JP5096169B2 - アミロイド沈着に付随する炎症および活性化されたマイクログリアにかかわる脳の炎症の処置法 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は２００５年２月１日出願の米国予備出願第６０／６４８，３８３の優先権を主張するものであり、そのすべての内容は参照により本願明細書に援用したものとする。

背景技術
本発明は、アミロイド沈着形成の抑制および既に形成されたアミロイド沈着の溶解に関するものであり、ならびに脳の炎症ならびに脳内および体内の他の部分のアミロイドまたはアミロイド様の沈着に付随する炎症を治療するための方法および医薬組成物に関する。

関連技術の説明
斑形成疾患は、脳におけるアミロイド斑の沈着および神経変性の存在を特徴とする。アミロイド沈着は、ペプチドが凝集して不溶性の塊となることによって形成される。ペプチドの性質は、疾患が異なれば違ってくるが、殆どの場合、凝集体はβプリーツシート構造を有し、コンゴーレッド染料で染色される。早発性アルツハイマー病、遅発性アルツハイマー病および前駆症状アルツハイマー病を含むアルツハイマー病（ＡＤ）に加えて、アミロイド沈着を特徴とする他の疾患としては、例えばＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイスランド症候群、多発性骨髄種およびプリオン病が挙げられる。動物における最も一般的なプリオン病はヒツジおよびヤギのスクレイピーならびにウシの海綿状脳症（ＢＳＥ）である（Wilesmith and Wells, 1991）。ヒトにおいて４種のプリオン病が同定されている：（ｉ）クールー、（ｉｉ）クロイツフェルトヤコブ病（ＣＪＤ）、（ｉｉｉ）Gerstmann-Streussler-Sheinker病（ＧＳＳ）および（ｉｖ）致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）である（Gajdusek, 1977; およびTritschler ら. 1992）。

プリオン病は、正常細胞プリオンタンパク（ＰｒＰＣ）がそれと対応するスクレイピー・イソ型（ＰｒＰＳｃ）へ変換することと関係している。分光学的測定は、ＰｒＰＣのスクレイピー・イソ型への変換に、立体構造の大きな変換が関与していることを示したが、これはプリオン病が他のアミロイド原性の疾患のように、タンパクの立体構造の障害であることを示唆している。ＰｒＰＣからＰｒＰＳｃへの変換はα−ヘリックス二次構造の減少（４２％から３０％へ）とβシート含量の著しい増加（３％から４３％）とを伴っている（Caugheyら、1991およびPan等、1993）。この再構成は、非変性の界面活性剤に対する不溶性およびタンパク分解に対する部分的な抵抗性を含む、異常な物理化学的な性質を伴う。先の研究は、ヒトＰｒＰの１０６−１２６残基（ＰｒＰ１０６−１２６）と相同性を有する合成ペプチドが、ＰｒＰＳｃの病理学的および物理化学的性質の幾つかを有することを示した（Selvagginiら、1993; Tagliaviniら、1993; Forloniら、1993）。このペプチドは、種々の環境において異なった二次構造を獲得し、著明な構造的多形を示す（ＤｅＧｉｏｉａら、１９９４）。このペプチドは、緩衝液中においてはベータシート構造をとる傾向にあり、凝集してプロテーアーゼによる分解に部分的に抵抗性を有するアミロイド原線維になる。最近、抗体３Ｆ４とそのペプチドエピトープ（ＰｒＰ１０４−１１３）との複合体のＸ線結晶解析研究が、プリオン病の発症に必須な構造再編成の成分であると考えられるこの可動性の領域の構造図を提供した（Kanyoら、1999）。フォールディング・アンフォールディングおよび／あるいは可溶化−凝集過程に関与している配列のクラスを同定することは、凝集の予防および／あるいは脱凝集の誘導に基づく斑形成疾患の治療に新しい方向を開くかも知れない（Silen and Agard, 1989; Frenkel等、1998; Horiuchi and Caughey, 1999）。

アルツハイマー病（ＡＤ）は、老年認知症にいたる進行性の疾患である。広義において、この疾患は二つの範疇：老年（典型的には約６５歳を超える）に起こる遅発性のもの、および老年よりずっと前に起こる、例えば３５と６０歳の間に起こる早発性のものに分けられる。この二つの型の疾患では病状は類似しているが、若年において発症する症例においては異常の程度はより重度であり、広範囲に亘っている。この疾患は脳における病変の二つのタイプ、老人斑および神経原線維濃縮体、を特徴とする。老人斑とは、脳組織切片の顕微鏡的解析によって見える、中央における細胞外アミロイド沈着を伴う、径１５０mmまでの不整の好中球の領域である。神経原線維濃縮体とは、一組になって互いに絡み合っている二本の線維よりなるタウタンパクの細胞内沈着物である。

老人斑の主要な構成体はアミロイドベータ（Ａβ）あるいはベータ−アミロイドペプチド（βＡＰあるいはβＡ）と呼ばれるペプチドである。アミロイドベータペプチドはアミロイド前駆タンパク（ＡＰＰ）と呼ばれる前駆タンパクの３９−４３アミノ酸の内部断片である。ＡＰＰタンパク内の数個の突然変異がアルツハイマー病の存在と関連付けられている（Goateら、(1991), バリン７１７からイソロイシン；Chartier Harlanら、(1991), バリン７１７からグリシン；Murrellら、(1991), バリン７１７からフェニルアラニン；Mullanら、(1992)、二重変異、リジン５９５−メチオニン５９６からアスパラギン５９５−ロイシン５９６）。

そのような突然変異は、ＡＰＰのベータ−アミロイドへのプロセシング、具体的にはＡＰＰをベータ−アミロイドの長型（すなわちＡβ１−４２およびＡβ−４３）の増量に導くプロセシングを増加あるいは変化させることにより、アルツハイマー病を引き起こすと考えられている。プレセニリン遺伝子、ＰＳ１およびＰＳ２のような他の遺伝子における突然変異は、間接的にＡＰＰのプロセシングに影響をおよぼして、長型のベータ−アミロイドの増量を引き起こすと考えられている（Hardy, TINS 20, 154, 1997参照）。これらの観察はベータ−アミロイド、具体的にはその長型がアルツハイマー病の原因要素であることを示している。

自己凝集の証拠のある他のペプチドあるいはタンパクも知られており、これらに限られないが、例えばアミリン（amylin）（Youngら, 1994）；ボンベシン（bombesin）、セルレイン（cerulean）、コレシストキニンオクタペプチド（cholecystokinin octapeptide）、エレドイシン（eledoisin）、ガストリン（gastrin）関連ペンタペプチド、ガストリンテトラペプチド、ソマトスタチン（somatostatin）（還元型）、サブスタンスＰ；およびペプチド、黄体形成ホルモン放出ホルモン、ソマトスタチンＮ−Ｔｙｒ（Banks and Kastin, 1992）が挙げられる。

アミロイド線維に関する論文は、円筒型のβ−シートが、Ｘ線および電子顕微鏡データのあるものと一致する唯一の構造であることを示し、アルツハイマーＡβ断片および変異体の線維は、多分二つあるいは三つの同心の円筒型β−シートより成る事を示している（Perutz等, 2002）。完全なＡβペプチドは４２の残基を含んでいるが、これは円筒型の殻の核を構成する丁度よい数である：この発見およびプロリンが存在しないＡβペプチドから成るβ−シートにおける多様で強い静電的相互作用があり得ることが、Ａβペプチドのアルツハイマー病患者において見出される細胞外アミロイドプラクを形成する性質を説明する。もしこの解釈が正しければ、アミロイドは中央に水が充填した腔を有する細い管（ナノチューブ）から成っている。インビトロにおけるアミロイドプラークの成長の可逆性は、プラーク内と溶液中におけるβＡの定常的平衡を示唆する（Maggio and Mantyh, 1996）。βＡのポリメリゼーションは、ペプチド−ペプチド相互作用に依存してβ−プリーツシート原線維を形成すること、およびその反応に他のタンパクがおよぼす促進作用によりアミロイド形成が調節をうけうるかも知れないことが示唆されている。アミロイド形成に干渉することの出来る物質を発見しようとする多くの試みが行われた。最も深く研究された化合物としては、抗体、プロリンのようなベータ−破壊性のアミノ酸から構成されるペプチド、認識モチーフへの荷電基の添加、および構築ブロックとしてのＮ−メチル化アミノ酸の利用が挙げられる（Gazitによる総説, 2002）。

ＤとＬのアミノ酸残基が交互に存在する環状ペプチドは、それ自身を膜に挿入し、膜を脱分極させることにより細菌を殺すナノチューブを形成する（Perutzら、2002）。あるアミロイド線維は導体であって同じ機構で細胞を殺すかも知れないとする示唆もある。

ヘリックスのターンの間の間隙にそれ自身を挿入することができるコンゴーレッドのような芳香族化合物は、円筒の殻を不安定にし、このプロセスを開始するかも知れないが、阻止する方が、より有効であり、多分達成しやすいであろう（Perutzら、2002）。

本明細書におけるいかなる文書の引用も、そのような文書が関連する先行技術であること、あるいは本出願の請求項の特許性に対して重要であると考えられると、認めることを意図するものではない。いかなる文書の内容あるいは日付に関するいかなる言明も、出願人が出願時に利用できる情報に基づいており、そのような言明の正しさを認めるものではない。

発明の概要
本発明は、脳内あるいは体内の他の場所におけるアミロイド沈着に付随する炎症ならびに活性化されたミクログリアにかかわる脳の炎症を抑制または治療するための方法を提供する。その方法は、それを必要とする患者に、野生型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージの有効量を投与することを含む。

本発明は、また活性成分として線維状バクテリオファージの有効量を含む医薬組成物を提供する。

本発明は、更に線維状バクテリオファージを斑形成ペプチドまたは既に形成されたアミロイド沈着物と接触させることにより、アミロイド沈着の形成を抑制し、または既に形成されたアミロイド沈着を脱凝集する方法を提供する。

図１は、ｈＡＰＰトランスジェニックマウスにファージ／ＰＢＳの頭蓋内投与を示す脳の断面の模式図である。ファージを５匹のトランスジェニックマウスに脳内注入した。対側半球にＰＢＳを注入した。マウスは、１時間、２日、３日後にと殺した。それらの脳を５μｍの切片に切り、斑の量を評価するためにチオフラビン−Ｓで染色した。
図２Ａおよび図２Ｂは、ＴｈＴアッセイを用いて線維状ファージによるβ−アミロイド１−４０凝集の脱凝集（図２Ａ）および阻止（図２Ｂ）を示すグラフである。図２Ａにおいて（脱凝集試験）、β−アミロイド（５８μM）を単独で２１日間インキュベートした。２１日目に異なった濃度のファージを加え一晩インキュベートした。図２Ｂにおいて（阻止試験）、β−アミロイド（５８μM）を単独かあるいは線維状ファージと共に７日間インキュベートし、サンプルをＴｈＴ溶液に加え、分光光度計によりアミロイド量を測定した。アミロイド含量は、アミロイド原線維と結合するチフラビン−Ｔを用いて測定した。その蛍光発光は４８５nm波長で検出した。
図３Ａ〜３Ｋは、線維状ファージの存在または非存在下でインキュベートしたβ−アミロイドの電子顕微鏡写真である（倍率 ｘ１００Ｋ）。図３Ａ：β−アミロイド９７μM、ＰＢＳ中ファージの非存在下。β−アミロイドはマウスモノクローン抗体１０Ｄ５で染色し、次いでヤギ抗マウス１２nm金結合抗体で染色した。図３Ｂ〜３Ｃ：０．５nM（１ｘ１０^１０）ファージとインキュベートした、β−アミロイド９７μM。β−アミロイドはマウスモノクローン抗体１０Ｄ５および１２ｍｎ金粒子と結合した二次抗体で染色した。ファージはポリクローナルウサギ抗ファージ血清、次いでヤギ抗ウサギ６nm金結合抗体で標識した。これら二次抗体のシグナルは、ファージまたは一次抗体を含まないサンプルにおいては観察されなかった。図３Ｄ：線維状ファージ（ｆｄ）（１ｘ１０^１０ファージ）はウサギポリクローナル血清で染色した。二次抗体は６nm金粒子と結合させた。図３Ｅ：β−アミロイド近傍の線維状ファージ。ペプチドは、抗ファージ抗体の散在する標識が示すように（矢印）、多分ファージの分解を増大する。この標識は、ファージを単独でインキュベートした時には存在しない（サンプルＤ）。図３Ｆ〜３Ｇ：β−アミロイドのみを３７℃で１０日インキュベートした後（倍率：Ｆ−ｘ３０Ｋ，Ｇ−ｘ１００Ｋ）。図３Ｈ〜３Ｉ：β−アミロイドを単独で１０日間インキュベートし、１０日目に線維状ファージを加えて更に１６時間インキュベートした（Ｈ−Ｘ３０Ｋ，Ｉ−Ｈのｘ１００Ｋの拡大）。図３Ｊ〜３Ｋ：アミロイド原線維と線維状ファージの界面。ファージは原線維の軸に沿って並んでいる（×１００Ｋ）。
図４Ａ〜４Ｃは、球形ファージを既に凝集したβ−アミロイドに加え、一晩インキュベートしたものの電子顕微鏡写真である。β−アミロイドと球形ファージ（図４Ａおよび図４Ｂ）。球形ファージ単独（図４Ｃ）。（倍率 ｘ１００Ｋ）。
図５Ａ〜５Ｃは、ＭＴＴアッセイを用いた、線維状ファージによるＬＡＮ−１細胞に対するβ−アミロイド毒性の阻害を示すグラフである。図５における阻止アッセイに関しては、ファージは２５μMのβ−アミロイドに対して１７６０：１βＡ／ファージのモル比で加えた。混合物を細胞に加えた。生存１００分率は、β−アミロイドの非存在下における細胞の生存率と関連しており（処理−ＰＢＳ）、１００％と考えられる。図５Ｂおよび５Ｃにおいて、βＡ毒性に対して保護するファージの能力を二つの既に凝集させたペプチド：βＡ１−４０およびβＡ１７−４２を用いて測定した。両ペプチド（βＡ１−４０およびβＡ１７−４２）を３７℃で５日間インキュベートした。６日目に線維状ファージを１．２nMの濃度で既に凝集したペプチドに加えて１２時間インキュベートし、前日９６穴プレートに蒔いた細胞株に加えた。細胞は更に３日間増殖させ、ＭＴＴを加えた。３時間後抽出緩衝液を加え、プレートを３７℃で一晩インキュベートした。翌日プレートを５７０nm波長で測定した。
図６Ａおよび６Ｂは、ｈＡＰＰトランスジェニックマウス（SWE2576, Taconic）の一つの脳半球に注入した線維状ファージ（図６Ｂ）と他の半球にＰＢＳのみを注入（図６Ａ）したものを示す。処置３日後にと殺したマウスは、ＰＢＳ処置半球に比べて、斑量の４０％減少を示した。
図７は、経鼻投与後のＢＡＬＢ／ｃマウスにおけるファージの分布を示すグラフである。ＢＡＬＢ／ｃマウスへの経鼻投与後１，３および２４時間における脳と嗅球におけるファージ分布の比較は、投与後１時間であってもファージの存在（標識ファージ、μＣｉ／mg）を示していた。それらの濃度はこの１時間の点以後、減少した。

発明の詳細な説明
β−アミロイドペプチド（βＡ）はアルツハイマー病の二つの特徴の内の一つである。このぺプチドは、強い変性剤によってのみ可溶化される脳組織内の線維状の毒性の凝集体を形成する。これらの神経毒性はペプチド凝集型に関連しているので、脳内のアミロイド原線維沈着の程度を、減少または除去する方向への治療法の開発に多くの努力が注がれてきた。

生理的な条件下では、合成βＡは凝集型を採り、また神経突起からの変化を示し、海馬ニューロンに対する神経毒性を促進する。βＡの凝集は、ｐＨ、ペプチド濃度、温度およびインキュベーション時間に依存することが示されてきた。

本発明者等は、線維状ファージそれ自体が、驚くべきことにインビトロにおいてβＡの凝集を阻害し、および既に形成された凝集体を溶解する能力を有することを発見した。

本発明者等の研究室においては、構造的および遺伝的レベルの両方でよく理解されている線維状ファージ、Ｍ１３、ｆ１、およびｆｄ（Greenwoodら、1991）を用いた。この研究室は、線維状バクテリオファージが、ベクターのその不活性な性質と外来分子を輸送する能力の両方を保持しながら、中枢神経系に浸透する性質を示すことを最初に示した（FrenkelとSolomon, 2002）。

線維状バクテリオファージは、環状の一重鎖ＤＮＡゲノムを含む構造的に関連したウイルスの一群に属する。これらは宿主を増殖性感染中に殺すことはない。Ｆプラスミドを含む大腸菌（Escherichia coli）に感染するファージは、集合的にＦｆバクテリオファージと呼ばれる。これらは哺乳動物細胞には感染しない。

線維状バクテリオファージは、約１〜２ミクロン長および直径６nmのフレキシブルな桿体であり、ＤＮＡコアを囲むタンパクサブユニットのらせん状の殻を持っている。主要な二つのコートタンパク、タンパクｐＩＩＩおよび主要コートタンパクｐＶＩＩＩ、は提示されたタンパクのコピー数において異なっている。ｐＩＩＩが４〜５コピー存在するのに対し、ｐＶＩＩＩは約３０００コピー見つかっている。約５０残基を有する主要コートタンパクｐＶＩＩＩサブユニットは主としてアルファヘリックスであり、そのアルファヘリックスの軸は、ウイルス粒子の軸と小角をなしている。タンパク殻は３つの部分から構成されると考えられている：周囲の溶媒と相互作用し、ウイルス粒子の等電点を低くする酸性残基に富んだ、サブユニットのＮ末端領域によって占められている外表面；タンパクサブユニットが主として相互に作用する、非極性側鎖の１９残基のストレッチを含む殻の内側；およびＤＮＡコアと相互作用をする塩基性残基に富んだ、サブユニットのＣ末端領域によって占められる内側の表面である。実際、全てのタンパク側鎖の相互作用は、サブユニット内で起こるのではなく、コートタンパクアレイにおける異なったサブユニット間で起こるという事実は、これを高分子の集合におけるアルファ−ヘリックスサブユニット間の相互作用の研究のための有用なモデルシステムにすることができる。線維状バクテリオファージの特異な構造が、約１６．３ＭＤの大きさを有しているにもかかわらず脳内への侵入を可能にし、ファージの構造がアミロイド原線維自身に似ていることから、βＡ線維化に干渉する能力に寄与していると考えられる。

上述の事を勘案して、本発明者等は、β−アミロイドペプチドの凝集過程に干渉する線維状ファージの能力を調べ、野性型の線維状ファージをβ−アミロイドペプチドとインビトロにおいて、異なる時間間隔と異なる比でインキュベーションすることが、β−アミロイドの阻止および／あるいは脱凝集を引き起こすことを発見した。更に線維状ファージは細胞の生存に対して保護効果を示す。

最も興奮するようなデータが、線維状ファージ−β−アミロイド原線維を、スライドグラス上で増殖させたマイクログリア細胞とインキュベートした後に得られた。もしβ−アミロイドがマイクログリアを活性化させるなら、ファージは、マイクログリアを活性化させずにそれを溶解する。ファージ技術は、β−アミロイドの抗凝集剤の新しい事実上無限の原料を提供し、Ｆｃ受容体を介してマイクログリアを過剰に活性化させうる抗体の有害な効果を阻止する。

バクテリオファージは、遺伝子および／または送達媒体として動物ウイルスよりも明らかに有利である。それらは、動物ウイルスベクターよりも大規模生産および精製を非常に効率よく安価に行うことができる単純なシステムだからである。更に、ＤＮＡの大きな部分をファージミドベクターへ効率よくパッケージすることができる。原核生物の感染、構築および複製のために進化してきたことから、バクテリオファージは哺乳動物細胞内で複製もできないし、天然の指向性も有していない。このことで、非特異的な遺伝子送達の可能性は極めて低い。ファージベクターは、動物細胞において複製可能な構成要素をつくる可能性は低いことから、ウイルスよりも潜在的にずっと安全である（Monaciら, 2001）。

本発明はアミロイド沈着に付随する、または活性化されたマイクログリアにかかわる脳の炎症を抑制または治療する方法を提供する。更に本方法は、体内の脳以外の場所におけるアミロイド沈着に関連した炎症、例えば多発性骨髄腫や腎アミロイドーシスを抑制または治療する。

本方法は、必要とする患者に、野生型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージの有効量を導入／投与することを含む。線維状バクテリオファージは、Ｍ１３、ｆ１またはｆｄのような線維状バクテリオファージのいずれであってもよい。以下の実施例においてはＭ１３が用いられたが、いかなる他の線維状バクテリオファージであっても、同様な構造と９５％を越えるゲノム同一性があることから、同じように行動し、機能することが期待される。

本方法を脳の炎症を抑制または治療のために用いる場合、線維状バクテリオファージは、好ましくは活性成分を受容者の嗅覚系を通して受容者の体内に導入するために、経鼻的に投与することが望ましい。

本方法は、斑形成疾患において、タンパクが凝集してアミロイド斑または沈着物となるのを抑制するのみならず、また既に形成されたアミロイド沈着、例えばβＡ原線維を脱凝集させるのに有効である。

βＡ原線維形成または脱凝集に関して、線維状バクテリオファージの抗凝集または脱凝集性は、よく知られたチオフラビンＴ（ＴｈＴ）結合アッセイによって測定することができる。βＡ原線維構造の形成の崩壊、および既に形成されたβＡ原線維の脱凝集は、ＴｈＴの蛍光の実質的に減少することによって示される。

本明細書とそれに付随する請求項の目的上、「患者」、「対象」および「受容者」という用語は同義で用いられる。それらの用語には、予防的、実験的または治療的処置の対象である、ヒトおよび他の動物が含まれている。

本明細書とそれに伴う請求項の目的上、「ベータアミロイドペプチド」は「β−アミロイドペプチド」、「βＡＰ」、「βＡ」および「Ａβ」と同義である。これらの用語の全ては、アミロイド前駆タンパクから由来した斑形成ペプチドを言う。

本明細書においては、「ＰｒＰタンパク」、「ＰｒＰ」、「プリオン」は、適切な条件下で斑形成疾患の原因である凝集体の形成を導くことのできるポリペプチドを言う。例えば、正常細胞プリオンタンパク（ＰｒＰＣ）はそのような条件下で、対応するスクレイピーイソ型に変換するが、それはウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）または狂牛病、ネコ海綿状脳症、クールー、クロイツフェルトヤコブ病（ＣＪＤ）、Gerstmann-Streussler-Sheinker病（ＧＳＳ）および致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）のような、これに限らないが、斑形成疾患の原因である。

本明細書では「脱凝集」とは、凝集タンパク、典型的には非共有結合によって凝集しているタンパクの可溶化を言う。

「治療する」という用語は、疾患の進行を実質的に抑制し、遅らせあるいは逆行させること、疾患の臨床症状を実質的に改善すること、あるいは疾患の臨床症状の出現を実質的に阻止することを意味するよう意図されている。

また、本明細書においては、「斑形成疾患」は、これらに限らないが、早発性アルツハイマー病、遅発性アルツハイマー病、発症前アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイスランド症候群、老化、多発性骨髄腫、およびヒトに影響することが知られているプリオン病、例えばクールー、クロイツフェルトヤコブ病（ＣＪＤ）、Gerstmann-Streussler-Sheinker病（ＧＳＳ）および致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）、および動物に影響することが知られているプリオン病、例えばスクレイピーおよびウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）であって、ベータアミロイド、血清アミロイドＡ、シスタチンＣ、ＩｇＧカッパ軽鎖またはプリオンタンパクのような凝集タンパク（斑形成ペプチド）による斑形成を特徴とする疾患を言う。

上に述べた疾患にかかわるアミロイド斑（アミロイド沈着としても知られている）のほとんどは、脳内に存在するので、いかなる提案される治療様式も、血液脳関門（ＢＢＢ）を越える能力およびアミロイド斑を溶解する能力を示さなければならない。通常ＢＢＢを透過できる分子の平均サイズは約２ｋＤａである。

嗅覚の欠陥と中央嗅覚経路における退行的変化がＡＤの臨床経過の初期に影響を受けていることを示す証拠が増えつつある。更にＡＤに関与している解剖学的パターンは、嗅覚経路がＡＤの進展における初期段階でありうることを示唆している。

嗅覚受容体ニューロンは、鼻腔の上皮層に存在する双極性の細胞である。それらの軸索は篩板を横切り、脳の嗅球における嗅覚経路の最初のシナプスに突出する。この立体構造により、ウイルスや他の輸送される物質がＢＢＳを通ってＣＮＳに到達することができる通路となっている。

以前に示したように、鼻腔内投与（Mathisonら、1998; Chouら, 1997; Draghiaら, 1995）によって、ウイルスおよび高分子が脳脊髄液（ＣＦＳ）あるいはＣＮＳに直接入ることが可能である。

嗅覚受容体ニューロンをアデノウイルスベクターの脳への送達点として使用した例が、文献に報告されている。この方法により、見掛けの毒性なしに、脳内で１２日間レポーター遺伝子が発現したことが報告されている（Draghiaら、1995）。

従って、本発明の好ましい実施例によれば、斑形成疾患に付随するポリペプチドの凝集体の形成を脱凝集または阻止することが可能な、またはマイクログリアの活性化を抑制することが可能な線維状バクテリオファージは、この経路を介して脳へ送達される。

Ａβは、末梢組織の細胞によって絶え間なく生産され、血管脳関門（ＢＢＢ）を越えて、特定のニューロン集団において局在する毒性効果を発揮するので、そのような媒体の経鼻投与は、斑を形成できる末梢Ａβの量を最小限にすることにより疾患の進行をも阻止することができる。

本発明の医薬調製品には、活性成分として、野性型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージが含まれる。該医薬調製品はまた、異なった線維状バクテリオファージの混合物であってもよい。

本発明の調製品は、それ自体を、または適切な担体または賦形剤と混合した医薬組成物として、生命体に投与することができる。

本明細書においては、「医薬組成物」とは、本明細書に記載された一つまたは複数の活性成分と生理的に適切な担体および賦形剤のような他の化学成分との調製品を言う。医薬組成物の目的は、生命体への化合物の投与を容易にすることである。

本明細書において「活性成分」という用語は、生物学的効果を発揮する調製品を言う。

今後、「生理的に許容される担体」および「医薬的に許容できる担体」の句は、互いに同じ意味で用いられるが、生命体に有意な刺激を与えず、投与される化合物の生物学的活性および性質を損なわない担体または希釈剤を言う。補助剤はこれらの句の中に含まれる。

本明細書において、「賦形剤」という用語は、活性成分の投与を容易にするために医薬組成物に加えられる不活性物質を言う。賦形剤の例としては、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、種々の糖類およびデンプン類、セルロース誘導体、ゼラチン、植物油およびポリエチレングリコールが挙げられるがこれに限定されない。

薬剤の処方および投与に関する技術は「Remington's Pharmaceutical Sciences, レミントンの薬剤化学」Mack Publishing Co., Easton, PA, 最新版に捜し出すことができ、参照することにより本明細書に盛り込まれる。

適切な投与経路としては、例えば、経口、経直腸、経粘膜、特に経鼻、経腸、または筋肉内、皮下および髄内注射を含む非経口送達、ならびに髄腔内、直接脳室内、静脈内、腹腔内、鼻腔内あるいは眼内注射が挙げられる。

あるいは、調製品を全身ではなく、局所的に投与してもよく、例えば、患者の脳に直接調製品を注射する方法が挙げられる。

本発明の医薬組成物は、当技術においてよく知られた方法によって製造してもよく、例えば、従来の混合、溶解、造粒、糖衣錠製造、すり潰し、乳化、カプセル化、封入または凍結乾燥法が挙げられる。

本発明に従って使用するための医薬組成物は、活性成分を加工して医薬的に使用できる調製品とすることを容易にする賦形剤および補助剤を含む一つあるいは複数の生理的に受容できる担体を用いて、従来の方法で製剤化することができる。適切な剤形は選択される投与経路に依存している。

注射剤としては、本発明の活性成分は、水溶液中で、好ましくはHank's溶液、リンゲル液または生理的塩類緩衝液のような生理的に適合する緩衝液中で、製剤されてもよい。経粘膜投与のためには、透過すべき関門に適合した浸透剤がその剤形に用いられる。そのような浸透剤は当技術分野において一般的に周知である。

経口投与のためには、化合物は、活性成分と当技術分野において周知の、医薬的に許容できる担体を組み合わせることにより、容易に製剤することができる。そのような担体により、本発明の化合物は、患者が経口的に摂取するための錠剤、丸剤、糖衣剤、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー剤、懸濁剤等として製剤されうる。経口使用される薬理学的調製品は、固体賦形剤を用いて製造可能であり、場合によっては得られた混合物を粉砕し、必要であれば適切な補助剤を加えた後、顆粒の混合物を加工して錠剤または糖衣錠のコアを得る。適切な賦形剤は、具体的には、乳糖、ショ糖、マンニトールまたはソルビトールを含む、糖などの充填剤；トウモロコシデンプン、小麦デンプン、米デンプン、ジャガイモデンプン、ゼラチン、トラガカントゴム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチル−セルロースおよびカルボキシメチルセルロースナトリウムのようなセルロース調製品；および／または生理的に許容できる、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）のような高分子が挙げられる。必要に応じて、架橋ポリビニルピロリドン、寒天、またはアルギン酸もしくはアルギン酸ナトリウムなどのその塩の崩壊剤を加えてもよい。

糖衣錠のコアには、適切なコーティングを施す。このために、濃縮糖溶液を用いてもよいし、場合によっては、アラビアゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、カルボポールゲル、ポリエチレングリコール、二酸化チタン、ラッカー溶液、および適切な有機溶媒または溶媒混合物を含んでもよい。活性化合物用量の異なった組み合わせを同定、識別するために、染料または顔料を錠剤や糖衣錠のコーティングに加えてもよい。

経口的に用いられる医薬組成物としては、ゼラチンから作られたプッシュフィットカプセル剤やゼラチンおよびグリセリンまたはソルビトールのような可塑剤から作られた、軟、密閉カプセル剤が挙げられる。プッシュフィットカプセル剤は、活性成分を、乳糖のような充填剤、デンプンのような結合剤、タルクやステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤、そして場合によっては安定剤と混合して含んでもよい。軟カプセル剤においては、活性成分は油脂、流動パラフィン、または液体ポリエチレングリコールのような適切な液体に溶解あるいは懸濁してもよい。更に安定剤を加えてもよい。経口投与用のすべての製剤は、選択した投与経路に適した剤形でなければならない。

頬側投与のためには、組成物は従来の方法で製剤化された錠剤またはロゼンジの剤形を取ってもよい。

鼻腔吸入による投与のためには、本発明に従って使用する活性成分は、加圧されたパックからのアエロゾル噴霧の形で、または例えばジクロロジフロロメタン、トリクロロフロロメタン、ジクロローテトラフロロエタンまたは二酸化炭素のような適切な噴霧剤を用いた噴霧器の形でするのが好都合である。加圧アエロゾルの場合は、単位用量は、計量した量を送達する弁を備えることにより決定してもよい。ディスペンサーで使用される、例えばゼラチンのカプセルおよびカートリッジは、化合物と、乳糖またはデンプンのような適当な粉末基剤の混合粉末を含む剤形であってもよい。

本明細書に記載される調製品は、非経口投与、例えばボーラス注射または連続注入による剤形であってもよい。注射用の剤形は、例えばアンプルでまたは多回数投与用の容器で場合によっては保存剤を加えて、単位用量で提供してもよい。組成物は、油性または水性の媒体中の懸濁剤、溶液剤または乳剤であってよく、懸濁剤、安定剤および／または分散剤のような製剤用の物質を含んでもよい。

非経口投与のための医薬組成品としては、水溶性の活性調製品の水溶液が挙げられる。更に、活性成分の懸濁剤を、適当な油性または水性基剤懸濁注射剤として調製してもよい。適当な脂溶性の溶媒または媒体としては、ごま油のような油脂、またはオレイン酸エチルのような合成脂肪酸エステル、トリグリセリドまたはリポソームが挙げられる。水性の注射懸濁剤は、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、ソルビトールまたはデキストランのような懸濁剤の粘度を上げるような物質を含んでもよい。場合によっては懸濁剤は、適当な安定剤、または高濃度の溶液の調製を可能にする活性成分の溶解度を増加させる物質を含んでもよい。

あるいは、活性成分は、例えば無菌の発熱成分を含有しない水溶液のような適当な媒体により使用前に構成する粉末剤形でもよい。

本発明の調製品は、ココアバターまたは他のグリセリドのような通常の坐剤基剤を用いた坐剤、または保留浣腸のような直腸用の組成物に製剤化してもよい。

本発明の範囲で適切に使用される医薬組成物としては、意図する目的を達成するために有効な量の活性成分を含んでいる組成物が挙げられる。より具体的に言えば、治療有効量とは、疾患の症状を阻止、軽減または改善する、あるいは治療を受けている対象の生存期間を延長するのに有効な活性成分の量を意味する。

治療有効量の決定は、特に本明細書で提供された詳細な開示の観点から、当業者の能力の範囲内に十分ある。

本発明の方法において使用されるいかなる調製品に対しても、治療有効量または投与量は、最初はインビトロおよび細胞培養アッセイから推測することができる。例えば投与量は、循環中の所望の抗体濃度または力価を達成するために動物モデルにおいて式化できる。そのような情報は、ヒトでの有用な投与量をより正確に決めるために使用される。

本明細書に記載される活性成分の毒性と治療効果は、インビトロにて、細胞培養または実験動物において標準的な医薬手法で決定することができる。これらインビトロでの、および細胞培養アッセイおよび動物実験から得られるデータは、ヒトにおいて用いられる投与量の範囲を計算するために使用される。投与量は使用された剤形および投与経路に依存して変わりうる。正しい剤形、投与経路および投与量は患者の状態を考慮して個々の医師によって選択されることができる（例えば、Finglら「治療の薬理学的基礎」、第１章p.1(1975)参照）。

投与量と投与間隔は、凝集を阻止し、既に存在する凝集体を脱凝集させるために十分な線維状バクテリオファージの血漿中または脳内レベル（最小有効濃度ＭＥＣ）を与えるために個人ごとに調整できる。ＭＥＣはそれぞれの調製品によって異なるであろうが、そのインビトロデータから推定することができる。ＭＥＣを達成するために必要な投与量は、個々の特徴と投与経路に依存するであろう。結合アッセイを、血漿中濃度を決定するために用いることができる。

投与間隔もまた、ＭＥＣ値を用いて決定することができる。調製品は、１０〜９０％、好ましくは３０〜９０％、最も好ましくは５０〜９０％の時間、血漿中レベルをＭＥＣの上に維持するレジメンを用いて投与されるべきである。

治療する状態の重度と反応性によつて、投与形態は、単回投与または複数回投与であることができ、治療コースは、数日から数週間、または治癒する、もしくは疾患状態の減少が達成されるまで継続される。

投与されるべき組成物の量は、もちろん、治療対象、疾患の重度、投与方式、処方する医師の判断等に依存する。

本発明の組成物は、必要に応じて、活性成分を含む１つ以上の単位投与量剤形を入れたＦＤＡ認可キットのようなパックまたはディスペンサー器具で提供されてもよい。該パックは、ブリスターパックのような金属またはプラスチックのフォイルを含んでいてもよい。パックまたはディスペンサー器具は、投与法についての指示書を添付していてもよい。パックまたはディスペンサー器具はまた、容器に付随した通知を伴ってもよく、その通知は医薬品の製造、使用および販売を規制する政府機関によって指定された形式で、組成の形態もしくはヒトまたは動物投与用にその機関から受けた認可を反映している。そのような通知は、例えば、米国食品医薬品局によって認可された処方医薬品のラベルであってもよいし、また認可製品の添付文書であってもよい。適合する医薬用担体中に製剤された本発明の調製品を含む組成物もまた調製して、適切な容器中に入れ、上に述べたように表示条件の治療のためのラベルを付けてもよい。

本発明を一般的に説明したが、同じことを次の実施例を参照することでより容易に理解
できるであろうが、実施例は例示するために示しているものであり、本発明を限定することを意図しているものではない。

実施例
材料と方法
ファージの増殖および精製
線維状ファージ（Ｍ１３）は５０μg／mlカナマイシンを含む２ＹＴブロス中の形質転換ＴＧ１培養物から調製した。細菌細胞を遠心により沈殿させ、澄明な上清をデカンテーションにより得た。２．５Ｍ ＮａＣｌ中の２０％ポリエチレングリコール（分子量８０００Ｄａ）溶液の当初量の２０％容を加えて、４℃で３時間静置してファージを上清から沈殿させた。ファージを遠心分離して（９０００rpm、１時間）ペレットとし、その後上清の３％容のＰＢＳに再懸濁した。細菌の残渣は更に７０００rpmで遠心分離して除き、ファージを、ポリエチレングリコールを加えて沈殿させて再濃縮した。ペレットを最終的に増殖培地の当初量の０．００１容のＰＢＳに再懸濁した（Hartら, 1994）。

β−アミロイド凝集へのファージの干渉：
βＡ凝集を阻止し、既に形成された凝集体を脱凝集するファージの能力を、三つの方法で分析した：

１．チオフラビン−Ｔ蛍光アッセイ
βＡ凝集を、アミロイド原線維との結合により発光スペクトルが変化するチオフラビン−Ｔ（ＴｈＴ）色素を用いて測定した（LeVine, 1993）。凝集体形成を阻止するファージの能力を評価するために、βＡ１−４０ ５７７μM（Bachem）８μlを３７℃で１４日間、単独で（ＰＢＳで８０μlに希釈し、最終濃度５８μMとした）または線維状ファージと共に（３ｘ１０^１２ファージ／ml、７２μl）インキュベートした。それぞれの反応混合液（２０μl）の蛍光を、５０mMグリシン緩衝液、ｐＨ９、中のＴｈＴ（２μM）９８０μlを加えた後測定した。蛍光はPerkin-Elmer Model LS-50蛍光光度計を用いて、励起波長４３５nmおよび発光波長４８５nmで測定した。

ファージの脱凝集活性は以下のようにして検査した：βＡ（５８μM）を３７℃で２１日間インキュベートして凝集を促進した。ファージを加え（ファージ濃度１０^１４ファージ／mlの溶液と等量）、凝集したβＡと共に更に１７時間インキュベートした。凝集の程度を上記のごとくＴｈＴ蛍光を用いて評価した。

２．電子顕微鏡（ＥＭ）：
β−アミロイドと線維状ファージの相互作用。βＡ凝集のレベルをＥＭを用いて可視化した。βＡ形成の阻止については、ペプチド（２８９μM）１０μlを、単独で（ＰＢＳ２０μlを加えた）または各種ファージ濃度（以下の濃度のファージ２０μl：１ｘ１０^１４ファージ／ml、１ｘ１０^１２ファージ／mlおよび１ｘ１０^１０ファージ／ml）で、３７℃で９日間インキュベートした。

ファージの脱凝集活性は、各種濃度のファージを、既に凝集したβＡに加えることによって証明した。ＰＢＳに溶解したβ−アミロイド１−４０（１９３μM）の２０μlを３７℃で１０日間インキュベートした。１０日目にＰＢＳまたは各種濃度のファージ（１ｘ１０^１４ファージ／ml、１ｘ１０^１２ファージ／ml）１０μlをサンプルに加え、更に１６時間インキュベートした。

阻止および脱凝集アッセイの両方において、ファージとβＡをカーボン蒸着被膜をほどこしたフォルムバー（formvar）２００＃グリッドに付着させた。アミロイドおよびファージの免疫標識を、種々のサイズの金結合抗体（Linら、1999）を用いて行ったが、これはβ−アミロイド原線維と、アミロイド線維と似ている可能性のあるファージを容易に識別するためである。β−アミロイド原線維はモノクローナル抗体（ｍＡｂ）１０５Ｄおよび二次抗体としてヤギ抗マウス−１２nm金粒子結合抗体（Electron Microscopy Sciences, Washington, USA）で染色した。ファージを標識するために、ファージに対するウサギポリクローナル血清を用い、二次抗体を６nm金粒子と結合させた（Electron Microscopy Sciences）。サンプルは酢酸ウラン（Sigma）水溶液（２％重量／体積）でネガティブ染色を行った。グリッドはＪＥＯＬ１２００ＥＸ電子顕微鏡を用いて、拡大率３０Ｋおよび１００Ｋで可視化した。

β−アミロイドとクロロホルム処理ファージとの相互作用
ファージ（１０^１４ファージ／ml）２００μlを２００μlのクロロホルムに加えた。溶液を室温で３分間に６回ボルテックス処理を行った（それぞれ１０秒）（Griffithら、1981）。遠心管を１３，２００rpmで遠心分離し、水相を別の管に移し、ドラフト中に置き、残っているクロロホルムを蒸発させた。β−アミロイドと球形ファージの間の相互作用を電子顕微鏡によって分析した。

β−アミロイド（９７μM）を３７℃で１３日インキュベートした。１３日目にＰＢＳまたは各種濃度のＳ−ファージ（クロロホルム処理）（５ｘ１０^１３ファージ／ml、５ｘ１０^１１ファージ／ml）をサンプルに加え、更に１６時間インキュベートした。β−アミロイドの凝集の程度はＪＥＯＬ１２００ＥＸ電子顕微鏡で先に述べたように可視化した。

３．ＭＴＴアッセイ：
ヒト神経細胞株の生存率に対するβＡの毒性からファージによる保護を評価するために、ＭＴＴアッセイを行った。アッセイは生存している細胞内の、３−（４，５−ジメチルチアゾールー２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド（ＭＴＴ）のＭＴＴ−ホルマザンへの還元に基づいている。ＭＴＴ−ホルマザンの濃度は、分光光度計により５７０nmで測定したが、細胞の生存率と直接相関していた。

ＬＡＮ−１ヒト神経細胞株は、１０％ウシ胎児血清と１００ユニット／mlペニシリン／ストレプトマイシンを補充したＲＰＭＩ中で培養し、３７℃、５％ＣＯ_２下でインキュベートした。神経毒性アッセイのために、培養したＬＡＮ−１細胞を９６穴プレートに１０^４細胞／１００μl／ウエルの密度で播種した。投与量依存性の神経毒性を、β−アミロイド（２８９μM）サンプル単独で、またはβ−アミロイド（２８９μM）とファージ濃度を変えて測定した。

βＡの神経毒性に対するファージ保護効果を試験するために、ペプチド２μlを８μlの各種濃度のファージ（５ｘ１０^１３／ml、５ｘ１０^１２／ml、５ｘ１０^１１／mlファージ）と３７℃で４日間インキュベートした。細胞を播種してプレートに接着してから２４時間後にサンプルを加えた。プレートを３７℃で２日間インキュベートした後、細胞の生存率を、先に記述したように３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロマイド（ＭＴＴ）を用いて細胞の酸化還元活性を測定して評価した（Solomonら, 1997）。ＭＴＴ（Sigma）を最終濃度１mg／mlでウエルに加え、細胞と共に更に３７℃で３時間インキュベートした。細胞溶解緩衝液（２０％重量／体積ＳＤＳを含む５０％ジメチルホルムアミド溶液、ｐＨ７．４）を加え、プレートを一晩３７℃でインキュベートした。ＭＴＴの還元は、自動マイクロプレート分光光度計を用いて５７０nmのＯＤの変化により比色法で測定した。

既に形成されたβＡ原線維の脱凝集アッセイにおいて、神経毒因子として二つのペプチド（β−アミロイド１７−４２およびβ−アミロイド１−４０）を用いた。凝集したペプチドから細胞生存を守るファージの能力は以下に示すように試験した。第一の実験において、細胞を既に凝集したβＡ１−４０と５日間インキュベートしたが、一方第二の実験においてはβ−アミロイド１７−４２を神経毒性ペプチドとして用いた。先に述べたように、細胞を９６穴プレートに１０^４細胞／１００μl／ウエルの密度で播種し、細胞を２４時間付着させた後にサンプルを加えた。凝集ペプチド（２８８μM−保存溶液）２μlに８μlのファージ（１０^１４ファージ／ml、１０^１３ファージ／ml、１０^１２ファージ／ml）を加えて一晩インキュベートした。サンプルを細胞に加えて、更に２日間インキュベートした。ＭＴＴを最終濃度１mg／mlで加え、ＭＴＴホルマザン含量の測定のために、３時間後に溶解緩衝液を加えた。細胞の生存率は５７０nmにおけるＯＤ変化を定量化して評価した。

線維状ファージのインビボ投与
ＡＤモデル、野生型およびトランスジェニックマウスを線維状ファージで攻撃した：

抗凝集性の評価
抗凝集剤としてのファージ活性の最大能力を評価するために、ファージをトランスジェニックマウス（Taconic, Appswe(2576),１０ヶ月齢）の頭蓋内に以下のようにして注射した：

線維状ファージ溶液（１０^１４ファージ／ml）２．５μlを１０分かけて一方の半球へ（Ｂｒｅｇｍａ−２．８mm、側方２．５mm、腹側２．５mm）注射し、一方対側にはリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）をコントロールとして注射した（図１）。ファージがアミロイド沈着を脱凝集させるに要する時間は知られていないので、処置されたマウスは異なった時間点でと殺した。第一の群は、注射後１時間に４％パラホルムアルデヒドを用いて心臓内灌流を行った。第二の群は投与後２日目に、そして最後の群は３日後に灌流を行った。それらの脳は４％パラホルムアルデヒド中で一晩固定後、マイクロトームを用いて切片とした。チオフラビンーＳ（ＴｈＳ）染色を行い、斑量を評価した。この目的のために、切片はMayer'sヘマトキシリンで染色し、核の自己蛍光を抑え、そして洗浄後ＴｈＳ溶液（１％）を３分間適用した。１％酢酸を２０分間用いて差別化を行い、スライドを洗浄後乾燥し、抗退色マウント剤を用いてマウントした。斑量はＬＥＩＣＡ Ｑｗｉｎプログラムを用いて計算した。

放射能標識線維状ファージの生体内分布
線維状ファージをＩ^１２５で放射能標識した。ファージを、結合していないヨウ素からＧ２５セファデックスカラムを用いて精製し、先に記載したように、溶出液をポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いて更に沈殿させた。９匹のＢＡＬＢ／ｃマウスを３群に分けた。それぞれのマウスに経鼻的に９マイクロキュリーＩ^１２５で標識されたファージ１００μl（１．２５ｘ１０^１２ファージ）を１時間かけて与えた。第一のマウス群は４％パラホルムアルデヒドを用いた心臓内灌流１時間後にと殺した。第二の群は３時間後そして最後の群は２４時間後にと殺した。灌流後、脳および末梢器官を取り出し、それらのガンマ線を測定した。

線維状ファージの経鼻投与
線維状ファージの効果を十分に評価するために、ファージをＳＷＥ／ＡＰＰ２５７６トランスジェニックマウス（Taconic、１０ヶ月齢）に経鼻的に投与した。ファージ溶液（５ｘ１０^１２／ml）２０μlを２週間毎に４ヶ月間投与し、認識機能を評価した。９回目の接種後、記憶改善におよぼすファージの影響を研究するために、対象認識試験を行った。第一日目に、マウスを二つの新しい対象に２０分間触れさせた。翌日一つの対象を取り替えて、新しい物を探るマウスの好奇心を試験した。認識指標を、各マウスが新しい対象の近くで過ごす時間を、各マウスが二つの対象の近くで過ごす全時間で割った値として計算した。従って、値が０．５を越えることは、古い物を認識し、新しい対象の周りを探査するためにより多くの時間を過ごしていることを示唆している。

結果
線維状ファージのインビトロにおける抗凝集性を、アミロイド形成の減少および阻止について評価した。チオフラビンーＴアッセイにおいて、ファージはβＡ原繊維の形成を阻止するよりはβＡ原繊維の脱凝集においてより有効であった。ペプチドを線維状ファージとモル比１：１０，０００（ファージ対βＡ）でインキュベートした時、βＡ凝集の２６％減少が観察された（図２Ｂ）。既に凝集したβＡにファージ（２８nM）を加えた結果、アミロイド原線維の４５％減少に至った（図２Ａ）。

ファージとβ−アミロイドペプチド間の物理的な相互作用の電子顕微鏡による可視化は、免疫金染色β−アミロイドとファージとのその複合体を用いて行った。ファージがβ−アミロイドペプチドと相互作用をする時は、ファージが存在しない時に比べて集合体はより小さく、より分散していた。
興味あることには、ファージをβ−アミロイドペプチドとインキュベーションすると、ファージが分解した。これはファージ粒子上にないファージの主要コートタンパクに対する抗体の強い標識化から知ることができる（図３Ｃ）。この現象は、ファージをβ−アミロイドペプチドと一緒に一晩インキュベートした時（脱凝集アッセイにおいて）、またはファージを単独で同じ期間（図３Ｄ）インキュベートした時には観察されなかった。図３（Ｆ−Ｋ）は、形成されたアミロイド凝集体におよぼすファージの効果を示す。図３Ｆは、１２nm金粒子によって標識された集合体におけるアミロイド原線維を示す。高倍率（図３Ｇ）は、異なる大きさの凝集した針状原線維を示す。図３Ｈ−Ｋは、束状になっているファージを示す（矢頭印）が、それはアミロイド針に接着すると分散する（矢）。アミロイドの集合体は小さくそして小さい細いアミロイド原線維を含んでいる。特に興味があるのは、ファージとアミロイド原線維との並行した組織構造である（白い矢）。

ｐＶＩＩＩ分子は３つの立体配置で存在することが示されている。完全なファージにおいては、該タンパクは、少なくとも９０％α−ヘリックスであるが、クロロホルム／水の界面に曝されると、形に大きな変化が起こる。これは温度に依存する過程である。２℃では桿形（Ｉ−型）であるが、２５℃では球形構造（Ｓ−型）を取る。Ｓ−型への変換はコートタンパクのヘリックス含量の実質的な減少を伴って起こるが、トリプトファン２６の環境における有意な変化を伴う（Robert and Dunker, 1993）。

クロロホルムによるファージの３分間の処理により、球形のファージはβＡ凝集の場所に存在しているが、それらは通常原線維の端末に存在しており、可溶化には寄与していないことを示す（図４Ａ−Ｂ）。

ＭＴＴ：
線維状ファージがβＡ神経毒からＬＡＮ−１細胞を防御することは、ＭＴＴアッセイを用いて示された。ファージをβＡとインキュベートした場合、神経細胞の生存率は、βＡのみの存在下で増殖した細胞と比較して増加した。細胞培養に加えられたファージの最高量が、最も有意な効果（細胞生存率１７％の増加）をもたらした（図５Ａ）。

β−アミロイド１７−４２の毒性からのファージによる保護は、β−アミロイド１−４０の毒性を阻止する能力と比較して、より高かった。ファージを既に凝集したβＡ１７−４２に加えた場合、細胞の生存率は、βＡのみで増殖した細胞と比較して３０％増加した（図５Ｂ）。同じファージ濃度をβＡ１−４０に加えた場合、細胞生存率は１７％増加したのみであった（図５Ｃ）。より高い濃度のファージを加えた場合、βＡ処理を受けた細胞に比較して、細胞生存率を２５％に増加させることに成功した。

この差に関する可能性のある理由としては、β−アミロイドのＮ末端がファージ活性を妨害するかも知れない、またはβ−アミロイド１７−４２はβ−アミロイド１−４０よりも早く凝集するという事実に拠るのかも知れない（Ｐｉｋｅら、１９９５）。β−アミロイド１−４０に対するファージの親和性は、ペプチド凝集に伴って増加する。ＥＬＩＳＡは、可溶性β−アミロイド、１時間凝集β−アミロイドまたは３週間凝集β−アミロイドと結合するファージについて調べ、βＡ１−４０に結合するファージにおいて有意な差を示した。それ故、高度に凝集したペプチドに対するファージのより高い親和性が、β−アミロイドβ−アミロイド１７−４２とのより強い相互作用を説明する可能性がある。

線維状ファージの脳内注射によるβ−アミロイド斑の脱凝集のインビボでの研究において、注射後１時間でと殺したでマウスにおいては、斑量の減少は観察されなかった。処置後２日目にと殺したマウスにおいては、線維状ファージで処置された半球において、ＰＢＳ注射半球に比較して、斑量の２５％減少が観察された。処置後３日目にと殺したマウスにおいては、ファージ注射を受けた半球において、斑量の４０％減少が示された（図６Ａおよび６Ｂ）。

放射能標識線維状ファージの脳内分布：
経鼻投与後１時間で早くも、線維状ファージは嗅球と脳内で検出された（図７）。ファージの消失速度を決定するためには群は小さすぎるが（ｎ＝３）、ファージの濃度は１時間後にピークに達し、２４時間以内に殆ど完全に除去されると考えられる。マウス間のバラつきが大きいのは、異なった量のファージを飲み込み、吸入する結果であろう。脳実質細胞への侵入量は、与えられた量の０．０００９％から０．０１８％とさまざまであった。血清抗体濃度の０．１％が脳に到達し斑量を減少させることは言及する価値がある。これらの予備的なデータは、ＢＡＬＢ／ｃマウスにおいてファージが短時間で脳に侵入することができ、１時間後に消失が始まることを示している。それ故、線維状ファージの経鼻投与によって、アミロイド沈着を有するトランスジェニックマウス治療の効果を試験することができる。

トランスジェニックマウスへの線維状ファージの繰り返し投与：
認識機能における有意な改善が、ファージ処置を受けない群に比較して、ファージ処置を受けたマウスにおいて認められた（データは示されない）。研究の終わりに、治療効果の総合的な推測を得るために、マウスの斑量、マイクログリア活性化、シナプス密度および有害事象の可能性を評価するための組織化学的な分析が行われる。

考察
本発明者の研究室は、βＡのＮ末端に部位特異的なモノクローナル抗体（ｍＡｂｓ）が、既に形成されたβＡ原線維に結合し、アミロイドを脱凝縮させて、無定型状態にし、それらの神経毒性を阻害することを、先に報告した（Solomonら, 1996, 1997）。この活性はまた、ＡＤのためのトランスジェニックマウスにおいて、インビボでも示された（Bardら、2000）。経鼻的に抗−凝集抗体断片を脳斑に送達するために、βＡに対するｓｃＦｖを提示するファージを用いた（Frenkelら, 2002）。トランスジェニックマウスにおいてｓｃＦｖを脳へ侵入させ、アミロイド沈着と結合させることを可能にする媒体としてファージを用いた。

投与回数と、海馬および臭球において検出されたファージの量の間に直接、関連性があることが示された。ファージの線形構造が、種々の膜を通っての侵入性を与えることが示唆されている。ファージ投与後のマウスの脳において、いかなる病理的な兆候も、観察されなかったことは言及する価値がある（Frenkelら、2002）。

βＡ原線維をＴｈＴおよび蛍光標識抗ファージ抗体との両方で可視化し、脳から線維状ファージが毒性効果を引き起こさずに消失することが組織学的研究において示された。先に報告された実験において、線維状ファージはマウスに静脈内注射され、その後、異なった器官から回収され、体内における循環の間、その完全性は影響を受けながったことが示された。

アミロイドの繊維化は、静電的な相互作用よりは、疎水性の相互作用によって駆り立てられていると見なされている。βＡは二つの疎水性部を含んでいるが、その中央部は、１７〜２１残基と、３０〜４０残基を含むＣ末端領域から構成される。固体ＮＭＲから得られた実験的な制約に基づいたモデルによれば、ペプチドの立体構造は、残基２５〜２９によって形成された１８０°曲げによって分離された二つのβ鎖を含んでいる。該β鎖は、側鎖−側鎖接触を通して相互作用する二つの既知の平行なβ−シートを形成する。疎水性の側鎖は外側の表面に露出しており、疎水性の面を形成する一方、荷電した極性の他の側鎖は反対側の面に、曲がりの凸面および原線維が成長するに連れて溶媒和されるＮ末端部に分布している（Petkovaら, 2002）。

一方、主要ファージコートタンパクは３つの部分より構成されている：外表面（サブユニットのＮ末端領域によって占められており、周囲の溶媒と相互作用しウイルス粒子に低い等電点を与える酸性残基に富んでいる）；殻の内部（タンパクサブユニットが主として互いに相互作用する、非極性側鎖の１９残基ストレッチを含む）；内部表面（サブユニットのＣ末端領域によって占められており、ＤＮＡコアと相互作用する塩基性残基に富んでいる）。ほぼ全てのタンパク側鎖の相互作用は、サブユニット内ではなく、コートタンパクアレイにおける異なったサブユニット間であるという事実のため、これは、高分子集合体におけるα−ヘリックスサブユニット間の相互作用の研究のための有用なモデルシステムになっている。

本研究において、ファージは、脳にβＡに対する抗体を送達する媒体としての、報告されている機能に加えて、抗凝集性を有していることが示された。実施例において提出されたデータから、線維状ファージはβ−アミロイドと相互作用し、その凝集過程に干渉し、その可溶化を引き起こすことさえできる。現在、診断は、β−アミロイド斑がすでに形成された疾患の後期になされることから、脱凝集性は大きな価値を有する。アミロイド斑を有するＴｇマウスにファージを頭蓋内注射した後、最大効果は３日後のみに観察されることから、この過程は時間依存性である。この効果は、電子顕微鏡写真において見ることができるように、ファージの長く薄い線維としての特異な構造がアミロイド原線維にそって組織化するのを可能とする結果であろう。この理論は、線形の構造を失った球状ファージはアミロイドの形成を阻害することができなかった事実によって明らかである。ファージ活性に寄与する主要な別の因子は、ベータシート構造に干渉するかも知れないアルファヘリックス（プロテイン８）の含量が高いことである。ｐＶＩＩＩサブユニットはヘリックスのアレイに封入されて、ｓｓＤＮＡゲノムを囲む管状構造を形成している。ｐＶＩＩＩのＣ末端は、環状構造の内側に露出しており、負に荷電したｓｓＤＮＡゲノムと相互作用する正荷電の残基を含んでいる。中間部は、サブユニット間の相互作用の原因である疎水性のアミノ酸に富んでいる。最後に、屈曲しやすい負荷電のＮ末端部は粒子の外側に露出している（Marvin, 1998）。

線維状バクテリオファージは、他のベクターよりも明らかな利点を有する。線維状ファージ、Ｍ１３、ｆ１およびｆｄは構造的にも遺伝子レベルでもよく理解されている（Wilson and Finley 1998; Rodi and Makowski, 1999）。それらは抗原および／または抗体を提示するために、遺伝子操作されており、その表面に外来タンパクを提示する、異なった生物システムに用いられた（Scott等、1990; McCaffertyら、 1990）。原核生物の感染、集合および複製に関して進化したことから、バクテリオファージは、哺乳動物細胞で増殖することもできず、それに対する天然指向性も示さない。このことは、非特異的な遺伝子送達の機会を最小とする。ファージベクターは、動物細胞において複製可能な実態を作ることは有りそうもないことから、ウイルスよりもより安全である可能性が高い。

脱凝集剤としてバクテリオファージを用いる別の利点は、細菌培養の増殖により、より多くの材料を得る事ができることから、製造が容易であることである。放射能標識アッセイによれば、ファージは脳実質細胞に１時間未満で侵入する。それらの消失は多分その後すぐ始まるであろう。投与された用量から侵入したファージの百分率は０．０００９％から０．０１８％までまちまちである。マウス間のバラつきを最小にするような、更なる研究が行われるべきであろう。用量を最小にし、点滴のそれぞれの滴下の間隔を長くすることは、良いことであろう。対照的に、抗体の血清濃度から０．１％が脳に達している。ファージの分子量は抗体のそれよりも二桁大きいが、経鼻投与はファージ侵入を引き起こすことになりうる。

本発明を完全に説明したので、本発明の精神と範囲から逸脱することなしに、また必要以上の実験を行うことなしに、相当するパラメータ、濃度および条件の広い範囲内で、当業者は、当然のことながら同様のことを行うことができる。

本発明を、その具体的な実施態様と関連して説明したが、更に変更することができることは理解される。本出願は、本発明の原理に一般的に従って、いかなる変異、使用または適応を包含することを意図しているが、本開示からの以下のような逸脱をも含める：すなわち本発明に関する技術内で、既知のまた慣習的な慣行内にあるもの、および添付の請求の範囲において以下のように記述された、上記の本質的な特徴にも適用してもよい。

本明細書において引用されている専門誌の記事、抄録、公表されたあるいは対応する米国あるいは外国の特許出願（米国または外国で発行された特許）、または他の全ての参考文献を含む、全ての参考資料は、引用において提示されたデータすべて、表、図およびテクスト含めて、参照により本明細書に援用される。更に、引用文献内の全内容も、参照により本明細書に援用される。

既知の段階法、従来の段階法、既知の方法または従来の方法の引用は、本発明のいかなる態様、説明または実施例も、関連技術において開示され、教示されあるいは示唆されることを認めるものではない。

具体的な実施態様についての前述の説明により、本発明の一般的な性質が十分に明らかにされるので、他者は、当業の技術内での知識（本明細書で引用された文献の内容を含めて）を適用することにより、過度の実験をしないで、また本発明の一般的な概念から逸脱しないで、具体的な実施態様のような種々の応用のために容易に変更および／あるいは適応することができる。それ故、そのような適応および変更は、本明細書に提示される教示と指導に基づく、開示された実施態様と同等の意味と範囲内にあるように意図している。本明細書における言い回しまたは述語は、ここに提示される教示や指導に照らして、当技術分野における通常技術の一つと組み合わせて当業者に解釈されるように説明するためのものであり、限定するためのものではないことを理解されたい。

脳の断面の模式図である。 β−アミロイド１−４０凝集の脱凝集および阻止を示すグラフである。 β−アミロイド１−４０凝集の脱凝集および阻止を示すグラフである。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 β−アミロイドの電子顕微鏡写真である。 電子顕微鏡写真である。 電子顕微鏡写真である。 電子顕微鏡写真である。 β−アミロイド毒性の阻害を示すグラフである。 β−アミロイド毒性の阻害を示すグラフである。 β−アミロイド毒性の阻害を示すグラフである。 線維状ファージを注入した図である。 ＰＢＳのみを注入した図である。 マウスにおけるファージの分布を示すグラフである。

Claims (18)

1. アミロイド斑の量を減少させるための薬剤の調製における、野性型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージの使用。
2. 該線維状バクテリオファージが、Ｍ１３、ｆ１およびｆｄバクテリオファージ、ならびにそれらの混合物よりなる群から選択される、請求項１に記載の使用。
3. 該線維状バクテリオファージがＭ１３である、請求項１に記載の使用。
4. 該薬剤が、脳におけるアミロイド斑の量を減少させるためである、請求項１に記載の使用。
5. 該薬剤が、早発性アルツハイマー病、遅発性アルツハイマー病、前駆症状アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイスランド症候群、老化、多発性骨髄種、クールー、クロイツフェルトヤコブ病（ＣＪＤ）、Gerstmann-Streussler-Sheinker病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）、スクレイピーおよびウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）から選択される斑形成疾患の処置のためである、請求項１に記載の使用。
6. 該薬剤が、アルツハイマー病の処置のためである、請求項１に記載の使用。
7. 該薬剤が、プリオン病の処置のためである、請求項１に記載の使用。
8. 該薬剤が、多発性骨髄腫の処置のためである、請求項１に記載の使用。
9. 該薬剤が、腎アミロイドーシスの処置のためである、請求項１に記載の使用。
10. 医薬的に許容できる担体または賦形剤、および活性成分として、野性型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージを含む医薬組成物。
11. 前記線維状バクテリオファージがＭ１３、ｆ１、ｆｄおよびそれらの混合物よりなる群から選択される、請求項１０に記載の医薬組成物。
12. 該線維状バクテリオファージが、Ｍ１３である、請求項１０に記載の医薬組成物。
13. 医薬的に許容できる担体また賦形剤、および活性成分として、野性型の線維状バクテリオファージ、または抗体もしくは非線維状バクテリオファージ抗原をその表面に提示しない線維状バクテリオファージのいずれかを含む、斑形成疾患におけるアミロイド斑の量の減少させることにおける使用のための医薬組成物。
14. 該アミロイド斑が、脳内におけるものである、請求項１３に記載の医薬組成物。
15. 該斑形成疾患が、早発性アルツハイマー病、遅発性アルツハイマー病、前駆症状アルツハイマー病、ＳＡＡアミロイド症、遺伝的アイスランド症候群、老化、多発性骨髄種、クールー、クロイツフェルトヤコブ病（ＣＪＤ）、Gerstmann-Streussler-Sheinker病（ＧＳＳ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）、スクレイピーおよびウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）から選択される、請求項１３に記載の医薬組成物。
16. 該斑形成疾患が、アルツハイマー病である、請求項１３に記載の医薬組成物。
17. 該線維状バクテリオファージが、Ｍ１３、ｆ１、ｆｄバクテリオファージおよびそれらの混合物よりなる群から選択される、請求項１３に記載の医薬組成物。
18. 該線維状バクテリオファージが、Ｍ１３である、請求項１３に記載の医薬組成物。

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