JP6003018B2 - 肝保護剤、医薬組成物、および細胞等保護用組成物 - Google Patents
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(参考文献1 A nobel ornitihe−containing tripeputidde isolated from the extract of the brackish−water bivalve Corbicula japonica, Biochimica et Biophysica Acta, Vol.1770,pp.790−796(2007))
(A1) 生理食塩水投与と比較して、肝障害マーカーASTレベルが低下する。
(A2) 生理食塩水投与と比較して、肝障害マーカーALTレベルが低下する。
(B) 肝臓組織標本中の脂肪球が認められない。
(C) 生理食塩水投与と比較して、WST−8を用いた細胞内ミトコンドリア活性の低下が認められない。
(D) 生理食塩水投与と比較して、スポットケムを用いた細胞内LDHのリリース量増加が抑制される。
(3) (1)または(2)に記載の肝保護剤を含有することを特徴とする、肝保護用の医薬組成物。
(4) 哺乳類の肝疾患治療方法に用いられることを特徴とする、請求項3に記載の医薬組成物。
(5) (1)または(2)に記載の肝保護剤を含有することを特徴とする、食品。
(6) (1)または(2)に記載の肝保護剤を用いることを特徴とする、細胞、人工組織または臓器の保護方法。
(7) (1)または(2)に記載の肝保護剤を含有することを特徴とする、肝細胞、肝臓に係る人工組織、または肝臓保護用の組成物。
本発明の肝保護剤、およびそれを含有する各種の組成物は、N末端からβ−アラニン、オルニチン、オルニチンの順でペプチド結合したトリペプチド(該トリペプチド。化学式は、前掲「化1」)を有効成分として含むものである。該トリペプチドは、既に本願発明者等が提案した方法、すなわちシジミエキスから分離精製することが可能である(特許文献3)。
(実施例1 シジミエキスの調製)
砂抜き後のシジミ貝500gに1Lの水道水を加え、加熱し沸騰後20分間加熱し、4枚重ねガーゼおよびろ紙(No.2、アドバンテック東洋)を用いて得られたろ液を凍結乾燥し、粉末化した。収量は6.2gであった。また、得られたシジミエキス粉末1gに含まれる該トリペプチド含量は5.7mgであった。
該トリペプチドの調製は、以下のとおりに行った。シジミ貝から熱水抽出して得られたシジミエキスを分画分子量10,000の限外ろ過膜を用いた限外ろ過に供し、高分子量の糖質やタンパク質を除去した。次いで、得られた低分子画分を2種類のイオン交換樹脂(AG50W×8、Bio-RadおよびトヨパールCM-650C、東ソー)を用いて精製後、さらにシリカゲル(Silica gel 60、メルク)を用いて純度90%以上に精製した。得られた該トリペプチドの純度検定は、高速液体クロマトグラフィを用いて行った。オルトフタルアルデヒドと2-メルカプトエタノールを用いて該トリペプチドを蛍光標識し、カラムにはマイティシルRP−18 GP(関東化学)、移動相には50mM酢酸ナトリウム水溶液(pH5.0):メタノール:テトラヒドロフラン=35:58:7を用い、流速1ml/minの条件で行った。検出には、蛍光検出器(F−1050、日立製作所、Ex 340nm、Em 455nm)を用いた。
幹細胞由来肝組織の作製は、本願発明者等により編み出された胚性幹細胞由来肝組織の作製手法に基づいて行った(特開2007−014273)。すなわち、トリプシン処理を施した胚性幹細胞からハンギングドロップ法により胚様体を作製し、5日間培養した後に、ゼラチンコートしたプラスチックディッシュに50個の胚様体を接着させ、分化培地で18日間培養し、肝組織を作製した。
実験動物:C57BL/6Jマウス
試験区分:
・対照群:アルコール入り飼料+生理食塩水
・試験群1:アルコール入り飼料+10%シジミエキス(生理食塩水に溶解)
・試験群2:アルコール入り飼料+10μM該トリペプチド(生理食塩水に溶解)
プロトコール:
対照群および各試験群ともに、動物入荷後よりアルコールを含有しない通常飼料を3日間与えて飼育した後、アルコール入り飼料に切り替えて7日間飼育した。その後、アルコール入り飼料の給餌を継続しながら、対照群には生理食塩水、試験群1には10%シジミエキス、試験群2には10μM該トリペプチドをそれぞれ1日1回200μlずつゾンデを用いて経口投与した。アルコールを含有しない通常飼料からアルコール入り飼料に切り替えた7日後(7)、その後シジミエキスあるいは該トリペプチドを投与した4日後(7+4)、および同じく7日後(7+7)にそれぞれ採血を行い、肝障害マーカーである血漿中のトランスアミナーゼ活性(AST、ALT)を測定した。また、肝組織標本の作製は常法に従い、試験終了後(7+7)、肝臓を摘出し、10%ホルマリン液を用いて固定した。その後、パラフィンブロックに包埋し、ミクロトームによって得られた切片をヘマトキシリン・エオジン(HE)染色して観察した。
図1は、マウスにおける本発明の該トリペプチドおよびシジミエキス投与後の肝障害マーカーASTレベルの変化を示すグラフである。また、
図2は、マウスにおける本発明の該トリペプチドおよびシジミエキス投与後の肝障害マーカーALTレベルの変化を示すグラフである。これらに図示するように、いずれの区分においても、アルコール入り飼料を7日間摂取することにより、顕著な数値の上昇が確認された。図1のシジミエキス(試験群1)および該トリペプチド(試験群2)を投与した区分4日後(7+4)および7日後(7+7)において、生理食塩水を投与した対照群と比較し顕著な低下が認められた。また、図2のALTにおいても同様の傾向が認められたが、シジミエキスよりも該トリペプチドにおいて、より高い効果が認められた。以上の結果より、該トリペプチドに肝臓保護作用があることが確認された。
図3−1〜3−4は、マウスにおける本発明の該トリペプチドならびにシジミエキス投与後、および対照群等の肝組織標本を示す写真である。このうち図3−1はコントロール飼料(生理食塩水)、図3−2はアルコール入り飼料+生理食塩水(対照群)、図3−3はシジミエキス(試験群1)、図3−4は本発明に係る該トリペプチド(試験群2)投与後の肝組織標本を、それぞれ示す写真である。なお各写真中のスケールバーは50μmである。図3−2に示されるように生理食塩水を投与した対照群では、白い粒状物として表される脂肪球が観察され、脂肪肝になっていることが分かった。一方、図3−4に示されるように該トリペプチド投与群では脂肪球は認められず、該トリペプチドの肝臓保護作用が確認された。なお、図3−3に示されるように、シジミエキス投与群においても同様に、脂肪球は観察されなかった。
肝組織作製に用いた幹細胞:
・ST1(マウスBALB/c由来ES細胞)
試験区分:
・対照群1:アルコール無添加培地+リン酸緩衝生理食塩水(PBS)
・対照群2:3%アルコール添加培地+リン酸緩衝生理食塩水(PBS)
・試験群1:3%アルコール添加培地+17μg/mlシジミエキス(PBSに溶解)
・試験群2:3%アルコール添加培地+17μg/ml該トリペプチド溶液(PBSに溶解)
プロトコール:
上記の幹細胞を用いて作製した肝組織を用いて、アルコール添加により細胞障害を誘発し、その際に試験物質を添加しその効果を検討した。培地のアルコール濃度は3%とした。培養24時間後に、WST−8を用いた細胞内ミトコンドリア活性における細胞活性評価、スポットケムを用いた細胞内LDHのリリース量による細胞障害性評価、および尿素合成能による肝機能評価により試験物質の肝保護効果を検討した。
図4は、幹細胞由来肝組織における該トリペプチドおよびシジミエキスのWST−8を用いた細胞内ミトコンドリア活性による細胞活性評価の結果を示すグラフである。図示するように、ST1細胞由来肝組織による試験において対照群1と対照群2を比較すると、培地に3%アルコールを添加することにより細胞活性が低下した。しかし、シジミエキスを添加することにより細胞活性の低下が抑えられており、該トリペプチド添加区分においては細胞活性の低下がほとんど認められなかった。以上の結果から、該トリペプチドの肝臓保護作用が確認された。
図5は、幹細胞由来肝組織における該トリペプチドおよびシジミエキスのスポットケムを用いた細胞内LDHのリリースによる細胞障害性の結果を示すグラフである。図示するように、ST1細胞由来肝組織による試験において対照群1と対照群2を比較すると、培地に3%アルコールを添加することによりLDHのリリース量が増加した。しかし、シジミエキスを添加することによりLDHのリリース量の増加が抑制されており、該トリペプチド添加区分においては、さらに高い抑制効果が認められた。以上の結果から、該トリペプチドの肝臓保護作用が確認された。
図6は、幹細胞由来肝組織における該トリペプチドおよびシジミエキスの尿素合成能による関機能評価の結果を示すグラフである。図示するように、ST1細胞由来肝組織による試験において対照群1と対照群2を比較すると、培地に3%アルコールを添加することにより尿素合成能が抑制されており、肝機能の低下することが示された。しかし、シジミエキスを添加することにより尿素合成能の低下が抑えられており、さらに該トリペプチド添加区分においては、尿素合成能の低下がほとんど認められなかった。以上の結果から、該トリペプチドの肝臓保護作用が確認された。
マウスに、該トリペプチドを静脈内または経口投与したところ、両投与法において毒性は認められなかった。また、マウス肝臓から調製された肝細胞および肝細胞株での該トリペプチドの毒性試験を試みたところ、毒性は特に認められなかった。
本発明の肝保護剤は、適当な医薬用の担体もしくは希釈剤と組み合わせて医薬とすることができ、通常の方法によって各種製剤化可能で、経口又は非経口投与するための固体、半固体、液体又はエアロゾールの剤形に処方することができる。処方にあたっては、本発明物質を単独で用いるか、あるいは他の医薬活性成分と適宜組み合わせて処方してもよい。医薬組成物の配合例をあげるが、本発明がこれに限定されるものではない。
配合例1(医薬組成物):錠剤(1錠当たり)
クエン酸カルシウム 97mg
結晶セルロース 100mg
ステアリン酸マグネシウム 2mg
該トリペプチド(肝保護剤) 1mg
200mg
以下に本発明の肝保護剤の配合例をあげるが、本発明がこれに限定されるものではない。
配合例2(食品):飲料(100g当たり)
果糖ブドウ糖液糖 30.0g
該トリペプチド(肝保護剤) 0.001g
香料 適量
精製水 残余
100.0g
Claims (5)
- 下記式で表わされるN末端からβ−アラニン、オルニチン、オルニチンの順でペプチド結合したトリペプチドを主成分とし、該トリペプチドは、所定条件にてマウスに投与した場合に下記(A1)〜(D)の少なくともいずれかであることを特徴とする、肝保護剤。
(A1) 生理食塩水投与と比較して、肝障害マーカーASTレベルが低下する。
(A2) 生理食塩水投与と比較して、肝障害マーカーALTレベルが低下する。
(B) 肝臓組織標本中の脂肪球が認められない。
(C) 生理食塩水投与と比較して、WST−8を用いた細胞内ミトコンドリア活性の低下が認められない。
(D) 生理食塩水投与と比較して、スポットケムを用いた細胞内LDHのリリース量増加が抑制される。
- 前記トリペプチドの医薬的または食品的に許容される塩を主成分とすることを特徴とする、請求項1に記載の肝保護剤。
- 請求項1または2に記載の肝保護剤を含有することを特徴とする、肝保護用の医薬組成物。
- 哺乳類の肝疾患治療方法に用いられることを特徴とする、請求項3に記載の医薬組成物。
- 請求項1または2に記載の肝保護剤を含有することを特徴とする、肝細胞、肝臓に係る人工組織、または肝臓保護用の組成物。
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