JP7087061B2 - Ｃｈｏ細胞内の組込み部位 - Google Patents

Description

本発明は、ＲＮＡおよび／またはタンパク質の高い産生性をもたらすチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞内の異種ポリヌクレオチドのゲノム組込み部位の識別に関する。より具体的には、本発明は、ＣＨＯゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれる少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含むＣＨＯ細胞、および前記ＣＨＯ細胞を産生する方法に関する。さらに本発明は、前記ＣＨＯ細胞を使用して目的のタンパク質を産生する方法、および目的のタンパク質を高収率で産生するための前記ＣＨＯ細胞の使用に関する。これら特定の標的領域内へ異種ポリヌクレオチドをコードして組込むことにより、目的のＲＮＡおよび／またはタンパク質を、高い信頼性と安定性の下でかつ高収率で産生できる。

チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞は、治療用タンパク質の組換え産生のための最も一般的な宿主細胞である。従来からの細胞株の発育手法は、発現ベクターのランダムな組込み（ＲＩ）、それに続いて最適な産生挙動のためにサブクローンを選択しかつ篩い落とすことに依存している。ランダムな組込みでは、予測不可能な染色体部位の影響、コピー数の変動、および安定性の各問題により、生じる細胞集団に大きな不均一性が生じる。高産生細胞は、ランダムに導入された細胞のごく小さな部分のみを占めているだけで、また低産生細胞に成長してしまう傾向がある。従って、持続的なバイオ医薬品用のタンパク質の産生および発酵工程での発育に適する個々のクローンを特定および分離するためには、多数のクローンを篩い落とす必要がある。

異種遺伝子の発現への位置的な影響は、例えば、クロマチン構造、ゲノム刷り込み、または組込み部位の近傍でのゲノムエンハンサー要素、サイレンサー要素、またはプロモーター要素などの転写調節因子の存在に起因する可能性がある（C. Wilson et al. Annu. Rev. Cell Biol. 1990, 6, 679-714）。ゲノム内のこれら要素の多くは、公知ではなく、あるいは特定されてないので、細胞株の発育過程でのゲノム部位の潜在能力を予測することは困難である。

１つ以上の所定のゲノム部位内への従来からのタンパク質発現ベクターのランダムな組込みに代えて、標的を絞った組込み（ＴＩ）を使用することで、これらの欠点を克服できる。すべてのサブクローンが広範な篩い落とし手順の必要性を否定する同一のゲノム構成を備えているので、標的を絞った組込みにより細胞株の発育過程が遥かに予測可能なものになる。

標的を絞った組込みに依存する細胞株の発育過程に対する課題は、しばしば「ホットスポット」と呼ばれる適切なゲノム部位を識別することにある。理想的な部位は、単一または低コピー数から十分な水準のタンパク質の発現を促進し、過度の発現低下を引き起こさずに長期に安定な発現水準を示し、ＭＴＸまたはＭＳＸと組合わせてＤＨＦＲまたはＧＳなどの代謝選択マーカーを使用して増幅でき、かつ導入遺伝子の組込みが細胞増殖またはタンパク質産物の形態に悪影響を及ぼさないように配置されている。

Ｓ１００Ａ６遺伝子は、例えばＳ１００Ａ１、Ｓ１００Ａ１３、Ｓ１００Ａ１４、Ｓ１００Ａ１６、Ｓ１００Ａ３、Ｓ１００Ａ２、Ｓ１００Ａ４、Ｓ１００Ａ５、およびＳ１００Ａ６などの既知のカルシウム結合タンパク質の群をコードするＳ１００Ａ遺伝子クラスターの一部分である。このクラスターは、Ｓ１００Ａ１、Ｓ１００Ａ１３、Ｓ１００Ａ１４、およびＳ１００Ａ１６の各遺伝子を含む「副クラスター」、およびＳ１００Ａ３、Ｓ１００Ａ４、Ｓ１００Ａ５、およびＳ１００Ａ６の各遺伝子を含む「主クラスター」を備える。

本発明では、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内の異種ポリヌクレオチドの安定な組込みが、異種遺伝子産物の産生を増大させることを示している。具体的には、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターに隣接する上流領域および下流領域内への安定な組込みにより、抗体および融合タンパク質などの組換えタンパク質、あるいはｓｈＲＮＡまたはｍｉＲＮＡなどの調節ＲＮＡを含む異種遺伝子産物を、予測通りに高水準で安定的に産生できる。

本発明において、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞が提供され、この細胞はＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれた少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含み、この少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／またはこの少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる。好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する。

より好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する。さらに好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する。

一態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる。少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードしてもよい。このＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡであってもよい。このタンパク質は、治療用タンパク質であってもよく、好ましくは、抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質であってもよい。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドはまた、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子であってもよい。好ましくは、このマーカー遺伝子は、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、この発現カセットは、部位特異的組換え酵素、または部位特異的核酸分解酵素などの配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している。

本発明によるＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ－ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ－Ｋ１細胞、ＣＨＯ－ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ－Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれらのいずれかの細胞の派生物であってもよい。

一態様において、ゲノム標的領域は、上述の配列番号１および／または配列番号２で規定される配列のいずれか１つ、またはそれら配列に少なくとも８０％の配列同一性を有する配列からなる。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスターの一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれてもよい。

別の態様において、本発明はＣＨＯ細胞を産生する方法を提供し、この方法は、（ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および（ｂ）異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含む。この異種ポリヌクレオチドは、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５、１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる。

好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する。より好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する。さらに好ましくは、上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応し、および／または下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する。

一態様において、ゲノム標的領域は、上述の配列番号１および／または配列番号２で規定される配列のいずれか１つ、またはそれらの配列に少なくとも８０％の配列同一性を有する配列からなる。

好ましい態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、この発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素（例えば部位特異的核酸分解酵素）の認識部位に隣接していてもよい。

一態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる。この少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドには、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードしてもよい。このＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡであってもよい。このタンパク質は、治療用タンパク質であってもよく、好ましくは、抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質であってもよい。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドはまた、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子であってもよい。好ましくは、このマーカー遺伝子は、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、発現カセットは、部位特異的組換え酵素、あるいは配列特異的ＤＮＡ編集酵素（例えば、部位特異的核酸分解酵素）の認識部位に隣接している。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスターの一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれてもよい。

一態様において、異種ポリヌクレオチドは、（ａ）配列特異的ＤＮＡ編集酵素、好ましくは部位特異的核酸分解酵素、より好ましくはジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素からなる群より選択される酵素、または（ｂ）部位特異的組換え酵素、好ましくはλインテグラーゼ（部位特異的組換え酵素）、ＰｈｉＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐからなる群より選択される酵素を使用して、ＣＨＯ細胞ゲノム内に導入される。

別の態様において、この方法は、さらに（ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および（ａａ）第１の異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、ここでこの第１の異種ポリヌクレオチドは、マーカー遺伝子であり、かつ部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素（例えば部位特異的核酸分解酵素）の認識部位に隣接する発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、ここで（ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または（ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、この方法はさらに、工程ａａ）の第１の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットの代わりに、第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットを前記ＣＨＯ細胞内に導入することを含む。

さらに別の態様において、本発明は、ＣＨＯ細胞内で目的のタンパク質を産生する方法を提供し。この方法は、（ａ）本発明のＣＨＯ細胞を提供する工程、（ｂ）工程ａ）のＣＨＯ細胞を、目的のタンパク質の産生を可能にする条件で細胞培養培地中で培養する工程、（ｃ）目的のタンパク質を回収する工程、および（ｄ）任意に目的のタンパク質を精製する工程を含む。

本発明による方法に使用されるＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ-ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ-Ｋ１細胞、ＣＨＯ-ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ-Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞のいずれかの派生物であってもよい。
本発明のさらに別の態様において、目的のタンパク質を高収率で産生する本発明のＣＨＯ細胞の使用が提供される。

図１：ＣＨＯ細胞でのＺＦＮを介するランダムな組込み、および標的を絞った組込みの結果（プールデータ）を示し、Ａ）には、３～７日間の流加培養後のランダムな組込み（黒棒）および標的を絞った組込み（白棒）によるCHO-DG44細胞プールからのＩｇＧ１抗体濃度の比較を示し、Ｂ）には、８～１０日間の流加培養後のランダムな組込み（黒棒）および標的を絞った組込み（白棒）によるCHOZN GS細胞プールからのＩｇＧ１抗体濃度を示す。ＴＩ（標的を絞った組込み）プールは、ＦＡＣＳ細胞選別、代謝選択、および２回目のＦＡＣＳを使用して濃縮された。標的を絞った組込みは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で組込むように設計されたジンクフィンガー核酸分解酵素対（ＺＦＮ）１３を使用して、ジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）により媒介された。 図２：Ａ）ＺＦＮを介した標的を絞った組込み、またはＢ）ランダムな組込みの後の抗体産生の均一性に関する独立した単一CHOZN GSクローンの産生性評価を示す。２０～２４個の独立したクローンの結果が示され、この結果は、それぞれの遺伝子導入の手順（それぞれＴＩまたはＲＩ）に従って限界希釈を通して得られた。細胞は、ＴＴＰ管内で６０日間継代された。棒グラフは、継代０日（ｎ＝２）および６０日（ｎ＝２）に続く８日後の流加培養での個々のクローンのＩｇＧ力価からのプールデータをμｇ／ｍＬで表示する。誤差範囲バーは、０～６０日間継代したクローンの安定性を示す。ＺＮＦ１３を使用したＳ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流での標的を絞った組込みにより、単一クローンの培養において、６０日間にわたってより均質なクローンＩｇＧ発現水準、およびより安定な発現が得られた。 図３：ＴＩ後の抗体プール力価に対する組込み部位の影響を示す。Ａ）には、Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内の個々のＺＦＮおよびホットスポット部位の位置を図示している。各数字は、ＮＣＢＩ参照配列：NW_003613854.1.を有するCHOZN GS細胞のモンゴルキヌゲネズミ（チャイニーズハムスター）骨格に基づく境界部を示す。矢印は、ＺＮＦ７～１４の組込み位置を示し、「非破壊的かつ産生的」（黒色）、「非破壊的かつ低／非産生的」（白色）、および「破壊的かつ低／非産生的」（影付き）に分類される。Ｂ）には、Ｘ軸に示すように、異なる部位中への組込みを媒介するＺＮＦ７～１４を使用して得られたＣＨＯプールについて、ＩｇＧ力価がｍｇ／Lで表示される。 図４：CHO-K1 GS細胞での定着パッドを介した標的を絞った組込みを示す。Ａ）には、相同性アーム（配列番号１３および１４）、フリッパーゼ認識標的（ＦＲＴ）部位ＦＲＴおよびＦＲＴ５、およびＩＲＥＳ配列により分離された２個の選択マーカーを含むＺＦＮ部位１３（配列番号１１）の定着パッドの部位特異的組込みのために、ＺＦＮを介してＣＨＯゲノム内に組み込まれたＤＮＡ構築物の概略図を示す。Ｂ）には、標的を絞って組込んだCHOZN GS細胞プールからのＩｇＧ１抗体濃度を示す。 図５：定着パッドを介して標的を絞った組込み後の抗体産生に関して、独立したCHO-K1 GS単一クローンの産生性の評価を示す。１０個の独立した単一クローンのＩｇＧ抗体濃度（黒棒）および細胞プールのＩｇＧ抗体濃度（影付き）が示される。

一般的な態様である「含む」または「含まれる」は、より特定した態様である「からなる」を包含する。さらに単数形および複数形は、限定的には使用されない。本明細書で使用する場合に、単数形のみを指すように明示的に述べられない限り、単数形の各冠詞（a, an）および不定冠詞（the）は単数形および複数形の両方を指す。

本発明で使用される「相同体」または「相同の」という用語は、元の配列またはその相補配列に対し配列が少なくとも８０％同一であるポリペプチド分子または核酸分子を意味する。ポリペプチド分子または核酸分子は、参照配列またはその相補配列に対し配列が少なくとも９０％同一であるのが好ましい。ポリペプチド分子または核酸分子は、参照配列またはその相補配列に対し配列が少なくとも９５％同一であるのがより好ましい。ポリペプチド分子または核酸分子は、参照配列またはその相補配列に対し配列が少なくとも９８％同一であるのが最も好ましい。相同のタンパク質はさらに、元の配列と同一あるいは類似のタンパク質活性を示す。

本明細書で使用する「配列に対応している」または「配列に対応する」という用語は、配列番号１または配列番号２またそれらの天然変異体の規定のヌクレオチド中の配列を有する規定の配列のモンゴルキヌゲネズミのＣＨＯ－Ｋ１を含む。当業者なら、ＣＨＯ細胞株のゲノム配列は変形され、それにより、例えば対立遺伝子が変異した配列番号１および２に示されるように、ＮＣＢＩ参照配列：NW_003613854.1を含むＮＣＢＩのデータベースから得られる配列とは同一ではない可能性があることが分かっている。しかしながら配列の並びを使用して、当業者なら、配列番号１または２で規定される配列、すなわち相同領域に対応する特定のＣＨＯ細胞株の配列を識別する方法は分かっている。この対応する配列は、配列番号１で規定される配列または配列番号２で規定される配列と少なくとも８０％の同一性を有し、好ましくは配列番号１で規定される配列または配列番号２で規定される配列と少なくとも９０％の同一性を有し、あるいは配列番号１または配列番号２と同一である。この対応する配列は、異種ポリヌクレオチドなどの組換え挿入物を含んでもよいが、この挿入物が対応する配列を決定するとは見做すべきではない。

「タンパク質」という用語は、「アミノ酸残基配列」または「ポリペプチド」と互換的に使用され、任意の長さのアミノ酸の高分子を指す。これらの用語はまた、限定はされないが、グリコシル化、アセチル化、リン酸化、糖化、またはタンパク質加工を含む反応によって翻訳後修飾されるタンパク質を含む。分子のその生体機能活性を維持しつつ、例えば、他のタンパク質への融合、アミノ酸配列の置換、欠失、または挿入などの修飾および改変をポリペプチドの構造中で実施できる。例えば、特定のアミノ酸の配列置換は、ポリペプチドまたはその基盤となる核酸コード配列内で実施でき、同一の特性を有するタンパク質を取得できる。「ポリペプチド」という用語は、その長さとして、典型的には１０個を超えるアミノ酸を持つ配列を指し、「ペプチド」という用語は、１０個までのアミノ酸を持つ配列を意味する。ただしこれらの用語は互換的に使用されてもよい。本発明による目的のタンパク質は、治療用タンパク質であることが好ましい。

「目的のタンパク質」という用語は、工業的なタンパク質生産工程において特定の関連性がある任意のタンパク質を広い意味で指している。目的のタンパク質には、限定はされないが、異種の治療用タンパク質、マーカータンパク質、またはタンパク質分泌、翻訳後のタンパク質修飾、翻訳、転写、細胞周期調節、または栄養代謝などの機能を有する宿主細胞のタンパク質が含まれる。

「治療用タンパク質」という用語は、ヒトおよび／または動物の医療に使用できるタンパク質を指す。これらタンパク質として、限定はされないが、抗体、成長因子、血液凝固因子、ワクチン、インターフェロン、ホルモン、融合タンパク質が挙げられる。

「ゲノムＤＮＡ」または「ゲノム」という用語は、互換的に使用され、宿主生物の遺伝可能な遺伝情報を指す。ゲノムＤＮＡは、核のＤＮＡ（染色体ＤＮＡとも呼ぶ）だけでなく、他の細胞小器官（例えばミトコンドリア）のＤＮＡも含む。

本明細書で使用する「遺伝子」という用語は、機能的産物として発現されて、または遺伝子発現を調節して生物の形質に影響を及ぼす遺伝性のゲノム配列のＤＮＡまたはＲＮＡ部位を指す。遺伝子およびポリヌクレオチドには、ゲノム配列中のイントロンおよびエクソン、または開始コドン（メチオニンコドン）および翻訳終止コドンを含むオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）などのｃＤＮＡ中のコード配列のみを含む。遺伝子およびポリヌクレオチドには、転写開始、翻訳、転写終止などのそれらの発現を調節する領域も含まれる。したがって、プロモーターなどの調節要素も含まれる。

本明細書で使用する「核酸」、「ヌクレオチド」、および「ポリヌクレオチド」という用語は、互換的に使用され、５’末端から３’末端で読み取られるデオキシリボヌクレオチド塩基またはリボヌクレオチド塩基の一本鎖または二本鎖の高分子を指し、かつ二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）、一本鎖ＲＮＡ（ｓｓＲＮＡ）、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｃＲＮＡ、組換えＤＮＡ、または組換えＲＮＡ、および修飾骨格を含むそれらの派生物を含む。好ましくは、特にＣＨＯゲノム中に安定的に組込まれるポリヌクレオチドは、ＤＮＡまたはｃＤＮＡである。本発明によるポリヌクレオチドは、種々の方法（例えば、化学合成、遺伝子クローニングなど）により調製することができ、種々な形態（例えば、直鎖または分岐鎖、一本鎖または二本鎖、あるいはそのハイブリッド、プライマー、プローブなど）とすることができる。「ヌクレオチド配列」または「核酸配列」という用語は、個々の一本鎖または二本鎖のいずれかとしての核酸のセンス鎖およびアンチセンス鎖の両方を指す。

本明細書で使用する「異種ポリヌクレオチド」という用語は、受容者すなわちＣＨＯ細胞とは異なる生物または異なる種に由来するポリヌクレオチドを指す。本発明の文脈において、当業者なら、そのポリヌクレオチドはＤＮＡまたはｃＤＮＡを指すことが分かっている。異種ポリヌクレオチドは、導入遺伝子と呼ばれることもある。従って、そのポリヌクレオチドは、異種タンパク質をコードする遺伝子またはオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）であってもよい。ＣＨＯ細胞の文脈において、「異種ポリヌクレオチド」とは、異なる細胞株、好ましくはモンゴルキヌゲネズミに由来しない細胞株に由来するポリヌクレオチドを指す。核酸の部分に対して使用される際の「異種の」という用語はまた、核酸が本来互いに同一の関係にない２つ以上の配列を含んでもよいことを示している。従って、異種とは、通常はそれが存在しない位置でＣＨＯゲノム内に挿入されている遺伝子または導入遺伝子、あるいはその一部分などのＣＨＯ由来のポリヌクレオチド配列を指すことがあり、あるいは通常はそれが存在しない生物の細胞内に導入された遺伝子を指すこともある。

「異種ポリヌクレオチド」、「異種遺伝子」、あるいは「異種配列」は、直接に、または好ましくは「発現ベクター」を使用して、好ましくは哺乳動物発現ベクターを使用して、標的細胞内に導入できる。これらベクターを構築するのに使用される方法は、当業者に周知であり、様々な刊行物に記載されている。特に、プロモーター、エンハンサー、終止シグナルおよびポリアデニル化シグナル、選択マーカー、複製の起点、および継合シグナルなどの機能的構成要素の説明を含む適切なベクターを構築する技術は、（Sambrook J, et al., 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor: Cold Spring Harbor Laboratory Press）およびそれを引用した文献中に、かなり詳細に吟味されている。ベクターとしては、限定はされないが、プラスミドベクター、ファージミド、コスミド、人工／ミニ染色体（ＡＣＥなど）、またはバキュロウイルス、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、単純ヘルペスウイルス、レトロウイルス、およびバクテリオファージなどのウイルスベクターが挙げられる。真核生物発現ベクターとして、典型的には、細菌の選択のための複製起点および抗生物質耐性遺伝子などの細菌におけるベクターの増殖を促進する原核生物配列もまた挙げられる。ポリヌクレオチドを作動可能に連結できるクローニング部位を含む種々の真核生物発現ベクターは、当技術分野で周知であり、Stratagene社（La Jolla, CA）、Invitrogen社（Carlsbad, CA）、Promega社（Madison, WI）、あるいはBD Biosciences Clonetech社（Palo Alto, CA）などの企業から市販されているものもある。通常、発現ベクターはまた、前記発現マーカーを保持する宿主細胞の選択を可能にする選択マーカーをコードする発現カセットを含む。

本明細書で使用する「産生すること」または「高度に産生すること」、「産生」、「産生および／または分泌」、「産生細胞」または「高収率で産生すること」という用語は、異種ポリヌクレオチドによってコードされるＲＮＡおよび／またはタンパク質の産生に関連する。「産生および／または分泌の増大」または「高収率での産生」は、異種ＲＮＡおよび／またはタンパク質の発現に関連し、細胞培養の特定部での産生性の増大、力価の増大、全体的な産生性の増大、またはそれらの組合わせを意味し、好ましくは、力価または全体的な産生性が増大することを意味する。本明細書で使用する力価の増大は、同一体積での濃度の増大、すなわち総収量の増大に関連する。産生された異種ＲＮＡ、異種タンパク質、または治療用タンパク質は、例えば、低分子調節ＲＮＡあるいは抗体、好ましくはマイクロＲＮＡ、低分子ヘアピン型ＲＮＡ、モノクローナル抗体、二重特異性抗体、またはそれらの断片、または融合タンパク質であってもよい。

本明細書で使用する「増強」、「増強された」、「増強する」、「増大する」または「増大された」という用語は、一般に対照細胞と比較して、少なくとも約１０％の増大、例えば少なくとも約２０％、または少なくとも約３０％、または少なくとも約４０％、または少なくとも約５０％、または少なくとも約７５％、または少なくとも約８０％、または少なくとも約９０％、または少なくとも約１００％、または少なくとも約２００％、または少なくとも約３００％の増大を意味し、または対照細胞と比較して１０～３００％の間での任意の整数値を意味する。本明細書で使用する「対照細胞」または「対照哺乳動物細胞」は、同一の異種ポリヌクレオチドがランダムに導入された同一のＣＨＯ細胞である。この細胞は、クローンの選択をせずに、細胞クローン内でまたは好ましくは細胞プール内で決定されてもよい。

本明細書で使用する「発現カセット」という用語は、ＲＮＡ（異種ＲＮＡ）またはタンパク質（異種タンパク質）をコードする１つ以上の遺伝子、およびそれらの発現を制御する配列を含むベクターの一部分を指す。従って、そのベクターは、プロモーター配列、オープンリーディングフレーム、および典型的にはポリアデニル化部位を含む３’非翻訳領域を含む。このベクターは、組換え分泌治療用タンパク質をコードする１つ以上の遺伝子を含む発現ベクターであることが好ましい。このベクターは、ベクター中の一部分であってもよく、典型的にはプラスミドまたはウイルスベクターを含む発現ベクターであってもよい。またこのベクターは、相同性の組換えなどのランダムな組込みまたは標的を絞った組込みにより、染色体中に組込んでもよい。発現カセットは、クローニング技術を用いて調製されるので、自然発生の遺伝子構造を指すものではない。

「プロモーター」または「プロモーター配列」は、細胞内のＲＮＡポリメラーゼを結合し、かつ下流（３’方向）のコード配列の転写を開始できるＤＮＡ調節領域である。このプロモーター配列は、転写開始部位によってその３’末端で結合され、最大１．５ｋｂまでを含む上流（５’方向）にまで伸長する。プロモーターの長さは、通常、約１００～１０００塩基対である。プロモーター配列は、転写開始部位、およびＲＮＡポリメラーゼの結合に関与するタンパク質結合ドメイン（共通配列）を含む。真核生物プロモーターは、常にではないが多くの場合に、「ＴＡＴＡ」ボックスおよび「ＣＡＴ」ボックスを含む。プロモーター配列は、多くの場合に、それぞれの遺伝子の発現の調節に関与するタンパク質によって認識される付加的な共通配列を含む。プロモーターによる遺伝子発現の調節は、調節タンパク質の結合を増強または阻害することで実施できる。調節タンパク質の結合の増強または阻害は、限定はされないが、塩基修飾（すなわちメチル化）およびタンパク質修飾（すなわちリン酸化）を含む多くの種々の手段によって実施できる。

「上流」および「下流」という用語は、ＤＮＡまたはＲＮＡ中での相対的な位置を指している。ＤＮＡまたはＲＮＡのそれぞれの鎖は、デオキシリボース単位またはリボース単位の末端の炭素位置に関連する５’末端および３’末端を保持する。慣例により、「上流」とはポリヌクレオチドの５’末端への方向を意味し、「下流」とはポリヌクレオチドの３’末端への方向を意味する。二本鎖ＤＮＡ、例えばゲノムＤＮＡの場合には、「上流」という用語は、コード鎖の５’末端への方向を意味し、「下流」はコード鎖の３’末端への方向を意味する。

「コード鎖」、「センス鎖」または「非鋳型鎖」という用語は、その塩基配列が遺伝子から転写されるＲＮＡの塩基配列に対応する二本鎖ＤＮＡの鎖を指す。

「低分子調節ＲＮＡ」という用語は、通常はそれぞれのｍＲＮＡへの結合によって標的遺伝子の発現に影響を及ぼす低分子非コードＲＮＡポリヌクレオチドを指す。これら低分子調節ＲＮＡとしては、限定はされないが、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、および低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）が挙げられる。

本明細書で使用する「リボ核酸」、「ＲＮＡ」、または「ＲＮＡオリゴヌクレオチド」という用語は、核酸塩基、リボース糖、およびリン酸基から構成されるヌクレオチド配列からなる分子を指す。ＲＮＡは通常一本鎖分子であり、種々の機能を発揮できる。「リボ核酸」という用語は、具体的には、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、トランスファーＲＮＡ（ｔＲＮＡ）、リボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、およびマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）を含み、それぞれのＲＮＡは、生体細胞内で特定の役割を果たす。「リボ核酸」という用語は、マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、およびＰｉｗｉ相互作用ＲＮＡ（ｐｉＲＮＡ）などの低分子非コードＲＮＡを含む。「非コード」という用語は、ＲＮＡ分子がアミノ酸配列中に翻訳されていないことを意味する。

「ＲＮＡ干渉」（ＲＮＡｉ）という用語は、タンパク質合成の一般的な阻害を伴わない遺伝子発現（タンパク質合成）の配列特異的阻害または遺伝子特異的阻害を指す。ＲＮＡｉは、ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）によるメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）の分解を伴って、転写されたｍＲＮＡの翻訳を抑制する場合がある。ＲＮＡｉに起因する遺伝子発現の阻害は、一過性であってもよく、あるいはより安定的でさらに永久的であってもよい。ＲＮＡｉは、ｍｉＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡによって媒介されてもよい。本発明によるＲＮＡｉは、遺伝子特異的である（１つの遺伝子のみが標的となる）のが好ましい。遺伝子特異的ＲＮＡｉは、ｓｉＲＮＡまたはｓｈＲＮＡによって媒介されてもよい。

「マイクロＲＮＡ」または「ｍｉＲＮＡ」という用語は、本明細書では互換的に使用される。マイクロＲＮＡは低分子であり、その長さは約２２ヌクレオチド（通常の長さは１９～２５ヌクレオチド）の非コード一本鎖ＲＮＡである。ｍｉＲＮＡは、典型的には複数の遺伝子を標的とする。マイクロＲＮＡは、真核細胞のゲノム中にコードされ、典型的には、まず７０ｎｔ長までのヘアピンループ構造へ、続いて２２ｎｔ長までのＲＮＡ二本鎖へのいくつかの工程により加工される長い一次転写物として、ＲＮＡポリメラーゼIII によって転写される。次に、活性な熟成鎖をＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）内に導入して、標的タンパク質の翻訳またはそれぞれのｍＲＮＡの分解を阻害する。ｍｉＲＮＡは不適正な塩基対を標的化でき、ｍＲＮＡの翻訳抑制は、不完全な相補性（すなわち、低分子干渉ＲＮＡのＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖と標的ｍＲＮＡとの間の不完全な塩基対形成）によって媒介され、ｓｉＲＮＡおよびｓｈＲＮＡは、完全な配列相補性（すなわち、低分子干渉ＲＮＡのＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖と標的ｍＲＮＡとの間の完全な塩基対形成）によってそれら標的に対し特異的となる。ｍｉＲＮＡは、典型的には、３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）内で結合して遺伝子特異的にはならないが、複数のｍＲＮＡを標的とする。本明細書で使用する「マイクロＲＮＡ」という用語は、ヒトｍｉＲＮＡなどの内因性ゲノム哺乳動物ｍｉＲＮＡに関連する。接頭語の「ｈｓａ」は、例えば、ヒト由来のマイクロＲＮＡを示す。それらｍｉＲＮＡは、哺乳動物宿主細胞中のｍｉＲＮＡの一過性の発現または安定的な発現のためのゲノムマイクロＲＮＡ配列を含む発現ベクターを使用して、哺乳動物宿主細胞内に導入されてもよい。ゲノムマイクロＲＮＡを発現ベクター内にクローニングする手段は、当技術分野で公知である。それら手段には、約３００ｂｐの隣接領域を有するゲノムｍｉＲＮＡ配列を、プロモーターに作動可能に連結されたｐＢＩＰ－１などの哺乳動物発現ベクター内にクローニングすることを含む。あるいは、遺伝子操作された予備ｍｉＲＮＡ配列（すなわち短分子のヘアピン）をコードするポリヌクレオチドとして、１つ以上のマイクロＲＮＡを哺乳動物発現ベクターにクローニングしてもよい。例えば、熟成ｍｉＲＮＡ配列を、マウスｍｉＲＮＡであるｍｉｒ－１５５に由来する最適化されたヘアピンループ配列ならびに３’および５’隣接領域をコードする所定の配列内にクローニングしてもよい（Lagos-Quintana et al., 2002. Curr. Biol. 30;12(9):735-9）。ｍｉＲＮＡ配列、上述のループ、およびヘアピンステム中に内部ループを生成するように２ヌクレオチドの欠失を有するそれぞれの熟成ｍｉＲＮＡのアンチセンス配列をコードするＤＮＡオリゴヌクレオチドを設計する。さらに両端にクローニング用の突出部を付加して、３’隣接領域および５’隣接領域にＤＮＡオリゴヌクレオチドを融合する。本明細書で使用するｍｉＲＮＡは、さらに非正規のｍｉＲＮＡを含む。これらのＲＮＡは、リボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）またはトランスファーＲＮＡ（ｔＲＮＡ）を含む「ハウスキーピング」非コードＲＮＡ（ｎｃＲＮＡ）に由来し、ｍｉＲＮＡと類似して機能する。これらのＲＮＡはまた、哺乳動物のミトコンドリアｎｃＲＮＡに由来してもよく、かつミトコンドリアゲノムコード低分子ＲＮＡ（マイトｓＲＮＡ）と名付けられる。

本明細書で使用する「低分子干渉」または「低分子干渉ＲＮＡ」または「ｓｉＲＮＡ」という用語は、所望の遺伝子を標的とし、かつ相同性を共有する遺伝子の発現を阻害することが可能なヌクレオチドのＲＮＡ二本鎖を指す。このＲＮＡは、高分子の二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）またはｓｈＲＮＡから形成される。ＲＮＡ二本鎖は通常、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、または２７の塩基対を形成しかつ２つのヌクレオチドの３’突出部を有する１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、または２９ヌクレオチドの２本の相補的な一本鎖ＲＮＡを含み、好ましくは、ＲＮＡ二本鎖は、１７～２５の塩基対を形成しかつ２つのヌクレオチドの３’突出部を有する１９～２７ヌクレオチドの２本の相補的な一本鎖ＲＮＡを含む。ｓｉＲＮＡは遺伝子に「標的化」され、ｓｉＲＮＡの二本鎖部分のヌクレオチド配列は、標的化した遺伝子のｍＲＮＡのヌクレオチド配列に相補的である。ｓｉＲＮＡまたはその前駆体は常に、例えば直接的にまたは前記ｓｉＲＮＡをコードする配列を有するベクターの導入により細胞内に外因的に導入され、内因性のｍｉＲＮＡ経路は、ｓｉＲＮＡの正規の加工および標的ｍＲＮＡの切断または分解のために活用される。二本鎖ＲＮＡは、単一の構築物からの細胞内で発現できる。

本明細書で使用する「ｓｈＲＮＡ」（低分子ヘアピン型ＲＮＡ）という用語は、ｓｉＲＮＡの一部分がヘアピン構造（ｓｈＲＮＡ）の一部分であるＲＮＡ二本鎖を指す。ｓｈＲＮＡは細胞内で処理されて機能的なｓｉＲＮＡにできる。二本鎖部分に加えて、ヘアピン構造は、二本鎖を形成する２つの配列の間に位置するループ部分を含んでもよい。このループの長さは種々に変更できる。いくつかの態様において、ループの長さは４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、または１４ヌクレオチドである。ヘアピン構造はまた、３’または５’突出部分も含んでもよい。いくつかの態様において、突出部は、長さが０、１、２、３、４、または５ヌクレオチドの３’または５’突出部である。本発明の一態様において、ベクターに含まれるヌクレオチド配列は、センス領域、ループ領域、およびアンチセンス領域を含む低分子ヘアピン型ＲＮＡの発現のための鋳型として機能する。発現した後に、センス領域およびアンチセンス領域は二本鎖を形成する。ｓｈＲＮＡは、例えば、前記ｓｈＲＮＡをコードする配列を持つベクターの導入によって常に外因的に導入され、内因性のｍｉＲＮＡ経路は、ｓｉＲＮＡの正確な加工および標的ｍＲＮＡの切断または分解のために活用される。ｓｈＲＮＡをコードする配列を有するベクターの使用は、標的遺伝子の阻害が典型的には長期的かつ安定的であるので、化学的に合成されたｓｉＲＮＡの使用よりも有効である。

典型的に、ｓｉＲＮＡおよびｓｈＲＮＡは、完璧な配列相補性（すなわち、低分子干渉ＲＮＡのＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖と標的ｍＲＮＡとの間の完全な塩基対形成）によってｍＲＮＡの抑制を促すので、それらｓｉＲＮＡおよびｓｈＲＮＡは、標的特異的になる。ＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖は、ＲＮＡ二本鎖の活性鎖とも呼ばれる。本明細書で使用する完全な塩基対の完璧な配列相補性とは、低分子干渉ＲＮＡ中のＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖が、少なくとも１５連続ヌクレオチド、少なくとも１６連続ヌクレオチド、少なくとも１７連続ヌクレオチド、少なくとも１８連続ヌクレオチド、および好ましくは少なくとも１９連続ヌクレオチドにおいて標的ｍＲＮＡと少なくとも８９％の配列同一性を有し、あるいは、好ましくは、少なくとも１５連続ヌクレオチド、少なくとも１６連続ヌクレオチド、少なくとも１７連続ヌクレオチド、少なくとも少なくとも１８連続ヌクレオチド、および好ましくは少なくとも１９連続ヌクレオチドにおいて標的ｍＲＮＡと少なくとも９３％の配列同一性を有することを意味する。より好ましくは、低分子干渉ＲＮＡ中のＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖は、少なくとも１５連続ヌクレオチド、少なくとも１６連続ヌクレオチド、少なくとも１７連続ヌクレオチド、少なくとも１８連続ヌクレオチド、および好ましくは少なくとも１９連続ヌクレオチドにおいて標的ｍＲＮＡと少なくとも１００％の配列同一性を有する。

「ベクター」は、異種ポリヌクレオチドを細胞中に導入するように使用できる核酸である。ベクターの１つの型は「プラスミド」であり、このプラスミドは、付加した核酸断片を連結できる線形状または環状の二本鎖ＤＮＡ分子を指す。別の型のベクターは、ウイルスベクター（例えば、複製欠失レトロウイルス、アデノウイルス、およびアデノ随伴ウイルス）であり、付加したＤＮＡまたはＲＮＡ断片をウイルスゲノム中に導入できる。好ましくは、このベクターは、宿主細胞中への導入および所定圧力の下での培養時に宿主細胞のゲノム内に組込まれる非エピソーム哺乳動物ベクターであり、それにより宿主ゲノムとともに複製される。このベクターは、細胞内での所定のポリヌクレオチドの発現を導くように使用できる。

「コードする」という用語は、広い意味で、高分子重合体中の情報を使用して、第１の分子とは異なる第２の分子の生成を実施する任意の工程を指す。この第２分子は、第１分子の化学的性質とは異なる化学構造を有してもよい。例えばいくつかの態様において、「コードする」という用語は、半保存的ＤＮＡ複製の工程を指していて、この工程では、二本鎖ＤＮＡ分子中の１本の鎖を鋳型として使用して、ＤＮＡ依存のＤＮＡポリメラーゼによって新規に合成した相補的な姉妹鎖にコードする。他の態様において、ＤＮＡ分子はＲＮＡ分子を（例えば、ＤＮＡ依存のＲＮＡポリメラーゼ酵素を使用する転写工程によって）コードできる。また翻訳工程のように、ＲＮＡ分子はポリペプチドをコードできる。翻訳工程の説明に使用する際に、「コードする」という用語はまた、アミノ酸をコードする三重コドンにまで広げられる。いくつかの態様において、ＲＮＡ分子は、例えばＲＮＡ依存のＤＮＡポリメラーゼを組込む逆転写工程によってＤＮＡ分子をコードできる。別の態様において、ＤＮＡ分子はポリペプチドをコードでき、その場合には、使用される「コードする」という用語は転写および翻訳の両工程を含むことが分かる。

本明細書で使用する「遺伝子クラスター」という用語は、関連または類似のタンパク質の群をコードし、かつ通常同一の染色体上で共に群となる密接に関連する遺伝子の組またはファミリーを包含するゲノムＤＮＡの断片を指す。遺伝子クラスターはゲノムＤＮＡの断片を含み、このクラスターではタンパク質の群のすべてのコード配列が配置され、かつコード配列の前の領域（リーダー）および後の領域（トレーラー）、ならびに個々のコード配列断片（エクソン）の間の介在配列（イントロン）、さらに最も広い意味での遺伝因子を含み、この遺伝因子としては、限定はされないが、転写調節因子、プロモーター因子、エンハンサー因子、およびリプレッサー因子が挙げられる。一般に遺伝子クラスターは、遺伝子クラスターの最初（５’）のタンパク質コード遺伝子から遺伝子クラスターの最後（３’）のタンパク質コード遺伝子までを範囲とするゲノム断片の全体を含む。

「Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター」は、カルシウム結合タンパク質Ｓ１００Ａ１、Ｓ１００Ａ３、Ｓ１００Ａ４、Ｓ１００Ａ５、Ｓ１００Ａ６、Ｓ１００Ａ１３、Ｓ１００Ａ１４、およびＳ１００Ａ１６の群をコードするチャイニーズハムスターゲノムＤＮＡの断片を指す。この断片は、Ｓ１００Ａ１タンパク質をコードする最も上流の遺伝子、およびＳ１００Ａ６タンパク質をコードする最も下流の遺伝子を含む。「Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスター」という用語は、Ｓ１００Ａ遺伝子クラスターに含まれ、かつＳ１００Ａ３タンパク質をコードする遺伝子からＳ１００Ａ６タンパク質（配列番号４）をコードする遺伝子まで到達するゲノムＤＮＡの断片を指す。「Ｓ１００Ａ１」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ１、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ１遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100769478）を指す。「Ｓ１００Ａ３」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ３、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ３遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100770814）を指す。「Ｓ１００Ａ４」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ４、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ４遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100770532）を指す。「Ｓ１００Ａ５」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ５、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ５遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100771097）を指す。「Ｓ１００Ａ６」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ６、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ６遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100771384）を指す。「Ｓ１００Ａ１３」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ１３、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ１３遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100769763）を指す。「Ｓ１００Ａ１４」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ１４、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ１４遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100770053）を指す。「Ｓ１００Ａ１６」とは、モンゴルキヌゲネズミからのタンパク質Ｓ１００Ａ１６、およびそれをコードする遺伝子（Ｓ１００Ａ１６遺伝子、ＮＣＢＩ遺伝子ID:100753026）を指す。

「対立遺伝子」という用語は、遺伝子、遺伝子標的領域、または一般に単一の部位すなわち染色体位置でのＤＮＡ配列とは異なる形態のうちのいずれかの形態を指す。これには、コード配列、非コード配列、および調節配列が含まれる。ゲノム内の種々の対立遺伝子は、ヌクレオチド配列は必ずしも同一ではない。

「抗体」という用語は、免疫グロブリン遺伝子によって実質的にコードされる１つ以上のポリペプチドからなるタンパク質を指す。分かっている免疫グロブリン遺伝子として、κ、λ、α、γ、δ、ε、およびμの各定常領域遺伝子、ならびに無数の免疫グロブリン可変領域遺伝子が挙げられる。「抗体」および「免疫グロブリン」という用語は互換的に使用され、限定はされないが、免疫グロブリンについて上述した構造的特徴を有する糖タンパク質を示すのに使用される。

「抗体」という用語は、本明細書ではその最も広い意味で使用され、（全長モノクローナル抗体を含む）モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、多重特異性抗体（例えば二重特異性抗体）、単一ドメイン抗体、および抗体断片（Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）２、または抗体の他の抗原結合部分配列など）を含む。この「抗体」という用語は、抗体複合体および融合抗体も含む。全長「抗体」または「免疫グロブリン」は一般に、２つの同一の軽鎖および２つの同一の重鎖からなる約１５０ｋＤａのヘテロ四量体の糖タンパク質である。それぞれの軽鎖は、１つの共有ジスルフィド結合によって重鎖に結合され、このジスルフィド結合の数は、種々の免疫グロブリンのアイソタイプの重鎖間で異なっている。それぞれの重鎖および軽鎖はさらに、一定の間隔で鎖内にジスルフィド架橋を持つ。それぞれの重鎖は、アミノ末端可変ドメイン（ＶＨ）に続いて３つのカルボキシ末端定常ドメイン（ＣＨ）を持つ。それぞれの軽鎖は、可変Ｎ末端ドメイン（ＶＬ）および単一のＣ末端定常ドメイン（ＣＬ）を持つ。「抗体」という用語はさらに、同一の特異性（可変ドメイン）および同一の定常ドメインを有する複数の個々の抗体を含む抗体の型を指している。

「融合タンパク質」は、完璧な配列または２つ以上の本来は分離した天然のまたは修飾した異種タンパク質の任意の配列部分、あるいは完璧な配列または２つ以上の本来は分離した天然のまたは修飾した異種タンパク質の任意の配列部分の組成を含むタンパク質として定義される。この融合タンパク質は、２つ以上の本来は別個で天然のまたは異種のタンパク質またはその部分を元々コードしている２つ以上の遺伝子またはその部分を融合する遺伝子工学的手法によって構築できる。これにより、本来の各タンパク質に由来する機能性を備えた融合タンパク質が得られる。この融合タンパク質には、限定はされないが、Ｆｃ融合タンパク質が含まれる。

「サイトカイン」という用語は、細胞が放出し、例えば分泌細胞の周りの細胞の挙動に影響を与える細胞間での媒介物質として作用する低分子タンパク質を指す。このサイトカインは、Ｔ細胞、Ｂ細胞、ＮＫ細胞、マクロファージなどの免疫細胞またはその他の細胞から分泌される場合がある。サイトカインは、自己分泌シグナル伝達、傍分泌シグナル伝達、および内分泌シグナル伝達などの細胞間シグナル伝達現象に関与する可能性がある。それらは、限定はされないが、免疫、炎症、および造血を含む一連の生体過程を媒介する可能性がある。サイトカインは、ケモカイン、インターフェロン、インターロイキン、リンホカイン、または腫瘍壊死因子であってもよい。

本明細書で使用する「成長因子」は、細胞成長を刺激することが可能なタンパク質またはポリペプチドを指す。それら成長因子として、限定はされないが、インスリン、上皮成長因子（ＥＧＦ）、エフリン（Ｅｐｈ）、エリスロポエチン、グリア細胞刺激因子（ＧＳＦ）；マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ－ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）、および顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ－ＣＳＦ）を含むコロニー刺激因子（ＣＳＦ）；幹細胞増殖因子（ＳＣＧＦ）（スチール因子とも呼ぶ）；間質細胞由来因子（ＳＤＦ）、その有効な断片、およびその組合せ；および血管内皮成長因子（ＶＥＧＦ）が挙げられる。他の成長因子として、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、アンジオポエチン－１、アンジオポエチン－２、ｂ－ＦＧＦ、およびＦＬＴ－３リガンド、およびそれらの有効な断片を挙げることができる。

本明細書で使用する「発現」という用語は、宿主細胞内の異種核酸配列の転写および／または翻訳を指す。宿主細胞中での目的の遺伝子産物の発現水準は、細胞内に存在する対応するＲＮＡの量、または選択配列によりコードされるポリペプチドの量のいずれかに基づいて決定できる。例えば、選択配列から転写されたＲＮＡは、細胞ＲＮＡへのノーザンブロットハイブリダイゼーション法、リボ核酸分解酵素ＲＮＡ保護法、およびその場ハイブリダイゼーション法によって、またはｑＰＣＲなどのＰＣＲ法によって定量できる。選択配列によってコードされたタンパク質は、例えばＥＬＩＳＡ法、ウエスタンブロット法、放射免疫測定法、免疫沈降法、タンパク質の生体活性測定法、タンパク質の免疫染色それに続くＦＡＣＳ分析法、または均質な時間分解蛍光（ＨＴＲＦ）測定法などの種々の方法により定量できる。ｍｉＲＮＡまたはｓｈＲＮＡなどの非コードＲＮＡの発現水準は、ｑＰＣＲなどのＰＣＲ法で定量してもよい。

「遺伝子産物」という用語は、遺伝子またはＤＮＡポリヌクレオチドによってコードされるＲＮＡポリヌクレオチドおよびポリペプチドの両方を指す。

本明細書で使用する「マーカー遺伝子」は、細胞内での発現により、選択可能または識別可能な表現型（例えば、抗生物質耐性、蛍光タンパク質またはレポーター遺伝子の発現、修飾された代謝など）を細胞に付与するポリヌクレオチドを意味する。

本明細書で使用する「レポーター遺伝子」は、宿主細胞による発現を検出および定量できるタンパク質をコードするポリヌクレオチドである。従って、レポーターの発現水準の測定により、典型的には、宿主細胞ゲノム内のレポーターをコードする遺伝子（レポーター遺伝子）の発現を促すプロモーター要素の活性水準が示される。例えば、レポーター遺伝子は、アルカリ脱リン酸化酵素（ＡＰ）、クロラムフェニコールアセチル転移酵素（ＣＡＴ）、ウミシイタケ発光酵素、またはホタル発光酵素の各タンパク質など、例えば活性度を定量できる酵素であるタンパク質をコードできる。レポーターとしてはまた、蛍光タンパク質を含み、例えば緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）または増強したＧＦＰを含むいずれかの組換え変異体（ＥＧＦＰ）、青色蛍光タンパク質（ＢＦＰおよびその他の派生物）、シアン蛍光タンパク質（ＣＦＰおよびその他の派生物）、黄色蛍光タンパク質（ＹＦＰおよびその他の派生物）、および赤色蛍光タンパク質（ＲＦＰおよびその他の派生物）が挙げられる。

「選択可能マーカー遺伝子」または「選択マーカー遺伝子」は、選択マーカーをコードし、かつ典型的には対応する「選択剤」を培養培地に添加してこの遺伝子を含む細胞の特定の選択を可能にする遺伝子である。一例として、抗生物質耐性遺伝子を陽性選択マーカーとして使用してもよい。この遺伝子により形質転換された細胞のみが、対応する抗生物質の存在下で成長でき、それにより選択される。他方では、形質転換されていない細胞は、これらの選択条件下では成長または生存できない。陽性、陰性、および両機能を持つ選択マーカーがあり、陽性選択マーカーは、選択剤に対する耐性を付与して、または宿主細胞中の代謝欠損または異化欠損を補って、形質転換細胞の選択かつそれによる濃縮を可能にする。逆に、選択マーカーの遺伝子を受容した細胞は、陰性選択マーカーによって選択的に排除できる。この例としては、単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ遺伝子が挙げられ、アシクロビルまたはガンシクロビルの同時添加による細胞内でのその遺伝子の発現により、その排除が可能になる。本発明で有用な選択マーカー遺伝子には、増幅可能な選択可能マーカーも含まれる。文献には、両機能性（陽性／陰性）マーカーを含む多数の選択マーカー遺伝子が記載されている（例えば、WO92/08796およびWO94/28143を参照）。本発明で有用な選択マーカーの例としては、限定はされないが、アミノグリコシドリン酸転移酵素（ＡＰＨ）、ヒグロマイシンリン酸転移酵素（ＨＹＧ）、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）、チミジンキナーゼ（ＴＫ）、グルタミン合成酵素、アスパラギン合成酵素の各遺伝子、およびネオマイシン（Ｇ４１８／ジェネチシン）、ピューロマイシン、ヒスチジノールＤ、ブレオマイシン、フレオマイシン、ブラストサイジン、およびゼオシンに対し耐性を付与する各遺伝子が挙げられる。また、選択マーカーがその選択性能を保持しているなら、他のタンパク質またはペプチドにより遺伝子改変された変異体および異性体、断片、機能的等価物、派生物、相同体、および融合体も含まれる。これら派生物には、選択可能と見做される領域またはドメインに相当なアミノ酸配列の相同性がある。

この選択では、例えば細胞表面マーカー、細菌β－ガラクトシダーゼ、または蛍光タンパク質を使用して蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）法を実施し、組換え細胞を選択してもよい。なお蛍光タンパク質は、例えば、オワンクラゲおよびウミシイタケまたはその他の種からの緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）およびそれらの変異体、ならびに非生物発光種（例えば、ディスコソマ種、アネモニア種、クラブラリア種、およびゾアンサス種）からの赤色蛍光タンパク質、蛍光タンパク質、およびそれらの変異体である。

「選択剤」または「選択可能剤」という用語は、選択剤の効果を低減する特定の選択マーカー遺伝子産物が細胞内に存在しない場合に、細胞の成長または生存を妨げる物質を指す。例えば、導入された細胞内のアミノグリコシドリン酸転移酵素（ＡＰＨ）のような抗生物質耐性遺伝子の存在を選択するために、抗生物質であるジェネテシン（Ｇ４１８）が使用される。

「増幅可能な選択マーカー遺伝子」は通常、特定の培養条件下で真核細胞の成長に必要な酵素をコードする。例えば、この増幅可能な選択マーカー遺伝子には、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）またはグルタミン合成酵素（ＧＳ）をコードしてもよい。この場合には、選択剤であるメトトレキサート（ＭＴＸ）またはメチオニンスルホキシミン（ＭＳＸ）の存在下で、それら導入された宿主細胞がそれぞれ培養されるなら、マーカー遺伝子は増幅される。増幅可能な選択マーカー遺伝子に結合された配列（すなわち物理的にそれに近接する配列）は、増幅可能な選択マーカー遺伝子と共に増幅される。前記共に増幅される配列は、同じ発現ベクターまたは別個のベクターに導入されてもよい。

以下の表１に、本発明に従って使用できる増幅可能な選択マーカー遺伝子およびそれに関連する選択剤の非限定的な例を示す。適切な増幅可能な選択マーカー遺伝子は、カウフマンによる概説にも記載されている（Kaufman RJ, 1990. Methods Enzymol. 185:537-566）。

本発明によれば、好ましい増幅可能選択マーカー遺伝子は、ＧＳまたはＤＨＦＲの機能を有するポリペプチドをコードする遺伝子である。

「部位特異的組換え酵素」という用語は、特定のヌクレオチド配列（認識部位）を認識し、これらの部位でＤＮＡ骨格を切断し、再配列を行い、かつ切断したヌクレオチド配列を再結合するタンパク質を指す。前記組換え酵素は、例えば、一対の認識部位間のＤＮＡを切除し、および切除したＤＮＡ断片に代えて目的のポリヌクレオチドをその後に組込むことを可能にし、それにより遺伝情報の正確な部位特異的交換を提供する。いくつかの部位特異的組換え酵素が当技術分野では公知である。例えば、Ｃｒｅ組換え酵素は、ｌｏｘＰ組換え部位、またはヘテロ特異的であるｌｏｘ５１１組換え部位のいずれかを認識し。これはｌｏｘＰとｌｏｘ５１１は互いに再組換えしないことを意味する。このＣｒｅ／ｌｏｘ系は、例えば、Odell et al., Plant Physiol. 1994, 106(2), 447-58に説明されている。Ｆｌｐ組換え酵素は、例えばLyznik et al., Nucleic Acids Res. 1996, 24(19), 3784-9に説明されるように、ｆｒｔ組換え部位を認識する。φＣ３１インテグラーゼは、例えばGroth et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2000, 97(11), 5995-6000に説明されるように、ａｔｔＢ（ドナー）およびａｔｔＰ（アクセプター）などの付着（ａｔｔ）部位を認識する。Ｄｒｅ組換え酵素は、例えば、米国特許第7,422,889号に説明されるように、ｒｏｘ部位を認識する。バクテリオファージλ（λインテグラーゼ）からのＩｎｔ組換え酵素およびその組換え部位は、Landy, Annu. Rev. Biochem. 1989, 58, 913-49に説明されている。

本発明によれば、「配列特異的ＤＮＡ編集酵素」または「部位特異的核酸分解酵素」は、所定のヌクレオチド配列（認識部位）でのＤＮＡの切断を可能にするタンパク質である。前記切断は、２つの相補的ＤＮＡ鎖の一方または両方で起こり、それにより、例えば、標的を絞った突然変異誘発、特定のゲノムＤＮＡ配列の標的を絞った欠失を可能にするか、あるいは切断された標的ＤＮＡの異種ポリヌクレオチドによる部位特異的な組換えをもたらす。前記編集酵素の配列特異性は、編集酵素内の１つ以上の配列特異的ＤＮＡ結合タンパク質ドメイン、あるいはＤＮＡ配列に誘導するガイドポリヌクレオチド（例えばガイドＲＮＡ）を結合する酵素に起因する可能性があり、このＤＮＡ配列はこのガイドポリヌクレオチドに対し少なくとも部分的に相補性を有する。従って、前記編集酵素の認識部位は、ＤＮＡ結合タンパク質ドメインを操作して、あるいは代替のガイドポリヌクレオチドを使用して改変されてもよい。複数の配列特異的ＤＮＡ編集酵素は、当技術分野で公知であり、その非限定的な例として、ジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素が挙げられる。

本特許で使用される「安定的な組込み」または「安定的に組込まれる」という用語は、宿主細胞のゲノムＤＮＡから離れたまま一時的に導入されるポリヌクレオチドとは異なり、宿主細胞ゲノム内に導入される異種ポリヌクレオチドを指す。相同的な組換えまたはその他の組換え法によって、安定的な組込みを引き起こすことができる。安定的な組込みは、異種ポリヌクレオチドを宿主細胞に一時的に導入する工程を含んでもよい。
Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内への１つ以上の異種ポリヌクレオチドの安定的な組込み

本発明は、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれた少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含むＣＨＯ細胞に関し、（ａ）少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域（上流のゲノム標的領域と呼ぶ）内に組込まれ、および／または（ｂ）少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域（下流のゲノム標的領域と呼ぶ）内に組込まれる。

Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターは、Ｓ１００カルシウム結合タンパク質Ａ３（Ｓ１００Ａ３）、Ｓ１００カルシウム結合タンパク質Ａ４（Ｓ１００Ａ４）、Ｓ１００カルシウム結合タンパク質Ａ５（Ｓ１００Ａ５）、およびＳ１００カルシウム結合タンパク質Ａ６（Ｓ１００Ａ６）をこの述べた順にコードする、すなわちＳ１００Ａ３から開始してＳ１００Ａ６の終了までの領域をコードするチャイニーズハムスター遺伝子を含むゲノム領域を指す。なおこのＳ１００Ａ６は、モンゴルキヌゲネズミには配置されていないゲノム骨格であるＣｒｉＧｒｉ＿１．０骨格６８２、すなわちＣＨＯ－Ｋ１細胞株の全ゲノムショットガン配列の１，７８２，８８２～１，８１０，３３８；ＮＣＢＩ参照配列：NW_003613854.1、および配列番号４の配列またはその相同体に対応する。Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流のゲノム標的領域は、配列番号１の配列に対応するゲノム領域を指す。Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム領域を指す。

一態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０、０２０～１９、０００、または配列番号１のヌクレオチド１１、８２０～１９、０００に対応する上流のゲノム標的領域内に、好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応する上流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応する上流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する下流のゲノム標的領域内に、好ましくは配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する下流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、上記に開示されるように、上流のゲノム標的領域および下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドが上流のゲノム標的領域内に組込まれ、かつ少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドが下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる場合に、ゲノム標的領域は同一であっても、異なっていてもよい。

当業者なら、１つの異種ポリヌクレオチドの単一コピー、複数のコピー、または２つ以上の異なる異種ポリヌクレオチドを、上流のゲノム標的領域内に、下流のゲノム標的領域内に、または上流のゲノム標的領域および下流のゲノム標的領域内に安定的に組込んでよいことは分かっている。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ゲノム標的領域の一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれてもよい。

別の態様において、本発明は、（ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および（ｂ）前記ＣＨＯ細胞内に異種ポリヌクレオチドを導入する工程を含むＣＨＯ細胞を産生する方法に関し、異種ポリヌクレオチドは、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、（ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域中に安定的に組込まれ、および／または（ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる。

一態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９、０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９、０００に対応する上流のゲノム標的領域内に、好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応する上流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応する上流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する下流のゲノム標的領域内に、好ましくは配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する下流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、本発明のＣＨＯ細胞または本発明の方法によって産生されたＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれた異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列またはその配列に対し少なくとも８０％の相同性を有するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または（ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列またはその配列に対し少なくとも８０％の相同性を有するゲノム標的領域内に組込まれる。

一態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する上流のゲノム標的領域内に、好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する上流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する上流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する下流のゲノム標的領域内に、好ましくは配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する下流のゲノム標的領域内に、およびより好ましくは、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０の配列、あるいはそれら配列に対し少なくとも８０％の相同性を有する下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。

別の態様において、本発明のＣＨＯ細胞または本発明の方法によって産生されたＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれた異種ポリヌクレオチドは、上記に開示したように、上流のゲノム標的領域内におよび下流のゲノム標的領域内に安定的に組込まれる。少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドが上流のゲノム標的領域内に組込まれ、かつ少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドが下流のゲノム標的領域内に組込まれる場合に、ゲノム標的領域は同一であっても、異なっていてもよい。

当業者なら、１つの異種ポリヌクレオチドの単一コピー、複数のコピー、または２つ以上の異なる異種ポリヌクレオチドを、上流のゲノム標的領域内に、下流のゲノム標的領域内に、または上流のゲノム標的領域および下流のゲノム標的領域内に安定的に組込んでよいことは分かっている。

少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ゲノム標的領域の一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれてもよい。

安定的な組込み方法は、当技術分野で周知である。簡潔に言えば、安定的な組込みは、一般的に、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドまたは少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含むベクターをＣＨＯ宿主細胞内に一時的に導入することで達成され、これによりＣＨＯ細胞ゲノム内への前記異種ポリヌクレオチドの安定的な組込みが容易になる。典型的には、異種ポリヌクレオチドは、相同性アーム、すなわち組込み部位に対して上流および下流にある領域に相同な配列に隣接している。異種ポリヌクレオチドを本発明のＣＨＯ細胞内に導入するベクターは、例えばプラスミド、レトロウイルス、コスミド、ＥＢＶ由来エピソームなどのかなり多くの適切なベクター系から選択してもよい。各種のシャトルベクター、例えば大腸菌およびシュードモナス属などの複数の宿主微生物中で自律的に複製できるベクターを使用してもよい。ＣＨＯ宿主細胞内への異種ポリヌクレオチドの導入前に、ＣＨＯ細胞ゲノムへの組込みを促進するように、環状ベクターは線形にしてもよい。ベクターをＣＨＯ細胞中に導入する方法は、当技術分野で周知であり、ウイルス送達などの生物学的方法、カチオン性ポリマー、リン酸カルシウム、カチオン性脂質、またはカチオン性アミノ酸を使用する化学的方法、電気穿孔法や微量注入法などの物理的方法、または原形質融合などの混合手法による導入を含む。

組換え細胞の識別または選択を可能にするように、少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、好ましくは同一のベクターに存在する選択マーカー遺伝子またはレポーター遺伝子とともに組込まれてもよい。さらにベクターは、多くの場合に、相同性アームの外側にマーカーを含み、ランダムな組込みを識別できる。

一態様において、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法によって産生されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれた異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分である。発現カセットは、プロモーターに作動可能に連結されたＲＮＡおよび／またはタンパク質などの遺伝子産物、および遺伝子産物の発現を制御する任意のさらなる手段をコードする少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含む。この手段としては、限定はされないが、エンハンサー、終結シグナル、ポリアデニル化シグナル、および通常ポリアデニル化部位を含む３’非翻訳領域が挙げられる。このプロモーターは、弱いプロモーターであってもよく、または目的の遺伝子産物を高水準に発現する強いプロモーターであってもよい。前記プロモーターとして、限定はされないが、ＣＭＶ（サイトメガロウイルス）プロモーター、ＳＶ４０（サル空胞ウイルス４０）プロモーター、ＲＳＶ（ラウス肉腫ウイルス）プロモーター、アデノウイルスプロモーター（例えば、アデノウイルス主要遅延プロモーター（ＡｄＭＬＰ））、ＣＨＥＦ－１（ＣＨＯ由来伸長因子－１）プロモーター、ポリオーマ、ならびに天然免疫グロブリンおよびアクチンプロモーターまたは少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドの天然プロモーターなどの強力な哺乳動物プロモーターが挙げられ、好ましくは、ＣＭＶプロモーターまたはＳＶ４０プロモーターであり、最も好ましくはＣＭＶプロモーターである。ポリアデニル化シグナルの例として、ＢＧＨポリＡ、ＳＶ４０遅延ポリＡまたはＳＶ４０早期ポリＡであり、あるいは免疫グロブリン遺伝子の３’ 非翻訳領域（ＵＴＲ）などを使用できる。当業者なら、例えばＡＲＥ（アデニル酸－ウリジル酸に富む要素）などの不安定要素を排除することで、高水準の発現をもたらすように３’ＵＴＲを操作し得ることがさらに分かる。

いくつかの態様において、遺伝子産物は、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）、グルタミン合成酵素（ＧＳ）などの増幅可能な遺伝子選択マーカーにより制御してもよい。この増幅可能な選択マーカー遺伝子は、分泌治療用タンパク質の発現カセットと同一の発現ベクター上に配置してもよい。あるいは、増幅可能な選択マーカー遺伝子および分泌治療用タンパク質の発現カセットを、異なる発現ベクターに配置してもよいが、宿主細胞のゲノム内に近接して組込んでもよい。例えば、同時に導入される２つ以上のベクターは、多くの場合に、宿主細胞のゲノム内に近接して組込まれる。次いで、分泌治療用タンパク質の発現カセットを含む遺伝子領域の増幅は、増幅剤（例えば、ＤＨＦＲの場合にはＭＴＸ、またはＧＳの場合にはＭＳＸ）を培養培地内に添加して媒介される。

宿主細胞または産生細胞中の遺伝子産物の十分に高い安定性は、例えば、異種ポリヌクレオチドの複数コピーを発現ベクター内にクローニングして達成できる。上述のように異種ポリヌクレオチドの複数コピーの発現ベクター内へのクローニングおよび分泌治療用タンパク質の発現カセットの増幅を、さらに組合わせてもよい。

目的の遺伝子産物をコードする少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、全長遺伝子または切断遺伝子、融合遺伝子、またはタグ付き遺伝子を含んでもよく、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、またはＤＮＡ断片、好ましくはｃＤＮＡであってもよい。この遺伝子産物は、天然配列、すなわち天然に存在する形態を含んでもよく、または必要に応じて変異または他の方法で修飾されてもよい。これらの修飾としては、選択した宿主細胞内でコドンの使用を適正にするコドン最適化、ヒト化、融合、またはタグ付けが挙げられる。当業者なら、２つ以上の異種ポリヌクレオチドが、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる場合には、これらの異種ポリヌクレオチドは、２つ以上の発現カセットまたは例えばＩＲＥＳ（内部リボソーム進入部位）配列により区分された同一発現カセットの一部分によってコードされてもよいことが分かる。

別の態様において、異種ポリヌクレオチドは、少なくとも１つの目的のタンパク質および／または少なくとも１つの目的のＲＮＡをコードする。目的のＲＮＡには、限定はされないが、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、およびマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）または低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）などの低分子調節ＲＮＡが含まれる。この目的のＲＮＡは、好ましくはｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡ、より好ましくはｍＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡからなる群より選択される。低分子調節ＲＮＡは、１つ以上の宿主細胞タンパク質をコードするｍＲＮＡ内の標的領域に結合して、前記１つ以上の宿主細胞タンパク質の発現を妨げることができる。

当業者なら、異種ポリヌクレオチドがコードする低分子調節ＲＮＡを使用して、栄養代謝、栄養摂取、転写、翻訳、タンパク質の折畳み、折畳みのないタンパク質応答、プログラム細胞死、細胞間または細胞内シグナル伝達、細胞周期制御、細胞増殖、またはタンパク質分泌などの宿主細胞内中の該当過程に干渉できることが分かる。従って、本発明を有効に使用し、ＣＨＯ宿主細胞を操作して細胞培養またはタンパク質産生でのそれら細胞の特性を改善することができる。

目的のＲＮＡおよび／または目的のタンパク質は、構造に応じて発現してもよく、または条件に応じて発現してもよい。例えば、目的のＲＮＡまたは目的のタンパク質の発現は、成長段階中は休止状態にでき、タンパク質産生中には稼働状態にできる。

本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生または使用されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドがコードする目的のタンパク質は、抗体、融合タンパク質、サイトカインまたは成長因子、リンホカイン、接着分子、受容体およびその派生物または断片、ならびにアゴニストまたはアンタゴニストとして機能しおよび／または治療用途または診断用途に使用できる任意の他のポリペプチドからなる群より選択される治療用タンパク質であってもよい。好ましくは、この治療用タンパク質は分泌治療用タンパク質である。異種ポリヌクレオチドがコードする治療用タンパク質は、組換えタンパク質であってもよく、好ましくは分泌組換えタンパク質であってもよい。治療用タンパク質は、好ましくは、抗体、融合タンパク質、サイトカインまたは成長因子、より好ましくは抗体または融合タンパク質、最も好ましくは抗体からなる群より選択される。抗体などの多量体タンパク質は、１つ以上の発現カセットの一部として１つ以上の異種ポリヌクレオチドがコードしていてもよい。

当業者なら、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる少なくとも１つのポリヌクレオチドが、少なくとも１つの目的のＲＮＡおよび少なくとも１つの目的のタンパク質の両方をコードし、ＣＨＯ細胞中の該当過程の前記修飾を目的の異種タンパク質の発現と有効に組み合わせて、高水準および／または高安定性のタンパク質の産生、高水準および／または高安定性のタンパク質分泌、および／または翻訳後タンパク質修飾の特定の量および品質を達成することを容易にできることは分かっている。

別の態様において、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、マーカー遺伝子である。このマーカー遺伝子は、組換え細胞と非組換え細胞との間の区別、および／または目的の遺伝子産物の発現水準の定量を可能にする任意の遺伝子であってもよい。マーカー遺伝子は、レポーター遺伝子または選択マーカー遺伝子であってもよい。選択マーカーは、例えばグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損などの利用されるＣＨＯ宿主細胞の代謝異常を修正できる。レポーター遺伝子は、アルカリ脱リン酸化酵素（ＡＰ）、クロラムフェニコールアセチル転移酵素（ＣＡＴ）、ウミシイタケ発光酵素、またはホタル発光酵素の各タンパク質であってもよい。レポーター遺伝子はまた、例えば緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）または増強したＧＦＰを含むＧＦＰのいずれかの組換え変異体（ＥＧＦＰ）、青色蛍光タンパク質（ＢＦＰおよびその他の派生物）、シアン蛍光タンパク質（ＣＦＰおよびその他の派生物）、黄色蛍光タンパク質（ＹＦＰおよびその他の派生物）、および赤色蛍光タンパク質（ＲＦＰおよびその他の派生物）などの蛍光タンパク質をコードする遺伝子を含む。好ましい態様において、レポーター遺伝子は、ＧＦＰまたはＥＧＦＰなどの蛍光タンパク質であってもよい。選択マーカーはさらに、アミノグリコシドリン酸転移酵素（ＡＰＨ）、ハイグロマイシンリン酸転移酵素（ＨＹＧ）、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）、チミジンキナーゼ（ＴＫ）、グルタミン合成酵素、アスパラギン合成酵素、およびネオマイシン（Ｇ４１８／ジェネチシン）、ピューロマイシン、ヒスチジノールＤ、ブレオマイシン、フレオマイシン、ブラストサイジン、およびゼオシンに耐性を付与する遺伝子などの抗生物質耐性遺伝子、または代謝マーカー遺伝子であってもよい。好ましい態様において、選択マーカー遺伝子は、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）、またはグルタミン合成酵素（ＧＳ）である。

いくつかの態様において、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生または使用されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分である。好ましくは、発現カセットは、部位特異的組換え酵素または部位特異的核酸分解酵素などの配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位（認識配列）に隣接している。より好ましくは、発現カセットは、部位特異的組換え酵素の認識部位に隣接している。この部位特異的組換え酵素は、当技術分野で周知であり、限定はされないが、λインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐ、またはそれらの任意の派生物が含まれる。従って、発現カセットは、λインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、Ｆｌｐ、またはそれらの派生物の認識部位に隣接していてもよい。部位特異的核酸分解酵素として、限定はされないが、ジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素が挙げられる。ＣＨＯ細胞ゲノム内の標的配列に特異的に結合するように部位特異的核酸分解酵素を操作できることは、当技術分野で周知である。これにより、前記認識部位に囲まれた発現カセット内のＤＮＡ断片の標的を絞った交換が容易になる。異種ポリヌクレオチドの宿主細胞ゲノム内への標的を絞った組込みへの部位特異的組換え酵素または部位特異的核酸分解酵素の使用は、日常的に実施されていて、それぞれの方法は当技術分野で周知である。いくつかの態様において、部位特異的組換え酵素または部位特異的核酸分解酵素の認識部位を含む発現カセットは、所定のゲノム標的領域の再標的化を可能にして、目的のＲＮＡまたは目的のタンパク質などの複数の遺伝子産物のための複数のＣＨＯ産生細胞を生成できる。

特定の態様において、本発明のＣＨＯ細胞のゲノム内に、または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞のゲノム内に安定的に組込まれる少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドはマーカー遺伝子であり、このマーカー遺伝子は、発現カセットの一部分としてＣＨＯ細胞ゲノム内に組込まれ、かつこの発現カセットは、上述のように、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素（例えば部位特異的核酸分解酵素）、好ましくは部位特異的組換え酵素の認識部位に隣接している。これにより、マーカー遺伝子を含む発現カセットが、目的のＲＮＡまたは治療用タンパク質をコードする異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットに対して容易に交換されることを可能とする。目的のタンパク質をコードする異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットに対して容易に交換され得るマーカー遺伝子をコードするそのような置換ＤＮＡを、本明細書では「着地パッド」とも呼ぶ。

一態様において、本発明によるＣＨＯ細胞を産生する方法は、（ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および（ａａ）第１の異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、第１の異種ポリヌクレオチドは、マーカー遺伝子であり、かつ部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素（例えば部位特異的核酸分解酵素）の認識部位に隣接する発現カセットの一部分として、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、（ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に安定的に組込まれ、および／または（ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、前記方法はさらに、（ｂ）工程（ａａ）の第１の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットに代えて、第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含む。好ましくは、第２の異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡまたは治療用タンパク質、好ましくは治療用タンパク質、より好ましくは目的の分泌タンパク質をコードする。

前記第１の異種ポリヌクレオチドは、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子をコードすることが好ましい。特定の態様において、このレポーター遺伝子は、ＧＦＰなどの蛍光タンパク質であってもよい。この選択マーカーは、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）またはグルタミン合成酵素（ＧＳ）であってもよい。レポーター遺伝子と選択マーカー遺伝子をさらに組合せてもよい。

前記第１の異種ポリヌクレオチドは、好ましくは部位特異的核酸分解酵素を使用して、より好ましくはジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素の（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素からなる群より選択される部位特異的核酸分解酵素を使用して、さらに好ましくはジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、またはＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素を使用して、標的を絞った組込みによって組込まれる。

前記第１の異種ポリヌクレオチドはさらに、部位特異的組換え酵素の認識部位に隣接する発現カセットの一部分であってもよく、好ましくは、λインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐからなる群より選択される部位特異的組換え酵素の認識部位を含む。

さらに、第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットを、前記第１の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットに代えて、ＣＨＯ細胞内に導入してもよい。好ましくは、前記第２の異種ポリヌクレオチドは、少なくとも１つのＲＮＡおよび／または少なくとも１つのタンパク質をコードし、より好ましくは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡ、および／または治療用タンパク質をコードする。第２の異種ポリヌクレオチドを含む前記発現カセットは、好ましくは部位特異的核酸分解酵素または部位特異的組換え酵素を使用して、より好ましくは部位特異的組換え酵素を使用して、最も好ましくはλインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐからなる群より選択される部位特異的組換え酵素を使用して、標的を絞った組込みによりＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に導入される。

好ましい態様において、ＣＨＯ細胞を産生する方法は、マーカー遺伝子および部位特異的組換え酵素の認識部位を含む第１の異種ポリヌクレオチドを備える発現カセットを導入することを含み、前記第１のポリヌクレオチドは、部位特異的核酸分解酵素を使用して標的を絞った組込みによってＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる。さらに、第１の異種ポリヌクレオチドを含む前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素を使用した標的を絞った組込みによって目的のＲＮＡおよび／または目的のタンパク質をコードする第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットで代替される。好ましい態様において、第１の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットおよび第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットは、部位特異的組換え酵素の同一の認識部位に隣接している。

当業者なら、この方法では、容易に利用可能なＤＮＡ組換え法によって、目的の遺伝子産物の安定的かつ高水準に発現するゲノム部位内に任意の異種ポリヌクレオチドを導入するために、再標的化が可能なゲノム標的部位を含むＣＨＯ細胞を提供できることが分かる。この方法により、細胞株の発育過程でのＣＨＯ産生細胞クローンの生成と識別に関連する時間とコストを大幅に削減できる。
ＣＨＯ細胞

本発明のＣＨＯ細胞または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞は、培養物中で増殖でき、かつ目的のＲＮＡまたは目的のタンパク質を発現できる任意のチャイニーズハムスター卵巣細胞であってもよい。大規模な工業生産で一般的に使用されるＣＨＯ細胞は、生産工程でのそれら特性を改善し、あるいは組換え細胞の選択を容易にするように操作される場合がよくある。その操作として、限定はされないが、プログラム細胞死への耐性増大、自食作用の低減、細胞増殖の増大、細胞周期調節タンパク質の発現修飾、シャペロンの操作、小胞体ストレス応答（ＵＰＲ）の操作、分泌経路の操作、および代謝の操作が挙げられる。

好ましくは、効率的な細胞株発育過程を可能にするＣＨＯ細胞は、グルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損および／またはジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）欠損などによって代謝的に操作されて、それぞれメチオニンスルホキシミン（ＭＳＸ）またはメトトレキサートによる選択を容易にする。

好ましくは、本発明のＣＨＯ細胞または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ－ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ－Ｋ１細胞、ＣＨＯ－ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ－Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞の派生物である。

ＣＨＯ細胞は、無血清条件下で、かつ動物由来のいずれのタンパク質／ペプチドも含まない任意の培地中で、樹立、適応、かつ完全に培養されるのが最も好ましい。ハムＦ１２培地（Sigma社,、Deisenhofen, Germany）、ＲＰＭＩ－１６４０培地（Sigma社）、ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM、Sigma社）、最少基礎培地（MEM、Sigma社）、イスコフ改変ダルベッコ培地（IMDM、Sigma社）、ＣＤ－ＣＨＯ培地（Invitrogen社、Carlsbad, CA)、無血清ＣＨＯ培地（Sigma社）、および無タンパク質ＣＨＯ培地（Sigma社）などの市販の培地は、適切な栄養溶液の例である。これら培地のいずれかに、必要に応じて種々の化合物を補充してもよく、その非限定的な例としては、組換えホルモンおよび／または他の組換え成長因子（インスリン、トランスフェリン、表皮成長因子、インスリン様成長因子など）、塩（塩化ナトリウム、リン酸カルシウム、リン酸マグネシウムなど）、緩衝液（ＨＥＰＥＳなど）、ヌクレオシド（アデノシン、チミジンなど）、グルタミン、グルコースまたはその他の等価のエネルギー源、抗生物質、および微量元素が挙げられる。その他の任意の必要な補充物はさらに、当業者に公知と思われる適切な濃度で含まれてもよい。選択可能な遺伝子を発現する遺伝工学的に改変された細胞の成長および選択のために、適切な選択剤が培養培地に添加される。
タンパク質生産

一態様において、本発明のＣＨＯ細胞または本発明の方法により産生されるＣＨＯ細胞は、目的のタンパク質の産生に使用される。この目的のタンパク質は、宿主細胞中の抗体分子の発現を可能にするのに十分な期間で本発明のＣＨＯ細胞を培養して産生される。発現後に、目的のタンパク質を回収して精製してもよい。好ましくは、目的のタンパク質は、分泌タンパク質として培養培地から回収され、当該分野で周知の技術を使用して精製される。

例として、本発明の組換え分泌治療用タンパク質を得るのに有用な最先端の精製方法は、最初の工程として、培養培地または溶解物からの細胞破片および／または粒子状細胞破片を除去することを含む。次に分泌治療用タンパク質は、例えば免疫親和性カラムまたはイオン交換カラム、エタノール沈殿、逆相ＨＰＬＣ、セファデックスクロマトグラフィー、シリカまたはカチオン交換樹脂によるクロマトグラフィーでの分画によって、汚染した可溶性タンパク質、ポリペプチド、および核酸から精製される。抗体またはＦｃ融合タンパク質は、タンパク質Ａスピンカラム（GE Healthcare社）などを用いて、例えば標準的なタンパク質Ａクロマトグラフィーによって精製してもよい。タンパク質の純度は、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ法によって確認でき、タンパク質の濃度は、２８０ｎｍでの吸光度を測定し、タンパク質の特定の減衰係数を利用して決定できる。最後に、精製した組換え分泌治療用タンパク質を、凍結乾燥などで乾燥してもよい。

一態様において、本発明のＣＨＯ細胞を使用して、高収率で目的のタンパク質を産生する。高収率でのこの産生は、高い細胞密度または高い細胞生存率に起因し、また特定細胞の高い産生性に起因する可能性が高い。しかしながら、当業者なら、特定細胞の産生性が実質的に影響を受けずにあるいは改善もされていない場合には、高い細胞密度または細胞生存率を保有することのみが目的のタンパク質の高い総収率をもたらすこと、同様に、細胞密度または細胞生存率が実質的に影響を受けずにあるいは改善もされていない場合には、特定細胞の高い産生性を保有することのみが分泌組換え治療用タンパク質の高い総収率をもたらすことを分かっている。ここで高収率での産生とは、例えばＭｇ／ｍＬのような濃度（力価）として典型的に測定される細胞培養物の高水準の総産生性を指している。参照のＣＨＯ細胞、すなわちゲノム内にランダムに組込まれた同一の異性ポリヌクレオチドを含む、好ましくはクローン選択をしないＣＨＯ細胞プール中のＣＨＯ細胞に比較して、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも７５％、少なくとも１００％、または少なくとも２００％まで増強される場合には、本発明による目的のタンパク質の産生性は高いことになる。

組込み部位は、遺伝子発現データを評価して識別される。カルシウム結合タンパク質をコードする遺伝子Ｓ１００Ａ６は、すべての実験条件にわたって高度に発現されることが見出されたので、異種タンパク質の高い発現をもたらすゲノム部位のマーカーとして使用できる。Ｓ１００Ａ６は、Ｓ１００遺伝子のクラスターの一部分であるので、クラスターの全体が評価できる。
細胞の選択および保持

専用の培地を使用して、活性なＤＨＦＲカセットによって補完する前にCHO-DG44細胞を定期的に継代した。そのカセットの導入後に選択培地を含むＭＴＸを使用して、ＤＨＦＲ発現カセットを組込んだ細胞を濃縮した。CHOZN GS細胞株には、８５０ｍｇ／LのＬ－Ｇｌｎ（６ｍＭ）を補充した市販の培地CD Fusion（Sigma Aldrich社）を使用した。細胞株は、ＴＰＰ振とう管中で、１週間あたり２－２－３の継代計画で０．３×１０⁶細胞／ｍＬ（CHO-DG44）に、または２－２の継代計画で０．６×１０⁶細胞／ｍＬ（CHOZN GS-/-）にそれぞれ継代した。培養物を自動化Vicell装置で計数した。

すべてのプールにおいて、CHO-DG44細胞株（ＤＨＦＲ－／－）からヒポキサンチンチミジン（ＨＴ）補充物を除去するか、またはCHOZN GS細胞株（ＧＳ－／－）からＬ－Ｇｌｎを除去して、代謝選択を実施した。ＤＨＦＲドナーまたはＧＳドナーを受容しない親細胞に対して、遺伝子導入の工程後にこの選択を実施した。選択工程を経たプールは、永続的に選択培地内に保持された。この選択を行う際に、Ｔ７５静止フラスコに総量１０～１２ｍＬとして細胞を０．４×１０⁶細胞／ｍＬで播種した。選択培地を、フラスコ全体を遠心沈殿させて、かつ同一体積の新鮮な培地中に細胞を再懸濁して、通常は７日後に交換した。選択細胞が「回復」して成長を再開すると、これら細胞は必要に応じてＴＰＰ管中に展開された。流加回分での性能評価の前に、細胞を選択培地中に永続的に保持した。
標的を絞った組込みのためのＺＦＮ技術

SAFC社からの市販のCompoZr亜鉛フィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）を使用して、測定法の指示に従って標的を絞った組込みを実施した。それぞれのＺＦＮは、提供されたそれぞれの標的配列情報、例えば配列番号１１（ＺＦＮ１３）に基づきSAFC社によって特別注文品として製造された。

ＺＦＮヌクレオチド配列は、各ＺＦＮアームで固有であり、かつＦｏｋＩドメインに結合された。ＺＮＦアームをコードするＤＮＡは、pVAXプラスミド骨格内にクローニングされた。このプラスミドはまた、翻訳中の分離のために２Ａペプチドが結合したＺＦＮ配列の上流にＧＦＰまたはＲＦＰレポーターカセットを含んでいた。ＺＦＮアームは、ｍＲＮＡとして導入された。ＺＦＮをコードされたＤＮＡのＲＮＡ内への生体外転写のために、mMessage mMachine T7 Ultra kit（Ambion）を製造業者の指示に従って使用した。従って、導入に使用される２つのｍＲＮＡのうち、一方は配列（例えばＺＮＦ１３）およびＧＦＰに特異的なＺＮＦアームをコードし、他方は相補配列とＲＦＰを標的とするＺＮＦアームをコードした。流動細胞計測法によって遺伝子導入されたプールの迅速かつ容易な濃縮を可能にするために、ＧＦＰまたはＲＦＰをＺＦＮアームの導入と共に発現させた。両方のＺＦＮアームを受容した細胞は、ＧＦＰ陽性およびＲＦＰ陽性であった。ＺＦＮ活性が富化したプールを形成するために、これらの二重陽性細胞を回収した。
遺伝子導入手法

遺伝子導入には、電気穿孔用にBio-Rad社のGene Pulserを使用した。２ｍｍキュベット内の１×１０⁶細胞を、約２０μｇのＤＮＡおよび／またはｍＲＮＡ総量を使用して導入した（設定：１１５Ｖ、９５０μＦ、無限大の抵抗）。ＺＦＮは、常にｍＲＮＡとして導入され、目的のタンパク質を含むドナープラスミドはＤＮＡとして導入された。細胞を導入し、同一の培地内で培養する。導入後に、細胞を２～３週間培養して、一過性のプラスミドを洗い流した。
Ｃｅｌ Ｉ測定－ＺＦＮ活性

細胞内のＺＦＮの切断効率を測定するために、CEL-IまたはSURVEYOR核酸分解酵素測定を実施した。簡潔に言うと、鋳型として導入されたプールから精製されたゲノムＤＮＡを使用して、標的領域をＰＣＲで増幅した。活性なＺＦＮの存在下で、ゲノムＤＮＡは、野生型産物とＮＨＥＪ産物の混合物に変換される（標的部位での挿入または欠失）。ＰＣＲ産物を高温下で変性させ、温度を徐々に下げてハイブリダイズさせた。いくつかの野生型産物およびＮＨＥＪ産物は、切断部位周辺に不適正な塩基対を持つ二本鎖ＤＮＡを形成するようにハイブリダイズし、それらはCEL-IまたはSURVEYORと呼ぶ酵素によって切断され、電気泳動によって分離できかつ視覚化できる切断産物をもたらす。
接合ＰＣＲ（ｊＰＣＲ）

ｊＰＣＲを使用して、ゲノム内への配列組込みを識別した。プライマーは、隣接するゲノムＤＮＡ配列の境界でドナー分子の５’末端または３’末端を増幅するように設計された。１つのプライマーはＺＦＮ切断部位近くのゲノム配列に特異的であり、別のプライマーはドナー配列に特異的である。ドナーＤＮＡが特定の部位で正確な方向に組込まれる場合に、ＰＣＲ産物が得られる。ｊＰＣＲは、特にＴＩ事象とＲＩ事象の組合せを持つプールで、非特異的な帯域を形成できる。さらに、ＴＩドナーは、ゲノム部位に対していずれの方向にも組込むことができる。特に明記しない限り、ｊＰＣＲは、順方向に整然と組込まれたドナーを選別するプライマーを使用して実行された。得られたＴＩのｊＰＣＲ帯域は、配列決定によって定期的に確認された。親細胞株であるｇＤＮＡおよび／またはドナーＤＮＡを陰性対照として使用した。
ＩｇＧ発現細胞のＦＡＣＳ濃縮

流動細胞計測法または蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）法を使用して、FACS Aria III装置を用いて細胞の特定の亜集団を濃縮した。通常は、細胞はＩｇＧ発現細胞およびＧＦＰ陰性細胞として選別され、非発現細胞およびＧＦＰ発現細胞を除去した。細胞を遠心沈殿してＰＢＳ中に再懸濁して、ＦＡＣＳ法用に細胞を調製した。ＩｇＧ検出のために、選別の３０分前に細胞を蛍光標識抗ＩｇＧ抗体により増殖した。Ｒ－フィコエリトリン標識抗体を使用して、表面に結合したＩｇＧを有する任意の細胞に結合した。
産生性／力価

CHO-DG44またはCHOZN GS細胞をそれぞれ７日間または１３日間の流加回分でＦＡＣＳ濃縮プールを評価した。CHO-DG44由来のプールの産生性および力価の評価は、専用の基質培地および原料を使用して実施した。CHOZN GSの産生性は、Ex-Cell（登録商標） CHOZN（登録商標） Platform Feedを補充したCD Fusion内で実行した。産物の濃度は、ForteBio Octetにより分析した。

実施例１：

ＣＨＯ産生細胞クローンは、通常、異種ポリヌクレオチドをＣＨＯ細胞の宿主細胞ゲノム内にランダムに組込んで、すなわちランダムな組込み（ＲＩ）によって得られる。位置の影響により、大部分が低産生細胞および小亜集団のみが高産生細胞である非常に不均質な細胞集団を生じる。さらに高産生細胞は、低産生細胞から成長する傾向がある。異種タンパク質の信頼性が高い高水準の産生の部位（すなわち「ホットスポット」）としてのチャイニーズハムスターＳ１００Ａ遺伝子クラスターの潜在能力を評価するために、上述のように、配列番号１１（ＺＦＮ１３）のＤＮＡ配列に特異的となるように操作されたジンクフィンガー核酸分解酵素対を使用して、ＩｇＧ抗体をコードするポリヌクレオチドを、CHO-DG44およびCHOZN GS細胞のゲノム内に安定的に組込んだ。
ＺＦＮ活性を確認しドナープラスミドを調製した後に、電気穿孔法によりＩｇＧ抗体をコードする発現カセットおよび標的特異的ＺＦＮ１３対を含む非線形プラスミドによって、これら細胞は同時に遺伝子導入された。従って、目的のＩｇＧタンパク質をコードするドナープラスミドは、ランダムにまたは相同組換えを介して線形化されている。ＺＦＮ ｍＲＮＡの潜伏期間と切断効率を改善するように、細胞に３０℃で４８時間の低温衝撃を加えた。電気穿孔法後の４日目または５日目に、ゲノムＤＮＡを回収して不適正な塩基対に特異的な核酸分解酵素測定であるCel-I測定を実行して、ＺＦＮ活性を確認した。

遺伝子導入後に、選別前に細胞を１０～１２日間培養して、一時的に導入した任意のドナープラスミドの完全な洗浄を可能とした。ＣＨＯ細胞を遠心分離によって回収し、代謝選択用の培地内で、Ｌ－グルタミンを欠く培地中のCHOZN GS細胞、およびヒポキサンチンおよびチミジン補充物（ＨＴ補充物）を含まない培地中のCHO-DG44細胞に対して再播種した。５～１０日以内に培養物の回収を開始した。対照として、模擬培養物をプラスミドなしで導入して同時に培養した。対照培養物は、いずれの実験でも成長しなかった。

代謝選択工程の後に、FACS Aria III装置（BD Biosciences社製）で蛍光活性化細胞選別（ＦＡＣＳ）法を使用して、ＧＦＰおよびＩｇＧ発現に基づいて細胞を選別した。ＩｇＧ検出のために、選別の３０分前に細胞を蛍光標識抗ＩｇＧ抗体とともに培養した。表面結合ＩｇＧによって任意の細胞に結合するように、Ｒ－フィコエリトリン標識抗体を使用した。ＣＨＯ細胞を、ＧＦＰ発現集団（ＧＦＰ＋）とＧＦＰ非発現集団（ＧＦＰ－）に選別した。標的を絞った組込みのための相同性アームに隣接する抗体を発現するドナープラスミドはさらに、相同性アームの外側に位置するＧＦＰをコードする発現カセットを含んでいた。従って、ＧＦＰ発現はランダムな組込み事象に関連し、ＧＦＰの陰性集団は、標的を絞った組込みが発生した細胞に対し濃縮された。ＧＦＰ＋細胞対ＧＦＰ－細胞の分布と割合は、標的を絞った組込みの効率、また標的を絞った組込み部位での任意の陽性の表現型または有害な表現型にでの良好な指標であった。代謝選択のために、ＧＦＰ陰性細胞プールおよびＧＦＰ陽性細胞プールをそれぞれ、基本原料およびグルコース手法を用いて３０ｍＬのＴＰＰ管中で培養した。この培養物では、生存細胞密度（ＶＣＤ）、生存率、および培地グルコース水準が監視された。希釈された上清中のＩｇＧ力価は、事前に確立した標準曲線によってForteBio Octet装置（Pall Biosciences社製）を使用して、抗体相互作用を直接的に測定して決定された。

組込み用ＩｇＧ抗体をコードする同一のポリヌクレオチドを使用して、標的を絞った組込み（ＴＩ）またはランダムな組込みにより得られたＣＨＯプールの力価は、CHO-DG44細胞に対しバッチ培養で３～７日後に（図１Ａ）、かつCHOZN GS細胞に対し８～１０日後に（図１Ｂ）測定した。標的を絞った組込みよって得られたCHO-DG44プールでの力価は、ランダムな組込みによって得られたＣＨＯプールでの力価よりも少なくとも７倍高く（図１Ａ）、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６遺伝子クラスターの上流領域は、異種ポリヌクレオチドの組込みにおいてホットスポットであることを示している。CHOZN GS細胞においても類似の結果が得られ、ランダムに組込んだ細胞と比較して、標的を絞った組込みにおいて少なくとも８倍高いＩｇＧ力価を示している。

実施例２：

ランダムな組込みは、異種タンパク質の発現で非常に不均質な細胞プールを生じる。チャイニーズハムスターＳ１００Ａ遺伝子クラスター内での標的を絞った組込みがより均質な発現水準をもたらして、例として産生性をより高い確度で予測できるかを評価するために、実施例１のＴＩ細胞プールおよびＲＩ細胞プールから各々のクローンを選定した。

実施例１からのCHOZN GS細胞の標的を絞った組込みプールおよびランダムな組込みプールを使用して、単一細胞クローン（ＳＣＣ）を得た。単一クローニングの工程を、馴化培地を使用して濃縮したＴＩプールおよびＲＩプールの希釈を制限して実施した。この馴化培地は、ＴＰＰ管内で０．３×１０⁶細胞／ｍＬの細胞を４８時間培養して調製した。細胞を沈降させ、馴化培地を滅菌濾過した。播種を、以下の手順を使用して、クローニング培地（SAFC社の融合プラットフォーム）と馴化培地の８０：２０混合培地内で実施した。手順１として、１細胞／ウェル未満までの連続希釈液を９６ウェルプレートに沈着させた（１ウェルあたり２００μＬ）。手順２として、細胞を通常の条件で培養し、６～７日間増殖させた。手順３として、これらプレートを増殖した単一のコロニーとして選別した。ウェルに２０μＬの新鮮な選択培地を供給した。手順４として、細胞を約１４日間培養して９６ウェルプレート内で集密形態とした。その細胞を２４ウェルプレートに展開するか、必要に応じて回収した。手順５として、クローン評価用のｇＤＮＡを、必要に応じて９６個のウェルの段階で取得した。９６個のウェルから一定量の細胞を取り出し、この細胞をその後のＰＣＲおよび配列決定のためにQuick Extractを使用して回収した。残りの細胞の成長を継続し、手順４で説明したように、場合によってはさらに展開した。手順６として、所望のクローン集団をＴＰＰ管に展開し、性能評価に使用した。

ランダムな組込みまたは標的を絞った組込みからのCHOZN GS単一細胞のクローンに対して、６０継代の前および後に流加様式での８日間の培養に続いてタンパク質の産生性を評価した。産生工程は、Ex-Cell（登録商標） CHOZN（登録商標） Platform Feedによって補充したCD Fusion内で実施した。ForteBio Octetによって産物の濃度を分析し、６０継代の前および後での同一のクローンからのデータを集積した（各ｎ＝２、合計ｎ＝４）。

この分析によると、ランダムな組込みの集団からの単一クローンに比較して（図２Ｂ）、標的を絞った組込みの集団からの単一クローンは、非常に均質な力価を示し（図２Ａ）、Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内での標的を絞った組込みは、予測可能なタンパク質の産生性をもたらすことを示している。６０継代の前および後の同一のクローンから集積されたデータでのより小さい誤差範囲バーにも反映されているように、標的を絞った組込みのクローンは遥かに安定的であった。

実施例３：
Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内のホットスポット部位を検証するために、ＴＩのために付加するジンクフィンガー核酸分解酵素を表３に示すように設計して生成し、実施例１で説明したような産生プールを形成した。図３Ａは、個々のＺＦＮの位置、およびＮＣＢＩ参照配列：NW_003613854.1を持つＳ１００Ａ遺伝子クラスター内のホットスポット部位を示す。ＺＮＦ７～１４の組込み部位が示され、それらは「非破壊的で産生的」、「非破壊的で低／非産生的」、「破壊的で低／非産生的」の各部位に分類される。

実施例１に記載したCHO-ZN GS細胞を使用してデータを取得した。Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターに関連する特定領域が、異種遺伝子産物の産生に有効であるかどうかを評価するように、８個の異なるゲノム部位を試験した。Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスター内への組込みが予測通りに産生性の低下に繋がるかどうかを、さらに試験した（図３Ｂ）。

（配列番号３のヌクレオチド配列を含む）Ｓ１００Ａ１／Ａ１３／Ａ１４／Ａ１６の副クラスター内に組込む標的を外したＺＦＮ（７）は、いかなる遺伝子にも害を及ぼさないにもかかわらず、ホットスポットの外側にあることにより発現水準が低いと予測された。（配列番号４のヌクレオチド配列を含む）Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスター内に組込む破壊的なＺＦＮ（１０、１１）は、内部の遺伝子を損傷する可能性があるので、全体にわたって達成可能な力価を低減させるか、生存率を低減させるかのいずれかが予測された。配列番号１のヌクレオチド配列を持つ上流領域内に組込む上流ＺＦＮ（８および９）、および配列番号２のヌクレオチド配列を持つ下流領域内に組込む下流ＺＦＮ（１２、１３、１４）は、最大の力価を生むと予測されたが、タンパク質の発現をもたらすには、主クラスターからの最適な距離が存在し得ると予測された。

個々の細胞集団を得るように、ＣＨＯ細胞にドナープラスミドを導入し、表３に開示したＺＦＮを使用して実施例１の説明のように選別した。産生された抗体は、実施例１と同一であった。ＣＨＯプールの力価を、上述のように８日間の培養後の上清内で測定した。

それぞれの部位での標的を絞った組込みから生じる実測の力価を図３Ａに示す。標的を外したＴＩおよび破壊的なＴＩ（ＺＦＮ：７、１０、１１）は、タンパク質を発現しなかった。上流および下流の両方のＴＩプールは、抗体への力価を示したが、組込みにはＳ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターからの最適な距離が存在することを示すような差異が観察された。ＺＦＮ対８は良好なタンパク質の産生性を示すものの、上流の組込み領域内でのＺＦＮ対９の部位では最高のプール力価を示し、ほぼ０．５ｇ／Ｌにまで達していた。下流でのＺＦＮ対１３および対１２は両方とも良好なタンパク質の産生性を示すものの、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターに対してより遠方にある対１３はより高い力価を示した。さらにＺＦＮ対１４は、十分な産生性をもたらすには遠方過ぎるように思われた。結論として、これら力価の結果は、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスター内の遺伝子を破壊する標的を絞った組込み、あるいはＳ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスター周りのごく近傍よりも外側を標的とした標的を絞った組込みは、得られる細胞集団のＩｇＧ産生の低下をもたらし、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流領域および下流領域内への組込みは、得られる細胞集団のＩｇＧ産生の増大をもたらすことを示している。これにより、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６のタンパク質コード遺伝子の上流または下流近傍のゲノム標的領域内の組込み部位に関して、高水準で信頼性の高いタンパク質を産生する適切なゲノム標的領域であることを実証している。

実施例４：

標的配列のより良い適用性およびより容易な組込みのためには、代替としてマーカー遺伝子などの「着地パッド」を含む細胞を所望の位置に提供してもよく、この細胞では、例えばＦｌｐ－ＦＲＴ組換え、またはＣｒｅ－ｌｏｘ組換えなどの部位特異的な組換え技術を使用して、標的配列を簡易に置換できる。

専用のCHO-K1 GS細胞株を、ＺＦＮ部位１３（配列番号１１）のＦＲＴで媒介した再標的化に使用した（着地パッド手法）。実施例１に記載の方法に類似したＺＦＮ技術を使用して、それぞれのＦＲＴに隣接する構築物（図４Ａを参照）を挿入した。CHO-K1 GSの要求を満たすように軽微な調整をこの手法に対して実施した。ＦＲＴ着地パッド構築物には、ネオマイシン耐性遺伝子、ＩＲＥＳ配列、およびシトシン脱アミノ酵素遺伝子を含むカセットに隣接するＦＲＴ部位が含まれていた（図４Ａを参照）。着地パッドはさらに、上流および下流の相同性アーム（それぞれ配列番号１３および配列番号１４）に挟まれ、線形化された構築物は、部位１３（配列番号１１）に特異的なＺＦＮ対と共に導入された。上述のように高精度の組込みが確認され、着地パッドは、以下に説明するベクターを含む目的の遺伝子によって組換え酵素媒介カセット交換（ＲＭＣＥ）を介して再標的化（置換）された。定期的な細胞培養では、８５０ｍｇ／ＬのＬ－Ｇｌｎ（６ｍＭ）を補充した専用の培地を使用した。着地パッド細胞の維持には、１００μｇ／ｍＬのＧ４１８を付加的に使用した。

予め組込まれた着地パッドと交換するドナー配列には、ＩｇＧ抗体をコードする発現カセットおよびハイグロマイシンをコードする発現カセットが含まれた。着地パッド構築物内により安定的に導入された細胞は、導入の２４時間前に０．５×１０⁶細胞／ｍＬで播種された。導入した日には、細胞培養の密度を新鮮な培地内で６×１０⁵細胞／ｍＬに調整した。８μｇの総ＤＮＡ（標的ベクターおよびＦＬＰ－組換え酵素発現プラスミド）をＬ－Ｇｌｎで補充したCHO-S-SFMII培地（Thermo Fisher社製）中に希釈した。導入剤として、PEIpro（Polyplus社製）を製造会社のマニュアルに従って使用した。導入後に、その培養物を３０℃で５％ＣＯ₂中に２４時間保持した。２４時間後に、温度を３６．５℃に切り替えて、さらに４８時間培養した。ハイグロマイシンによる導入と選択の後に、ＲＭＣＥ処理のみを継続した。プールを接合ＰＣＲ（ｊＰＣＲ）により評価して、上述のようにＩｇＧドナーが着地パッド中に組込まれる現象を確認した。

CHO-K1 GSのＦＲＴ再標的化プールは、専用の培地を使用して１３日間培養（流加培養）した。産物の濃度は、前述のようにForteBio Octet（ＢＬＩ（Bio-Layer Interferometry）法）を使用して分析した。図４Ｂに示すように、ＩｇＧ濃度は、時間につれて非常に高い水準で上昇していた。

実施例５：

実施例４で生成されたＩｇＧ発現ＦＲＴ標的化細胞は、単一クローンの濃度でも高い均質性を示していた（図５）。CHO-K1 GSのＦＲＴ再標的化プールを、実施例４に記載したように生成した。単一細胞のクローニング工程は、CHO-K1 GS細胞株に軽微な調整を加えて、実施例２による限界希釈によって実施した。

CHO-K1 GSのＦＲＴ再標的化プール（実施例４）からの単一細胞クローンを、専用の培地を使用して流加様式で１１日間培養した。CHO-K1 GS細胞を、１１０ｒｐｍ、３６．５°Ｃ、および５％ＣＯ₂中の振とうフラスコ内で増殖した。細胞株を０．３×１０⁶細胞／ｍＬでＴＰＰ震とう管中で継代した。培養物を、自動化Vi-Cell装置（Beckman Coulter社製）またはCedex Hi-Res装置（Roche Innovatis社製）で計数した。

対照として、別のプールを同時に培養した。産物の濃度は、ForteBio Octet（ＢＬＩ（Bio-Layer Interferometry）法）を使用して分析した。

本発明は以下の項目を含む。
１．チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれた少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含むＣＨＯ細胞であって、
ａ）少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または
ｂ）少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる、ＣＨＯ細胞。

２．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１３，１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する、項目１に記載のＣＨＯ細胞。

３．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する、項目１または２に記載のＣＨＯ細胞。

４．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する、項目１～３のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。

５．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる、先行する項目のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。

６．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードする、先行する項目のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。

７．前記ＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡである、項目６に記載のＣＨＯ細胞。

８．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、治療用タンパク質、好ましくは抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質をコードする、項目６に記載のＣＨＯ細胞。

９．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子である、項目６に記載のＣＨＯ細胞。

１０．前記マーカー遺伝子は、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、請求項９に記載のＣＨＯ細胞。

１１．前記ＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ-ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ-Ｋ１細胞、ＣＨＯ-ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ-Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞のいずれかの派生物である、先行する項目のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。

１２．前記ゲノム標的領域は、請求項１～１１に記載の前記配列のうちのいずれか１つの配列、またはその配列に少なくとも８０％の配列同一性を有する配列からなる、先行する項目のいずれか1項に記載のＣＨＯ細胞。

１３．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、前記ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスターの一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれる、先行する項目のいずれか1項に記載のＣＨＯ細胞。

１４．ＣＨＯ細胞を産生する方法であって、
ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および
ｂ）異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、前記異種ポリヌクレオチドは、ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、
ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または
ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる、方法。

１５．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１３、１６０、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００、または配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する、項目１４に記載の方法。

１６．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，７２０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，７２０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，７２０に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド６６０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド１，３２０～１０，２６０、または配列番号２のヌクレオチド１，４８０～１０，２６０に対応する、項目１４または１５に記載の方法。

１７．ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１３，５６０～１８，３８０、配列番号１のヌクレオチド１５，３６０～１８，３８０、または配列番号１のヌクレオチド１７，１００～１８，３８０に対応し、および／または
ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド３，１８０～１０，２６０、配列番号２のヌクレオチド４，９２０～９，０００、または配列番号２のヌクレオチド６，７２０～８，４６０に対応する、項目１４～１６のいずれか1項に記載の方法。

１８．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる、項目１４～１７のいずれか１項に記載の方法。

１９．前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、項目１８に記載の方法。

２０．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードする、項目１４～１９のいずれか１項に記載の方法。

２１．前記ＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡである、項目２０に記載の方法。

２２．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、治療用タンパク質、好ましくは抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質をコードする、項目２０に記載の方法。

２３．前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチは、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子である、項目２０に記載の方法。

２４．前記マーカー遺伝子は、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、項目２３に記載の方法。

２５．前記異種ポリヌクレオチドは、
ａ）配列特異的ＤＮＡ編集酵素、または
ｂ）部位特異的組換え酵素を用いて、前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に導入される、項目１４～２４のいずれか１項に記載の方法。

２６．ａ）前記配列特異的ＤＮＡ編集酵素は、部位特異的核酸分解酵素であり、好ましくは、ジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素からなる群より選択され、および／または
ｂ）前記部位特異的組換え酵素は、λインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐからなる群より選択される、項目２５に記載の方法。

２７．ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および
ａａ）第１の異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、前記第１の異種ポリヌクレオチドは、マーカー遺伝子であり、かつ部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接する発現カセットの一部分として、前記ＣＨＯ細胞ゲノムの前記Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、
ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、前記Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、前記配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または
ii）前記異種ポリヌクレオチドは、前記Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、前記配列番号２のヌクレオチド１～１５，１２０の配列に対応するゲノム標的領域に組み込まれ、および
ｂ）工程ａａ）の前記第１の異種ポリヌクレオチドを含む前記発現カセットに代えて、前記ＣＨＯ細胞内に第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットを導入する工程を含む、項目１４に記載の方法。

２８．前記ＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ-ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ-Ｋ１細胞、ＣＨＯ-ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ-Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞のいずれかの派生物である、項目１４～２７のいずれか１項に記載の方法。

２９．ＣＨＯ細胞中に目的のタンパク質を産生する方法であって、
ａ）請求項１～１３のいずれか１項に記載の前記ＣＨＯ細胞を提供すること、
ｂ）工程ａ）の前記ＣＨＯ細胞を、前記目的のタンパク質の産生を可能にする条件で細胞培養培地中で培養すること、
ｃ）前記目的のタンパク質を回収すること、および
ｄ）任意に前記目的のタンパク質を精製することを含む、方法。

３０．目的のタンパク質を高収率で生産するための項目１～１３のいずれか１項の前記ＣＨＯ細胞の使用。

配列表
配列番号１＿上流の組込み部位
配列番号２＿下流の組込み部位
配列番号３＿上流の副クラスター
配列番号４＿主クラスターコード領域
配列番号５＿ＺＦＮ７の認識部位
配列番号６＿ＺＦＮ８の認識部位
配列番号７＿ＺＦＮ９の認識部位
配列番号８＿ＺＦＮ１０の認識部位
配列番号９＿ＺＦＮ１１の認識部位
配列番号１０＿ＺＦＮ１２の認識部位
配列番号１１＿ＺＦＮ１３の認識部位
配列番号１２＿ＺＦＮ１４の認識部位
配列番号１３＿上流の相同性アーム着地パッド
配列番号１４＿下流の相同性アーム着地パッド

Claims (21)

1. チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれた少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドを含むＣＨＯ細胞であって、
   ａ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または
   ｂ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる、ＣＨＯ細胞。
2. ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または
   ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する、請求項１に記載のＣＨＯ細胞。
3. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれる、請求項１または２に記載のＣＨＯ細胞。
4. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子であり、前記マーカー遺伝子は、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、請求項３に記載のＣＨＯ細胞。
5. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、前記ＣＨＯ細胞ゲノムの前記Ｓ１００Ａ遺伝子クラスターの一方または両方の対立遺伝子内に安定的に組込まれる、請求項１～４のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。
6. ＣＨＯ細胞を産生する方法であって、
   ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および
   ｂ）異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、前記異種ポリヌクレオチドは、前記ＣＨＯ細胞ゲノムのＳ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、
   ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または、
   ii）前記異種ポリヌクレオチドは、Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれる、方法。
7. ａ）前記上流のゲノム標的領域は、配列番号１のヌクレオチド３０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド２，９４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド４，７４０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド６，４８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド８，２８０～１９，０００、配列番号１のヌクレオチド１０，０２０～１９，０００、または配列番号１のヌクレオチド１１，８２０～１９，０００に対応し、および／または
   ｂ）前記下流のゲノム標的領域は、配列番号２のヌクレオチド１～１０，２６０に対応する、請求項６に記載の方法。
8. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれている、請求項６または７に記載の方法。
9. 前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、請求項８に記載の方法。
10. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、レポーター遺伝子および選択マーカー遺伝子からなる群より選択されるマーカー遺伝子であり、前記マーカー遺伝子は、発現カセットの一部分として前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に安定的に組込まれ、前記発現カセットは、部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接している、請求項６～９のいずれか１項に記載の方法。
11. 前記異種ポリヌクレオチドは、
    ａ）ジンクフィンガー核酸分解酵素（ＺＦＮ）、メガ核酸分解酵素、転写活性化因子様エフェクター核酸分解酵素（ＴＡＬＥＮ）、およびＣＲＩＳＰＲ関連核酸分解酵素からなる群より選択される配列特異的ＤＮＡ編集酵素、または
    ｂ）λインテグラーゼ、φＣ３１インテグラーゼ、Ｃｒｅ、Ｄｒｅ、およびＦｌｐからなる群より選択される部位特異的組換え酵素を使用して、
    前記ＣＨＯ細胞ゲノム内に導入される、請求項６～１０のいずれか１項に記載の方法。
12. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードする、請求項６～９のいずれか１項に記載の方法。
13. ａ）前記ＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡである、
    ｂ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、治療用タンパク質をコードする、および／または
    ｃ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質をコードする、
    請求項１２に記載の方法。
14. 前記ＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ-ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ-Ｋ１細胞、ＣＨＯ-ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ－Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞のいずれかの派生物である、請求項６～１０のいずれか１項に記載の方法。
15. ａ）ＣＨＯ細胞を提供する工程、および
    ａａ）第１の異種ポリヌクレオチドを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含み、前記第１の異種ポリヌクレオチドは、マーカー遺伝子であり、かつ部位特異的組換え酵素または配列特異的ＤＮＡ編集酵素の認識部位に隣接する発現カセットの一部分として、前記ＣＨＯ細胞ゲノムの前記Ｓ１００Ａ遺伝子クラスター内に安定的に組込まれ、
    ｉ）前記異種ポリヌクレオチドは、前記Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの上流で、前記配列番号１の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および／または
    ii）前記異種ポリヌクレオチドは、前記Ｓ１００Ａ３／Ａ４／Ａ５／Ａ６の主遺伝子クラスターの下流で、前記配列番号２のヌクレオチド１～１２，０００の配列に対応するゲノム標的領域内に組込まれ、および
    ｂ）工程ａａ）の前記第１の異種ポリヌクレオチドを含む前記発現カセットに代えて、第２の異種ポリヌクレオチドを含む発現カセットを前記ＣＨＯ細胞内に導入する工程を含む、請求項６に記載の方法。
16. ＣＨＯ細胞内に目的のタンパク質を産生する方法であって、
    ａ）請求項１～５のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞を提供すること、
    ｂ）工程ａ）の前記ＣＨＯ細胞を、前記目的のタンパク質の産生を可能にする条件で細胞培養培地内で培養すること、
    ｃ）前記目的のタンパク質を回収すること、を含む方法。
17. 前記目的のタンパク質を精製すること、を更に含む請求項１６に記載の方法。
18. 目的のタンパク質を高収率で産生するための請求項１～５のいずれか１項に記載の前記ＣＨＯ細胞の使用。
19. 前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、ＲＮＡおよび／またはタンパク質をコードする、請求項１～３のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。
20. ａ）前記ＲＮＡは、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、またはｓｈＲＮＡである、
    ｂ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、治療用タンパク質をコードする、および／または
    ｃ）前記少なくとも１つの異種ポリヌクレオチドは、抗体、融合タンパク質、サイトカイン、および成長因子からなる群より選択される治療用タンパク質をコードする、
    請求項１９に記載のＣＨＯ細胞。
21. 前記ＣＨＯ細胞は、ＣＨＯ-ＤＧ４４細胞、ＣＨＯ-Ｋ１細胞、ＣＨＯ-ＤＸＢ１１細胞、ＣＨＯ－Ｓ細胞、ＣＨＯグルタミン合成酵素（ＧＳ）欠損細胞、またはこれら細胞のいずれかの派生物である、請求項１～５のいずれか１項に記載のＣＨＯ細胞。

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