JP6039550B2 - タンパク質の精製装置および方法 - Google Patents

Description

本出願は、２０１０年５月１８日に出願された米国仮特許出願第６１／３４５，６３４号に対する優先権を主張し、これは参照によりこの全体が本明細書に組み込まれている。

本発明は、概して、タンパク質を精製するための装置およびタンパク質を精製する方法に関する。

大規模のタンパク質精製の経済性は、特に治療抗体について重要であり、これは、抗体が市場における治療的生物製剤の大きな割合を占めているためである。これらの治療的価値に加えて、例えば、モノクローナル抗体はまた、診断分野において重要なツールである。多数のモノクローナル抗体が開発されつつあり、多くの疾患、妊娠の診断および薬剤試験において使用されている。

典型的な精製プロセスは、純度、収率およびハイスループットの要件を満たすために、複数のクロマトグラフィーステップを伴う。ステップは、典型的には、捕捉、中間精製または仕上げ（ｐｏｌｉｓｈ）および最終仕上げを伴う。アフィニティークロマトグラフィー（プロテインＡもしくはＧ）またはイオン交換クロマトグラフィーは、多くの場合、捕捉ステップとして使用される。伝統的には、次に、捕捉ステップの後に、適切な純度およびウイルス排除を確実にするために、少なくとも２つの他の中間精製または仕上げクロマトグラフィーステップが続く。中間精製または仕上げステップは、他の方法のうち、典型的には、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィーまたは疎水性相互作用を介して達成される。伝統的なプロセスにおいて、最終仕上げステップは、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィーまたはゲル濾過クロマトグラフィーを介して達成されてもよい。これらのステップは、宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）、ＤＮＡ、浸出された（ｌｅａｃｈｅｄ）プロテインＡ、凝集体、断片、ウイルスおよび他の小分子不純物を含む、プロセスおよび生成物に関連した不純物を、生成物の流れおよび細胞培養物から除去する。

（発明の要旨）
簡単には、本発明は、捕捉クロマトグラフィー樹脂、試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通ってからデプスフィルターに通るように捕捉クロマトグラフィーに対して配置されたデプスフィルター、および試料がデプスフィルターを通ってから混合モードクロマトグラフィー樹脂に通るようにデプスフィルターに対して配置された混合モードクロマトグラフィー樹脂を含む、精製されるべきタンパク質を含有する試料からタンパク質を精製するための装置を対象とする。

さらに、本発明は、タンパク質を含有する試料を提供すること、試料を、捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理して、タンパク質を含む第１の溶出液を提供すること、試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後、第１の溶出液を、デプスフィルターを通して処理して、タンパク質を含む濾過された溶出液を提供することおよび第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理された後、濾過された溶出液を、混合モードクロマトグラフィー樹脂を通して処理して、タンパク質を含む第２の溶出液を提供することを含む、タンパク質を精製するための方法を対象とする。

さらに、本発明は、タンパク質を含有する試料を提供すること、試料を、捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理して、タンパク質を含む第１の溶出液を提供すること、試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通した後、第１の溶出液を、デプスフィルターを通して、タンパク質を含む濾過された溶出液を提供することおよび第１の溶出液がデプスフィルターを通した後、濾過された溶出液を、メンブレン吸着材またはモノリスを通して、タンパク質を含む第２の溶出液を提供することを含む、タンパク質を精製するための装置および方法を対象とする。

プロセスの一実施形態の概略を示す図である。 プロセスの一実施形態の代替の概略を示す図である。 プロセスの一実施形態の代替の略図を示す図である。 プロセスの一実施形態の代替の略図を示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＨＣＰ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＨＣＰ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する浸出されたプロテインＡ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する浸出されたプロテインＡ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する凝集体排除プロフィール示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する凝集体排除プロフィール示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＤＮＡ排除プロフィール示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＤＮＡ排除プロフィール示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するステップ収率を示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するステップ収率を示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する異なる緩衝液条件でのＸＯＨＣデプスフィルターの供給物充填の関数としてのＨＣＰレベルを示す図である。 ３０００Ｌの製造規模における、プロテインＡ捕捉／ｐＨ不活性化後の深層濾過によるＨＣＰ除去を示す図である。 ２カラムのタンパク質精製プロセスを介して得られた不純物排除プロフィールを示す図である。 ２カラムのタンパク質精製プロセスを介して得られた不純物排除プロフィールを示す図である。 ２カラムのタンパク質精製プロセスを介して得られた不純物排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＨＣＰ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＨＣＰ排除プロフィールを示す図である。 精製プロセスに関する浸出されたプロテインＡ排除プロフィールを示す図である。 精製プロセスに関する浸出されたプロテインＡ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する凝集体排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関する凝集体排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＤＮＡ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するＤＮＡ排除プロフィールを示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するステップ収率を示す図である。 タンパク質精製プロセスに関するステップ収率を示す図である。

ここで、本発明の実施形態を詳細に参照し、１つまたは複数の実施例を以下に示す。各々の実施例は、本発明を説明するために与えられ、本発明を限定するためではない。実際に、種々の変更および改変が、本発明の範囲または精神から逸脱することなく、本発明において行うことができることは当業者に明らかである。例えば、一実施形態の部分として例証または記載された特徴は、別の実施形態に使用して、なおさらなる実施形態を得ることができる。

したがって、本発明は、添付された特許請求の範囲に含まれるこのような変更および改変、ならびにそれらの同等物に及ぶことが意図される。本発明の他の目的、特徴および態様は、以下の詳細な説明に開示されまたは詳細な説明から明らかである。本検討は、例示的な実施形態を記述するもののみであり、本発明のより広い態様を限定するものとしては意図されていないことが、当業者に理解されよう。

一実施形態において、本発明は、２つのクロマトグラフィーステップのタンパク質精製システムおよび方法を含む。本発明のシステムおよびプロセスを使用した全体的な回収は許容され、最終生成物の品質はより伝統的なプロトコールと同等である。下流処理における特定のステップを除くことによって、分子の許容される完全性および純度を維持しながら、より高い生産性が達成される。例えば、クロマトグラフィーステップの数を最少にすることは、従来のタンパク質精製プロセスにおいて典型的に使用されるプロセスの成分、緩衝液、タンクおよび雑多な機材の数を減らすことになる。

本発明の２つのクロマトグラフィーステップ精製システムのいくつかの実施形態に関する略図を図１−４に示す。本発明の一実施形態において、タンパク質を含有する試料が提供される。タンパク質を含有する任意の試料が本発明において利用されてもよい。タンパク質を含有する試料は、例えば、細胞培養物またはマウス腹水を含んでもよい。タンパク質は、当該技術分野において知られている任意のタンパク質またはこの断片であり得る。いくつかの実施形態において、タンパク質は抗体である。特定の実施形態において、タンパク質は、モノクローナル抗体またはこの断片である。いくつかの場合において、タンパク質は、ヒトモノクローナル抗体であってもよい。他の実施形態において、タンパク質は免疫グロブリンＧ抗体である。さらに他の実施形態において、タンパク質は、Ｆｃ融合タンパク質などの融合タンパク質である。

本発明の一実施形態において、タンパク質を含有する試料は、当該技術分野において知られている任意の方法を使用して、最初に浄化されてもよい（図２、ステップ１を参照されたい。）。浄化ステップは、細胞、細胞残屑およびいくつかの宿主細胞の不純物を試料から除去することを目的とする。一実施形態において、試料は、１つまたは複数の遠心分離ステップを介して浄化されてもよい（図３−４、ステップ１を参照されたい。）。試料の遠心分離は、当該技術分野において知られているように行われてもよい。例えば、試料の遠心分離は、約１×１０^−８ｍ／ｓの標準化された充填および約５，０００×ｇから約１５，０００×ｇの重力を使用して行われてもよい。

別の実施形態において、試料は、精密濾過メンブレンまたは限外濾過メンブレンを介して浄化されてもよい。いくつかの実施形態において、精密濾過メンブレンまたは限外濾過メンブレンは、接線流濾過（ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）（ＴＦＦ）モードであってもよい。当該技術分野において知られている任意のＴＦＦ浄化プロセスが、この実施形態において利用されてもよい。ＴＦＦは、圧力勾配によって駆動される、直交流構成におけるメンブレン分離プロセスを示し、ここで、メンブレンは、粒子および／または溶質のサイズおよび構造の関数として、液体混合物の成分を分画する。浄化において、選択されたメンブレンの細孔径は、細胞および細胞残屑をメンブレン表面上で保持しながら、いくつかの成分が細孔を水とともに通過することを可能にする。一実施形態において、ＴＦＦ浄化は、例えば、０．１μｍまたは７５０ｋＤの分子量カットオフ、５−４０ｐｓｉｇおよび約４℃から約６０℃の温度を使用して、ポリスルホンメンブレンを用いて実施されてもよい。

さらに別の実施形態において、試料は、１つまたは複数の深層濾過ステップを介して浄化されてもよい（図３−４、ステップ１を参照されたい。）。深層濾過とは、細孔径が減少している、順に配置された一連のフィルターを使用して、粒子を溶液から除去する方法を指す。デプスフィルターの３次元マトリックスは、試料が通過する迷路様の経路を作る。デプスフィルターの主な保持機構は、マトリックスの深さ全体で無作為な吸着および機械的取り込みに依る。種々の実施形態において、フィルターメンブレンまたはシートは、巻綿（ｗｏｕｎｄ ｃｏｔｔｏｎ）、ポリプロピレン、レーヨンセルロース、ガラス繊維、焼結金属、磁器、珪藻土または他の既知の成分であってもよい。ある種の実施形態において、デプスフィルターメンブレンを含む組成物は、フィルターがＤＮＡ、宿主細胞のタンパク質または凝集体などの負に帯電した粒子を捕捉できるように、陽性電荷、即ち、カチオン電荷を与えるように化学的に処理されてもよい。

当業者に利用可能な任意の深層濾過システムが、この実施形態において使用されてもよい。特定の実施形態において、深層濾過ステップは、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されているＭｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）Ｐｏｄデプスフィルターシステム、ＸＯＨＣ媒体を用いて達成されてもよい。別の実施形態において、深層濾過ステップは、３Ｍ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｉｎｃ．から市販されているＺｅｔａ Ｐｌｕｓ（商標）デプスフィルターを用いて達成されてもよい。

いくつかの実施形態において、デプスフィルター（単数または複数）媒体は、約０．１μｍから約８μｍの名目上の細孔径を有する。他の実施形態において、デプスフィルター（単数または複数）媒体は、約２μｍから約５μｍの細孔を有してもよい。特定の実施形態において、デプスフィルター（単数または複数）媒体は、約０．０１μｍから約１μｍの細孔を有してもよい。なお他の実施形態において、デプスフィルター（単数または複数）媒体は、約１μｍを超える細孔を有してもよい。さらなる実施形態において、デプスフィルター（単数または複数）媒体は、約１μｍ未満の細孔を有してもよい。

いくつかの実施形態において、深層濾過浄化ステップは、連続して配置された２つ以上のデプスフィルターの使用を伴ってもよい。この実施形態において、例えば、Ｍｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）ミニＤＯＨＣおよびＸＯＨＣフィルターは、連続して配置され、本発明の浄化ステップにおいて使用され得る。

これらの浄化プロセスまたは当該技術分野において知られている他の浄化プロセスの任意の組合せは、本発明の場合による浄化ステップとして利用することができる。例えば、浄化ステップは、遠心分離および深層濾過の両方を含んでもよい（図３−４、ステップ１を参照されたい。）。

特定の実施形態において、本発明のシステムは、浄化ステップおよびさらなる処理ステップの使用を伴う（図２、ステップ２を参照されたい。）。さらなる処理ステップは、クロマトグラフィーでない精製ステップを含んでもよい。

特定の実施形態において、さらなる処理ステップは、界面活性剤による処理を含んでもよい（図３−４、ステップ２を参照されたい。）。利用される界面活性剤は、タンパク質精製プロセスにおいて有用であることが知られている任意の界面活性剤であってもよい。一実施形態において、界面活性剤は、低レベルで試料に適用され、次に、試料は、被包された哺乳動物ウイルスを不活性化するのに十分な時間、温置されてもよい。適用されるべき界面活性剤のレベルは、一実施形態において、約０から約１％（ｖ／ｖ）であってもよい。別の実施形態において、適用されるべき界面活性剤のレベルは、約０．０５％から約０．７％（ｖ／ｖ）であってもよい。さらに別の実施形態において、適用されるべき界面活性剤のレベルは、約０．５％（ｖ／ｖ）であってもよい。特定の実施形態において、界面活性剤は、ポリソルベート８０（Ｔｗｅｅｎ（登録商標）８０）またはＴｒｉｔｏｎ（登録商標）Ｘ−１００であってもよい。このステップは、被包されたウイルスの付加的な排除を提供し、プロセス全体のロバスト性を増加させる。このステップは、界面活性剤ウイルス不活性化ステップと呼ばれることもある。

一実施形態において、本発明の場合による浄化ステップおよびさらなる精製ステップに続いて、試料は、クロマトグラフィー捕捉ステップに供されてもよい（図１−２を参照されたい。）。捕捉ステップは、タンパク質を浄化された試料から分離するために設計されている。多くの場合、捕捉ステップは、試料中のＨＣＰ、宿主細胞ＤＮＡおよび内因性ウイルスまたはウイルス様粒子を減少させる。この実施形態において利用されるクロマトグラフィー機構は、捕捉ステップとして使用される、当該技術分野において知られている任意の機構であってもよい。一実施形態において、試料は、捕捉ステップとして、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィーまたは疎水性相互作用クロマトグラフィーに供されてもよい。

本発明の特定の実施形態において、アフィニティークロマトグラフィーは、捕捉ステップとして利用されてもよい。アフィニティークロマトグラフィーは、分子間の特異的結合相互作用を使用する。特定のリガンドは、固体支持体に化学的に固定化されまたは「カップリング」する。試料が樹脂を通り過ぎるとき、リガンドに対して特異的結合親和性を有する試料中のタンパク質は、結合する。他の試料成分が洗い出された後、次に、結合したタンパク質は、固定化されたリガンドから剥がされ、溶出され、結果としてこのタンパク質が元の試料から精製される。

本発明のこの実施形態において、親水性クロマトグラフィー捕捉ステップは、抗原および抗体の間、酵素および基質の間または受容体およびリガンドの間の相互作用を含んでもよい。本発明の特定の実施形態において、アフィニティークロマトグラフィー捕捉ステップは、プロテインＡクロマトグラフィー、プロテインＧクロマトグラフィー、プロテインＡ／ＧクロマトグラフィーまたはプロテインＬクロマトグラフィーを含んでもよい。

ある種の実施形態において、プロテインＡアフィニティークロマトグラフィーは、本発明の捕捉ステップにおいて利用されてもよい（図３−４、ステップ３を参照されたい。）。プロテインＡアフィニティークロマトグラフィーは、プロテインＡという多くのクラスの免疫グロブリンの非抗原結合部分に対して特異的結合を示す細菌タンパク質の使用を伴う。利用されるプロテインＡ樹脂は、当業者に利用可能な任意のプロテインＡ樹脂であってもよい。一実施形態において、プロテインＡ樹脂は、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販されているＭａｂＳｅｌｅｃｔ（商標）ファミリーの樹脂から選択されてもよい。別の実施形態において、プロテインＡ樹脂は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されているＰｒｏＳｅｐ（登録商標）Ｕｌｔｒａ Ｐｌｕｓ樹脂であってもよい。当該技術分野において利用可能な任意のカラムが、このステップにおいて利用されてもよい。特定の実施形態において、カラムは、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販されているＭａｂＳｅｌｅｃｔ（商標）カラムまたはＭｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されているＰｒｏＳｅｐ（登録商標）Ｕｌｔｒａ Ｐｌｕｓカラムであってもよい。

プロテインＡの親和性がクロマトグラフィーステップとして利用される場合、カラムは約５ｃｍの内径および約２０ｃｍのカラム長を有してもよい。他の実施形態において、カラム長は、約５ｃｍから約１００ｃｍであってもよい。さらに別の実施形態において、カラム長は約１０ｃｍから約５０ｃｍであってもよい。さらに別の実施形態において、カラム長は約５ｃｍ以上であってもよい。一実施形態において、カラムの内径は、約０．５ｃｍから約２メートルであってもよい。別の実施形態において、カラムの内径は、約１ｃｍから約１０ｃｍであってもよい。さらに別の実施形態において、カラムの内径は、約０．５ｃｍ以上であってもよい。

試料をカラムに流すこと、洗浄および溶出を含むクロマトグラフィー捕捉ステップに使用される特定の方法は、使用される特定のカラムおよび樹脂に依存し、典型的には、製造業者によって供給されまたは当該技術分野において知られている。本明細書において使用されるとき、用語「処理される」は、試料をクロマトグラフィーカラム、樹脂、メンブレン、フィルターまたは他の機構に流すまたは試料がクロマトグラフィーカラム、樹脂、メンブレン、フィルターまたは他の機構を通過するプロセスを表してもよく、各機構を通した連続フロー、ならびに各機構間で一時停止（ｐａｕｓｅ）または停止（ｓｔｏｐ）するフローを含むものとする。

クロマトグラフィー捕捉ステップに続いて、溶出液は、ウイルス不活性化に供されてもよい（図２−４、ステップ４を参照されたい。）。一実施形態において、このウイルス不活性化ステップは、低ｐＨウイルス不活性化を含んでもよい（図３−４、ステップ４を参照されたい。）。一態様において、溶出のための低ｐＨでの高濃度グリシン緩衝液の使用は、さらにｐＨを調整することなく、低ｐＨウイルス不活性化のための標的化範囲内での最終溶出液プールにおいて採用されてもよい。あるいは、酢酸緩衝液またはクエン酸緩衝液は溶出のために使用されてもよく、次に、溶出液プールは、低ｐＨウイルス不活性化のために適切なｐＨ範囲に滴定されてもよい。一実施形態において、ｐＨは約２．５から約４である。さらなる実施形態において、ｐＨは約３から約４である。

一実施形態において、一度、溶出液プールのｐＨが下がると、プールは、約１５分から約９０分の時間の長さで温置される。特定の実施形態において、低ｐＨウイルス不活性化ステップは、約３．５のｐＨを得るために０．５Ｍリン酸を用いた滴定を介して達成されてもよく、次に、試料は１時間温置されてもよい。

低ｐＨウイルス不活性化ステップ後、不活性化された溶出液プールは、より高いｐＨに中和されてもよい。一実施形態において、中和されたより高いｐＨは約６から約１０のｐＨであってもよい。別の実施形態において、中和されたより高いｐＨは約８から約１０のｐＨであってもよい。さらに別の実施形態において、中和されたより高いｐＨは約６から約１０のｐＨであってもよい。さらに別の実施形態において、中和されたより高いｐＨは約６から約８のｐＨであってもよい。さらに別の実施形態において、中和されたより高いｐＨは約８．１のｐＨであってもよい。

一実施形態において、ｐＨの中和は、１ＭのトリスｐＨ９．５緩衝液または当該技術分野において知られている別の緩衝液を使用して達成されてもよい。次に、不活性化された溶出液プールの伝導度は、精製水または脱イオン化水で調整されてもよい。一実施形態において、不活性化された溶出液プールの伝導度は、約０．５から約５０ｍＳ／ｃｍに調整されてもよい。別の実施形態において、不活性化された溶出液プールの伝導度は、約６から約８ｍＳ／ｃｍに調整されてもよい。

代替の実施形態において、ウイルス不活性化ステップは、当該技術分野において知られている他の方法を使用して実行されてもよい。例えば、ウイルス不活性化ステップは、種々の実施形態において、酸、界面活性剤、化学物質、核酸架橋剤、紫外光、ガンマ線照射、熱による処理、またはこの目的に有用である当該技術分野において知られている任意の他のプロセスを含んでもよい。

場合によるウイルス不活性化ステップに続いて、不活性化された溶出液プールは、上記されているように深層濾過に供されてもよい（図１−４を参照されたい。）。この深層濾過ステップは、浄化ステップとして深層濾過の使用に付加的であってもよい。一実施形態において、このステップは、連続して配置された２つ以上のデプスフィルターの使用を伴ってもよい。デプスフィルターの適切なサイズ調整を用いて、当該技術分野において知られている処理条件に基づいて、様々な不純物は、さらなる処理の前にプロセスの流れから除去するまたは減少させることができる。

一実施形態において、深層濾過ステップの後に滅菌濾過ステップが続いてもよく、または深層濾過ステップは滅菌濾過ステップと組み合わせられてもよい（図３−４、ステップ５を参照されたい。）。当該技術分野において知られている任意の滅菌フィルターは、この実施形態において有用であり得る。一実施形態において、滅菌フィルターはマイクロフィルターである。本発明の一態様において、滅菌フィルターは、Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ（登録商標）２滅菌等級フィルターを含んでもよい。例えば、滅菌フィルターは、０．４５μｍのプレフィルターを０．２μｍの最終フィルターの前に有してもよい。別の実施形態において、滅菌フィルターは、約０．１μｍから約０．５μｍであるメンブレン細孔を有してもよい。他の実施形態において、滅菌フィルターは、約０．１μｍから約０．３μｍであるメンブレン細孔を有してもよい。一態様において、滅菌フィルターは、約０．２２μｍであるメンブレン細孔を有してもよい。一実施形態において、滅菌フィルターは、デプスフィルターと連続して配置されてもよい。

深層濾過および場合による滅菌濾過に続いて、次に、試料は、中間／最終仕上げステップに供されてもよい（図１−２を参照されたい。）。一実施形態において、中間／最終仕上げステップは、混合モード（多モードとしても知られる）クロマトグラフィーステップを含んでもよい（図３、ステップ６を参照されたい。）。このステップでは、残留ＨＣＰ、ＤＮＡ、浸出されたプロテインＡおよび凝集体が試料から排除される。本発明において利用される混合モードクロマトグラフィーステップは、当該技術分野において知られている任意の混合モードクロマトグラフィープロセスを利用してもよい。混合モードクロマトグラフィーは、タンパク質または他の溶質を吸着する複数の化学的機構を採用する樹脂、モノリスまたはメンブレンフォーマットにおける固相クロマトグラフィー支持体の使用を伴う。本発明において有用な例は、それらに限定されないが、以下の機構：陰イオン交換、陽イオン交換、疎水性相互作用、親水性相互作用、チオフィリック（ｔｈｉｏｐｈｉｌｉｃ）相互作用、水素結合、パイ−パイ結合および金属親和性のうちの２つ以上の組合せを活用するクロマトグラフィー支持体を含む。特定の実施形態において、混合モードクロマトグラフィープロセスは、（１）陰イオン交換および疎水性相互作用技術；（２）陽イオン交換および疎水性相互作用技術；ならびに／または（３）静電気および疎水性相互作用技術を組み合わせる。

一実施形態において、混合モードクロマトグラフィーステップは、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販されているＣａｐｔｏ（登録商標）付着カラムおよび樹脂などのカラムおよび樹脂を使用することによって達成されてもよい。Ｃａｐｔｏ（登録商標）付着カラムは、捕捉後のモノクローナル抗体の中間精製および仕上げ用の多モード媒体である。特定の実施形態において、混合モードクロマトグラフィーステップは、フロースルーモードで実施されてもよい。他の実施形態において、混合モードクロマトグラフィーステップは、結合−溶出モードで実施されてもよい。

他の実施形態において、混合モードクロマトグラフィーステップは、以下のシステムの１つまたは複数：Ｃａｐｔｏ（登録商標）ＭＭＣ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販）、ＨＥＡ ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標）（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）、ＰＰＡ ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標）（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）、ＭＢＩ ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標）（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）、ＭＥＰ ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標）（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）、Ｂｌｕｅ Ｔｒｉｓａｃｒｙｌ Ｍ（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）、ＣＦＴ（商標）セラミックフルオロアパタイト（Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．から市販）、ＣＨＴ（商標）セラミックヒドロキシアパタイト（Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．から市販）および／またはＡＢｘ（Ｊ．Ｔ．Ｂａｋｅｒから市販）を使用することによって達成されてもよい。混合モードクロマトグラフィーステップのために使用される特定の方法は、利用される特定のカラムおよび樹脂に依存してもよく、典型的には、製造業者によって供給されまたは当該技術分野において知られている。

プロセスにおいて利用される各々のカラムは、最大スループット容量および規模の経済的側面を与えるには十分に大きくてもよい。例えば、ある種の実施形態において、各々のカラムは、約１Ｌから約１５００Ｌ、約１Ｌから約１０００Ｌ、約１Ｌから約５００Ｌまたは約１Ｌから約２５０Ｌの内部容積を画定することができる。いくつかの実施形態において、混合モードカラムは、約１ｃｍの内径および約７ｃｍのカラム長を有してもよい。他の実施形態において、混合モードカラムの内径は、約０．１ｃｍから約１０ｃｍ、約０．５ｃｍから約５ｃｍ、約０．５ｃｍから約１．５ｃｍであってもよくまたは約１ｃｍであってもよい。一実施形態において、混合モードカラムのカラム長は、約１から約５０ｃｍ、約１から約２０ｃｍ、約５から約１０ｃｍであってもよくまたは約７ｃｍであってもよい。

いくつかの実施形態において、本発明のシステムは、高い力価濃度、例えば、約５ｇ／Ｌ、約６ｇ／Ｌ、約７ｇ／Ｌ、約８ｇ／Ｌ、約９ｇ／Ｌ、約１０ｇ／Ｌ、約１２．５ｇ／Ｌ、約１５ｇ／Ｌ、約２０ｇ／Ｌ、約２５ｇ／Ｌの濃度、約１ｇ／Ｌから約５ｇ／Ｌの濃度、約５ｇ／Ｌから約１０ｇ／Ｌの濃度、約５ｇ／Ｌから約１２．５ｇ／Ｌ、約５ｇ／Ｌから約１５ｇ／Ｌの濃度、約５ｇ／Ｌから約２０ｇ／Ｌの濃度または約５ｇ／Ｌから約５５ｇ／Ｌの濃度または約５ｇ／Ｌから約１００ｇ／Ｌの濃度を取り扱うことができる。例えば、システムのいくつかは、高い抗体濃度を取り扱うことができ、同時に、１時間あたり約２００Ｌから約２０００Ｌの培養液、１時間あたり約４００Ｌの培養液から約２０００Ｌ、１時間あたり約６００Ｌから約１５００Ｌの培養液、１時間あたり約８００Ｌから約１２００Ｌの培養液または１時間あたり約１５００Ｌ超の培養液を処理することができる。

図３に示される本発明の一実施形態において、捕捉カラムおよび混合モードカラムは、利用される唯一のクロマトグラフィーカラムである。本実施形態の一態様において、第３のクロマトグラフィーカラムは採用されない；しかしながら、さらなる処理が付加的なクロマトグラフィーステップを必要とする場合、それらのステップもまた本明細書に包含される。

一実施形態において、中間／最終仕上げステップは、混合モードカラムよりはむしろ、１つまたは複数のメンブレン吸着材またはモノリスを介して達成されてもよい（図４、ステップ６を参照されたい。）。メンブレン吸着材は、同等の樹脂上のものと同種の官能基で誘導体化されている薄い合成の細孔性またはマクロ多孔性メンブレンである。それらの表面上では、メンブレン吸着材は、官能基、リガンド、織り合わされた繊維または流体相において接触する少なくとも１つの物質と相互作用することができる反応物質を担持して、重力によりメンブレンを通して移動する。メンブレンは、典型的には、比較的小さいカートリッジの深部に５から１５層で積層されて、類似のアウトプットを有するカラムよりも非常に小さい設置面積を生じさせる。本明細書において利用されるメンブレン吸着材は、メンブレンイオン交換体、混合モード、リガンドメンブレンおよび／または疎水性メンブレンであってもよい。

一実施形態において、利用されるメンブレン吸着材は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されているＣｈｒｏｍａＳｏｒｂ（商標）メンブレン吸着材であってもよい。ＣｈｒｏｍａＳｏｒｂ（商標）メンブレン吸着材は、ＭＡｂおよびタンパク質を精製するために、ＨＣＰ、ＤＮＡ、内毒素およびウイルスを含む微量不純物を除去するために設計されたメンブレンに基づく陰イオン交換体である。利用され得る他のメンブレン吸着材は、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｑ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｍ ＢＢＩ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨから市販）、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｓ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｍ ＢＢＩ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨから市販）、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｃ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｍ ＢＢＩ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨから市販）、Ｓａｒｔｏｂｉｎｄ（登録商標）Ｄ（Ｓａｒｔｏｒｉｕｍ ＢＢＩ Ｓｙｓｔｅｍｓ ＧｍｂＨから市販）、Ｐａｌｌ Ｍｕｓｔａｎｇ（商標）（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）または当該技術分野において知られている任意の他のメンブレン吸着材を含む。

上記されているように、モノリスは、本発明の中間／最終仕上げステップにおいて代替的に利用されてもよい（図４、ステップ６を参照されたい。）。モノリスは、特定の調節されたサイズの途切れない相互接続したチャネルの一片の細孔性構造である。試料は、モノリスを通して対流を介して運搬されて、移動相および静止相の間で速い物質移動をもたらす。結果として、クロマトグラフィーの特徴は流動非依存性であるということである。また、モノリスは、高流速でさえ、低い背面圧を示して、精製時間を有意に減らす。一実施形態において、モノリスは、イオン交換または混合モードリガンドに基づくモノリスであってもよい。一態様において、利用されるモノリスは、ＵＮＯモノリス（Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．から市販）またはＰｒｏＳｗｉｆｔもしくはｌｏｎＳｗｉｆｔモノリス（Ｄｉｏｎｅｘ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販）を含んでもよい。

なお別の実施形態において、中間／最終仕上げステップは、メンブレン吸着材、モノリスまたは混合モードカラムというよりはむしろ、付加的な深層濾過ステップを介して達成されてもよい。この実施形態において、中間／最終仕上げのために利用される深層濾過はＣＵＮＯ ＶＲデプスフィルターであってもよい。この実施形態において、デプスフィルターは、中間／最終仕上げ、ならびにウイルス排除の目的に役立つ場合がある。

中間／最終仕上げまたは混合モードクロマトグラフィーステップに続いて、溶出液プールは、ウイルスまたはナノ濾過ステップに供されてもよい（図２−４、ステップ７を参照されたい。）。一実施形態において、この濾過ステップは、ナノフィルターまたはウイルスフィルターを介して達成される。図２−４、ステップ８に示されるように、ウイルスまたはナノ濾過ステップの後に、ＵＦ／ＤＦが続いて、ボトリング前に、標的化薬剤物質濃度および緩衝液条件を達成してもよい。ウイルス濾過およびＵＦ／ＤＦステップは、組み合わせることができ、またはボトリングに許容される精製されたタンパク質を与えることが知られている当該技術分野において知られた任意のプロセス（単数または複数）によって置き換えることができる（図２−４、ステップ９を参照されたい。）。

以下で分かるように、本発明のプロセスは、一貫して高い生成物の品質およびプロセス収率を与えることができる。さらに、伝統的なタンパク質精製プロセスと比較して、本発明のプロセスは、全下流バッチ処理時間を約４０％から５０％減少させ、生産コストを有意に減少させることができる。

一実施形態において、精製プロセス全体は、典型的なものよりも少ない時間で終了することができ、例えば、プロセス全体は、５日未満で達成され得る。例えば、ステップ１および２またはステップ３および４またはステップ５、６および７（図３−４において破線で示される）は、それぞれ、１日以下で終了することができる。これは、典型的な３カラムプロセスに必要とされる精製時間の約２分の１である。

以下の実施例は、本発明の種々の実施形態を記載する。本明細書における特許請求の範囲内の他の実施形態は、本明細書の検討または本明細書に開示されている本発明の実施から当業者に明らかとなる。本明細書および実施例は、例示のみであると考えられ、本発明の範囲および精神は、実施例に続く特許請求の範囲によって示されることが意図される。

［実施例１］
精製実験が実行され、収率および純度について、標準的な３カラムプロセスと比較された。ＭＡｂ Ａの浄化された回収物（本明細書では「ＣＨ」として称される）およびＭＡｂ ＢのプロテインＡ溶出液（本明細書では「ＰＡＥ１」として称される）がこの研究に使用された。各々のタンパク質試料の２つの処理を実施した（ケース１およびケース２）。

手順
試料が遠心分離され、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されているＭｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）Ｐｏｄデプスフィルターシステム、ＸＯＨＣ媒体を使用して濾過された。濾過後、最終濃度が０．５％（ｖ／ｖ）であるＴｗｅｅｎ（登録商標）８０が浄化された回収物に添加され、混合物はアイスパックを用いて冷却された。５ｃｍ（内径（ｉ．ｄ．））×２０ｃｍ（カラム長）のＰｒｏＳｅｐ（登録商標）Ｕｌｔｒａ Ｐｌｕｓカラムは捕捉のために使用された。平衡後、ＭＡｂ ＡのＣＨを４５ｇ／Ｌまで４００ｃｍ／時でカラムに充填し、続いて、平衡および中間塩緩衝液を用いて洗浄し、次にｐＨ３．５の酢酸緩衝液を用いて溶出した。次の処理前に、カラムは０．１５Ｍのリン酸を使用して再生された。次に、溶出液プールを混合し、０．５Ｍのリン酸を用いてｐＨ３．５になるように滴定し、１時間温置し、次に、１ＭのトリスｐＨ９．５緩衝液を使用してｐＨ８．１に中和した。プールの伝導度は、Ｍｉｌｌｉ−Ｑ（登録商標）水を使用して６−８ｍＳ／ｃｍに調整された。

２セットの条件がその後のステップのために評価された。１つ目のケースにおいて、ｐＨ不活性化されたプロテインＡプールは、６０Ｌ／ｍ^２の充填で２３ｃｍ^２のＭｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）ミニＸＯＨＣフィルター、続いて、Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ Ｓｔｅｄｉｍ Ｂｉｏｔｅｃｈから市販されている、１３ｃｍ^２の０．４５／０．２２μｍのＳａｒｔｏｐｏｒｅ（登録商標）２メンブレンフィルターを通して濾過された。２つの目のケースでは、２つのＭｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）ミニＸＯＨＣフィルターは連続して接続され、プロテインＡ溶出液プールが１デバイスあたり１００Ｌ／ｍ^２で充填された。次に、各々の濾過物は、（１）１ｃｍ（ｉ．ｄ．）×７ｃｍのＣａｐｔｏ（登録商標）付着カラムに；または（２）０．６６ｃｍ（ｉ．ｄ．）×２１．３ｃｍのＱ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（登録商標）Ｆａｓｔ Ｆｌｏｗ（ＱＳＦＦ）カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販）を含む標準的な３カラムプロセスにおいて流され、続いて結合−溶出液が、０．６６ｃｍ（ｉ．ｄ．）×１５．２ｃｍのＰｈｅｎｙｌ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（登録商標）ＨＰカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販）上で精製された。詳細な細かい精製条件を表１に概要する。全てのステップは室温で操作された。

類似の実験がＭＡｂ ＢについてＰＡＥ１を精製するために実行された。浄化された回収物から開始する代りに、プロテインＡ溶出液プール試料がこのケースにおいて使用された。ＸＯＨＣデプスフィルターは６０Ｌ／ｍ^２まで充填され、Ｃａｐｔｏ（登録商標）付着カラムは２つの処理において２００から２５０ｇ／Ｌまで充填された。ＨＣＰ、浸出されたプロテインＡ、凝集体／断片およびＤＮＡなどの主要な不純物、ならびにステップ収率は各々のステップについて測定された。

結果
図５−８は、３カラムプロセス（プロテインＡ−ＱＳＦＦ−フェニルとして付される）対本発明の２カラムプロセス（プロテインＡ−Ｃａｐｔｏ付着として付される）について、各々のユニット操作後のＨＣＰ、浸出されたプロテインＡ、凝集体およびＤＮＡのレベルを示す。図から分かるように、プロテインＡ溶出液プール（プロテインＡ溶出液として付される）は、約１７００から２０００ｎｇ／ｍｇのＨＣＰ、１５から２６ｎｇ／ｍｇの浸出されたプロテインＡおよび２．７％から３．５％の高分子量種（ＤＮＡはこのケースではアッセイされなかった。）を含有していた。低ｐＨ不活性化後、プロテインＡ溶出液は、２つの異なる充填レベルでＸＯＨＣデプスフィルターを通して濾過された。

２つのＸＯＨＣフィルターが連続して組み立てられ、各々のフィルターが１００Ｌ／ｍ^２（したがって、全フィルター面積に基づく平均充填が５０Ｌ／ｍ^２である。）まで充填されたケース１において、ほぼ全てのＨＣＰが除去され、残留ＨＣＰレベルは約１．８から約２．４ｎｇ／ｍｇであった（図においてＸＯＨＣ濾過物として示されている）。さらに、約６５％の浸出されたプロテインＡおよび約５４％の凝集体が除去された。また、宿主細胞ＤＮＡは、検出を下回るレベルまで生成物プールから除去された。ケース２において、ただ１つのＸＯＨＣフィルターが使用され、６０Ｌ／ｍ^２まで充填された。これは、幾分高い不純物レベル：約５６ｎｇ／ｍｇのＨＣＰ、約７．２から８．６ｎｇ／ｍｇのプロテインＡ、約１．８％から２．０％の凝集体および約３０から４０ｐｇ／ｍｇのＤＮＡをもたらした。不純物レベルにおける差異にもかかわらず、両方のＸＯＨＣ濾過物は、その後のクロマトグラフィーステップを通して、標準的なＱプラスフェニルカラム（標準の３カラムプロセス）またはＣａｐｔｏ（登録商標）付着カラム（２カラムプロセス）のいずれかによって処理された場合、許容される最終生成物の品質を得るまで精製された（図においてフロースルーとして示される）。Ｃａｐｔｏ（登録商標）付着フロースループールは、典型的な許容される限界（＜１０ｎｇ／ｍｇ）内にある４ｎｇ／ｍｇ未満のＨＣＰを含有していた。このステップは、Ｑおよびフェニルカラムの両方よりも効果的なプロテインＡ排除を与えるようであり、残留プロテインＡレベルは１ｎｇ／ｍｇ未満であった。さらに、両方のプロセスからの最終生成物の凝集体レベルは同程度の１％未満であり、ＤＮＡは定量限界を下回っていた。図８ａおよび８ｂは、各々の精製ステップについて生成物の収率を概要する。大部分の他のユニット操作のように、２カラムプロセスは、Ｑおよびフェニル操作の合算した収率に類似して、９０％のステップ収率を与え、したがって、両方のプロセスについての全体的な処理収率を同程度なものにした。

高性能のデプスフィルター、例えば、正電荷の官能性を有するＭｉｌｌｉｓｔａｋ＋（登録商標）Ｐｏｄ ＸＯＨＣデプスフィルターシステムを２カラムプロセスにおいて使用することによって、生成物の収率に有意に影響を及ぼすことなく、不純物排除のロバスト性が高められる。図１０ａは、異なる供給物充填条件でのＸＯＨＣデプスフィルターを通してのプロテインＡ溶出液プールの濾過物におけるＨＣＰレベルを示す。より高いｐＨおよびより低い充填レベルがより良好なＨＣＰ排除を与える。また、濾過物の別のＸＯＨＣフィルターの第２の通過は、さらなるカラム精製なしに、ＨＣＰのほぼ完全な排除をもたらす。また、類似の傾向は、図５−８に例証されるように、ケース１および２において観察された。したがって、混合モード中間／仕上げステップ前のデプスフィルターの適切なサイズ調整は、プロセス全体での生成物およびプロセスに関連した不純物のロバストな排除、ならびに品質の高い材料の一貫した製造を確実にする。

図１０ｂは、３０００Ｌの製造規模におけるプロテインＡ捕捉／ｐＨ不活性化後の材料へのＸＯＨＣデプスフィルターの適用を例証する。原料は、ｐＨ７．９および５．４ｍＳ／ｃｍの伝導度に調整され、４０Ｌ／Ｍ^２のデプスフィルター面積で充填された。濾過中に採取された試料は、Ｑメンブレンデバイスを横切る濾過前に、原料からの残留ＨＣＰの５００倍超の除去を示す。

異なるＭＡｂ分子についての２カラムプロセスの一般的な適用性を査定するために、本発明者らはまた、前述の処理条件下でＭＡｂ ＢのＰＡＥ１を評価した。図１１ａおよび１１ｂに示されるように、全体的なプロセス収率および最終生成物の純度は、ＭＡｂ ＡのＣＨについて得られたものと類似し、また、この分子についての標準の３カラムプロセスにおいて観察されたものと同程度であった。したがって、このプロセスは、モノクローナル抗体の大規模の精製のためのプラットフォーム技術となる可能性を有する。

高性能のプロテインＡ樹脂を使用し、深層濾過を混合モードフロースルー操作と統合することによって、本発明の２カラムプロセスは、標準の３カラムプロセスと同等の収率および生成物純度を与えることができる。プロテインＡ捕捉前に使用される別の界面活性剤不活性化ステップは、このプロセスに対して付加的なウイルス排除を与えることができる。さらに、このプロセスは、硫酸アンモニウム塩を使用する必要性を除き、機械設備、タンク容量、カラムパッキング、清浄および検証の量を減らし、バッチ処理時間を有意に減少させ、最終的にはプロセスの経済的側面を改善する。

［実施例２］
この実施例では、ＭＡｂ ＡのＭａｂＳｅｌｅｃｔ（商標）プロテインＡ溶出液（本明細書において「ＰＡＥ２」と称される）は、ｐＨ不活性化され、１Ｍのトリス、ｐＨ９．５緩衝液を用いてｐＨ８に中和され、次に、Ｓａｒｔｏｐｏｒｅ ２ ０．４５／０．２２μｍの滅菌フィルターが各々に続くＣＵＮＯ ６０／９０ ＺＡおよびｄｅｌｉｐｉｄデプスフィルターの連結を通して濾過された。次に、濾過物は、５ＭのＮａＯＨを用いてｐＨ９．５に調整され、伝導度の範囲が６−７ｍＳ／ｃｍになるように水で希釈された。この濾過物は、約３％の凝集体、１５ｎｇ／ｍｇのＨＣＰおよび１ｎｇ／ｍｇ未満のプロテインＡを含有していた。プロテインＡ排除をより良好に査定するために、試料は、５ｍＬのＣａｐｔｏ（登録商標）付着カラムに充填される前に、付加的な２０ｎｇ／ｍｇのＭａｂＳｅｌｅｃｔ（商標）プロテインＡがスパイクされた。２つの処理は室温で実施された。特定の条件を表２に概要される。溶出液プールは、収率、ＨＣＰ、プロテインＡおよび凝集体／断片レベルについて分析された。

表３は、ＰＡＥ２についての結合−溶出液モードにおけるＣａｐｔｏ（登録商標）付着カラムを利用する本発明のプロセスの精製性能を概要する。不純物レベルは、標準の３カラムプロセスによって得られるものと同程度である。収率は、標準の３カラムプロセスと比較して、この２カラムプロセスにおいて僅かに低かったが、この２カラムプロセスの性能は、許容される範囲内であったが、さらに最適化することができ、それにより、生成物純度を損なうことなしにステップ収率を増加させることができる。

［実施例３］
別セットの精製実験は、プロテインＡ捕捉、低ｐＨ不活性化、ＸＯＨＣ深層濾過および最終仕上げ用の陰イオン交換メンブレンからなるプロセスを用いて実行された。再度、ＭＡｂ ＡについてのＣＨがこの研究において使用され、２つの処理がＸＯＨＣデプスフィルターについて異なる充填レベルで実施された（ケース１およびケース２）。プロテインＡ捕捉、ｐＨ不活性化およびＸＯＨＣ濾過ステップは、実施例１において示されるのと同じように操作された。しかしながら、フェニルカラムはこのプロセスから取り除かれ、ＱＳＦＦカラムは、フロースルーモードで同様に処理される０．０８ｍｌのＣｈｒｏｍａＳｏｒｂ（登録商標）メンブレンデバイス（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）で置き換えられた。ＣｈｒｏｍａＳｏｒｂデバイスは、製造業者のプロトコールに従って、湿らせ、清浄され、５０ｍＭのＮａＣｌを含む２５ｍＭのトリス緩衝液（ｐＨ８）を用いて平衡にされ、次に、３ｋｇ／Ｌの充填および１ｍｌ／分の流速で流入する供給材料が投与される。充填後、デバイスは、同じ流速で平衡緩衝液を用いて洗浄された。フロースルー画分は、充填での２００ｍＡＵ（ＵＶ２８０）から洗浄での２００ｍＡＵでプールされた。ＨＣＰ、浸出されたプロテインＡ、凝集体／断片およびＤＮＡなどの主要な不純物は各々のステップ後に測定された。また、このプロセスは、収率および純度について、標準の３カラムプロセス（実施例１において詳述される）と比較された。

図１２−１５は、１カラムプロセス対３カラムプロセスにおける各々のユニット操作について不純物プロフィールを例証する。先に検討したように、相対的に低い供給物充填がＸＯＨＣデプスフィルターに適用された場合（ケース１）、ＨＣＰ、凝集体、浸出されたプロテインＡおよびＤＮＡは、より効果的に減少し、結果として非常に低い残留不純物レベルをもたらした。このようなＰＯＤ濾過物がＱメンブレンを通してさらに処理された場合、不純物の全てが許容されるレベルまでさらに排除された。例えば、ケース１におけるＱメンブレン濾過物は、約０．７ｎｇ／ｍｇのＨＣＰ、１．５ｎｇ／ｍｇのプロテインＡ、１．４％の凝集体および定量限界を下回るＤＮＡを含有していた。凝集体レベルはフェニル溶出液において見られたものよりも僅かに高いが、ｐＨ、伝導率および充填レベルを含むＱメンブレンについてのプロセス条件を最適化することによってさらに最少にすることができた。あるいは、Ｑメンブレンステップ前にデプスフィルターのサイズを大きくすることによって、不純物レベルはここで観察されたものから低下することができた。図１６に示されるように、Ｑメンブレンのフロースルーについてのステップ収率は、Ｑカラムについてのステップ収率と同程度であった；このようにして、フェニルカラムを除くことは、全処理時間を減少させただけでなく、２カラムプロセスについての全体的な精製収率を増加させた。

限定されないが、全ての書面、刊行物、特許、特許出願、発表、教科書、報告書、原稿、冊子、本、インターネット投稿、学術論文および／または定期刊行物を含む本明細書において引用された全ての参考文献は、それらの全体が参照により本明細書に組み込まれている。本明細書における参考文献の検討は、単に、それらの著者らによってなされた主張を概要することを意図し、いずれの参考文献も従来技術を構成することを認めるものではない。本出願人は、引用された参考文献の正確さと適切性に異論を申し立てる権利を留保する。

本発明に対するこれらのおよび他の変更および改変は、添付の特許請求の範囲により具体的に記載されている本発明の精神および範囲から逸脱することなく、当業者によって実施され得る。さらに、種々の実施形態の態様は、全体としてまたは部分的に入れ替えてもよいことを理解されたい。さらに、当業者であれば、上記の説明は、単なる例示であり、このような添付の特許請求の範囲においてさらに記載されるように、本発明を限定することを意図されないことが理解されよう。したがって、添付の特許請求の範囲の精神および範囲は、そこに含まれる形態の説明に限定されるべきでない。

Claims (40)

1. 治療用タンパク質を精製するための方法であって、
   ａ．タンパク質を含有する試料を提供するステップ；
   ｂ．試料を、捕捉クロマトグラフィー樹脂を含む第一のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第１の溶出液を提供するステップ；
   ｃ．試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後、第１の溶出液を、デプスフィルターを通して処理して、タンパク質を含む濾過された溶出液を提供するステップ；および
   ｄ．第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理された後、濾過された溶出液を、混合モードクロマトグラフィー樹脂を含む第二のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第２の溶出液を提供するステップ
   を含み、
   但し、第一及び第二のクロマトグラフィー工程を通しての処理が、前記方法の唯一のクロマトグラフィー工程である、前記方法。
2. 捕捉クロマトグラフィー樹脂が、アフィニティー樹脂、イオン交換樹脂および疎水性相互作用樹脂からなる群から選択される、請求項１の方法。
3. 捕捉クロマトグラフィー樹脂が、プロテインＡ樹脂、プロテインＧ樹脂、プロテインＡ／Ｇ樹脂およびプロテインＬ樹脂からなる群から選択される、請求項１の方法。
4. タンパク質が、タンパク質断片、抗体、モノクローナル抗体、免疫グロブリンおよび融合タンパク質からなる群から選択される、請求項１の方法。
5. 試料が細胞培養物である、請求項１の方法。
6. 試料が、捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理される前に浄化される、請求項１の方法。
7. 試料が、遠心分離、精密濾過、限外濾過、深層濾過、滅菌濾過および界面活性剤による処理からなる群から選択される浄化方法によって浄化される、請求項６の方法。
8. 第１の溶出液が、捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後、デプスフィルターを通して処理される前にウイルス不活性化に供される、請求項１の方法。
9. ウイルス不活性化が、酸、界面活性剤、化学物質、核酸架橋剤、紫外光、ガンマ線照射および熱による処理からなる群から選択される方法を含む、請求項８の方法。
10. ウイルス不活性化が、第１の溶出液のｐＨを３から４のｐＨに下げることを含む、請求項８の方法。
11. 第１の溶出液が、ウイルス不活性化中に３０分から９０分間温置される、請求項１０の方法。
12. 濾過された溶出液が２度デプスフィルターを通して処理される、請求項１の方法。
13. 濾過された溶出液が同じデプスフィルターを通して２回処理される、請求項１２の方法。
14. 濾過された溶出液が、２つの別々のデプスフィルターを通して処理される、請求項１２の方法。
15. 混合モードクロマトグラフィー樹脂が、陰イオン交換、陽イオン交換、疎水性相互作用、親水性相互作用、水素結合、パイ−パイ結合および金属親和性からなる群から選択される１つまたは複数のクロマトグラフィー技術を利用するクロマトグラフィー樹脂を含む、請求項１の方法。
16. 混合モードクロマトグラフィー樹脂が、陰イオン交換および疎水性相互作用クロマトグラフィー技術の組合せを利用するクロマトグラフィー樹脂を含む、請求項１の方法。
17. 混合モードクロマトグラフィー樹脂を通して処理した後、第２の溶出液がさらなる濾過に供される、請求項１の方法。
18. さらなる濾過が、ウイルス濾過、ナノ濾過、限外濾過およびダイアフィルトレーションからなる群から選択される方法のうちの１つまたは複数を含む、請求項１７の方法。
19. 濾過された溶出液が、フロースルーモードで混合モードクロマトグラフィー樹脂を通して処理される、請求項１の方法。
20. 濾過された溶出液が、結合−溶出モードで混合モードクロマトグラフィー樹脂を通して処理される、請求項１の方法。
21. 治療用タンパク質を精製するための方法であって、
    ａ．タンパク質を含有する試料を提供するステップ；
    ｂ．試料を、捕捉クロマトグラフィー樹脂を含む第一のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第１の溶出液を提供するステップ；
    ｃ．試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後、第１の溶出液を、デプスフィルターを通して処理して、タンパク質を含む濾過された溶出液を提供するステップ；および
    ｄ．第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理された後、濾過された溶出液を、メンブレン吸着材を含む第二のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第２の溶出液を提供するステップ
    を含み、
    但し、第一及び第二のクロマトグラフィー工程を通しての処理が、前記方法の唯一のクロマトグラフィー工程である、前記方法。
22. 捕捉クロマトグラフィー樹脂が、アフィニティー樹脂、イオン交換樹脂および疎水性相互作用樹脂からなる群から選択される、請求項２１の方法。
23. 捕捉クロマトグラフィー樹脂が、プロテインＡ樹脂、プロテインＧ樹脂、プロテインＡ／Ｇ樹脂およびプロテインＬ樹脂からなる群から選択される、請求項２１の方法。
24. タンパク質が、タンパク質断片、抗体、モノクローナル抗体、免疫グロブリンおよび融合タンパク質からなる群から選択される、請求項２１の方法。
25. 試料が細胞培養物である、請求項２１の方法。
26. 試料が、捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理される前に浄化される、請求項２１の方法。
27. 試料が、遠心分離、精密濾過、限外濾過、深層濾過、滅菌濾過および界面活性剤による処理からなる群から選択される浄化方法によって浄化される、請求項２６の方法。
28. 第１の溶出液が、デプスフィルターを通して処理される前にウイルス不活性化に供される、請求項２１の方法。
29. ウイルス不活性化が、酸、界面活性剤、化学物質、核酸架橋剤、紫外光、ガンマ線照射および熱による処理からなる群から選択される方法を含む、請求項２８の方法。
30. ウイルス不活性化が、第１の溶出液のｐＨを３から４のｐＨに下げることを含む、請求項２８の方法。
31. 第１の溶出液が、ウイルス不活性化中に３０から９０分間温置される、請求項２９の方法。
32. 濾過された溶出液が、２度デプスフィルターを通して処理される、請求項２１の方法。
33. 濾過された溶出液が同じデプスフィルターを通して２回処理される、請求項２１の方法。
34. 濾過された溶出液が２つの別々のデプスフィルターを通して処理される、請求項２１の方法。
35. メンブレン吸着材が、メンブレンイオン交換体、混合モードリガンドメンブレンおよび疎水性メンブレンからなる群から選択される、請求項２１の方法。
36. 第２の溶出液が、２度メンブレン吸着材を通して処理される、請求項２１の方法。
37. メンブレン吸着材を通して処理された後、第２の溶出液がさらなる濾過に供される、請求項２１の方法。
38. さらなる濾過が、ウイルス濾過、ナノ濾過、限外濾過およびダイアフィルトレーションからなる群から選択される方法のうちの１つまたは複数を含む、請求項３７の方法。
39. ａ．試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後に、第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理され；
    ｂ．第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理された後に、濾過された溶出液がメンブレン吸着材を通して処理される、請求項２１の方法。
40. 治療用タンパク質を精製するための方法であって、
    ａ．タンパク質を含有する試料を提供するステップ；
    ｂ．試料を、捕捉クロマトグラフィー樹脂を含む第一のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第１の溶出液を提供するステップ；
    ｃ．試料が捕捉クロマトグラフィー樹脂を通して処理された後、第１の溶出液を、デプスフィルターを通して処理して、タンパク質を含む濾過された溶出液を提供するステップ；および
    ｄ．第１の溶出液がデプスフィルターを通して処理された後、濾過された溶出液を、モノリスを含む第二のクロマトグラフィー工程を通して処理して、タンパク質を含む第２の溶出液を提供するステップ
    を含み、
    但し、第一及び第二のクロマトグラフィー工程を通しての処理が、前記方法の唯一のクロマトグラフィー工程である、前記方法。

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