JP6842779B2 - 二本鎖核酸分子、およびその用途 - Google Patents

Description

本発明は、新規な二本鎖核酸分子、およびその用途に関する。より具体的には、ｍｉＲ−１４５様の二本鎖核酸分子、およびその発現ベクター、ならびにこれらを含む抗腫瘍剤、およびこれらを利用した腫瘍の予防および／または治療方法に関する。

ｍｉＲＮＡは、細胞内在性の、２０〜２５塩基程度の非コードＲＮＡである。ｍｉＲＮＡは、ゲノムＤＮＡ上のｍｉＲＮＡ遺伝子から、まず数百〜数千塩基程度の長さの一次転写物（ｐｒｉ−ｍｉＲＮＡ）として転写される。次いで、プロセシングを受けて数十塩基程度のヘアピン構造を有するｐｒｅ−ｍｉＲＮＡとなる。その後、核から細胞質内に移り、さらにプロセシングを受けて２０〜２５塩基程度の二量体（ガイド鎖およびパッセンジャー鎖）からなる成熟ｍｉＲＮＡとなる。成熟ｍｉＲＮＡは、そのうちのガイド鎖（アンチセンス鎖）がＲＩＳＣ（ＲＮＡ−Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｓｉｌｅｎｃｉｎｇ Ｃｏｍｐｌｅｘ）と呼ばれるタンパク質と複合体を形成し、標的遺伝子のｍＲＮＡに作用することで、標的遺伝子の翻訳を阻害する働きをすることが知られている。

ｍｉＲＮＡは細胞内で様々な働きをすることが知られているが、ある種のｍｉＲＮＡは、がん患者の病変組織において発現量が低下したり、また、その発現量を増加させることで抗腫瘍活性を示したりすることが知られている。

ｍｉＲ−１４５は、かような抗腫瘍活性を示すｍｉＲＮＡの一種であり、細胞周期、細胞増殖、がん細胞の浸潤または細胞死等に関わる複数の遺伝子を標的としており、腫瘍抑制因子のひとつであると考えられている。ｍｉＲ−１４５は、膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝臓がん（例えば、肝細胞がん（Ｈｅｐａｔｏｃａｒｃｉｎｏｍａ））、肺がん（例えば、非小細胞肺がん）、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽腔がん、口腔がん、および下垂体腫瘍といった様々な腫瘍において発現量が低下することも知られている（非特許文献１）。例えば、ｍｉＲ−１４５の発現を誘導することにより膀胱がん細胞、前立腺がん細胞および膵臓がん細胞の細胞生存率が低下したり（非特許文献２、５、８）、大腸がん細胞および乳がん細胞の増殖が抑制されたり（非特許文献３、６）、胃がん細胞の浸潤が抑制されたり（非特許文献７）することが報告されている。また、ｍｉＲ−１４５の発現を抑制することにより、白血病が発症した例も報告されている（非特許文献４）。

Ｓｈｉ−Ｙｕｎ Ｃｕｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｅｌｌｕｌａｒ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ （２０１４） １８， １９１３−１９２６ ＭＳ Ｏｓｔｅｎｆｅｌｄ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｇｅｎｅ （２０１０） ２９， １０７３−１０８４ Ｌｅａ Ｈ． Ｇｒｅｇｅｒｓｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｐｌｏｓ ＯＮＥ （２０１０） ５， ｅ８８３６ Ｄａｎｉｅｌ Ｔ． Ｓｔａｒｃｚｙｎｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ （２０１１） １１７， ５９５−６０７ ＭＳ Ｚａｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒｉｔｉｓｈ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ （２０１０） １０３， ２５６−２６４ Ｓｈｉｈｕａ Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ （２００９） ３４， １４６１−１４６６ Ｓｈｉ−Ｂｉｎ Ｊｉａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＯｎｃｏＴａｒｇｅｔｓ ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ （２０１６） ２０１６， ２３０５−２３１５ Ｓｈｅｅｍａ Ｋｈａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｃｏｔａｒｇｅｔ （２０１６） ５， ７５９９−７６０９

上記のように、ｍｉＲ−１４５は抗腫瘍剤の有効成分として期待されている。本発明者は、ｍｉＲ−１４５に関する研究を進める中で、驚くべきことに、ｍｉＲ−１４５のパッセンジャー鎖のヌクレオチド配列を人工的に改変して、ガイド鎖に対して完全に相補的なヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド鎖にした二本鎖核酸分子が優れた抗腫瘍活性を示すことを見出し、本発明の完成に至った。

試験例１における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例１において、がん関連分子（ｃ−ＭｙｃおよびＦａｓｃｉｎ）のタンパク質発現量をＪＢ−Ｖ２３５細胞を用いて解析した結果を示す。 試験例１において、がん関連分子（Ｆａｓｃｉｎ）のタンパク質発現量をＴ−２４細胞を用いて解析した結果を示す。 試験例２における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例３における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例４における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例５における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例６における、生存細胞数の評価結果を示す。 試験例７における、ＭＴＴアッセイの結果を示す。

以下、本発明の実施の形態を説明する。なお、本発明は、以下の実施の形態のみには限定されない。

本明細書において、範囲を示す「Ｘ〜Ｙ」は「Ｘ以上Ｙ以下」を意味する。また、特記しない限り、操作および物性等の測定は室温（２０〜２５℃）／相対湿度４０〜５０％ＲＨの条件で行う。

《二本鎖核酸分子》
本発明の一側面は、所定の塩基配列を含む第１ポリヌクレオチド鎖、および当該第１ポリヌクレオチド鎖と相補的な塩基配列を含む第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子（以下、「本発明に係る核酸分子」とも称する）に関する。

〈第１ポリヌクレオチド鎖〉
本発明において、第１ポリヌクレオチド鎖は、下記化学式（１）（配列番号１）で表される塩基配列を含むものである。

ただし、化学式（１）において、（Ｔ／Ｕ）はＴまたはＵを表し；Ｎはそれぞれ独立してＡ、Ｃ、Ｇ、Ｔ、Ｕまたは欠損を表す。

本発明に係る核酸分子は、細胞への取り込みやＲＮａｓｅに対する耐性の向上等を目的として、当業者に知られた手段によって化学的に修飾を施されたものであっても良い。このような化学的修飾としては、（ａ）第１ポリヌクレオチド鎖または第２ポリヌクレオチド鎖における３’末端への化学修飾基の付加、（ｂ）構成塩基の修飾糖部分を含む塩基による置換、および（ｃ）ホスホジエステル結合のリン原子修飾結合による置換などが挙げられる。

（ａ）３’末端への化学修飾基の付加
これらのうち、第１ポリヌクレオチド鎖に対して上記（ａ）の化学的修飾（３’末端への化学修飾基の付加）が施されたものは、化学式（１）においてｋが１である場合に相当する。この場合、具体的には、第１ポリヌクレオチド鎖の３’末端のヌクレオチドの塩基に結合した３’末端側のホスホジエステル結合の酸素原子に、「−Ｌ−Ｍ」で表される構造を有する基が結合している。化学式（１）においてｋが１であるとき、Ｌは、下記化学式（２ａ）〜（２ｇ）：

のいずれかで表される置換または非置換の環式化合物含有基を表すか、または、２以上の前記環式化合物含有基がそれぞれホスホジエステル結合を介して連結してなる２価の基を表し；Ｍは、水素原子またはヒドロキシル保護基を表す。

好ましい実施形態において、上記Ｌは、２以上（例えば、２〜１０個、好ましくは２〜６個、より好ましくは２〜４個、さらに好ましくは２〜３個、特に好ましくは２個）の前記環式化合物含有基がそれぞれホスホジエステル結合を介して連結してなる２価の基を表す。

ここで、上記環式化合物含有基が置換されている場合において当該環式化合物含有基を置換する置換基としては、例えば、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素などのハロゲン、メチル基、エチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ドデシル基などのアルキル基；フェニル基、ｐ−トリル基、キシリル基、クメニル基、ナフチル基、アンスリル基、フェナントリル基などのアリール基；メトキシ基、エトキシ基、ｔｅｒｔ−ブトキシ基などのアルコキシ基；フェノキシ基、ｐ−トリルオキシ基などのアリールオキシ基；メトキシカルボニル基、ブトキシカルボニル基、２−エチルヘキシルオキシカルボニル基、フェノキシカルボニル基等のアルコキシカルボニル基；アセトキシ基、プロピオニルオキシ基、ベンゾイルオキシ基などのアシルオキシ基；アセチル基、ベンゾイル基、イソブチリル基、アクリロイル基、メタクリロイル基、メトキサリル基などのアシル基；メチルスルファニル基、ｔｅｒｔ−ブチルスルファニル基などのアルキルスルファニル基；フェニルスルファニル基、ｐ−トリルスルファニル基などのアリールスルファニル基；メチルアミノ基、シクロヘキシルアミノ基などのアルキルアミノ基、ジメチルアミノ基、ジエチルアミノ基、モルホリノ基、ピペリジノ基などのジアルキルアミノ基；フェニルアミノ基、ｐ−トリルアミノ基等のアリールアミノ基などの他、ヒドロキシ基、カルボキシ基、ホルミル基、メルカプト基、スルホ基、メシル基、ｐ−トルエンスルホニル基、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、トリフルオロメチル基、トリクロロメチル基、トリメチルシリル基、ホスフィニコ基、ホスホノ基などが挙げられる。

また、化学式（２ａ）において、Ｚは、ＣＨまたはＮを表す。好ましい実施形態において、上記Ｌは、１または２以上の化学式（２ａ）で表される置換されていてもよい環式化合物含有基を含むものである。また、他の好ましい実施形態において、上記Ｌは、２以上（例えば、２〜１０個、好ましくは２〜６個、より好ましくは２〜４個、さらに好ましくは２〜３個、特に好ましくは２個）の前記化学式（２ａ）で表される環式化合物含有基がそれぞれホスホジエステル結合を介して連結してなる２価の基を表す。この際、Ｌは、前記化学式（２ａ）で表される環式化合物含有基のうち、ＺがＣＨであるもの（つまり、ベンゼン環を含む基）と、ＺがＮであるもの（つまり、ピリジン環を含む基）との双方を含む２価の基であることが好ましく、これらの基の１つずつからなる２価の基であることがより好ましい。また、さらに好ましい実施形態において、前記Ｌは、下記化学式（３）：

で表される構造を有するものである。

ここで、化学式（３）において、＊１はポリヌクレオチド鎖の３’末端のヌクレオチドの塩基に結合した３’末端側のホスホジエステル結合の酸素原子との結合部位を表し、＊２はＭとの結合部位を表す。

化学式（１）において、Ｍは、水素原子またはヒドロキシル保護基を表し、好ましくは水素原子を表す。したがって、最も好ましい形態において、「−Ｌ−Ｍ」で表される構造は、上記化学式（３）の＊２に水素原子が結合してなる基である（後述する実施例を参照）。なお、ヒドロキシル保護基としては、当該保護基により置換されるヒドロキシル基中の酸素を意図しない反応から保護する基であればよく、従来公知の知見が適宜参照されうる。好ましくは、ヒドロキシル保護基は、オリゴヌクレオチド誘導体の活性を維持して除去されるものである。こうしたヒドロキシル保護基としては、特に限定されないが、例えば、フルオレニルメトキシカルボニル（ＦＭＯＣ）基、ジメトキシトリチル（ＤＭＴ）基、モノメトキシトリチル基、トリフルオロアセチル基、レブリニル基、またはシリル基である。

（ｂ）構成塩基の修飾糖部分を含む塩基による置換
第１ポリヌクレオチド鎖に対して上記（ｂ）の化学的修飾（構成塩基の修飾糖部分を含む塩基による置換）が施される場合、第１ポリヌクレオチド鎖を構成する各ヌクレオチドは、それぞれ独立して、２’−Ｏ−メチル、２’−メトキシエトキシ、２’−フルオロ、２’−アリル、２’−Ｏ−［２（メチルアミノ）−２−オキソエチル］、４’−チオ、４’−（ＣＨ_２）_２−Ｏ−２’−架橋、２’−ロックド核酸または２’−Ｏ−（Ｎ−メチルカルバメート）からなる群から選択される修飾糖部分を含む塩基で置換されうる。なかでも、修飾糖部分は、２’−Ｏ−メチルまたは２’−フルオロ修飾を含むことが好ましい。

（ｃ）ホスホジエステル結合のリン原子修飾結合による置換
第１ポリヌクレオチド鎖に対して上記（ｃ）の化学的修飾（ホスホジエステル結合のリン原子修飾結合による置換）が施される場合、第１ポリヌクレオチド鎖を構成するホスホジエステル結合は、それぞれ独立して、下記化学式（４）：

で表されるリン原子修飾結合で置換されうる。

化学式（４）において、Ｘ^１は独立してＯ、ＳまたはＳｅを表し、Ｘ^２は独立してＯＨもしくはＯ⁻、ＳＨもしくはＳ⁻、ＳｅＨもしくはＳｅ⁻、炭素数１〜４個のアルキル基またはモルホリノ基を表す。ただし、Ｘ^１がＯを表しＸ^２がＯ⁻を表す場合、上記化学式（４）は通常のホスホジエステル結合を表すことから、このような場合は本発明の範囲に含まれないものとする。好ましい実施形態において、Ｘ^１はＯであり、Ｘ^２はＳＨもしくはＳ⁻、ＳｅＨもしくはＳｅ⁻、炭素数１〜４個のアルキル基またはモルホリノ基を表す。また、より好ましい実施形態において、Ｘ^１はＯであり、Ｘ^２はＳＨまたはＳ⁻を表す。さらに、特に好ましい実施形態において、Ｘ^１はＯであり、Ｘ^２はＳＨまたはＳ⁻を表す（この場合、リン原子修飾結合はホスホロチオエート結合である）。

内在性の成熟ｍｉＲ−１４５は、ヒトおよび多くの非ヒト動物において共通の塩基配列を有していることが知られており、ガイド鎖（アンチセンス鎖、ｍｉＲ−１４５−５ｐ）とパッセンジャー鎖（センス鎖、ｍｉＲ−１４５−３ｐ）とは、そのそれぞれの塩基配列の一部において相補性を欠く（下記表１を参照）。一方、本発明に係る核酸分子の第１ポリヌクレオチド鎖は、内在性の成熟ｍｉＲ−１４５のガイド鎖（配列番号８で表されるポリヌクレオチド配列を有する）に対して完全に相補的なヌクレオチド配列（配列番号１における「ＡＧＧＧＡ（Ｔ／Ｕ）（Ｔ／Ｕ）ＣＣ（Ｔ／Ｕ）ＧＧＧＡＡＡＡＣ（Ｔ／Ｕ）ＧＧＡＣ」の部分に相当する。以下、配列番号８で表されるポリヌクレオチド配列に対して完全に相補的な第１ポリヌクレオチド鎖の領域を、「相補性領域」とも称する。）を含む。かような核酸分子が優れた抗腫瘍活性を示す詳細なメカニズムは不明であるものの、核酸分子の３次元構造が、がん細胞のアポトーシス誘導と関連しているのではないかと推測される。

本明細書において「二本鎖核酸分子」は、その分子構造内に、第１ポリヌクレオチド鎖と第２ポリヌクレオチド鎖とのハイブリッド構造（完全マッチな塩基配列）を含む核酸分子である。二本鎖核酸分子は、一本鎖である第１ポリヌクレオチド鎖と、同じく一本鎖である第２ポリヌクレオチド鎖とがハイブリダイズした構造を有するものであってもよい。あるいは、内在性ｍｉＲＮＡの前駆体であるｐｒｉ−ｍｉＲＮＡやｐｒｅ−ｍｉＲＮＡがそうであるように、第１ポリヌクレオチド鎖と第２ポリヌクレオチド鎖とが、ループ領域を介して連結したヘアピン構造であってもよい。かようなループ領域の長さは、本発明の目的効果が制限されない限りにおいて特に制限されないが、例えば３〜１００塩基程度であり、好ましくは３〜１０塩基程度である。かようなヘアピン構造を有する核酸分子のループ領域は、生体内においてＤｉｃｅｒ等のｍｉＲＮＡ成熟化に関与するプロセシング機構によって除去され得る。

本明細書において「抗腫瘍」とは、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよび／またはｉｎ ｖｉｖｏにおいて、腫瘍の発生、浸潤、転移および／または着床を防止する予防的作用、ならびに腫瘍細胞の増殖抑制、腫瘍細胞の死滅および／または腫瘍の縮小をもたらす治療的作用の両方を含む用語として解釈される。抗腫瘍活性は、例えば、実施例に記載のように、核酸分子をトランスフェクションした細胞を所望の期間培養し、培養後の細胞数を計測することによって評価し得る。

本発明に係る核酸分子の第１ポリヌクレオチド鎖および第２ポリヌクレオチド鎖の塩基数は同一であっても異なっていてもよい。本発明に係る核酸分子の第１ポリヌクレオチド鎖および第２ポリヌクレオチド鎖の塩基数は、例えば、それぞれ独立に２３〜３０塩基である。本発明に係る核酸分子の第１ポリヌクレオチド鎖および第２ポリヌクレオチド鎖の塩基数は、それぞれ独立に、好ましくは２３〜２７塩基であり、より好ましくは２３〜２５塩基であり、更に好ましくは２５塩基である。

本発明に係る核酸分子の第１ポリヌクレオチド鎖はＤＮＡ鎖、ＲＮＡ鎖またはＤＮＡ／ＲＮＡキメラ鎖のいずれであってもよいが、抗腫瘍活性の観点から、相補性領域はＲＮＡ鎖であることが好ましい。すなわち、本発明の好ましい一実施形態では、上記配列番号１で表される塩基配列における（Ｔ／Ｕ）が、Ｕである。

配列番号１において、３’末端に位置する「ＮＮ」は、欠損、またはＡ、Ｃ、Ｇ、ＴおよびＵから選択される任意の残基（３’末端付加配列）であり、各「Ｎ」は同一であっても異なってもよい。また、配列番号１において、３’末端付加配列は１残基であっても２残基であってもよいが、抗腫瘍活性の観点から、好ましくは２残基であり、ＧおよびＴから選択される２残基であることがより好ましい。特に、配列番号１で表される塩基配列におけるＮＮが、ＧＧまたはＴＴである場合、高い抗腫瘍活性を発揮し得ることから好ましい。

〈第２ポリヌクレオチド鎖〉
本発明に係る核酸分子の第２ポリヌクレオチド鎖は、配列番号１と完全に相補的なヌクレオチド配列を含むＤＮＡ鎖、ＲＮＡ鎖またはＤＮＡ／ＲＮＡキメラ鎖である。抗腫瘍活性の観点から、第２ポリヌクレオチド鎖のうち、第１ポリヌクレオチド鎖の相補性領域とハイブリダイズする領域（以下、単に「ハイブリダイズ領域」とも称する。）はＲＮＡ鎖であることが好ましい。すなわち、好ましい一実施形態では、第２ポリヌクレオチド鎖が、下記化学式（５）（配列番号２）で表される塩基配列を含む。

化学式（５）（配列番号２）において、Ｎ’はそれぞれ独立してＡ、Ｃ、Ｇ、Ｔ、Ｕまたは欠損を表す。

第２ポリヌクレオチド鎖もまた、第１ポリヌクレオチド鎖について上述したように、当業者に知られた手段によって、上記（ａ）〜（ｃ）等の化学修飾を施されたものでありうる。すなわち、化学式（５）（配列番号２）において、ｋ、ＬおよびＭは上記と同様の定義である（上記（ａ）の修飾）。また、第２ポリヌクレオチド鎖を構成するヌクレオチドは、それぞれ独立して、２’−Ｏ−メチル、２’−メトキシエトキシ、２’−フルオロ、２’−アリル、２’−Ｏ−［２（メチルアミノ）−２−オキソエチル］、４’−チオ、４’−（ＣＨ_２）_２−Ｏ−２’−架橋、２’−ロックド核酸または２’−Ｏ−（Ｎ−メチルカルバメート）からなる群から選択される修飾糖部分を含む塩基で置換されていてもよく（上記（ｂ）の修飾）、第２ポリヌクレオチド鎖を構成するホスホジエステル結合は、それぞれ独立して、前記化学式（３）で表されるリン原子修飾結合で置換されていてもよい（上記（ｃ）の修飾）。

上記配列番号２において、３’末端に位置する「Ｎ’Ｎ’」が欠損の場合、成熟ｍｉＲ−１４５のガイド鎖と塩基配列が一致する。配列番号２において、抗腫瘍活性の観点から、Ｎ’がそれぞれ独立してＡ、Ｃ、Ｇ、ＴおよびＵからなる群から選択されることが好ましく、ＧおよびＴから選択される２残基であることがより好ましい。上記配列番号２において、３’末端側の「Ｎ’Ｎ’」がＧＧの場合に特に高い抗腫瘍活性を発揮し得る。すなわち、本発明の好ましい一実施形態では、配列番号２で表される塩基配列におけるＮ’Ｎ’が、ＧＧである。

特に、配列番号１で表される塩基配列におけるＮＮがＧＧであり（すなわち、第１ポリヌクレオチド鎖が下記配列番号３で表され）、配列番号２で表される塩基配列におけるＮ’Ｎ’がＧＧである（すなわち、第２ポリヌクレオチド鎖が下記配列番号４で表される）場合に、顕著な抗腫瘍活性を発揮し得る。

（製造方法）
本発明に係る核酸分子は、その塩基配列に基づき、従来公知の手法（核酸自動合成機を用いたホスホロアミダイト法による合成）により、化学的に合成することができる。また、このようにして製造された第１ポリヌクレオチド鎖および第２ポリヌクレオチド鎖の一方または双方の３’末端に上述した「−Ｌ−Ｍ」で表される修飾構造を導入する手法についても、従来公知の知見（例えば、国際公開第２００７／０９４１３５号パンフレットや特開２０１１−２５１９１２号公報など）が適宜参照されうる。さらに、特定箇所のホスホジエステル結合を上記化学式（３）で表されるリン原子修飾構造とする手法についても、従来公知の知見が適宜参照されうる。例えば、ホスホロアミダイト法による核酸合成の最終段階における３価のリンの５価への酸化を、酸化剤溶液に代えて硫化剤溶液を用いて行うことで、ホスホジエステル結合に代えてホスホロチオエート結合を導入することが可能である。

本発明の一側面は、本発明に係る核酸分子をコードする塩基配列を含むベクターに関する。かようなベクターとしては、生体内において本発明に係る核酸分子を発現し得るものであれば特に制限されない。例えば、適切なプロモーターを有するプラスミドベクター、ウイルスベクター等を、ベクターが導入される宿主に合わせて適宜選択し、プロモーターの下流に本発明に係る核酸分子をコードするＤＮＡを従来公知の手法により組込んだものを用いればよい。プロモーターとしては、特に制限されるものではないが、例えば、Ｕ６プロモーター、Ｈ１ ＲＮＡポリメラーゼＩＩＩプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＬＴＲプロモーター、ＣＭＶプロモーター、ＨＳＶ−ＴＫプロモーター等が例示できる。

プラスミドベクターとしては、例えば、ｐＳＩＮｓｉシリーズ、ｐＢＡｓｉシリーズ、ｐＳＩＲＥＮシリーズ（以上、タカラバイオ株式会社製）等が例示できる。プラスミドには、通常、アンピシリン、カナマイシン等の抗生物質に対する耐性遺伝子が含まれる。

ウイルスベクターとしては、例えば、例えばレトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター等が例示できる。

本発明に係る核酸分子をコードするＤＮＡは、第１ポリヌクレオチド鎖をコードするＤＮＡと第２ポリヌクレオチド鎖をコードするＤＮＡとが別々にプロモーターの下流にそれぞれ組込まれたもの（タンデム型）でもよく、第１ポリヌクレオチド鎖相当領域をコードするＤＮＡと第２ポリヌクレオチド鎖相当領域をコードするＤＮＡとがループ領域をコードするＤＮＡを介して連結されてひとつのプロモーターの下流に組込まれた上述のヘアピン構造を有するもの（ショートヘアピン型）でもよい。本発明に係る核酸分子をコードするＤＮＡの下流には、ターミネーターが含まれることが好ましい。

本発明に係る核酸分子をコードするＤＮＡのベクターへの組換え方法は、当業者に知られた手段によって行うことができ、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ ２ｎｄ ｅｄ．， ９．４７−９．５８， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂ． ｐｒｅｓｓ（１９８９）等が参酌される。

本発明の一側面は、本発明に係る核酸分子、または本発明に係る核酸分子をコードする塩基配列を含む上記のベクターを有効成分として含む、抗腫瘍剤が提供される。抗腫瘍剤は、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよび／またはｉｎ ｖｉｖｏにおいて、腫瘍の発生、浸潤、転移および／もしくは着床を防止する予防目的、または腫瘍細胞の増殖抑制、腫瘍細胞の死滅および／もしくは腫瘍の縮小をもたらす治療目的で使用され得る。本発明の一側面では、本発明に係る核酸分子、または上記の本発明に係る核酸分子をコードする塩基配列を含むベクターを被検者に投与することを含む、腫瘍の予防および／または治療方法が提供される。

本明細書において「有効成分として含む」とは、所望の活性（抗腫瘍活性）を発揮するのに充分な量（すなわち、有効量）で含むことを意味する。

本発明に係る抗腫瘍剤が適用される腫瘍は良性腫瘍および悪性腫瘍の両方を含み、所望の目的が達成される限り特に制限されるものではないが、例えば膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝臓がん、肺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽頭がん、口腔がん、下垂体腫瘍、胆道がん、脾臓がん、腎がん、子宮がん、精巣がん、甲状腺がん、脳腫瘍、造血器腫瘍、悪性黒色腫などが挙げられる。このうち、本発明に係る抗腫瘍剤は、膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝臓がん、肺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽頭がん、口腔がん、および下垂体腫瘍の治療用および／または予防用として特に有効に用いられ得る。すなわち、本発明の一実施形態では、膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝細胞がん、肺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽腔がん、口腔がん、および下垂体腫瘍からなる群から選択される腫瘍の予防および／または治療のための抗腫瘍剤が提供される。本発明の別の側面では、本発明に係る核酸分子、または本発明に係る核酸分子をコードする塩基配列を含む上記のベクターを被検者に投与することを含む、膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝細胞がん、肺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽腔がん、口腔がん、および下垂体腫瘍からなる群から選択される腫瘍の、予防および／または治療方法が提供される。がんは、原発性がんまたは転移性がんでありうる。また、「被検者」とは、例えばヒト、ならびにマウス、ラット、ハムスター、イヌ、ネコ等の非ヒト動物が含まれるが、好ましくはヒトである。

本発明に係る抗腫瘍剤は、固体または液体での投与形態に応じて製剤化することができる。経口投与としては、例えば、水薬（水溶液もしくは非水溶液または懸濁液）、錠剤、巨丸剤、カプセル剤、粉末薬、顆粒剤、およびペースト等が例示される。非経口投与としては、例えば、皮下、腹腔内、筋内もしくは静脈内注射のための製剤、または、膣内もしくは直腸内へ投与するための剤形へと製剤化されうる。本発明に係る抗腫瘍剤の有効成分が核酸分子である場合、好ましくは注射剤の形態として製剤化され、なかでもリポソーム−核酸分子が複合体化した形態に製剤化されることがさらに好ましい。

リポソームを用いることで核酸分子の細胞への取り込みが促進され、核酸分子の血中半減期を長期化することもできる。リポソームを調製する方法としては公知のものを採用することができ、例えばＦ．Ｓｚｏｋａ，Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（１９８０）９：４６７−５０８等が参酌される。

また、リポソームを用いた場合よりもバイオアベイラビリティ（ひいては抗腫瘍活性）をさらに向上させることを目的として、本発明にかかる核酸分子をユニット構造型医薬組成物（以下、「ユニット構造体」とも称する）の形態の抗腫瘍剤として製剤化することが好ましい。ここで、ユニット構造体の形態の抗腫瘍剤は、カチオン性ポリアミノ酸セグメントと親水性ポリマー鎖セグメントとを有するブロックコポリマーと、上述した本発明にかかる核酸分子とを含み、前記カチオン性ポリアミノ酸セグメントの正電荷と前記二本鎖核酸分子の負電荷とが相殺されて電気的に中性であり、前記二本鎖核酸分子が前記親水性ポリマー鎖セグメントに覆われている構造を有するものである（国際公開第２０１３／１６２０４１号パンフレットを参照）。このようにカチオン性ポリアミノ酸セグメントの電荷量と核酸の電荷量との関係を調整し、かつ、核酸を親水性ポリマー鎖セグメントで覆うことにより、血液中のタンパクや酵素に対する電荷的な誘引や物理的（電荷に依存しない）な接近に起因した該核酸の代謝または分解を防止できるので、カチオン性ポリマー型キャリアにおける核酸の血中滞留性能が大幅に向上する。このような構造を有するユニット構造型医薬組成物の詳細については、国際公開第２０１３／１６２０４１号パンフレットに記載されているが、以下に簡単に説明する。

本明細書において、「ユニット構造体が電気的に中性である」という状態は、ユニット構造体におけるカチオン性ポリアミノ酸セグメントのカチオン性基に由来する電荷の合計と核酸に由来する電荷の合計との相違が±１０％程度の範囲、より厳格には±５％程度の範囲、にある状態を排除しない。例えば、核酸の電荷の合計が４０である場合、ユニット構造体におけるカチオン性基に由来する電荷の合計が３６〜４４、厳格には３８〜４２の範囲、より厳格には３９〜４１の範囲、にある状態を排除しない。なお、本発明に用いられるブロックコポリマーにおいては、親水性ポリマー鎖セグメントおよびカチオン性ポリアミノ酸セグメントはそれぞれ、ある程度の多分散性を示しうる。よって、本明細書において、ブロックコポリマーの特性（例えば、分子量、重合度、慣性半径）について言及する際は、特段の記載がない限り、多分散性を示すポリマー全体の平均について言及するものとする。したがって、上記電荷量は、実際に測定して得られる重合度を平均重合度とみなし、重合度に基づいて算出するものとする。例えば、カチオン性ポリアミノ酸セグメントの重合度は、核磁気共鳴装置（日本電子社製、製品名「ＪＮＭ−ＥＣＳ４００」）を用い、溶媒：Ｄ_２Ｏ、温度：２５℃で、核磁気共鳴スペクトル（^１Ｈ−ＮＭＲスペクトル）を測定し、得られた^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルからポリリシン側鎖のメチレン基数を算出することにより求めることができる。

本明細書において、「核酸が親水性ポリマー鎖セグメントに覆われている」という状態は、親水性ポリマー鎖セグメントによって、核酸の全体が覆われている状態を意味する。より具体的には、核酸の全体が親水性ポリマー鎖セグメントの空間的な広がり（慣性半径）の中に包まれている状態を意味する。複数個のブロックコポリマーによってユニット構造体が形成されている場合、１つのブロックコポリマーの親水性ポリマー鎖セグメントが核酸の全体を覆っている必要はなく、それぞれのブロックコポリマーの親水性ポリマー鎖セグメントに由来する総合的な空間的広がりの中に核酸の全体が包まれていればよい。

ユニット構造体において、カチオン性ポリアミノ酸セグメントは核酸の伸びる方向に沿って直線状に配置されている形態でありうるが、カチオン性ポリアミノ酸セグメントの配置状態は核酸の負電荷を相殺しうる限りにおいて制限されず、例えば、核酸のらせん構造に沿って巻き付くように配置されている形態も可能である。

ユニット構造体は、不特定多数のブロックコポリマーと１つまたは複数の核酸とを含み、組成を特定することが困難な従来の複合体（例えば、従来の核酸内包コア−シェル型ポリマーミセル）とは異なり、ブロックコポリマーと核酸とを各々の電荷量に基づいて決定される所定の含有数ずつ含むこと点に１つの特徴がある。ある実施形態において、ユニット構造体は、ｍ×Ｎ個の核酸と、ｎ×Ｎ個のブロックコポリマーとを含み得る（ここで、Ｎは、１以上の整数であり、ｍおよびｎはそれぞれ独立して、例えば１〜９の整数である）。なお、ユニット構造体に含まれる核酸の数は、４０×対物レンズ（Ｃ−Ａｐｏｃｈｒｏｍａｔ、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ社製）およびＣｏｎｆｏＣｏｒ３モジュールを搭載した共焦点レーザスキャン顕微鏡（Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ社製、製品名「ＬＳＭ５１０」）を用い、蛍光相関分光法によって、１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液中で室温にて、Ｃｙ５−ｓｉＲＮＡ由来の蛍光分子数を測定し、核酸のみのときの蛍光分子数を基準にして求めることができる。一方、ユニット構造体に含まれるブロックコポリマーの数は、上述したカチオン性ポリアミノ酸セグメントの重合度およびユニット構造体中の核酸の数に加えて、分析用超遠心機（ベックマン・コールター社製、製品名「Ｏｐｔｉｍａ ＸＬ−Ａ」を用い、１５０ｍＭ ＮａＣｌを含む１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液中で２０℃にて測定されるユニット構造体の分子量の値をさらに用いて算出することができる。

ユニット構造体に含まれるブロックコポリマーの数は、核酸と電気的に中性なユニット構造体を構成でき、かつ、親水性ポリマー鎖セグメントの空間的な広がりによって核酸を覆うことができる限りにおいて制限はなく、例えば、１〜８の整数でありうる。なお、ユニット構造体は、２つ以上のブロックコポリマーを用いて構成することができるが、１つのブロックコポリマーを用いて構成することもできる。

ユニット構造体を形成しうるブロックコポリマーは、カチオン性ポリアミノ酸セグメントと親水性ポリマー鎖セグメントとを有する。ある実施形態において、カチオン性ポリアミノ酸セグメントは、ユニット構造体に含有されるべき核酸の負電荷を相殺してユニット構造体を電気的に中性にする正電荷を有し、親水性ポリマー鎖セグメントが、核酸を覆う鎖長を有する。親水性ポリマー鎖セグメントは、例えば、カチオン性ポリアミノ酸セグメントの端部（片端または両端）に配置されうる。また、当該端部に代えてまたはこれに加えて、カチオン性ポリアミノ酸セグメントの中間部分（好ましくは略中央部分）の側鎖にグラフトされてもよく、２つの隣接するカチオン性ポリアミノ酸セグメントの間に配置されてもよい。２つの隣接するカチオン性ポリアミノ酸セグメントの間に配置される場合、親水性ポリマー鎖セグメントは、これらカチオン性ポリアミノ酸セグメントの配列方向と交差する方向に伸びるように配置されることが好ましい。

ブロックコポリマーは、好ましくは複数の親水性ポリマー鎖セグメントを有する（例えば、１つのブロックコポリマーあたり親水性ポリマー鎖セグメントを２つ以上有する）。複数の親水性ポリマー鎖セグメントを有するブロックコポリマーによれば、核酸をより厳重に覆うことができるので、酵素等による代謝または分解を好適に回避しうる。その結果、血中滞留性により優れたユニット構造体が得られうる。各部位に配置される親水性ポリマー鎖セグメントの数は、例えば、１〜４でありうる。親水性ポリマー鎖セグメントは、多分岐型の親水性ポリマーの構造によって複数個が配置された状態にあってもよい。ブロックコポリマーに配置される親水性ポリマー鎖セグメントの数は４以上であってもよい。より具体的には、１つのブロックコポリマーによってユニット構造体が構成されている場合、当該１つのブロックコポリマーが親水性ポリマー鎖セグメントを４つ以上有していてもよい（例えば、カチオン性ポリアミノ酸セグメントの両端部のそれぞれに２つずつの親水性ポリマー鎖セグメントを有しうる）。また、ブロックコポリマーは、必要に応じて、親水性ポリマー鎖側末端に結合した標的結合部位をさらに有していてもよい。標的結合部位を有することにより、標的となる所望の部位への核酸の到達性を向上できる。なお、本明細書において、ブロックコポリマーは、当該ブロックコポリマーの薬学的に許容可能な塩も包含するものとする。

カチオン性ポリアミノ酸セグメントを構成するアミノ酸としては、側鎖にカチオン性基（代表的には、アミノ基、好ましくは一級アミノ基）を有する任意の適切なカチオン性アミノ酸が用いられうる。例えば、リシン、アルギニン、ヒスチジン、オルニチン等の塩基性アミノ酸、アスパラギン酸、グルタミン酸等の酸性アミノ酸にカチオン性基を導入したアミノ酸誘導体等が挙げられる。核酸の負電荷はリン酸基（またはリン原子修飾基）に由来するので、核酸は負の電荷を１ずつ（電荷量＝−１）略等間隔で有する。よって、核酸中の各リン酸基と好適に静電結合を形成する観点から、側鎖にカチオン性基を１つ有するアミノ酸、より具体的には血中ｐＨにおいて側鎖に正電荷を１つ有するアミノ酸が好ましく用いられうる。

カチオン性ポリアミノ酸セグメントにおいては、主鎖から側鎖上のカチオン性基までの距離が短いことが好ましい。具体的には、カチオン性基が好ましくは１〜６個、より好ましくは２〜４個の原子を介して主鎖に結合していることが好ましい。このような側鎖構造を有するブロックコポリマーを用いることにより、ユニット構造体の血中滞留性（結果として、核酸の血中滞留性）を向上させ得るからである。

カチオン性ポリアミノ酸セグメントは、好ましくはユニット構造体に含まれる核酸の負電荷に対して略等量、略半量、略１／４量、または略１／８量の正電荷を有する。カチオン性ポリアミノ酸セグメントがこのような電荷量を有することにより、ブロックコポリマーの含有数が異なる（例えば、１個、２個、４個、または８個）種々のユニット構造体が得られうる。

好ましい実施形態において、カチオン性ポリアミノ酸セグメントは、ユニット構造体に含まれる核酸の負電荷に対して略半量の正電荷を有する。血中ｐＨにおいて側鎖に正電荷を１つ有するアミノ酸によってこのような正電荷を有するポリアミノ酸セグメントを構成すると、１つの核酸に対して２つのブロックコポリマーを含むユニット構造体（代表的には、１つの核酸と２つのブロックコポリマーを含むユニット構造体）が形成され、当該ユニット構造体によれば、血中滞留性（結果として、核酸の血中滞留性）が向上しうるためである。当該効果が奏される理由は定かではないが、例えば、このような比率でブロックコポリマーを含むことにより、核酸の全長に渡ってカチオン性ポリアミノ酸セグメントが配置されやすくなり、その結果、核酸の負電荷を好適に相殺しうるものと推測される。

カチオン性ポリアミノ酸セグメントが含むアミノ酸残基数は、当該セグメントに所望される電荷量に応じて適切に設定され得る。カチオン性ポリアミノ酸セグメントは、本発明の効果を損なわない範囲において、非カチオン性アミノ酸残基を含んでいてもよい。非カチオン性アミノ酸残基の数は、カチオン性ポリアミノ酸セグメントが含むアミノ酸残基の総数の、例えば２０％以下、好ましくは１０％以下、より好ましくは５％以下、さらに好ましくは２％以下とすることができる。

親水性ポリマー鎖セグメントは、任意の適切な親水性ポリマーによって構成されうる。親水性ポリマーとしては、例えば、ポリ（エチレングリコール）、ポリサッカライド、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（アクリルアミド）、ポリ（アクリル酸）、ポリ（メタクリルアミド）、ポリ（メタクリル酸）、ポリ（メタクリル酸エステル）、ポリ（アクリル酸エステル）、ポリアミノ酸、ポリ（リンゴ酸）、ポリ（オキサゾリン）またはこれらの誘導体が挙げられる。ポリサッカライドの具体例としては、デンプン、デキストラン、フルクタン、ガラクタン等が挙げられる。これらのなかでも、ポリ（エチレングリコール）は、末端に種々の官能基を有する末端反応性ポリエチレングリコールが市販されており、また、種々の分子量のものや分岐型のものが市販されており、容易に入手できることから、好ましく用いられうる。

親水性ポリマー鎖セグメントの長さは、ユニット構造体に含まれる核酸の鎖長に応じて、適切な長さに設定されうる。具体的には、親水性ポリマー鎖セグメントは、核酸を覆うことができる長さに設定される。本発明においては、ユニット構造体中の少なくとも１つの親水性ポリマー鎖セグメントが、ユニット構造体に含まれる核酸の長さ（複数の核酸が含まれる場合には、各核酸の長さの合計）以上の慣性半径（Ｒｇ）を有する場合、核酸の全体が親水性ポリマー鎖セグメントに覆われていると判断される。また、核酸の一方の末端側に回転中心（例えば、ポリアミノ酸セグメントとの連結部位）を有するように配置された親水性ポリマー鎖セグメントと他方の末端側に回転中心を有するように配置された親水性ポリマー鎖セグメントとを含むユニット構造体については、核酸の両端の親水性ポリマー鎖セグメントの慣性半径（Ｒｇ）の合計がユニット構造体に含まれる核酸の長さ以上であれば、核酸の全体が親水性ポリマー鎖セグメントに覆われていると判断できる。

好ましい実施形態において、ユニット構造体は、１つの核酸分子と２つのブロックコポリマーとから構成され、当該ブロックコポリマーは、ポリアミノ酸鎖セグメントの片端に親水性ポリマー鎖セグメントとして２本鎖ＰＥＧを有する。それぞれのＰＥＧ鎖は、好ましくは１０，０００Ｄａ〜８０，０００Ｄａ、より好ましくは２０，０００Ｄａ〜６０，０００Ｄａ、さらに好ましくは３０，０００Ｄａ〜４５，０００Ｄａの分子量を有する。

上記ブロックコポリマーにおいて、カチオン性ポリアミノ酸セグメントと親水性ポリマー鎖セグメントとは、任意の適切な連結基によって連結されている。連結基としては、エステル結合、アミド結合、イミノ基、炭素−炭素結合、エーテル結合等が挙げられる。また、これらのセグメントは、生体内で開裂可能な連結基（例えば、ジスフィルド結合、ヒドラゾン結合、マレアメート結合、アセタール基）によって連結されていてもよい。なお、上記ブロックコポリマーのカチオン性ポリアミノ酸側末端および／または親水性ポリマー鎖側末端には、本発明の効果に悪影響を及ぼさない限り、任意の適切な修飾がなされうる。

本発明に係る抗腫瘍剤は、所望の製品形態に応じた製薬上許容されうる担体や、他の添加剤などとともに組成物を構成してもよい。また、本発明に係る抗腫瘍剤は、賦形剤などの添加剤と混合して非経口投与、または経口投与に適した形態で使用することができる。

「製薬上許容されうる」とは、正しい医学的判断の範囲内で、妥当な便益／リスク比に見合って、過剰な毒性、刺激、アレルギー反応等の問題や合併症なしに、ヒトおよび動物組織に接触させる使用に適した、化合物、材料、組成物、および／または投薬形態を指す。

「製薬上許容されうる担体」とは、体の一器官または一部から体の別の器官または一部へ本発明に係る抗腫瘍剤を運搬または輸送することに関与する、液体または固体の製薬上許容されうる充填剤、希釈剤、補形薬、溶剤、カプセル化材料、賦形剤、またはこれらの組成物を意味する。製薬上許容されうる担体としては、例えば、ラクトース、グルコースおよびスクロースのような糖；トウモロコシデンプンおよびバレイショデンプンのようなデンプン；カルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロースおよび酢酸セルロースのようなセルロースおよびその誘導体；トラガカント；ゼラチン；タルク；ココアバターおよび坐薬ワックスのような補形薬；落花生油、綿実油、ベニバナ油、ゴマ油、オリーブ油、トウモロコシ油およびダイズ油のような油脂；エチレングリコール、プロピレングリコールのようなグリコール；グリセリン、ソルビトール、マンニトール、ポリエチレングリコールおよびポリプロピレングリコールのようなポリオール；オレイン酸エチルおよびラウリン酸エチルのようなエステル；寒天；水酸化マグネシウムおよび水酸化アルミニウムのような緩衝剤；アルギン酸；パイロジェンフリー水；等張食塩液；リンガー溶液；エチルアルコール；リン酸緩衝溶液のような緩衝液等が例示できる。

その他、湿潤剤、乳化剤、潤滑剤、着色剤、放出剤、被覆剤、甘味料、香味剤、香料、保存料、酸化防止剤もまた、抗腫瘍剤中に存在してもよい。

製薬上許容されうる酸化防止剤の例には以下のものがある：アスコルビン酸、塩酸システイン、硫酸水素ナトリウム、二亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等のような水溶性酸化防止剤；パルミチン酸アスコルビル、ブチルヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）、ブチルヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）、レシチン、没食子酸プロピル、α−トコフェロール等のような油溶性酸化防止剤；ならびにクエン酸、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ソルビトール、酒石酸、リン酸等のような金属キレート剤も必要に応じて含有させることができる。

非経口投与に好適な形態に製剤化された抗腫瘍剤は、本発明に係る化合物とともに、１つまたは複数の製薬上許容されうる溶媒、分散剤、乳化剤、酸化防止剤、緩衝剤、静菌剤、等張化剤、および／または懸濁剤を含みうる。非経口投与用とする場合には、本発明に係る化合物を精製水、リン酸緩衝液等の適当な緩衝液、生理食塩水、リンガー溶液（リンゲル液）、ロック溶液等の生理的塩溶液、エタノール、グリセリンおよび界面活性剤等と適当に組み合わせた、水溶液、非水溶液、懸濁液、リポソームまたはエマルジョンとして製剤化され得る。好ましくは注射用滅菌水溶液として製剤化され、静脈内、腹腔内、皮下、筋肉内等に投与される。この際、製剤は、生理学的なｐＨ、好ましくは６〜８の範囲内のｐＨであることが好ましい。また、ローション剤、懸濁剤、乳剤等の液状製剤、ゲル剤、クリーム剤、軟膏等の半固形製剤、散剤、粉剤（粉状）、用事調製用の固形製剤、または貼付剤などの外用剤として、標的部位およびその周辺部位に経皮的に投与してもよい。さらに、坐薬用基剤を用いた坐薬として投与されることも可能である。上述したうち、好ましい製剤や投与形態等は、担当の医師によって選択され得る。ローション剤、クリーム剤または軟膏などの半固形製剤は、本発明に係る化合物を、脂肪、脂肪油、ラノリン、ワセリン、パラフィン、蝋、硬膏剤、樹脂、プラスチック、グリコール類、高級アルコール、グリセリン、水、乳化剤および懸濁剤などからなる群から選択される一種以上と適宜混和することにより得られる。

抗腫瘍剤は、保存料、湿潤剤、乳化剤および分散剤のような補助薬や、例えば、パラベン、クロロブタノール、ソルビン酸フェノール等の種々の抗菌剤および抗真菌剤、糖、塩化ナトリウム等の等張剤を含めることもできる。さらに、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンのような吸収を遅延させる作用物質を用いることにより、製剤の吸収持続性を調整することもできる。

本発明に係る抗腫瘍剤の投与量は、対象疾患、投与対象、投与経路などにより差異がある。例えば、対象となる者の体重等の条件によって用量は容易に変動しうるため、投与量は当業者によって適宜選択されうるが、有効成分として、例えば０．００１〜１０００ｍｇ／日／ｋｇ体重の範囲内であり、０．０１〜１００ｍｇ／日／ｋｇ体重の範囲内であることが望ましい。

本発明に係る抗腫瘍剤は、必要に応じて、他の抗腫瘍剤と組み合わせて用いてもよい。他の抗腫瘍剤としては、例えば、フルオロウラシル、テガフール、テガフール・ウラシル配合剤、テガフール・ギメラシル・オテラシルカリウム配合剤、ドキシフルリジン、カペシタビン、カルモフール、シタラビン、シタラビンオクホスファート、エノシタビン、ゲムシタビン、アザシチジン、デシタビン、フロクスウリジン、エチニルシチジン、６−メルカプトプリン、フルダラビン、ペントスタチン、ネララビン、６−チオグアニン、クラドリビン、クロファラビン、メトトレキサート、ペメトレキセド、ラルチトレキセド、ノラトレキセド、プララトレキサート、トリメトレキサート、イダトレキサート、ヒドロキシカルバミド、シスプラチン、カルボプラチン、ネダプラチン、オキサリプラチン、サトラプラチン、ミリプラチン、ロバプラチン、スピロプラチン、テトラプラチン、オルマプラチン、イプロプラチン、シクロホスファミド、イホスファミド、ブスルファン、メルファラン、ナイトロジェンマスタード、クロラムブシル、グルフォスファミド、マフォスファミド、エストラムスチン、ニムスチン、ラニムスチン、カルムスチン、ロムスチン、セムスチン、ストレプトゾシン、プロカルバジン、ダカルバジン、テモゾロミド、チオテパ、ヘキサメチルメラミン、トラベクテジン、アパジコン、アルトレタミン、ベンダムスチン、ミトラクトール、アントラサイクリン系抗生物質（例えば、ドキソルビシン、ダウノルビシン、ピラルビシン、エピルビシン、イダルビシン、アクラルビシン、アムルビシン、ゾルビシン、バルルビシン、リポソーマルドキソルビシン、ピクサントロン、およびミトキサントロン）、マイトマイシンＣ、ブレオマイシン、ペプロマイシン、アクチノマイシンＤ、ジノスタチンスチマラマー、トポテカン、イリノテカン、エキサテカン、ノギテカン、エトポシド、テニポシド、ゾブゾキサン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビンデシン、ビノレルビン、ビンフルニン、モノメチルアウリスタチンＥ、エポチロンＢ、エリブリン、パクリタキセル、ドセタキセル、カバジタキセル、タモキシフェン、トレミフェン、ラロキシフェン、フルベストラント、アナストロゾール、エキセメスタン、レトロゾール、アミノグルテチミド、ホルメスタン、ボロゾール、メチルテストステロン、メドロキシプロゲステロン、メゲストロール、ゲストノロン、メピチオスタン、フルタミド、ニルタミド、ビカルタミド、フィナステリド、クロルマジノン、エストラムスチン、ジエチルスチルベストロール、エチニルエストラジオール、ホスフェストロール、リン酸ポリエストラジオール、プレドニゾロン、デキサメタゾン、ミトタン、ゴセレリン、リュープロレリン、ブセレリン、トリプトレリン、ベバシズマブ、アフリベルセプト、ＭＶ８３３、セツキシマブ、ペガプタニブ、パゾパニブ、ＣＢＯ−Ｐ１１、スニチニブ、ソラフェニブ、ラニビズマブ、バタラニブ、アキシチニブ、ザクティマ、ＮＸ１８３８、アンジオザイム、セマキサニブ、レスタウルチニブ、ＴＳＵ−６８、ＺＤ４１９０、テムシロリムス、アンジオスタチン、エンドスタチン、ＴＮＰ−４７０、ＣＰ−５４７６３２、ＣＰＥ−７０５５、ＫＲＮ６３３、ＡＥＥ７８８、ＩＭＣ−１２１１Ｂ、ＰＴＣ−２９９、Ｅ７８２０、レンバチニブ、マリマスタット、ネオバスタット、プリノマスタット、メタスタット、ＢＭＳ−２７５２９１、ＭＭＩ２７０、Ｓ−３３０４、ビタキシン、オロチン酸カルボキシアミドトリアゾール、サリドマイド、ゲニステイン、インターフェロンα、およびインターロイキン１２等が挙げられる。

本発明の効果を、以下の実施例および比較例を用いて説明する。ただし、本発明の技術的範囲が以下の実施例のみに制限されるわけではない。

（試験例１）
・Ｓｙｎ−１
以下の配列番号３で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、配列番号４で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１）を準備し、膀胱がん細胞（ＪＢ−Ｖ２３５細胞）の増殖抑制活性を評価した。なお、以下の配列番号３において、３’末端側の２残基（ＧＧ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分が相補性領域に相当する。また、以下の配列番号４において、３’末端側の２残基（ＧＧ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分がハイブリダイズ領域に相当する。

従来のｍｉＲ−１４５アナログ（Ａ−ｍｉＲ−１４５）は、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｉｇｉｅｓ社より購入して用いた。

ＪＢ−Ｖ２３５細胞（ヒト膀胱がん細胞）は、ヒューマンサイエンス資源バンク（ＨＳＲＲＢ、財団法人ヒューマンサイエンス振興財団）より入手し、ＲＰＭＩ１６４培地（１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＣＳ）添加）を用いて３７℃のインキュベーター（空気／ＣＯ_２＝９５／５（ｖ／ｖ））内で培養した。

５〜６×１０^４細胞／ｍｌとなるように、６ウェルプレートにＪＢ−Ｖ２３５細胞を播種し、その翌日、上記のＳｙｎ−１またはＡ−ｍｉＲ−１４５（いずれも終濃度１０ｎＭ）をトランスフェクションした。なお、トランスフェクションにはカチオン性リポソーム（Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標） ＲＮＡｉＭＡＸ、ライフテクノロジーズ社）を用い、製造業者のプロトコルに従って行った。

トランスフェクション直後を０時間目とし、その後、７２時間まで培養を行い、トリパンブルー染色法により生存細胞数を計測した。陰性対照区（Ｃｏｎｔ）としてダーマコン社より購入したコントロールｍｉＲＮＡを用い、陰性対照区における生存細胞数を１００％とした場合における相対的な細胞数として、生存細胞（％）を算出した。その結果を図１に示す（＊：ｐ＜０．０５）。なお、統計分析はグラフパッドプリズムソフトウェアシステム（グラフパッドソフトウェア社）を用い、両側スチューデントｔ検定により統計有意性を評価した。値は６〜１２ウェルの細胞を評価した平均±標準偏差として示した。

図１に示すとおり、本発明であるＳｙｎ−１、およびＡ−ｍｉＲ−１４５のいずれにおいても、対照区と比較して生存細胞数が減少していた。Ｓｙｎ−１は、従来のｍｉＲ−１４５アナログであるＡ−ｍｉＲ−１４５と比較しても、有意に生存細胞数が減少していた。

（ウェスタンブロッティング；ＪＢ−Ｖ２３５細胞）
上記と同様の手法により、Ｓｙｎ−１またはＡ−ｍｉＲ−１４５（いずれも終濃度５ｎＭ）をＪＢ−Ｖ２３５細胞にトランスフェクションした。トランスフェクションから７２時間後に細胞を回収し、細胞をセルスクレイパーで回収し、以下のウェスタンブロッティングによりがん関連分子（ｃ−ＭｙｃおよびＦａｓｃｉｎ）の発現量を解析した。

より具体的には、氷冷した溶解バッファー（１０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、１％（ｗ／ｖ）ＮＰ−４０、０．１％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸、０．１％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、および１％（ｗ／ｖ）プロテアーゼインヒビターカクテル（シグマ−アルドリッチ社）中で細胞をホモジナイズし、氷上で２０分間静置した。ホモジネートを１３，０００ｒｐｍで２０分間（４℃）遠心分離した後、上清をウェスタンブロッティング用試料として採取した。試料中のタンパク質含有量は、ＤＣプロテインアッセイキット（バイオラッド社製）を用いて測定した。試料（１０μｇのタンパク質量）を１０．０または１２．５％（ｗ／ｖ）のポリアクリルアミドゲルを用いたＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離し、ＰＶＤＦ膜（パーキンエルマーライフサイエンス社）に転写した。５％（ｗ／ｖ）脱脂乳液（０．１％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０を含むＰＢＳ（ＰＢＳ−Ｔ）で調製）中で１時間インキュベートして非特異的結合をブロックした。その後、２％（ｗ／ｖ）ウシ血清アルブミンおよび０．０１％（ｗ／ｖ）アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳ−Ｔで適度に希釈した１次抗体（抗ｃ−Ｍｙｃ抗体（サンタクルズ社）、抗ファスシン（Ｆａｓｃｉｎ）抗体（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ社））と共に、４℃で膜を一晩インキュベートした。次いで、ＰＢＳ−Ｔで膜を３回洗浄し、二次抗体（ＨＲＰ−結合抗ウサギ、またはマウスＩｇＧ抗体、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ社）と共に室温でさらにインキュベートした。次いで、ＰＢＳ−Ｔで膜を３回洗浄した。免疫ブロットは、アマシャムＥＣＬプラスウエスタンブロッティング検出試薬（ＧＥヘルスケア社）を用いて可視化した。抗β−Ａｃｔｉｎ抗体（シグマ−アルドリッチ社）を用いて同じ膜を再インキュベートすることにより、β−Ａｃｔｉｎを内部標準として用いた。

ウェスタンブロットの結果を図２に示す。図２に示す通り、ｃ−ＭｙｃおよびＦａｓｃｉｎの発現量が、Ｓｙｎ−１のトランスフェクションにより顕著に低下した。

続いて、Ｓｙｎ−１またはＡ−ｍｉＲ−１４５をヒト膀胱がん細胞であるＴ−２４細胞にトランスフェクションした。なお、Ｔ−２４細胞は、ヒューマンサイエンス資源バンク（ＨＳＲＲＢ、財団法人ヒューマンサイエンス振興財団）より入手し、ＲＰＭＩ１６４培地（１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＣＳ）添加）を用いて３７℃のインキュベーター（空気／ＣＯ_２＝９５／５（ｖ／ｖ））内で培養した。

トランスフェクション操作は具体的に、０．５〜１×１０^５細胞／ｍｌとなるように、６ウェルプレートにＴ−２４細胞を播種し、その翌日、上記のＳｙｎ−１またはＡ−ｍｉＲ−１４５（いずれも終濃度１０ｎＭ）をトランスフェクションした。なお、トランスフェクションにはカチオン性リポソーム（Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標） ＲＮＡｉＭＡＸ、ライフテクノロジーズ社）を用い、製造業者のプロトコルに従って行った。

トランスフェクション直後を０時間目とし、その後、７２時間まで培養を行った。この際、陰性対照区（Ｃｏｎｔ）としてダーマコン社より購入したコントロールｍｉＲＮＡを用いた。次いで、培養後に細胞を回収し、細胞をセルスクレイパーで回収し、上記と同様の手法によりウェスタンブロッティングを行って、がん関連分子（Ｆａｓｃｉｎ）の発現量を解析した。ウェスタンブロットの結果を図３に示す。図３に示す通り、Ｆａｓｃｉｎの発現量が、Ｓｙｎ−１のトランスフェクションにより顕著に低下した。

（試験例２）
・Ｓｙｎ−２
上記の配列番号３で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、以下の配列番号５で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−２）を準備した。なお、以下の配列番号５において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分がハイブリダイズ領域に相当する。

・Ｓｙｎ−３
以下の配列番号６で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、上記の配列番号４で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−３）を準備した。なお、以下の配列番号６において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分が相補性領域に相当する。

上記のＳｙｎ−１、Ｓｙｎ−２、およびＳｙｎ−３を用いて、下記方法に従って膀胱がん細胞（Ｔ−２４細胞）の増殖抑制活性を評価した。下記表１に、各二本鎖核酸分子における第１ポリヌクレオチド鎖と第２ポリヌクレオチド鎖との対応関係を示す。下記表１に示す通り、本発明に係る二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１、Ｓｙｎ−２、およびＳｙｎ−３）では、３’末端付加配列を除き、第１ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列と第２ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列は相補的な関係である。

Ｔ−２４細胞（ヒト膀胱がん細胞）は、ヒューマンサイエンス資源バンク（ＨＳＲＲＢ、財団法人ヒューマンサイエンス振興財団）より入手し、ＲＰＭＩ１６４培地（１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＣＳ）添加）を用いて３７℃のインキュベーター（空気／ＣＯ_２＝９５／５（ｖ／ｖ））内で培養した。

試験例１と同様の手法により二本鎖核酸分子のトランスフェクションを行い、その後７２時間細胞を培養して生存細胞数を計測した。その結果を図４に示す。

図４に示すとおり、本発明であるＳｙｎ−１、Ｓｙｎ−２およびＳｙｎ−３のいずれにおいても、対照区と比較して生存細胞数が減少していた。また、Ｓｙｎ−１は、生存細胞数が特に減少していた。

（試験例３）
上記のＳｙｎ−１、Ｓｙｎ−２、およびＳｙｎ−３を用いて、大腸がん細胞（ＤＬＤ−１細胞）の増殖抑制活性を評価した。

ＤＬＤ−１細胞（ヒト大腸がん細胞）は、ヒューマンサイエンス資源バンク（ＨＳＲＲＢ、財団法人ヒューマンサイエンス振興財団）より入手し、ＲＰＭＩ１６４培地（１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＣＳ）添加）を用いて３７℃のインキュベーター（空気／ＣＯ_２＝９５／５（ｖ／ｖ））内で培養した。

試験例１と同様の手法により二本鎖核酸分子のトランスフェクションを行い、その後７２時間細胞を培養して生存細胞数を計測した。その結果を図５に示す。

図５に示すとおり本発明であるＳｙｎ−１、Ｓｙｎ−２およびＳｙｎ−３のいずれにおいても、対照区と比較して生存細胞数が減少していた。また、Ｓｙｎ−１は、生存細胞数が特に減少していた。

（試験例４）
Ｓｙｎ−１およびＡ−ｍｉＲ−１４５を用いて、終濃度が５ｎＭ、１０ｎＭまたは１５ｎＭとなるようにＴ−２４細胞にトランスフェクションした。トランスフェクションから７２時間後、試験例１と同様に生存細胞数を計測した。その結果を図６に示す。

図６に示す通り、Ｓｙｎ−１は濃度依存的にがん細胞の増殖を抑制した。

（試験例５）
・Ｓｙｎ−４
上記の配列番号３で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、以下の配列番号９で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−４）を準備した。なお、以下の配列番号９において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分がハイブリダイズ領域に相当する。また、配列番号９において「＾」の符号で示される４箇所のホスホジエステル結合はホスホロチオエート結合で置換されたものである。さらに、配列番号９において下線が付された塩基は２’−フルオロの修飾糖部分を含むものであり、二重下線が付された塩基は２’−Ｏ−メチルの修飾糖部分を含むものである。

・Ｓｙｎ−５
以下の配列番号１０で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、上記の配列番号４で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−５）を準備した。なお、以下の配列番号１０において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分が相補性領域に相当する。また、配列番号１０において「＾」の符号で示される４箇所のホスホジエステル結合はホスホロチオエート結合で置換されたものである。さらに、配列番号１０において下線が付された塩基は２’−フルオロの修飾糖部分を含むものであり、二重下線が付された塩基は２’−Ｏ−メチルの修飾糖部分を含むものである。

・Ｓｙｎ−６
上記の配列番号３で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、以下の配列番号１１で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−６）を準備した。なお、以下の配列番号１１において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分がハイブリダイズ領域に相当する。また、配列番号１１において「＾」の符号で示される４箇所のホスホジエステル結合はホスホロチオエート結合で置換されたものである。さらに、配列番号１１において下線が付された塩基は２’−フルオロの修飾糖部分を含むものであり、二重下線が付された塩基は２’−Ｏ−メチルの修飾糖部分を含むものである。

・Ｓｙｎ−７
以下の配列番号１２で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、上記の配列番号４で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−７）を準備した。なお、以下の配列番号１２において、３’末端側の２残基（ＴＴ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分が相補性領域に相当する。また、配列番号１２において「＾」の符号で示される４箇所のホスホジエステル結合はホスホロチオエート結合で置換されたものである。さらに、配列番号１２において下線が付された塩基は２’−フルオロの修飾糖部分を含むものであり、二重下線が付された塩基は２’−Ｏ−メチルの修飾糖部分を含むものである。

上記のＳｙｎ−１、およびＳｙｎ−４〜Ｓｙｎ−７を用いて、上述した試験例２と同様の方法に従って膀胱がん細胞（Ｔ−２４細胞）の増殖抑制活性を評価した。下記表２に、各二本鎖核酸分子における第１ポリヌクレオチド鎖と第２ポリヌクレオチド鎖との対応関係を示す。下記表２に示す通り、本発明に係る二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１、Ｓｙｎ−４〜Ｓｙｎ−７）では、３’末端付加配列を除き、第１ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列と第２ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列は相補的な関係である。

上述した増殖抑制活性試験の結果を図７に示す。

図７に示すとおり、本発明であるＳｙｎ−１、およびＳｙｎ−４〜Ｓｙｎ−７のいずれにおいても、対照区と比較して生存細胞数が減少していた。また、Ｓｙｎ−１は、生存細胞数が特に減少していた。

（試験例６）
・Ｓｙｎ−８
以下の配列番号１３で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、上記の配列番号４で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−８）を準備した。なお、以下の配列番号１３においては、３’末端側に３’末端付加配列が存在しない。

・Ｓｙｎ−９
以下の配列番号１４で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、配列番号１５で表される第２ポリヌクレオチド鎖とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−９）を準備した。なお、配列番号１４で表される第１ポリヌクレオチドの構造は、配列番号１３で表されるポリヌクレオチドの３’末端に上記化学式（３）で表される構造（＊２には水素原子が結合；ベンゼンピリジン（ＢＰ）構造）が付加された構造に相当する。また、配列番号１５で表される第２ポリヌクレオチドの構造は、配列番号４で表されるポリヌクレオチドの３’末端付加配列（ＧＧ）が上記化学式（３）で表される構造（＊２には水素原子が結合；ベンゼンピリジン（ＢＰ）構造）で置換された構造に相当する。

・Ｓｙｎ−１０
上記の配列番号３で表される第１ポリヌクレオチド鎖（３’末端付加配列（ＧＧ）を有する）と、上記の配列番号１５で表される第２ポリヌクレオチド鎖（３’末端にＢＰ構造を有する）とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１０）を準備した。

・Ｓｙｎ−１１
上記の配列番号１３で表される第１ポリヌクレオチド鎖（３’末端付加配列を有さない）と、上記の配列番号１５で表される第２ポリヌクレオチド鎖（３’末端にＢＰ構造を有する）とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１１）を準備した。

・Ｓｙｎ−１２
以下の配列番号１６で表される第１ポリヌクレオチド鎖と、上記の配列番号８で表される第２ポリヌクレオチド鎖（ｈｓａ−ｍｉＲ−１４５−５ｐ）とを有する二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１２）を準備した。なお、以下の配列番号１６において、３’末端側の２残基（ＵＵ）が３’末端付加配列であり、それ以外の部分が相補性領域に相当する。また、配列番号１６において「＾」の符号で示される４箇所のホスホジエステル結合はホスホロチオエート結合で置換されたものである。さらに、配列番号１６において下線が付された塩基は２’−フルオロの修飾糖部分を含むものであり、二重下線が付された塩基は２’−Ｏ−メチルの修飾糖部分を含むものである。

下記表３に、各二本鎖核酸分子における第１ポリヌクレオチド鎖と第２ポリヌクレオチド鎖との対応関係を示す。下記表３に示す通り、本発明に係る二本鎖核酸分子（Ｓｙｎ−１、Ｓｙｎ−８〜Ｓｙｎ−１１）では、３’末端付加配列を除き、第１ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列と第２ポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド配列は相補的な関係である。一方、野生型ｍｉＲ−１４５と同一の塩基配列を有するＳｙｎ−１２では、３’末端不可配列の他に４箇所のミスマッチが存在する。

上記のＳｙｎ−１、およびＳｙｎ−８〜Ｓｙｎ−１１を用いて、上述した試験例１と同様の方法に従って膀胱がん細胞（ＪＢ−Ｖ２３５細胞）の増殖抑制活性を評価した。増殖抑制活性試験の結果を図８に示す。

図８に示すとおり、本発明であるＳｙｎ−１、およびＳｙｎ−８〜Ｓｙｎ−１１のいずれにおいても、対照区と比較して生存細胞数が減少していた。また、Ｓｙｎ−１、Ｓｙｎ−８、Ｓｙｎ−９およびＳｙｎ−１１は、生存細胞数が特に減少しており、さらに、Ｓｙｎ−１およびＳｙｎ−９では生存細胞数がより有意に減少していた。

（試験例７）
・ユニット構造（ｕｎｉｔＰＩＣ）型医薬組成物の調製
国際公開第２０１３／１６２０４１号パンフレットの実施例の記載に準じて、ブロックコポリマーを調製した。具体的には、親水性ポリマー鎖セグメントが２本のＰＥＧ（分子量はそれぞれ１０ｋＤａ）から構成されており、カチオン性ポリアミノ酸セグメントが２０個のオルニチン残基で構成されている構造を有するブロックコポリマーを調製した。

続いて、二本鎖核酸分子と、上記のようにして調製されたブロックコポリマーとを、１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．３）に別々に溶解し、Ｎ／Ｐ比（［ブロックコポリマー中のカチオン性基の総数（Ｎ）］／［核酸中のリン酸基の総数（Ｐ）］として定義される）が５となるように混合することによって、ユニット構造（ｕｎｉｔＰＩＣ）型医薬組成物を調製した。ここで、二本鎖核酸分子としては、コントロールｍｉＲＮＡ（陰性対照区（Ｃｏｎｔ）；ダーマコン社より購入したもの）、Ａ−ｍｉＲ−１４５、または上記で合成したＳｙｎ−１、Ｓｙｎ−９もしくはＳｙｎ−１２をそれぞれ用いた。

一方、上記と同様の二本鎖核酸分子をそれぞれリポソーム中に封入することにより、リポソーム型医薬組成物を調製した。具体的には、カチオニックリポソームと二本鎖核酸分子とを反応液中でインキュベートすることにより、リポソーム型医薬組成物を調製した。

このようにして調製されたユニット構造型医薬組成物およびリポソーム型医薬組成物をそれぞれ用いて、ＭＴＴアッセイを行った。具体的には、３次元に培養したＪＢ−Ｖ２３５細胞を用い、細胞をバッファーにて融解して、ＭＴＴアッセイを行った。ＭＴＴアッセイの結果を図９に示す。なお、図９に示す結果においては、吸光度（陰性対照区（Ｃｏｎｔ）に対する相対値％）の値が小さいほど、がん細胞の増殖がより抑制されていることを示す。

図９に示すとおり、本発明であるＳｙｎ−１およびＳｙｎ−９は、Ｃｏｎｔ並びにＡ−ｍｉＲ−１４５およびＳｙｎ−１２（化学修飾されているもののミスマッチを有する二本鎖核酸分子）と比較して高いがん細胞増殖抑制効果を示した。また、Ｓｙｎ−１およびＳｙｎ−９の双方において、ユニット構造（ｕｎｉｔＰＩＣ）型医薬組成物の形態の方がリポソーム型医薬組成物の形態と比較して有意に高いがん細胞増殖抑制効果を示した。

この出願は、２０１６年１０月３１日に出願された日本国特許出願第２０１６−２１３１３１号に基づいており、その出願は全体として参照により引用されている。

Claims (5)

1. 以下のいずれかの二本鎖核酸分子：
   下記の配列番号３で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号４で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子；
   下記の配列番号１３で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号４で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子；
   下記の配列番号１４で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号１５で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子：
   ただし、ｋは０または１を表し；Ｌは、下記化学式（２ａ）〜（２ｇ）：
   化学式（２ａ）において、ＺはＣＨまたはＮを表す、
   のいずれかで表される置換または非置換の環式化合物含有基を表すか、または、２以上の前記環式化合物含有基がそれぞれホスホジエステル結合を介して連結してなる２価の基を表し；Ｍは、水素原子またはヒドロキシル保護基を表す。
2. 以下のいずれかの二本鎖核酸分子：
   下記の配列番号３で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号４で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子；
   下記の配列番号１３で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号４で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子；
   下記の配列番号１４で表される塩基配列からなる第１ポリヌクレオチド鎖、および下記の配列番号１５で表される塩基配列からなる第２ポリヌクレオチド鎖を含む、二本鎖核酸分子：
   ただし、ＢＰは、下記の構造を有する基である：
   ただし、＊１はポリヌクレオチド鎖の３’末端のヌクレオチドの塩基に結合した３’末端側のホスホジエステル結合の酸素原子との結合部位を表す。
3. 請求項１または２に記載の二本鎖核酸分子をコードする塩基配列を含む、ベクター。
4. 請求項１または２に記載の二本鎖核酸分子、または請求項３に記載のベクターを有効成分として含む、抗腫瘍剤。
5. 膀胱がん、大腸がん、乳がん、白血病、卵巣がん、前立腺がん、肝細胞がん（Ｈｅｐａｔｏｃａｒｃｉｎｏｍａ）、肺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、神経膠腫、咽頭がん、鼻咽腔がん、口腔がん、および下垂体腫瘍からなる群から選択される腫瘍の予防および／または治療のための、請求項４に記載の抗腫瘍剤。