이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 제공한다.
[화학식 1]
상기 화학식 1에서,
R1 및 R2는 각각 -H, -OH, C1-10의 직쇄 또는 측쇄 알킬, 또는 C6-8의 아릴아미드이고, 여기서 상기 아릴아미드의 아릴에는 할로겐, -NO2 및 C1-10의 직쇄 또는 측쇄 할로겐화알킬 중 1종 이상이 치환될 수 있고;
상기 R1 및 R2는 이들이 연결된 탄소 원자와 함께 C6-8의 아릴을 형성할 수 있고;
R3, R4, R5, R6 및 R7은 각각 -H, 할로겐, -NO2 또는 C1-10의 직쇄 또는 측쇄 알킬일 수 있다.
본 발명에 따른 일실시예에 있어서,
R1 및 R2는 각각 -H, -OH, C1-5의 직쇄 또는 측쇄 알킬, 또는 C6-7의 아릴아미드이고, 여기서 상기 아릴아미드의 아릴에는 할로겐, -NO2 및 C1-5의 직쇄 또는 측쇄 할로겐화알킬 중 1종 이상이 치환될 수 있고;
상기 R1 및 R2는 이들이 연결된 탄소 원자와 함께 C6-7의 아릴을 형성할 수 있고;
R3, R4, R5, R6 및 R7은 각각 -H, 할로겐, -NO2 또는 C1-5의 직쇄 또는 측쇄 알킬일 수 있다.
본 발명에 따른 일실시예에 있어서,
R1 및 R2는 각각 -H, -OH, -CH3, 또는 페닐아미드이고, 여기서 상기 페닐아미드의 페닐에는 -Cl, -NO2 및 -CH2Cl 중 1종 이상이 치환될 수 있고;
상기 R1 및 R2는 이들이 연결된 탄소 원자와 함께 페닐을 형성할 수 있고;
R3, R4, R5, R6 및 R7은 각각 -H, -F, -Cl, -NO2 또는 -CH2CH3일 수 있다.
본 발명에 따른 일실시예에 있어서,
R
1은 -H, -OH, -CH
3,
,
, 또는
이고;
R2는 -H이고;
상기 R1 및 R2는 이들이 연결된 탄소 원자와 함께 페닐을 형성할 수 있고;
R3은 -H 또는 -Cl이고;
R4는 -H, -F 또는 -Cl이고;
R5는 -F, -Cl, -NO2, 또는 -CH2CH3이고;
R6은 -H이고;
R7는 -H인 것일 수 있다.
본 발명에 따른 화학식 1로 표시되는 화합물의 바람직한 예로는 하기의 화합물 군을 들 수 있다.
1)N-(벤조[d]옥사졸-2-일)-2-클로로-4-니트로벤즈아미드;
2)8-메틸-2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸;
3)2-((3,4-디클로로페닐)아미노)벤조[d]옥사졸-5-올;
4)N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-2-클로로-5-니트로벤즈아미드;
5)N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3,4-디클로로벤즈아미드;
6)N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3-(클로로메틸)벤즈아미드;
7)2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸;
8)N-(3,4-디클로로페닐)나프토[2,3-d]옥사졸-2-아민;
9)N-(3,4-디플로오로페닐)-5-메틸벤조[d]옥사졸-2-아민; 및
10)N-(3,4-디플로오로페닐)벤조[d]옥사졸-2-아민.
본 발명의 상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 약학적으로 허용 가능한 염의 형태로 사용할 수 있으며, 염으로는 약학적으로 허용가능한 유리산(free acid)에 의해 형성된 산부가염이 유용하다. 약학적으로 허용가능한 염이란 표현은 환자에게 비교적 비독성이고 무해한 유효작용을 갖는 농도로서 이 염에 기인한 부작용이 화학식 1의 염기 화합물의 이로운 효능을 떨어뜨리지 않는 화학식 1의 염기 화합물의 어떠한 유기 또는 무기 부가염을 의미한다. 이들 염은 유리산으로는 무기산과 유기산을 사용할 수 있으며, 무기산으로는 염산, 브롬산, 질산, 황산, 과염소산, 인산 등을 사용할 수 있고, 유기산으로는 구연산, 초산, 젖산, 말레산, 푸마린산, 글루콘산, 메탄설폰산, 글리콘산, 숙신산, 타타르산, 갈룩투론산, 엠본산, 글루탐산, 아스파르트산, 옥살산, (D) 또는 (L) 말산, 말레산, 메테인설폰산, 에테인설폰산, 4-톨루엔술폰산, 살리실산, 시트르산, 벤조산 또는 말론산 등을 사용할 수 있다. 또한, 이들 염은 알칼리 금속염(나트륨염, 칼륨염 등) 및 알칼리 토금속염(칼슘염, 마그네슘염 등) 등을 포함한다. 예를 들면, 산부가염으로는 아세테이트, 아스파테이트, 벤즈에이트, 베실레이트, 바이카보네이트/카보네이트, 바이설페이트/설페이트, 보레이트, 캄실레이트, 시트레이트, 에디실레이트, 에실레이트, 포메이트, 퓨마레이트, 글루셉테이트, 글루코네이트, 글루큐로네이트, 헥사플루오르포스페이트, 하이벤제이트, 하이드로클로라이드/클로라이드, 하이드로브로마이드/브로마이드, 하이드로요오디드/요오디드, 이세티오네이트, 락테이트, 말레이트, 말리에이트, 말로네이트, 메실레이트, 메틸설페이트, 나프틸레이트, 2-나프실레이트, 니코티네이트, 나이트레이트, 오로테이트, 옥살레이트, 팔미테이트, 파모에이트, 포스페이트/수소 포스페이트/이수소 포스페이트, 사카레이트, 스테아레이트, 석시네이트, 타르트레이트, 토실레이트, 트리플루오르아세테이트, 알루미늄, 알기닌, 벤자틴, 칼슘, 콜린, 디에틸아민, 디올아민, 글라이신, 라이신, 마그네슘, 메글루민, 올아민, 칼륨, 나트륨, 트로메타민, 아연염 등이 포함될 수 있으며, 이들 중 하이드로클로라이드 또는 트리플루오르아세테이트가 바람직하다.
또한, 본 발명의 상기 화학식 1로 표시되는 화합물은 약학적으로 허용되는 염뿐만 아니라, 통상의 방법에 의해 제조될 수 있는 모든 염, 이성질체, 수화물 및 용매화물을 모두 포함한다.
본 발명에 따른 부가염은 통상의 방법으로 제조할 수 있으며, 예를 들면 화학식 1의 화합물을 수혼화성 유기용매, 예를 들면 아세톤, 메탄올, 에탄올, 또는 아세토니트릴 등에 녹이고 과량의 유기산을 가하거나 무기산의 산 수용액의 가한 후 침전시키거나 결정화시켜서 제조할 수 있다. 이어서 이 혼합물에서 용매나 과량의 산을 증발시킨 후 건조시켜서 부가염을 얻거나 또는 석출된 염을 흡인 여과시켜 제조할 수 있다.
제조방법 1
본 발명은 하기 반응식 1에 나타낸 바와 같이,
화합물 2를 유기용매에 녹인 후, 화합물 3을 첨가하고 10 내지 50℃에서 12 내지 20시간 반응시켜 화합물 4를 얻는 단계(단계 1); 및
과산화칼륨(Potassium superoxide)이 용해된 유기용매에, 상기 단계 1에서 얻은 화합물 4가 용해된 유기용매를 적가한 후, 15 내지 30℃에서 10 내지 16시간 반응시켜 화합물 1A를 얻는 단계(단계 2);
를 포함하는 화학식 1A로 표시되는 화합물의 제조방법을 제공한다.
[반응식 1]
상기 반응식 1에 있어서,
R1, R2, R3, R4, R5, R6 및 R7는 제1항의 화학식 1에서 정의한 바와 같고,
상기 화합물 1A는 제1항의 화학식 1에 포함된다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 유기용매의 예로는 메탄올(MeOH), 디메틸포름아미드(DMF), 아세토니트릴(MeCN), 트라하이드로퓨란(THF), 디클로로메테인(DCM), 1,2-다이메톡시에탄, 벤젠, 톨루엔, 자일렌, 다이메틸설폭사이드(DMSO) 또는 다이옥산을 단독으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제조방법에 의해 제조할 수 있는 화합물의 예로는 8-메틸-2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸, 2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸, N-(3,4-디클로로페닐)나프토[2,3-d]옥사졸-2-아민, N-(3,4-디플로오로페닐)-5-메틸벤조[d]옥사졸-2-아민 또는 N-(3,4-디플로오로페닐)벤조[d]옥사졸-2-아민일 수 있다.
제조방법 2
본 발명은 하기 반응식 2에 나타낸 바와 같이,
화합물 5를 유기용매에 녹인 후, 화합물 3을 첨가하고 10 내지 50℃에서 12 내지 20시간 반응시켜 화합물 6을 얻는 단계(단계 1);
과산화칼륨(Potassium superoxide)이 용해된 유기용매에, 상기 단계 1에서 얻은 화합물 6이 용해된 유기용매를 적가한 후, 12 내지 24시간 반응시켜 화합물 7을 얻는 단계(단계 2); 및
화합물 7을 유기용매에 녹이고, 삼브롬화붕소(BBr3)를 첨가한 뒤, 상온에서 20 내지 28시간 반응시켜 화합물 1B를 얻는 단계(단계 3);
를 포함하는 화학식 1B로 표시되는 화합물의 제조방법을 제공한다.
[반응식 2]
상기 반응식 2에 있어서,
R3, R4, R5, R6 및 R7는 제1항의 화학식 1에서 정의한 바와 같고,
상기 화합물 1B는 제1항의 화학식 1에 포함된다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 유기용매의 예로는 메탄올(MeOH), 디메틸포름아미드(DMF), 아세토니트릴(MeCN), 트라하이드로퓨란(THF), 디클로로메테인(DCM), 1,2-다이메톡시에탄, 벤젠, 톨루엔, 자일렌, 다이메틸설폭사이드(DMSO) 또는 다이옥산을 단독으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제조방법에 의해 제조할 수 있는 화합물의 예로는 2-((3,4-디클로로페닐)아미노)벤조[d]옥사졸-5-올일 수 있다.
제조방법 3
본 발명은 하기 반응식 3에 나타낸 바와 같이,
화합물 8, 이황화탄소(Carbon disulfide), 아이오도메테인(Iodomethane), 및 수소화나트륨(sodium hydride)을 유기용매에 녹인 후, 10 내지 50℃에서 2 내지 8시간 반응시켜 화합물 9를 얻는 단계(단계 1); 및
화합물 9 및 화합물 2를 유기용매에 녹인 후, 2 내지 8시간 반응시켜 화합물 1C를 얻는 단계(단계 2);
를 포함하는 화학식 1C로 표시되는 화합물의 제조방법을 제공한다.
[반응식 3]
상기 반응식 3에 있어서,
R1, R2, R3, R4, R5, R6 및 R7는 제1항의 화학식 1에서 정의한 바와 같고,
상기 화합물 1C는 제1항의 화학식 1에 포함된다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 유기용매의 예로는 메탄올(MeOH), 디메틸포름아미드(DMF), 아세토니트릴(MeCN), 트라하이드로퓨란(THF), 디클로로메테인(DCM), 1,2-다이메톡시에탄, 벤젠, 톨루엔, 자일렌, 다이메틸설폭사이드(DMSO) 또는 다이옥산을 단독으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제조방법에 의해 제조할 수 있는 화합물의 예로는 N-(벤조[d]옥사졸-2-일)-2-클로로-4-니트로벤즈아미드일 수 있다.
제조방법 4
본 발명은 하기 반응식 4에 나타낸 바와 같이,
화합물 10 및 화합물 3을 유기용매에 녹인 후, 10 내지 50℃에서 20 내지 28시간 반응시켜 화합물 11을 얻는 단계(단계 1);
과산화칼륨(Potassium superoxide)이 용해된 유기용매에, 상기 단계 1에서 얻은 화합물 11이 용해된 유기용매를 적가한 후, 10 내지 50℃에서 12 내지 24시간 반응시켜 화합물 12를 얻는 단계(단계 2);
화합물 12를 촉매와 함께 유기용매에 첨가한 후, 수소 가스를 주입하여 10 내지 50℃에서 12 내지 20시간 반응시켜 화합물 13을 얻는 단계(단계 3); 및
화합물 13 및 화합물 14를 유기용매에 녹인 후, 10 내지 50℃에서 12 내지 24시간 반응시켜 화합물 1D를 얻는 단계(단계 4);
를 포함하는 화합물 1D로 표시되는 화합물의 제조방법을 제공한다.
[반응식 4]
상기 반응식 4에 있어서,
R3, R4, R5, R6 및 R7는 제1항의 화학식 1에서 정의한 바와 같고;
R8은 할로겐, -NO2 및 C1-10의 직쇄 또는 측쇄 할로겐화알킬 중 1종 이상이고;
상기 화합물 1D는 제1항의 화학식 1에 포함된다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 유기용매의 예로는 메탄올(MeOH), 디메틸포름아미드(DMF), 아세토니트릴(MeCN), 트라하이드로퓨란(THF), 디클로로메테인(DCM), 1,2-다이메톡시에탄, 벤젠, 톨루엔, 자일렌, 다이메틸설폭사이드(DMSO) 또는 다이옥산을 단독으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다.
본 발명의 제조방법에 있어서, 상기 제조방법에 의해 제조할 수 있는 화합물의 예로는 N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-2-클로로-5-니트로벤즈아미드, N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3,4-디클로로벤즈아미드 또는 N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3-(클로로메틸)벤즈아미드일 수 있다.
세포 노화 억제용 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 세포 노화 억제용 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 세포는 신장 근위세뇨관 상피세포일 수 있으며, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
피부 노화 예방 또는 개선용 화장료 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 피부 노화 예방 또는 개선용 화장료 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물은 상술한 본 발명의 유효물질의 화장품학적 유효량(cosmetically effective amount) 및 화장품학적으로 허용되는 담체를 포함하여 제조할 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따른 상기 화장료 조성물은 그 제형에 있어서 특별히 한정되는 바가 없으며, 스킨, 스킨 소프트너, 스킨토너, 아스트린젠트, 로션, 밀크로션, 모이스쳐로션, 영양로션, 마사지크림, 영양크림, 아이크림, 모이스쳐크림, 핸드크림, 에센스, 영양에센스, 팩, 클렌징폼, 클렌징워터, 클렌징로션, 클렌징크림, 바디로션, 바디클렌져, 비누 또는 파우더 등의 화장품으로 제형화될 수 있다.
본 발명의 제형이 페이스트, 크림 또는 겔인 경우에는 담체 성분으로서 동물섬유, 식물섬유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크 또는 산화아연 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄히드록시드, 칼슘 실리케이트 또는 폴리아미드 파우더가 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로히드로카본, 프로판/부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진체를 포함할 수 있다.
본 발명의 제형이 용액 또는 유탁액의 경우에는 담체 성분으로서 용매, 용매화제 또는 유탁화제가 이용되고, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알코올, 벤질 벤조에이트, 프로필렌글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 글리세롤 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 있다.
본 발명의 제형이 현탁액인 경우에는 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌 글리콜과 같은 액상 희석제, 에톡실화 이소스테아릴 알코올, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 제형이 계면-활성제 함유 클렌징인 경우에는 담체 성분으로서 지방족 알코올 설페이트, 지방족 알코올 에테르 설페이트, 설포숙신산 모노에스테르, 이세티오네이트, 이미다졸리늄 유도체, 메틸타우레이트, 사르코시네이트, 지방산 아미드 에테르 설페이트, 알킬아미도베타인, 지방족 알코올, 지방산 글리세리드, 지방산 디에탄올아미드, 식물성 유, 리놀린 유도체 또는 에톡실화 글리세롤 지방산 에스테르 등이 이용될 수 있다.
피부 노화 예방 또는 개선용 건강기능식품 또는 건강식품 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 피부 노화 예방 또는 개선용 건강기능식품 또는 건강식품 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
식품의 종류에는 특별한 제한은 없다. 본 발명의 유효물질을 첨가할 수 있는 식품의 예로는 드링크제, 육류, 소시지, 빵, 비스킷, 떡, 초콜릿, 캔디류, 스낵류, 과자류, 피자, 라면, 기타 면류, 껌류, 아이스크림류를 포함한 낙농제품, 각종 스프, 음료수, 알코올 음료 및 비타민 복합제, 유제품 및 유가공 제품 등이 있으며, 통상적인 의미에서의 건강식품 및 건강기능성식품을 모두 포함한다.
본 발명에 따른 유효물질을 함유하는 건강식품 및 건강기능성식품 조성물은 식품에 그대로 첨가하거나 다른 식품 또는 식품 성분과 함께 사용될 수 있고, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용될 수 있다. 유효물질의 혼합량은 그의 사용 목적(예방 또는 개선용)에 따라 적합하게 결정될 수 있다. 일반적으로, 건강식품 및 건강기능성식품 중의 상기 조성물의 양은 전체 식품 중량의 0.1 내지 90 중량부로 가할 수 있다. 그러나 건강 유지를 목적으로 하거나 또는 건강 조절을 목적으로 하는 장기간의 섭취의 경우에는 상기 양은 상기 범위 이하일 수 있으며, 안전성 면에서 아무런 문제가 없기 때문에 유효물질은 상기 범위 이상의 양으로도 사용될 수 있다.
본 발명의 건강식품 및 건강기능성식품 조성물은 지시된 비율로 필수 성분으로서 본 발명 유효물질을 함유하는 외에는 다른 성분에는 특별한 제한이 없으며 통상의 음료와 같이 여러 가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로서 함유할 수 있다. 상술한 천연 탄수화물의 예는 모노사카라이드, 예를 들어, 포도당, 과당 등; 디사카라이드, 예를 들어 말토스, 슈크로스 등; 및 폴리사카라이드, 예를 들어 덱스트린, 시클로덱스트린 등과 같은 통상적인 당, 및 자일리톨, 소르비톨, 에리트라이톨 등의 당알코올이다. 상술한 것 이외의 향미제로서 천연 향미제(타우마틴, 스테비아 추출물(예를 들어 레바우디오시드 A, 글리시르히진등) 및 합성 향미제(사카린, 아스파르탐 등)를 유리하게 사용할 수 있다. 상기 천연 탄수화물의 비율은 본 발명의 건강기능성 식품 조성물 100 당 일반적으로 약 1 내지 20 g, 바람직하게는 약 5 내지 12 g이다.
상기 외에 본 발명의 유효물질을 함유하는 건강식품 및 건강기능성식품 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제 및 중진제(치즈, 초콜릿 등), 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알코올, 탄산음료에 사용되는 탄산화제 등을 함유할 수 있다. 그 밖에 본 발명의 건강식품 및 건강기능성식품 조성물은 천연 과일쥬스 및 과일쥬스 음료 및 야채 음료의 제조를 위한 과육을 함유할 수 있다.
이러한 성분은 독립적으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 이러한 첨가제의 비율은 그렇게 중요하진 않지만 본 발명의 유효물질을 함유하는 건강식품 및 건강기능성식품 조성물 100 중량부 당 0.1 내지 약 20 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.
혈관 노화로 인해 유발되는 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 혈관 노화로 인해 유발되는 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
또한 본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염, 및 안지오텐신 II 수용체 차단제 (angiotensin II receptor blocker)를 포함하는 혈관 노화로 인해 유발되는 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다. 구체적으로 상기 안지오텐신 II 수용체 차단제는 로사르탄 (losartan), 발사르탄 (valsartan), 텔미사르탄 (telmisartan) 이르베사르탄 (irbesartan), 아질사르탄 (azilsartan) 및 올메사르탄 (olmesartan)으로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상을 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염과 함께 기존 고혈압치료제로 사용되고 있는 안지오텐신 II 수용체 차단제 (angiotensin II receptor blocker) 약물을 병용투여하는 경우 각 약물을 독립적으로 투여했을 때 보다 더 나은 혈압감소 효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 혈관 노화로 인해 유발되는 질환은 고혈압, 협심증, 심근경색증, 동맥경화, 전립샘 증식증, 혈관경련수축, 혈전증, 뇌경색 또는 뇌출혈일 수 있다.
본 발명의 화합물은 임상 투여시에 경구 및 비경구의 여러 가지 제형으로 투여될 수 있으며, 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 제조된다.
경구투여를 위한 고형 제제에는 정제, 환자, 산제, 과립제, 캡슐제, 트로키제 등이 포함되며, 이러한 고형 제제는 하나 이상의 본 발명의 화합물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 탄산칼슘, 수크로스(sucrose), 락토오스(lactose) 또는 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한, 단순한 부형제 외에 마그네슘 스티레이트 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구 투여를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제 또는 시럽제 등이 해당되는데, 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다.
비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁용제, 유제, 동결건조제제, 좌제 등이 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세롤, 젤라틴 등이 사용될 수 있다.
또한, 본 발명의 화합물의 인체에 대한 효과적인 투여량은 환자의 나이, 몸무게, 성별, 투여형태, 건강상태 및 질환 정도에 따라 달라질 수 있으며, 일반적으로 약 0.001-100 mg/kg/일이며, 바람직하게는 0.01-35 mg/kg/일이다. 몸무게가 70㎏인 성인 환자를 기준으로 할 때, 일반적으로 0.07-7000 mg/일이며, 바람직하게는 0.7-2500 ㎎/일이며, 의사 또는 약사의 판단에 따라 일정시간 간격으로 1일 1회 내지 수회로 분할 투여할 수도 있다.
혈관 노화로 인해 유발되는 질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품 또는 건강식품 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 혈관 노화로 인해 유발되는 질환의 예방 또는 개선용 건강기능식품 또는 건강식품 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 혈관 노화로 인해 유발되는 질환은 고혈압, 협심증, 심근경색증, 동맥경화, 전립샘 증식증, 혈관경련수축, 혈전증, 뇌경색 또는 뇌출혈일 수 있다.
신장질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 신장질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 신장질환은 신장염, 신우염, 신증후군, 급성신우신염, 만성신우신염, 요로감염증, 당뇨병성신증, 만성사구체신염, 급성진행성신염, 네프로제증후군, 소상사구체경화증, 막성신증 또는 막성증식성사구체신염일 수 있다.
신장질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품 또는 건강식품 조성물
본 발명은 화학식 1로 표시되는 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 포함하는 신장질환의 예방 또는 개선용 건강기능식품 또는 건강식품 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 조성물은 클로소(Klotho) 유전자의 발현량을 향상시킬 수 있다.
본 발명의 조성물에 있어서, 상기 신장질환은 신장염, 신우염, 신증후군, 급성신우신염, 만성신우신염, 요로감염증, 당뇨병성신증, 만성사구체신염, 급성진행성신염, 네프로제증후군, 소상사구체경화증, 막성신증 또는 막성증식성사구체신염일 수 있다.
이하, 본 발명을 하기의 실시예에 의하여 더욱 상세히 설명한다. 단, 하기의 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기의 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1> N-(벤조[d]옥사졸-2-일)-2-클로로-4-니트로벤즈아미드(
N
-(Benzo[d]oxazol-2-yl)-2-chloro-4-nitrobenzamide, FCCS-17064)의 제조
단계 1 : 디메틸 (2-클로로-4-니트로벤조일)카본이미도디티오에이트(Dimethyl (2-chloro-4-nitrobenzoyl)carbonimidodithioate, 17064-2-1)의 제조
2-클로로-4-니트로벤즈아미드(2-Chloro-4-nitrobenzamide) (500 mg, 2.49 mmol), 이황화 탄소(Carbon disulfide, CS2) (759 mg, 9.97 mmol), 아이오도메테인(Iodomethane) (1.13 g, 7.97 mmol)을 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide) (7 mL)에 녹인 후, 60% 수소화나트륨(sodium hydride) (200 mg, 4.98 mmol)을 넣고 실온에서 5시간동안 교반하였다.
반응 혼합물에 얼음물(ice-cold water)을 천천히 가하고 에틸 아세테이트(ethyl acetate)로 추출하였다. 유기층을 염수로 세척하고 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 실리카-겔 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (10% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 디메틸 (2-클로로-4-니트로벤조일)카본이미도디티오에이트(Dimethyl (2-chloro-4-nitrobenzoyl)carbonimidodithioate ,17064-2-1)를 옅은 노란색의 고체 (160 mg, 21%)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 8.34 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 8.29 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz), 8.20 (d, 1H, J = 8.4 Hz), 2.65 (s, 6H).
단계 2 : N-(벤조[d]옥사졸-2-일)-2-클로로-4-니트로벤즈아미드 (
N
-(Benzo[d]oxazol-2-yl)-2-chloro-4-nitrobenzamide, FCCS-17064)의 제조
상기 단계 1에서 얻은 디메틸 (2-클로로-4-니트로벤조일)카본이미도디티오에이트(Dimethyl (2-chloro-4-nitrobenzoyl)carbonimidodithioate ,17064-2-1) (150 mg, 0.49 mmol)를 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide) (15 mL)에 녹인 후, 2-아미노페놀(2-aminophenol) (53 mg, 0.49 mmol)을 넣었다.
반응 혼합물을 6시간 동안 환류한 후, 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물에 디에틸 에테르(diethyl ether)를 넣고 침전된 고체를 필터하여 얻은 고체를 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (40% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 목적 화합물 N-(벤조[d]옥사졸-2-일)-2-클로로-4-니트로벤즈아미드 (N-(Benzo[d]oxazol-2-yl)-2-chloro-4-nitrobenzamide, FCCS-17064)을 갈색의 고체 (70 mg, 30%)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 8.36 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 8.33 (dd, 1H, J = 2.0, 8.4 Hz), 8.09 (d, 1H, J = 8.4 Hz), 7.62-7.56 (m, 2H), 7.40-7.33 (m, 2H).
<실시예 2> 8-메틸-2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸(8-Methyl-2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065)의 제조
단계 1 : 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메틸페닐)티오우레아(1-(3,4-Dichlorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methylphenyl)thiourea, 17065-2-1)의 제조
2-아미노-p-크레졸(2-Amino-p-cresol) (300 mg, 2.44 mmol)을 메탄올(methanol) (12 mL)에 녹인 후, 3,4-디클로로페닐 이소티오시아네이트(3,4-dichlolrophenyl isothiocyanate) (497 mg , 2.44 mmol)를 넣고 실온에서 18시간동안 교반하였다. TLC(thin layer chromatography)로 반응종결을 확인한 후, 냉장고(0~4 oC)에서 냉각(cooling)하였다. 침전된 고체를 필터하여 흰색 고체 (346 mg) 로서 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메틸페닐)티오우레아 (1-(3,4-Dichlorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methylphenyl)thiourea, 17065-2-1)를 얻었고 추가 정제없이 다음 스텝에 사용하였다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 7.98 (dd, 1H, J = 0.4, 2.0 Hz), 7.55-7.50 (m, 2H), 7.43 (br s, 1H), 6.94-6.90 (m, 1H), 6.85 (d, 1H, J = 8.4 Hz) 2.24 (s, 3H).
단계 2 : 8-메틸-2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸(8-Methyl-2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065)의 제조
과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (375 mg, 5.29 mmol), 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (15 mL)의 용액에 상기 단계 1에서 얻은 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메틸페닐)티오우레아 (1-(3,4-Dichlorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methylphenyl)thiourea, 17065-2-1) (346 mg, 1.06 mmol)를 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (25 mL)에 녹인 용액을 천천히 가한 후, 실온에서 18시간동안 교반하였다.
반응 혼합물에 디클로로메테인(dichloromethane)과 물을 넣고 추출하였다. 유기층을 염수로 세척하고 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (10% Ethyl acetate / n-hexane)으로 정제하여 목적 화합물 8-메틸-2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸 (8-Methyl-2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065)을 흰색의 고체 (170 mg, 24%, 2 steps)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 8.29 (d, 1H, J = 2.8 Hz), 7.73 (dd, 1H, J = 2.8, 8.8 Hz), 7.76 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.32-7.20 (m, 1H), 7.28 (d, 1H, J = 8.0 Hz), 7.00-6.970 (m, 1H), 2.41 (s, 3H).
<실시예 3> 2-((3,4-디클로로페닐)아미노)벤조[d]옥사졸-5-올 (2-((3,4-dichlorophenyl)amino)benzo[d]oxazol-5-ol ,FCCS-17066)의 제조
단계 1 : 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메톡시페닐)티오우레아 (1-(3,4-Dichlorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methoxyphenyl)thiourea ,17066-3-1)의 제조
2-아미노-4-메톡시페놀(2-Amino-4-methoxyphenol) (1.13 g, 8.12 mmol)을 메탄올(methanol) (40 mL)에 녹인 후, 3,4-디클로로페닐 이소티오시아네이트 (3,4-dichlolrophenyl isothiocyanate) (1.99 g, 9.74 mmol)를 넣고 실온에서 18시간동안 교반하였다. TLC(thin layer chromatography)로 반응종결을 확인한 후, 냉장고(0~4 oC)에서 냉각(cooling)하였다. 침전된 고체를 필터하여 갈색 고체 (2 g) 로서 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메톡시페닐)티오우레아 (1-(3,4-Dichlorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methoxyphenyl)thiourea ,17066-3-1)을 얻었고 추가 정제없이 다음 스텝에 사용하였다.
1H NMR (400 MHz, methanol-d4); δ 7.82 (d, 1H, J = 2.4 Hz), 7.48-7.44 (m, 2H), 7.39 (dd, 1H, J = 1.4, 8.8 Hz), 6.81 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 6.66 (dd, 1H, J = 1.6, 8.8 Hz), 3.73 (s, 3H).
단계 2 : N-(3,4-디클로로페닐)-5-메톡시벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-dichlorophenyl)-5-methoxybenzo[d]oxazol-2-amine ,17066-3-2)의 제조
과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (540 mg, 7.6 mmol), 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (20 mL)의 용액에 상기 단계 1에서 얻은 17066-3-1 (525 mg, 1.52 mmol)을 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (30 mL)에 녹인 용액을 천천히 가한 후, 실온에서 18시간동안 교반하였다. 반응 혼합물에 디클로로메테인(dichloromethane)과 물을 넣고 추출 하였다. 유기층을 염수로 세척하고 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (20% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 N-(3,4-디클로로페닐)-5-메톡시벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-dichlorophenyl)-5-methoxybenzo[d]oxazol-2-amine ,17066-3-2)을 갈색의 고체 (230 mg, 35%)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 8.29 (d, 1H, J = 2.4 Hz), 7.70 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz), 7.55 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.30 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.08 (d, 1H, J = 2.8 Hz), 7.74 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz), 3.84 (s, 3H).
단계 3 : 2-((3,4-디클로로페닐)아미노)벤조[d]옥사졸-5-올 (2-((3,4-dichlorophenyl)amino)benzo[d]oxazol-5-ol ,FCCS-17066)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 2에서 얻은 17066-3-2 (200 mg, 0.65 mmol)을 디클로로메테인(dichloromethane) (15 mL, anhydrous)에 녹인 후, 빙점조(ice-bath)로 냉각(cooling)하였다. 삼브롬화붕소(BBr3) (3.23 mL, 1.0M in dichloromethane)를 천천히 넣어주고 실온까지 온도를 올린 후, 24시간동안 교반하였다. 수산화나트륨(NaOH)용액 (8 mL, 1.0M in water)을 천천히 넣어 반응을 종결하고, 분별깔때기(separatory funnel)로 옮겨 유기층과 물층을 분리하였다. 물층을 에틸아세테이트(ethyl acetate)로 추출한 후, Na2SO4로 건조한 후, 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (40% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 목적 화합물 2-((3,4-디클로로페닐)아미노)벤조[d]옥사졸-5-올 (2-((3,4-dichlorophenyl)amino)benzo[d]oxazol-5-ol ,FCCS-17066)을 갈색의 고체 (97 mg, 50%)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, acetone-d6); δ 8.29 (br s, -OH), 8.26 (d, 1H, J = 2.4 Hz), 7.72 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz), 7.56 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.21 (dd, 1H, J = 2.0, 7.2 Hz), 6.95 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 6.66 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz).
<실시예 4> N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-2-클로로-5-니트로벤즈아미드 (N-(2-(4-Ethylphenylamino)benzo[d]oxazol-5-yl)-2-chloro-5-nitrobenzamide ,FCCS-17067)의 제조
단계 1 : 1-(4-에틸페닐)-3-(2-하이드록시-5-니트로페닐)티오우레아 (1-(4-ethylphenyl)-3-(2-hydroxy-5-nitrophenyl)thiourea ,Interm-3-1)의 제조
2-아미노-4-니트로페놀(2-Amino-4-nitrophenol) (1.88 g, 12.25 mmol)과 4-에틸페닐 이소티오시아네이트(4-ethylphenyl isothiocyante) (2 g, 12.25 mmol)를 메탄올(methanol) (80 mL)에 녹인 후, 실온에서 하루동안 교반하였다. 감압하에서 용매를 제거한 후, 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (20% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 1-(4-에틸페닐)-3-(2-하이드록시-5-니트로페닐)티오우레아 (1-(4-ethylphenyl)-3-(2-hydroxy-5-nitrophenyl)thiourea ,Interm-3-1)을 갈색의 고체 (2.9 g, 65%)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, methanol-d4); δ 9.24 (d, 1H, J = 2.8 Hz), 7.88 (dd, 1H, J = 2.0, 9.2 Hz), 7.36 (d, 2H, J = 8.4 Hz), 7.25 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 6.94 (d, 1H, J = 9.2 Hz), 2.66 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.24 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
단계 2 : N-(4-에틸페닐)-5-니트로벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(4-ethylphenyl)-5-nitrobenzo[d]oxazol-2-amine ,Interm-3-2)의 제조
과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (2.8 g, 39.38 mmol), 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (130 mL)의 용액을 빙점조(ice-bath)에서 냉각(cooling)한 후, 상기 단계 1에서 얻은 Interm-3-1 (2.5 g, 7.88 mmol)을 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (170 mL)에 녹인 용액을 천천히 가한 후, 실온에서 18시간동안 교반하였다. 반응 혼합물에 디클로로메테인(dichloromethane)과 물을 넣고 추출 하였다. 유기층을 염수로 세척하고 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (10% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 화합물 Interm-3-2을 갈색의 고체 (1.78 g, 80 %)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, methanol-d4); δ 8.20 (d, 1H, J = 1.0 Hz), 8.08 (dd, 1H, J = 0.8, 9.6 Hz), 7.59 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.51 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.22 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 2.64 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.24 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
단계 3 : N-(4-에틸페닐)벤조[d]옥사졸-2,5-디아민 (N-(4-ethylphenyl)benzo[d]oxazole-2,5-diamine ,Interm-3-3)의 제조
Pd/C(Palladium on carbon) (1.70 g, 0.80 mmol, 10 wt. %, wet support)을 둥근 플라스크(round-flask)에 칭량하여 넣은 후, Ar가스로 퍼징(purging)하였다. 여기에 상기 단계 2에서 얻은 Interm-3-2 (1.58 g, 5.30 mmol)을 메탄올(methanol) (80 mL)에 녹인 용액을 천천히 넣은 후, H2(g)로 치환하였다. H2(g)를 bubbling하면서, 실온에서 18시간동안 교반하였다. TLC(thin layer chromatography)로 반응종결을 확인 후, Celite pad로 필터한 후, 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (40% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 화합물 Interm-3-3을 옅은 갈색의 고체 (1.21 g, 90 %)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, Acetone-d6); δ 7.71 (m, 2 H), 7.19 (m, 2H), 7.03 (dd, 1H, J = 0.8, 8.4 Hz), 6.75 (dd, 1H, J = 0.8, 2.0 Hz), 6.44 (dd, 1H, J = 2.0, 8.4 Hz), 2.60 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.19 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
단계 4 : N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-2-클로로-5-니트로벤즈아미드 (N-(2-(4-Ethylphenylamino)benzo[d]oxazol-5-yl)-2-chloro-5-nitrobenzamide ,FCCS-17067)의 제조
상기 단계 3에서 얻은 Interm-3-3 (253 mg, 1 mmol), 2-클로로-5-니트로벤조일 클로라이드(2-chloro-5-nitrobenzoyl chloride) (220 mg, 1 mmol)을 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide, DMF) (4 mL)에 녹인 후, 디이소프로필에틸아민(diisopropylethylamine, DIPEA) (129 mg, 1mmol)을 넣고 실온에서 18시간동안 교반하였다. 18시간 후, 2-클로로-5-니트로벤조일 클로라이드(2-chloro-5-nitrobenzoyl chloride)와 디이소프로필에틸아민(diisopropylethylamine, DIPEA) 각 0.5 당량을 추가하고 8시간동안 더 교반하였다. 반응 혼합물에 10% HCl (aq.)을 넣고 에틸아세테이트(ethyl acetate)로 추출한 후, 유기층을 포화된 NaHCO3 수용액과 염수로 차례로 닦아내었다. 유기층을 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (40% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 목적 화합물 N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-2-클로로-5-니트로벤즈아미드 (N-(2-(4-Ethylphenylamino)benzo[d]oxazol-5-yl)-2-chloro-5-nitrobenzamide ,FCCS-17067)을 옅은 노란색의 고체 (120 mg, 27 %)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6); δ 10.71 (s, 1H), 10.53 (s, 1H), 8.48 (d, 1H, J = 2.8 Hz), 8.34 (dd, 1H, J = 2.4, 8.8 Hz), 7.90 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.82 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 7.64 (d, 2H, J = 8.8 Hz), 7.46 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.40 (dd, 1H, J = 2.0, 8.4 Hz), 7.21 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 2.58 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.18 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
<실시예 5> N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3,4-디클로로벤즈아미드(N-(2-(4-Ethylphenylamino)benzo[d]oxazol-5-yl)-3,4-dichlorobenzamide ,FCCS-17068)의 제조
상기 실시예 4의 단계 3에서 얻은 Interm-3-3 (253 mg, 1 mmol), 3,4-디클로로벤조일 클로라이드(3,4-dichlorobenzoyl chloride) (209 mg, 1 mmol)을 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide, DMF) (4 mL)에 녹인 후, 디이소프로필에틸아민(diisopropylethylamine, DIPEA) (129 mg, 1mmol)을 넣고 실온에서 18시간동안 교반하였다. 반응 혼합물에 10% HCl (aq.)을 넣고 에틸 아세테이트(ethyl acetate)로 추출한 후, 유기층을 포화된 NaHCO3 수용액과 염수로 차례로 닦아내었다. 유기층을 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (40% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 목적 화합물 FCCS-17067을 옅은 흰색의 고체 (270 mg, 64 %)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, Acetone-d6); δ 8.18 (d, 1H, J = 2.4 Hz), 7.99 (t, 1H, J = 2.4 Hz), 7.97 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 7.80-7.20 (m, 3H), 7.70-7.50 (m, 1H), 7.35 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.24 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 2.63 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.22 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
<실시예 6> N-(2-(4-에틸페닐아미노)벤조[d]옥사졸-5-일)-3-(클로로메틸)벤즈아미드 (N-(2-(4-Ethylphenylamino)benzo[d]oxazol-5-yl)-3-(chloromethyl)benzamide ,FCCS-17069)의 제조
상기 실시예 4의 단계 3에서 얻은 Interm-3-3 (253 mg, 1 mmol), 3-(클로로메틸)벤조일 클로라이드(3-(chloromethyl)benzoyl chloride) (189 mg, 1 mmol)를 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide, DMF) (4 mL)에 녹인 후, 디이소프로필에틸아민(diisopropylethylamine, DIPEA) (129 mg, 1mmol)을 넣고 실온에서 18시간동안 교반하였다. 반응 혼합물에 10% HCl (aq.)을 넣고 에틸아세테이트(ethyl acetate)로 추출한 후, 유기층을 포화된 NaHCO3 수용액과 염수로 차례로 닦아내었다. 유기층을 Na2SO4로 건조한 후 감압하에서 용매를 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (30% Ethyl acetate / n-hexane)로 정제하여 목적 화합물 FCCS-17067을 옅은 흰색의 고체 (170 mg, 40 %)로 얻었다.
1H NMR (400 MHz, Acetone-d6); δ 8.08 (t, 1H, J = 1.2 Hz), 8.03 (d, 1H, J = 2.0 Hz), 7.98 (dt, 1H, J = 1.2, 7.6 Hz), 7.80-7.75 (m, 2H), 7.69-7.65 (m, 1H), 7.57-7.52 (m, 3H), 7.34 (d, 1H, J = 8.8 Hz), 7.26-7.22 (m, 2H), 2.62 (q, 2H, J = 7.6 Hz), 1.22 (t, 3H, J = 7.6 Hz).
<실시예 7> 2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸(2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065-A)의 제조
단계 1 : 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시페닐)티오우레아 (1-(3,4-dichlorophenyl)-3-(2-hydroxyphenyl)thiourea ,FCCS-17065-A-2-1)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 2-아미노페놀(2-Aminophenol) (300 mg, 2.749 mmol)에 메탄올(anhydrous MeOH) (8 mL)을 가하여 녹인 후 3,4-디클로로페닐 이소티오시아네이트(3,4-dichlorophenyl isothiocyanate) (0.47 mL, 3.299 mmol)를 천천히 적가하고 14 시간 동안 상온에서 교반시킨다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인하고 감압하여 용매를 제거 후 crude 에 silica를 넣어 흡착시키고 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (30% EtOAc/hexane, Rf=0.4)를 수행하여 1-(3,4-디클로로페닐)-3-(2-하이드록시페닐)티오우레아 (1-(3,4-dichlorophenyl)-3-(2-hydroxyphenyl)thiourea ,FCCS-17065-A-2-1), 793 mg (light brown foamy solid, 92%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ 7.82 (d, 1 H, J = 2.8 Hz), 7.63 (d, 1 H, J = 7.6 Hz), 7.45 (d, 1 H, J = 8.8 Hz), 7.39 (dd, 1 H, J = 8.6, 2.2 Hz), 7.11-7.06 (m, 1 H), 6.90 (dd, 1 H, J = 8.0, 1.2 Hz), 6.85 (td, 1 H, J = 7.6, 1.2 Hz)
단계 2 : 2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸(2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065-A)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 1에서 얻은 FCCS-17065-A-2-1 (400 mg, 1.277 mmol)과 과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (454 mg, 6.386 mmol)을 넣고 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (48 mL)을 가하여 상온에서 14 시간 동안 교반한다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인 후 crude 에 silica를 넣어 흡착시키고 감압한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (20% EtOAc/hexane, Rf=0.4)를 수행하여 목적 화합물 2-[N-(3,4-디클로로페닐)]아미노벤즈옥사졸(2-[N-(3,4-dichlorophenyl)]aminobenzoxazole ,FCCS-17065-A), 231 mg (white solid, 65%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ 8.06 (d, 1 H, J = 2.8 Hz), 7.55 (dd, 1 H, J = 8.6, 2,6 Hz), 7.48-7.45 (m, 2 H), 7.39 (d, 1 H, J = 8.0 Hz), 7.24 (td, 1 H, J = 7.6, 1.2 Hz), 7.16 (td, 1 H, J = 7.8, 1.2 Hz)
<실시예 8> N-(3,4-디클로로페닐)나프토[2,3-d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-dichlorophenyl)naphtho[2,3-d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-B)의 제조
단계 1 : 1-(4,5-디클로로페닐)-3-(3-하이드록시나프탈렌-2-일)티오우레아 (1-(3,4-dichlorophenyl)-3-(3-hydroxynaphthalen-2-yl)thiourea, FCCS-17065-B-2-1)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 3-아미노-2-나프톨(3-Amino-2-naphthol) (350 mg, 2.119 mmol)에 메탄올(anhydrous MeOH) (7 mL)과 클로로포름(chloroform, CHCl3) (2 mL)을 가하여 5 분간 상온에서 교반 후 3,4-디클로로페닐 이소티오시아네이트(3,4-dichlorophenyl isothiocyanate) (0.38 mL, 2.638 mmol)를 천천히 적가하고 13 시간 동안 상온에서 교반시킨다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인하고 감압하여 용매를 제거후 디클로로메테인(dichloromethane) (8 mL)을 가하여 5 분간 교반 후, 녹지않는 고체를 필터하여 1-(4,5-디클로로페닐)-3-(3-하이드록시나프탈렌-2-일)티오우레아 (1-(3,4-dichlorophenyl)-3-(3-hydroxynaphthalen-2-yl)thiourea, FCCS-17065-B-2-1), 792 mg (white solid, 99%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6); δ 10.48 (s, 1 H), 10.34 (s, 1 H), 9.57 (s, 1 H), 8.59 (s, 1 H), 8.05 (d, 1 H, J = 2.0 Hz), 7.73 (d, 1 H, J = 8.0 Hz), 7.67 (d, 1 H, J = 7.6 Hz), 7.60 (d, 1 H, J = 8.4 Hz), 7.52 (dd, 1 H, J = 8.6, 2.2 Hz), 7.35 (t, 1 H, J = 7.2 Hz), 7.27 (t, 1 H, J = 7.6 Hz), 7.24 (s, 1 H)
단계 2 : N-(3,4-디클로로페닐)나프토[2,3-d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-dichlorophenyl)naphtho[2,3-d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-B)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 1에서 얻은 FCCS-17065-B-2-1 (400 mg, 1.101 mmol)과 과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (391 mg, 5.505 mmol)을 넣고 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (42 mL)을 가하여 상온에서 14 시간 동안 교반한다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인 후 crude 에 silica를 넣어 흡착시키고 감압한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (20% EtOAc/hexane, Rf=0.5)를 수행하여 목적 화합물 N-(3,4-디클로로페닐)나프토[2,3-d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-dichlorophenyl)naphtho[2,3-d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-B), 236 mg (white solid, 65%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6); δ 11.22 (s, 1 H), 8.20 (d, 1 H, J = 2.0 Hz), 7.98-7.95 (m, 4 H), 7.72 (dd, 1 H, J = 8.8, 2.4 Hz), 7.66 (d, 1 H, J = 8.4 Hz), 7.47-7.41 (m, 2 H)
<실시예 9> N-(3,4-디플로오로페닐)-5-메틸벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)-5-methylbenzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-C)의 제조
단계 1 : 1-(3,4-디플루오로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메틸페닐)티오우레아 (1-(3,4-difluorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methylphenyl)thiourea ,FCCS-17065-C-2-1)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 2-아미노-p-크레졸(2-Amino-p-cresol) (300 mg, 2.436 mmol)에 메탄올(anhydrous MeOH) (8 mL)을 가하여 녹인 후 3,4-디플루오로페닐 이소티오시아네이트(3,4-difluorophenyl isothiocyanate) (0.37 mL, 2.923 mmol)를 천천히 적가하고 13 시간 동안 상온에서 교반시킨다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인하고 감압하여 용매를 제거 후 crude 에 silica를 넣어 흡착시키고 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (30% EtOAc/hexane, Rf=0.4)를 수행하여 1-(3,4-디플루오로페닐)-3-(2-하이드록시-5-메틸페닐)티오우레아 (1-(3,4-difluorophenyl)-3-(2-hydroxy-5-methylphenyl)thiourea ,FCCS-17065-C-2-1), 710 mg (white foamy solid, 99%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ 7.57-7.52 (m, 1 H), 7.40 (s, 1 H), 7.25-7.13 (m, 2 H), 6.91 (dd, 1 H, J = 8.0, 1.6 Hz), 6.79 (d, 1 H, J = 8.0 Hz), 2.25 (s, 3 H)
단계 2 : N-(3,4-디플로오로페닐)-5-메틸벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)-5-methylbenzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-C)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 1에서 얻은 FCCS-17065-C-2-1 (400 mg, 1.359 mmol)과 과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (483 mg, 6.795 mmol)을 넣고 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN), MeCN) (52 mL)을 가하여 상온에서 14 시간 동안 교반한다. TLC(thin layer chromatography)로 확인하여 출발물질이 모두 사라짐을 확인 후 crude 에 silica를 넣어 흡착시키고 감압한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (20% EtOAc/hexane, Rf=0.45)를 수행하여 목적 화합물 N-(3,4-디플로오로페닐)-5-메틸벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)-5-methylbenzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-17065-C), 224 mg (white solid, 63%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ = 7.83-7.78 (m, 1 H), 7.33-7.29 (m, 1 H), 7.27-7.20 (m, 3 H), 6.97-6.95 (m, 1 H), 2.41 (s, 3 H)
<실시예 10> N-(3,4-디플로오로페닐)벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)benzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-19025)의 합성
단계 1 : 1-(3,4-디플루오로페닐)-3-(2-하이드록시페닐)티오우레아 (1-(3,4-difluorophenyl)-3-(2-hydroxyphenyl)thiourea ,FCCS-19025-2-1)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 2-아미노페놀(2-Aminophenol) (150 mg, 1.37 mmol)을 메탄올(methanol) (8 mL)에 녹인 후, 3,4-디플루오로페닐 이소티오시아네이트(3,4-difluorophenyl isothiocyanate) (224 ㎕, 1.65 mmol)를 천천히 가한 후, 실온에서 13시간동안 교반하였다. TLC(thin layer chromatography)로 반응종결을 확인한 후, 감압하에서 메탄올(Methanol)을 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (20% Acetone / n-hexane)로 정제하여 1-(3,4-디플루오로페닐)-3-(2-하이드록시페닐)티오우레아 (1-(3,4-difluorophenyl)-3-(2-hydroxyphenyl)thiourea ,FCCS-19025-2-1)를 옅은 노란색의 고체 (354 mg, 92%)로 얻었다.
1H-NMR (400MHz, MeOH-d4) δ 7.62 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.55 (ddd, J= 2.4 Hz, 1H), 7.25-7.13 (m, 2H), 7.11-7.05 (m, 1H), 6.92-6.82 (m, 2H); ESI-(+) 281.3 [M+H]+.
단계 2 : N-(3,4-디플로오로페닐)벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)benzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-19025)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 1에서 얻은 FCCS-19025-2-1 (224 mg, 0.80 mmol), 과산화칼륨(Potassium superoxide, KO2) (284 mg, 4.00 mmol)을 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN) (25 mL)에 녹인 후, 상온에서 14시간동안 교반하였다. TLC(thin layer chromatography)로 반응종결을 확인한 후, 감압하에서 아세토니트릴(acetonitrile, MeCN)을 제거하였다. 반응 혼합물을 크로마토그래피(Silica-gel column chromatrography) (10 ~ 20% Ethyl acetate / n-hexane)으로 정제하여 목적 화합물 N-(3,4-디플로오로페닐)벤조[d]옥사졸-2-아민 (N-(3,4-difluorophenyl)benzo[d]oxazol-2-amine ,FCCS-19025)을 흰색의 고체 (160 mg, 82%)로 얻었다.
1H-NMR (400MHz, MeOH-d4) δ 7.82 (ddd, J= 2.8 Hz, 1H), 7.42 (d, J = 7.6 Hz, 1H), 7.36 (d, J = 8.0 Hz, 1H), 7.34-7.29 (m, 1H), 7.28-7.18 (m, 2H), 7.16-7.10 (m, 1H); ESI-(+) 247.2 [M+H]+.
하기 표 1에 실시예 1 내지 실시예 10의 화학구조식을 나타내었다.
| 실시예 |
화학구조식 |
실시예 |
화학구조식 |
실시예 1 (FCCS-17064) |
|
실시예 6 (FCCS-17069) |
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실시예 2 (FCCS-17065) |
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실시예 7 (FCCS-17065-A) |
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실시예 3 (FCCS-17066) |
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실시예 8 (FCCS-17065-B) |
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실시예 4 (FCCS-17067) |
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실시예 9 (FCCS-17065-C) |
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실시예 5 (FCCS-17068) |
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실시예 10 (FCCS-19025) |
|
<비교예 1>
N-(2-클로로페닐)-1H-인돌-3-카르복사미드(N-(2-chlorophenyl)-1H-indole-3-carboxamide)를 비교예 1로 사용하였다.
<비교예 2>
2'-클로로아세트아닐라이드(2'-Chloroacetanilide, C0621)를 구매하여 비교예 2로 사용하였다.
<비교예 3>
N-메틸-1H-인돌-3-카르복사미드(N-methyl-1H-indole-3-carboxamide, FCCS-16030)를 구매하여 비교예 3으로 사용하였다.
<비교예 4> N-(2-((클로로페닐)아미노)-2-옥소에틸)-1H-인돌-3-카르복사미드(N-(2-((2-chlorophenyl)amino)-2-oxoethyl)-1H-indole-3-carboxamide, FCCS-16031)의 제조
단계 1 : 메틸 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세테이트(methyl 2-(1H-indole-3-carboxamido)acetate, CCS-16031-3-1)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 인돌-3-카르복실산(Indole-3-carboxylic acid) (600 mg, 3.72 mmol)과 글라이신 메틸 에스터(glycine methyl ester) (467 mg, 3.72 mmol)를 클로로포름(Chloroform) (11 mL)에 녹이고 빙점조(ice-bath)하에서 냉각(cooling)한다. 트리에틸아민(Triethylamine) (1.04 mL, 7.446 mmol)과 N,N-다이아이소프로필카보다이이미드(N,N-diisopropylcarbodiimide)를 추가로 넣어준 후, 0℃ 에서 14 시간 동안 교반한다. 10% NaHCO3 수용액으로 씻어준 후 5% HCl 수용액으로 씻어주고 무수 Na2SO4 Pad에 통과시켜, 남은 수분을 제거한 후 감압하에서 용매를 제거한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (70% ethyl aceate/n-hexane)를 수행하여 메틸 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세테이트(methyl 2-(1H-indole-3-carboxamido)acetate, CCS-16031-3-1) 430 mg (white solid, 50%)을 mixture 상태로 얻었다. 추가 정제없이 다음 스텝으로 진행하였다. ESI-MS : 231.2 [M-H]-
단계 2 : 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세트산 (2-(1H-indole-3-carboxamido)acetic acid , FCCS-16031-3-2)의 제조
상기 단계 1에서 얻은 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세테이트(methyl 2-(1H-indole-3-carboxamido)acetate, CCS-16031-3-1) (220 mg, 0.947 mmol)을 테트라하이드로퓨란(tetrahydrofuran) (6 mL)에 녹이고, 여기에 수산화 리튬 수화물(LiOH monohydrate) (131mg, 3.126 mmol)을 물 (2 mL)에 녹인 용액을 넣고 상온에서 1 시간 동안 교반한다. 1.0N HCl 수용액을 가해 pH 2로 조정 후, 에틸아세테이트(ethyl acetate)로 추출하였다. 무수 Na2SO4 Pad에 통과시켜, 남은 수분을 제거한 후 감압하에서 용매를 제거한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (10% methanol/dichloromehtane)를 수행하여 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세트산 (2-(1H-indole-3-carboxamido)acetic acid , FCCS-16031-3-2) 147 mg (yellow foamy solid, 71%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ 8.10-8.08 (m, 1 H), 7.92 (s, 1 H), 7.43 (dt, J = 8.0, 1.2 Hz, 1 H), 7.17 (quint d, J = 7.2, 1.6 Hz, 2 H), 4.12 (s, 2 H)
단계 3 : N-(2-((2-클로로페닐)아미노)-2-옥소에틸)-1H-인돌-3-카르복스아미드(N-(2-((2-chlorophenyl)amino)-2-oxoethyl)-1H-indole-3-carboxamide ,FCCS-16031)의 제조
Ar 가스 분위기 하에서 상기 단계 2에서 얻은 2-(1H-인돌-3-카르복사미도)아세트산 (2-(1H-indole-3-carboxamido)acetic acid , FCCS-16031-3-2) (200 mg, 0.917 mmol)과 TSTU(N,N,N',N'-Tetramethyl-O-(N-succinimidyl)uronium tetrafluoroborate) (290 mg, 0.962 mmol)를 디메틸포름아미드(N,N-dimethylformamide) (4 mL, anhydorus)에 녹이고 N,N-디이소프로필에틸아민(DIEA) (0.4 mL, 2.293 mmol)를 가한 후, 상온에서 3시간 동안 교반한다. 2-클로로아닐린(2-chloroaniline) (0.29 mL, 2.751 mmol) 과 N,N-디이소프로필에틸아민(DIEA) (0.64 mL, 3.668 mmol)을 넣어주고 60℃ 에서 4시간 동안 가열한다. 감압하에서 용매를 제거 후 디클로로메테인(dichloromethane)과 NH4Cl 포화수용액을 가해 추출을 하여 유기층을 얻고 무수 Na2SO4 Pad에 통과시켜, 남은 수분을 제거한 후 감압하에서 용매를 제거한다. 실리카-겔 플래시 컬럼 크로마토그래피(Silica-gel Flash Column Chromatography) (70% ethyl acetate/n-hexane)를 수행하여 목적 화합물 N-(2-((2-클로로페닐)아미노)-2-옥소에틸)-1H-인돌-3-카르복사미드(N-(2-((2-chlorophenyl)amino)-2-oxoethyl)-1H-indole-3-carboxamide ,FCCS-16031) 20 mg (white solid, 6.6%)을 얻었다.
1H NMR (400 MHz, CD3OD); δ 8.15-8.12 (m, 1 H), 8.04 (dd, J = 8.0, 1.2 Hz, 1 H), 7.97 (s, 1 H), 7.46-7.41 (m, 2 H), 7.33-7.28 (m, 1 H), 7.23-7.12 (m, 3 H), 4.26 (s, 2 H)
<실험예 1-1> 루시퍼레이즈(Luciferase) 발현 실험(비교예 1 내지 4)
루시퍼레이즈 활성 평가를 통한 klotho 유전자의 발현 유무를 평가하기 위해 사람 신장의 근위곡세뇨관(proximal tubule)의 상피(epithelium)세포인 RPTEC (human renal proximal tubule epithelial cell, ATCC CRL-4031)세포를 미국의 Lonza사로부터 구매하여 사용하였다.
배양을 위해서는 역시 같은 Lonza사에서 제조한 Renal Epithelial Growth Medium (REGM™) Bulletkit를 사용하였고, 37℃, 5% CO2 조건에서 배양하였다. 루시퍼레이즈 발현을 위한 플라스미드는 사람의 KL(klotho)유전자의 프로모터 부위가 반딧불 루시퍼레이즈(firefly luciferase)유전자 발현을 조절하도록 배치된 것을 사용하였다.
플라스미드는 Roche사의 X-treme GENE transfection reagent를 사용하여 세포 내로 집어넣었다. 세포에서 발현된 루시퍼레이즈 활성은 Promega사에서 제조한 Dual-Luciferase reporter assay system을 이용하여 측정하였다. 각 화합물을 표시된 농도씩 배양된 세포에 24시간 처리한 뒤에 루시퍼레이즈 활성을 측정하였다. 루시퍼레이즈의 활성이 높은 경우는 klotho 유전자의 발현이 증가될 수 있음을 간접적으로 나타낸다.
비교예 1 내지 비교예 4를 RPTEC세포에 5μM의 농도로 처리하고 사람의 klotho 유전자의 시작부위로부터 1.7kbp의 앞까지의 프로모터를 포함한 리포터 유전자 또는 사람의 klotho 유전자의 시작부위로부터 240bp의 앞까지의 프로모터를 포함한 리포터 유전자를 이용하여 리포터 유전자의 발현을 확인하였다.
그 결과, 도 1에 나타낸 바와 같이, 비교예 1의 화합물의 루시퍼레이즈 활성이 가장 높은 것을 확인하였다.
<실험예 1-2> 루시퍼레이즈 발현 실험(실시예 1 내지 6)
상기 실험예 1-1의 결과를 기반으로 하여, 비교예 1과 유사한 화학구조를 갖는 실시예 1 내지 6을 합성하고, 본 실험예 1-2를 실시하였다.
사람 신장의 근위곡세뇨관(proximal tubule)의 상피(epithelium)세포인 RPTEC에 실시예 1 내지 6을 각각 0.5, 1 및 5μM의 농도로 처리하고, 비교예 1은 5μM의 농도로 처리하여 사람의 klotho 유전자의 -2.1kb 업스트림까지 포함된 프로모터를 포함한 리포터 유전자(pHKP-luc)를 이용하여 리포터 유전자의 발현을 확인한 결과를 도 2 및 도 3에 나타내었다.
도 2에 나타낸 바와 같이, 실시예 1, 실시예 2의 화합물의 리포터 유전자의 발현이 비교예 1과 유사한 수준인 것을 확인하였다.
도 3에 나타낸 바와 같이, 비교예 1 및 실시예 1 내지 3을 RPTEC세포에 5μM의 농도로 처리하고, 사람의 klotho 유전자의 -2.1kb 업스트림까지 포함된 프로모터를 포함한 리포터 유전자(pHKP-luc)를 이용하여 리포터 유전자의 발현을 확인한 결과, 실시예 2의 화합물이 비교예 1과 유사한 수준인 것을 확인하였다.
<실험예 2> Real-time PCR 실험을 이용한 klotho(KL) 유전자 발현량 정량평가
비교예 1 및 실시예 1 내지 2의 화합물을 6시간 동안 처리한 사람 신장의 근위곡세뇨관(proximal tubule)의 상피(epithelium)세포인 RPTEC세포에서 RNA 추출을 위해 Qiagen사의 RNeasy kit을 이용하였다. 추출된 RNA는 Thermo사의 Superscript II kit을 이용하여 cDNA를 제조하였고 KL(klotho)유전자 특이적 키트는 Appliedbiosystem사의 Taqman Gene Expression assays를 이용하여 실시한 결과를 도 4에 나타내었다.
도 4에 나타낸 바와 같이, 실시예 2의 화합물이 비교예 1과 유사한 수준인 것을 확인하였다.
본 실험예 2의 결과를 기반으로, 실시예2 화합물과 화학구조가 유사한 실시예 7 내지 10 화합물을 합성하여 다음 실험예 3에 사용하였다.
<실험예 3> 일반 PCR 실험을 이용한 klotho(KL)유전자 발현량 정량평가
실시예 7 내지 10을 2.5μM씩 6시간 사람 신장의 근위곡세뇨관(proximal tubule)의 상피(epithelium)세포인 RPTEC세포에 처리 후 세포로부터 RNA을 추출하고 추출된 RNA는 Thermo사의 Superscript II kit을 이용하여 cDNA를 제조한 뒤 일반 PCR실시하였다.
실험에 사용된 프라이머의 정보는 아래와 같다.
KL-F GATAGAGAAAAATGGCTTCCCTCC (서열번호 1)
KL-R GGTCGGTAAACTGAGACAGAGTGG (서열번호 2)
GAPDH-F TGACAACTTTGGTATCGTGGAAGG (서열번호 3)
GAPDH-R AGGGATGATGTTCTGGAGAGCC (서열번호 4)
PCR로 증폭된 DNA는 아가로오스 젤에서 전기영동 후 브로민화 에티둠(Ethidium Bromide)염색을 통해 확인하고, 밴드 내의 DNA양은 SpeedyQuant 프로그램을 이용하여 정량비교하여 도 5에 나타내었다.
도 5에 나타낸 바와 같이, 비교예 1 보다 실시예 8 내지 10의 klotho(KL)유전자 발현량이 더욱 높은 것으로 확인되었고, 특히 실시예 10은 비교예 1 대비 약 10배나 향상되는 것으로 나타났다.
<실험예 4> 독성 테스트
배양된 HK2(Human kidney-2)세포에 비교예 1, 실시예 2 및 실시예 9 내지 실시예 10을 25μM 또는 12.5μM 농도로 처리하고 24시간 뒤에 EZ-Cytox kit을 이용하여 세포독성을 측정하였다. EZ-Cytox는 살아있는 세포의 미토콘드리아 효소에 의해 450nm에서 흡광도를 갖는 포르마잔(formazan)을 생성하므로 살아있는 세포는 450nm에서 더 높은 흡광도를 나타낸다. 처리한 화합물의 양과 같은 부피의 DMSO를 처리한 세포의 독성을 1로 봤을 때 화합물 샘플 처리에 의해 얼마나 세포가 독성으로 감소했는지 확인하였고, 그 결과를 도 6에 나타내었다.
도 6에 나타낸 바와 같이 12.5μM 또는 25μM 농도로 처리한 경우 모두 실시예 10의 화합물이 가장 적은 독성을 나타내었으며, 비교예 1과 비교시에도 독성이 20% 이상 개선된 것을 확인하였다.
<실험예 5> HK-2 세포에서의 Klotho 단백질 발현량 분석
도 7a의 프로토콜과 같이, HK-2 세포 (인간신장세포)에 시스플라틴 (Cisplatin 20 μM)을 처리하여 질병모델을 만든 후 KS1 화합물 (실시예 10) (3 μM)을 처리하였다. 24시간 후 세포를 수득하여, Klotho 단백질 발현 정도를 확인하였다. 도 7b에서 나타내는 바와 같이, HK-2 세포에서 Klotho 단백질 발현은 시스플라틴 (Cisplatin)을 처리한 군에서는 감소를 하였으며 KS1 화합물 (실시예 10)을 처리한 군에서는 증가하는 것으로 확인되었다.
<실험예 6> 일측성 요관 폐쇄 (Unilateral Ureter Obstruction, UUO) 모델에서의 KS1 화합물 (실시예 10)의 효과 분석
일측성 요관폐색 모델은 5주령 수컷 C56BL/6 마우스를 이용하였다. 일측성 요관폐쇄 모델을 만들기 위해 오른쪽 요관을 실로 묶어 준 후, 24시간 후부터 매일 KS1 화합물 (20mg/kg/day)을 복강에 주입시켜 주었다. 이후 7일째 및 14일째 희생을 하여 샘플을 모아 실험을 진행하였다 (도 8a).
신장 비대화 여부 확인
실험 결과, 일측성 요관폐쇄 모델에서는 신장이 비대해 있는 결과를 보였고, KS1 화합물을 처리한 신장에서는 크기 차이가 없는 결과를 보였다 (도 8b).
핵과 세포질 변화 확인
일측성 요관폐쇄 모델에서의 핵과 세포질에 대한 변화를 알아보기 위하여 H&E 염색을 진행하고, 그 결과를 도 9에 나타내었다. KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델의 1주 샘플에서는 핵의 수가 많이 증가했음을 알 수 있었고 2주 샘플에서는 세포질이 파괴가 되어 있는 결과를 보였으나 KS1 처리한 샘플에서는 조직의 파괴가 많이 감소되어 있는 결과를 보였다 (도 9).
섬유화 진행 여부 확인
또한, 일측성 요관폐쇄 모델에서의 섬유화 진행에 따른 변화를 알아보기 위하여 Sirius Red 염색을 진행하였다. KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델의 조직 1주 샘플에서는 붉은색으로 섬유화가 진행되기 시작함을 볼 수 있으며, 2주 샘플에서는 섬유화가 1주 샘플보다 더 진행되어 있는 결과를 보였다. 하지만, KS1 처리 군에서는 KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델보다 섬유화가 적게 일어나는 결과를 보였다 (도 10).
세포사멸 여부 확인
일측성 요관폐쇄 모델에서의 세포사멸 정도를 알아보기 위하여 TUNEL 염색을 진행하였다. KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델의 조직 1주 샘플에서는 세포사멸이 일어났으며, 2주 샘플에서는 세포사멸이 1주 샘플보다 증가되어 있는 결과를 보였다. 하지만, KS1 처리 군에서는 KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델보다 세포사멸이 현저히 감소하는 결과를 나타내었다 (도 11).
Klotho 단백질 발현량 확인
일측성 요관폐쇄 모델의 1주 샘플에서 Klotho 단백질 발현 변화를 확인한 결과, KS1이 처리되지 않은 일측성 요관 폐쇄 모델 샘플에서는 Klotho 단백질이 감소하였으나 KS1 화합물을 처리한 경우 Klotho 단백질 발현이 증가되는 결과를 나타내었다 (도 12).
MMP-9 단백질 발현량 분석
일측성 요관폐쇄 모델에서 염증 표지 마커인 MMP-9 단백질 변화를 확인한 결과, KS1이 처리되지 않은 일측성 요관폐쇄 모델의 1주와 2주 샘플에서 MMP-9이 증가하였으나, KS1을 처리한 경우 MMP-9 발현량이 현저히 감소되는 결과를 나타내었다 (도 13).
<실험예 7> KS1 화합물 (실시예 10)의 고혈압 감소 효과 분석
1. 실험용 랫트 (rat)
정상대조군으로 6주령 랫트 (rat) 수컷 WKY/lzm을 사용하였고, 고혈압을 발생시키는 실험군으로는 6주령 랫트 (rat) 수컷 SHR/lzm을 사용하였다. 모든 동물은 중앙실험동물에서 구입하였고, 오송첨단의료산업진흥재단 실험동물센터 내 재반입구역 사육시설에서 실험을 진행하였다. 실험용 쥐는 입수 후 7일간 검역 및 순화기간을 가졌으며 이 기간 중 동물의 건강을 관찰하였다.
2. 랫트(rat) 사육 환경
(1) 환경조건
본 실험은 온도 22 ± 2℃, 상대습도 50 ± 10%, 환기횟수 10 ~ 15회/hr, 조명시간 12 시간(오전 8시 점등 ~ 오후 8시 소등) 및 조도 500 Lux 이상으로 설정된 오송첨단의료산업진흥재단 실험동물센터 내 재반입구역 사육시설에서 수행하였다. 실험자들은 모두 고압증기멸균 (121 ℃, 20분)한 작업복과 보호장구를 착용하고 작업을 실시하였다.
(2) 케이지 (cage) 및 사육밀도
시험동물의 사육은 개별 환기케이지(IVCs) 시스템에서 AAALAC 가이드라인 기준의 케이지 (W200 X D310 X H150)에서 순화기간 및 실험기간에 2 마리/케이지(cage)로 사육하였다.
(3) 사료 및 물의 급여방법
시험에 공급된 사료는 방사선조사로 멸균된 시험동물용 고형사료(+40RMM-10, SAFE)를 급여하였고, 사료의 성분분석 성적서를 검토한 결과, 사료조성 및 오염물질 검사에서 시험에 영향을 줄 만한 요인은 없었다. 물은 RO수 (역삼투증류수) 제조 및 공급장치에서 생산된 초순수 물을 차아염소산나트륨(NaOCl) 및 UV 장치를 거쳐 살균한 후, 물병을 통해 자유롭게 섭취하도록 하였고, 공인기관(충북보건환경연구원, 충북 청원군 오송읍 오송생명로 1로 184)에 의뢰하여 정기적인 수질검사를 실시한 결과, '먹는물수질기준적합' 판정을 받았다.
(5) 검역순화
반입 시 동물의 외관검사를 실시하였다. 순화 기간 중에 매일 1 회 일반증상을 관찰하고 일반증상 관찰기록지에 기록하였다. 순화기간 종료일에 일반증상을 확인하여 동물의 건강상태를 평가하였다.
(6) 개체 및 사육상자 식별
순화기간 중에는 입수 시에 동물의 꼬리에 적색유성펜을 이용하여 개체표시를 하고, 사육상자에는 검역순화 기간 중 개체 식별카드를 부착하였다. 관찰 기간 중에는 군 분리 시에 동물의 꼬리에 청색 유성펜을 이용하여 개체표시를 하고, 사육상자에는 개체식별 카드를 부착하였다.
(7) 군 분리
군 분리는 일반 증상이상이 없는 동물 중에서 기기순화 종료일(군분리일)에 실시하였다. 군 분리 일에 동물을 각 군평균 혈압이 균등하도록 무작위로 각 5군, 군 당 5마리로 군 분리하였다. 잔여 동물은 CO2를 이용하여 안락사시켰다.
3. 실험군 구성
혈압이 상승되는지를 판별하기 위해서 WKY를 정상대조군으로 사용하였다. SHR 랫트는 음성대조군, 시험물질투여군, 양성물질투여군, 시험물질 + 양성물질투여군으로 나누어 진행하였다.
4. 시험물질 조제 및 투여
(1) 시험물질 및 양성대조물질을 해당 농도에 맞춰 20mL/kg 액량으로 부형제에 용해하였다.
(2) 검역 및 순화 후 동물의 혈압 및 체중 바탕으로 군분리 후 부형제, 시험물질 및 양성대조물질을 투여하였다.
(3) 모든 투여군은 주 1 회 측정한 체중을 기준으로 20mL/kg의 액량으로 3mL 주사기를 이용하여 7회/1주, 8주간 경구투여한다. 물질의 농도는 20mg/kg/day에 해당한다.
5. 혈압측정
약물 투여 후 36일과 64일에 동물을 혈압측정용 보정틀에 넣고 꼬리를 나오게 하여 혈압을 측정하였다. 혈압측정은 Kent Scientific 사의 MODA High Throughput System을 이용하여 기록하였다.
6. 실험결과
랫트 (rat)에서 측정된 약물 처리군의 수축기 혈압(systolic pressure)을 도 14 에 나타내었다. 실험 결과, 고혈압 동물 모델인 자발성 고혈압 랫트 (SHR)에 KS1 화합물을 처리하는 경우, 수축기 혈압이 현저히 감소되는 결과를 나타내었는 바, KS1 화합물이 고혈압 예방, 치료에 효과적으로 이용될 수 있음을 알 수 있다. 아울러 기존에 고혈압치료제로 사용되고 있는 안지오텐신 II 수용체 차단제 (angiotensin II receptor blocker) 약물 중 하나인 로사르탄 (losartan)과의 병용 투여 시 각 약물을 독립적으로 투여했을 때 보다 더 나은 혈압감소 효과를 나타내었으므로 고혈압 치료를 위한 병용투여에도 KS1이 이용될 수 있음을 알 수 있다.
<실험예 5> KS1 화합물 (실시예 10)의 세포 노화 억제 효과 분석
1.세포배양과 화합물 처리
신장세뇨관 상피세포인 RPTEC(human renal proximal tubule epithelial cell)은 Lonza사로부터 구매하였고, 배양용 배지도 같은 회사에서 공급하는 REGM kit을 이용하였다. 세포배양은 37 ℃ 배양기에서 5% CO2 조건에서 배양하였다. 세포는 80% 포화가 되면 트립신(trypsin) 처리하여 새로운 배양접시에 옮겨서 계대배양 하였다. 화합물은 최종 농도가 2.5 μM가 되도록 배지에 첨부하였고, 계대 배양 시 마다 화합물을 넣어서 일정한 농도가 유지되도록 하였다. 음성대조를 위해 용매인 DMSO만 넣은 세포를 사용하였고, 노화가 진행되지 않은 대조군으로 9번 계대 배양한 세포(#9)를 사용하였다. 노화를 유도한 세포는 모두 17회 계대 배양한 세포(#17)를 사용하였다.
2. 노화정도 확인
세포의 노화 정도를 확인하기 위해 Cell Signaling Technology사의 "Senescence β-galactosidase staining kit"를 사용하였다. 실험 당일에 세포에 염색액을 넣어주고 8시간 뒤에 염색된 세포을 확인하였다. 200배 현미경 하에서 관찰되는 전체 세포의 숫자 중에 염색된 세포의 숫자를 확인하여 비율로 나타내었고 한 샘플 당 서로 다른 세 곳에서 염색된 세포 숫자를 세어 평균을 내었다. 세포의 노화가 진행될수록 β-갈락토시다아제(β-galactosidase) 효소의 발현이 증가하므로 염색이 된 세포는 염색이 되지 않은 세포보다 노화가 더 많이 진행된 세포로 판단할 수 있다.
3. 실험결과
실험결과 17회 계대 배양한 세포는 9회 계대 배양한 세포에 비해 노화의 정도가 훨씬 증가한 것으로 나타났다. 현미경 하에서 200 배로 관찰했을 때 17회 계대 배양한 세포는 세포의 90% 정도가 모두 염색이 되었지만 9회 계대 배양한 세포는 50%의 세포만이 염색이 되었다 (도 15). 동일하게 17회 계대 배양한 세포에서는 KS1 화합물 (실시예 10)을 배지에 넣어서 배양한 세포군에서 염색의 정도가 감소하여 세포 중 70% 정도가 염색이 되었다 (도 15). 즉, KS1 화합물 (실시예 10)이 존재하는 상태에서 배양된 세포는 17회의 계대 배양 기간 동안 DMSO를 넣어준 배지에서 자란 세포보다 노화의 정도가 20% 정도 감소한 것이 나타났다.
이제까지 본 발명에 대하여 그 바람직한 실시예들을 중심으로 살펴보았다. 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자는 본 발명이 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위에서 변형된 형태로 구현될 수 있음을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 개시된 실시예들은 한정적인 관점이 아니라 설명적인 관점에서 고려되어야 한다. 본 발명의 범위는 전술한 설명이 아니라 특히 청구범위에 나타나 있으며, 그와 동등한 범위내에 있는 모든 차이점은 본 발명에 포함된 것으로 해석되어야 할 것이다.