JP7571993B2 - 標的核酸の検出方法 - Google Patents

Description

本発明は、標的核酸の検出方法に関する。

標的核酸の検出による各種診断方法が知られている。そのような診断方法として、例えば、一塩基多型（ＳＮＰ）解析による体質診断、体細胞変異解析による薬剤（例えば、抗癌剤）の効果及び副作用の予測診断、ウイルスのＤＮＡ又はＲＮＡの検出による感染症の診断等がある。これらの診断用途では、標的核酸の存在比が低い場合が多いため、標的核酸を高精度で定量解析できる方法が必要である。標的核酸を高精度で定量解析する手法として、例えば、デジタル計測を利用した方法が知られている。

デジタル計測は、標的核酸等の生体分子を確率的に１分子以下になるように希釈し、多数の微小な反応容器に分配し、各反応容器を２値化（検出反応に伴う信号がある／ない）することで、反応容器に検出対象が入っているかいないかをカウントする定量方法である。デジタル計測では、１分子の生体分子を検出することも可能であり、高精度な定量測定を行うことができる。例えば、非特許文献１には、ＩＣＡ（Ｉｎｖａｓｉｖｅ Ｃｌｅａｖａｇｅ Ａｓｓａｙ）法をデジタル計測と組み合わせた標的核酸の検出方法が開示されている。

日本印刷学会誌，２０１７年，第５４巻第６号，ｐｐ．３７７－３８２

デジタル計測は、各反応容器を２値化（検出反応に伴う信号がある／ない）することに基づいているため、より高精度な定量測定を行うためには、シグナル／ノイズ比（Ｓ／Ｎ比）の向上が求められる。そこで、本発明は、Ｓ／Ｎ比が向上した標的核酸の検出方法を提供することを目的とする。

本発明は、標的核酸と第一核酸と第二核酸とにより形成される第一開裂構造の第一フラップを切断すること、第三核酸と切断された第一フラップと第四核酸とにより形成される第二開裂構造の第二フラップを切断すること、切断された第二フラップを検出することで標的核酸の存在を検出することを含み、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、フラップエンドヌクレアーゼで上記第一フラップ及び上記第二フラップを切断することにより行われ、上記フラップエンドヌクレアーゼは、サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株、及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株からなる群より選択される菌のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列との配列同一性が９６％以上であるアミノ酸配列を有する、標的核酸の検出方法に関する。

本発明に係る検出方法は、第一フラップの切断、及び第二フラップの切断が、特定のフラップエンドヌクレアーゼにより行われるため、従来法よりもＳ／Ｎ比が向上している。

上記検出方法において、標的核酸はＤＮＡであってよい。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、ｐＨ７．５以上９．０以下の条件下で行われることが好ましい。ｐＨがこの範囲内にあると、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、温度５５℃以上７０℃以下の条件下で行われることが好ましい。温度がこの範囲内にあると、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、上記水性溶媒がＭｇ^２＋を含むことが好ましい。また、水性溶媒中のＭｇ^２＋濃度が２．５ｍＭ以上２０ｍＭ以下であることがより好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、上記水性溶媒中のＫ^＋濃度が０ｍＭ以上１００ｍＭ以下であることが好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、上記水性溶媒中のトリスヒドロキシメチルアミノメタン濃度が０ｍＭ超３００ｍＭ以下であることが好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、上記水性溶媒中の上記フラップエンドヌクレアーゼ濃度が０．５μＭ以上８μＭ以下であってよい。これにより、充分なＳ／Ｎ比の向上効果を達成できる。

上記検出方法において、上記第一フラップを切断すること、及び上記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、上記水性溶媒の容積が１０ａＬ以上１０μＬ以下であることが好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

上記検出方法において、上記第三核酸と上記第四核酸は、リンカー分子によって結合されていてもよい。

上記検出方法は、上記切断された第二フラップを蛍光を検出することにより検出するものであってよい。

本発明はまた、上述の本発明に係る検出方法に使用するためのキットであって、上記第三核酸と、上記第四核酸と、上記フラップエンドヌクレアーゼと、上記標的核酸の塩基配列に応じて第一核酸及び第二核酸の塩基配列を設計する指針を示す説明書と、を含む、キットにも関する。

本発明は更に、サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株、及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株からなる群より選択される菌のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列との配列同一性が９６％以上であるアミノ酸配列をコードする核酸配列と、上記核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する、発現ベクターにも関する。

上記発現ベクターは、上述の本発明に係る検出方法に好適に使用できるフラップエンドヌクレアーゼを調製するために使用することができる。また、上記発現ベクターは、プラスミドであってよい。

本発明によれば、Ｓ／Ｎ比が向上した標的核酸の検出方法を提供することができる。

開裂構造の説明図である。 試験例３の評価系の概要を示す説明図である。 試験例３における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果の一例を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例４における、蛍光強度のリアルタイム測定の結果を示すグラフである。 試験例５における、デジタル計測の結果を示す写真である。

以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。ただし、本発明は、以下の実施形態に限定されるものではない。

本実施形態に係る標的核酸の検出方法は、標的核酸と第一核酸と第二核酸とにより形成される第一開裂構造の第一フラップを切断すること（第一フラップ切断ステップ）、第三核酸と切断された第一フラップと第四核酸とにより形成される第二開裂構造の第二フラップを切断すること（第二フラップ切断ステップ）、切断された第二フラップを検出することで標的核酸の存在を検出すること（検出ステップ）を含む。ここで、第一フラップの切断、及び第二フラップの切断は、特定のフラップエンドヌクレアーゼにより行われる。

本明細書において「開裂構造」とは、標的核酸と、当該標的核酸の隣接する第１の領域及び第２の領域のそれぞれにハイブリダイズ可能な２つの核酸とから形成される構造であり、標的核酸の第１の領域に一方の核酸（例えば、第一核酸）の３’側の部分配列がハイブリダイズし、標的核酸の第１の領域の３’側に隣接する第２の領域に他方の核酸（例えば、第二核酸）がハイブリダイズし、第１の領域にハイブリダイズする核酸（例えば、第一核酸）の５’側の残りの配列が１本鎖で突き出しフラップを形成している構造を意味する。開裂構造の具体例としては、図１に示す構造が挙げられる。

本実施形態に係る検出方法で使用するフラップエンドヌクレアーゼ（以下、「ＦＥＮ」又は「ＦＥＮタンパク質」とも記載する。）は、サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株、及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株からなる群より選択される菌のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列との配列同一性が９６％以上であるアミノ酸配列を有するものであればよい。このようなＦＥＮを使用することによって、従来法よりも向上したＳ／Ｎ比を達成することができる。

本実施形態に係る検出方法で使用するＦＥＮは、開裂構造を認識し、フラップの根本（三つの核酸が重なる部位の３’側のホスホジエステル結合）を切断し、フラップ（核酸）を遊離させる活性を有するものであればよい。

なお、サーモコッカス・コダカレンシスＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシＧＥ５株及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカスＤｅｌｔａ Ｈ株は、国立研究開発法人理化学研究所バイオリソース研究センター（ＲＩＫＥＮ ＢＲＣ）より入手可能である。

本実施形態に係る検出方法で使用するＦＥＮは、そのアミノ酸配列が、上述した菌株が有するＦＥＮのアミノ酸配列と９６％以上の配列同一性を有するものであればよい。また、当該ＦＥＮは、開裂構造を認識し、フラップの根本（三つの核酸が重なる部位の３’側のホスホジエステル結合）を切断し、フラップ（核酸）を遊離させる活性を有するものである。

本明細書において、「配列同一性」とは、当該技術分野において公知の数学的アルゴリズムを用いて２つのアミノ酸配列をアラインさせた場合の最適なアラインメント（好ましくは、該アルゴリズムは最適なアラインメントのために配列の一方又は両方へのギャップの導入を考慮し得るものである。）における、オーバーラップする全アミノ酸配列に対する同一アミノ酸残基の割合（％）を意味する。アラインメントの作成には、例えば、ＮＣＢＩ ＢＬＡＳＴ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ）を用いることができる。

本実施形態に係る検出方法で使用するＦＥＮは、そのアミノ酸配列が、上述した菌株が有するＦＥＮのアミノ酸配列との配列同一性が、９６％以上であってよく、９７％以上であってよく、９８％以上であってよく、９９％以上であってよく、９９．１％以上であってよく、９９．２％以上であってよく、９９．３％以上であってよく、９９．４％以上であってよく、９９．５％以上であってよく、９９．６％以上であってよく、９９．７％以上であってよく、９９．８％以上であってよく、９９．９％以上であってよく、１００％であってもよい。

本実施形態に係る検出方法で使用するＦＥＮタンパク質は、上述した菌株から抽出又は精製して単離したものであってもよく、上述した菌株からＦＥＮタンパク質をコードする遺伝子をクローニングし、異種タンパク質発現系（組換えタンパク質発現系）で発現させたものを抽出又は精製して単離したものであってもよい。また、上述した菌株を使用することなく、上述した菌株が有するＦＥＮタンパク質のアミノ酸配列に基づいて当該アミノ酸配列をコードする遺伝子を化学合成等により製造し、異種タンパク質発現系（組換えタンパク質発現系）で発現させたものを抽出又は精製して単離したものであってもよい。異種タンパク質発現系でＦＥＮタンパク質を発現させる場合、上述した配列同一性の範囲内となるようにアミノ酸配列を改変した遺伝子を用いてもよい。なお、上述した菌株が有するＦＥＮタンパク質のアミノ酸配列等の情報は、配列データベース（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ、ＮＣＢＩ）から入手することができる。

第一フラップ切断ステップは、標的核酸と第一核酸と第二核酸とにより形成される第一開裂構造の第一フラップを切断するステップである。

第一核酸及び第二核酸は、標的核酸の第１の領域、及び第１の領域の３’側に隣接する第２の領域のそれぞれにハイブリダイズ可能なように設計される。このとき、第一核酸は、３’側の部分配列が標的核酸の第１の領域にハイブリダイズし、５’側の残りの配列が１本鎖で突き出しフラップを形成するように設計される。また、フラップの配列は、第四核酸の第２の領域にハイブリダイズするように設計される。第二核酸は、標的核酸の第２の領域にハイブリダイズするように設計される。標的核酸の第１の領域及び第２の領域は、標的核酸を特異的に検出できる塩基配列を有するように設計される。例えば、ＳＮＰ解析に応用する場合、第１の領域と第２の領域の結合部分、すなわち三つの核酸が重なる部位にＳＮＰ部位がくるように設計することが好ましい。

第一開裂構造は、標的核酸の第１の領域に第一核酸の３’側の部分配列がハイブリダイズし、標的核酸の第１の領域の３’側に隣接する第２の領域に第二核酸がハイブリダイズし、第一核酸の５’側の残りの配列が１本鎖で突き出し第一フラップを形成している構造である。第一フラップ切断ステップでは、ＦＥＮがこの第一開裂構造を認識し、第一フラップの根本（三つの核酸が重なる部位の３’側のホスホジエステル結合）を切断し、第一フラップ（核酸）を遊離させる。

第一フラップ切断ステップは、反応液のｐＨが７．５以上９．０以下の条件下で行われることが好ましい。ｐＨがこの範囲内にあると、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。良好なＳ／Ｎ比に加えて、より短時間での検出が可能になるという観点から、反応液のｐＨは、８．０以上９．０以下の範囲内であることが好ましく、８．２以上８．８以下の範囲内であることがより好ましく、８．４以上８．６以下の範囲内であることが更に好ましい。

第一フラップ切断ステップは、反応液の温度が５５℃以上７５℃以下の条件下で行われることが好ましく、５５℃以上７０℃以下の条件下で行われることがより好ましい。温度がこの範囲内にあると、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。良好なＳ／Ｎ比に加えて、標的核酸の濃度が低い場合であってもより短時間での検出が可能になるという観点から、反応液の温度は、例えば、６０℃以上であってよく、６５℃以下であってよい。反応液の温度が６０℃以上６５℃以下であると、的核酸の濃度が低い場合であってもより短時間での検出が可能になるという効果がより顕著に奏される。

第一フラップ切断ステップは、Ｍｇ^２＋を含む水性媒体中で行われることが好ましい。Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になるという観点から、反応液（水性媒体）中のＭｇ^２＋濃度は、１ｍＭ以上２０ｍＭ以下の範囲内であることが好ましく、２．５ｍＭ以上２０ｍＭ以下の範囲内であることがより好ましい。良好なＳ／Ｎ比に加えて、より短時間での検出が可能になるという観点から、反応液（水性媒体）中のＭｇ^２＋濃度は、５ｍＭ以上１０ｍＭ以下の範囲内であることが更に好ましい。反応液（水性媒体）中のＭｇ^２＋濃度は、例えば、塩化マグネシウム等のマグネシウム塩を反応液に添加することで調整することができる。

第一フラップ切断ステップは、Ｋ^＋濃度が０ｍＭ以上１００ｍＭ以下である水性媒体中で行われることが好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。なお、上記範囲内であれば、反応液（水性媒体）中のＫ^＋濃度が０ｍＭであってもＳ／Ｎ比及び立ち上がりの早さに大きな差異はないことから、Ｋ^＋は必ずしも添加する必要はなく、反応液をより簡素にできる観点からは、Ｋ^＋濃度が０ｍＭであることがより好ましい。反応液（水性媒体）中のＫ^＋濃度は、例えば、塩化カリウム等のカリウム塩を反応液に添加することで調整することができる。

第一フラップ切断ステップは、任意の緩衝液中で行ってよい。緩衝液としては、例えば、Ｔｒｉｓ緩衝液、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ緩衝液、ＭＯＰＳ緩衝液等を使用できる。Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になるという観点から、第一フラップ切断ステップは、トリスヒドロキシメチルアミノメタン濃度が０ｍＭ超３００ｍＭ以下である水性溶媒中で行われることが好ましい。Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になることに加え、より短時間での検出が可能になるという観点から、反応液（水性媒体）中のトリスヒドロキシメチルアミノメタン濃度は、５ｍＭ以上３００ｍＭ以下の範囲内であることがより好ましい。

第一フラップ切断ステップは、反応液（水性媒体）中のフラップエンドヌクレアーゼ濃度が０．５μＭ以上８μＭ以下であってよい。これにより、充分なＳ／Ｎ比の向上効果を達成できる。

第一フラップ切断ステップは、反応液（水性溶媒）の容積が１０ａＬ以上１０μＬ以下となるように実施することが好ましい。これにより、Ｓ／Ｎ比の向上効果がより顕著になる。

反応液中の第一核酸及び第二核酸の濃度は、例えば、それぞれ１ｎＭ以上１０μＭ以下の範囲内で適宜設定してよい。

第一フラップ切断ステップで切断された第一フラップは、第三核酸及び第四核酸と第二開裂構造を形成する。

第二フラップ切断ステップは、第三核酸と切断された第一フラップと第四核酸とにより形成される第二開裂構造の第二フラップを切断するステップである。

第三核酸は、第四核酸の第１の領域にハイブリダイズ可能なように設計される。このとき、第三核酸は、３’側の部分配列が第四核酸の第１の領域にハイブリダイズし、５’側の残りの配列が１本鎖で突き出しフラップを形成するように設計される。また、第一フラップは、第四核酸の第１の領域の３’側に隣接する第２の領域にハイブリダイズするように設計されている。

第二開裂構造は、第四核酸の第１の領域に第三核酸の３’側の部分配列がハイブリダイズし、第四核酸の第１の領域の３’側に隣接する第２の領域に第一フラップがハイブリダイズし、第三核酸の５’側の残りの配列が１本鎖で突き出し第二フラップを形成している構造である。第二フラップ切断ステップでは、ＦＥＮがこの第二開裂構造を認識し、第二フラップの根本（三つの核酸が重なる部位の３’側のホスホジエステル結合）を切断し、第二フラップ（核酸）を遊離させる。

第三核酸及び第四核酸は、それぞれ別の核酸分子として構成していてもよく、リンカー分子によって結合されていてもよい。リンカー分子としては、例えば、核酸（すなわち、第三核酸及び第四核酸が核酸であるリンカーを介して結合することにより、一分子の核酸として構成される）、鎖状分子により構成されるスペーサー等が挙げられる。

第三核酸は、検出ステップでの検出方法に応じて、標識が付されていてもよい。標識としては、例えば、蛍光色素、放射性核種、発光物質、燐光性物質、レドックス分子等が挙げられる。標識方法は、本技術分野の常法に従えばよい。蛍光色素で標識する場合は、例えば、第三核酸のフラップに相当する部位に蛍光色素を結合させ、第三核酸の３’側の部分配列に相当する部位に蛍光色素の種類に応じた消光分子を結合させてもよい。これにより、第二開裂構造の状態ではＦＲＥＴにより蛍光色素からの蛍光が検出されず、第二フラップが遊離したときに蛍光色素からの蛍光が検出されるようになるため、より簡便に検出することができる。

第二フラップ切断ステップにおける好ましい反応条件は、第一フラップ切断ステップで説明した反応条件と同様の条件を挙げることができる。

反応液中の第三核酸及び第四核酸の濃度は、例えば、それぞれ１ｎＭ以上１０μＭ以下の範囲内で適宜設定してよい。

第一フラップ切断ステップと、第二フラップ切断ステップは、異なる反応容器で実施してもよく、同じ反応容器で実施してもよい。操作がより簡便になることから、第一フラップ切断ステップと、第二フラップ切断ステップは、同じ反応容器で実施することが好ましい。この場合、反応液には、予め第三核酸及び第四核酸を含ませておけばよい。

検出ステップは、切断された第二フラップを検出することで標的核酸の存在を検出するステップである。検出ステップは、例えば、電気泳動により第二フラップに対応するサイズのバンドを検出する方法、第二フラップが標識を有する場合は、その標識に応じて蛍光検出又は放射能検出等により検出する方法等により実施することができる。

本実施形態に係る標的核酸の検出方法は、Ｓ／Ｎ比が向上しているため、デジタル計測に好適に応用することができる。

本実施形態に係るキットは、上述の本発明に係る検出方法に使用するためのキットであって、上記第三核酸と、上記第四核酸と、上記フラップエンドヌクレアーゼと、上記標的核酸の塩基配列に応じて第一核酸及び第二核酸の塩基配列を設計する指針を示す説明書と、を含む。第一核酸、第二核酸、第三核酸及び第四核酸の具体的態様は、上述したとおりである。

本発明はまた、サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株、及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株からなる群より選択される菌のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列との配列同一性が９６％以上であるアミノ酸配列をコードする核酸配列と、上記核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する、発現ベクターにも関する。

本実施形態に係る発現ベクターによれば、上述した本発明に係る検出方法に好適に使用することができるＦＥＮタンパク質を生産することができる。

調節配列は、宿主におけるＦＥＮタンパク質の発現を制御する配列（例えば、プロモーター、エンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等）であり、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。発現ベクターの種類は、プラスミドベクター、ウイルスベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、人工染色体ベクター等、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。

以下、本発明を試験例に基づいてより具体的に説明する。ただし、本発明は、以下の試験例に限定されるものではない。

〔試験例１：ＦＥＮタンパク質の調製〕
表１に示す様々な種のフラップエンドヌクレアーゼ（ＦＥＮ）タンパク質をコードする遺伝子をＰＣＲ法又は化学合成により取得し、取得した遺伝子を大腸菌用の発現ベクター（ｐＥＴ２１ａ）に組み換えた。化学合成により取得した遺伝子の場合は、Ｃ末端にヒスチジン６残基を付与するように遺伝子を合成した。なお、試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）のＦＥＮタンパク質は、従来ＩＣＡ法に使用されていた酵素である（特表２００１－５１８８０５号公報参照）。

構築した発現ベクターで大腸菌（ＢＬ２１－ＣｏｄｏｎＰｌｕｓ（ＤＥ３））を形質転換した。形質転換後の大腸菌を１００μｇ／ｍＬのアンピシリン及び３５μｇ／ｍＬのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地に播種し、ＯＤ_６００が約０．５になるまで３７℃で培養した。次いで、１Ｍ ＩＰＴＧを終濃度が０．５ｍＭとなるように添加し、２５℃で１６時間培養して、ＦＥＮタンパク質を大量発現させた。

培養した大腸菌（培地１Ｌ）を遠心分離により回収し、緩衝液（２５ｍＬ）に再懸濁した。再懸濁した大腸菌を超音波破砕した後、遠心分離して上清を回収した。次いで、回収した上清を８０℃で２０分間加熱した後、遠心分離して上清を回収した。次いで、回収した上清にポリエチレンイミンを添加した後、遠心分離して上清を回収した。回収した上清に硫酸アンモニウムを８０％飽和となるように添加し、形成された沈殿を回収した。得られた沈殿を硫酸アンモニウムを含む緩衝液に再懸濁し、不溶物を除去した後、疎水性相互作用クロマトグラフィーにより分画し、目的とするＦＥＮタンパク質を含む画分を回収した。回収した画分を緩衝液で透析した後、ＦＥＮタンパク質をヘパリンアフィニティクロマトグラフィーにより更に精製した。Ｃ末端にヒスチジン残基を有するタンパク質の場合は、培養した大腸菌（培地１Ｌ）を遠心分離により回収し、緩衝液（２５ｍＬ）に再懸濁した。再懸濁した大腸菌を超音波破砕した後、遠心分離して上清を回収した。次いで、回収した上清を６０～８０℃で２０分間加熱した後、遠心分離して上清を回収した。次いで、回収した上清をＴＡＬＯＮメタルアフィニティーレジン（クロンテック社）に添加し、イミダゾールを含む緩衝液を用いて、固定化金属アフィニティークロマトグラフィーにより分画し、目的とするＦＥＮタンパク質を含む画分を回収した。

なお、試験Ｎｏ．７（略称Ｓｓｏ）及び試験Ｎｏ．８（略称Ｓｔｏ）のＦＥＮタンパク質は、上記の精製過程において凝集沈殿してしまい、精製ができなかったため、以降の検討から除外した。

精製された各ＦＥＮタンパク質は、紫外線吸収を測定し、波長２８０ｎｍのモル吸光係数より濃度を算出した。また、精製された各ＦＥＮタンパク質をＳＤＳ－ＰＡＧＥで解析したところ、予想されるサイズの単一バンドが確認された。また、一部マイナーバンドが検出されるものもあったが、非特異的なヌクレアーゼ活性がないことを確認した。

〔試験例２：フラップ切断活性の評価〕
試験例１で精製したＦＥＮタンパク質のフラップ切断活性を評価した。開裂構造は、標的核酸（５’－ＧＧＴＧＡＴＣＧＴＴＣＧＣＴＡＣＡＴＧＴＣＧＴＣＡＧＧＡＴＴＣＣＡＧＧＣＡＧ－３’：配列番号１）、第一核酸（５’－ＦＩＴＣ－ＡＧＡＣＡＣＡＴＧＧＴＡＴＧＴＡＧＣＧＡＡＣＧＡＴＣＡＣＣ－３’：配列番号２）及び第二核酸（５’－ＣＴＧＣＣＴＧＧＡＡＴＣＣＴＧＡＣＧＡＣ－３’：配列番号３）により形成した。当該開裂構造では、第一核酸の５’側の部分配列（５’端から下線を付したＴまでの１１塩基）がフラップとして１本鎖で突き出している。

切断反応は、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ７．６）、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１０ｎＭ 基質ＤＮＡ（上記の標的核酸、第一核酸及び第二核酸の等モル混合物）、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質の組成で反応溶液を調製し、当該反応溶液を５５℃で１０分間インキュベートすることで行った。

反応終了後、８Ｍ尿素を含む１２％ポリアクリルアミドゲルで電気泳動した。次いで、イメージアナライザ（Ｔｙｐｈｏｏｎ Ｔｒｉｏ＋，ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製）を用いて、未切断の開裂構造（３８塩基の位置のバンド）及び切断されたフラップ（１１塩基の位置のバンド）の蛍光強度を測定した。測定された蛍光強度から、下記式に従って、フラップ切断活性を算出した。結果を表２に示す。
フラップ切断活性＝（１１塩基の位置のバンドの蛍光強度）／｛（１１塩基の位置のバンドの蛍光強度）＋（３８塩基の位置のバンドの蛍光強度）｝×１００（％）

表２に示すとおり、試験Ｎｏ．１３（略称Ｐｏｇｕｎ）及び試験Ｎｏ．１５（略称Ｃｌａｇｕ）以外のＦＥＮタンパク質には、充分なフラップ切断活性が認められた。

〔試験例３：２段階フラップ切断活性の評価〕
試験例２でフラップ切断活性が認められたＦＥＮタンパク質に対し、ＩＣＡ法で通常採用されている２段階のフラップ切断反応におけるフラップ切断活性を評価した。評価系の概要は図２に示すとおりである。図２に示す評価系は、アレルプローブを蛍光標識することで、ＦＥＮタンパク質による１段階目のフラップ切断反応（第一開裂構造の第一フラップを切断する反応）を検出可能にした点以外は、ＩＣＡ法で一般に用いられる反応系と同等である。

図２に示す評価系では、標的核酸（塩基配列：５’－ＧＧＴＧＡＴＣＧＴＴＣＧＣＴＡＣＡＴＧＴＣＧＴＣＡＧＧＡＴＴＣＣＡＧＧＣＡＧ－３’：配列番号４）と、第一核酸及び第二核酸にそれぞれ相当するアレルプローブ（塩基配列：５’－ＦＡＭ－ＡＧＡＣＡＣＡＴＧＧＴＡＴＧＴＡＧＣＧＡＡＣＧＡＴＣＡＣＣ－ＢＨＱ１－３’：配列番号５）及びインベーダーオリゴヌクレオチド（塩基配列：５’－ＣＴＧＣＣＴＧＧＡＡＴＣＣＴＧＡＣＧＡＣ－３’：配列番号６）とから、第一開裂構造が形成される。アレルプローブの５’端及び３’端には、それぞれ蛍光分子（ＦＡＭ）及び消光分子（ＢＨＱ１：チミン残基にブラックホールクエンチャーが修飾されたもの。）が結合されており、ＦＥＮタンパク質により第一フラップが切断されると（１段階目のフラップ切断反応）、ＦＡＭの緑色蛍光が検出されるようになる。切断された第一フラップは、リンカー分子（ここでは、検出用核酸の塩基配列の一部）によって結合した第三核酸及び第四核酸に相当する検出用核酸（塩基配列：５’－ＲｅｄｍｏｎｄＲｅｄ－ＴＣＴ－ＥｃｌｉｐｓｅＱｕｅｎｃｈｅｒ－ＴＣＧＧＣＣＴＴＴＴＧＧＣＣＧＡＧＡＧＡＣＴＣＣＧＣＧＴＣＣＧＴ－３’：配列番号７）と第二開裂構造を形成する。検出用核酸の５’端には蛍光分子（ＲｅｄｍｏｎｄＲＥＤ）が結合されており、検出用核酸の５’末端から３残基目と４残基目の間には、消光分子（Ｅｃｌｉｐｓｅ Ｑｕｅｎｃｈｅｒ）が挿入されており、ＦＥＮタンパク質により第二フラップが切断されると（２段階目のフラップ切断反応）ＲｅｄｍｏｎｄＲＥＤの赤色蛍光が検出されるようになる。

試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）、試験Ｎｏ．４（略称Ｐａｂ）、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）及び試験Ｎｏ．２５（略称Ｐｆｕ）のＦＥＮタンパク質に対して、２段階のフラップ切断反応を評価した。２段階のフラップ切断反応は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、４μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、２０ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．０８６ｍｇ／ｍＬ又は０．１ｍｇ／ｍＬ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１．５ｐＭ、１００ｎＭ又は１μＭ 標的核酸の組成で反応溶液を調製し、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６５℃で６０分間インキュベートすることで行った。

蛍光強度のリアルタイム測定の結果の一例を図３に示す。図３は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用したときの測定結果である。図３（Ａ）は、緑色蛍光（遊離した第一フラップからの蛍光）の測定結果を示すグラフである。図３（Ｂ）は、赤色蛍光（遊離した第二フラップからの蛍光）の測定結果を示すグラフである。

図３に示すとおり、標的核酸の濃度に応じて、緑色蛍光及び赤色蛍光共に増加する傾向が確認できる。なお、標的核酸の濃度が１００ｎＭ及び１μＭの場合は、標的核酸濃度が高いため、蛍光強度が飽和していると考えられる。また、標的核酸の濃度が１．５ｐＭの場合、緑色蛍光と比べて赤色蛍光の方がバックグラウンド（標的核酸の濃度が０Ｍの場合）との差が大きくなっているが、これは、遊離した第一フラップが繰り返し検出用核酸と第二開裂構造を形成することによりシグナル（遊離した第二フラップ）の増幅が生じているためである。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１．５ｐＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表３に示す。

表３に示すとおり、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）、試験Ｎｏ．４（略称Ｐａｂ）及び試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質は、従来使用されていた試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）のＦＥＮタンパク質よりも高いＳ／Ｎ比を示した。一方、試験Ｎｏ．２５（略称Ｐｆｕ）のＦＥＮタンパク質は、従来使用されていた試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）のＦＥＮタンパク質よりもＳ／Ｎ比が低かった。

上記以外のＦＥＮタンパク質及び試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質に対して、以下の条件で２段階のフラップ切断反応を評価した。２段階のフラップ切断反応は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、１．１６μＭ（試験Ｎｏ．１０のみ）又は７．７４μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１．５ｐＭ、３０ｐＭ又は１００ｐＭ 標的核酸の組成で反応溶液を調製し、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６５℃で６０分間インキュベートすることで行った。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１．５ｐＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表４に示す。

試験Ｎｏ．９～試験Ｎｏ．２４及び試験Ｎｏ．２６～試験Ｎｏ．２９のＦＥＮタンパク質には、高いＳ／Ｎ比を示すものはなかった。

〔試験例４：フラップ切断反応の反応条件の検討〕
試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）及び試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用して、試験例３と同様の評価系で、フラップ切断反応の反応条件の検討を行った。

＜ｐＨ＞
反応液組成は、ｐＨをｐＨ７．５、ｐＨ８．０、ｐＨ８．５又はｐＨ９．０に調整した５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌをベースに、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１００ｐＭ又は１ｎＭ 標的核酸を含む組成とした。反応液量は、１０μＬとした。反応溶液を調製した後、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６７℃で６０分間インキュベートしてフラップ切断反応を行った。なお、ｐＨの検討には、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質のみを使用した。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１００ｐＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表５に示す。また、図４に蛍光強度のリアルタイム測定の結果（グラフ）を示す。グラフの縦軸は蛍光強度を示し、横軸は反応開始からの時間（分）を示す、図４（Ａ）～（Ｄ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用してｐＨ７．５、ｐＨ８．０、ｐＨ８．５又はｐＨ９．０で測定した結果を示す。

図４及び表５に示すとおり、反応液のｐＨが７．５以上９．０以下の範囲内で良好なＳ／Ｎ比が認められた。また、ｐＨ８．５付近では、良好なＳ／Ｎ比に加えて、赤色蛍光強度の立ち上がりがより早くなる効果が認められた。赤色蛍光強度の立ち上がりが早いほど、より短時間での検出が可能になる。

＜温度＞
反応液組成は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、３０ｐＭ又は１ｎＭ 標的核酸とした。反応液量は、１０μＬとした。反応溶液を調製した後、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、５５℃、６０℃、６５℃、６７℃又は７０℃で６０分間インキュベートしてフラップ切断反応を行った。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が３０ｐＭ又は１ｎＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表６に示す。また、図５～図８に蛍光強度のリアルタイム測定の結果（グラフ）を示す。グラフの縦軸は蛍光強度を示し、横軸は反応開始からの時間（分）を示す、図５（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用して、標的核酸の濃度３０ｐＭで５５℃、６０℃、６５℃、６７℃又は７０℃で測定した結果を示す。図６（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用して、標的核酸の濃度１ｎＭで５５℃、６０℃、６５℃、６７℃又は７０℃で測定した結果を示す。図７（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）のＦＥＮタンパク質を使用して、標的核酸の濃度３０ｐＭで５５℃、６０℃、６５℃、６７℃又は７０℃で測定した結果を示す。図８（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）のＦＥＮタンパク質を使用して、標的核酸の濃度１ｎＭで５５℃、６０℃、６５℃、６７℃又は７０℃で測定した結果を示す。

図５～８及び表６に示すとおり、反応液の温度が５５℃以上７０℃以下の範囲内で良好なＳ／Ｎ比が認められた。また、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質では、温度が６０℃以上７０℃以下の範囲内では、良好なＳ／Ｎ比に加えて、標的核酸の濃度が低い場合でも、赤色蛍光強度の立ち上がりがより早くなる効果が認められた。同様の効果が、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）のＦＥＮタンパク質では、温度が５５℃以上６５℃以下の範囲内で認められた。

＜Ｍｇ^２＋イオン濃度＞
反応液組成は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、１ｍＭ、２．５ｍＭ、５ｍＭ、１０ｍＭ又は２０ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１００ｐＭ又は１ｎＭ 標的核酸とした。反応液量は、１０μＬとした。反応溶液を調製した後、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６７℃で６０分間インキュベートしてフラップ切断反応を行った。なお、Ｍｇ^２＋イオン濃度の検討には、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質のみを使用した。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１００ｐＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表７に示す。また、図９に蛍光強度のリアルタイム測定の結果（グラフ）を示す。グラフの縦軸は蛍光強度を示し、横軸は反応開始からの時間（分）を示す、図９（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用してＭｇ^２＋濃度１ｍＭ、２．５ｍＭ、５ｍＭ、１０ｍＭ又は２０ｍＭで測定した結果を示す。

図９及び表７に示すとおり、反応液中のＭｇ^２＋濃度が１ｍＭ以上２０ｍＭ以下の範囲内（好ましくは、２．５ｍＭ以上２０ｍＭ以下の範囲内）で良好なＳ／Ｎ比が認められた。また、Ｍｇ^２＋濃度が５ｍＭ以上１０ｍＭ以下の範囲内では、良好なＳ／Ｎ比に加えて、赤色蛍光強度の立ち上がりがより早くなる効果が認められた。

＜Ｋ^＋イオン濃度＞
反応液組成は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、２．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０ｍＭ、２５ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ又は２００ｍＭ ＫＣｌ、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１ｎＭ又は１０ｎＭ 標的核酸とした。反応液量は、１０μＬとした。反応溶液を調製した後、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６７℃で６０分間インキュベートしてフラップ切断反応を行った。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１ｎＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表８に示す。また、図１０～１１に蛍光強度のリアルタイム測定の結果（グラフ）を示す。グラフの縦軸は蛍光強度を示し、横軸は反応開始からの時間（分）を示す、図１０（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用してＫ^＋濃度０ｍＭ、２５ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ又は２００ｍＭで測定した結果を示す。図１１（Ａ）～（Ｅ）は、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）のＦＥＮタンパク質を使用してＫ^＋濃度０ｍＭ、２５ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ又は２００ｍＭで測定した結果を示す。

図１０～１１及び表８に示すとおり、反応液中のＫ^＋濃度が１００ｍＭ以下の範囲内で良好なＳ／Ｎ比が認められた。また、当該範囲内でＳ／Ｎ比及び立ち上がりの早さに大きな差異はないことから、Ｋ^＋は必ずしも必要がない（０ｍＭでよい）ことが分かる。

＜Ｔｒｉｓ（トリスヒドロキシメチルアミノメタン）濃度＞
反応液組成は、１μＭ アレルプローブ（第一核酸）、１μＭ インベーダーオリゴヌクレオチド（第二核酸）、２μＭ 検出用核酸（第三核酸及び第四核酸）、５ｍＭ、２０ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ、２００ｍＭ、３００ｍＭ、４００ｍＭ又は５００ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．５μＭ ＦＥＮタンパク質、０Ｍ、１００ｐＭ又は１ｎＭ 標的核酸とした。反応液量は、１０μＬとした。反応溶液を調製した後、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ４８０（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ製）を使用してリアルタイムで蛍光強度を測定しながら、６７℃で６０分間インキュベートしてフラップ切断反応を行った。

反応開始から３０分後の時点での標的核酸の濃度が１００ｐＭの場合の赤色蛍光強度（シグナル）と標的核酸の濃度が０Ｍの場合の赤色蛍光強度（ノイズ）との比からＳ／Ｎ比を算出した。結果を表９に示す。また、図１２～１３に蛍光強度のリアルタイム測定の結果（グラフ）を示す。グラフの縦軸は蛍光強度を示し、横軸は反応開始からの時間（分）を示す、図１２（Ａ）～（Ｈ）は、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用してＴｒｉｓ濃度５ｍＭ、２０ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ、２００ｍＭ、３００ｍＭ、４００ｍＭ又は５００ｍＭで測定した結果を示す。図１３（Ａ）～（Ｈ）は、試験Ｎｏ．３（略称Ｍｔｈ）のＦＥＮタンパク質を使用してＴｒｉｓ濃度５ｍＭ、２０ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ、２００ｍＭ、３００ｍＭ、４００ｍＭ又は５００ｍＭで測定した結果を示す。

図１２～１３及び表９に示すとおり、反応液中のＴｒｉｓ濃度が３００ｍＭ以下の範囲内（好ましくは、５ｍＭ以上３００ｍＭ以下の範囲内）で良好なＳ／Ｎ比が認められた。また、赤色蛍光強度の立ち上がりも早かった。

〔試験例５：デジタル計測への応用〕
試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）及び試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質を使用して、デジタル計測による標的核酸の検出効率を評価した。

複数のマイクロウェルを有する平板状の透明なシクロオレフィンポリマー（ＣＯＰ）製の基板と、ＣＯＰ製のカバー部材とを貼り合わせ、マイクロ流体デバイスを作製した。カバー部材は、貼り合わされたときにマイクロウェルが形成されている領域を挟むように注入口と排出口を有し、周縁部に盛り上がった５０μｍの段差があるものを用いた。マイクロ流体デバイスの各ウェルは、円筒形に形成した。各ウェルの直径（開口径）は１０μｍ、ウェルの深さは１５μｍに設計した。基板及びカバー部材は、熱可塑性樹脂を用いて射出成形で作製した。段差の端部と基板とを接触させ、接触部分をレーザー溶着した。

試薬１として、１５０ａＭ ターゲットＤＮＡオリゴ（ファスマック社製：標的核酸：５’－ＣＣＧＡＡＧＧＧＣＡＴＧＡＧＣＴＧＣＡＴＧＡＴＧＡＧＣＴＧＣＡＣＧＧＴＧＧＡＧＧＴＧＡＧＧＣＡＧＡＴＧＣＣＣＡＧ－３’：配列番号８）、０．５μＭ アレルプローブ（ファスマック社製：第一核酸：５’－ＡＣＧＧＡＣＧＣＧＧＡＧＴＧＣＡＧＣＴＣＡＴＧＣＣＣ－３’：配列番号９）、１μＭ インベーダーオリゴ（ファスマック社製：第二核酸：５’－ＣＣＡＣＣＧＴＧＣＡＲＣＴＣＡＴＣＡＡ－３’：配列番号１０）、４μＭ ＦＲＥＴ Ｃａｓｓｅｔｔｅ（ＲｅｄｍｏｎｄＲＥＤ－Ｅｃｌｉｐｓｅ Ｑｕａｎｒｕｒｅ）（つくばオリゴサービス社製：第三核酸及び第四核酸：５’－Ｒｅｄｍｏｎｄ Ｒｅｄ－ＴＣＴ－Ｅｃｌｉｐｓｅ Ｑｕｅｎｃｈｅｒ－ＴＣＧＧＣＣＴＴＴＴＧＧＣＣＧＡＧＡＧＡＣＴＣＣＧＣＧＴＣＣＧＴ－３’：配列番号１１）、ＦＥＮタンパク質（略称Ｔｋｏ又は略称Ａｆｕ）、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ（ｐＨ８．５）、２０ｍＭ ＭｇＣｌ_２、０．０５ｖ／ｖ％ Ｔｗｅｅｎ２０を含む水溶液を調製した。また、封止液として、フッ素系オイル（ＦＣ４０、ＳＩＧＭＡ社製）を使用した。

まず、上記で調製した試薬１（２０μＬ）をピペットを用いてマイクロ流体デバイスの注入口に送液して、マイクロウェル及び流路を試薬１で満たした。その後、フッ素系オイル（１５０μＬ）をマイクロ流体デバイスの注入口に送液して、流路内の試薬１を置換し、試薬１をマイクロウェル内に封止した。余剰の試薬１及びフッ素系オイルは、排出口から排出された。

マイクロ流体デバイスをホットプレート上に載せ、ホットプレート温度を６７℃に加熱して、２５分間反応を行った。その後、蛍光顕微鏡（ＢＺ－Ｘ７００、キーエンス社製）でマイクロ流体デバイスの観察を行った。結果を図１４に示す。

事前の予備実験から、投入した標的核酸量（１５０ａＭ）から予想される輝点数は（１ウェル／１３５１３ウェル）であった。図１４に示すとおり、試験Ｎｏ．６（略称Ｔｋｏ）のＦＥＮタンパク質の結果は、予想値とほぼ一致した。一方、試験Ｎｏ．１（略称Ａｆｕ）のＦＥＮタンパク質の結果は、予想値を大幅に上回り、そのうちの大半はぼんやりとした輝度のもの（副反応）であった。

Claims (13)

1. 標的核酸と第一核酸と第二核酸とにより形成される第一開裂構造の第一フラップを切断すること、
   第三核酸と切断された第一フラップと第四核酸とにより形成される第二開裂構造の第二フラップを切断すること、
   切断された第二フラップを検出することで標的核酸の存在を検出することを含み、
   前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、フラップエンドヌクレアーゼで前記第一フラップ及び前記第二フラップを切断することにより行われ、
   前記フラップエンドヌクレアーゼは、サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株、パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株、及びメタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株からなる群より選択される菌のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列との配列同一性が９６％以上であるアミノ酸配列を有し、
   前記サーモコッカス・コダカレンシス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ）ＫＯＤ１株のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列が、配列番号１２で示されるアミノ酸配列であり、
   前記パイロコッカス・アビシ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ ａｂｙｓｓｉ）ＧＥ５株のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列が、配列番号１３で示されるアミノ酸配列であり、
   前記メタノサーモバクター・サームオートトロフィカス（Ｍｅｔｈａｎｏｔｈｅｒｍｏｂａｃｔｅｒ Ｔｈｅｒｍａｕｔｏｔｒｏｐｈｉｃｕｓ）Ｄｅｌｔａ Ｈ株のフラップエンドヌクレアーゼのアミノ酸配列が、配列番号１４で示されるアミノ酸配列であり、
   前記フラップエンドヌクレアーゼは、配列番号１５で示されるアミノ酸配列からなるフラップエンドヌクレアーゼよりも高いＳ／Ｎ比を示すものである、標的核酸の検出方法。
2. 前記標的核酸がＤＮＡである、請求項１に記載の方法。
3. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、ｐＨ７．５以上９．０以下の条件下で行われる、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、温度５５℃以上７０℃以下の条件下で行われる、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
5. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、前記水性溶媒がＭｇ^２＋を含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
6. 前記水性溶媒中のＭｇ^２＋濃度が２．５ｍＭ以上２０ｍＭ以下である、請求項５に記載の方法。
7. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、前記水性溶媒中のＫ^＋濃度が０ｍＭ以上１００ｍＭ以下である、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
8. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、前記水性溶媒中のトリスヒドロキシメチルアミノメタン濃度が０ｍＭ超３００ｍＭ以下である、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
9. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、前記水性溶媒中の前記フラップエンドヌクレアーゼ濃度が０．５μＭ以上８μＭ以下である、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記第一フラップを切断すること、及び前記第二フラップを切断することが、水性溶媒中で行われ、前記水性溶媒の容積が１０ａＬ以上１０μＬ以下である、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
11. 前記第三核酸と前記第四核酸とが、リンカー分子によって結合されている、請求項１～１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 前記切断された第二フラップを蛍光を検出することにより検出する、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
13. 請求項１～１２のいずれか一項に記載の方法に使用するためのキットであって、
    前記第三核酸と、前記第四核酸と、前記フラップエンドヌクレアーゼと、前記標的核酸の塩基配列に応じて第一核酸及び第二核酸の塩基配列を設計する指針を示す説明書と、を含む、キット。

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