JP7704364B2 - 脊髄損傷の治療及び移動運動機能の改善のためのエレトリプタン臭化水素酸塩 - Google Patents
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Description
倫理についての記述
動物を伴う実験は全て、欧州共同体ガイドライン(ディレクティブ2010/63/EU)、動物ケアについてのポルトガル法(DL113/2013)に従って実施され、Instituto de Medicina Molecular Internal Committee(ORBEA)及びPortuguese Animal Ethics Committee(DGAV)により承認された。取り組みは全て、使用される動物の数を最少にし、本開示において使用される動物の苦痛を減少させるためになされた。
ゼブラフィッシュSCIモデル:
Tg(mnx1:GFPml2)、hb9と略記:魚類ケア及び管理プロトコールのための標準ガイドラインに従うことにより、GFPを一定条件で管理及び飼育した(Westerfield, M. The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Brachydanio rerio). (2000))。ゼブラフィッシュ幼生を、SCIについての表現型ベーススクリーニングに使用した。
成体メスC57BL/6Jマウス(8~10週齢;Charles River社製)を本研究に使用した。マウスをケージ1つあたり3~4匹収容し、研究の期間中、制限なしの食料及び水とともに12時間明/暗周期で管理した。
幼生ゼブラフィッシュ表現型ベーススクリーニングを使用して、Diana et al. 2019(Chapela, D. et al. A zebrafish drug screening platform boosts the discovery of novel therapeutics for spinal cord injury in mammals. Sci Rep 9, 10475, doi:10.1038/s41598-019-47006-w (2019))により以前に記載されたように、低分子ライブラリー(PHARMAKON 1600-MicroSource Discovery Systems, Inc.社製、USA)由来の化合物プールをスクリーニングした。簡潔に言えば、ゼブラフィッシュ幼生を、5受精後日数(dpf,days-post-fertilization)まで1μMメチレンブルー含有EM中で生育させた。5dpfに、ゼブラフィッシュ幼生脊髄を、肛門の穴のレベルで横断した(Diana et al. 2019 (Chapela, D. et al. A zebrafish drug screening platform boosts the discovery of novel therapeutics for spinal cord injury in mammals. Sci Rep 9, 10475, doi:10.1038/s41598-019-47006-w (2019)))。1dpiに、EM+10mM HEPESを含有する6ウェルプレートに幼生をランダムに分配し、培地に添加された化学化合物に24時間曝露した。2dpiに、ゼブラフィッシュ幼生用の自動追跡システムであるDanioVision(商標)(Noldus Information Technology社製、オランダ)を使用して、行動評価を実施した。EM+10mM HEPES含有96ウェルプレート(1幼生/ウェル)中で幼生を自由に遊泳させ、幼生の遊泳活動を90分間、10分間の明暗周期(すなわち3回の明周期及び3回の暗周期)で追跡した。Ethovision X.T. 10ソフトウェア(Noldus社製、ヴァーヘニンゲン、オランダ)を使用して、取得された追跡データを分析し、3回の暗期で得られた遊泳活動のみを分析した(de Esch, C. et al. Locomotor activity assay in zebrafish larvae: influence of age, strain and ethanol. Neurotoxicol Teratol 34, 425-433, doi:10.1016/j.ntt.2012.03.002 (2012))。
Infinite Horizon Impactor(PSI社製)を用いて、中等症-重症の挫傷型の損傷を成体C57BL/6メスマウス(10~12週)に実施した(Tep, C. et al. Oral administration of a small molecule targeted to block proNGF binding to p75 promotes myelin sparing and functional recovery after spinal cord injury. J Neurosci 33, 397-410, doi:10.1523/JNEUROSCI.0399-12.2013 (2013))。手術は全て無菌条件下で実施した。簡潔に言えば、ケタミン及びキシラジン(それぞれ120mg/kg及び16mg/kg、i.p.)による深麻酔下で、マウスに第9胸椎(T9)レベルでの背側椎弓切除を施した。ステンレス鋼インパクターチップにより第8胸椎(T8)及び第10胸椎(T10)の外側突起を固定した後、75kdyneの、制御された力を規定された衝撃を、曝露された脊髄に与えた(Chapela, D. et al. A zebrafish drug screening platform boosts the discovery of novel therapeutics for spinal cord injury in mammals. Sci Rep 9, 10475, doi:10.1038/s41598-019-47006-w (2019)、Tep, C. et al. Oral administration of a small molecule targeted to block proNGF binding to p75 promotes myelin sparing and functional recovery after spinal cord injury. J Neurosci 33, 397-410, doi:10.1523/JNEUROSCI.0399-12.2013 (2013))。次いで、筋肉及び皮膚を、4.0ポリグリコール酸(PGA,polyglycolic acid)吸収性縫合糸(Safil、G1048213)を用いて閉じた。本研究では、実際の変位値が間隔500~700μmの外であった場合、又は衝撃後の実際の力が2SD 75Kdyneを超えた場合はマウスを除外した。損傷直後に、マウスの皮下に滅菌生理食塩水0.5mlを注射し、次いで5日間毎日注射した。本実験中、マウスは、自力で排尿するまで毎日2回穏やかな膀胱圧搾を受けた。損傷の際にこのSCIモデルにおいて、10%の体重減少が概して観察されたため、損傷後15日目(15dpi[days-post-injury])までは毎日、次いで研究の期間中毎週、体重をモニタリングし、高カロリーペレット(Supreme Mini-Treats(商標)S05478及びS05472)を栄養補助食品として供給した。
使用されたエレトリプタンHbr(Sigma-Aldrich社製、PZ0011)投与量は、ヒト市場用量と同量であり(Nair, A. B. & Jacob, S. A simple practice guide for dose conversion between animals and human. J Basic Clin Pharm 7, 27-31, doi:10.4103/0976-0105.177703 (2016))、治療投与量は全て、二重盲検措置を維持するためコード化システムを使用して等分した。このコードは、全ての行動試験終了時にのみ明らかにされた。マウスを各実験群(SCI+媒体及びSCI+エレトリプタンHbr)にランダムに分配した。媒体及びエレトリプタンHbrを、損傷後1時間目(hpi,hour after injury)から、次いで損傷後15日目(15dpi)まで毎日腹腔内注射(i.p.,intraperitoneal injection)により投与した。
BMS査定システムによりオープンフィールド移動運動を評価した(Tep, C. et al. Oral administration of a small molecule targeted to block proNGF binding to p75 promotes myelin sparing and functional recovery after spinal cord injury. J Neurosci 33, 397-410, doi:10.1523/JNEUROSCI.0399-12.2013 (2013)、Basso, D. M. et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. J Neurotrauma 23, 635-659, doi:10.1089/neu.2006.23.635 (2006))。使用されたオープンフィールドは、通常の照明を有する静かな試験室内に配置された、直径85cm及び高さ30.5cmを有する円形プラットフォームであった。手術前2週間、毎日5分間マウスを試験プラットフォームに慣らした。以前に記載されたように、BMS試験(BMSスコアリング及びサブスコアリング)を実施した(Chapela, D. et al. A zebrafish drug screening platform boosts the discovery of novel therapeutics for spinal cord injury in mammals. Sci Rep 9, 10475, doi:10.1038/s41598-019-47006-w (2019)、Tep, C. et al. Oral administration of a small molecule targeted to block proNGF binding to p75 promotes myelin sparing and functional recovery after spinal cord injury. J Neurosci 33, 397-410, doi:10.1523/JNEUROSCI.0399-12.2013 (2013))。簡潔に言えば、最大BMSスコア値であることが予期されるベースライン術前移動運動値を得るため、手術前にマウスを試験した。処理後の機能回復を決定するため、各マウスのBMSスコアを1、3、7、14dpiに、次いで実験終了まで毎週判定した。BMSスコア及びサブスコアの判定は、処理群に対して盲検化され、マウス1匹あたり4分間の後肢移動運動を記録した2名の査定者により常に実施された。査定者間でスコアが異なった場合、得られた最終スコアは両スコアの平均であった。
アセトン蒸発アッセイを使用して、損傷の際の冷刺激に対する感受性を測定した(Deuis, J. R., Dvorakova, L. S. & Vetter, I. Methods Used to Evaluate Pain Behaviors in Rodents. Front Mol Neurosci 10, 284, doi:10.3389/fnmol.2017.00284 (2017))。まず、金網を有するプラットフォームに4分間マウスを慣らし、次いで、1mlシリンジを使用して、アセトン50μl一滴を後足の足底表面に滴下した。試行間の間隔2分で、5回の試行を各後足に実施した。各試行において、タイマーを使用して、60秒間で後足を動かす又は舐めるのに要した時間を測定し、分析のために記録した(Golden, J. P. et al. RET signaling is required for survival and normal function of nonpeptidergic nociceptors. J Neurosci 30, 3983-3994, doi:10.1523/JNEUROSCI.5930-09.2010 (2010))。
行動試験の終了時に、マウスに0.9%NaCl、それに続いてpH7.4 0.1Mリン酸緩衝生理食塩水(PBS,phosphate-buffered saline)中4%パラホルムアルデヒド(PFA,paraformaldehyde)溶液で経心灌流を行った。PBSで一晩すすいだ後、脊髄を30%スクロース中で3日間凍結保護処理し、次いで、損傷中心に対して3mm吻側から3mm尾側(合計6mm)のブロックとして、最適切断温度(OCT,optimal cutting temperature)化合物(Sakura Finetek社製、USA)中で凍結させた。次いで、各ブロックをクライオスタット上で横断面(10μm)で切断し、交互の10セットでスライドに乗せ、-20℃で必要時まで保管した(Ma, M., Basso, D. M., Walters, P., Stokes, B. T. & Jakeman, L. B. Behavioral and histological outcomes following graded spinal cord contusion injury in the C57Bl/6 mouse. Exp Neurol 169, 239-254, doi:10.1006/exnr.2001.7679 (2001)、Hoschouer, E. L., Finseth, T., Flinn, S., Basso, D. M. & Jakeman, L. B. Sensory stimulation prior to spinal cord injury induces post-injury dysesthesia in mice. J Neurotrauma 27, 777-787, doi:10.1089/neu.2009.1182 (2010))。
切片における免疫組織化学のため、PBSを使用して凍結切片からOCTを除去した(30分)。切片を0.5%PBS-Triton X-100で洗浄し、ブロッキング溶液(0.1%Triton X-100含有PBS中5%ヤギ血清)中で室温で2時間ブロッキングした。次いで、脊髄切片を、抗GFAP(1:500;ThermoFisher Scientific社製、13-0300)、抗PDGFRβ(1:200;Abcam社製、ab32570)、抗CD31/PECAM-1(1:100;RD Systems社製、AF3628)、抗F4/80(1:500;Abcam社製、ab6640)及び抗P2Y12(1:500;AnaSpec社製AS-55043A)一次抗体とともに4℃で一晩インキュベートし、0.1%PBS-Triton X-100、PBS中で洗浄し、AlexaFluor 568(1:500;ThermoFisher Scientific社製、A11011又はA11057)、AlexaFluor 488(1:500;ThermoFisher Scientific社製、A11006又はA11008)二次抗体とともに4℃で一晩再インキュベートした。活性化ミクログリア定量化のため、切片をDAPIにより対比染色した。次いで切片をPBS中で洗浄し、DABCO含有蛍光封入培地に乗せた。
脱髄を定量化するため、100μm離して配置され、ブロック全体に及ぶ1セットの切片を、FluoroMyelin(商標)グリーン(ThermoFisher Scientific社製、F34651)で1時間染色した。10x拡大の電動倒立広視野蛍光顕微鏡(Zeiss Cell Observer、Carl Zeiss MicroImaging社製)でZ-スタック組成を取得した。Fijiソフトウェアを使用して、白質残存の断面積(WMA,cross-sectional area of white matter sparing)及び組織切片の総断面積(TCA,total cross-sectional area)を測定し、次いで損傷中心に対して1100μm吻側から1100μm尾側の比例する断面積を計算した(WMA/TCA)。最小WMA/TCAを有する切片として特定された、周縁部に最小面積の蛍光グリーン染色された白質を有する組織切片として、中心を特定した。コード化切片を介して、かつ処理又は結果群を知らない研究者により、病変の分析を実施した(Hoschouer, E. L., Finseth, T., Flinn, S., Basso, D. M. & Jakeman, L. B. Sensory stimulation prior to spinal cord injury induces post-injury dysesthesia in mice. J Neurotrauma 27, 777-787, doi:10.1089/neu.2009.1182 (2010))。
1セットの切片を抗PDGFRβ及び抗GFAPで染色して、線維性瘢痕領域の境界の輪郭を描いた。20x拡大の電動倒立広視野蛍光顕微鏡(Zeiss Cell Observer、Carl Zeiss MicroImaging社製)でZ-スタック組成を取得した。Fijiソフトウェアを使用して、手動で輪郭を描き、PDGFRβ+面積及び総断面積を計算して、その後総断面積に対する線維性瘢痕面積のパーセントを定量化した。線維性病変の吻側及び尾側の範囲を検査により決定した。線維性コア又はPDGFRβ+発現増加(それぞれ)を有する組織を含有する切片の数に、各切片間の距離(100μm)をかけることにより、線維性病変の長さ及びPDGFRβ+発現の範囲を計算した。
活性化ミクログリアを定量化するため、1セットの脊髄切片を、抗P2Y12(ミクログリア特異的マーカー)及び抗F4/80(汎マクロファージマーカー)で染色し、DAPIで対比染色した。20x拡大の電動倒立広視野蛍光顕微鏡(Zeiss Cell Observer、Carl Zeiss MicroImaging社製)でZ-スタック組成を取得した。閾値及びパラメーターを手動で設定した後、F4/80+及びP2Y12+細胞の数を計算する特注のMultichannel Cell counter4TIFFソフトウェアを使用して、細胞数を定量化した。
幼生ゼブラフィッシュSCIモデル由来のグラフ表示及びデータ分析は全て、Prism 8ソフトウェア(GraphPad Software, Inc.社製、サンディエゴ、CA、USA)を使用して実施した。使用された統計的検定は両側検定であった。ゼブラフィッシュSCI研究での異なる群間の平均値比較は、Welch補正を伴う対応のないStudent t検定を使用して実施した。マウスSCIモデル由来のデータ分析は、SigmaPlot 14を使用して、二元配置分散分析(ANOVA,analysis of variance)又は反復測定二元配置分散分析、それに続くBonferroni事後検定を使用して実施した。P値0.05未満を有意とみなした。データは全て平均値±平均値の標準誤差(SEM,standard error of the mean)として表される。
エレトリプタンHbrは、ゼブラフィッシュ幼生横断脊髄損傷モデルにおける移動運動機能障害を救済する。
脊髄損傷(SCI)に対する見込みのある新たな治療薬の発見を加速させるため、我々は、FDA承認済みの低分子ライブラリー由来の化学化合物プールのスクリーニングを可能にする表現型アッセイを使用した。この表現型ベーススクリーニングにおいて、我々は、損傷後1日目(dpi)に化学化合物(25μM)を盲検的に投与し、我々は、Chapela D. et al. 2019により以前に記載されたように、24時間後(すなわち2dpi)に行動評価を実施した。移動運動機能の指標として選択された、移動した総距離及び/又は回転角度パラメーターの統計上有意な改善があれば、低分子をまず盲検的に選択した。次いで、我々は、規定の除外基準(特許取得済み又はSCIについて報告された治療適応を有する;重大な報告された毒性を有する又は血液脳関門を通過できない場合)により選択を絞り込んだ。とりわけ、エレトリプタンHbrは、この創薬プラットフォームを介して特定された最も有望な候補のうちの1つであった。エレトリプタンHbrは、ヒト成体における前兆を伴う又は伴わない片頭痛の急性治療のための第2世代トリプタン薬物として知られており、興味深いことに、このゼブラフィッシュ幼生横断脊髄損傷モデルにおいて移動運動機能障害を救済することを示し(図1A、A’)、哺乳動物SCIモデルで試験される有望なSCI治療薬候補となった。
非再生モデルにおけるSCI適応症に対するエレトリプタンHbrの治療効果を検証するため、SCIげっ歯類モデルにおけるその有効性を試験することを決定した。したがって、Infinite Horizon(IH)Impactorを使用してC57BL/6メスマウスに挫傷型損傷を実施し、Bassoマウススケール(BMS)試験(Basso, D. M. et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. J Neurotrauma 23, 635-659, doi:10.1089/neu.2006.23.635 (2006))を使用して損傷後の動物の移動運動能力を判定した。まず、マウスをオープンフィールドプラットフォームに慣らし、15日後にマウスを中等症-重症のT9挫傷(75kdyne)で負傷させた(図2A)。損傷直後及び生体力学的除外基準の際に、マウスを各実験群(SCI+媒体及びSCI+エレトリプタンHbr)にランダムに分配した。治療投与量(媒体又はエレトリプタンHbr)を、損傷後1時間目(1hpi)から、次いで損傷後15日目(15dpi)まで毎日腹腔内(i.p.)注射により投与した(図2A)。SCI+媒体とSCI+エレトリプタンHbr実験群との間で、IHインパクターにより加えられた損傷力又は変位に差はなかった(図4)。損傷の際の移動運動回復の判定のため、BMSスコア及びサブスコアを42日間測定した(図3B~B’)。エレトリプタンHbr処理マウス及び媒体処理マウスにおけるBMSスコアの平均は、損傷後1日目(1dpi)以降に増大し、それぞれ損傷後28~35日目(28~35dpi)の間及び損傷後21~28日目(21~28dpi)の間に横這い状態に到達した。エレトリプタンHbr処理マウスにおけるBMSスコアは、媒体処理マウスと比較して、長期にわたって有意ではないが一貫して高かった(図3B)。注目すべきことに、エレトリプタンHbr処理マウス13匹中1匹がBMSスコア6を達成し(すなわちある程度の前後肢協調を伴う頻繁な足底でのステップを示した)、残りの12匹が損傷後42日目(42dpi)にBMSスコア5を達成した(すなわち頻繁な又は一貫した足底でのステップを示した)。同じ時点で、媒体処理マウスのBMSスコアは4~5であり、9匹中3匹の動物が時々の足底でのステップを達成するのみだった。さらに、エレトリプタンHbr処理マウスの85%が、最初の接地時の両方の後肢の足の平行配置を伴う頻繁な足底でのステップも示し、23%が持ち上げの際に後肢の足のうちの少なくとも一方の平行配置を呈した。
損傷の際の脱髄状態に対するエレトリプタンHbrの効果を分析するため、FluoroMyelin(商標)グリーン蛍光ミエリン染色を使用して、実験群(SCI+エレトリプタンHbr及びSCI+媒体)間での、総断面積に対する残された白質面積を比較した(図5A)。エレトリプタンHbr処理マウスにおける総断面積に対する残された白質の平均は、病変中心で、さらに病変の中心から700μm吻側及び尾側にわたって、媒体で処理されたマウスよりも有意ではないが一貫してより高かった(図5B)。
瘢痕の線維性区画は、線維芽細胞様細胞のコアを作り出すPDGFRβ+血管周囲細胞のサブセット、及び細胞外マトリックス分子の高密度の堆積により構成される(Dias, D. O. et al. Reducing Pericyte-Derived Scarring Promotes Recovery after Spinal Cord Injury. Cell 173, 153-165.e122, doi:10.1016/j.cell.2018.02.004 (2018))。さらに最近、周皮細胞由来の瘢痕を低減させると、マウスにおいて脊髄損傷の際の機能回復が促進されることが示されたため(Dias, D. O. et al. Reducing Pericyte-Derived Scarring Promotes Recovery after Spinal Cord Injury. Cell 173, 153-165.e122, doi:10.1016/j.cell.2018.02.004 (2018))、線維性瘢痕の面積及び長さを判定することにより、線維性瘢痕状態に対するエレトリプタンHbrの効果を分析することを決定した。
病変範囲の末端において検出されたPDGFRβ+レベルの増大が血管を伴うかどうかを推論するため、我々は周皮細胞マーカーPDGFRβ及び内皮細胞マーカーCD31(PECAM-1)を使用して二重免疫組織化学を実施することを決定した(図7)。中心から1000μmの切片における、媒体処理マウスで検出されエレトリプタンHbr処理マウスでは低減されたPDGFRβ発現の増大は、CD31+内皮細胞を伴っていた(図7A~C’’’)。
ミクログリアがSCI修復にとって非常に重要であることは公知である。ミクログリアがなければ、脱髄及び病理学的MDM浸潤物が増強され、グリア瘢痕形成が破壊され、運動機能障害が悪化する(Brennan , F. H., Hall, J. C. E., Guan, Z. & P.G., P. Microglia limit lesion expansion and promote functional recovery after spinal cord injury in mice. Cold Spring Harbor Laboratory, doi:https://doi.org/10.1101/410258 (2018))。この状況で、P2Y12(ミクログリアマーカー)及びF4/80(汎マクロファージマーカー)による二重免疫組織化学を実施することにより、損傷の際のミクログリア状態に対するエレトリプタンHbrの効果を判定することを決定した。P2Y12+ミクログリアは、シャムマウスでは長い突起を有する分枝状形態を示したが、媒体処理マウスでは、ミクログリアは病変中心においてまばらに検出された、より短い突起を示した(図8A~C’’)。媒体で処理されたマウスでは、P2Y12+ミクログリアは病変中心においてほとんど検出されず、存在する場合、ミクログリアは主に病変周辺部のクラスターにおいて、又はアメーバ様形状を有する残された白質において観察された(図8B、B’’;8C、C’’)。エレトリプタンHbr処理マウスも、病変周辺部のアメーバ様形状及びより短い突起を有するクラスターにおいて、又は残された白質においてミクログリアを示したが、一部の切片では、中心付近又は中心において、より長い分枝状突起も観察され、媒体処理マウスでは観察されなかった特徴である(図8B、B’’;8C、C’’)。中心から1000μmの切片において、P2Y12+ミクログリアは灰白質及び白質にわたって存在し、シャム動物と比較して、媒体処理マウス及びエレトリプタンHbr処理マウスの両方で、灰白質において(主に脊髄背側で)いくつかのより短い突起及びより反応性の高い形状を有する形態を示した(図8A、A’;8B、B’’;8C、C’’)。P2Y12+F4/80+(活性化ミクログリア)細胞の数には統計上有意な差がなかったが、この数は、エレトリプタンHbr処理マウスの、中心に対して400μm吻側及び尾側において一貫してより高かった(図8D)。
ここで、本出願の好ましい実施形態が詳細に記載されるが、これらは本出願の範囲を制限することを意図されない。
(参考文献)
1 Kjell, J. & Olson, L. Rat models of spinal cord injury: from pathology to potential therapies. Dis Model Mech 9, 1125-1137, doi:10.1242/dmm.025833 (2016).
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Claims (3)
- 脊髄損傷後の移動運動機能の改善における使用のための、エレトリプタン臭化水素酸塩の医薬組成物。
- 脊髄損傷が急性期又は亜急性期である、請求項1に記載の使用のためのエレトリプタン臭化水素酸塩の医薬組成物。
- エレトリプタン臭化水素酸塩が、損傷後1時間目から投与される、請求項1又は2に記載の使用のためのエレトリプタン臭化水素酸塩の医薬組成物。
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