural products C1=CC=C2C(=O)C(C)=CC(=O)C2=C1O VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- FRASJONUBLZVQX-UHFFFAOYSA-N 1,4-naphthoquinone Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C=CC(=O)C2=C1 FRASJONUBLZVQX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 4
- 125000001844 prenyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])=C(C([H])([H])[H])C([H])([H])[H] 0.000 claims description 4
- 230000009471 action Effects 0.000 claims description 3
- 125000001539 acetonyl group Chemical group [H]C([H])([H])C(=O)C([H])([H])* 0.000 claims description 2
- 125000001309 chloro group Chemical group Cl* 0.000 claims description 2
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 claims description 2
- 125000000956 methoxy group Chemical group [H]C([H])([H])O* 0.000 claims description 2
- WBHQBSYUUJJSRZ-UHFFFAOYSA-M sodium bisulfate Chemical compound [Na+].OS([O-])(=O)=O WBHQBSYUUJJSRZ-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 229910000342 sodium bisulfate Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 229940041603 vitamin k 3 Drugs 0.000 claims description 2
- YFXUVNYTWHTQNF-UHFFFAOYSA-N naphthalene-1,4-dione;sodium Chemical compound [Na].C1=CC=C2C(=O)C=CC(=O)C2=C1 YFXUVNYTWHTQNF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 abstract description 32
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 abstract description 32
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 abstract description 8
- AZQWKYJCGOJGHM-UHFFFAOYSA-N 1,4-benzoquinone Chemical compound O=C1C=CC(=O)C=C1 AZQWKYJCGOJGHM-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 7
- 150000004053 quinones Chemical class 0.000 abstract description 3
- 150000004056 anthraquinones Chemical class 0.000 abstract description 2
- LOUPRKONTZGTKE-WZBLMQSHSA-N Quinine Chemical compound C([C@H]([C@H](C1)C=C)C2)C[N@@]1[C@@H]2[C@H](O)C1=CC=NC2=CC=C(OC)C=C21 LOUPRKONTZGTKE-WZBLMQSHSA-N 0.000 abstract 2
- KEQHJBNSCLWCAE-UHFFFAOYSA-N thymoquinone Chemical compound CC(C)C1=CC(=O)C(C)=CC1=O KEQHJBNSCLWCAE-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 2
- 235000001258 Cinchona calisaya Nutrition 0.000 abstract 1
- GIIGAFADHXYOPM-UHFFFAOYSA-N amphotalide Chemical compound C1=CC(N)=CC=C1OCCCCCN1C(=O)C2=CC=CC=C2C1=O GIIGAFADHXYOPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- 229950008495 amphotalide Drugs 0.000 abstract 1
- ZYGHJZDHTFUPRJ-UHFFFAOYSA-N benzo-alpha-pyrone Natural products C1=CC=C2OC(=O)C=CC2=C1 ZYGHJZDHTFUPRJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- LOUPRKONTZGTKE-UHFFFAOYSA-N cinchonine Natural products C1C(C(C2)C=C)CCN2C1C(O)C1=CC=NC2=CC=C(OC)C=C21 LOUPRKONTZGTKE-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- 235000001671 coumarin Nutrition 0.000 abstract 1
- 150000004775 coumarins Chemical class 0.000 abstract 1
- SXWPCWBFJXDMAI-UHFFFAOYSA-L disodium;3,4,5,6-tetraoxocyclohexene-1,2-diolate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C1=C([O-])C(=O)C(=O)C(=O)C1=O SXWPCWBFJXDMAI-UHFFFAOYSA-L 0.000 abstract 1
- 229960000948 quinine Drugs 0.000 abstract 1
- PJVWKTKQMONHTI-UHFFFAOYSA-N warfarin Chemical compound OC=1C2=CC=CC=C2OC(=O)C=1C(CC(=O)C)C1=CC=CC=C1 PJVWKTKQMONHTI-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- 229960005080 warfarin Drugs 0.000 abstract 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 26
- 241001501873 Isochrysis galbana Species 0.000 description 15
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 12
- 241000894007 species Species 0.000 description 12
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 11
- 241000015682 Eurytemora affinis Species 0.000 description 10
- 241000237536 Mytilus edulis Species 0.000 description 10
- 235000020638 mussel Nutrition 0.000 description 10
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 description 9
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 9
- 241000237858 Gastropoda Species 0.000 description 8
- 239000003643 water by type Substances 0.000 description 8
- 208000031513 cyst Diseases 0.000 description 6
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 6
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 6
- 241001672739 Artemia salina Species 0.000 description 5
- ATNHDLDRLWWWCB-AENOIHSZSA-M chlorophyll a Chemical compound C1([C@@H](C(=O)OC)C(=O)C2=C3C)=C2N2C3=CC(C(CC)=C3C)=[N+]4C3=CC3=C(C=C)C(C)=C5N3[Mg-2]42[N+]2=C1[C@@H](CCC(=O)OC\C=C(/C)CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)[C@H](C)C2=C5 ATNHDLDRLWWWCB-AENOIHSZSA-M 0.000 description 5
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 5
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 5
- 230000012447 hatching Effects 0.000 description 5
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 5
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 4
- 241000238424 Crustacea Species 0.000 description 4
- 241000237502 Ostreidae Species 0.000 description 4
- 229930002875 chlorophyll Natural products 0.000 description 4
- 235000019804 chlorophyll Nutrition 0.000 description 4
- 235000020639 clam Nutrition 0.000 description 4
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 4
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 description 4
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 4
- 235000020636 oyster Nutrition 0.000 description 4
- 241000239250 Copepoda Species 0.000 description 3
- 241000199914 Dinophyceae Species 0.000 description 3
- 241000193901 Dreissena polymorpha Species 0.000 description 3
- 241000283070 Equus zebra Species 0.000 description 3
- 241000208822 Lactuca Species 0.000 description 3
- 235000003228 Lactuca sativa Nutrition 0.000 description 3
- 241000195644 Neochloris Species 0.000 description 3
- 238000004166 bioassay Methods 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 3
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 3
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 3
- BTLXPCBPYBNQNR-UHFFFAOYSA-N 1-hydroxyanthraquinone Chemical compound O=C1C2=CC=CC=C2C(=O)C2=C1C=CC=C2O BTLXPCBPYBNQNR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000534669 Albula vulpes Species 0.000 description 2
- 241000238582 Artemia Species 0.000 description 2
- 241000238017 Astacoidea Species 0.000 description 2
- 241000237519 Bivalvia Species 0.000 description 2
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 241000206751 Chrysophyceae Species 0.000 description 2
- 241000192701 Microcystis Species 0.000 description 2
- 241000237852 Mollusca Species 0.000 description 2
- 241000295697 Pimephales promelas Species 0.000 description 2
- 241000242594 Platyhelminthes Species 0.000 description 2
- 241000243142 Porifera Species 0.000 description 2
- 208000002474 Tinea Diseases 0.000 description 2
- 241000893966 Trichophyton verrucosum Species 0.000 description 2
- UIXPTCZPFCVOQF-UHFFFAOYSA-N Ubiquinone-O Natural products COC1=C(OC)C(=O)C(C)=CC1=O UIXPTCZPFCVOQF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 2
- RGCKGOZRHPZPFP-UHFFFAOYSA-N alizarin Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C3=C(O)C(O)=CC=C3C(=O)C2=C1 RGCKGOZRHPZPFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 239000003653 coastal water Substances 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 2
- 230000002431 foraging effect Effects 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 2
- 239000008239 natural water Substances 0.000 description 2
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 description 2
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 2
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 2
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 2
- ZVALGBPJYGUWIS-UHFFFAOYSA-N 1,4-dihydroanthracene-9,10-dione Chemical class O=C1C2=CC=CC=C2C(=O)C2=C1CC=CC2 ZVALGBPJYGUWIS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ICFIZJQGJAJRSU-UHFFFAOYSA-N 2,3-Dimethoxy-5-methyl-6-<3,7,11,15,19,23,27,31-octamethyl-dotriacontaoctaen-(2,6,10,14,18,22,26,30)-yl>benzochinon Natural products COC1=C(OC)C(=O)C(CC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)CCC=C(C)C)=C(C)C1=O ICFIZJQGJAJRSU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000200031 Alexandrium Species 0.000 description 1
- 241000009355 Antron Species 0.000 description 1
- 241001302555 Bythotrephes Species 0.000 description 1
- 241000235847 Bythotrephes cederstroemi Species 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000195649 Chlorella <Chlorellales> Species 0.000 description 1
- 241000195651 Chlorella sp. Species 0.000 description 1
- 206010008631 Cholera Diseases 0.000 description 1
- 241000192700 Cyanobacteria Species 0.000 description 1
- 238000001061 Dunnett's test Methods 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 241000924360 Glenodinium Species 0.000 description 1
- 241000200139 Gonyaulax Species 0.000 description 1
- 241000582055 Gymnocephalus cernua Species 0.000 description 1
- 241000200287 Gymnodinium Species 0.000 description 1
- 240000005979 Hordeum vulgare Species 0.000 description 1
- 235000007340 Hordeum vulgare Nutrition 0.000 description 1
- WIQMWNKYSYJIQG-UHFFFAOYSA-N Juglon Natural products C1=CC(O)=C2C(=O)C(OC)=C(C)C(=O)C2=C1 WIQMWNKYSYJIQG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000594009 Phoxinus phoxinus Species 0.000 description 1
- 241000276498 Pollachius virens Species 0.000 description 1
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 1
- 241000200248 Prorocentrum Species 0.000 description 1
- 241001531268 Prorocentrum minimum Species 0.000 description 1
- OBLNWSCLAYSJJR-UHFFFAOYSA-N Quinoclamin Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C(N)=C(Cl)C(=O)C2=C1 OBLNWSCLAYSJJR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 description 1
- 241000607626 Vibrio cholerae Species 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- PYKYMHQGRFAEBM-UHFFFAOYSA-N anthraquinone Natural products CCC(=O)c1c(O)c2C(=O)C3C(C=CC=C3O)C(=O)c2cc1CC(=O)OC PYKYMHQGRFAEBM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000000840 anti-viral effect Effects 0.000 description 1
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 1
- 230000008033 biological extinction Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 244000144987 brood Species 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000010216 calcium carbonate Nutrition 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 229930002868 chlorophyll a Natural products 0.000 description 1
- 229930002869 chlorophyll b Natural products 0.000 description 1
- NSMUHPMZFPKNMZ-VBYMZDBQSA-M chlorophyll b Chemical compound C1([C@@H](C(=O)OC)C(=O)C2=C3C)=C2N2C3=CC(C(CC)=C3C=O)=[N+]4C3=CC3=C(C=C)C(C)=C5N3[Mg-2]42[N+]2=C1[C@@H](CCC(=O)OC\C=C(/C)CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)[C@H](C)C2=C5 NSMUHPMZFPKNMZ-VBYMZDBQSA-M 0.000 description 1
- 210000003763 chloroplast Anatomy 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000000295 emission spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000001317 epifluorescence microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 230000003203 everyday effect Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000035558 fertility Effects 0.000 description 1
- 238000005558 fluorometry Methods 0.000 description 1
- 235000020803 food preference Nutrition 0.000 description 1
- 239000013505 freshwater Substances 0.000 description 1
- 230000000855 fungicidal effect Effects 0.000 description 1
- 230000002496 gastric effect Effects 0.000 description 1
- 210000002149 gonad Anatomy 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- KQSBZNJFKWOQQK-UHFFFAOYSA-N hystazarin Natural products O=C1C2=CC=CC=C2C(=O)C2=C1C=C(O)C(O)=C2 KQSBZNJFKWOQQK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 239000000543 intermediate Substances 0.000 description 1
- YWXYYJSYQOXTPL-SLPGGIOYSA-N isosorbide mononitrate Chemical compound [O-][N+](=O)O[C@@H]1CO[C@@H]2[C@@H](O)CO[C@@H]21 YWXYYJSYQOXTPL-SLPGGIOYSA-N 0.000 description 1
- KQPYUDDGWXQXHS-UHFFFAOYSA-N juglone Chemical compound O=C1C=CC(=O)C2=C1C=CC=C2O KQPYUDDGWXQXHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000033001 locomotion Effects 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 238000007431 microscopic evaluation Methods 0.000 description 1
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 1
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000002085 persistent effect Effects 0.000 description 1
- 230000000243 photosynthetic effect Effects 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 229920005668 polycarbonate resin Polymers 0.000 description 1
- 239000004431 polycarbonate resin Substances 0.000 description 1
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 239000010453 quartz Substances 0.000 description 1
- 150000004059 quinone derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000009877 rendering Methods 0.000 description 1
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 235000015170 shellfish Nutrition 0.000 description 1
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N silicon dioxide Inorganic materials O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 229940001584 sodium metabisulfite Drugs 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 231100000048 toxicity data Toxicity 0.000 description 1
- 231100000041 toxicology testing Toxicity 0.000 description 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 1
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 1
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 1
- ICFIZJQGJAJRSU-SGHXUWJISA-N ubiquinone-8 Chemical compound COC1=C(OC)C(=O)C(C\C=C(/C)CC\C=C(/C)CC\C=C(/C)CC\C=C(/C)CC\C=C(/C)CC\C=C(/C)CC\C=C(/C)CCC=C(C)C)=C(C)C1=O ICFIZJQGJAJRSU-SGHXUWJISA-N 0.000 description 1
- 238000004506 ultrasonic cleaning Methods 0.000 description 1
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N35/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having two bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. aldehyde radical
- A01N35/06—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having two bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. aldehyde radical containing keto or thioketo groups as part of a ring, e.g. cyclohexanone, quinone; Derivatives thereof, e.g. ketals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N37/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids
- A01N37/18—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids containing the group —CO—N<, e.g. carboxylic acid amides or imides; Thio analogues thereof
- A01N37/32—Cyclic imides of polybasic carboxylic acids or thio analogues thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N43/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
- A01N43/02—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms
- A01N43/04—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom
- A01N43/14—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom six-membered rings
- A01N43/16—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom six-membered rings with oxygen as the ring hetero atom
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N43/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
- A01N43/90—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having two or more relevant hetero rings, condensed among themselves or with a common carbocyclic ring system
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F1/00—Treatment of water, waste water, or sewage
- C02F1/50—Treatment of water, waste water, or sewage by addition or application of a germicide or by oligodynamic treatment
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F2103/00—Nature of the water, waste water, sewage or sludge to be treated
- C02F2103/008—Originating from marine vessels, ships and boats, e.g. bilge water or ballast water
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F2303/00—Specific treatment goals
- C02F2303/04—Disinfection
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Dentistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Agronomy & Crop Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Hydrology & Water Resources (AREA)
- Environmental & Geological Engineering (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
- Catching Or Destruction (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiot wynalazku dotyczy sposobu i zestawu składników do kontroli wzrostu populacji szkodników wodnych, zarówno organizmów zwierzęcych jak i roślinnych. Wynalazek przedstawia sposób i preparaty do kontroli, zahamowania oraz likwidowania populacji wodnych i morskich szkodliwych organizmów roślinnych i zwierzęcych w docelowej strefie działania. Wynalazek jest szczególnie przydatny do sterylizacji wody zawierającej mięczaki, wiciowce, bakterie i glony.
Odkrycie latem 1988 roku euroazjatyckiej małży pręgowatej Dressiness polymorph w Wielkich Jeziorach Ameryki Północnej jest jednym z najbardziej znaczących wydarzeń w historii wodnej inwazji biologicznej. Nie jest to jednak pierwszy przypadek zasiedlenia nie miejscowego gatunku w wodach Stanów Zjednoczonych. Wcześniej Bythotrephes cedarstroemi i Gymnocephalus cernuus przybyły do wód Stanów Zjednoczonych poprzez wody balastowe z europejskich portów. Wkrótce odkryto, że małża pręgowata również przybyła do Stanów Zjednoczonych poprzez wody balastowe pochodzące z Europy.
Od lata 1988 roku przybyło do Stanów Zjednoczonych już kilka wodnych gatunków poprzez wody balastowe pobierane z portów w innych krajach. Szacuje się, że kilkaset organizmów zostało wprowadzonych do Stanów Zjednoczonych poprzez wody balastowe i/lub na drodze innych mechanizmów, nie tylko ograniczonych do mechanizmów związanych z rybołówstwem lub sprawami związanymi z oceanem lub wybrzeż em. Jak widać spójność wód przybrzeż nych Stanów Zjednoczonych i dorzecze Wielkich Jezior zagrożone są przez zwiększającą się liczbę gatunków wodnych pochodzących z innych krajów. Jako jedną z głównych dróg, którymi organizmy zasiedlają wody Stanów Zjednoczonych należy wymienić wodę balastową statków.
Woda balastowa zawiera zarówno wodę słodką jak i słoną, które są pompowane do jednostki pływającej w celu polepszenia jej zdolności manewrowej, zanurzenia oraz stabilności. Woda użyta jako balast może zostać pobrana w różnych miejscach podczas podróży m.in. w porcie wyjściowym lub docelowym.
Ryzyko inwazji poprzez wody balastowe wzrosło znacząco w ciągu ostatnich 20 lat z powodu użycia większych jednostek pływających używanych do transportu większych ilości materiałów do i ze Stanów Zjednoczonych. Ocenia się, że dziennie dookoła świata transportowane jest pomiędzy 3000 a 10.000 gatunków roślin i zwierząt. W odniesieniu do tych danych należy przypomnieć, że przywożone do Stanów Zjednoczonych materiały, które zawierają zwierzęta, owoce, warzywa, itp. muszą zostać sprawdzone przez Wydział Rolnictwa w celu spełnienia standardów, które zabezpieczają przed wnikaniem nie miejscowych, potencjalnie szkodliwych, gatunków. Statek natomiast jest w stanie uwalniać wodę balastową, która jest zanieczyszczona gatunkami nie miejscowymi. Tym sposobem kilkaset gatunków zostało wprowadzonych do Stanów Zjednoczonych.
Jak już wspomniano powyżej, jednym z najczęstszych gatunków wprowadzonych do obszaru Wielkich Jezior Ameryki Północnej jest euroazjatycka małża pręgowata Dreissena polymorpha, która stała się głównym zagrożeniem dla dostaw wody w głębi lądu zarówno ze względów rekreacyjnych jak i komercyjnych. Niestety zakres jej wystę powania rozcią ga się obecnie od Wielkich Jezior do Luizjany i szacowane straty ekonomiczne są oceniane na ponad 4 miliardy dolarów za rok kalendarzowy 1999. Gatunek ten jest szczególnie płodny i samica zdolna do reprodukcji może wydać ponad 40.000 płodnych jaj w czasie jednego sezonu, osobniki te po wykluciu mogą tworzyć kolonie i występować w liczbie 100.000 na metrze kwadratowym. Ponadto kolonie przywierają do podwodnych konstrukcji takich jak rury pobierające wodę, przez które mogą łatwo zostać rozsiane do innych środowisk, kadłubów statków, rumowisk jak składowiska zużytych opon samochodowych, zatopione statki i wyrzucone metalowe walce. Kolonie po przytwierdzeniu mogą osiągać do 20 cm grubości.
Jednym ze szczególnych problemów jest zatykanie rur pobierających wodę przez małże pręgowatą, co ma niszczący wpływ na niektóre gałęzie przemysłu, zwłaszcza w przypadkach takich jak elektrownie, gdzie konieczne jest zabezpieczenie ciągłej, bezpiecznej dostawy wody. Niektóre elektrownie zanotowały redukcję przepływu wody dochodzącą po inwazji nawet do 50%. Znane są negatywne rezultaty oddziaływania inwazji małży pręgowatej na środowisko naturalne. Skutki te możemy podzielić na pośrednie i bezpośrednie. Do bezpośrednich możemy zaliczyć efekt, jaki wywiera na fitoplankton. Małża pręgowata żeruje na fitoplanktonie, który jest źródłem pokarmu dla ryb, szczególnie w jeziorach i stawach, dlatego też zwiększa się wydajność fotosyntetyczna dla pozostałych gatunków roślinnych z powodu zwiększonej przejrzystości wody. Jak się okazało ma to dramatyczny wpływ na przepływ energii i łańcuchy pokarmowe w niektórych wodach. Niektóre gatunki ryb, takie jak mintaj stają się zagrożone wyginięciem. W wyniku preferencji pokarmowych małża pręgowata może radykalnie
PL 207 835 B1 zaburzyć układ gatunków alg i w ten sposób potencjalnie szkodliwe gatunki mogą stać się licznymi. Przykładem jest Microcystis, który jest niebiesko-zielonym glonem o małej wartości odżywczej, zdolnym do produkcji toksyn wywołujących u ludzi problemy żołądkowo-jelitowe. Są doniesienia o zakwitach Microcystis w Jeziorze Erie i przyległych zbiornikach wodnych. Toksyczne wiciowce takie jak Prorocentrum, Gymnodinium, Alexandrium i Gonyaulax często zakwitają i są znane w wielu częściach świata jako czerwone przypływy. Poza wywoływaniem poważnych dolegliwości u wielu konsumentów należących do kręgowców, również u ludzi, wiele z tych organizmów ma niszczący wpływ na gałęzie przemysłu związane ze skorupiakami w wielu państwach świata i obecnie wiadome jest, że wyrzucanie wody balastowej w wielu wypadkach jest za to odpowiedzialne.
Doniesiono o przypadkach wprowadzenia bakterii cholery, Vibrio cholera, do wód przybrzeżnych Stanów Zjednoczonych. Stało się to możliwe dzięki obecności planktonicznego skorupiakowego nosiciela w wodach balastowych, którego przyniesiono tam z portów Ameryki Południowej. Tam z kolei przywędrował z Europy w analogiczny sposób.
Proponowano liczne sposoby i zestawy składników w celu kontroli i zahamowania wzrostu różnych morskich roślin i zwierząt. W szczególności dużo zestawów składników zaproponowano w celu traktowania wód i skażonych małżą pręgowatą. Znane ze stanu techniki różne zestawy składników dla tego celu opisano w opisach patentowych nr US 5,851,408, US 5,160,047, US 5,900,157 oraz US 5,851,408. Znany sposób unieszkodliwiania różnych szkodników wodnych innych niż toksyczne bakterie przedstawiono w opisie zgłoszenia międzynarodowego nr WO 00/56140. Zaproponowano tu użycie juglonu lub jego analogów.
Te znane zestawy składników i sposoby, mimo że w pewnym stopniu skuteczne, nie były w stanie całkowicie wyeliminować wprowadzania roślin morskich i zwierząt do dróg wodnych. W związku z tym istnieje cią gła potrzeba ulepszania kontroli populacji szkodników wodnych w postaci roślinnej i zwierzęcej, które mogą być obecne w wodzie i są podatne na migrację geograficzną poprzez pobieranie wody, prądy lub pływy.
W rozwią zaniach znanych ze stanu techniki proponowano wykorzystanie do tego celu pochodnych antrachinonu, na przykład w opisie patentowym USA nr US 3947594 wykorzystano do tego celu 1-hydroksyantrachinon. W innym rozwiązaniu znanym z opisu patentowego nr EP 454058 zaproponowano wykorzystanie 1,2-dihydroksyantrachinonu, posiadającego własności antywirusowe. W kolejnym rozwiązaniu znanym z opisu patentowego USA nr 3558787 zaproponowano wykorzystanie 1,4 dihydro-9,10-antrachinonów, gdzie stwierdzono ich aktywność grzybobójczą. W innym rozwiązaniu znanym z opisu patentowego francuskiego nr FR 2588442 przewidziano wykorzystanie aminochloronaftochinonu przeciwko nadmiernemu wzrostowi populacji alg. Wreszcie w rozwiązaniu znanym z opisu patentowego USA nr US 4092433 przewidziano wykorzystanie benzochinonu do ograniczenia wzrostu populacji mięczaków. W rozwiązaniu przedstawionym w opisie patentowym japońskim nr JP 2004701 również zaproponowano wykorzystanie do tego celu pochodnych chinonu. Znane jest także wykorzystanie ubichinonu-8 dla celów bakteriobójczych.
Według wynalazku, sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych, polega na tym, że poddaje się populację organicznych szkodników w zbiorniku wodnym działaniu roztworu wodnego co najmniej jednego związku chemicznego niszczącego życie organiczne.
Sposób według wynalazku charakteryzuje się tym, że jako związki chemiczne niszczące życie organicznych szkodników w zbiornikach wodnych, stosuje się związki z grupy naftalenodionów o wzorze:
gdzie:
R1 oznacza grupę wodorową, lub metylową;
PL 207 835 B1
R2 jest grupą wodorową, metylową, chlorową, acetonylową, 3-metylo-2-butenylową lub 2-oxopropylową;
R3 jest grupą wodorową, metylową, chlorową lub 3-metylo-2 butenylową;
R4 oznacza grupę wodorową lub metoksylową;
R5 oznacza grupę wodorową lub metylową;
R6 oznacza grupę wodorową lub hydroksylową, oraz pochodne tych związków z wodorosiarczanem sodu.
Według wynalazku można stosować związek chemiczny z grupy zawierającej 1,4-naftalenodion i/lub 2-metyl-5-hydroksy-1,4-naftalenodion, i/lub 2-metyl-1,4-naftalenodion, i/lub 2-metyl-2-metawodorosiarczan sodu-1,4-naftalenodion, i/lub 6,8-dwuhydroksy-benzochinon, i/lub 2,7-dwumetylo-1-4-naftalenodion.
Zgodnie z wynalazkiem przewidziano, że związek chemiczny stosuje się w wodzie w ilości mniejszej niż 1% wagowo. Poniżej wskazano korzystne przedziały zawartości przedmiotowych związków.
Związek chemiczny stosuje się w wodzie w ilości od 100 ppb do 500 ppm. W innym korzystnym rozwiązaniu związek chemiczny stosuje się w wodzie w ilości od 500 ppb do 300 ppm. W dalszym rozwinięciu wynalazku przewidziano, że związek chemiczny stosuje się w wodzie w ilości od 1 ppb do 200 ppm.
Według wynalazku, populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres co najmniej jednej godziny. Stwierdzono, że w szeregu przypadkach ten okres czasu jest wystarczający dla oczyszczenia wody przy przedstawionych wyżej korzystnych stężeniach związku chemicznego.
Jednakże w szeregu przypadkach populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres od 1 do 96 godzin. W wymienionym zakresie czasowym, w szeregu przypadkach populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres od 2 do 48 godzin.
Według wynalazku, działaniu roztworu związku chemicznego można poddawać docelową populację wodnych organizmów szkodnikowych zawierającą zarówno organizmy zwierzęce jak i organizmy roślinne.
Według wynalazku przewidziano także, że docelową populację wodnych organizmów szkodnikowych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego najkorzystniej w zamkniętym zbiorniku wodnym. Zamknięty zbiornik wodny stanowi zbiornik wody balastowej na jednostce pływającej. Dzięki przeprowadzeniu operacji unieszkodliwiania wymienionych wodnych organizmów szkodnikowych w zbiorniku wody balastowej, unika się możliwości zakażenia akwenu, przy operacji opróżniania tego rodzaju zbiorników.
Działaniu przedstawionego wyżej roztworu związku chemicznego poddaje się docelową grupę szkodnikowych mikroorganizmów. Opisany roztwór związku chemicznego okazał się być skuteczny w odniesieniu do organizmów wodnych w postaci wirusów, protistów, grzybów, organizmów holoplanktonicznych, organizmów meroplanktonicznych, pleśni, roślin, organizmów dennych, organizmów przydennych, pływających odłączonych fauny i flory, bakterii, cyst bakteryjnych, pierwotniaków, glonów, Pyrrophyta, Cryptophyta, Chrysophyta, gąbek, płazińców, Pseudocelomates, robaków pierścieniowych, małży, Bivalves, larwalnych form skorupiaków, widłonogów, Mysids, Gammarids, larwalnych form raków i larwalnych form ryb kostnych. Dział aniu roztworu zwi ą zku chemicznego wedł ug wynalazku poddaje się także populację szkodnikowych mikroorganizmów wodnych z grupy wirusów, protistów, organizmów holoplanktonicznych i organizmów mero planktonicznych, ale także populację szkodnikowych mikroorganizmów wodnych z grupy organizmów dennych, organizmów przydennych, pływających odłączonych faun i flor, bakterii, cyst bakteryjnych, pierwotniaków. Działaniu roztworu związku chemicznego poddaje się także populację wodnych organizmów szkodnikowych z grupy składającej się z glonów, Pyrrophyta, Cryptophyta, Chrysophyta, gąbek, płazińców, Pseudocelomates, robaków pierścieniowych, małży, Bivalves, larwalnych form skorupiaków widłonogów, Ostracods, Mysids, Gammarids, larwalnych form raków i larwalnych form ryb kostnych, ale także można roztwór związku chemicznego zastosować do ograniczania populacji organizmów szkodnikowych z grupy Bythotrephes cederstroemi oraz bakterii. Jak to stwierdzono, skutecznemu działaniu roztworu związku chemicznego można także poddać docelową populację wodnych organizmów szkodnikowych z grupy bakterii, pierwotniaków, glonów, wiciowców, cyst wiciowców, małży pręgowatej i jej larw, ale także mieszaną
PL 207 835 B1 populację wodnych organizmów szkodnikowych z różnych grup organizmów szkodnikowych, w tym populację wodnych organizmów szkodnikowych zawierającą zarówno organizmy zwierzęce jak i organizmy roślinne.
Roztwory wodne związków chemicznych ujawnione w opisie wynalazku są niespodziewanie efektywne w bardzo małych stężeniach przy ograniczaniu wzrostu lub przy unieszkodliwianiu populacji organizmów szkodników wodnych. Typowymi organizmami tego rodzaju są organizmy małych szkodników i mikroorganizmy przeniesione poprzez ruch otaczającej je wody, np. prądy, pływy i pobór wody w portach. Kiedy roztwór wodny związku chemicznego pozostaje w kontakcie z wymienionymi organizmami przez określony przedział czasu od kilku godzin do kilku dni, populacja docelowa zostaje zniszczona. Następnie wskazane związki chemiczne zostają rozłożone przez światło ultrafioletowe, utlenianie, hydrolizę i inne naturalne mechanizmy w łagodne półprodukty, które umożliwiają powtórne wykorzystanie wody.
Przedmiot wynalazku przedstawiony został poniżej w przykładach wykonania. Poziomy efektywności i toksyczności składników zostały oszacowane przy użyciu aktywnych gatunków roślin i zwierząt. Różne składniki zostały dodane do wody w określonych ratach i ilościach. Wyniki, które zaobserwowano podane zostały w tabeli 1 poniżej.
Składniki ocenione zostały pod względem skuteczności na różnych gatunkach roślin i zwierząt według poniższych przykładów wykonania.
P r z y k ł a d I
Małża pręgowata (larwy i osobniki dojrzałe)
Wylęg małży pręgowatej utrzymywany był w naturalnym ujęciu wody z dostosowanym wapnem i magnezem do poziomu twardoś ci do około 25 mg/l. W 20°C larwy pozostawał y w stanie wolno pł ywającym przez 30 - 40 dni przed osiedleniem. Badania biologiczne z wykorzystaniem wczesnych stanów larwalnych tego gatunku są wariantami standardowych badań biologicznych ostryg. Badania są przeprowadzane na etapie embrionu, trochofory i muszli. Badania sprawdzały toksyczność różnych chinonów na najwcześniejsze fazy życia, stan od embrionu do trochofory (2 - 17 godzin), stan trochofory (2 - 17 godzin), od trochofory do muszli (17 - 48 godzin) i od embrionu do muszli (2 - 48 godzin). Średnio 25 osobników dorosłych z wylęgu (trzymane w 10 - 12°C) zostało oczyszczonych z odpadów i przeniesionych do szklanych zlewek o pojemności 1500 ml i zawierających średnio 800 ml kultury wodnej. Temperatura wody została gwałtownie podniesiona do 30 - 32°C przez dodanie ciepłej wody. Małże traktowane w ten sposób zwykle wydają ikrę w przeciągu 30 minut. Jeżeli wydanie ikry nie nastąpiło w przeciągu tego czasu, homogenizowano z dodatkiem wody z kultury zawiesiną z dojrzałych gonad. Po udanym wydaniu ikry otrzymuje się >50.000 jaj na osobnika żeńskiego. W celu sprawdzenia czy zapłodnienie było udane, zygoty były przenoszone do komórek Sedgewick-Rafter w celu kontynuacji rozwoju i sprawdzane pod binokularem. Pomiędzy 2 a 3 godziną po zapłodnieniu zapłodnione jaja widoczne były jako aktywnie dzielące się i osiągały stadium 8-komórkowe. Zakres zapłodnienia ponad 70% jest uznawany jako otrzymanie zdolnego do życia materiału eksperymentalnego. Badania prowadzone były na co najmniej 500 embrionach/larwach w każdym z 4 powtórzeń. Użyty został zakres 5 testowych stężeń (w zakresie ppm) oraz kontrole. Dla badań z użyciem embrionów użyto gęstości 10 embrionów na ml i dla badań z muszlą i larwą 2 larwy/ml. Testy były statyczne, nieodnawialne. Każde badanie trwające 24 godziny bądź dłużej otrzymywało pożywienie (hodowane Neochloris@ 5 x 104 komórki na ml) w przedziałach co 24 godziny.
Po zliczeniu i ocenie gęstości, około 2 godziny po zapłodnieniu zaczynano badanie embrionów przez zaszczepienie znanej liczby embrionów na pożywkę testową. Stadia późniejsze trzymane były w kulturach wodnych do czasu zaszczepienia. Osobniki, które przeżyły były liczone przy użyciu komórek Sedgewick-Rafter, z dostosowaniem do kontroli śmiertelności przy użyciu formuły Abbott'a. Testy Probit i Dunnett'a są używane w celu otrzymania LD50, Najniższe Obserwowalne Efektywne Stężenie (LOEC) i Stężenie Bez Obserwowalnego Efektu (NOEC) - Toxcalc 5,0.
P r z y k ł a d II
Badanie Pimephales promelas (badanie ryb)
Do tych testów użyto Pimephales promelas z kultur laboratoryjnych trzymanych w budynkach. Zwierzęta hodowane były w naturalnych ujęciach wody o twardości ocenionej na równi do >50 ppm (CaCO3). Ryby składały ikrę w zbiornikach o poj. 20 gal. do składania ikry zawierających przewody rurowe PCW jako schronienie. Nowo wyklute larwy były przenoszone do zbiorników przechowujących w gęstości 50 - 100/l aż do czasu ich użycia. Jako pożywienie używano Artemia. Testy były statyczne odnawialne. Okres trwania testu wynosił 48 godzin i 96 godzin. Temperatura wynosiła 20°C±1°C.
PL 207 835 B1
Światło było światłem z otoczenia laboratoryjnego. Intensywność światła była 10 - 20 E/m2/sek (50 - 100 stóp-c). Foto okres wynosił 16 godzin światła i 8 godzin ciemności. Pojemnik testowy wynosił 400 ml. Rozcieńczenia testowe odnawiano w 48 godzinie. Wiek organizmów testowych wynosił od 1 do 14 dni z zakresem wiekowym 24 godzin. W każ dym pojemniku było 10 organizmów. Dla każdego stężenia były 3 powtórzenia z każdego chinonu w zakresie ppm. Jest 5 stężeń testowych plus kontrolne (seria logarytmiczna). Wszystkie testy przeprowadzone były w obrębie 5 godzin rozpuszczania mieszanki testowej. Zwierzęta karmione były Artemia nauplii poprzedzające test i 2 godziny poprzedzające odnowę stężeń testowych. Stężenia tlenu utrzymywane były na poziomie >4,0 mg/l. Woda naturalnego ujęcia dostosowana była do >50 mg/l twardości a do rozcieńczeń były użyte ekwiwalenty.
Celem testu jest ustalenie LC50, LOEC i NOEC. Próg poprawności testu wynosił 90% lub więcej przeżycia w kontrolach. Dane są analizowane przy użyciu Toxcalc 5,0.
P r z y k ł a d III
Badanie Prorocentrum minimum
Prorocentrum minimum hodowane było na pożywce Chesapeake Biological Laboratory z posiadanych zasobów otrzymano 1 litr pożywki w sterylizowanej, filtrowanej wodzie o zasoleniu 16 ppt wzbogaconej o f/2 odżywczego podłoża. Do eksperymentów pożywka została rozcieńczona do 5 litrów filtrowaną wodą z osadów przybrzeżnych w ujściu rzeki o zasoleniu 16 ppt. Oceniana wyjściowa gęstość komórek była 2 x 10 6 komórek na ml. Każda szklana zlewka o pojemności 600 ml zawierająca 400 ml hodowli Prorocentrum minimum została pozostawiona do wzrostu przy ciągłym fluorescencyjnym świetle przed badaniem. Z przerwami wynoszącymi dzień pobierane były próbki w celu zliczenia komórek i oceny mikroskopowej, ekstrakcji pigmentów chlorofilowych acetonem i w celu bezpośredniego in vivo oznaczania fluorescencji chlorofili. Potrojone 100 ml każdej hodowli Prorocentrum minimum było filtrowane przez 25 mm GFF filtr przy użyciu łagodnej próżni. Filtry były następnie składane i umieszczane w polipropylenowych probówkach używanych do wirówek i dodawano dokładnie 4 ml HPLC gradient acetonowy. Próbki były naświetlane z sondą (Virsonic 50) przez średnio 2 minuty w celu uszkodzenia komórek po czym zostawiano je do ekstrakcji w 4°C przez noc w lodówce. Po 5 minutowym wirowaniu produkt przeniesiony zosta ł do komórek kwarc fluorometrycznych i zapisywano fluorescencję przy użyciu skanującego detektora fluorescencji Hitachi F 4500. Wzbudzenie zostało ustawione na 436 nm z 10 nm szczeliną i zanotowano emisję o długości 660 nm z 10 nm szczeliną. Fotopowielacz działa przy 700 V. Autentyczny chlorofil a i b wg. Sigman Chemicals, został rozdzielony w HPLC w celu skalibrowania spektrofluorometru. Przeprowadzono trzypunktowe kalibracje potrójnie na bazie dniowej i pokrewne odpowiedzi fluoroscencyjne przeniesiono na jednostki μg/l. Fluorometria przeprowadzona in vivo przy użyciu Hitachi F 4500 wymagała zawieszenia komórek glonów i przeniesienie podwielokrotności do kuwety z żywicy poliwęglanowej i zanotowania spektrum emisji od 600 - 720 nm z wzbudzeniem ustawionym na 436 nm z szeroką na 10 nm szczeliną. Zastosowano bezpośrednie liczenie komórek pod binokularem i potrójne liczenie hemacytometrem próbek w 80 kwadratach. Punkt końcowy toksyczności chinonu zawiera określenie ruchliwości komórki, zahamowanie podziału, zahamowanie syntezy chlorofilu i bledniecie chlorofilu.
P r z y k ł a d IV
Badanie chlorelli
Badanie dla innych gatunków fitoplanktonu zawierającego Chlorella sp. i Isochrysis galbana następuje według procedur opisanych powyżej.
P r z y k ł a d V
Badanie skorupiaków widłonogów (Eurytemora affinis)
Kultury Eurytemora affinis były w sposób ciągły utrzymywane w 15 wodach morskich ze zmianami oświetlenia światło/ciemność w odstępach 8/16 godzin i karmione co 48 godzin Isochrysis galbana. Biologiczne badania toksyczności przeprowadzane są na wczesnym stadium larwalnym instar, naupli w zakresie badania trwałej śmiertelności i płodności, lub osobnikach dorosłych jako czułe badanie LC50.
Opis uzyskania larw. Kultury zostały przefiltrowane przez filtr 200 m Nitex w celu oddzielenia form dorosłych od stadiów wcześniejszych. Osobniki dorosłe wydały następnie ikrę w przeciągu 48 - 72 godzin, która następnie użyta została do badania w stadium 1 - 3 larwy naupli. Badania prowadzone były na seriach 10 larw w jednym podejściu (trzykrotnie). Badania trwały w 20°C przez 12 dni (krócej w wyższych temperaturach). Zakończone zostały przy odpowiedniej zawartości procentowej F0 (obecnej jako osobniki dorosłe) i ogólnej liczbie pokolenia F1 (obecnej jako jaja bądź larwy, naupli). Badanie LC50 na dorosłych skorupiakach przeprowadzane były przez od 24 do 48 godzin a sygnałem do zaPL 207 835 B1 kończenia badania był procent śmiertelności. Wszystkie badania przeprowadzone zostały przy zasoleniu 15 i zmianą światło/ciemność wynoszącą 8 godzin/16 godzin.
P r z y k ł a d VI
Cysty wiciowców (Glenodinium sp.)
Cysty wiciowców zebrane zostały z osadów morskich, oczyszczone z zanieczyszczeń przy użyciu czyszczenia ultradźwiękowego i poddane działaniu szeregowi chinonów w ilościach na poziomie ppm. Aby sprawdzić cysty w kierunku uszkodzeń tlenowych i zniszczeń chloroplastów po zastosowaniu substancji w ilościach na poziomie ppm zastosowano mikroskopię świetlną i mikroskopię epifluerescencyjną.
Poniżej w tabeli przedstawiono kolejnych 14 przykładowych zastosowań wynalazku.
T abs 1a 1.
| Przykład | Nomenklatura 1UPAC | Wzór | Organizm | Dane o toksyczności |
| (O (2) (3) (4) (5) (6) (7) (8) (9) (10) (Π) (12) (13) (14) | 2-metylo-5hydroksylo- 1,4naftochinon 2-metylo-l,4naftaienodion (witamina K3) 2- metyło-2-sodowy pirosiarczyn - 1,4naftałenoid Antron 1.2 dwuhydroksyantrachinon 3- mety lo-1,8 dwuhydroksyantrachinon Antrachinon -2- kwas karboksylowy 1 -chloroantrachinon 2-metyloantrachinon 1.4- naftalenoid Antrachinon 1.4- benzochinon Metylo-1,4benzochinon (toluchinon) 2,3-metoksy-5-metyl1,4 - benzochinon | c„h8o, c„h8o2 CuH,0SO5Na c14h10o c15h8o„ C15Hi0O4 c15h8o4 c14h7o2 CuHwOi C10H6O2 c14h8o2 c6h4o2 c7h6o2 c9h10o4 | T. isochrysis galbana Neochloris Zebra larvae E. affinis Artemia salina Ikra Minnow larvae T. isochrysis galbana Zebra mussel larvae Oyster larvae E. affinis Artemia salina Ikra T. isochrysis galbana Zebra larvae Oyster larvae E. affinis Artemia salina Ikra T. isochrysis galbana T. isochrysis galbana E. affinis Artemia salina T. isochrysis galbana Zebra mussel larvae T. isochrysis galbana E. affinis T. isochrysis galbana Neochloris E. affinis T isochrysis galbana Neochloris Zebra larvae E. affinis Artemia salina T. isochrysis galbana Oyster larvae E. affinis E. affinis T isochrysis galbana [kra T isochrysis galbana T isochrysis galbana | Toksyczny przy 50 ppb Toksyczny przy 500 ppm Toksyczny przy 200 ppb 5 ppm< 10min. Toksyczny przy 5 ppm Zabija i chroni przed wylęgiem przy 1 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 500 ppb Toksyczny przy 500 ppm 1 ppm 5 ppm< 15min. Toksyczny przy 5 ppm Zabija i chroni przed wylęgiem przy 1 ppm Toksyczny przy 500 ppb Toksyczny przy 1 ppm 500 ppb 5 ppm < 15 min Toksyczny przy 5 ppm Zabija i chroni przed wylęgiem przy 1 ppm Toksyczny przy 2 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 5 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 1 ppm 5 ppm< 5 godzin Toksyczny przy 500 ppb Toksyczny przy 500 ppb 5 ppm< 5 godzin Toksyczny przy SOOppb Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 200 ppm 5 ppm< 45min. Toksyczny przy 5 ppm Toksyczny przy 1 ppm Toksyczny przy 5 ppm 5 ppm< lOmin. 5 ppm< 4 godziny Toksyczny przy 500 ppb 50% śmiertelności przy 5 ppm. Kontrola wylęgu przy 1 ppm Toksyczny przy 500 ppb Toksyczny przy 5 ppm |
PL 207 835 B1
P r z y k ł a d VII
Ślimaki (Bulimulis alternata) otrzymano od komercyjnego dostawcy i aż do początku badania biologicznego karmione były liśćmi sałaty.
2
Dziesięć ślimaków umieszczono w zamykanej zlewce 1 litrowej na ok. 50 cm2 liści sałaty, które wcześniej spryskane zostały wodnym rozcieńczeniem 2,3 metoksy-5-metyl-1,4-benzochinonu w trzech stężeniach: 5, 10, 20 mg/l. Spryskane liście przed podaniem ich ślimakom zostały pozostawione do wyschnięcia. Równocześnie 10 ślimaków umieszczono na około 50 cm2 czystych liści sałaty, co stanowiło populację kontrolną. Badane ślimaki wraz z kontrolnymi trzymane były w średnio 20°C w ciemności. Po upływie 24 i 48 godzin obserwowano u nich śladów śmiertelności i aktywności żywieniowej.
We wszystkich badanych przypadkach, poza populacją kontrolną, ślimaki demonstrowały znaczące unikanie pożywienia. Kilka ślimaków z grup badanych wycofało się do swoich muszli i nie wykazywało aktywności żernej. Liście pozostały nietknięte. Pozostałe wspięły się na ścianki zlewek i pozostawały z daleka od liści. Zachowanie przedstawiające unikanie zaobserwowano również po 48 godzinach badania. W przeciwieństwie do tego pozostawała grupa kontrolna ślimaków, która skonsumowała po 24 godzinach ponad 10% powierzchni liści i kontynuowała żerowanie tak, że po 48 godzinach skonsumowała około 20% liści.
Wybrano w opracowaniu różne zastosowania, które miały na celu zilustrowanie opisanego wynalazku, chociaż dla osób obeznanych z tematem pracy możliwe jest wykonanie różnych zmian i modyfikacji, które jednakże nie zmienią głównej idei i ducha opisanego wynalazku, tak jak to opisano w załączonych zastrzeżeniach patentowych.
Claims (12)
1. Sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych, polegający na tym, że poddaje się populację organicznych szkodników w zbiorniku wodnym działaniu roztworu wodnego co najmniej jednego związku chemicznego niszczącego życie organicznych szkodników w zbiornikach wodnych, znamienny tym, że jako związki chemiczne niszczące życie organicznych szkodników w zbiornikach wodnych, stosuje się związki z grupy naftalenodionów o wzorze:
gdzie:
R1 oznacza grupę wodorową, lub metylową;
R2 jest grupą wodorową, metylową, chlorową, acetonylową, 3-metylo-2-butenylową lub 2-oxopropylową;
R3 jest grupą wodorową, metylową, chlorową lub 3-metylo-2-butenylową;
R4 oznacza grupę wodorową lub metoksylową;
R5 oznacza grupę wodorową lub metylową,
R6 oznacza grupę wodorową lub hydroksylową, oraz pochodne tych związków z wodorosiarczanem sodu.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się związek chemiczny z grupy zawierającej 1,4-naftalenodion i/lub 2-metyl-5-hydroksy-1,4-naftalenodion, i/lub 2-metyl-1,4-naftalenodion,
PL 207 835 B1 i/lub 2-metyl-2-metawodorosiarczan sodu-1,4-naftalenodion, i/lub 6,8-dwuhydroksy-benzochinon, i/lub 2,7-dwumetylo-1-4-naftalenodion.
3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że zwią zek chemiczny stosuje się w wodzie w iloś ci mniejszej niż 1% wagowo.
4. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, ż e zwią zek chemiczny stosuje się w wodzie w ilości od 100 ppb do 500 ppm.
5. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, ż e zwią zek chemiczny stosuje się w wodzie w iloś ci od 500 ppb do 300 ppm.
6. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, ż e zwią zek chemiczny stosuje się w wodzie w iloś ci od 1 ppb do 200 ppm.
7. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 6, znamienny tym, ż e populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres co najmniej jednej godziny.
8. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 6, znamienny tym, że populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres od 1 do 96 godzin.
9. Sposób wedł ug jednego z zastrz. od 1 do 6, znamienny tym, ż e populację docelowej grupy szkodnikowych mikroorganizmów wodnych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego przez okres od 2 do 48 godzin.
10. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 6, znamienny tym, że działaniu roztworu związku chemicznego poddaje się docelową populację wodnych organizmów szkodnikowych zawierającą zarówno organizmy zwierzęce jak i organizmy roślinne.
11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że docelową populację wodnych organizmów szkodnikowych poddaje się działaniu roztworu związku chemicznego w zamkniętym zbiorniku wodnym.
12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że zamknięty zbiornik wodny stanowi zbiornik
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US09/506,017 US6340468B1 (en) | 2000-02-17 | 2000-02-17 | Method of controlling zoological and aquatic plant growth |
| US23740100P | 2000-10-04 | 2000-10-04 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL361808A1 PL361808A1 (pl) | 2004-10-04 |
| PL207835B1 true PL207835B1 (pl) | 2011-02-28 |
Family
ID=26930638
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL361808A PL207835B1 (pl) | 2000-02-17 | 2001-02-16 | Sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych oraz wzrostu populacji mięczaków w systemach wodnych |
Country Status (29)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US7348363B2 (pl) |
| EP (3) | EP2105050A1 (pl) |
| JP (1) | JP2003523821A (pl) |
| KR (3) | KR100964351B1 (pl) |
| CN (1) | CN1424875B (pl) |
| AP (1) | AP1487A (pl) |
| AT (1) | ATE441327T1 (pl) |
| AU (2) | AU4153001A (pl) |
| BG (1) | BG107108A (pl) |
| CA (1) | CA2406968C (pl) |
| CU (1) | CU23320A3 (pl) |
| DE (1) | DE60139763D1 (pl) |
| DK (1) | DK1261254T3 (pl) |
| DZ (1) | DZ3294A1 (pl) |
| EA (1) | EA006842B1 (pl) |
| EE (1) | EE04984B1 (pl) |
| ES (1) | ES2331645T3 (pl) |
| GE (1) | GEP20053561B (pl) |
| HR (1) | HRP20020754A2 (pl) |
| IL (1) | IL151306A (pl) |
| IS (1) | IS6506A (pl) |
| MA (1) | MA26045A1 (pl) |
| MX (1) | MXPA02008019A (pl) |
| NO (1) | NO331276B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ531864A (pl) |
| OA (1) | OA12217A (pl) |
| PL (1) | PL207835B1 (pl) |
| WO (1) | WO2001060971A2 (pl) |
| YU (1) | YU61902A (pl) |
Families Citing this family (28)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6626122B2 (en) | 2001-10-18 | 2003-09-30 | Chevron U.S.A. Inc | Deactivatable biocides in ballast water |
| US6800615B2 (en) * | 2002-04-15 | 2004-10-05 | Board Of Trustees Of Michigan State University | Antihelminthic anthraquinones and method of use thereof |
| US6949250B2 (en) * | 2002-12-16 | 2005-09-27 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture | Selective algaecides for control of cyanochloronta |
| JP4619614B2 (ja) * | 2002-12-16 | 2011-01-26 | 中部電力株式会社 | 藍藻類・地衣類の繁藻抑制剤 |
| JP2006512197A (ja) * | 2002-12-20 | 2006-04-13 | ロンザ インコーポレイテッド | バイオフィルムの除去のための方法 |
| JP4167096B2 (ja) * | 2003-03-13 | 2008-10-15 | 関西電力株式会社 | ポリプの除去又は増殖抑制方法 |
| ITMI20031011A1 (it) * | 2003-05-20 | 2004-11-21 | Vanetta S P A | Composti biocidi per il trattamento delle acque. |
| JP2005139125A (ja) * | 2003-11-07 | 2005-06-02 | Agro Kanesho Co Ltd | ジャンボタニシ駆除剤 |
| US8017074B2 (en) | 2004-01-07 | 2011-09-13 | Noxilizer, Inc. | Sterilization system and device |
| JP2007521118A (ja) * | 2004-01-07 | 2007-08-02 | ノクシライザー，インコーポレイテッド | 殺菌システムおよび装置 |
| US7258878B2 (en) | 2004-12-20 | 2007-08-21 | Kimberly-Clark Worldwide, Inc. | Anti-microbial composition and methods of use thereof |
| US20080014145A1 (en) * | 2006-07-11 | 2008-01-17 | David Joseph Anschel | Abalone settlement bioassay for anti-seizure substance screening |
| CN101536687B (zh) * | 2008-03-20 | 2013-12-18 | 香港科技大学 | 黄酮和异黄酮衍生物作为抗生物污损物质的应用以及防止海洋生物污损的方法和涂料 |
| KR101013946B1 (ko) * | 2008-05-02 | 2011-02-14 | 한국화학연구원 | 메나디온계 화합물을 포함하는 유해조류 방제용 조성물 및이를 이용한 유해조류 방제방법 |
| KR101024606B1 (ko) * | 2008-05-20 | 2011-03-24 | 한국화학연구원 | 천연물 유래의 안트라퀴논계 화합물을 함유하는 유해조류방제용 혼합조성물과 이를 이용한 방제방법 |
| WO2010071804A1 (en) * | 2008-12-18 | 2010-06-24 | Keith Branly | Formulations of broad spectrum biocides and their use in improved methods for the treatment of ballast water |
| GB0901434D0 (en) | 2009-01-29 | 2009-03-11 | Univ Strathclyde | Ballast water treatment system |
| NZ595213A (en) * | 2009-02-17 | 2014-03-28 | Mcalister Technologies Llc | Electrolytic cell and method of use thereof |
| US8425837B2 (en) | 2009-02-23 | 2013-04-23 | Noxilizer, Inc. | Device and method for gas sterilization |
| KR101436792B1 (ko) * | 2011-07-08 | 2014-09-05 | 한양대학교 산학협력단 | 나프토퀴논 화합물을 함유하는 유해조류 제어용 조성물 |
| CA2843043C (en) * | 2011-08-17 | 2020-04-07 | Buckman Laboratories International, Inc. | Tagged polymers, water treatment compositions, and methods of their use in aqueous systems |
| KR101405275B1 (ko) | 2012-02-28 | 2014-06-11 | 조선대학교산학협력단 | 나프토퀴논 유도체를 유효성분으로 포함하는 적조 방제용 조성물 |
| CN103651349A (zh) * | 2013-09-07 | 2014-03-26 | 宁波市雨辰环保科技有限公司 | 蒽醌盐在制备用于杀菌或去除甲醛的消毒剂中的应用 |
| RU2563283C2 (ru) * | 2013-12-03 | 2015-09-20 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства" (ФГБНУ "АзНИИРХ") | Способ оценки токсичности загрязнителей вод азово-черноморского бассейна |
| KR101829962B1 (ko) * | 2015-12-03 | 2018-02-19 | 한양대학교 산학협력단 | 나프토퀴논 유도체를 포함하는 유해조류 제어용 조성물 및 이를 이용한 유해조류 제어방법 |
| ES2603380B1 (es) | 2017-01-17 | 2017-09-12 | Ox-Cta, S.L. | Equipo y procedimiento de detección de protozoos |
| CA3054670A1 (en) | 2017-02-16 | 2018-08-23 | Jon Baker | Systems and methods for controlling aquatic pests with sulfurous acid |
| CN108676066B (zh) * | 2018-05-29 | 2021-09-10 | 深圳大学 | 一种化合物Malformin C的应用及制备方法 |
Family Cites Families (35)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2999810A (en) | 1959-06-24 | 1961-09-12 | Us Rubber Co | Method of killing algae |
| US3558787A (en) * | 1968-01-23 | 1971-01-26 | Du Pont | Methods and compositions for controlling plant-pathogenic fungi utilizing 1,4-dihydro-9,10-anthraquinones |
| US3947594A (en) * | 1973-05-07 | 1976-03-30 | Gaf Corporation | 4-Halo-1-hydroxyanthraquinone containing fungicidal composition |
| US4092433A (en) * | 1976-03-08 | 1978-05-30 | Abbott Laboratories | Quinone derivatives as molluscicides |
| US4238484A (en) * | 1979-04-27 | 1980-12-09 | Abbott Laboratories | Molluscicide compositions and methods of use |
| JPS5738704A (en) * | 1980-08-21 | 1982-03-03 | Asahi Chem Ind Co Ltd | Antifouling agent |
| JPS5931396B2 (ja) * | 1981-06-12 | 1984-08-01 | 東海電化工業株式会社 | 溶存酸素除去法 |
| JPS58120678A (ja) | 1982-01-12 | 1983-07-18 | Mitsubishi Rayon Co Ltd | 防汚塗料用組成物 |
| FR2588442B1 (fr) * | 1985-10-11 | 1989-02-17 | Rhone Poulenc Agrochimie | Semences de riz enrobees d'algicide et procede de culture du riz |
| JPS6431702A (en) | 1987-07-28 | 1989-02-02 | Ihara Chemical Ind Co | Repellent for aquatic attached organism |
| JPH024701A (ja) * | 1988-06-24 | 1990-01-09 | Ihara Chem Ind Co Ltd | キノン誘導体を有効成分とする水中生物防汚剤 |
| CA2020826A1 (en) | 1989-07-11 | 1991-01-12 | Junji Yokoi | Antifouling composition |
| DE4013023A1 (de) * | 1990-04-24 | 1991-11-07 | Lohmann Rudolf Lomapharm | Verwendung von anthrachinonderivaten zur prophylaxe und therapie von viruserkrankungen |
| US5252330A (en) | 1990-10-12 | 1993-10-12 | University Of Toledo | Method of controling zebra mussels with extract of Phytolacca dodecandra |
| JPH04322788A (ja) * | 1991-02-25 | 1992-11-12 | Mitsubishi Heavy Ind Ltd | 船舶のバラスト水殺菌方法および殺菌装置 |
| US5128050A (en) | 1991-05-06 | 1992-07-07 | Calgon Corporation | Method for controlling zebra mussels in ship ballast tanks |
| US5192451A (en) | 1991-05-06 | 1993-03-09 | Calgon Corporation | Method for controlling zebra mussels in ship ballast tanks |
| US5160047A (en) | 1992-02-18 | 1992-11-03 | Nalco Chemical Company | Glutaraldehyde for controlling Zebra mussels |
| US6080791A (en) * | 1992-07-24 | 2000-06-27 | Seres Laboratories, Inc. | Method of treating a viral condition by inhibiting membrane fusion |
| NZ248822A (en) * | 1992-10-02 | 1996-06-25 | Bio Tech Resources | Anthraquinone sulphide-production inhibitors |
| US5288693A (en) * | 1993-06-25 | 1994-02-22 | Rohm And Haas Company | 2-(3-oxoalk(en)yl)-3-isothiazolones and derivatives as antimicrobial agents |
| KR19980067751A (ko) * | 1996-02-12 | 1998-10-15 | 맥더못 엘리라 베즈엘 | 쌍각류 연체동물 부착물의 제거 및 방지 |
| US5851408A (en) | 1997-01-24 | 1998-12-22 | Sedivy; John Joseph | Elimination and inhibition of bivalve mollusk attachments |
| AUPN859096A0 (en) * | 1996-03-11 | 1996-04-04 | Archer, Walter James | Ballast water de-toxification treatment system for ships |
| US5932112A (en) * | 1996-11-27 | 1999-08-03 | Browning Transport Management, Inc. | Method and apparatus for killing microorganisms in ship ballast water |
| WO1998051625A1 (en) * | 1997-05-12 | 1998-11-19 | Dcv, Inc. | Method for reducing the level of hydrogen sulfide in wastewater systems |
| JPH1133583A (ja) * | 1997-07-17 | 1999-02-09 | Nippon Soda Co Ltd | 活性汚泥のバルキング防除剤及び防除方法 |
| US5900157A (en) | 1997-07-18 | 1999-05-04 | Betzdearborn Inc. | Methods for controlling macroinvertebrates in aqueous systems |
| CA2295765C (en) * | 1997-07-29 | 2010-02-09 | Dcv, Inc. | Method for inhibiting biogenic sulfide generation |
| JPH11156383A (ja) * | 1997-11-21 | 1999-06-15 | Ryoji Saeki | 水浄化用組成物、水浄化法およびそれらを利用した水浄化システム |
| SG73537A1 (en) | 1998-01-28 | 2000-06-20 | Dainichiseika Color Chem | Underwater anti-fouling agent and anti-fouling paint containing the underwater anti-fouling agent |
| US6164244A (en) | 1998-03-20 | 2000-12-26 | Pharmacognetics, Inc. | Method for treating aquatic pests |
| JP2000034202A (ja) * | 1998-07-15 | 2000-02-02 | Kawasaki Kasei Chem Ltd | 硫酸塩還元菌による硫化物生成の抑制方法 |
| US6340468B1 (en) | 2000-02-17 | 2002-01-22 | Garnett, Inc. | Method of controlling zoological and aquatic plant growth |
| SV2003000753A (es) * | 2000-12-05 | 2003-06-16 | Brigham & Womens Hospital | Uso de polisacaridos zwitterionicos para la especifica modulacion del progreso inmunologico |
-
2001
- 2001-02-16 WO PCT/US2001/005117 patent/WO2001060971A2/en not_active Ceased
- 2001-02-16 NZ NZ531864A patent/NZ531864A/en not_active IP Right Cessation
- 2001-02-16 AU AU4153001A patent/AU4153001A/xx active Pending
- 2001-02-16 YU YU61902A patent/YU61902A/sh unknown
- 2001-02-16 KR KR1020087001279A patent/KR100964351B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 2001-02-16 EP EP09165594A patent/EP2105050A1/en not_active Withdrawn
- 2001-02-16 GE GE4894A patent/GEP20053561B/en unknown
- 2001-02-16 HR HR20020754A patent/HRP20020754A2/hr not_active Application Discontinuation
- 2001-02-16 EA EA200200867A patent/EA006842B1/ru not_active IP Right Cessation
- 2001-02-16 ES ES01912784T patent/ES2331645T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2001-02-16 AT AT01912784T patent/ATE441327T1/de not_active IP Right Cessation
- 2001-02-16 EP EP09165593A patent/EP2130436A1/en not_active Withdrawn
- 2001-02-16 CN CN018082491A patent/CN1424875B/zh not_active Expired - Fee Related
- 2001-02-16 MX MXPA02008019A patent/MXPA02008019A/es active IP Right Grant
- 2001-02-16 DK DK01912784T patent/DK1261254T3/da active
- 2001-02-16 DE DE60139763T patent/DE60139763D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2001-02-16 JP JP2001560343A patent/JP2003523821A/ja active Pending
- 2001-02-16 EE EEP200200455A patent/EE04984B1/xx not_active IP Right Cessation
- 2001-02-16 DZ DZ013294A patent/DZ3294A1/fr active
- 2001-02-16 KR KR1020087001280A patent/KR100898815B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 2001-02-16 CA CA2406968A patent/CA2406968C/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-02-16 AU AU2001241530A patent/AU2001241530B2/en not_active Ceased
- 2001-02-16 IL IL151306A patent/IL151306A/en not_active IP Right Cessation
- 2001-02-16 EP EP01912784A patent/EP1261254B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-02-16 KR KR1020027010718A patent/KR100865788B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 2001-02-16 OA OA1200200253A patent/OA12217A/en unknown
- 2001-02-16 AP APAP/P/2002/002625A patent/AP1487A/en active
- 2001-02-16 PL PL361808A patent/PL207835B1/pl not_active IP Right Cessation
- 2001-12-06 US US10/003,465 patent/US7348363B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-12-06 US US10/003,464 patent/US6576674B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2002
- 2002-08-15 IS IS6506A patent/IS6506A/is unknown
- 2002-08-16 NO NO20023912A patent/NO331276B1/no not_active IP Right Cessation
- 2002-08-16 CU CU20020174A patent/CU23320A3/es not_active IP Right Cessation
- 2002-09-16 BG BG107108A patent/BG107108A/bg unknown
- 2002-09-16 MA MA26823A patent/MA26045A1/fr unknown
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL207835B1 (pl) | Sposób kontrolowania wzrostu populacji organicznych szkodników wodnych oraz wzrostu populacji mięczaków w systemach wodnych | |
| AU2001241530A1 (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| Chang et al. | Effects of cadmium on respiratory burst, intracellular Ca2+ and DNA damage in the white shrimp Litopenaeus vannamei | |
| Gavand et al. | Effects of sonication and advanced chemical oxidants on the unicellular green alga Dunaliella tertiolecta and cysts, larvae and adults of the brine shrimp Artemia salina: a prospective treatment to eradicate invasive organisms from ballast water | |
| Randhawa et al. | Applicability of hydrogen peroxide in brown tide control–culture and microcosm studies | |
| US6340468B1 (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| US6164244A (en) | Method for treating aquatic pests | |
| US20040232089A1 (en) | Biocidal compounds for treating water | |
| US20100000457A1 (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| HK1133790A (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| HK1133791A (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| Carney | Marine bioinvasion prevention: understanding ballast water transportation conditions and the development of effective treatment systems | |
| HK1052836B (en) | Method of controlling zoological and aquatic plant growth | |
| Klarmann | The Ascidian Styela plicata As a Potential Bioremediator of the |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20120216 |