JP7628153B2 - mRNAディスプレイ抗体ライブラリー及び方法 - Google Patents
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Description
第62/588,914号に対する優先権を主張する。
ダーを作製するためのmRNAディスプレイライブラリーの使用に関するため、極めて高
い多様性の抗体ライブラリーのための組成物及び方法である。
る情報がいずれも本明細書で請求される発明の先行技術であるか又はこれに関連するもの
であること、或いは具体的又は暗示的に参照される任意の刊行物が先行技術であることを
認めるものではない。
具体的且つ個別に参照によって組み込まれることが示された場合と同程度に、参照によっ
て組み込まれる。組み込まれる参考文献における用語の定義及び使用が、本明細書で提供
される用語の定義と一致しないか、これに反する場合、本明細書で提供されるその用語の
定義が適用され、参考文献中でのその用語の定義は適用されない。
とが、癌患者を治療するための効果的な方法であると証明されている。ますます多くの患
者特異的且つ/若しくは癌特異的腫瘍抗原及び/又はネオエピトープが、オミクスデータ
解析を介してインビボ、インビトロ、又はインシリコで同定されるにつれて、安定であり
、可溶性であり、機能的であり、且つ適応可能である抗体又はバインダーを高い確率で選
択できる抗体ライブラリー又はディスプレイライブラリーを作製することの要求が高まっ
てきた。高親和性の特異的抗体又は結合分子は、天然の抗体プールの中で同定され得るか
、又は天然の抗体プールに由来し得るが、そのような同定又は由来の天然抗体又はバイン
ダーは、そのような抗原又はネオエピトープへの曝露の頻度又は強度に依存して、そのよ
うな天然抗体の多様性が制限される可能性があるため、効果的又は特異的ではない場合が
ある。
イライブラリーが使用され得る。このようなアプローチは、適度に高い多様性を有するラ
イブラリーの作製を可能にするが、多くの場合、バインダーのために何度も濃縮を行う必
要があり、手間と時間がかかる。さらに、比較的大きな多様性を有するにもかかわらず、
バインダーは理想的な親和性と安定性を欠く傾向がある。さらに、多様性は通常、ライブ
ラリー量、トランスフェクション効率などの実用的な考慮事項によって制限される。その
ようなアプローチ及び他のアプローチはさらに、例えば、国際公開第2006/0727
73号パンフレットに記載されるように複数の人工的な選択圧力を使用して最適化され得
る。このような方法は、安定性の特徴を向上させる場合があるが、著しい量のライブラリ
ー操作と時間が必要とされる。
結合分子(典型的にはscFv)をコードするmRNA配列は、それらの3’末端でピュ
ーロマイシン分子と結合し、mRNA配列によってコードされるペプチドは、インビトロ
翻訳を介して生成され、mRNAをmRNAによってコードされるタンパク質に直接結合
した融合産物を生成する。しかしながら、現在のmRNAディスプレイ技術は、トランス
フェクション制限に関連する問題を有利に回避し、少なくとも概念的にはより高い多様性
を可能にするが、構造的完全性又は安定性、比較的低い親和性、及び/又は交差反応性の
問題は依然として残っている。mRNAディスプレイからのscFvの少なくとも選択さ
れた結合特性をさらに改善するために、VH-CDR3スペクトラタイピング分析が実施
された(Protein Engineering,Design & Selecti
on,2015,vol.28 no.10,pp.427-435を参照のこと)。し
かしながら、このようなプロセスは反復分析を必要とし、全ての抗原に対して生産的では
ない場合がある。
つ同定する方法は知られているが、高い構造的完全性/安定性、低い親和性、及び/又は
低い交差反応性を有するバインダーによる高い多様性のライブラリーは、実現しないまま
であった。したがって、安定な組換え高親和性バインダーを迅速に作製するためのmRN
Aディスプレイライブラリーの改善された組成物、方法、及び使用の必要性が依然として
存在する。
溶性の機能的な抗体又はバインダーの信頼性があり且つ効率的な同定を可能にする複数の
抗体又は抗体断片をコードする高多様性核酸ライブラリーの様々な組成物、方法、及び使
用を対象とする。したがって、主題の一態様は、複数の抗体又は抗体断片をコードする高
多様性核酸ライブラリーを作製する方法を含む。この方法では、各々が複数のメンバーを
有する3つのサブライブラリー:(1)VH-CDR1/2サブライブラリー、(2)複
数のVH-CDR3サブライブラリー、及び(3)VLサブライブラリーが作製されるか
又は提供される。3つのサブライブラリーの各メンバーは、複数の縮重塩基位置を有する
少なくとも1つのランダムカセットを含む。3つのライブラリーの少なくとも2つのメン
バーの少なくとも一部が組み換えられて、発現ライブラリー中の発現ライブラリーメンバ
ーを形成し、これは、複数の発現ライブラリーメンバーを有する。別々の抗体又は抗体断
片をコードする各発現ライブラリーメンバー。好ましい実施形態では、発現ライブラリー
メンバーは、mRNA断片に転写され、続いてこれは3’末端でピューロマイシン分子と
結合される。
を企図する。複数の核酸ライブラリーは、(1)VH-CDR1/2サブライブラリー、
(2)複数のVH-CDR3サブライブラリー、及び(3)VLサブライブラリーを含む
。サブライブラリー(1)~(3)の各々は、複数のメンバーを含み、サブライブラリー
の各メンバーは、複数の縮重塩基位置を有する少なくとも1つのランダムカセットを含む
。
製するための上の組成物の使用を企図する。
を有する高多様性核酸ライブラリー組成物を企図する。高多様性核酸ライブラリーメンバ
ーは、それぞれ複数の縮重塩基位置を有する複数のランダムカセットを含む組換え核酸を
含む。複数のランダムカセットは、以下:(1)VH-CDR1/2サブライブラリー、
(2)複数のVH-CDR3サブライブラリー、及び(3)VLサブライブラリーからの
2つのライブラリーのいずれかからの少なくとも2つのメンバーに由来する。
組換え抗体を作製するための高多様性核酸ライブラリーの使用を企図する。
する。この方法では、各々が複数のメンバーを有する3つのサブライブラリー:(1)V
H-CDR1/2サブライブラリー、(2)複数のVH-CDR3サブライブラリー、及
び(3)VLサブライブラリーが作製されるか又は提供される。3つのサブライブラリー
の各メンバーは、複数の縮重塩基位置を有する少なくとも1つのランダムカセットを含む
。3つのライブラリーの少なくとも2つのメンバーの少なくとも一部が組み換えられて、
発現ライブラリー中の発現ライブラリーメンバーを形成し、これは、複数の発現ライブラ
リーメンバーを有する。別々の抗体又は抗体断片をコードする各発現ライブラリーメンバ
ー。次に、方法は、発現ライブラリーメンバーを用いて組換え抗体又はその断片の作製を
続ける。
物に抗原を接触させることにより、抗原に対して100nM以下の親和性を有する高親和
性バインダーを単離する方法を企図する。
選択されるオリゴヌクレオチドを用いて作製される組換え核酸断片を企図する。
選択される核酸配列を有する合成核酸混合物を企図する。
施形態の以下の詳細な説明からより明らかになるであろう。
はその断片の選択されたドメインの標的化された多様性を用いて高多様性核酸ライブラリ
ーを構築することによって、特異的且つ効果的な組換え抗体又はその断片が、作製又は同
定され得ることを発見した。このような目的を達成するために、本発明者らは目下、抗体
/バインダーの1つ以上のドメイン又はサブドメインを予め選択することができ、予め選
択されたドメイン又はサブドメイン内のランダムカセットを使用して、複数の核酸サブラ
イブラリーを作製できることを発見した。本発明者らはさらに、サブライブラリーのメン
バーを組み換えて、ライブラリーのメンバー間で高い多様性を可能にしながらも、癌抗原
又はネオエピトープ(好ましくは癌特異的、患者特異的ネオエピトープ又はネオ抗原)に
対してインビボで使用された場合に、安定であり、可溶性であり、機能的であり、且つ適
応可能である抗体/バインダーを同定する確率を高める高多様性核酸ライブラリーを構築
できることを発見した。
型的には、シングルパス又はツーパスの濃縮において、バインダーが100nM以下、よ
り典型的には10nM以下のKdを有する任意の抗原に対する少なくとも1つのバインダ
ーの単離を可能にする。さらに、企図された系及び方法は、少なくとも109、少なくと
も1010、少なくとも1011、少なくとも1012、少なくとも1013、少なくと
も1014、少なくとも1015、又は少なくとも1016の異なるライブラリーメンバ
ーの多様性を有するscFvライブラリーを、従来のライブラリー構築と比較して大幅に
短縮された時間枠内で可能にする。したがって、抗体発見の速度が実質的に上昇すること
が理解されるはずである。
れ得るか、又は見出され得る1つ以上の癌細胞、癌組織、悪性腫瘍細胞、又は悪性腫瘍組
織を指し、且つそれらと互換的に使用される。
る」を指し、且つそれらと互換的に使用することができ、2つの分子間の相互作用は、1
0-6M以下又は10-7M以下のKDを有して高親和性を有する。
製するか、配置するか、使用可能にするか、又は使用の準備をすることのいずれかの行為
を指し、且つ含む。
一般に、抗体の構造部品(重鎖、軽鎖、定常ドメイン、可変ドメイン)は、それらの機
能に密接に関係する。例えば、重鎖における可変ドメイン(VH)及び軽鎖(VL)はと
もに、抗体に特異性をもたらすエピトープ結合ドメインを構成する。VH及びVLの各々
は、抗原に対するそれらの特異性に基づく固有のアミノ酸配列を有する3つの相補性決定
領域(CDRs、CDR1~3)を含む。したがって、VH及びVLのCDRをコードす
る配列をランダム化することにより、抗体を作製又は同定するための組換え核酸ライブラ
リーが作製され得ることが以前に企図されていた。しかしながら、本発明者らは、VH及
びVLの全てのCDRを完全にランダム化することは、ライブラリーに大きな多様性をも
たらす可能性がある一方で、全てのランダム化されたVH及びVLが、抗体(例えば、I
gG1など)を形成するために組み換えられるときに可溶性又は安定に発現され得るわけ
ではないため、ランダム配列の全ての組合せを作製し、全てのランダム化された組合せを
スクリーニングすることにおいて非効率も生じさせることを見出した。さらに、多様性空
間全体を網羅することは、可能なライブラリーメンバーの数が非常に多いため、現実的で
はない。
抗体(又はその抗体をコードする遺伝子)のVH又はVLの間で一般的に共通するフレー
ムワーク領域、並びに最終的なペプチド生成物(例えば、scFv、IgG1など)の安
定性及び/又は可溶性に著しい影響を与えることなく、少なくとも部分的に又は完全にラ
ンダム化され得る標的化される多様化領域に分割できることを企図する。好ましくは、V
Hの標的化される多様化領域は、CDR1、CDR2-n(CDR2のN末端側)、CD
R2-c(CDR2のC末端側)、及びCDR3の少なくとも一部を含む。さらに好まし
い態様では、VLの標的化される多様化領域は、CDR3の少なくとも一部を含む。
は、VH及び/又はVLの1つ以上の標的化される多様化領域における1つ以上のランダ
ム配列カセットを含む組換え核酸を生成することによって作製され得る。一つの好ましい
実施形態では、本発明者らは、単一のサブライブラリー内のランダム化された組換え配列
が多すぎて、単一のサブライブラリーの量を迅速又は適時のスクリーニングのために扱う
ことが非実用的又は非効率的になり得ることを回避しながら、各サブライブラリーが、ラ
ンダム化された標的化される多様化領域内の多様性を保持するように、異なる標的化され
る多様化領域内に異なるセットのランダム配列カセットを有する3つの異なるサブライブ
ラリーを企図している。さらに、標的化される多様化領域間の保存された領域は、最大の
安定性及び可溶性のために選択されるか又は設計される。
VH-CDR1/2サブライブラリーは、VH CDR1の少なくとも一部及び/又はV
H CDR2の一部に相当する1つ以上のランダム配列カセットを有する複数の組換え核
酸(例えば、組換えDNA)を含む。本明細書で使用する場合、VH CDR1の一部に
相当するランダムカセットは、ランダムカセットが組換え核酸の領域内に位置することを
意味し、その中でCDR1部分をコードする配列が、天然抗体のVHドメインに少なくと
も構造的又は機能的に類似しているVHドメインの一部をコードするために存在すべきで
ある。例えば、VH-CDR1/2サブライブラリー中の組換え核酸は、以下のとおりの
構造を有する(ランダム化された領域は下線が引かれ、固定の配列決定された領域は括弧
に入れられる):
ば、FW1は、第2のフレームワーク領域(FW2)とは異なり得る第1のフレームワー
ク領域である)を指す。この構造において、ランダム配列カセットは、CDR1若しくは
CDR2、又は好ましくは、CDR1とCDR2の両方の領域において挿入され得る。い
くつかの実施形態では、2つ以上ランダム配列カセット、好ましくは2つのランダム配列
カセットは、CDR2の領域において挿入され得る:CDR2-n(CDR2の5’-末
端側に関して)及びCDR-c(CDR2の3’-末端側に関して)。
CDR3サブライブラリーの各々は、VH CDR3の少なくとも一部に相当する1つ以
上のランダム配列カセットを有する複数の組換え核酸(例えば、組換えDNA)を含む。
VH-CDR1/2サブライブラリーと同様に、VH-CDR1/2サブライブラリー中
の組換え核酸は以下のとおりの構造を有し得る(ランダム化された領域は下線が引かれ、
固定の配列決定された領域は括弧に入れられる):
ラリーの組換え核酸の固定配列(例えば、プロモーター-5’UTR-FW1+CDR1
+FW2+CDR2+FW3、FW4)は、固定配列が最も発現可能であり、一本鎖可変
断片(scFv)、scFvの改変形態、全長免疫グロブリン、又は免疫グロブリンの一
部として発現されるペプチドを含む複数の形態に適応可能であるように、天然抗体(例え
ば、種々の抗原に対するIgG1)の中で最も一般的及び/又は保存された配列を使用す
るように選択される。したがって、好ましい実施形態では、VH-CDR1/2サブライ
ブラリーの組換え核酸及びVH-CDR3サブライブラリーの組換え核酸の固定配列は、
互いに少なくとも70%、好ましくは少なくとも80%、より好ましくは少なくとも90
%同一である(共有される)。
、VL CDR3の少なくとも一部に相当する1つ以上のランダム配列カセットを有する
複数の組換え核酸(例えば、組換えDNA)を含む。VH-CDR1/2サブライブラリ
ーと同様に、VH-CDR1/2サブライブラリー中の組換え核酸は以下のとおりの構造
を有し得る(ランダム化された領域は下線が引かれ、固定の配列決定された領域は括弧に
入れられる):
ライブラリー又はVH-CDR3サブライブラリーの組換え核酸のものと少なくとも70
%、好ましくは少なくとも80%、より好ましくは少なくとも90%同一である(共有さ
れる)。
が、本発明者らは、VHのCDR1、CDR2、CDR3及びVLドメインのCDR3の
ための戦略化されたランダム配列カセットが、結合ペプチド(例えば、scFvなど)と
して発現された場合に、高い複雑性及び大きな潜在的な結合面を与えることを企図する。
例えば、VH-CDR1/2サブライブラリーのCDR1、CDR2のための戦略化され
たランダム配列カセットは、カセット1個当たり3個以下、好ましくは2個以下、又はよ
り好ましくは1個のランダム配列(カセット1個当たり3個以下、2個以下、又は1個の
ランダムアミノ酸をコードする)を有するセミランダム配列カセットであってもよい。ラ
ンダムカセット中のランダム配列の位置は、カセット中のランダムアミノ酸に応じて変動
し得る。別の例において、VH-CDR3サブライブラリーのCDR3のための戦略化さ
れたランダム配列カセットは、カセット1個当たり4個以上、好ましくは5個以上、又は
より好ましくは6個以上のランダム配列(カセット1個当たり4個以上、好ましくは5個
以上、又はより好ましくは6個以上のランダムアミノ酸をコードする)が存在するように
、よりランダム化された配列を含み得る。さらに別の例において、VLサブライブラリー
のCDR3のための戦略化されたランダム配列は、カセット1個当たり4個以上、好まし
くは5個以上、又はより好ましくは6個以上のランダム配列(カセット1個当たり4個以
上、好ましくは5個以上、又はより好ましくは6個以上のランダムアミノ酸をコードする
)が存在するように、よりランダム化された配列を含み得る。
ましいランダム配列カセットが、表1(VH-CDR1/2サブライブラリー及びVH-
CDR3サブライブラリーに関する)、及び表2(VLサブライブラリーに関する)にお
いて提示されるオリゴヌクレオチドを使用して作製され得ることを企図する。表1及び2
において示されるとおり、各オリゴヌクレオチドは、IUPACアンビギュイティコード
として示される縮重コードを有する(強調された)ランダム配列を含む。例えば、CDR
1ランダム配列カセットのための1つのオリゴヌクレオチドは、ランダム配列「RVT」
を含み、これは、「A/G、A/C/G、T」を表し、その組合せは、スレオニン(T)
、アラニン(A)、アスパラギン(N)、アスパラギン酸(D)、セリン(S)又はグリ
シン(G)のうちの1つをコードできる。縮重コドンによってコードされるアミノ酸の選
択は、右に表され、Xとともに示される。
トは、異なる長さの核酸配列を含み得る。例えば、VH-CDR3サブライブラリーのた
めのランダム配列カセットは、10~30個のアミノ酸、好ましくは10~25個のアミ
ノ酸、より好ましくは10~20個のアミノ酸の任意の長さであり得る。したがって、表
1において示されるとおり、VH-CDR3サブライブラリーのためのランダム配列カセ
ットを作製するためのオリゴヌクレオチドは、D/G-R/L及びA/Gをコードする配
列間に「NNK」(G/A/T/C、G/A/T/C、G/Tを表す)の様々なリピート
(例えば、4~10のリピート)を含み得る(図3も参照のこと)。軽鎖配列の作製及び
多様性は、図4において例示的に示される。
において提供され、これはDNAポリメラーゼI(クレノー断片)を使用して二重鎖DN
A断片に変換されて、固定の配列決定された領域(例えば、VLサブライブラリーなどの
組換え核酸に関して、5’-(プロモーター-5’UTR-FW1+CDR1+FW2+
CDR2+FW3)-(FW4))を含む骨格に挿入され得る。さらに、表1及び2に提
示されるオリゴヌクレオチドはまた、ポリメラーゼ酵素を使用せずに二重鎖核酸を形成す
るために相補的なオリゴヌクレオチドとともに存在することもまた企図される。
コードされるペプチドが、タンパク質タグに対するバインダーを使用して単離され得るよ
うに、タンパク質タグをコードする核酸配列を含む。例えば、好ましいタンパク質タグと
しては、FLAGタグ(配列モチーフDYKDDDDKを有する)、Mycタグ(配列モ
チーフEQKLISEEDLを有する)、及びHA-タグが挙げられる。いくつかの実施
形態では、タンパク質タグは、シグナルを強化するか又は検出を増大させるために繰り返
され得る(例えば、FLAGタグの3回の反復(3X FLAG)など)。
ームシフト、ナンセンス変異、及び組換え核酸によってコードされるペプチドの構造を不
安定化させている配列を導入し得ることが企図される。したがって、いくつかの実施形態
では、本発明者らは、不安定又はミスフォールドしたペプチドをコードする任意の組換え
核酸がライブラリーから除去され得るように、サブライブラリーの組換え核酸をインビト
ロで試験することを企図する。例えば、VH-CDR3サブライブラリー又はVLサブラ
イブラリーの組換え核酸は、それぞれCDR配列とは独立して免疫グロブリンのVH3ド
メイン又はVL(Vκ)ドメインの構造化エピトープに結合するスタフィロコッカス・ア
ウレウス(Staphylococcus aureus)のプロテインA又はフィネゴ
ルディア・マグナ(Finegoldia magna)のプロテインLに対するそれら
の結合親和性について試験され得る。
リーニングするための任意の好適な方法が企図される。例示的な一実施形態では、サブラ
イブラリーの組換え核酸は、インビトロ転写によってmRNAに転写され、mRNAの3
’末端がピューロマイシンに結合(共有結合)される。ピューロマイシン結合型mRNA
から転写されるペプチドがピューロマイシンを介してmRNAと結合されるように、ピュ
ーロマイシン結合型mRNAはインビトロで転写される。次に、ペプチドをプロテインA
又はプロテインLと接触させて、プロテインA又はプロテインLに効率的に結合するペプ
チドを同定する。好ましくは、10-6M以下、好ましくは10-7M以下のKDを有す
る親和性を有するプロテインA又はプロテインLに結合するペプチドが選択され、単離さ
れる。プロテインA又はプロテインLに対して高い親和性を有するペプチドが単離される
と、単離されたペプチドのcDNAが、ピューロマイシン及びペプチドと結合したmRN
Aのインビトロ逆転写を介して作製され得る。次に、そうして作製された単離ペプチドの
cDNAは、VH-CDR3サブライブラリー又はVLサブライブラリーの選択された組
換え核酸を作製するためのランダム配列カセットとして挿入され得る。或いは、サブライ
ブラリーの組換え核酸が、組換え核酸のためのインビトロ転写工程(DNAフォーマット
における)が必要とされなくてもよいように、任意選択によりピューロマイシン分子と予
め結合されたmRNAの形態で存在し得ることもまた企図される。
本発明者らはさらに、サブライブラリーのうちの少なくとも2つの組換え核酸(メンバ
ー)を組み換えて、組換えscFv核酸を形成できることを企図する。好ましい実施形態
では、少なくとも2つの組換え核酸(メンバー)の各々は、異なるサブライブラリーから
選択される。例えば、1つの組換え核酸は、VH-CDR1/2サブライブラリー、複数
のVH-CDR3サブライブラリー、及びVLサブライブラリーの各々から選択され得る
。他の例に関して、1つの組換え核酸は、VH-CDR1/2サブライブラリー、複数の
VH-CDR3サブライブラリー、及びVLサブライブラリーのうちの2つの各々から選
択され得る。好ましくは、サブライブラリーから選択される組換え核酸のうちの少なくと
も1つ、より好ましくはそのうちの全ては、上記のとおりの親和性結合スクリーニングに
より予め選択される。
部を組み換えることによって構築され得る。この実施形態では、組換え核酸の一部は、組
換え核酸に挿入されたランダム配列カセットを含む。したがって、例えば、第1の工程と
して、VH-CDR1/2サブライブラリーの組換え核酸の一部は、
は、
イブラリーに由来する組換え核酸の一部が単離され(例えば、PCRによって)、組み換
えられて(例えば、制限-ライゲーション法を介して融合される、組換えPCRを介して
作製されるなど)、VHドメイン組換え核酸が形成され得る。したがって、通常、VHド
メイン組換え核酸は、
イン組換え核酸はまた、上記のとおりその3’末端においてタンパク質タグ(例えば、F
LAGタグ、Mycタグ、HAタグなど)をコードする核酸配列を含み得る。加えて、こ
のように作製されたVHドメイン組換え核酸は、VHドメインライブラリーメンバーとし
てVHドメインライブラリー中に配置され得る。
え核酸と組み換えられて、組換えscFv核酸が形成され得る。図5は、サブライブラリ
ーからの配列を組み換える1つの例示的な方法を示す。示されるとおり、また典型的には
、VHドメイン組換え核酸の一部及びVLサブライブラリーの組換え核酸の一部が、組換
えscFv核酸に融合される。例えば、VLサブライブラリーの組換え核酸が、VHドメ
イン組換え核酸の一部の3’末端に融合され得るように、VHドメイン組換え核酸の一部
は、
)を含んでもよく、且つVLサブライブラリーの組換え核酸の一部は、
換えscFv核酸は、
の一部は、単一のポリペプチドをコードするように同じ読み枠に置かれることが非常に好
ましい。
一部は、2つの部分の間のリンカー(短いペプチドスペーサー断片)をコードする核酸を
介して融合される。リンカー又はスペーサーのためのペプチド配列の任意の好適な長さ及
び順序が使用され得る。しかしながら、リンカーペプチドの長さは、3~30個のアミノ
酸、好ましくは5~20個のアミノ酸、より好ましくは5~15個のアミノ酸であること
が好ましい。例えば、本発明者らは、グリシンリッチ配列(例えば、gly-gly-s
er-gly-glyなど)が、VHとVLドメイン間でscFvの可動性をもたらすよ
うに利用されることを企図する。
パク質タグ(例えば、FLAGタグ、Mycタグ、HAタグなど)をコードする核酸配列
を含み得る。加えて、このように作製された組換えscFv核酸は、発現ライブラリーメ
ンバーとして発現ライブラリー中において配置され得る。
上の目的のリガンド(例えば、癌抗原、ネオエピトープなど)に対するそれらの結合親和
性、安定性、pH感受性、及び/又は種間交差反応性に基づいて、スクリーニング及び/
又は分類される。例えば、組換えscFv核酸によってコードされるscFvペプチドの
安定性は、経時的にペプチドのサイズを測定するサイズ排除クロマトグラフィーによって
分析され得る。他の例に関して、組換えscFv核酸によってコードされるscFvペプ
チドのpH感受性及び結合親和性は、異なる緩衝液条件(pH、温度など)においてsc
Fvペプチドを1つ以上のリガンドと接触させることによって分析され得る。
離に関して、本発明者らは、組換えscFv核酸が、mRNAの形態で存在する場合があ
り、任意選択により、mRNAの3’末端でピューロマイシン分子と予め結合されること
を企図する。次に、ピューロマイシン結合型mRNAから転写されるペプチドがピューロ
マイシンを介してmRNAと結合されるように、ピューロマイシン結合型mRNAはイン
ビトロで転写され得る。次に、ペプチドは、1つ以上のリガンドと、任意選択により異な
る緩衝液条件(pH、温度など)において接触される。好ましくは、pH5.0~8.0
、好ましくはpH6.0~8.0、より好ましくはpH6.5~8.0で10-6M以下
、好ましくは10-7M以下のKDを有する親和性を有してリガンドに結合するペプチド
が、選択され、且つ単離される。リガンドに対して高い親和性を有するペプチドが単離さ
れると、単離されたペプチドのcDNAが、ピューロマイシン及びペプチドと結合したm
RNAのインビトロ逆転写を介して作製され得る。
たcDNAを、免疫グロブリンの部分に移植し、置き換えて、組換え免疫グロブリン又は
その断片を形成できる。例えば、そのように作製されたcDNAは、免疫グロブリンの重
鎖及び軽鎖の可変領域が単離ペプチドによって形成されるscFvと置き換えられ得るよ
うに、免疫グロブリン重鎖定常領域の骨格と融合され得る。或いは、本発明者らはまた、
組換えscFv核酸のVH部分(又はVHドメイン組換え核酸に由来する)及びVL部分
(又は組換えscFv核酸に由来する)を、免疫グロブリンの部分に移植し、置き換えて
、組換え免疫グロブリン又はその断片を形成できることを企図する。例えば、組換えsc
Fv核酸のVH部分(又はVHドメイン組換え核酸に由来する)及びVL部分(又は組換
えscFv核酸に由来する)を、それぞれ免疫グロブリン重鎖定常領域又は軽鎖定常領域
の骨格と融合させて、所望のリガンドに特異的な可変領域を有する免疫グロブリンを形成
する。
は定常ドメインの任意の型(例えば、IgG、IgE、IgM、IgD、IgA及びIg
Y)及び任意のクラス(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1及
びIgA2)を含み得ることが企図される。加えて、「抗体」は、ヒト抗体、ヒト化抗体
、キメラ抗体、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体を含んでもよいが、これらに限
定されない。この文脈において、企図された系及び方法により、単離されたVH及びVL
ドメインを所望の種(例えば、ヒト)の抗体の残部に移植することによって種特異的抗体
の作製が可能になることが留意されるべきである。別の例において、そのように作製され
たcDNAを、免疫グロブリンの他の部分をコードする核酸と融合させて、免疫グロブリ
ンの断片を形成できる。この例において、免疫グロブリンの断片は、Fab断片、Fab
’断片、F(ab’)2、ジスルフィド結合Fv(sdFv)、及びFvであり得ること
が企図される。本発明者らはさらに、そのように作製されたcDNAの一部を、免疫グロ
ブリンの他の部分をコードする核酸と融合させて、VHセグメント及び/又はVLセグメ
ントのいずれかを含む任意の断片を形成できることを企図する。
めの標的化実体として使用され得ることを企図する。例えば、scFv部分を、(典型的
にはキメラタンパク質として)ALT-803型分子に結合させて、特異的な標的化性能
を有するTxM実体を形成してもよい(例えば、J Biol Chem.2016 N
ov 11;291(46):23869-23881を参照のこと)。別の例において
、scFv部分を担体タンパク質(例えば、アルブミン)に結合して、薬物が担体に結合
される場合に腫瘍微小環境における特定の位置に1つ以上の薬物の標的特異的な送達を可
能にし得る。
構築すること、及び/又はサブライブラリーのメンバーを予め選択することによって、発
現ライブラリーが、不安定配列、非結合配列、又は誤って折り畳まれた配列を除去するこ
とにより、多様性の犠牲を最小限に抑えながら、約1012の複雑さを達成できることを
企図する。したがって、発現ライブラリーを作製するための上記のアプローチは、配列の
複雑さに意味のある大きさを提供しつつ、少量でバインダー/抗体をスクリーニングする
のに実用的である。加えて、発現ライブラリーを作製するための上記のアプローチは、バ
インダー/抗体のスクリーニング手順を単純化した。従来、結合ドメイン(又はモチーフ
)をコードする任意の核酸配列(例えば、ランダム化された配列)のインビトロバリデー
ションは、核酸配列をFabドメインに変換することを必要とし、その後、結合親和性を
、目的のリガンドとのプルダウンアッセイを介して試験することができた。本明細書に提
示される方法は、核酸配列をFabドメインに変換することなく、親和性(例えば、Kd
値)、pH感受性、及び種間交差反応性(例えば、表面プラズモン共鳴アッセイなどを介
して)による順位付けを介して、結合ドメイン(又はモチーフ)をコードする核酸配列の
インビトロバリデーションを可能にする。さらに、安定性及び感受性に基づく各ライブラ
リーからのメンバーの事前選択は、所望のバインダー/scFv/抗体ドメインがより迅
速且つ効率的に同定され得るように、ライブラリーにおいて試験されることになるプール
を減少させる。したがって、本発明者らはまた、インビトロ翻訳後のライブラリーメンバ
ーが固相結合抗原に対してスクリーニングされるmRNAディスプレイ技術を用いて、高
多様性プールから高親和性バインダー(例えば、ナノ及びピコモルKdを有する)を単離
するための方法を企図する。バインダーが同定されると、それらは、以下にさらに記載さ
れるとおり、親和性及びKon/Koff特性に関して表面プラズモン共鳴分光法によっ
てさらに特徴付けられ得る。別の観点から見ると、企図された系及び方法は、インビボ免
疫系から完全に独立したプロセスにおいて、バインダーの迅速な検出及びscFv又は抗
体の作製を可能にする。
効率を維持しながら多様性を最大化するために、標的化される多様化領域(複数可)を
同定するための任意の好適な多様化スキームが企図され得るが、本発明者らは、VH3/
Vk1が、免疫グロブリンの様々なドメインの中でランダム化のための良好な候補領域の
1つであり得、VH3が、最も安定で可溶性のVHドメインであると考えられ、且つ軽鎖
のVk1が、安定で可溶性であることを見出した。したがって、VH3/Vk1ランダム
化対が、より効率的に完全なサイズの免疫グロブリンに変換することが企図される。した
がって、本発明者らは、VH3及びVk1フレームワークを使用する事前選択戦略を開発
した。図1は、VH3/Vk1の対を使用する1つの例示的ランダム化戦略を示す。1個
の抗原に特異的な少なくとも14個の免疫グロブリン分子のタンパク質配列が比較され、
分析される。14個の免疫グロブリン分子の中で最も安定で保存された配列がフレームワ
ークとして使用され、可変配列の位置を分析して、ランダム化された配列及びランダム化
の程度(例えば、完全にランダム、部分的にランダムなど)として使用する。
R2-n、CDR2-c(図2を参照のこと)及びVHドメインのCDR3(図3を参照
のこと)について、標的化された多様化配列(ランダム化された配列、ランダムオリゴ)
を作製した。VHドメインのCDR1、CDR2-n、CDR2-c、CDR3、及びV
LドメインのCDR3のランダムオリゴを用いて組換えscFv核酸を作製する工程は上
に記載され、図4の模式図においても示される。高多様性ライブラリーは、図5において
例示的に示されるとおりに構築され、上でより詳細に論じられた。
化スキーム及び方法を使用して、本発明者らは、高多様性ライブラリーを作製し、それか
ら組換えα-B7-H4801(α-B7-H4、クローンナンバー801)バインダー
を単離した。組換えα-B7-H4801の安定性は、抗体の分解又は変形を評価するた
めの15分間の分析的サイズ排除クロマトグラフィーにより決定された。図6において示
されるとおり、α-B7-H4801の溶出物は、著しく小さいピークを伴わない単一の
ピークを示し、これは上記の方法によって作製されたα-B7-H4801バインダーが
、高い安定性を有するscFv又は抗体を生成できたことを示している。
キサン(登録商標)、LEAF(登録商標))と実質的に同様な抗体成分を含むことを見
出した。組換えα-B7-H4801と2つの市販のα-B7-H4抗体(リツキサン(
登録商標)、LEAF(登録商標))の断片が、キャピラリー電気泳動ドデシル硫酸ナト
リウム(CE-SDS)を介して分析された。図7において示されるとおり、組換えα-
B7-H4801抗体と2つの市販のα-B7-H4抗体(リツキサン(登録商標)、L
EAF(登録商標))断片のCE-SDS分離は、2つの著明なピークを示し、各々が軽
鎖(中央のピーク)及びグリコシル化された重鎖(右のピーク)に相当する。左のピーク
は、CE-SDS分析のための10Kdの標準的なマーカーの位置を示す。
る結合特性(例えば、親和性、特異性など)を示し得ることを見出した。図8は、平均蛍
光強度(MFI)によって測定される、B7-H4発現293T細胞との結合について試
験される2つの組換えα-B7-H4抗体であるα-B7-H4801及びα-B7-H
4817を示す。結果は、α-B7-H4801抗体が、α-B7-H4817抗体と比
較してB7-H4発現293T細胞に対してより高い結合親和性を有することを示し、こ
れは、別々にランダム化されたCDRドメインが、リガンドに対して異なる結合親和性を
もたらし得ることを示している。一番右端のパネルは、非特異的ヒトIgG1(hIgG
1)による対照実験を示す。
(APC)上で発現されるリガンド(B7-H4)に対する特異的且つ効率的な結合を決
定するために試験された。図9において示されるとおり、組換えα-B7-H4抗体は、
B7-H4リガンドに特異的に結合でき(非特異的アイソタイプ結合からピークアウトを
分離している)、これは、組換えα-B7-H4抗体が十分に機能的であることを示して
いる。
ドとscFv B7-H4801とともに同じscFvペプチドによって作製された組換
えα-B7-H4抗体(IgG α-B7-H4801)が、表面プラズモン共鳴アッセ
イを使用して機能的に互換性があることを見出した。このアッセイにおいて、Flagタ
グ付きscFv B7-H4801は、表面結合ニュートラアビジンと結合されるα-F
lagビオチン化抗体を介して表面に固定化される。次に、表面に固定化されたscFv
B7-H4801ペプチドは、B7-H4を含む分析物と接触される。同様のアッセイ
がα-B7-H4抗体により実施された。図10及び表3において示されるとおり、sc
Fv B7-H4801及びIgG α-B7-H4801は、B7-H4に対して実質
的に同様の親和性及び結合特性を示し、それらが、機能的に互換性があることを示してい
る。さらに、インビトロ翻訳ペプチド(scFv)の結合親和性は、ペプチドを抗体骨格
に移植することなく直接的に測定され得るため、発現ライブラリー中のより多くの組換え
scFv核酸が効率的にスクリーニングされ得る。
B7-H4に対する複数のscFvペプチドの間で、本発明者らは、特定のドメイン(特
定のランダム配列カセット)における類似性が、scFvペプチドにリガンドに対する同
様の結合特性を有するようにし得るかどうかを試験した。5つのscFvペプチド(80
1、802、905、906、及び817)は、B7-H4に対するそれらの結合親和性
について試験された。表4において示されるとおり、それらの中で4つのscFvペプチ
ド(クローン801、802、905、906)は、同様のCDR3配列を有する。VH
のCDR3において同様のランダム配列カセットを有するそれらの4つのscFvペプチ
ドは、25℃と37℃の両方においてB7-H4に対する同様の結合親和性を示し(表5
において示されるとおり)、これは、少なくともB7-H4に対するscFvペプチド中
において、VHのCDR3における配列が、リガンドに対する結合に重要であり得ること
を示している。
-8(IL-8)(scFv IL-8)に結合する複数のscFvペプチドを作製し、
様々な条件(温度及びpH)においてIL-8に対する親和性を試験した。例示的なsc
Fv IL-8ペプチド及び様々な条件において測定されたそれらの結合親和性は、表6
において示される。表6において示されるクローンの中で、クローン49-7、49-1
及び49-12が同様のVH CDR3配列を含有し、クローン49-19、49-37
、及び49-25が同様のVH CDR3配列を含有する。加えて、クローン49-3及
び43-2は、同様のVH CDR3配列を含有する。B7-H4に対するscFvペプ
チドとは対照的に、本発明者らは、scFv IL-8ペプチドの結合親和性が、VHの
CDR3におけるランダム配列における類似性に決定的に依存的ではない場合があること
を見出した。例えば、クローン49-18、49-37、及び49-25が、同様のVH
CDR3配列を含有する一方で、それらの配列の結合親和性(KDX10-9Mにおい
て測定される単位)は、0.894X10-9Mと25X10-9Mの間で変動する。
L-8を効率的に捕捉することによってIL-8の作用を中和できるかどうかを試験した
。一般に、好中球は、IL-8によって刺激されると拡大される(例えば、より大きな直
径を有するなど)(図11に示されるとおり)。本発明者らは、好中球拡大に対するその
ようなIL-8作用を、組換えα-IL-8抗体(mAb αIL-8201、図12に
おいて示されるとおり、上段左のグラフ)又はいくつかのscFv IL-8ペプチド(
αIL-8#2、αIL-849-3、αIL-849-10、図12において示される
とおり、下段のグラフ)の添加によって大幅に消失できたことを見出したが、これは、s
cFv IL-8ペプチドが、培地中の遊離IL-8に結合することによってIL-8の
作用を効率的に中和できたことを示している。
る好中球走化性因子である。scFv IL-8ペプチドの機能的作用を評価するために
、好中球を、多孔性膜を有する挿入物の底に置き、IL-8によって誘引された好中球が
多孔性膜を介して挿入物から培地に向かって遊出できるように、様々な濃度のIL-8を
含む媒体中に置いた。図13において示されるとおり、培地中のIL-8濃度を増大させ
ることによって、遊走した好中球の数が増加した。興味深いことに、そのようなIL-8
作用は、scFv IL-8ペプチド(αIL-843-2)又はscFv IL-8ペ
プチドに由来する組換えIL-8抗体(mAb αIL-8201)の添加により、ほぼ
完全に消失した。
れた様々なscFvに関するさらなる実験データを示す。より具体的には、各データポイ
ントは下部に示される標的に対するscFvを表し、各scFvに対する親和性値を決定
した。見てのとおり、(同じ)ライブラリーにより、様々な異なる標的に対して複数の高
親和性のバインダーが得られ、全てのバインダーはマイクロM以下で、及び多くはナノM
以下の親和性範囲を有した。さらに、本発明者らはまた、ヒトIgG上にCDRを移植し
た際に、scFvの親和性が維持され得るかどうかについても検討している。図15は、
ヒトIgG1足場に移植された選択されたscFvについての29個のCDR移植実験の
例示的な結果を示す。図15の結果から分かるとおり、ヒト化IgG1抗体は高い特異性
と親和性を保持した(通常、1桁以内)。
形態が可能であることは、当業者には明らかなはずである。したがって、本発明の主題は
、添付の特許請求の範囲以外に制限されるものではない。さらに、本明細書及び特許請求
の範囲の両方を解釈する際には、全ての用語は、文脈に沿った可能な限り広範な方法で解
釈されるべきである。特に、用語「含む」及び「含むこと」は、非排他的な様式で要素、
構成要素、又は工程を参照していると解釈されるべきであり、参照される要素、構成要素
、又は工程が存在し得るか、利用され得るか、又は明示的に参照されない他の要素、構成
要素、又は工程と組み合わされ得ることを示している。本明細書及び後続の特許請求の範
囲全体で使用されるとおり、「a」、「an」、及び「the」の意味は、文脈が明らか
にそうでないことを指示しない限り、複数の参照を含む。また、本明細書において使用さ
れるとおり、「in」の意味は、文脈が明らかにそうでないことを指示しない限り、「i
n」及び「on」を含む。本明細書の請求項が、A、B、C、....及びNからなる群
から選択されるもののうちの少なくとも1つを指す場合、本文は、A+N、又はB+Nな
どではなく、群から1つの要素のみを必要とするものと解釈されるべきである。
Claims (6)
- 抗原に対して高い親和性で結合する組換え抗体を作製する方法であって、
(1)VH-CDR1/2サブライブラリー、(2)複数のVH-CDR3サブライブラリー、及び(3)VLサブライブラリーを作製又は提供する工程であって、前記サブライブラリー(1)~(3)の各々が複数のメンバーを含み;
前記サブライブラリーの各メンバーが、複数の縮重塩基位置を有する少なくとも1つのランダムカセットを含む工程;
前記VH-CDR1/2サブライブラリー、前記複数のVH-CDR3サブライブラリー、及び前記VLサブライブラリーの少なくとも2つのメンバーの少なくとも一部を組換えて、発現ライブラリー中の発現ライブラリーメンバーを形成する工程であって、前記発現ライブラリーが、複数の発現ライブラリーメンバーを含み、各発現ライブラリーメンバーが、別個の抗体又は抗体断片をコードする工程;
mRNAディスプレイを使用して高い親和性で結合する抗体又は抗体断片をコードする発現ライブラリーメンバーを単離する工程;及び
前記単離された発現ライブラリーメンバーをコードする発現ベクターを作製し、前記発現ベクターから前記組換え抗体を生成する工程を含む、方法。 - 前記発現ベクターが、前記別個の抗体又は抗体断片の分泌を促進するシグナルペプチドをコードする核酸断片をさらに含んでなる、請求項1に記載の方法。
- 前記ランダムカセットが、配列番号1~配列番号25で示されるオリゴヌクレオチドから選択されるオリゴヌクレオチドを使用して作製される、請求項1に記載の方法。
- 前記VH-CDR1/2サブライブラリーの複数のメンバーが、VH CDR1の一部及びVH CDR2の一部のうちの少なくとも1つに相当するランダムカセットを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記VH-CDR3サブライブラリーの複数のメンバーが、VH CDR3の少なくとも一部に相当するランダムカセットを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記VLサブライブラリーの複数のメンバーが、VL CDR3の一部でランダムカセットを含む、請求項1に記載の方法。
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