JP6705599B2 - エイコサペンタエン酸生成微生物、脂肪酸組成物、ならびにそれらを作る方法およびそれらの使用 - Google Patents
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Description
発明の分野
本発明は、単離された微生物ならびにその株および変異体、バイオマス、微生物油、組成物、ならびに培養物;微生物油、バイオマス、および変異体を生成する方法;ならびに単離された微生物、バイオマス、および微生物油を使用する方法に関する。
脂肪酸は、炭素鎖の長さおよび飽和特徴に基づいて分類される。脂肪酸は、鎖に存在する炭素の数に基づいて短鎖脂肪酸、中鎖脂肪酸、または長鎖脂肪酸と呼ばれ、炭素原子間に二重結合が存在しない時は飽和脂肪酸と呼ばれ、二重結合が存在する時は不飽和脂肪酸と呼ばれる。不飽和長鎖脂肪酸は、二重結合が1個しか存在しない時は一不飽和であり、複数の二重結合が存在する時は多価不飽和である。
本発明は、ATCCアクセッション番号PTA-10212で寄託された種の単離された微生物に関する。
本発明は、単離された微生物、ならびにその株および変異体、ならびにそのバイオマス、微生物油、組成物、および培養物に関する。本発明は、本発明の微生物から微生物油、バイオマス、および変異体を生成する方法、ならびに微生物、バイオマス、および微生物油を使用する方法に関する。本明細書に記載の微生物は高生産性であり、独特の脂肪酸プロファイルを生成し、一つには高レベルのω-3脂肪酸、特に、高レベルのEPAを特徴とする。
本発明は、単離された微生物およびそれに由来する株に関する。本発明の単離された微生物に「由来する」株は天然のものでもよく、例えば、変異株、変種株、または組換え株などの人工誘導体でもよい。本明細書で使用する「単離された」という用語は、必ずしも、単離されたものが精製されている程度を反映するとは限らず、天然の形または天然環境から単離または分離されていることを示す。単離されたものには、単離された微生物、単離されたバイオマス、単離された培養物、単離された微生物油、および単離された配列(例えば、本明細書において開示された、単離されたポリヌクレオチド配列)が含まれ得るが、これに限定されない。本明細書で使用する「微生物」という用語には、「微細藻類」、「ヤブレツボカビ」という用語および本明細書に記載の任意の寄託微生物に関連する系統分類が含まれるが、これに限定されない。本明細書に記載の寄託微生物を含む本発明の任意の微生物に関連して用いられる「ヤブレツボカビ目」、「ヤブレツボカビ」、「シゾキトリウム属」、および「ヤブレツボカビ属」という用語は、利用可能な系統情報を含む現在の系統分類に基づいており、本願の出願日の後に、万が一、この系統分類が改訂された場合には限定することが意図されない。
本発明は、本発明の1つまたは複数の単離された微生物を含む培養物に関する。微細藻類およびヤブレツボカビ類などのミクロフロラを接種、増殖、および回収するための様々な発酵パラメータが当技術分野において公知である。例えば、その全体が参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,130,242号を参照されたい。液体培地または固体培地は天然海水または人工海水を含有してもよい。従属栄養増殖のための炭素源には、グルコース、フルクトース、キシロース、サッカロース、マルトース、可溶性デンプン、糖蜜、フコース、グルコサミン、デキストラン、脂肪、油、グリセロール、酢酸ナトリウム、およびマンニトールが含まれるが、これに限定されない。窒素源には、ペプトン、酵母エキス、ポリペプトン、麦芽エキス、肉エキス、カザミノ酸、コーンスティープリカー、有機窒素源、グルタミン酸ナトリウム、尿素、無機窒素源、酢酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、および硝酸アンモニウムが含まれるが、これに限定されない。
典型的な培養条件は以下を含む。
pH 約6.5〜約9.5、約6.5〜約8.0、もしくは約6.8〜約7.8;
温度:約摂氏15〜約30度、約摂氏18〜約28度、もしくは約摂氏21〜約23度;
溶存酸素:約0.1〜約100%飽和、約5〜約50%飽和、もしくは約10〜約30%飽和;および/またはグリセロールは以下のように制御された:約5〜約50g/L、約10〜約40g/L、もしくは約15〜約35g/L
典型的な培養条件は以下を含む。
pH 約6.5〜約8.5、約6.5〜約8.0、もしくは約7.0〜約8.0;
温度:約摂氏17〜約30度、約摂氏20〜約28度、もしくは約摂氏22〜約24度;
溶存酸素:約2〜約100%飽和、約5〜約50%飽和、もしくは約7〜約20%飽和;および/またはグリセロールは以下のように制御された:約5〜約50g/L、約10〜約40g/L、もしくは約20〜約35g/L
本発明は、本発明の脂肪酸プロファイルを含む微生物油に関する。本発明の微生物油は、少なくとも約35重量%のトリアシルグリセロール画分を含む「粗製油」または「精製油」である。「粗製油」は、微生物バイオマスから抽出され、これ以上加工されない油である。「精製油」は、標準的な精製処理、漂白処理、および/または脱臭処理を用いて粗製油を処理することによって得られた油である。その全体が参照により本明細書に組み入れられる、例えば、米国特許第5,130,242号を参照されたい。微生物油はまた本明細書に記載の「最終油」も含む。「最終油」は、植物油で希釈されている精製油である。一部の態様において、最終油は、高オレイン酸のサンフラワー油で希釈されている精製油である。本明細書で使用する「微生物の」という用語は、「微細藻類の」、「ヤブレツボカビ」という用語、および本明細書に記載の任意の寄託微生物に関連した系統分類を含むが、これに限定されない。本明細書に記載の寄託微生物の任意の微生物油に関して用いられる、「ヤブレツボカビ目」、「ヤブレツボカビ」、「シゾキトリウム属」、および「ヤブレツボカビ属」という用語は、利用可能な系統情報を含む現在の系統分類に基づいており、本願の出願日の後に、万が一、この系統分類が改訂された場合には限定することが意図されない。
本発明は、本発明の微生物を含む組成物、本発明の単離されたバイオマス、本発明の微生物油、またはその組み合わせに関する。
一部の態様において、組成物は、ヒトまたは非ヒト動物における状態の処置において使用することができる。一部の態様において、組成物は、ヒトまたは非ヒト動物における栄養補給に使用することができる。
本発明は、本発明の組成物の1単位または複数の単位を含有するキットまたは包装容器に関する。キットまたは包装容器には、本発明の微生物、バイオマス、もしくは微生物油、またはその組み合わせを含む、食品、薬学的組成物、化粧品、または工業用組成物の単位が含まれ得る。キットまたは包装容器はまた、食物、化粧品、薬学的組成物、または工業用組成物を調製するための、本発明の微生物、バイオマス、もしくは微生物油、またはその組み合わせを含む添加物を含んでもよい。
微生物の単離
北米西海岸(カリフォルニア州、オレゴン州、およびワシントン州)ならびにハワイ州に沿って、湾および河口を含む潮間環境から干潮の間に試料を収集した。水、堆積物、生きている植物材料、および腐敗している植物破片/動物破片を滅菌50mlチューブに入れた。各試料の一部を水と一緒に単離培地の固体寒天プレート上に広げた。単離培地は、500mlの人工海水、500mlの蒸留水、1gのグルコース、1gのグリセロール、13gの寒天、1gのグルタミン酸、0.5gの酵母エキス、0.5gのカゼイン加水分解物、1mlのビタミン溶液(100mg/Lチアミン、0.5mg/Lビオチン、0.5mgのB12)、1mlの微量金属溶液(PII金属、1リットルあたり以下:6.0gのFeCl36H2O、6.84gのH3BO3、0.86gのMnCl24H2O、0.06gのZnCl2、0.026gのCoCl26H2O、0.052gのNiSO4H2O、0.002gのCuSO45H2O、および0.005gのNa2MoO42H2Oを含有する)、ならびにそれぞれ500mgのペニシリンGおよび硫酸ストレプトマイシンからなった。寒天プレートを20〜25℃、暗所でインキュベートした。2〜4日後、寒天プレートを拡大して調べた。細胞コロニーを滅菌したつま楊子でつつき、新鮮なプレートの上に再度、画線した。汚染生物が除去されるまで、細胞を新鮮な培地の上に繰り返し画線した。単離された微生物のうち2つをATCCアクセッション番号PTA-10212およびPTA-10208で寄託した。
ATCCアクセッション番号PTA-10212で寄託された単離された微生物(「PTA-10212」)の培養物は、白色の、湿った、一面に塗りつけられたコロニーとして現れ、目に見える単離された胞子嚢群は無かった。
ATCCアクセッション番号PTA-10208で寄託された微生物(「PTA-10208」)を、米国特許出願第12/407,687号およびPCT/US2009/001720に記載のATCCアクセッション番号PTA-9695で寄託された微生物(「PTA-9695」)の下位分離株(培養物から単離され、新たな別個のかつ特異な培養物として維持された個々の細胞)として特定した。米国特許出願第12/407,687号およびPCT/US2009/001720はそれぞれ、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。
ATCCアクセッション番号PTA-10212で寄託された単離された微生物の増殖特徴
ATCCアクセッション番号PTA-10212で寄託された単離された微生物の増殖特徴を、下記のように個々の発酵実験において調べた。代表的な培地および培養条件を表1に示した。
ATCCアクセッション番号PTA-10208で寄託された単離された微生物の増殖特徴を、下記のように個々の発酵実験において調べた。代表的な培地および培養条件を表2に示した。
微生物ATCC PTA-10208株およびPTA-10212株の脂肪酸プロファイル
4種類のバイオマス試料(PTA-10208試料#1;PTA-10208試料#2;PTA-10212試料#1;およびPTA-10212試料#2)の総粗製油含有率を溶媒抽出によって分析した。脂質クラスを高速液体クロマトグラフィー/蒸発光散乱検出(HPLC/ELSD)によって決定し、トリアシルグリセロール(TAG)をHPLC/質量分析(HPLC/MS)によって分析し、脂肪酸(FA)プロファイルをガスクロマトグラフィーと水素炎イオン化検出(GC-FID)によって決定した。ヘキサンを使用した溶媒粉砕を用いて、それぞれの凍結乾燥バイオマスの粗脂質含有率を求め、直接エステル交換反応によって生成されたFAME合計(mg/g)と比較した。結果として得られた脂肪酸メチルエステル(FAME)をGC/FID分析によって定量した。抽出粗脂質中の脂肪酸もエステル交換反応によって定量し、結果として得られたFAMEのGC/FID分析を用いて定量した。順相HPLCとELSDおよび大気圧化学イオン化-MS(APCI-MS)特定を用いて、抽出粗脂質中の全ての中性脂質(NL)および遊離脂肪酸(FFA)の重量パーセントを求めた。この方法は、ステロールエステル(SE)、TAG、遊離脂肪酸(FFA)、1,3-ジアシルグリセロール(1,3-DAG)、ステロール、1,2-ジアシルグリセロール(1,2-DAG)、およびモノアシルグリセロール(MAG)を分離および定量する。結果を以下の表4および表5に示した。
粗製油抽出-
溶媒粉砕を用いて、凍結乾燥バイオマス試料から粗製油を抽出した。例えば、約3グラムのバイオマスを秤量してSwedishチューブに直接入れた。3個のボールベアリングおよび30mLのヘキサンをSwedishチューブに添加した。Swedishチューブをネオプレンストッパーで密封し、シェーカーに2時間、入れた。結果として得られたスラリーを、ブフナー漏斗およびワットマン濾紙を用いて濾過した。濾液を収集し、溶媒を減圧下で除去し、残っている粗脂質の量を重量測定によって求めた。
バイオマス、抽出粗脂質、および単離された脂質クラスの試料の脂肪酸組成をFAMEとして分析した。簡単に述べると、凍結乾燥バイオマスおよび単離された脂質クラスを秤量してスクリューキャップ試験管に直接入れたのに対して、濃度が約2mg/mLになるように粗製油試料をヘキサンに溶解した。内部標準を含有するトルエンおよび1.5NHClを含むメタノールを各チューブに添加した。チューブをボルテックスし、次いで、蓋をし、100℃まで2時間、加熱した。チューブを冷却し、飽和NaCl水を添加した。チューブを再度ボルテックスし、層を分離するために遠心分離した。次いで、有機層の一部をGCバイアルに入れ、GC-FIDによって分析した。Nu-Check-Prep GLC標準品(NuCheck, Elysian,MN)を用いて作成した3点較正曲線を用いて、FAMEを定量した。抽出物に存在する脂肪酸をmg/gおよび重量パーセントで表した。GC-FIDによって分析した時に、内部標準と同じ反応があったと仮定して、試料中の脂肪含有率を見積もった。
計器 Agilent 1100HPLC、Alltech 3300 ELSD、Agilent1100 MSD
カラム PhenomenexLuna Silica、250 x 4.6mm、5μm粒径w/ガードカラム
移動相 A-99.5%ヘキサン(Omnisolv)
0.4%イソプロピルアルコール(Omnisolv)
0.1%酢酸
B-99.9%エタノール(Omnisolv, 95:5エタノール:IPA)
0.1%酢酸
勾配
カラム温度 30℃
流速 1.5mL/min
注入量 5μL
ELSD検出 温度35℃、ガス流量 1.2L/min
MSD 質量範囲200〜1200、フラグメンター225V
乾燥ガス温度350℃、
バポライザー温度325℃
キャピラリー電圧3500V
コロナ電流10μΑ
Vac Elut装置(Varian Inc, Palo Alto, USA)に入れられた2gアミノプロピルカートリッジ(Biotage, Uppsala, Sweden)を用いた固相抽出(SPE)によって粗脂質からPL画分を分離した。カートリッジを15mLのヘキサンによって調整し、約60mgの各試料を1mL CHCl3に溶解し、カートリッジに適用した。中性脂質を全て溶出するように、カラムを15mLの2:1 CHCl3:イソプロピルアルコールで洗浄し、中性脂質を捨てた。次いで、2%酢酸(HOAc)を含むエーテル15mLを用いて脂肪酸を溶出し、捨てた。PL部分を、15mLの6:1メタノール:クロロホルムを用いて溶出し、収集し、窒素下で乾燥させ、秤量した。
フラッシュクロマトグラフィーを用いて、粗製油に存在する脂質クラスを分離した。ヘキサンに溶解した約200mgの粗製油をカラムヘッドに注入した。このクロマトグラフィー装置では、SilicaGel 60(EMD Chemical, Gibbstown, NJ)と、5mL/min(表6〜7)または3mL/min(表8〜13)の石油エーテルおよび酢酸エチルからなる移動相が用いられた。段階勾配を用いて、カラムから各脂質クラスを選択的に溶出した。移動相勾配は100%石油エーテルから開始し、50%酢酸エチルで終了した。Gilson FC204ラージベッド(large-bed)フラクションコレクター(Gilson, Inc., Middleton, WI)を用いて、画分を10mL試験管に入れて収集した。各チューブを薄層クロマトグラフィー(TLC)によって分析し、(予想された保持ファクター(Rf)を有する、TLCプレート上のシングルスポットによって判断した)個々の脂質クラスを含有するチューブをプールし、乾燥するまで濃縮し、秤量した。次いで、総画分含有率を重量によって求めた。
薄層クロマトグラフィーをシリカゲルプレート上で行った。プレートを、石油エーテル:エチルエーテル:酢酸(80:20:1)からなる溶媒系を用いて希釈し、ヨウ素蒸気を用いて視覚化した。次いで、各スポットのRf値を各脂質クラスの報告文献値と比較した。
単離されたTAG画分およびPL画分の脂肪酸組成を脂肪酸メチルエステル(FAME)として分析した。濃度が約1〜2mg/mLになるように、TAG画分をヘキサンに溶解した。1mLの溶液アリコートを窒素下で乾燥するまで濃縮した。内部標準を含有するトルエンおよび1.5NHClを含むメタノールを各チューブに添加した。チューブをボルテックスし、次いで、蓋をし、100℃まで2時間、加熱した。内部標準およびHClメタノールをPL画分含有チューブに直接添加し、加熱した。チューブを冷却し、飽和NaCl水を添加した。チューブを再度、ボルテックスし、層を分離するために遠心分離した。次いで、有機層の一部をGCバイアルに入れ、GC-FIDによって分析した。Nu-Check-Prep GLC 502B標準品(NuCheck,Elysian,MN)を用いて作成した3点較正曲線を用いてFAMEを定量した。抽出物に存在する脂肪酸をmg/gおよびFAME%で表した。
PTA-10208試料#1
GC/FIDを用いて、PTA-10208試料#1のバイオマスおよび抽出粗脂質の脂肪酸プロファイルを決定した。28.6mgのバイオマスを秤量してFAMEチューブに直接入れることによって、バイオマス中の脂肪酸をインサイチューでエステル交換した。これに対して、55.0mgの粗脂質を秤量して50mLメスフラスコに入れ、1mlを別のFAMEチューブに移すことによって、抽出粗脂質試料を調製した。バイオマスの粗脂質含有率の推定値は、GCとFID検出を用いて(FAME合計として)53.2%と求められたのに対して、乾燥バイオマスから52.0%(wt/wt)脂質が抽出されたので、総脂質の回収率は97.8%であった。粗脂質は、GC/FIDを用いて(FAME合計として)91.9%の脂肪酸と求められた。粗脂質に含まれる主な脂肪酸はC16:0(182.5mg/g)、C20:5 n-3(186.8mg/g)、およびC22:6 n-3(423.1mg/g)であった。
GC/FIDを用いて、PTA-10208試料#2のバイオマスおよび抽出粗脂質の脂肪酸プロファイルを決定した。32.0mgのバイオマスを秤量してFAMEチューブに直接入れることによって、バイオマス中の脂肪酸をインサイチューでエステル交換した。これに対して、60.1mgの粗脂質を秤量して50mLメスフラスコに入れ、1mlを別のFAMEチューブに移すことによって、抽出粗脂質試料を調製した。バイオマスの粗脂質含有率の推定値は、GCとFID検出を用いて(FAME合計として)52.4%と求められたのに対して、乾燥バイオマスから48.0%(wt/wt)脂質が抽出されたので、総脂質の回収率は91.7%であった。粗脂質は、GC/FIDを用いて(FAME合計として)95.3%の脂肪酸と求められた。粗脂質に含まれる主な脂肪酸は、C16:0(217.5mg/g)、C20:5 n-3(169.3mg/g)、およびC22:6 n-3(444.1mg/g)であった。
HPLC/ELSD/MSを用いて、ATCCアクセッション番号PTA-10208で寄託された微生物に由来する粗製油試料(試料PTA-10208#3)を分析した。計98.38%の脂質が回収され、ステロールエステル(SE)画分は0.32%を占め、TAG画分は96.13%を占め、1,3-ジアシルグリセロール(DAG)画分は0.22%を占め、1,2-DAG画分は0.78%を占め、ステロール画分は0.93%を占めた。
GC/FIDを用いて、PTA-10212試料#1のバイオマスおよび抽出粗脂質の脂肪酸プロファイルを決定した。27.0mgのバイオマスを秤量してFAMEチューブに直接入れることによって、バイオマス中の脂肪酸をインサイチューでエステル交換した。これに対して、52.5mgの粗脂質を秤量して50mLメスフラスコに入れ、1mlを別のFAMEチューブに移すことによって、抽出粗脂質試料を調製した。バイオマスの粗脂質含有率の推定値は、GCとFID検出を用いて(FAME合計として)38.3%と求められたのに対して、乾燥バイオマスから36.3%(wt/wt)脂質が抽出されたので、総脂質の回収率は94.6%であった。粗脂質は、GC/FIDを用いて(FAME合計として)83.2%の脂肪酸と求められた。粗脂質に含まれる主な脂肪酸は、C16:0(328.5mg/g)、C20:5 n-3(90.08mg/g)、およびC22:6 n-3(289.3mg/g)であった。
GC/FIDを用いて、バイオマスおよび抽出粗脂質PTA-10212試料#2の脂肪酸プロファイルを決定した。29.5mgのバイオマスを秤量してFAMEチューブに直接入れることによって、バイオマス中の脂肪酸をインサイチューでエステル交換した。これに対して、56.5mgの粗脂質を秤量して50mLメスフラスコに入れ、1mlを別のFAMEチューブに移すことによって、抽出粗脂質試料を調製した。GCとFID検出を用いて、バイオマスの粗脂質含有率の推定値は(FAME合計として)40.0%と求められたのに対して、乾燥バイオマスから41.3%(wt/wt)の脂質が抽出されたので、総脂質の回収率は106.1%であった。粗脂質は、GC/FIDを用いて(FAME合計として)82.8%の脂肪酸と求められた。粗脂質に含まれる主な脂肪酸は、C16:0(327.3mg/g)、C20:5 n-3(92.5mg/g)、およびC22:6 n-3(277.6mg/g)であった。
PTA-10212試料#3のバイオマスの脂質含有率はFAME合計として34%と見積もられ、溶媒抽出後に得られた粗製油の量は37重量%であったので、バイオマスに存在する脂肪の回収率は109%であった。フラッシュクロマトグラフィーを用いて分画した後に、粗製油の約46%がTAGとして単離され、28%がDAGとして単離された。粗製油は309mg/gのDHAおよび264mg/gのEPAを含有した。単離されたTAGは341mg/gのDHAおよび274mg/gのEPAを含有した。単離されたDAG画分は262mg/gのDHAおよび237mg/gのEPAを含有した。バイオマス、抽出された粗製油、および単離画分の総脂肪酸プロファイルを、以下のmg/gとして計算した表8および%FAMEとして計算した表9に示した。
PTA-10212試料#4は、FAME合計として求められた約23%の脂質を含有し、このうち107%がヘキサン抽出を用いて回収された。フラッシュクロマトグラフィーを用いて分画した後に、粗製油の約42%がTAGとして単離され、18%がDAGとして単離された。粗製油は275mg/gのDHAおよび209mg/gのEPAを含有した。単離されたTAGは296mg/gのDHAおよび205mg/gのEPAを含有した。単離されたDAG画分は245mg/gのDHAおよび219mg/gのEPAを含有した。バイオマス、抽出された粗製油、および単離画分の総脂肪酸プロファイルを以下の表10(mg/g)および表11(%FAME)に示した。
FRIOLEX(登録商標)プロセス(GEA Westfalia Separator UK Ltd.,Milton Keynes, England)を用いて、PTA-10212バイオマスから粗製油試料を抽出して、微生物油PTA-10212試料#5を得た。低圧フラッシュクロマトグラフィーを用いて、PTA-10212試料#5から個々の脂質クラスを単離し、各クラスの重量パーセントを求めた。GC-FIDを用いて、各クラスの脂肪酸プロファイルを決定した。
試料PTA-10208試料#1、PTA-10208試料#2、PTA-10212試料#1、PTA-10212試料#2、およびPTA-10212試料#3、PTA-10212試料#4、および実施例3のPTA-10212試料#5のそれぞれについて、非水性逆相HPLC分離およびAPCI-MS検出を用いて、抽出粗脂質に存在する各TAG異性体の相対量および脂肪酸組成を求めた。
計器 Agilent 1100HPLC
Agilent 1100MSD
カラム TwoPhenomenex Luna C18(2)、150 x 4.6mm
一続きにつながった3μm粒径
移動相 A-アセトニトリル
B-IPAw/0.1%酢酸アンモニウム
勾配
カラム温度 20℃
流速 0.5mL/min
注入量 5μL
MSD 質量範囲350〜1150
フラグメンター225V
乾燥ガス温度350℃、
バポライゾー(Vaporizor)温度325℃
キャピラリー電圧3500V
コロナ電流10μΑ
TAG分析のために、PTA-10208試料#1から単離された粗脂質を、5.5mgの油を秤量してHPLCバイアルに入れ、1mLのヘキサンで希釈することによって調製した。
TAG分析のために、PTA-10208試料#2から単離された粗脂質を、5.3mgの油を秤量してHPLCバイアルに入れ、1mLのヘキサンで希釈することによって調製した。
TAG分析のために、PTA-10212試料#1から単離された粗脂質を、5.3mgの油を秤量してHPLCバイアルに入れ、1mLのヘキサンで希釈することによって調製した。
TAG分析のために、PTA-10212試料#2から単離された粗脂質を、3.6mgの油を秤量してHPLCバイアルに入れ、1mLのヘキサンで希釈することによって調製した。
PTA-10212試料#3のTAG画分試料をヘキサンに溶解して調製し、個々のTAG異性体の同一性を決定するためにHPLC/APCI/MSによって分析した。
PTA-10212試料#4のTAG画分試料をヘキサンに溶解して調製し、個々のTAG異性体の同一性を決定するためにHPLC/APCI/MSによって分析した。
PTA-10212試料#5のTAG画分試料をヘキサンに溶解して調製し、個々のTAG異性体の同一性を決定するためにHPLC/APCI/MSによって分析した。
精製油を得るために、粗製油を精製、漂白、および脱臭によってさらに加工した。精製油を高オレイン酸サンフラワー油で希釈して、DHA含有率が約400mg/gの最終油を得た。個々の脂質クラスを単離し、各クラスの脂肪酸プロファイルをFAMEとしてGC-FIDを用いて決定した。
単離されたTAG画分に関連するプロファイル(表23〜24)および単離されたステロール/DAG画分に関連するプロファイル(表24〜26)を含めて、PTA-10208最終油#1〜5の脂肪酸プロファイルを表21〜22にまとめた。
PTA-10212最終油の中に41.63%および366.9mg/g のDHAが存在したのに対して、16.52%のEPAが存在した。個々の脂肪酸プロファイルを決定し、表29にまとめた。
実施例4に記載の技法を用いて、実施例5に記載のPTA-10208最終油のトリアシルグリセリド(TAG)を分析した。以下の表30にまとめたように、各脂肪酸部分を特定した。
表1および表2に従う培地中での炭素および窒素が与えられた培養物として、ATCCアクセッション番号PTA-10208および10212で寄託された単離された微生物の2日齢接種材料フラスコを調製した。
Claims (5)
- バイオマスの細胞乾燥重量の少なくとも20重量%が脂肪酸であり、脂肪酸の10重量%超がエイコサペンタエン酸であり、かつ脂肪酸が、それぞれ0重量%超5重量%未満のアラキドン酸およびドコサペンタエン酸n−6を含む、
シゾキトリウム属ATCC PTA-10208株、ヤブレツボカビ属ATCC PTA-10212株、ヤブレツボカビ属ATCC PTA-10213株またはヤブレツボカビ属ATCC PTA-10214株から単離されたバイオマス。 - 脂肪酸の少なくとも25重量%がドコサヘキサエン酸である、請求項1に記載の単離されたバイオマス。
- 請求項1または2に記載のバイオマスを含む、非ヒト動物用飼料。
- 水産養殖飼料である、請求項3に記載の非ヒト動物用飼料。
- 家畜用飼料、動物園動物用飼料、重労働用に訓練され使用される動物のための飼料(work animal feed)、畜類用飼料、またはそれらの組み合わせである、請求項3に記載の非ヒト動物用飼料。
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