JP2023529416A - キメラ抗原受容体細胞 - Google Patents

Abstract

本発明は、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）と、前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメインおよび細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメインを含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含む細胞に関する。本発明はまた、疾患の処置および／または予防において使用するためのＣＡＲ系、核酸、ベクター、医薬組成物、および医薬組成物を提供する。

Description

発明の分野
本発明は、キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）および二重特異性タンパク質に関し、具体的には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質の組合せ、前記ＣＡＲを含み前記二重特異性タンパク質を発現する細胞に関し、具体的には、ＣＡＲが、典型的には細胞の細胞表面上に存在しない抗原を標的とすることを可能にするアプローチに関する。本発明は、本発明による細胞および／または二重特異性タンパク質を含む医薬組成物、ならびに疾患の処置および／または予防におけるそれらの使用に関する。

発明の背景
免疫系は、多数の異なる種類のがんの発生および成長において役割を果たす。いくつかの異なる免疫治療戦略が、これらのがんのための有望な治療法として開発されている。腫瘍細胞を認識し抗腫瘍エフェクター機能を促進するように免疫系を修飾するための免疫治療戦略には、免疫チェックポイント遮断、腫瘍浸潤リンパ球またはトランスジェニックＴ細胞受容体（ＴＣＲ）もしくはＣＡＲを発現する遺伝子修飾されたＴ細胞を用いた養子細胞療法（ＡＣＴ）が含まれる。

ＣＡＲまたはトランスジェニックＴＣＲの細胞への導入は、ＣＡＲまたはＴＣＲをコードする核酸の末梢血細胞、例えば、末梢血Ｔ細胞へのｅｘ ｖｉｖｏ導入によって、抗原に特異的な細胞を大量に生成することを可能にする。

ＣＡＲは、モノクローナル抗体の特異性を細胞、例えば、Ｔ細胞に移植する人工受容体であり、抗体の重鎖可変領域（ＶＨ）および軽鎖可変領域（ＶＬ）を、単独または他のシグナル伝達部分と組み合わせて、細胞内シグナル伝達鎖に連結させることによって構築することができる。ＣＡＲは、腫瘍細胞表面上に提示される抗原を認識する。

ＣＡＲ Ｔ細胞は、患者に生着し、増殖し、疾患の部位へとホーミングする。ＣＡＲ Ｔ細胞は、標準的な治療法に対して不応性であるものを含め、リンパ系悪性疾患に対する活性を示している。ＣＡＲ Ｔ細胞の持続により、再発から保護される。まとめると、これらの特性により、ＣＡＲ Ｔ細胞療法は、がんを処置するための有望なモダリティとなっている。

これまででもっとも成功した結果は、ＣＤ１９を標的とするＣＡＲ Ｔ細胞療法を使用した造血系悪性疾患において得られており、これは、Ｆｏｏｄ ａｎｄ Ｄｒｕｇ Ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ（ＦＤＡ）から商業上の認可を受けている。ＣＡＲ Ｔ細胞は、難治性のがんを処置するのに有効であることも示されている。

しかしながら、細胞内抗原を標的とすることができないこと、例えば、ＣＡＲの抗原結合ドメインは細胞内抗原にはアクセスすることができないことが、ＣＡＲ Ｔ細胞の現在の１つの主要な限定である。多くの細胞内抗原は、正常細胞よりも腫瘍細胞に高度に選択的である変異、融合、または異常なリン酸化事象を生じるため、これによって、ＣＡＲががんを特異的に標的とする能力は限定される。腫瘍細胞は、細胞内抗原（その多くは、腫瘍細胞に高度に選択的であるこれらの変異、融合、または異常なリン酸化事象を含む）を腫瘍微小環境に漏出することが知られている。

細胞内抗原を認識する１つの手段は、ＭＨＣの状況においてペプチドを認識するトランスジェニックＴＣＲを使用することによるものである。例えば、過剰発現されるタンパク質に由来するペプチド、または点変異を含むペプチド、融合ジャンクション、およびさらにはホスホ－エピトープを認識するＴＣＲを、生成することができる。

しかしながら、トランスジェニックＴＣＲは、いくつかの限定を有する。第１には、トランスジェニックＴＣＲは、異なるＨＬＡ型について生成しなければならない。臨床試験において記載され試験されているほぼすべてのトランスジェニックＴＣＲは、ＨＬＡ－Ａ２拘束性である。集団に応じて、ＨＬＡ－Ａ２の保有率は、４０％またはそれよりも低い。第２に、ペプチドの提示は、タンパク質のプロセシングおよびペプチドの提示という複雑なプロセスに完全に依存する。これは、必要な機序の崩壊の機会が相当にあることを意味する。すべてのペプチドが、これらの経路に依存するため、複数のエピトープを標的とすることは、この関連する問題を解決することにはならない。トランスジェニックＴＣＲを使用して細胞内抗原を標的とすることのさらなる限定は、特異性を生成することが困難であり、前臨床データにより交差反応性に起因する毒性が予測されないことである。

免疫療法のための細胞内抗原を標的とする改善された手段が、必要とされている。

発明の態様の概要
本発明は、調節不全の腫瘍細胞が、少量の腫瘍抗原（例えば、細胞内腫瘍抗原）を漏出し、免疫療法アプローチを使用してその抗原を標的とすることができるという本発明者らの認識に少なくとも部分的に基づく。例えば、少量の腫瘍抗原は、調節不全のＥＲ／ゴルジ体および／または膜輸送に起因して、腫瘍細胞によって放出され得る。これらの腫瘍抗原は、腫瘍の周囲の微小環境へと放出され、低いレベルで存在する。これらの腫瘍抗原は、細胞表面上には存在しない（すなわち、細胞表面上に保持されない）ため、標準的なＣＡＲを用いてそれらを標的とすることは不可能であった。それらの発現レベルが低いこともまた、治療法のためにこれらの腫瘍抗原を有効に標的とすることに関して問題を提示し得る。

本発明は、腫瘍微小環境内に低いレベルで存在するこれらの腫瘍抗原を標的とするための治療的戦略を提供する。この戦略は、１）ＣＡＲを発現する操作された細胞と、２）二重特異性タンパク質との組合せの使用を含む。本発明の例示的な実施形態は、図１～４に示されている。

二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境内（例えば、腫瘍細胞の細胞表面上）の細胞表面抗原に結合する第１のドメインと、腫瘍抗原に結合する第２のドメインとを含む。操作されたＣＡＲ細胞は、二重特異性タンパク質によって認識されるものとは異なるエピトープにおいて腫瘍抗原に結合するＣＡＲを発現する。腫瘍抗原は、二重特異性タンパク質との相互作用を通じて、腫瘍細胞または近傍の細胞から放出されるにつれて細胞（例えば、腫瘍細胞）の表面上に蓄積される。次いで、ＣＡＲは、二重特異性タンパク質に係留された腫瘍抗原に結合する。表面上で抗原を捕捉する標的細胞が、溶解される。

この治療戦略を利用して、
・腫瘍によって発現される融合タンパク質（例えば、二重特異性タンパク質が、一方の融合パートナーを認識してそれに結合し、ＣＡＲが、他方の融合パートナーを認識してそれに結合する）、
・腫瘍特異的変異を含むタンパク質（例えば、二重特異性タンパク質が、タンパク質のエピトープを認識してそれに結合し、ＣＡＲが、腫瘍特異的変異であり得る変異を認識してそれに結合する（またはその逆も同様））、
・腫瘍における異常にリン酸化されたタンパク質（例えば、二重特異性タンパク質が、タンパク質のエピトープを認識してそれに結合し、ＣＡＲが、異常なリン酸化を含むエピトープを認識してそれに結合する（またはその逆も同様））
を含むがこれらに限定されない腫瘍抗原を標的とすることができる。

本発明による操作された細胞および二重特異性タンパク質は、これによって、治療薬として使用するための改善された操作された細胞を提供し得る。
一態様では、本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲと、
（ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドと
を含む細胞を提供する。

細胞は、操作された免疫エフェクター細胞であり得る。
二重特異性タンパク質は、分泌タンパク質であり得る。

腫瘍抗原の第１のエピトープおよび腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する結合ドメインは、非競合的であり得る。好適には、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合するＣＡＲの結合ドメイン、および腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する二重特異性タンパク質の第１の結合ドメインは、同時に同じ抗原に結合することができる場合がある。

細胞表面抗原は、細胞表面組織抗原であり得る。

好適には、腫瘍抗原は、細胞表面腫瘍抗原ではなく、好ましくは、腫瘍抗原は、膜貫通ドメインも；グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）－アンカーなどの脂質アンカーも含まない。

好適には、腫瘍抗原は、シグナルペプチドを含まない。

腫瘍抗原は、腫瘍において、対応する非がん性組織と比較して高いレベルで発現され得るか、または抗原は、腫瘍特異的であり得る。

腫瘍抗原の第１および／または第２のエピトープは、腫瘍特異的変異を含み得る。

変異は、置換、挿入、または欠失から選択され得る。

腫瘍抗原は、融合タンパク質であってもよい。好適には、前記融合タンパク質は、少なくとも２つのドメインを含み得、融合タンパク質の第１のドメインは、腫瘍抗原の第１のエピトープを含み得、融合タンパク質の第２のドメインは、腫瘍抗原の第２のエピトープを含み得る。換言すると、ＣＡＲの結合ドメインおよび二重特異性タンパク質の第１の結合ドメインは、融合タンパク質の異なるドメイン、または融合タンパク質を含む異なる融合パートナーに結合する。

腫瘍抗原の第１または第２のエピトープは、腫瘍特異的翻訳後修飾を含み得る。

腫瘍特異的翻訳後修飾は、リン酸化であり得、好適には、腫瘍抗原エピトープのうちの１つは、リン酸化部位であり得る。例えば、腫瘍抗原エピトープのうちの１つは、リン酸化部位（腫瘍に特異的である）であり得、第２の腫瘍抗原エピトープは、リン酸化部位ではないか、または腫瘍特異的ではないエピトープであり得る。

ＣＡＲの結合ドメインは、腫瘍に特異的である腫瘍抗原の第１のエピトープに結合し得る。

二重特異性タンパク質の第１の結合ドメインは、腫瘍に特異的である腫瘍抗原の第２のエピトープに結合し得る。

細胞は、免疫エフェクター細胞、例えば、アルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージであり得る。

別の態様では、本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする第１の核酸配列と、
（ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質をコードする第２の核酸配列と
を含む核酸構築物を提供する。

第１および第２の核酸配列は、共発現部位によって分離されていてもよい。
さらなる態様では、本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする第１の核酸配列と、
（ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質をコードする第２の核酸配列と
を含む核酸配列のキットを提供する。

別の態様では、本発明は、本発明の核酸構築物を含むベクターを提供する。

別の態様では、本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする核酸配列を含む、第１のベクターと、
（ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質をコードする核酸配列を含む、第２のベクターと
を含む、ベクターのキットを提供する。

さらなる態様では、本発明は、本発明に従う複数の細胞、本発明に従う核酸構築物、本発明に従う第１の核酸配列および第２の核酸配列、本発明に従うベクター、または本発明に従う第１および第２のベクターを含む医薬組成物を提供する。

別の態様では、本発明は、疾患の処置および／または予防において使用するための、本発明の医薬組成物を提供する。

疾患はがんであり得る。

さらなる態様では、本発明は、本発明に従う細胞を作製するための方法であって、本発明に従う核酸構築物、本発明に従う第１の核酸配列および第２の核酸配列、本発明に従うベクター、または本発明に従う第１および第２のベクターを、細胞に導入するステップを含む、方法を提供する。

別の態様では、本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインを含む受容体構成成分と、
ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質と
を含むＣＡＲ系を提供する。

この系は、操作された免疫エフェクター細胞を含み得る。例えば、細胞は、アルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージであり得る。好適には、操作された免疫エフェクター細胞は、受容体構成成分を発現し得る。

この系は、操作された免疫エフェクター細胞を含み得る。例えば、細胞は、アルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージであり得る。好適には、操作された免疫エフェクター細胞は、二重特異性タンパク質を発現する。

受容体構成成分および二重特異性タンパク質は、同じ細胞によって発現され得る。例えば、二重特異性タンパク質は、系によって、または系内の構成成分によって、産生され得る。

二重特異性タンパク質は、系に投与され得る。例えば、二重特異性タンパク質は、系の外部で産生され得、続いて、系に導入されてもよい。

さらなる態様では、本発明は、ＣＡＲ発現細胞と組み合わせてがんの処置において使用するための、二重特異性タンパク質であって、
腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含み、
ＣＡＲが、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含む、
二重特異性タンパク質を提供する。

さらなる態様では、本発明は、二重特異性タンパク質と組み合わせてがんの処置において使用するための、ＣＡＲ発現細胞であって、
ＣＡＲが、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含み、
二重特異性タンパク質が、
腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む、
ＣＡＲ発現細胞を提供する。

図１は、本発明の態様の概略図を示す。パネル（ａ）では、腫瘍細胞が、腫瘍抗原として知られるある特定の抗原を過剰発現している。腫瘍細胞は、例えば、調節不全のＥＲ／ゴルジ体および膜輸送を通じて、少量の細胞内タンパク質を放出する。したがって、少量の腫瘍抗原が、細胞外で腫瘍微小環境に存在する。しかしながら、これらの腫瘍抗原は、腫瘍細胞膜に結合しておらず、低いレベルで存在するため、典型的には細胞表面抗原のみを標的とする従来のＣＡＲ Ｔ細胞によって標的とすることができない。パネル（ｂ）では、本発明の一般概念が、概略的に示されている。本発明によるＣＡＲ Ｔ細胞は、二重特異性タンパク質を分泌するように修飾されている。この二重特異性タンパク質は、問題の腫瘍によっても発現される表面組織抗原に対する特異性を有する結合ドメインと、ＣＡＲによる前記抗原の認識とオーバーラップしない腫瘍抗原に対する特異性を有する結合ドメインとを含む。分泌された二重特異性タンパク質は、ＣＡＲによる標的化を可能にする腫瘍細胞表面上の腫瘍抗原の係留およびその濃縮をもたらす。

図２は、本発明の一実施形態の概略図を示し、ここで、腫瘍は、少なくとも２つのドメイン、例えば、ＥＭＬ４－ＡＬＫ、ＢＣＲ／ＡＢＬを含む融合タンパク質、または任意の他の融合タンパク質、例えば、表２に列挙されるものを発現している。二重特異性タンパク質は、一方の融合パートナーに結合し、それを腫瘍細胞表面上に係留する／増幅させる。ＣＡＲは、他方の融合パートナーを認識する。これにより、融合タンパク質のみが増幅され、ＣＡＲ Ｔ細胞によって認識されるため、系の特異性が増加する。

図３は、本発明の一実施形態の概略図を示し、ここで、腫瘍は、腫瘍特異的変異を有するタンパク質を発現している。二重特異性タンパク質は、問題のタンパク質の一般的なエピトープに結合し、それを腫瘍細胞表面上に係留する／増幅させることができ、一方で、ＣＡＲは、特異的に変異を認識するか、または逆も同様である。これにより、変異したタンパク質のみが増幅され、ＣＡＲ Ｔ細胞によって認識されるため、系の特異性が増加する。

図４は、本発明の一実施形態の概略図を示し、ここで、腫瘍は、異常にリン酸化されているタンパク質を発現している。二重特異性タンパク質は、異常なリン酸化の部位とは異なるタンパク質のエピトープに結合することができ、ＣＡＲは、ホスホ－エピトープを特異的に認識することができるか、または逆も同様である。これにより、異常にリン酸化されているタンパク質のみが増幅され、ＣＡＲ Ｔ細胞によって認識されるため、系の特異性が増加する。

図５は、ＣＤ３３陽性の細胞内ｅＧＦＰ発現細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｔｒｏ標的化を示す。ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ標的化ＣＡＲは、二重陽性ＣＤ３３／ｅＧＦＰ発現標的を溶解し、単一陽性ＣＤ３３発現標的を残す。抗ＣＤ３３ ＣＡＲ（αＣＤ３３ｇｌｘ－ＨＮＧ）、抗ＧＦＰ ＣＡＲ（αＧＦＰ＿ＧＢＰ６－ＨＮＧ）、陰性対照ＣＤ１９－ＣＡＲ（αＣＤ１９ＦＭＣ６３）、および非形質導入（ＮＴ）のＣＡＲを発現し、ＧＦＰ／ＣＤ３３に対する二重特異性結合体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ｂｉｎｄｅｒ）（αＧＦＰ－ＨＮＧ－αＣＤ３３タンデムｓｃＦｖ）およびＧＦＰ／ＣＤ１９に対する無関係の二重特異性結合体（αＧＦＰ－ＨＮＧ－αＣＤ１９）のいずれかを共発現する、エフェクターＴ細胞を、エフェクター対標的の比１：１で、ＣＤ３３発現ＨＬ６０細胞（パネルＡを参照されたい）、細胞内ｅＧＦＰタンパク質を発現するＨＬ６０細胞（３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ）（パネルＢを参照されたい）、および細胞内キメラＧＦＰ／ＢＣＬ－ＡＢＬタンパク質を発現するＨＬ６０細胞（ｐ２１０．ｐ２１０＿ＢＣＲ－ＡＢＬ－３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ）（パネルＣを参照されたい）と共培養した。

図６は、皮下ＮＯＤ ｓｃｉｄガンマ（ＮＳＧ）マウスにおける、ＣＤ１９－ＣＡＲ、およびＧＦＰ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性タンパク質を発現するＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ、ならびに非形質導入（ＮＴ）Ｔ細胞による、ＣＤ１９発現ＮＡＬＭ６細胞および細胞内ＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｖｏ標的化を示す。ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲは、両側腹部処置（ｂｉｌａｔｅｒａｌｌｙ ｆｌａｎｋｅｄ）ＮＳＧマウスにおいて、二重陽性ＣＤ１９／ｅＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を標的としてそれを溶解し、一方で、単一陽性ＮＡＬＭ６腫瘍を残す。パネルＡは、ｉｎ ｖｉｖｏ ＮＡＬＭ６皮下動物モデルにおける時系列、コホート、試料採取、および注射経路の詳細を示す。ＮＳＧマウスに、０．５×１０＾６個のＮＡＬＭ６およびＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を、交互に後腹部に注射し、５×１０＾６個のＣＡＲ Ｔ細胞を、３日後に腫瘍内に注射した。腫瘍細胞は、生体発光イメージングを通じたｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍成長のマーカーとして、ホタルルシフェラーゼ／グリコシルホスファチジルイノシトール結合型ＨＡタグ（Ｆｌｕｃ＿ｘＲｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ）を発現するように形質導入されていた。パネルＢは、３～２１日目に得られた未加工の画像を示し、αＣＤ１９－ＣＡＲにおける両方の腫瘍の腫瘍制御、およびＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲにおける特異的二重陽性ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍制御を示す。このデータは、腫瘍部位における平均ラジアンスでパネルＣにさらにプロットされており、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲのみによる特異的な腫瘍制御が実証されている。それぞれ、左手側のグラフは、ＮＡＬＭ６の特異的腫瘍平均ラジアンスを示し、右手側のグラフは、ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰの特異的腫瘍平均ラジアンスを示す。線は、それぞれの被験体マウス／コホートの平均読み取り値を示す。 同上。 同上。 同上。

図７は、皮下ＮＯＤ ｓｃｉｄガンマ（ＮＳＧ）マウスにおける、αＣＤ１９－ＣＡＲ、およびＧＦＰ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性タンパク質またはＧＦＰ／ＣＤ３３を標的とする無関係のタンパク質のいずれかを発現するＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ、ならびに非形質導入（ＮＴ）Ｔ細胞による、ＣＤ１９発現ＮＡＬＭ６細胞および細胞内ＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｖｏ標的化を示す。ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲ ＋ＧＦＰｘＣＤ１９は、両側腹部処置ＮＳＧマウスにおいて、二重陽性ＣＤ１９／ｅＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を標的としてそれを溶解し、一方で、単一陽性ＮＡＬＭ６腫瘍を残す。一方で、ＧＦＰ－ＣＡＲ ＋ＧＦＰ×ＣＤ３３は、ＮＴ Ｔ細胞と同様に、両方の腫瘍の制御に失敗している。パネルＡは、ｉｎ ｖｉｖｏ ＮＡＬＭ６皮下動物モデルにおける時系列、コホート、試料採取、および注射経路の詳細を示す。ＮＳＧマウスに、０．５×１０＾６個のＮＡＬＭ６およびＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を、左後腹部および右肩部の交互の部位に注射し、５×１０＾６個のＣＡＲ Ｔ細胞を、３日後に腫瘍内に注射した。腫瘍細胞には、生体発光イメージングを通じたｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍成長のマーカーとして、ホタルルシフェラーゼ／グリコシルホスファチジルイノシトール結合型ＨＡタグ（Ｆｌｕｃ＿ｘＲｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ）を発現するように形質導入されていた。パネルＢは、３～２１日目に得られた未加工の画像を示し、αＣＤ１９－ＣＡＲにおける両方の腫瘍の腫瘍制御、およびＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲにおける特異的二重陽性ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍制御を示す。ＧＦＰ－ＣＡＲ ＿ＧＦＰｘＣＤ３３は、ＮＴ Ｔ細胞と同様に、両方の腫瘍の制御に失敗している。このデータは、腫瘍部位における平均ラジアンスでパネルＣにさらにプロットされており、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ ＋ＧＦＰｘＣＤ１９のみによる特異的な腫瘍制御が実証されている。左手側のグラフは、ＮＡＬＭ６の特異的腫瘍平均ラジアンスを示し、右手側のグラフは、ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰの特異的腫瘍平均ラジアンスを示す。線は、それぞれの被験体マウス／コホートの平均読み取り値を示す。コホート２（αＣＤ１９＿ＦＭＣ６３－ ＨＮＧ）の最初のマウスは、２１日目以前に体重減少に起因して処分されている。 同上。 同上。 同上。

図８は、結腸がん細胞株、ならびに対照細胞である活性化ＰＢＭＣおよび非活性化ＰＢＭＣに由来するｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞上清に対するｐ５３特異的ＥＬＩＳＡによって測定した、細胞外ｐ５３タンパク質を示す。１×１０^５個の細胞を、９６Ｆウェルプレートにおいて２００ｕｌの培地に播種し、４８時間インキュベートした後、細胞上清を、ｐ５３タンパク質に関して定量した。ｐ５３タンパク質は、試験した結腸がん細胞株の５／６で検出することができる。ＣＬ－４０およびＳＷ１４６３細胞株は、Ｒ２４８Ｑ変異を有する変異体ｐ５３を発現する。ＨＴ－２９は、Ｒ２７３Ｈ変異体ｐ５３を発現する。ＬＳ１２３は、Ｒ１７５Ｈ変異体ｐ５３を発現する。ＲＫＯおよびＬＳ１７４Ｔは、野生型ｐ５３を発現する。読み取り値は、ＨＴ－２９、ＬＳ１２３、およびＬＳ１７４Ｔ細胞については７個の生物学的複製物、ＣＬ－４０、ＳＷ１４６３、活性化および非活性化ＰＢＭＣについては６個の生物学的複製物、ＲＫＯ細胞については１個の複製物である。

図９は、ＨＴ２９（細胞表面ＥｐＣＡＭおよび細胞外ｐ５３変異体Ｒ２７３Ｈを発現する）またはＬＳ１２３（細胞表面ＥｐＣＡＭおよび細胞外ｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを発現する）の標的結腸直腸がん細胞とともにインキュベートしたときのＴ細胞からのＩＬ－２サイトカイン放出を示し、ここで、Ｔ細胞は、棒グラフの左から右に、非形質導入（ＮＴ）細胞、抗ＥｐＣＡＭ ＣＡＲを発現するもの（抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）、抗ＣＤ１９ ＣＡＲを発現するもの（抗ＣＤ１９＿ＦＭ６３ ＣＡＲ）、汎指向性（ｐａｎｔｒｏｐｉｃ）ｐ５３ ＣＡＲを発現し、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体を分泌するもの（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）、汎指向性ｐ５３ ＣＡＲを発現し、ＥｐＣＡＭおよびＣＤ１９に対する二重特異性結合体を分泌するもの（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３）である。

図１０は、ＨＴ２９（細胞表面ＥｐＣＡＭおよび細胞外ｐ５３変異体Ｒ２７３Ｈを発現する）またはＬＳ１２３（細胞表面ＥｐＣＡＭおよび細胞外ｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを発現する）の標的結腸直腸がん細胞とともにインキュベートしたときのＴ細胞からのＩＦＮγサイトカイン放出を示し、ここで、Ｔ細胞は、棒グラフの左から右に、非形質導入（ＮＴ）細胞、抗ＥｐＣＡＭ ＣＡＲを発現するもの（抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）、抗ＣＤ１９ ＣＡＲを発現するもの（抗ＣＤ１９＿ＦＭ６３ ＣＡＲ）、汎指向性（ｐａｎｔｒｏｐｉｃ）ｐ５３ ＣＡＲを発現し、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体を分泌するもの（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）、汎指向性ｐ５３ ＣＡＲを発現し、ＥｐＣＡＭおよびＣＤ１９に対する二重特異性結合体を分泌するもの（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３）である。

図１１は、細胞表面ＥｐＣＡＭを発現し、変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈを有するＬＳ１２３細胞に対する、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌する汎指向性ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１）発現Ｔ細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏリアルタイム細胞傷害を示す。対照エフェクターには、非形質導入細胞（ＮＴ）および陽性対照ＣＡＲ抗ＥｐＣＡＭ（ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）が含まれる。Ａ）４：１のＥ：Ｔ比（ＣＡＲ：標的）の共培養物における１２０時間にわたる生存ＬＳ１２３標的細胞のリアルタイム分析。破線は、ｔ＝０に対して正規化した０．５正規化生存標的である。Ｂ）ｔ＝０に対して正規化した生存標的と比較した、ＬＳ１２３標的細胞の５０％殺滅までの時間。ｎ／ａ、該当なし。

詳細な説明
キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）
古典的なキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）は、通常、細胞外抗原認識ドメイン（結合体）を細胞内シグナル伝達ドメイン（エンドドメイン）に接続する、キメラＩ型膜貫通タンパク質である。結合体は、典型的に、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）由来の一本鎖可変断片（ｓｃＦｖ）であるが、抗体様の、またはリガンドに基づく、抗原結合部位を含む他の形式に基づいていてもよい。スペーサードメインは、通常、結合体を膜から単離し、それ自体を好適な配向に配置するのを可能にするために、使用される。使用される一般的なスペーサードメインは、ＩｇＧ１のＦｃである。抗原に応じて、ＣＤ８α由来のストークまたはさらにはＩｇＧ１ヒンジ単独だけなど、さらに小型のスペーサーが十分であり得る。膜貫通ドメインは、タンパク質を細胞膜に固定し、スペーサーをエンドドメインに接続する。

初期のＣＡＲの設計は、ＦｃεＲ１のγ鎖またはＣＤ３ζのいずれかの細胞内部分に由来するエンドドメインを有していた。結果として、これらの第１世代受容体は、免疫性シグナル１を伝達し、このシグナルは、Ｔ細胞による同起源の標的細胞の殺滅をトリガーするには十分であったが、Ｔ細胞を完全に活性化して増殖および生存させることはできなかった。この限定を克服するために、複合エンドドメインが構築されており、Ｔ細胞共刺激分子の細胞内部分を、ＣＤ３ζのものに融合させることにより、抗原認識後に活性化および共刺激のシグナルを同時に伝達することができる第２世代の受容体が得られる。最も一般的に使用されている共刺激ドメインは、ＣＤ２８のものである。これは、最も強力な共刺激シグナル、すなわち、免疫性シグナル２を提供し、このシグナルが、Ｔ細胞増殖をトリガーする。生存シグナルを伝達する、関係性の深いＯＸ４０および４１ＢＢなど、ＴＮＦ受容体ファミリーのエンドドメインを含むいくつかの受容体についても説明されている。現在では、活性化、増殖、および生存のシグナルを伝達することができるエンドドメインを有する、さらに強力な第３世代のＣＡＲについて説明されている。

ＣＡＲをコードする核酸を、例えば、レトロウイルスベクターを使用して、細胞、例えば、Ｔ細胞などの免疫エフェクター細胞に導入することができる。レンチウイルスベクターを利用してもよい。これにより、多数の抗原特異性細胞を、養子細胞移入のために生成することができる。ＣＡＲが標的抗原に結合する場合、ＣＡＲが発現されるＴ細胞への活性化シグナルの伝達が生じる。したがって、ＣＡＲは、Ｔ細胞の特異性および細胞傷害を、標的抗原を発現する腫瘍細胞へと向ける。

したがって、ＣＡＲは、典型的には、（ｉ）抗原結合ドメイン、（ｉｉ）スペーサー、（ｉｉｉ）膜貫通ドメイン、および（ｉｉｉ）シグナル伝達ドメインを含むかまたはそれと会合する細胞内ドメインを含む。

好適には、本発明によるＣＡＲは、抗原結合ドメイン－スペーサー－膜貫通ドメイン－シグナル伝達ドメインの一般形式を含み得る。好適には、本発明によるＣＡＲは、抗原結合ドメイン－スペーサー－膜貫通ドメイン－シグナル伝達ドメインの一般形式を有し得る。

好適には、本発明によるＣＡＲは、一般形式：抗原結合ドメイン－ＣＤ３を含み得る。好適には、本発明によるＣＡＲは、一般形式：抗原結合ドメイン－ＣＤ３を有し得る。

結合ドメイン
結合ドメイン（または抗原結合ドメイン）は、抗原を認識し、それに結合する、ＣＡＲまたは二重特異性タンパク質の部分である。

抗体、抗体断片、抗体模倣体、およびＴ細胞受容体の抗原結合部位に基づくものを含む、多数の結合ドメインが当該技術分野で公知である。

選択された標的に結合することができる抗体断片の例としては、Ｆｖ、ＳｃＦｖ、Ｆ（ａｂ’）、およびＦ（ａｂ’）２が挙げられる。

例えば、結合ドメインは、モノクローナル抗体由来のｓｃＦｖなどの一本鎖可変断片（ｓｃＦｖ）、標的抗原の天然のリガンド、標的に対して十分な親和性を有するペプチド、単一ドメイン抗体、Ｄａｒｐｉｎ（設計型アンキリン反復タンパク質）などの人工単一結合体またはＴ細胞受容体に由来する一本鎖を含み得る。

結合ドメインは、少なくとも１つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む抗原結合部位を有するポリペプチドであり得る。結合ドメインは、３つのＣＤＲを含み得、ドメイン抗体（ｄＡｂ）のものと同等である抗原結合部位を有し得る。結合ドメインは、６つのＣＤＲを含み得、古典的抗体分子のものと同等である抗原結合部位を有し得る。ポリペプチドの残りは、結合部位に好適なスキャフォールドを提供し、それが抗原に結合するのに適切な様式でそれを提示する、任意の配列であり得る。結合ドメインは、免疫グロブリン分子の一部、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ）’２、Ｆｖ、一本鎖Ｆｖ（ＳｃＦｖ）断片、ナノボディ（ｎａｎｏｂｏｄｙ）、または一本鎖可変ドメイン（３つのＣＤＲを有するＶＨもしくはＶＬ鎖であり得る）であり得る。結合ドメインは、非ヒトのものであってもよく、キメラのものであってもよく、ヒト化されていてもよく、または完全にヒトのものであってもよい。

結合ドメインは、免疫グロブリンに由来することも、それに基づくこともない、結合ドメインを含み得る。非抗体ポリペプチドの結合能力を利用するいくつかの「抗体模倣体」設計型反復タンパク質（ＤＲＰ）が開発されている。そのような分子としては、アンキリンまたはロイシンリッチ反復タンパク質、例えば、ＤＡＲＰｉｎ（設計型アンキリン反復タンパク質）、アンチカリン、アビマー（ａｖｉｍｅｒ）、およびバーサボディ（ｖｅｒｓａｂｏｄｙ）が挙げられる。

結合ドメインは、本明細書で規定される抗原に「特異的に結合」し得る。本明細書に使用されるとき、「特異的に結合する」とは、結合ドメインが、抗原に結合するが、他のタンパク質には結合しないか、または低い親和性で他のタンパク質に結合することを意味する。

２つの分子の間、例えば、抗原結合ドメインと抗原との間の結合親和性は、例えば、解離定数（ＫＤ）の決定によって定量することができる。ＫＤは、例えば、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）方法（例えば、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標））による、結合ドメインと抗原との間の複合体の形成および解離の動態の測定によって、決定することができる。複合体の結合および解離に対応する速度定数は、それぞれ、結合速度定数ｋａ（またはｋｏｎ）および解離速度定数ｋｄ．（またはｋｏｆｆ）と称される。ＫＤは、式ＫＤ＝ｋｄ／ｋａによってｋａおよびｋｄと関連する。

異なる分子相互作用と関連する結合親和性、例えば、異なる結合ドメインおよび抗原の結合親和性の比較は、個々の結合ドメインおよび抗原のＫＤ値の比較によって比較することができる。

結合ドメインは、抗体の抗原結合部位に基づかないドメインを含み得る。例えば、抗原結合ドメインは、腫瘍細胞表面受容体の可溶性リガンド（例えば、可溶性ペプチド、例えば、サイトカインもしくはケモカイン）であるタンパク質／ペプチドに基づくドメイン、または結合対の対応物が腫瘍細胞上に発現される膜結合型リガンドもしくは受容体の細胞外ドメインを含み得る。

結合ドメインは、抗原の天然のリガンドに基づき得る。

結合ドメインは、コンビナトリアルライブラリーに由来する親和性ペプチド、またはｄｅ ｎｏｖｏで設計された親和性タンパク質／ペプチドを含み得る。

選択された標的に結合することができる抗体断片としては、Ｆｖ、ＳｃＦｖ、Ｆ（ａｂ’）、およびＦ（ａｂ’）２が挙げられる。加えて、古典的な抗体の代替物、例えば、「アビボディ」、「アビマー」、「アンチカリン」、「ナノボディ」、および「ＤＡＲＰｉｎ」もまた、使用され得る。

一態様では、腫瘍抗原の第１のエピトープおよび腫瘍抗原に対する第２のエピトープに結合する結合ドメインは、非競合的であり得る。好適には、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合するＣＡＲの結合ドメイン、および腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する二重特異性タンパク質の第１の結合ドメインは、同時に同じ抗原に結合することができる場合がある。

好適な抗原に結合する様々な結合ドメインが、当該技術分野において公知である。例えば、以下の表１～４は、本発明において使用され得る結合ドメインを含む、例示的な市販の抗体を列挙する。

表１．ホスホ抗原に結合する、例えば、ホスホ残基を含むエピトープに結合するか、またはホスホエピトープとは異なるエピトープに結合する結合ドメインを含む、市販入手可能な抗体。

表２．腫瘍融合タンパク質に結合する、例えば、融合パートナーの一方のエピトープに結合する結合ドメインを含む、市販入手可能な抗体。

表３．点変異を有する抗原に結合する、例えば、点変異を含むエピトープに結合するか、または点変異とは異なるエピトープ（野生型エピトープと称される）に結合する結合ドメインを含む、市販入手可能な抗体。

表４．腫瘍において過剰発現される抗原に結合する結合ドメインを含む、市販入手可能な抗体。

好適には、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、表１～４に列挙される市販入手可能な抗体に由来する結合ドメインに基づき得る。好適には、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、表１～４に列挙される市販入手可能な抗体のうちのいずれかの結合ドメインを含み得る。

一態様では、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、変異体ｐ５３に対する抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。好適には、抗体は、変異特異的抗体であり得る、すなわち、抗体は、変異体ｐ５３に結合する。本発明において使用され得る例示的な抗体は、国際公開第ＷＯ２０１８０７４９７８号およびＨｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ２０１８， Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ ２２， ２９９－３１２に記載されており、これらは、いずれも参照により本明細書に組み込まれる。一態様では、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ１７５Ｈを含む変異体ｐ５３に対する抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ１７５Ｈを含む変異体ｐ５３に特異的である抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。

一態様では、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、抗体クローン７Ｂ９に基づき得る（またはそれを含み得る）。

一態様では、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ２４８Ｑを含む変異体ｐ５３に対する抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ２４８Ｑを含む変異体ｐ５３に特異的である抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。例示的な抗体は、国際公開第ＷＯ２０１８０７４９７８号およびＨｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（上記）に記載されている。

一態様では、本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ２７３Ｈを含む変異体ｐ５３に対する抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。本発明の任意の態様において使用するための結合ドメインは、Ｒ２７３Ｈを含む変異体ｐ５３に特異的である抗体に基づき得る（またはそれを含み得る）。例示的な抗体は、国際公開第ＷＯ２０１８０７４９７８号およびＨｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（上記）に記載されている。

スペーサードメイン
ＣＡＲは、結合ドメインを膜貫通ドメインと接続し、結合ドメインをエンドドメインから空間的に分離するための、スペーサー配列を含み得る。

二重特異性タンパク質は、２つの結合ドメインの間にスペーサー配列を含み得る。好適には、スペーサー配列は、二重特異性タンパク質の２つの結合ドメインを空間的に分離し得る。

可撓性スペーサーは、結合を促進するために、結合ドメインを異なる方向に配向することを可能にする。

スペーサー配列は、例えば、ＩｇＧ１ Ｆｃ領域、ＩｇＧ１ヒンジ、またはヒトＣＤ８ストーク、またはマウスＣＤ８ストークを含み得る。スペーサーは、あるいは、ＩｇＧ１ Ｆｃ領域、ＩｇＧ１ヒンジ、またはＣＤ８ストークと類似の長さおよび／またはドメイン間隔特性を有する、代替的なリンカー配列を含み得る。ヒトＩｇＧ１スペーサーは、Ｆｃ結合モチーフを除去するように改変されていてもよい。

膜貫通ドメイン
膜貫通ドメインは、膜をまたぐＣＡＲの配列である。

好適には、ＣＡＲは、単回貫通タンパク質であり得る。

好適には、ＣＡＲは、複数回貫通タンパク質であり得る。

膜貫通ドメインは、膜において熱力学的に安定である任意のタンパク質構造であり得る。これは、典型的には、数個の疎水性残基から構成されるアルファヘリックスである。任意の膜貫通タンパク質の膜貫通ドメインを使用して、本発明の膜貫通部分を提供することができる。

タンパク質の膜貫通ドメインの存在および貫通箇所（ｓｐａｎ）は、当業者であれば、ＴＭＨＭＭアルゴリズム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｂｓ．ｄｔｕ．ｄｋ／ｓｅｒｖｉｃｅｓ／ＴＭＨＭＭ－２．０／）などのバイオインフォマティクスツールを使用して予測することができる。さらに、タンパク質の膜貫通ドメインが、比較的単純な構造体、すなわち、膜をまたぐのに十分な長さの疎水性アルファヘリックスを形成することが予測されるポリペプチド配列であることを踏まえると、人工的に設計されたＴＭドメインもまた、使用することができる（例えば、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第７０５２９０６号Ｂ１に記載されるように）。

膜貫通ドメインは、ＣＤ２８に由来してもよく、それにより良好な受容体安定性が得られる。膜貫通ドメインは、ＴＣＲ受容体複合体の構成成分に由来してもよい。膜貫通ドメインは、ＴＣＲアルファ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＴＣＲアルファ鎖を含み得る。

膜貫通ドメインは、ＴＣＲベータ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＴＣＲベータ鎖を含み得る。

膜貫通ドメインは、ＣＤ３鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３鎖を含み得る。

好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－イプシロン鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－イプシロン鎖を含み得る。

好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ガンマ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ガンマ鎖を含み得る。

好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－デルタ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－デルタ鎖を含み得る。

好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ゼータ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ゼータ鎖を含み得る。

活性化エンドドメイン
エンドドメインは、ＣＡＲのシグナル伝達部分である。これは、ＣＡＲの細胞内ドメインの一部であり得るか、またはそれと会合し得る。抗原認識の後、受容体がクラスターを形成し、天然のＣＤ４５およびＣＤ１４８がシナプスから除外され、シグナルが細胞に伝達される。最も一般的に使用されているエンドドメイン構成成分は、ＣＤ３ゼータのものであり、これは、３つのＩＴＡＭを含有する。これは、抗原が結合した後に、活性化シグナルをＴ細胞に伝達する。ＣＤ３ゼータは、完全に適格な活性化シグナルを提供しない場合があり、追加の共刺激シグナル伝達が必要な場合がある。例えば、キメラＣＤ２８およびＯＸ４０を、ＣＤ３ゼータとともに使用して、増殖／生存シグナルを伝達してもよく、または３つすべてを一緒に使用してもよい。

ＣＡＲが活性化エンドドメインを含む場合、これは、ＣＤ３ゼータエンドドメインを単独で、ＣＤ３ゼータエンドドメインをＣＤ２８もしくはＯＸ４０のいずれかのエンドドメインとともに、またはＣＤ２８エンドドメインとＯＸ４０およびＣＤ３ゼータのエンドドメインとを含んでもよい。

ＩＴＡＭモチーフを含む任意のエンドドメインが、活性化エンドドメインとして作用し得る。

好適には、本発明によるＣＡＲは、スプリット受容体であり得、その結果、抗原認識ドメインは、シグナル伝達ドメインとは別個のタンパク質である。

活性化エンドドメインは、ＴＣＲ細胞内ドメインであり得る。

好適には、活性化エンドドメインは、ＴＣＲ受容体複合体の構成成分に由来する細胞内シグナル伝達ドメインに由来する刺激性ドメインを含み得る。

活性化エンドドメインは、ＴＣＲ受容体複合体の構成成分に由来してもよい。活性化エンドドメインは、ＣＤ３鎖に由来してもよい。好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３鎖を含み得る。

好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３－イプシロン鎖に由来してもよい。好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３－イプシロン鎖を含み得る。

好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ガンマ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ガンマ鎖を含み得る。

好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３－デルタ鎖に由来してもよい。好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３－デルタ鎖を含み得る。

好適には、活性化エンドドメインは、ＣＤ３－ゼータ鎖に由来してもよい。好適には、膜貫通ドメインは、ＣＤ３－ゼータ鎖を含み得る。

二重特異性タンパク質
本明細書に使用されるとき、「二重特異性タンパク質」は、腫瘍抗原のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメインを含む、タンパク質を指す。

一態様では、二重特異性タンパク質は、細胞外空間に位置する。二重特異性タンパク質は、細胞外タンパク質であり得る。例えば、二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境の細胞外空間に位置し得る。

一態様では、二重特異性タンパク質は、分泌タンパク質である。

本明細書に使用されるとき、「分泌タンパク質」という用語は、細胞外空間において見出される任意のタンパク質を指す。これには、例えば、古典的な分泌経路を通じて細胞から分泌されるタンパク質、および非古典的な（またはリーダーレスの従来のものではないまたは非従来の）分泌経路を通じて細胞から分泌されるタンパク質が含まれる。

一態様では、二重特異性分泌タンパク質は、古典的な分泌経路を通じて細胞から分泌される。本発明における使用のための二重特異性タンパク質は、それがＴ細胞などの細胞に発現したときに、新生タンパク質が、小胞体、続いて細胞表面に向けられ、そこで発現するように、シグナルペプチドを含み得る。古典的なタンパク質分泌は、Ｓｉｇｎａｌ ＰおよびＴａｒｇｅｔＰ方法、Ｎｉｅｌｓｅｎ，Ｈ．， ｅｔ ａｌ．， （１９９７） Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．， １０， １－６； Ｅｍａｎｕｅｌｓｓｏｎ，Ｏ．， Ｎｉｅｌｓｅｎ，Ｈ．， Ｂｒｕｎａｋ，Ｓ． ａｎｄ ｖｏｎ Ｈｅｉｊｎｅ，Ｇ． （２０００） Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ３００， １００５－１０１６）を使用して予測することができ、これらは、参照により本明細書に組み込まれる。

シグナルペプチドは、典型的に、１６～３０個のアミノ酸の長さであり、通常、新しく合成されるタンパク質のＮ末端に見出される。シグナルペプチドのコアは、単一のアルファヘリックスを形成する傾向を有する、ひと続きの疎水性アミノ酸（約５～約１６個のアミノ酸の長さ）を含有してもよい。シグナルペプチドは、Ｎ末端で短いひと続きの正に荷電したアミノ酸で始まっていてもよく、これは、移行の際にポリペプチドの適正なトポロジーを強制するのに役立つ。シグナルペプチドの末端には、典型的に、シグナルペプチダーゼによって認識され、切断される、ひと続きのアミノ酸がある。シグナルペプチダーゼは、移行の間またはその完了後のいずれかに、遊離シグナルペプチドおよび成熟タンパク質を生成するように切断することができる。遊離シグナルペプチドは、次いで、特異的なプロテアーゼによって消化される。

使用され得るシグナルペプチドの例は、
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧ（配列番号６）
である。

別の態様では、二重特異性分泌タンパク質は、非古典的な分泌経路を通じて細胞から分泌される。非古典的なタンパク質分泌は、ＳｅｃｒｅｔｏｍｅＰ ２．０ ｓｅｒｖｅｒ、Ｊ． Ｄｙｒｌｏｖ Ｂｅｎｄｔｓｅｎ， ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ． Ｄｅｓ． Ｓｅｌ．， １７（４）：３４９－３５６， ２００４（参照により本明細書に組み込まれる）を使用して予測することができる。Ｎ末端シグナルペプチドなしで分泌され得るタンパク質の例としては、ＦＧＦ－１、ＦＧＦ－２、ＩＬ－１、およびガレクチンが挙げられる。一態様では、本発明において使用するための二重特異性分泌タンパク質は、Ｎ末端シグナルペプチドを含まない。

一態様では、二重特異性分泌タンパク質は、細胞、例えば、免疫エフェクター細胞によって発現される。二重特異性分泌タンパク質は、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインを含む受容体構成成分を発現する細胞によって、発現され得る。二重特異性分泌タンパク質は、本明細書に記載される腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲを発現する細胞によって、発現され得る。

一態様では、二重特異性タンパク質は、細胞外空間に導入または投与される。二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境内の細胞外空間に導入または投与され得る。例えば、二重特異性タンパク質は、注射によって直接的に腫瘍微小環境に、または被験体への全身投与によって、導入されてもよい。

二重特異性タンパク質は、可溶性タンパク質であり得る。好適には、二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境の細胞外空間における可溶性タンパク質であり得る。

本明細書に使用されるとき、「可溶性」は、二重特異性タンパク質が、腫瘍微小環境の周囲を移動することができることを意味する。

好適には、抗原に結合する前に、二重特異性タンパク質は、細胞表面に直接的にも間接的にも係留されなくてもよい。したがって、二重特異性タンパク質の両方の末端は、抗原への結合に利用可能である。二重特異性タンパク質が、その標的抗原のうちの１つに結合すると、それは、細胞表面に間接的に係留されるようになる。例えば、図１ ｂ）を参照されたい。二重特異性タンパク質が、その標的抗原の両方に結合すると、それは、ＣＡＲを含む細胞および腫瘍細胞の両方の細胞表面に間接的に係留されるようになる。例えば、図１ ｂ）を参照されたい。

二重特異性タンパク質の結合ドメインは、任意の好適な手段によって、互いに接続され得る。例えば、結合ドメインは、互いに直接的に融合され得る。あるいは、二重特異性タンパク質は、結合ドメイン間のスペーサードメインまたはリンカーを含み得る。リンカーは、例えば、二重特異性タンパク質が腫瘍抗原および細胞表面抗原に結合することを可能にするための柔軟性を提供する。

好適には、スペーサードメインまたはリンカーは、二重特異性タンパク質の２つの結合ドメインを空間的に分離し得る。リンカーは、ペプチドリンカーであってもよい。

好適なリンカーペプチドは、当該技術分野において公知である。例えば、好適なリンカーペプチドの範囲は、Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，（Ａｄｖ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ Ｒｅｖ． ２０１３ Ｏｃｔｏｂｅｒ １５； ６５（１０）： １３５７－１３６９、参照により本明細書に組み込まれる、特に、表３を参照されたい）によって説明されている。

好適なリンカーは、（ＳＧＧＧＧ）ｎ（配列番号７）であり、これは、配列番号７の１つまたは複数のコピーを含む。例えば、好適なリンカーペプチドは、配列番号８として示される。
ＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳ（配列番号８）。

別の例示的なリンカーは、ＸＴＥＮリンカー：ＳＧＳＥＴＰＧＴＳＥＳＡＴＰＥＳ（配列番号９）である。

本発明による二重特異性結合体における使用のための二重特異性タンパク質および／またはドメインの例示的な配列としては、以下のものが挙げられる。
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ－Ｌ３－ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ－Ｈ６（配列番号１０）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ
Ｌ３セリン－グリシンリンカー
ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ ｓｃＦｖ
ヘキサヒスチジンタグ
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ－Ｌ３－ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＨＬ－Ｈ６（配列番号１１）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ
Ｌ３セリン－グリシンリンカー
ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＨＬ
ヘキサヒスチジンタグ

例示的な二重特異性タンパク質は、配列番号１０もしくは１１に示される配列、または配列番号１０もしくは１１のうちのいずれかに対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９９％）の同一性を有するそのバリアントを含み得るが、ただし、バリアントタンパク質が、二重特異性タンパク質として作用することができることを条件とする。好適には、二重特異性タンパク質は、上記に示される配列番号１０もしくは１１に由来する１つもしくは複数のドメイン、または配列番号１０もしくは１１内のドメインに対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９９％）の同一性を有するそのバリアントを含み得るが、ただし、バリアントタンパク質が、二重特異性タンパク質として作用することができることを条件とする。

腫瘍抗原
発現
本明細書に使用されるとき、「腫瘍抗原」は、腫瘍細胞によって産生される抗原を指す。

一態様では、腫瘍抗原は、対応する非がん性組織と比較して高いレベルで、腫瘍によって発現される。

好適には、腫瘍抗原は、対応する非がん性組織よりも少なくとも２０％高い、少なくとも３０％高い、少なくとも４０％高い、少なくとも５０％高い、少なくとも６０％高い、少なくとも７０％高い、少なくとも８０％高い、少なくとも９０％高いレベルで、発現され得る。好適には、腫瘍抗原は、腫瘍特異的であり得る。

本明細書に使用されるとき、「腫瘍特異的」とは、抗原が、同じ系統の非がん性細胞において発現されないか、または低い量で発現されることを意味する。

好適には、腫瘍抗原は、同じ系統の非がん性細胞において、腫瘍と比較して少なくとも２５％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％低いレベルで、発現され得る。

好適には、腫瘍抗原は、対応する非がん性組織において発現されなくてもよい。発現のレベルは、例えば、フローサイトメトリーによって、細胞表面組織抗原に関して陽性である細胞のパーセンテージとして計算され得る。腫瘍から得られた細胞の集団と、対応する非がん性組織に由来する細胞の集団または同じ系統の非がん性細胞の集団との間で、比較を行うことができる。

一態様では、腫瘍抗原は、腫瘍特異的である少なくとも１つのエピトープを含む。前記腫瘍特異的エピトープは、ＣＡＲまたは二重特異性タンパク質の抗原結合ドメインによって認識され得る。例えば、腫瘍特異的であるエピトープは、変異、融合ドメイン、または異常な翻訳後修飾、例えば、リン酸化を含み得る。

一実施形態では、腫瘍抗原は、同じ系統の対応する非がん性組織と比較すると、過剰発現されている。

好適には、「過剰発現される」腫瘍抗原は、腫瘍において、同じ系統の非がん性細胞と比較して少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％高いレベルで、発現され得る。

好適には、腫瘍抗原は、ＰＲＡＭＥ、サバイビン、ＷＴ１、テロメラーゼ、ＭＤＭ２、カリクレイン４、およびＥＲＧから選択され得る。

好適には、腫瘍抗原は、ＰＲＡＭＥ、サバイビン、ＷＴ１、またはテロメラーゼのうちのいずれかであり得る。

これらの腫瘍抗原の過剰発現を伴うがんは、以下の表５に示されている。

局在
ほとんどのがん標的は、腫瘍細胞の表面上に発現されないタンパク質である。細胞表面において見出されるタンパク質（例えば、膜貫通タンパク質またはＧＰＩ結合型タンパク質）は、標準的なＣＡＲを使用して標的化することができるが、細胞の内部において見出されるタンパク質は、標準的なＣＡＲによって標的化することができない。本発明は、典型的に細胞の内部において見出されるタンパク質の標的化を可能にし、それによって、ＣＡＲ療法に適合し得る腫瘍抗原の数を増加させることができる。

がんにおいて、腫瘍細胞は、例えば、調節不全のＥＲ／ゴルジ体および膜輸送を通じて少量の細胞内タンパク質を放出しており、それによって、少量の腫瘍抗原が腫瘍微小環境へと放出されている。本発明は、本発明によるＣＡＲと二重特異性タンパク質との組合せを使用して、これらの腫瘍抗原を細胞表面上に捕捉することによって、これらの腫瘍抗原をＣＡＲ療法の標的として使用するための方法を提供する。

一態様では、腫瘍抗原は、細胞表面腫瘍抗原ではない。

本明細書に使用されるとき、「細胞表面腫瘍抗原」は、細胞の表面上に発現される腫瘍抗原を指す。換言すると、細胞表面腫瘍抗原は、細胞外空間に曝露されている。

好適には、腫瘍抗原は、膜貫通ドメインを含むことも、リン脂質二重層を部分的にまたぐことも、脂質アンカー、例えば、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーを有することもない。

一態様では、腫瘍抗原は、分泌タンパク質ではない。好適には、腫瘍抗原は、シグナルペプチドを含まない。

一態様では、腫瘍抗原は、細胞外タンパク質ではない。

一態様では、腫瘍抗原は、細胞内タンパク質である。本明細書に使用されるとき、「細胞内タンパク質」とは、タンパク質が細胞の内部で発現されることを意味する。

一態様では、腫瘍抗原は、ＴＣＲ抗原である。

「ＴＣＲ抗原」とは、ＴＣＲによって標的化することができる任意の抗原を意味する。例えば、腫瘍抗原は、ＷＴ１、ＭＡＧＥ、Ａ３、Ｐ５３、ＮＹ－ＥＳＯ－１、ＣＥＡ、ＭＡＲＴ１、ＧＰ１００、プロテイナーゼ３、チロシナーゼ、サバイビン、ｈＴＥＲＴ、またはＥｐｈＡ２から選択され得る。

一態様では、腫瘍抗原は、大部分が細胞内タンパク質であるタンパク質である。

「大部分が細胞内タンパク質」とは、腫瘍抗原の少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％が細胞内であること、または換言すると、細胞内で発現されることを意味する。

一態様では、腫瘍抗原は、同じ系統に由来する対応する非がん性細胞において大部分が細胞内タンパク質であるタンパク質である。一態様では、腫瘍抗原は、腫瘍細胞において大部分が細胞内タンパク質であるタンパク質である。

タンパク質の細胞内での局在を決定するための様々な方法が存在しており、当該技術分野において周知であり、これには、例えば、電子顕微鏡法、共焦点顕微鏡法、免疫蛍光、および蛍光タグ付き抗体を用いたフローサイトメトリーが含まれる。

変異
全ゲノム分析により、固形腫瘍が、典型的に、変異した２０～１００個のタンパク質コーディング遺伝子を含むことが示されている（Ｓｔｒａｔｔｏｎ ＭＲ， Ｃａｍｐｂｅｌｌ ＰＪ， Ｆｕｔｒｅａｌ ＰＡ Ｎａｔｕｒｅ． ２００９ Ａｐｒ ９； ４５８（７２３９）：７１９－２４）。これらの画分は、腫瘍の開始または進行を担う「ドライバー」であると考えられ、一方で残部は、選択的増殖優位性を提供しない「パッセンジャー」である。しかしながら、いずれの種類の変異も、腫瘍細胞を標的とする機会を提供する。

一態様では、腫瘍抗原は、変異を含む。

本発明を使用して標的とすることができる変異の例は、Ｃｏｓｍｉｃデータベース：ｈｔｔｐｓ：／／ｃａｎｃｅｒ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋ／ｃｏｓｍｉｃ／において見出すことができる（Ｊ． Ｔａｔｅ ｅｔ ａｌ．， ＣＯＳＭＩＣ： ｔｈｅ Ｃａｔａｌｏｇｕｅ ｏｆ Ｓｏｍａｔｉｃ Ｍｕｔａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ： Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， Ｖｏｌｕｍｅ ４７， ｉｓｓｕｅ Ｄ１， ８ Ｊａｎｕａｒｙ ２０１９， Ｐａｇｅｓ Ｄ９４１－Ｄ９４７、これは、参照により本明細書に組み込まれる）。

変異は、腫瘍特異的変異であり得る。

好適には、腫瘍抗原の第１または第２のエピトープは、腫瘍特異的変異を含み得る。

好適には、変異は、任意の種類の変異であってもよく、例えば、変異は、置換、挿入、または欠失から選択され得る。

一実施形態では、変異は、点変異であり得る。

例えば、点変異は、以下の遺伝子のうちのいずれかにおいて見出され得る：ＴＰ５３、ＫＲＡＳ、ＢＲＡＦ、ＰＴＥＮ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２、ＡＴＭ、ＣＤＫＮ２Ａ、またはＰＩＫ３ＣＡ。

好適には、点変異は、以下の遺伝子のうちのいずれかにおいて見出され得る：ＴＰ５３、ＫＲＡＳ、ＢＲＡＦ、またはＰＴＥＮ。好適には、点変異は、ＴＰ５３において見出され得、例えば、Ｒ１７５Ｈであり得る。

腫瘍抗原における例示的な変異および関連するがんは、以下の表６に示されている。

融合タンパク質
融合タンパク質は、複雑な変異、例えば、染色体転位、タンデム重複、またはレトロ転位により、２つの異なる遺伝子に由来するコーディング配列の部分を含む新規なコーディング配列が作成されたときに生じる。融合タンパク質は、一般に、がん性腫瘍細胞において見出される。そのような融合タンパク質は、腫瘍性タンパク質として機能し得る。例えば、ｂｃｒ－ａｂｌ融合タンパク質は、周知の発がん融合タンパク質であり、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）の主要な発がんドライバーであると考えられる。本発明を使用して標的とすることができる融合タンパク質の例は、Ｃｏｓｍｉｃデータベース：ｈｔｔｐｓ：／／ｃａｎｃｅｒ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋ／ｃｏｓｍｉｃ／ｆｕｓｉｏｎにおいて見出すことができる（Ｊ． Ｔａｔｅ ｅｔ ａｌ．（上記）、これは、参照により本明細書に組み込まれる）。

一態様では、腫瘍抗原は、融合タンパク質である。

好適には、腫瘍抗原は、融合タンパク質であり得、ＥＭＬ４－ＡＬＫ、ＣＣＤ６－ＲＥＴ、ＮＣＯＡ４－ＲＥＴ、ＫＩＦ５Ｂ－ＲＥＴ、ＫＩＦ５Ｂ－ＡＬＫ、ＴＭＰＲＳＳ２－ＥＲＧ、ＥＷＳＲ１－ＦＬＩ１、ＳＹＴ－ＳＳＸ、ＰＡＸ３－ＦＯＸＯ１、ＴＭＰＲＳＳ２－ＥＴＶ１、またはＰＡＸ７－ＦＯＸＯ１から選択され得る。

好適には、腫瘍抗原は、融合タンパク質であり得、ＥＭＬ４－ＡＬＫ、ＣＣＤ６－ＲＥＴ、ＮＣＯＡ４－ＲＥＴ、ＫＩＦ５Ｂ－ＲＥＴ、またはＫＩＦ５Ｂ－ＡＬＫから選択され得る。

好適には、融合タンパク質は、少なくとも２つのドメインを含み得る。第１のドメインは、腫瘍抗原の第１のエピトープを含み得、第２のドメインは、腫瘍抗原の第２のエピトープを含み得る。例えば、それぞれの結合パートナーは、融合タンパク質の異なる融合パートナーを認識し得る。例示的な融合タンパク質および関連するがんは、以下の表７に示されている。

翻訳後修飾
多くの細胞プロセスは、セリン、スレオニン、およびチロシン残基における可逆的なタンパク質リン酸化反応によって調節されることが、知られている。このシグナル伝達カスケードの破壊は、がんを含む多数の疾患に関係付けられている。分子レベルでのリン酸化の重要性は、特に、がんの病因に関与するシグナル伝達経路内に関係付けられている。新しいホスホプロテオミクス技術により、治療的アプローチのための新しい標的を提示する、翻訳後修飾を含む新しいバイオマーカーが特定されている。

例えば、ＭＨＣ－クラス１関連ホスホペプチドは、白血病におけるメモリー様免疫の標的である。本発明を使用して標的とすることができるホスホペプチドの例は、Ｃｏｂｂａｌｄ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉ Ｔｒａｎｓｌ Ｍｅｄ． ２０１３ Ｓｅｐ １８； ５（２０３）： ２０３ｒａ１２５において見出すことができ、これは、参照により本明細書に組み込まれる。

一態様では、腫瘍抗原は、翻訳後修飾を含む。

翻訳後修飾は、腫瘍特異的であり得る。

好適には、腫瘍抗原の第１または第２のエピトープは、翻訳後修飾を含み得る。

好適には、翻訳後修飾は、任意の種類の翻訳後修飾であり得、例えば、それは、リン酸化であり得る。

好適には、腫瘍抗原は、翻訳後修飾を含み得、それは、ＫＲＡＳ、ＢＲＡＦＴ、ＡｕｒｏｒａＡ、ＥＲＧ、ＰＩＫ３Ｒ１、ＡＬＫ、ｍＴＯＲ、ＲＥＴ、ＲＢ１、ＡＢＬ１、ＡＢＬ２、またはＲＯＳ１から選択され得る。

好適には、腫瘍抗原は、翻訳後修飾を含み得、それは、ＫＲＡＳ、ＢＲＡＦＴ、ＡｕｒｏｒａＡ、ＥＲＧ、またはＰＩＫ３Ｒ１から選択され得る。

好適には、腫瘍抗原の第１または第２のエピトープは、翻訳後部位、例えば、リン酸化部位を含み得る。例示的なホスホ抗原、ホスホ残基、および関連するがんは、以下の表８に示されている。

例示的な配列
本発明による使用のための例示的な配列および／またはドメインとしては、以下のものが挙げられる：
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ（配列番号１）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＬＨ－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ（配列番号２）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＬＨ
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ（配列番号３）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ－Ｅ２Ａ－ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ－Ｌ３－ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ－Ｈ６（配列番号４）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
Ｅ２Ａ
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４
Ｌ３セリン－グリシンリンカー
ａＣＤ３３ｇｌｘ＿ＬＨ
ヘキサヒスチジンタグ
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ－Ｅ２Ａ－ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４＿ＶＨＨ－Ｌ３－ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＨＬ－Ｈ６（配列番号５）：

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ＧＢＰ６
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
Ｅ２Ａ
シグナルペプチド
ａＧＦＰ＿ｋｕｂ４
Ｌ３セリン－グリシンリンカー
ａＣＤ１９ＦＭＣ６３＿ＨＬ
ヘキサヒスチジンタグ

抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０－ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ＥｐＣＡＭ ＣＡＲ、抗ＥｐＣＡＭ ＭＴ１１０ ｓｃＦｖ＿ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン。
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０＿ＬＨ－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ（配列番号１４）

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１００＿ＬＨ
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン

ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３ － ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ｐ５３ ＣＡＲ、抗ｐ５３ ｐＡｂ４２１ ｓｃＦｖ ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン、ならびにＥｐＣＡＭ（ＭＴ１１０＿ＬＨ）およびＣＤ１９（ＦＭＣ６３＿ＨＬ）を標的とするヘキサヒスチジンタグ付き二重特異性結合体。
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＰ５３＿４２１＿ＬＨ－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ－Ｅ２Ａ－ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０＿ＬＨ－Ｌ－ａＣＤ１９＿ＦＭＣ６３＿ＨＬ－Ｈ６［ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３とも称される］
（配列番号１６）

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＰ５３＿４２１＿ＬＨ
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
Ｅ２Ａ
シグナルペプチド
ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０＿ＬＨ
Ｌセリン－グリシンリンカー
ａＣＤ１９＿ＦＭＣ６３＿ＨＬ
ヘキサヒスチジンタグ

本発明の一態様では、細胞表面抗原は、ＥｐＣＡＭである。本発明の一態様では、腫瘍抗原は、ｐ５３である。一態様では、結合ドメインは、ｐ５３の腫瘍特異的エピトープ、例えば、ｐ５３ Ｒ１７５Ｈの腫瘍特異的エピトープに結合する。

本発明の一態様では、細胞表面抗原は、ＥｐＣＡＭであり、腫瘍抗原は、ｐ５３である。
好適には、キメラ抗原受容体（ＣＡＲ）は、ｐ５３の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含み得、
（ｉｉ）二重特異性タンパク質は、
ｐ５３の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
ＥｐＣＡＭに結合する第２の結合ドメインを含み得る。好適には、腫瘍抗原の第１または第２のエピトープは、腫瘍特異的変異、例えば、ｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを含む。

本発明による使用のための例示的な配列およびドメインとしては、以下のものが挙げられる。
ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９ －ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ｐ５３ ＣＡＲ、抗ｐ５３ ｐＡｂ４２１ ｓｃＦｖ ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン、ならびにＥｐＣＡＭ（ＭＴ１１０＿ＬＨ）およびｍｕｔｐ５３ Ｒ１７５Ｈ（７Ｂ９＿ＨＬ）を標的とするヘキサヒスチジンタグ付き二重特異性結合体。
ＲＱＲ８－２Ａ－ａＰ５３＿４２１＿ＬＨ－ＨＮＧ－ＣＤ２８ＴＭ－４１ＢＢＺ－Ｅ２Ａ－ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０＿ＬＨ－Ｌ－ａＰ５３＿Ｒ１７５Ｈｍｕｔ＿７Ｂ９＿ＨＬ－Ｈ６［ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９とも称される］（配列番号１５）

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ＲＱＲ８マーカー遺伝子
２Ａ
シグナルペプチド
ａＰ５３＿４２１＿ＬＨ
ヒンジリンカー（ＨＮＧ）
ＣＤ２８膜貫通
４１ＢＢエンドドメイン
ＣＤ３Ｚエンドドメイン
Ｅ２Ａ
シグナルペプチド
ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０＿ＬＨ
Ｌセリン－グリシンリンカー
ａＰ５３＿Ｒ１７５Ｈｍｕｔ＿７Ｂ９＿ＨＬ
ヘキサヒスチジンタグ

本発明における使用のための例示的なアミノ酸配列（例えば、ＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質）は、配列番号１～５もしくは１４～１６に示される配列、または配列番号１～５もしくは１４～１６のうちのいずれかに対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９９％）の同一性を有するそのバリアントを含み得るが、ただし、バリアントタンパク質が、キメラ抗原受容体または二重特異性タンパク質として作用することができることを条件とする。好適には、本発明における使用のためのアミノ酸配列（例えば、ＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質）は、上記に示される配列番号１～５もしくは１４～１６に由来する１つもしくは複数のドメイン、または配列番号１～５もしくは１４～１６内のドメインに対して少なくとも８０％（例えば、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９７％、少なくとも９９％）の同一性を有するそのバリアントを含み得るが、ただし、バリアントタンパク質が、キメラ抗原受容体または二重特異性タンパク質として作用することができることを条件とする。

細胞表面組織抗原
本明細書に使用されるとき、「細胞表面組織抗原」という用語は、細胞の表面上に発現される抗原を指す。換言すると、タンパク質の少なくとも一部が、細胞外空間に曝露されている。

細胞表面組織抗原は、ドメインの少なくとも一部が細胞外空間または形質膜の細胞質外表面に曝露されている、形質膜タンパク質であり得る。

細胞表面組織抗原は、内在性（ｉｎｔｅｇｒａｌ）（または内因性（ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ））膜タンパク質であり得る。内在性膜タンパク質は、恒久的に膜に結合しており、リン脂質二重層に埋め込まれた１つまたは複数のドメインを有する。典型的には、内在性膜タンパク質は、タンパク質を膜に結合させる膜リン脂質の脂肪アシル基と相互作用する疎水性側鎖を有する残基を有する。内在性膜タンパク質の例としては、トランスポーター、チャネル、受容体、および細胞接着タンパク質が挙げられる。

細胞表面組織抗原は、膜貫通タンパク質であり得る。膜貫通タンパク質は、脂質二重層をまたぐ。膜貫通タンパク質は、単回または複数回通過膜タンパク質であり得る。例えば、膜貫通タンパク質は、免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであり得る。細胞表面タンパク質は、内在性単一向性タンパク質（ｉｎｔｅｇｒａｌ ｍｏｎｏｔｒｏｐｉｃ ｐｒｏｔｅｉｎ）であり得る。内在性単一向性タンパク質は、脂質二重層の片側と会合し、脂質二重層をまたがない。

細胞表面タンパク質は、周辺性（または外因性）膜タンパク質であり得る。周辺性膜タンパク質は、リン脂質二重層の疎水性コアと相互作用しない。周辺性膜タンパク質は、典型的には、内在性膜タンパク質との相互作用によって間接的に、または脂質極性頭部基との相互作用によって直接的に、膜に結合する。周辺性タンパク質は、形質膜の外（形質外）表面に局在し得る。細胞表面タンパク質は、周辺性形質外膜タンパク質であり得る。

細胞表面組織抗原は、形質膜に結合され得、例えば、（例えば、グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーを介して）細胞膜内に埋め込まれた脂質に共有結合で結合され得る。

細胞表面膜タンパク質は、ＧＰＩ結合型タンパク質であり得る。

タンパク質の細胞内での局在を決定するための様々な方法が存在し、当該技術分野において周知であり、これには、例えば、電子顕微鏡法、表面ビオチン化もしくは公知の膜タンパク質との共局在を使用した共焦点顕微鏡法、免疫蛍光、および蛍光タグ付き抗体を用いたフローサイトメトリーが含まれる。

細胞表面組織抗原は、腫瘍微小環境において発現される。好適には、細胞表面組織抗原は、腫瘍細胞上に発現され得る。好適には、細胞表面組織抗原は、腫瘍微小環境における腫瘍細胞以外の細胞によって発現され得る。例えば、細胞表面組織抗原は、腫瘍微小環境におけるそれ自体は腫瘍細胞ではない細胞上に発現され得る。例えば、細胞表面組織抗原は、腫瘍微小環境における血管（例えば、腫瘍関連内皮細胞）、間質細胞、免疫細胞、腫瘍関連マクロファージ、線維芽細胞上に発現され得る。

細胞表面組織抗原は、腫瘍細胞によって発現されてもよく、同じ系統の非がん性細胞によって発現されてもよい。

細胞表面発現は、当該技術分野において公知の任意の方法、例えば、非特異的バックグラウンドシグナルを特異的抗体シグナルと差別化するのを補助する適切なアイソタイプ適合対照を使用してフローサイトメトリーによって、決定することができる。

細胞表面抗原は、二重特異性タンパク質が、腫瘍微小環境に蓄積されるのを可能にする。細胞表面抗原は、固形がんの処置を標的とするのに有用な任意の抗原であり得る。

細胞表面抗原は、上皮抗原であり得る。例えば、細胞表面抗原は、汎上皮抗原、汎膠細胞抗原、汎肺抗原、汎腸粘膜抗原、汎乳房上皮抗原、汎卵巣抗原であり得る。

以下の表８は、本発明において使用され得る例示的な上皮抗原を列挙する。好適には、本発明の任意の態様による二重特異性タンパク質は、以下の表９に列挙される上皮抗原のうちのいずれかに結合する結合ドメインを含み得る。

一部の態様では、細胞表面組織抗原は、例えば、表面抗原分類（ＣＤ）タンパク質、細胞接着または細胞ジャンクションタンパク質、Ｇタンパク質共役型受容体、溶質輸送体ファミリーメンバー、およびテトラスパニンであり得る。細胞表面組織抗原は、免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであり得る。

細胞表面抗原は、表面抗原分類（ＣＤ）タンパク質であり得る。ＣＤ命名法は、細胞の免疫表現型決定のための標的を提供する細胞表面分子の特定および調査に使用されている。

例えば、細胞表面抗原は、以下から選択され得る：
ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ４５、ＣＤ３８、またはＣＤ２２（典型的には、Ｂ細胞によって発現される）、
ＣＤ３３（典型的には、骨髄系統の細胞によって発現される）、
ＣＤ２またはＣＤ５（典型的には、Ｔ細胞によって発現される）、
ＣＤ３４またはＣＤ１１７（典型的には、幹細胞によって発現される）、
ＣＤ６９（典型的には、活性化細胞によって発現される）、ならびに
ＣＤ３１（典型的には、内皮細胞、血小板、マクロファージ、顆粒球、およびリンパ球によって発現される）。

一態様では、細胞表面抗原は、ＣＤ３２６（ＥｐＣＡＭ）である。上皮細胞接着分子は、上皮においてＣａ２＋非依存性同型細胞－細胞接着を媒介する膜貫通糖タンパク質である。ＥｐＣＡＭはまた、細胞シグナル伝達、遊走、増殖、および分化において役割を果たし、上皮および上皮由来の新生物において発現される。

細胞表面組織抗原は、ＣＤ１９であり得る。ＣＤ１９は、免疫グロブリンスーパーファミリーに属する膜貫通糖タンパク質であり、形質細胞への最終的な分化まで、Ｂ細胞発生のすべての段階において広く発現される。ＣＤ１９はまた、新生物Ｂ細胞の表面上にも発現され、例えば、ほとんどの急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、慢性リンパ球性白血病（ＣＬＬ）、およびＢ細胞リンパ腫において、正常から高いレベルで発現される。

細胞表面組織抗原を認識してそれに結合する多数の結合ドメインが、利用可能である。例えば、Ｎａｄｄａｆｉ ａｎｄ Ｄａｖａｍｉ Ｉｎｔ Ｊ Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｍｅｄ． ２０１５ Ｓｕｍｍｅｒ； ４（３）： １４３－１５１は、リンパ腫療法に対する新しいアプローチにおいて使用されている抗ＣＤ１９モノクローナル抗体を報告している。

例えば、ブリナツモマブは、ＣＤ１９に対する結合ドメインおよびＣＤ３に対する結合ドメインを含む二重特異性Ｔ細胞エンゲージャー（ｓｃＦｖ）であり、ＳＡＲ３４１９は、抗体－薬物コンジュゲートであり、ＭＯＲ－２０８は、Ｆｃ操作抗体であり、ＭＥＤＩ－５５１は、グリコール操作抗体である。

細胞表面組織抗原は、ＣＤ３３であり得る。ＣＤ３３は、骨髄系統の細胞上に発現される膜貫通受容体である。それは、シアル酸に結合し、免疫グロブリンスーパーファミリー内のレクチンのＳＩＧＬＥＣファミリーのメンバーである。ＣＤ３３は、シアル酸残基を含む分子の結合によって刺激される。シアル酸残基の結合は、ＳＨＰホスファターゼなどのＳｒｃ相同性（ＳＨ２）ドメインを含むタンパク質のドッキング部位として機能するＣＤ３３のサイトゾル部分の免疫受容抑制性チロシンモチーフ（ＩＴＩＭ）のリン酸化をもたらす。このＣＤ３３を通じたシグナル伝達カスケードは、ファゴサイトーシスを阻害する。ＣＤ３３を認識し、それに結合する結合ドメインは、当該技術分野において公知である。例えば、バダスツキシマブタリリン（ｖａｄａｓｔｕｘｉｍａｂ ｔａｌｉｒｉｎｅ）およびゲムツズマブオゾガマイシンは、急性骨髄性白血病の処置のためにＣＤ３３を標的とする抗体－薬物コンジュゲートである。

一部の態様では、細胞表面組織抗原は、腫瘍に特異的であってもよい。本明細書に使用されるとき、「腫瘍に特異的」とは、抗原が、同じ系統の非がん性細胞において発現されないか、または低い量で発現されることを意味する。

好適には、細胞表面組織抗原は、同じ系統の非がん性細胞において、腫瘍と比較して少なくとも２５％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％低いレベルで、発現され得る。

発現のレベルは、例えば、フローサイトメトリーによって、細胞表面組織抗原に関して陽性である細胞のパーセンテージとして計算され得る。腫瘍から得られた細胞の集団と、対応する非がん性組織に由来する細胞の集団または同じ系統の非がん性細胞の集団との間で、比較を行うことができる。

核酸
本明細書に使用されるとき、「導入される」という用語は、外来ＤＮＡまたはＲＮＡを細胞に挿入するための方法を指す。本明細書に使用されるとき、導入されるという用語は、形質導入およびトランスフェクションの両方の方法を含む。トランスフェクションは、非ウイルス方法によって核酸を細胞に導入するプロセスである。形質導入は、ウイルスベクターを介して外来ＤＮＡまたはＲＮＡを細胞に導入するプロセスである。

本明細書に使用されるとき、「ポリヌクレオチド」および「核酸」という用語は、互いに同義であることが意図される。核酸配列は、任意の好適な種類のヌクレオチド配列、例えば、合成ＲＮＡ／ＤＮＡ配列、ｃＤＮＡ配列、または部分的ゲノムＤＮＡ配列であり得る。

「ポリペプチド」という用語は、本明細書に使用されるとき、一連の残基、典型的には、Ｌ－アミノ酸が、典型的には隣接するアミノ酸のα－アミノ基とカルボキシル基との間のペプチド結合によって、互いに接続されていることを意味する通常の意味で使用される。この用語は、「タンパク質」と同義である。

当業者であれば、多数の異なるポリヌクレオチドおよび核酸が、遺伝子コードの縮重の結果として、同じポリペプチドをコードし得ることを理解するであろう。加えて、当業者であれば、日常的な技法を使用して、本明細書に記載されるポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチド配列に影響を及ぼすことなく、ポリペプチドが発現される任意の特定の宿主生物のコドン使用を反映するように、ヌクレオチド置換を行うことができることが、理解する。

本発明は、本発明によるＣＡＲをコードするポリヌクレオチドを提供する。本発明は、本発明による二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを提供する。好適には、ポリヌクレオチドは、本発明によるＣＡＲおよび二重特異性タンパク質の両方をコードし得る。

本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードする核酸は、ＤＮＡまたはＲＮＡを含み得る。これらは、一本鎖であっても二本鎖であってもよい。これらはまた、それらの中に合成または修飾ヌクレオチドを含んだポリヌクレオチドであってもよい。オリゴヌクレオチドに対するいくつかの異なる種類の修飾が、当該技術分野で公知である。これらには、メチルホスホネートおよびホスホロチオエート骨格、分子の３’および／または５’末端へのアクリジンまたはポリリジン鎖の付加が含まれる。本明細書に記載される使用の目的で、ポリヌクレオチドが、当該技術分野で利用可能な任意の方法によって修飾されてもよいことを理解されたい。そのような修飾は、目的のポリヌクレオチドのｉｎ ｖｉｖｏ活性または生存期間を強化するために行われ得る。

ポリヌクレオチドは、単離された形態であっても組換え形態であってもよい。これは、ベクターに組み込まれてもよく、ベクターが、宿主細胞に組み込まれてもよい。そのようなベクターおよび好適な宿主は、本発明のなおもさらなる態様を形成する。

本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、コドン最適化されていてもよい。異なる細胞は、特定のコドンの使用が異なる。このコドンバイアスは、細胞型における特定のｔＲＮＡの相対存在度におけるバイアスに対応する。配列内のコドンを、対応するｔＲＮＡの相対存在度と一致するように調整するように変更することによって、発現を増加させることが可能である。好適には、ポリヌクレオチドは、疾患のマウスモデルにおける発現のためにコドン最適化されていてもよい。好適には、ポリヌクレオチドは、ヒト被験体における発現のためにコドン最適化されていてもよい。

ＨＩＶおよび他のレンチウイルスを含む多数のウイルスは、大量の珍しいコドンを使用しており、これらを広く使用されている哺乳動物コドンに対応するように変化させることによって、哺乳動物産生細胞におけるパッケージング構成成分の発現の増加を達成することができる。コドン使用表は、哺乳動物細胞、ならびに様々な他の生物に関して、当該技術分野において公知である。

コドン最適化はまた、ｍＲＮＡ不安定性モチーフおよび隠れたスプライス部位の除去も含み得る。

好適には、ポリヌクレオチドは、ＣＡＲをコードする核酸配列および二重特異性タンパク質をコードする核酸配列の両方が、同じｍＲＮＡ転写産物から発現されることを可能にする、核酸配列を含み得る。

例えば、ポリヌクレオチドは、ＣＡＲをコードする核酸配列と二重特異性タンパク質をコードする核酸配列との間に内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）を含み得る。ＩＲＥＳは、ｍＲＮＡ配列の中央における翻訳開始を可能にするヌクレオチド配列である。

内部自己切断性配列は、ＣＡＲを含むポリペプチドおよび二重特異性タンパク質を含むポリペプチドが分離された状態となるのを可能にする任意の配列であり得る。

切断部位は、ポリペプチドが生成されるときに、任意の外部切断活性を必要とすることなく、個々のペプチドに即座に切断されるように、自己切断型であり得る。

「切断」という用語が、便宜上本明細書において使用されているが、切断部位は、ペプチドが古典的な切断以外の機構によって個々の実体に分離することをもたらし得る。例えば、口蹄疫ウイルス（ＦＭＤＶ）２Ａ自己切断型ペプチドについて、「切断」活性：宿主細胞のプロテイナーゼによるタンパク質分解、自己タンパク質分解または翻訳作用を説明する様々なモデルが提案されている（本明細書に参考として援用されるＤｏｎｎｅｌｌｙら（２００１年）、Ｊ． Ｇｅｎ． Ｖｉｒｏｌ． ８２巻：１０２７～１０４１頁）。このような「切断」の正確な機構は、切断部位が、タンパク質をコードする核酸配列の間に配置されたときに、タンパク質を別個の実体として発現させる限りは、本発明の目的にとって重要ではない。

自己切断性ペプチドは、アフトウイルスまたはカルジオウイルスに由来する２Ａ自己切断性ペプチドであり得る。

本発明は、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードする核酸配列を含む核酸構築物を提供する。

ベクター
本発明はまた、本明細書に記載されるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むベクターも提供する。

本発明はまた、本明細書に記載されるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードする核酸構築物を含むベクターも提供する。

好適には、ベクターは、本発明のＣＡＲをコードするヌクレオチド配列を含み得る。

好適には、ベクターは、本発明の二重特異性タンパク質をコードするヌクレオチド配列を含み得る。

一態様では、本発明の１つまたは複数の核酸配列、例えば、本発明のＣＡＲをコードする核酸および二重特異性タンパク質をコードする核酸を含むベクターのキットが提供される。

「ベクター」という用語は、本明細書に使用されるとき、発現ベクター、すなわち、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質の発現を可能にする構築物を含む。

好適には、発現ベクターは、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質の発現を可能にする。

一部の実施形態では、ベクターは、クローニングベクターである。

好適なベクターとしては、プラスミド、ウイルスベクター、トランスポゾン、ポリペプチドと複合体を形成したかまたは固相粒子に固定化された核酸が挙げられ得るが、これらに限定されない。

ウイルス送達系としては、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、ヘルペスウイルスベクター、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、バキュロウイルスベクターが挙げられるが、これらに限定されない。

レトロウイルスは、溶解性ウイルスのものとは異なる生活環を有するＲＮＡウイルスである。この点に関して、レトロウイルスは、ＤＮＡ中間体を通じて複製する感染性実体である。レトロウイルスが細胞に感染すると、そのゲノムは、逆転写酵素によってＤＮＡ形態へと変換される。ＤＮＡコピーが、新しいＲＮＡゲノム、および感染性ウイルス粒子のアセンブリに必要なウイルスによりコードされるタンパク質の産生のための鋳型として機能する。

多数のレトロウイルス、例えば、マウス白血病ウイルス（ＭＬＶ）、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、ウマ伝染性貧血ウイルス（ＥＩＡＶ）、マウス乳房腫瘍ウイルス（ＭＭＴＶ）、ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）、フジナミ肉腫ウイルス（ＦｕＳＶ）、モロニーマウス白血病ウイルス（Ｍｏ－ＭＬＶ）、ＦＢＲマウス骨肉腫ウイルス（ＦＢＲ ＭＳＶ）、モロニーマウス肉腫ウイルス（Ｍｏ－ＭＳＶ）、エーベルソンマウス白血病ウイルス（Ａ－ＭＬＶ）、トリ骨髄球腫ウイルス－２９（ＭＣ２９）、およびトリ赤芽球症ウイルス（ＡＥＶ）、ならびにレンチウイルスを含むすべての他のレトロウイルス科が存在する。

レトロウイルスの詳細な一覧は、Ｃｏｆｆｉｎ ｅｔ ａｌ．， （“Ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ” １９９７ Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｕｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ Ｅｄｓ： ＪＭ Ｃｏｆｆｉｎ， ＳＭ Ｈｕｇｈｅｓ， ＨＥ Ｖａｒｍｕｓ ｐｐ ７５８－７６３）において見出すことができ、これは、参照により本明細書に組み込まれる。

レンチウイルスもまた、レトロウイルスファミリーに属するが、それらは、分裂細胞および非分裂細胞の両方に感染することができ（Ｌｅｗｉｓ ｅｔ ａｌ．， （１９９２） ＥＭＢＯ Ｊ． ３０５３－３０５８）、これは、参照により本明細書に組み込まれる。

ベクターは、本発明のポリヌクレオチドを、細胞、例えば、本明細書で規定される宿主細胞に移入することが可能であり得る。ベクターは、理想的には、ＶＨおよび／またはＶＬドメインが宿主細胞において好適に発現されるように、宿主細胞において持続的な高レベルの発現が可能であるべきである。

ベクターは、レトロウイルスベクターであり得る。ベクターは、ＭＰ７１ベクター骨格に基づき得るか、またはそれから誘導され得る。ベクターは、全長または短縮バージョンのウッドチャック肝炎応答エレメント（ＷＰＲＥ）が欠如していてもよい。

ヒト細胞の効率的な感染のために、ウイルス粒子は、両指向性エンベロープまたはテナガザル白血病ウイルスエンベロープでパッケージングされていてもよい。

細胞
本発明は、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質を含む操作された細胞をさらに提供する。一態様では、操作された細胞は、本発明によるＣＡＲをコードするポリヌクレオチドまたはベクターを含み得る。一態様では、操作された細胞は、本発明による二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドまたはベクターを含み得る。

操作された細胞は、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質を発現および産生させるために使用することができる、任意の細胞であり得る。

好適には、細胞は、免疫エフェクター細胞であり得る。

「免疫エフェクター細胞」は、本明細書に使用されるとき、刺激に応答し、変更を実施する細胞である、すなわち、細胞は、刺激に対する応答を実行する。免疫エフェクター細胞としては、アルファ／ベータＴ細胞、ガンマ／デルタＴ細胞、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、およびマクロファージを挙げることができる。

好適には、細胞は、アルファ／ベータＴ細胞であり得る。

好適には、細胞は、ガンマ／デルタＴ細胞であり得る。

好適には、細胞は、Ｔ細胞、例えば、細胞溶解性Ｔ細胞、例えば、ＣＤ８＋ Ｔ細胞であり得る。

好適には、細胞は、ＮＫ細胞、例えば、細胞溶解性ＮＫ細胞であり得る。

好適には、細胞は、マクロファージであり得る。

一態様では、細胞は、被験体から得られた血液から単離され得る。好適には、細胞は、被験体から得られた末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）から単離され得る。

一態様では、細胞は、幹細胞であり得る。

別の態様では、細胞は、前駆細胞であり得る。

本明細書に使用されるとき、「幹細胞」という用語は、同じ種類のさらなる幹細胞を無限に生じることができ、またそこから分化によって他の特化した細胞が生じ得る、未分化細胞を意味する。幹細胞は、複能性である。幹細胞は、例えば、胚性幹細胞または成体幹細胞であり得る。

本明細書に使用されるとき、「前駆細胞」という用語は、分化して１つまたは複数の種類の細胞を形成することができるが、ｉｎ ｖｉｔｒｏで限られた自己複製を有する、細胞を意味する。

好適には、細胞は、Ｔ細胞に分化することが可能であり得る。

好適には、細胞は、ＮＫ細胞に分化することが可能であり得る。

好適には、細胞は、マクロファージに分化することが可能であり得る。

好適には、細胞は、胚性幹細胞（ＥＳＣ）であり得る。好適には、細胞は、造血幹細胞または造血前駆細胞である。好適には、細胞は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）である。好適には、細胞は、臍帯血から得ることができる。好適には、細胞は、成体末梢血から得ることができる。

一部の態様では、造血幹細胞および前駆細胞（ＨＳＰＣ）は、臍帯血から得ることができる。臍帯血は、当該技術分野において公知の技法によって採取することができる（例えば、米国特許第７，１４７，６２６号および同第７，１３１，９５８号、これらは、参照により本明細書に組み込まれる）。

一態様では、ＨＳＰＣは、多能性幹細胞供給源、例えば、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）および胚性幹細胞（ＥＳＣ）から得ることができる。

本明細書に使用されるとき、「造血幹細胞および前駆細胞」または「ＨＳＰＣ」という用語は、抗原性マーカーＣＤ３４を発現する（ＣＤ３４＋）細胞、およびそのような細胞の集団を指す。特定の実施形態では、「ＨＳＰＣ」という用語は、抗原性マーカーＣＤ３４の存在（ＣＤ３４＋）および系統（ｌｉｎ）マーカーの不在によって特定される細胞を指す。ＣＤ３４＋および／またはＬｉｎ（－）細胞を含む細胞集団としては、造血幹細胞および造血前駆細胞が挙げられる。

ＨＳＰＣは、大腿骨、寛骨、肋骨、胸骨、および他の骨を含む、成体の骨髄から得ることができるか、または単離することができる。ＨＳＰＣを含む骨髄吸引物は、ニードルおよびシリンジを使用して、股関節部から直接的に得ることができるか、または単離することができる。他のＨＳＰＣ供給源としては、臍帯血、胎盤血、動員末梢血、ホウォートンゼリー、胎盤、胎児血液、胎児肝臓、または胎児脾臓が挙げられる。特定の実施形態では、治療適用での使用に十分な量のＨＳＰＣを採取することは、被験体における幹細胞および前駆細胞を動員することが必要であり得る。

本明細書に使用されるとき、「人工多能性幹細胞」または「ｉＰＳＣ」という用語は、多能性状態に再プログラミングされている非多能性細胞を指す。被験体の細胞が、多能性状態に再プログラミングされると、細胞は、次いで、所望される細胞型、例えば、造血幹細胞または前駆細胞（それぞれ、ＨＳＣおよびＨＰＣ）にプログラムされ得る。

本明細書に使用されるとき、「再プログラミング」という用語は、細胞の能力を、あまり分化されていない状態へと増大させる方法を指す。

本明細書に使用されるとき、「プログラミング」という用語は、細胞の能力を減少させるか、または細胞をより分化した状態へと分化させる方法を指す。

好適には、細胞は、被験体に適合するか、または被験体にとって自家である。細胞は、患者自身の末梢血（第１団）、またはドナー末梢血由来の造血幹細胞移植片の環境において（第２団）、または無関係のドナーに由来する末梢血（第３団）のいずれかから、ｅｘ ｖｉｖｏで作製することができる。

好適には、細胞は、被験体にとって自家であり得る。

一部の態様では、細胞は、誘導前駆細胞または胚性前駆細胞の免疫細胞へのｅｘ ｖｉｖｏ分化に由来し得る。これらの事例では、細胞は、ウイルスベクターの形質導入、ＤＮＡまたはＲＮＡのトランスフェクションを含む、任意の手段のうちの１つによって、本発明のＣＡＲをコードするＤＮＡまたはＲＮＡを導入することによって、生成される。

組成物
本発明は、本発明による細胞、例えば、操作された免疫エフェクター細胞を含む組成物も提供する。好適には、組成物は、本発明による細胞の集団を含み得る。好適には、組成物は、本発明による二重特異性タンパク質を含み得る。

好適には、本発明は、本発明によるＣＡＲを含む操作された細胞を含む組成物を提供する。好適には、組成物は、本発明によるＣＡＲを含む操作された細胞の集団を含み得る。好適には、本発明は、本発明による二重特異性タンパク質を発現する操作された細胞を含む組成物を提供する。好適には、組成物は、本発明による二重特異性タンパク質を発現する操作された細胞の集団を含み得る。

一部の実施形態では、組成物は、医薬組成物である。そのような医薬組成物は、薬学的に許容される担体、希釈剤、賦形剤、またはアジュバントを含み得る。薬学的担体、賦形剤、または希釈剤の選択は、意図される投与経路および標準的な薬学上の実施に関連して選択され得る。医薬組成物は、担体、賦形剤、または希釈剤として（またはそれに加えて）、任意の好適な結合剤、滑沢剤、懸濁化剤、コーティング剤、可溶化剤、および他の担体剤を含み得る。

医薬組成物は、典型的に、製造および保管の条件下において、無菌かつ安定でなくてはならない。非経口投与のための製剤としては、本明細書において考察される、懸濁物、溶液、油性もしくは水性ビヒクル中のエマルション、ペースト、および植え込み可能な持続放出もしくは生体分解性製剤が挙げられるが、これらに限定されない。滅菌注射用製剤は、非毒性の非経口で許容される希釈剤または溶媒を使用して調製され得る。本発明による使用のための医薬組成物は、利用される投薬量および濃度で被験体にとって非毒性である、薬学的に許容される分散剤、湿潤剤、懸濁化剤、等張剤、コーティング、抗菌剤および抗真菌剤、担体、賦形剤、塩、または安定化剤を含み得る。好ましくは、そのような組成物は、例えば、非経口（例えば、皮下、皮内、もしくは静脈内注射）または髄腔内投与のための、所与の方法および／または投与部位と適合性のある疾患の処置において使用するための薬学的に許容される担体または賦形剤をさらに含み得る。

ここで、医薬組成物は、本発明による細胞を含み、組成物は、現在の適正製造基準（ｃＧＭＰ）を使用して製造され得る。

好適には、本発明による細胞を含む医薬組成物は、酢酸メチル、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメトキシエタン（ＤＭＥ）、およびジメチルアセトアミド（これらの混合物または組合せが含まれる）などであるがこれらに限定されない有機溶媒を含み得る。

好適には、本発明による細胞を含む医薬組成物は、内毒素を含まない。

処置／使用の方法
本発明は、疾患を処置および／または予防するための方法であって、本発明の細胞または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）細胞を、被験体に投与するステップを含む、方法を提供する。

本発明は、疾患を処置および／または予防するための方法であって、本発明の医薬組成物または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）医薬組成物を、被験体に投与するステップを含む、方法を提供する。

本発明はまた、疾患の処置および／または予防において使用するための本発明の細胞または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）細胞を提供する。

本発明はまた、疾患の処置および／または予防において使用するための、本発明の医薬組成物を提供する。

本発明はまた、疾患の処置および／または予防のための医薬品の製造における、本発明による細胞の使用に関する。

好ましくは、本処置方法は、本発明の医薬組成物の被験体への投与に関する。

用語「処置する／処置／処置すること」は、細胞または医薬組成物を疾患と関連する少なくとも１つの症状を緩和、低減、もしくは改善するため、および／または疾患の進行を遅延、低減、もしくは遮断するために、既存の疾患または状態を有する被験体に投与することを指す。

本明細書に使用される「予防／予防すること」（または予防法）への言及は、疾患の症状の発生を遅延または予防することを指す。予防は、絶対的であってもよく（疾患が生じないように）、または一部の個体または限られた時間のみにおいて有効であってもよい。

本発明の好ましい実施形態において、本明細書に記載される方法のうちのいずれかの被験体は、哺乳動物、好ましくは、ネコ、イヌ、ウマ、ロバ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、ウシ、マウス、ラット、ウサギ、またはモルモットである。好ましくは、被験体は、ヒトである。

本発明の医薬組成物の投与は、活性成分を生体利用可能にする様々な経路のうちのいずれかを使用して、達成することができる。例えば、本発明による細胞または医薬組成物は、静脈内、髄腔内、経口および非経口経路、鼻内、腹腔内、皮下、経皮、または筋肉内に投与され得る。

好適には、本発明による細胞または本発明による医薬組成物は、静脈内投与され得る。

好適には、本発明による細胞または本発明による医薬組成物は、髄腔内投与され得る。

典型的には、医師が、個々の被験体にもっとも好適である実際の投薬量を決定することになり、それは、特定の患者の年齢、体重、および応答に応じて変動するであろう。投薬量は、疾患症状を低減および／または予防するのに十分であるようなものである。

当業者であれば、例えば、送達経路（例えば、経口か、静脈内か、皮下かなど）が、用量に影響を及ぼし得ること、および／または要求される用量が、送達経路に影響を及ぼし得ることを理解するであろう。例えば、特定の部位または位置内における特に高い濃度の薬剤が目的とされる場合、集中送達が、所望され得る、かつ／または有用であり得る。所与の治療レジメンに関して経路および／または投薬スケジュールを最適化する場合に考慮すべき他の因子としては、例えば、処置されている疾患（例えば、種類またはステージなど）、被験体の臨床状態（例えば、年齢、全般的な健康状態など）、組合せ治療の存在または不在、ならびに医療従事者に公知の他の因子を挙げることができる。

投薬量は、疾患の症状を安定させるか、または改善するのに十分であるようなものである。

本発明はまた、疾患を処置および／または予防するための方法であって、操作された細胞、例えば、本発明によるＣＡＲを発現するように操作されている細胞を含む医薬組成物を、被験体に投与するステップを含む、方法を提供する。

好適には、本発明はまた、疾患を処置および／または予防するための方法であって、本発明による細胞または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）細胞を、被験体に投与するステップを含む、方法を提供する。

一態様では、本方法は、以下の
（ｉ）被験体から細胞を含む試料を単離するステップと、
（ｉｉ）ａ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードするポリヌクレオチド、ならびにｂ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメインを含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、（ｉ）から得られた前記単離された細胞に導入するステップと、
（ｉｉｉ）（ｉｉ）から得られた細胞を被験体に投与するステップと
を含み得る。

別の態様では、本方法は、
前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメインを含む二重特異性タンパク質を、被験体に投与するステップ
を含み得、
前記被験体が、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする核酸配列を含む、操作された細胞を含む。

別の態様では、本方法は、以下の
（ｉ）被験体から細胞を含む試料を単離するステップと、
（ｉｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードするポリヌクレオチドを、（ｉ）から得られた前記単離された細胞に導入するステップと、
（ｉｉｉ）（ｉｉ）から得られた細胞を被験体に投与するステップと
（ｉｖ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメインを含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、操作されたＣＡＲ細胞を含む被験体に投与するステップと
を含み得る。

好適には、（ｉｉ）から得られた細胞は、被験体への投与の前に、ｉｎ ｖｉｔｒｏで増殖され得る。

疾患
疾患は、例えば、がんであり得る。

好適には、本発明の方法および使用によって処置および／または予防される疾患は、がんであり得る。

好適には、本発明の方法および使用によって処置および／または予防される疾患は、造血系悪性疾患であり得る。

本明細書に使用されるとき、「造血系悪性疾患」は、血液およびリンパ系に罹患するがんを指し、これには、白血病、リンパ腫、骨髄腫、および関連する血液障害が含まれる。

好適には、本発明の方法および使用によって処置および／または予防される疾患は、悪性固形腫瘍であり得る。固形腫瘍には、肉腫、癌腫、およびリンパ腫が含まれる。

処置および／または予防される疾患は、上述の表１～４に列挙されているものから選択され得る。

処置および／または予防される疾患は、ホスホ抗原と関連し得る。

例えば、ホスホ抗原は、ＫＲＡＳ（例えば、ホスホ残基がＳ１８１である）、ＢＲＡＦ（例えば、ホスホ残基が、Ｔ５９９および／またはＳ６０２である）、Ａｕｒｏｒａ Ａ（例えば、ホスホ残基が、Ｔ２８８および／またはＴ２８７である）、ならびにＥＲＧ（例えば、ホスホ残基が、Ｓ９６および／またはＳ２１５である）から選択され得る。

処置および／または予防される疾患は、融合タンパク質と関連し得る。

例えば、融合タンパク質は、ＡＭＬ４－ＡＬＫ、ＣＣＤ６－ＲＥＴ、およびＮＣＯＡ４－ＲＥＴから選択され得る。

処置および／または予防される疾患は、点変異と関連し得る。

例えば、点変異は、ＴＰ５３におけるもの（例えば、点変異は、Ｒ１７５Ｈ、Ｇ２４５Ｓ、Ｒ２４８Ｑ、Ｒ２４８Ｗ、Ｒ２４９Ｓ、Ｒ２７３Ｈ、Ｒ２７３Ｃ、Ｒ２８２Ｗ、および／もしくはＹ２２０Ｃから選択される）、ＫＲＡＳにおけるもの（点変異は、Ｇ１２Ｃ、Ｇ１２Ｒ、Ｇ１２Ｓ、Ｇ１２Ａ、Ｇ１２Ｄ、Ｇ１２Ｖ、Ｇ１３Ｄ、Ｇ１３Ｃ、Ｇ１３Ｖ、Ｑ６１Ｈ、Ｑ６１Ｒ、および／もしくはＡ１４６Ｔから選択される）、またはＢＲＡＦにおけるもの（点変異は、Ｖ６００Ｅ、Ｇ４６９Ａ、Ｇ４６９Ｖ、Ｋ６０１Ｅ、Ｄ５９４Ｎ、Ｄ５９４Ｇ、および／もしくはＮ５８１Ｓから選択される）であり得る。

処置および／または予防される疾患は、ＰＲＡＭＥ、サバイビン、ＷＴ１、およびテロメラーゼから選択される腫瘍抗原と関連し得る。

方法
本発明はまた、細胞を産生させるための方法であって、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定されるＣＡＲをコードするポリヌクレオチドを導入するステップを含む、方法を提供する。

本発明はまた、細胞を産生させるための方法であって、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定される二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを導入するステップを含む、方法を提供する。好適には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、同じ細胞に導入され得る。１つのポリヌクレオチドが、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質の両方をコードし得る。

好適には、本方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定されるＣＡＲをコードする核酸構築物を導入するステップを含み得る。好適には、本方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定される二重特異性タンパク質をコードする核酸構築物を導入するステップを含み得る。好適には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質をコードする核酸構築物は、同じ細胞に導入され得る。１つの核酸構築物が、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質の両方をコードし得る。

好適には、本方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定されるＣＡＲをコードするポリヌクレオチドを含むベクターを導入するステップを含み得る。好適には、本方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本明細書で規定される二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを導入するステップを含み得る。好適には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質をコードするベクターは、同じ細胞に導入され得る。１つのベクターが、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質の両方をコードし得る。

好適には、本方法は、本発明のＣＡＲ分子および／または二重特異性タンパク質の発現を許容する条件下において、細胞をインキュベートするステップをさらに含み得る。必要に応じて、本方法は、操作された細胞を精製するステップをさらに含み得る。

好適には、細胞は、免疫エフェクター細胞であり得る。

好適には、細胞は、細胞溶解性細胞であり得る。

好適には、細胞は、Ｔ細胞であり得る。

好適には、細胞は、ＮＫ細胞であり得る。

一態様では、細胞は、幹細胞であり得る。

好適には、本発明による方法において、本明細書で規定されるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードする核酸は、幹細胞に導入され得、幹細胞は、次いで、Ｔ細胞に分化する。好適には、本発明による方法において、本明細書で規定されるＣＡＲをコードする核酸は、幹細胞に導入され得、幹細胞は、次いで、ＮＫ細胞に分化する。

好適には、幹細胞は、Ｔ細胞に分化する能力を有し得る。

好適には、幹細胞は、ＮＫ細胞に分化する能力を有し得る。

好適には、細胞は、胚性幹細胞（ＥＳＣ）であり得る。好適には、細胞は、臍帯血から得ることができる。好適には、細胞は、成体末梢血から得ることができる。好適には、細胞は、造血幹細胞および前駆細胞（ＨＳＰＣ）である。好適には、細胞は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）である。

別の態様では、細胞は、前駆細胞である。好適には、前駆細胞は、Ｔ細胞に分化する能力を有する。好適には、前駆細胞は、ＮＫ細胞に分化する能力を有する。

別の態様では、本発明は、本発明によるＣＡＲを含む操作された細胞を産生させるための方法を提供する。別の態様では、本発明は、本発明による二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む操作された細胞を産生させるための方法を提供する。

好適には、本方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、本発明によるＣＡＲおよび／または二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを導入するステップを含み得る。

好適には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質は、同じポリヌクレオチドによって提供され得る。

好適には、ＣＡＲおよび二重特異性タンパク質は、別個のポリヌクレオチドとして提供され得る。

好適には、別個のポリペプチドは、別個に、逐次的に、または同時に、細胞に導入され得る。ポリペプチドが、別個または逐次的に導入される場合、好適には、ＣＡＲをコードするポリヌクレオチドが、最初に導入され得る。ポリペプチドが、別個または逐次的に導入される場合、好適には、二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドが、最初に導入され得る。

好適には、本方法は、本発明のＣＡＲ分子および／または二重特異性タンパク質の発現をもたらす条件下において、細胞をインキュベートするステップをさらに含み得る。必要に応じて、本方法は、操作された細胞を精製するステップをさらに含み得る。

一態様では、本発明は、操作された細胞を産生させるための方法であって、ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏで、細胞に、ＣＡＲをコードするポリヌクレオチドを導入するステップと、細胞をＴ細胞に分化させるステップを含む、方法を提供する。好適には、本方法は、本発明のＣＡＲ分子の発現をもたらす条件下において、細胞をインキュベートするステップをさらに含み得る。必要に応じて、本方法は、本発明によるＣＡＲを含む操作された細胞を精製するステップをさらに含み得る。

好適には、一態様において、細胞は、ＣＡＲをコードする１つまたは複数のポリヌクレオチドが細胞に導入される前に、Ｔ細胞に分化し得る。

操作された細胞の精製は、当該技術分野において公知の任意の方法によって達成され得る。好適には、操作された細胞は、蛍光活性化細胞分取（ＦＡＣＳ）または免疫磁気単離（すなわち、磁気ナノ粒子もしくはビーズに結合した抗体を使用する）を使用し、細胞集団の陽性および／または陰性選択を使用して、精製され得る。

好適には、操作された細胞の精製は、本明細書で規定されるＣＡＲの発現を使用して行われ得る。

本発明はまた、タンパク質を腫瘍微小環境内に放出する腫瘍細胞を溶解させるための方法であって、細胞に、
１）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードするポリヌクレオチドと、
２）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメインを含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドと
を導入するステップを含む、方法を提供する。

使用
本発明はまた、疾患の処置において使用するための、本発明による医薬組成物もしくは細胞（例えば、操作された細胞などの細胞の集団）、または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）医薬組成物もしくは細胞を提供する。医薬組成物または細胞（例えば、操作された細胞）は、上記で規定されるいずれかであり得る。

本発明はまた、疾患の処置のための医薬品の製造における、上記で規定される本発明による細胞もしくは細胞集団、または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）細胞もしくは細胞集団の使用に関する。

本発明はまた、疾患の処置において使用するための、本発明による二重特異性タンパク質、または本発明による方法によって得ることができる（例えば、得られる）二重特異性タンパク質を提供する。二重特異性タンパク質は、上記で規定されるいずれかであり得る。

ＣＡＲ系
本発明は、
（ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインを含む受容体構成成分と、
ｉｉ）腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
を含む二重特異性タンパク質と
を含むＣＡＲ系を提供する。

系は、受容体構成成分を含むかまたは発現する免疫エフェクター細胞を含み得る。例えば、系は、受容体構成成分を含むかまたは発現するアルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージを含み得る。

系は、二重特異性タンパク質を発現する、免疫エフェクター細胞を含み得る。例えば、系は、二重特異性タンパク質を発現するアルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージを含み得る。

好適には、受容体構成成分および二重特異性タンパク質は、同じ細胞、例えば、免疫エフェクター細胞によって発現され得る。

一部の態様では、系は、腫瘍微小環境を含む。好適には、二重特異性タンパク質は、前記系に投与され得る。換言すると、二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境に導入される。例えば、二重特異性タンパク質は、腫瘍微小環境において産生されないが、腫瘍内注射によって、腫瘍微小環境に導入される。

本開示は、本明細書に開示される例示的な方法および材料によって限定されず、本明細書に記載されるものに類似であるかまたはそれと同等である任意の方法および材料を、本開示の実施形態の実施または試験において使用することができる。数値範囲は、その範囲を定める数を含む。別途示されない限り、それぞれ、任意の核酸配列は、左から右に、５’から３’の配向で記述され、アミノ酸配列は、左から右に、アミノからカルボキシの配向で記述される。

値の範囲が提供される場合、文脈により別途明確に示されない限り、下限の単位の１０分の１まで、その範囲の上限と下限の間の中間にあるそれぞれの値もまた、具体的に開示されると理解される。任意の言及された値または言及された範囲の中間にある値と、任意の他の言及された値またはその言及された範囲の中間にある値との間のより小さな範囲はそれぞれ、本開示に包含される。これらのより小さな範囲の上限および下限は、独立して、その範囲に含まれるかまたはそこから除外されてもよく、限界のいずれかがより小さな範囲に含まれる場合、いずれも含まれない場合、または両方が含まれる場合、そのそれぞれの範囲もまた、本開示に包含され、その言及された範囲において任意の限界が具体的に除外される場合がある。言及された範囲が、限界の一方または両方を含む場合、これらの含まれる限界のうちのいずれかまたは両方を除外した範囲もまた、本開示に含まれる。

本明細書および添付の特許請求の範囲において使用されるとき、単数形の「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」、および「その（ｔｈｅ）」は、文脈により別途明確に示されない限り、複数形の参照物を含むことに留意しなければならない。

「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」、および「から構成される（ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ）」という用語は、本明細書に使用されるとき、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」、または「含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｎｔａｉｎｓ）」、と同義であり、包括的または拡張可能であり、追加の言及されていないメンバー、要素、または方法ステップを除外するものではない。「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」、および「から構成される（ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ ｏｆ）」という用語は、「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」という用語も含む。

本明細書に記載される本発明の実施形態が、組み合わされてもよいことに、留意されたい。

本明細書において考察される刊行物は、本出願の出願日よりも以前のそれらの開示のために提供されているにすぎない。そのような刊行物が本明細書に添付される特許請求の範囲に対する先行技術を構成することを認めるものとして解釈されるものは、本明細書には存在しない。

本発明を、これより、実施例を用いてさらに説明するが、これらの実施例は、当業者が本発明を実施するのを補助するように機能することを意図し、決して本発明の範囲を限定することを意図するものではない。

（実施例１）
ＣＤ３３陽性の細胞内ｅＧＦＰ発現細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｔｒｏ標的化。
概念の証明として、本発明者らは、ｅＧＦＰを腫瘍抗原として便宜上使用している。ＣＤ１９またはＣＤ３３は、組織特異的抗原として使用した。ＣＤ１９／ｅＧＦＰまたはＣＤ３３／ｅＧＦＰを認識する二重特異性タンパク質を、生成した。ｅＧＦＰを独立して認識するＣＡＲを、生成した。

この実施例において、結果は、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ標的化ＣＡＲが、二重陽性ＣＤ３３／ｅＧＦＰ発現標的を溶解し、単一陽性ＣＤ３３発現標的を残すことを示す。

ＨＬ－６０細胞株は、急性前骨髄球性白血病（ＰＭＬ）を有する患者から得られた末梢血に由来するヒト白血病細胞株であり、ＣＤ１９陰性かつＢＣＲ－ＡＢＬ陰性である。
抗ＣＤ３３ ＣＡＲ（αＣＤ３３ｇｌｘ－ＨＮＧ）、
抗ＧＦＰ ＣＡＲ（αＧＦＰ＿ＧＢＰ６－ＨＮＧ）、
ＣＤ１９－ＣＡＲ（αＣＤ１９ＦＭＣ６３）（これは、陰性対照である）、または
非形質導入（ＮＴ）を含み、
ＧＦＰ／ＣＤ３３に対する二重特異性結合体（αＧＦＰ－ＨＮＧ－αＣＤ３３タンデムｓｃＦｖ）［図５ａ）、ｂ）、およびｃ）の左手側を参照されたい］、またはＧＦＰ／ＣＤ１９に対する無関係の二重特異性結合体（αＧＦＰ－ＨＮＧ－αＣＤ１９）［図５ａ）、ｂ）、およびｃ）の右手側を参照されたい］のいずれかを共発現する、
エフェクターＴ細胞を産生させた。

エフェクターＴ細胞を、
ＣＤ３３発現ＨＬ６０細胞（図５ａ）を参照されたい）、
細胞内ｅＧＦＰタンパク質（３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ）を発現するＨＬ６０細胞（図５ｂ）を参照されたい）、
および細胞内キメラＧＦＰ／ＢＣＲ－ＡＢＬタンパク質（ｐ２１０．ｐ２１０＿ＢＣＲ－ＡＢＬ－３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ）を発現するＨＬ６０細胞（図５ｃ）を参照されたい）と１：１のエフェクター対標的の比で、共培養した。

図５のデータは、図５ａ）、ｂ）、およびｃ）における三角形の比較によって示されるように、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ標的化ＣＡＲが、二重陽性ＣＤ３３／ｅＧＦＰ発現標的を溶解させ、単一陽性ＣＤ３３発現標的を残すことを示す。

この実施例において使用される例示的な配列は、以下である：ｐ２１０＿ＢＣＲ－ＡＢＬ－３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ（配列番号１３）

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
ｐ２１０＿ＢＣＲ－ＡＢＬ
３ｘＭＹＣ
ＸＴＥＮ＿Ｌリンカー
ｅＧＦＰ

（実施例２）
皮下ＮＯＤ ｓｃｉｄガンマ（ＮＳＧ）マウスにおける、αＣＤ１９－ＣＡＲおよび、ＧＦＰ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性タンパク質を発現するＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ、ならびに非形質導入（ＮＴ）のＴ細胞による、ＣＤ１９発現ＮＡＬＭ６細胞および細胞内ＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｖｏ標的化

この実施例において、結果は、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲが、両側腹部処置ＮＳＧマウスにおいて、二重陽性ＣＤ１９／ｅＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を標的としてそれを溶解し、一方で、単一陽性ＮＡＬＭ６腫瘍を残すことを示す。

図６ａ）は、ｉｎ ｖｉｖｏ ＮＡＬＭ６皮下動物モデルにおける時系列、コホート、試料採取、および注射経路の詳細を示す。ＮＡＬＭ６は、Ｂ細胞前駆体白血病細胞株である。これは、急性リンパ芽球性白血病のモデルであり、ＣＤ１９陽性およびＣＤ３３陰性である。

ＮＳＧマウスに、対照腫瘍（０．５×１０＾６個のＮＡＬＭ６［ＮＡＬＭ６．Ｆｌｕｃ＿ｘ５Ｒｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ］）および細胞内ｅＧＦＰ発現腫瘍（ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ［ＮＡＬＭ６．ＦＬｕｃ＿ｘ５Ｒｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ／３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ］を、交互で後側腹部に注射した［すなわち、異なる腫瘍細胞を、それぞれの側腹部に注射し、図６ｂ）に示されるように、マウスのそれぞれの側腹部に異なる腫瘍の発生をもたらした］。

腫瘍細胞は、生体発光イメージングを通じてｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍成長のマーカーとして使用するための、ホタルルシフェラーゼ／グリコシルホスファチジルイノシトール結合型ＨＡタグ（Ｆｌｕｃ＿ｘＲｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ）に形質導入されていた。

腫瘍細胞の注射３日後に、５×１０＾６個のＣＡＲ Ｔ細胞を、腫瘍内に注射した。

ＣＡＲ Ｔ細胞は、αＣＤ１９対照ＣＡＲであるαＣＤ１９＿ＦＭＣ６３－ＨＮＧ、またはＥＸＯＡＭＰ特異的ＣＡＲであるαＧＦＰ－ＨＮＧ ＋ ＧＦＰｘＣＤ１９のいずれかであった。

３～２１日目に得られた未加工の画像が、図６ｂ）に示されており、αＣＤ１９－ＣＡＲを使用した両方の腫瘍の腫瘍制御、およびＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲを使用した特異的二重陽性ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍制御を示す。

例えば、図６ｂ）において、左手側のＮＴ ＰＢＭＣパネルの写真は、両側腹部における３～２１日目の継続的な腫瘍発達を示す。図の中央におけるαＣＤ１９－ＣＡＲ＿ＦＭＣ６３－ＨＮＧパネルの写真は、両方の種類の腫瘍細胞が注射されている側腹部に腫瘍が存在しないかまたは小さな腫瘍が存在するため、２つの異なる腫瘍型の制御を示す。図の右手側のＥＸＯＡＭＰ（ＧＦＰ－ＣＡＲ ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ）パネルの写真は、このＣＡＲが、二重陽性ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍のみの成長を制御したことを示す。０．５×１０＾６個のＮＡＬＭ６腫瘍細胞を注射した側腹部は、αＧＦＰ－ＨＮＧ＋ＧＦＰｘＣＤ１９ ＣＡＲで処置したときに成長し続けることを確認することができる。

このデータは、腫瘍部位における平均ラジアンスで図６ｃ）にさらにプロットされており、これにより、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲのみによる特異的な腫瘍制御が実証される。

実線は、ＮＡＬＭ６（図の左手側のグラフを参照されたい）およびＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ（図の右手側のグラフを参照されたい）の特異的腫瘍平均ラジアンスを示す。線は、それぞれの被験体マウス／コホートの平均読み取り値を示す。
この例において使用される例示的な配列は、以下である：
細胞内３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ（配列番号１２）

上記の配列内のドメインは、次の順序である：
３ｘＭＹＣ
ＸＴＥＮ＿Ｌリンカー
ｅＧＦＰ

（実施例３）
皮下ＮＯＤ ｓｃｉｄガンマ（ＮＳＧ）マウスにおける、αＣＤ１９－ＣＡＲ、およびＧＦＰ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性タンパク質またはＧＦＰ／ＣＤ３３を標的とする無関係のタンパク質のいずれかを発現するＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ、ならびに非形質導入（ＮＴ）のＴ細胞による、ＣＤ１９発現ＮＡＬＭ６細胞および細胞内ＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６細胞のＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｖｏ標的化

この実施例において、結果は、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲ ＋ＧＦＰｘＣＤ１９が、両側腹部処置ＮＳＧマウスにおいて、二重陽性ＣＤ１９／ｅＧＦＰ発現ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍を標的としてそれを溶解し、一方で、単一陽性ＮＡＬＭ６腫瘍を残すこと、ならびにＧＦＰ－ＣＡＲ ＋ＧＦＰｘＣＤ３３が、ＮＴ Ｔ細胞と同様に両方の腫瘍の制御に失敗することを示す。

図７ａ）は、ｉｎ ｖｉｖｏ ＮＡＬＭ６皮下動物モデルにおける時系列、コホート、試料採取、および注射経路の詳細を示す。

ＮＳＧマウスに、対照腫瘍（０．５×１０＾６個のＮＡＬＭ６［ＮＡＬＭ６．Ｆｌｕｃ＿ｘ５Ｒｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ］）および細胞内ｅＧＦＰ発現腫瘍（ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ［ＮＡＬＭ６．ＦＬｕｃ＿ｘ５Ｒｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ／３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ］を、左後側腹部および右肩の交互の部位で注射した［すなわち、異なる腫瘍細胞を、それぞれの部位に注射し、図７ｂ）に示されるように、それぞれの部位において異なる腫瘍の発生をもたらした］。

腫瘍細胞は、生体発光イメージングを通じたｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの腫瘍成長のマーカーとして使用するために、ホタルルシフェラーゼ／グリコシルホスファチジルイノシトール結合型ＨＡタグ（Ｆｌｕｃ＿ｘＲｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ）を発現するように形質導入されていた。

３～２１日目に得られた未加工の画像が、図７ｂに示されており、αＣＤ１９－ＣＡＲによる両方の腫瘍の制御（図において第２のパネルの写真を参照されたく、これは、両方の注射部位における腫瘍が、時間とともに制御されていることを示す）、およびＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ ＣＡＲにおける特異的二重陽性ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍制御（図における第４のパネルの写真を参照されたく、これは、ＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ腫瘍のみが制御されていることを示す。ＮＡＬＭ６．ＦＬｕｃ＿ｘ５Ｒｅｄ．２Ａ．ＨＡ－ＧＰＩ腫瘍は、αＧＦＰ－ＨＮＧ＋ＧＦＰｘＣＤ１９で処置した場合に成長し続ける）を示す。ＧＦＰ－ＣＡＲ ＿ＧＦＰｘＣＤ３３は、いずれの腫瘍の制御も失敗する（図における第３のパネルの写真を参照されたく、これは、腫瘍が両方の注射部位において成長することを示す。ＣＡＲは、腫瘍がＣＤ３３陰性であるため、それを標的とすることができない）。ＮＴ Ｔ細胞は、いずれの腫瘍も制御することができない（図における第１のパネルの写真を参照されたく、これは、腫瘍が両方の注射部位において成長することを示す）。

このデータは、腫瘍部位における平均ラジアンスで図７ｃ）にさらにプロットされており、ＥＸＯＡＭＰ ＧＦＰ－ＣＡＲ ＋ＧＦＰｘＣＤ１９のみによる特異的な腫瘍制御が実証されている。

実線は、ＮＡＬＭ６（図の左手側を参照されたい）およびＮＡＬＭ６．３ｘＭＹＣ－ＸＴＥＮ＿Ｌ－ｅＧＦＰ（図の右手側を参照されたい）の特異的腫瘍平均ラジアンスを示す。線は、それぞれの被験体マウス／コホートの平均読み取り値を示す。コホート２（αＣＤ１９＿ＦＭＣ６３－ ＨＮＧ）の最初のマウスは、２１日目以前に体重減少に起因して処分されている。

上述の本明細書に言及されたすべての刊行物は、参照により本明細書に組み込まれる。本発明の範囲および趣旨を逸脱することなく、記載された本発明の方法および系の様々な修飾形態および変更形態が、当業者には明らかであろう。本発明は、特定の好ましい実施形態と関連して記載されているが、特許請求される本発明は、そのような特定の実施形態に不当に限定されるべきではないことが理解されるはずである。実際に、分子生物学、細胞免疫学、または関連する分野の当業者には明白である本発明を実施するための記載された様式の様々な修飾形態は、以下の特許請求の範囲内であることが意図される。

（実施例４）
細胞上清からのｉｎ ｖｉｔｒｏでの細胞外ｐ５３の検出のためのサンドイッチＥＬＩＳＡ
細胞上清においてｉｎ ｖｉｔｒｏで細胞外ｐ５３を検出するために、結腸直腸がん細胞株であるＲＫＯ、ＨＴ－２９、ＬＳ１２３、ＬＳ１７４Ｔ、ＳＷ１４６３、およびＣＬ－４０を、コンフルエントフラスコから採取し、培地中で２回洗浄し、平底９６ウェルプレートに、１×１０^５個の細胞／ウェルで２００μｌ／ウェルで播種した。プレートを、３７℃、／５％ ＣＯ_２で４８時間維持し、その後、１００μｌの上清を採取し、使用するまで－２０℃で凍結させた。

ＥＬＩＳＡについては、２μｇ／ｍｌの汎ｐ５３抗体ＤＯ－１クローンを、Ｎｕｎｃ ＭａｘｉＳｏｒｐ（商標）平底において、０．２Ｍ炭酸／重炭酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ９．６中で、１００μｌ／ウェルで一晩コーティングした。翌日、プレートを洗浄し、穏やかに振盪させながら、ＥＬＩＳＡ Ａｓｓａｙ Ｄｉｌｕｅｎｔ（ＡＤＡ、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ，Ｉｎｃ）で１時間ブロッキングした。次いで、プレートを洗浄し、１００μｌの細胞上清とともに、穏やかに振盪させながら２時間インキュベートした。プレートを洗浄し、ポリクローナルウサギ抗ｐ５３抗体（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を、１００μｌ／ウェルで、ＡＤＡ中１：２０００の希釈でウェルにおいて、穏やかに振盪させながら１時間インキュベートした。プレートを洗浄し、ＡＤＡ中１：２０００の希釈で二次抗体である西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートロバ抗ウサギＩｇＧ（Ｂｉｏｌｅｇｅｎｄ，Ｉｎｃ）を、穏やかに振盪させながら３０分間インキュベートした。プレートを、ＰＢＳ ０．０５％ Ｔｗｅｅｎ（登録商標）－２０中で５回、３０秒間浸漬させながら洗浄した。プレートを、１００μｌ／ウェルのＴＭＢ基質（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ，Ｉｎｃ）とともに暗所でインキュベートし、１Ｍ硫酸溶液を使用して停止させた。吸光度を、４５０および５７０ｎＭで測定した。

対照細胞、ＰＢＭＣを、０．５ｕｇ／ｍｌのＣＤ３／ＣＤ２８抗体および１００ＩＵ／ｍｌのＩＬ－２を使用して活性化させたか、または活性化せずのいずれかとし、平底９６ウェルプレートにおいて、１×１０^５個の細胞／ウェルで２００μｌ／ウェルで播種した。

精製したｐ５３タンパク質を、標準として使用し、８０００ｐｇ／ｍｌから、１：２で連続希釈した。
図８は、細胞外ｐ５３タンパク質が、試験した６つの結腸がん細胞株のうちの５つの上清において検出され得ることを示す。

（実施例５）
細胞表面ＥｐＣＡＭおよびｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを発現する結腸直腸がん細胞のＥＸＯＡＭＰ特異的標的化
標的結腸直腸がん細胞ＨＴ－２９（細胞表面ＥｐＣＡＭおよびｐ５３におけるＲ２７３Ｈ変異を発現する）またはＳ１２３（細胞表面ＥｐＣＡＭおよびｐ５３におけるＲ１７５Ｈ変異を発現する）との培養後に、ＣＡＲ Ｔ細胞または非形質導入細胞からのＩＬ－２およびＩＦＮγサイトカイン放出を測定した。

それぞれの抗体クローンの可変ドメインの配列を、公的に入手可能な配列から取得し、可撓性リンカー（Ｇｌｙ_４Ｓｅｒ）_４または（Ｇｌｙ_４Ｓｅｒ）_３によって分離されたＶＬ／ＶＨまたはＶＬ／ＶＨのいずれかの配向で、Ｉｇカッパ鎖シグナルペプチドを含む一本鎖可変断片（ｓｃＦｖ）として、ヒトコドン最適化ｇｂｌｏｃｋ（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ）として注文した。ｇｂｌｏｃｋを、Ｐｈｕｓｉｏｎ（登録商標）Ｈｉｇｈ－Ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）を使用して製造業者のプロトコールに従ってＰＣＲ増幅させ、ヒトＩｇＧ１ヒンジ、ＣＤ２８膜貫通、および細胞内４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚドメインとインフレームで、Ｔｈｏｓｅａ ａｓｉｇｎａ ２Ａペプチド配列によって分離させて、ソートスーサイド（ｓｏｒｔ－ｓｕｉｃｉｄｅ）遺伝子ＲＱＲ８の下流において、スキャフォールド結合領域を含む修飾されたＳＦＧレトロウイルスベクターにサブクローニングした。

抗ＥｐＣＡＭ結合体ＭＴ１１０および様々な抗ｐ５３／抗ＣＤ１９結合体の可変ドメイン配列を、公的に入手可能な配列から取得し、Ｎ末端ＩＬ－２シグナルペプチドおよび介在する可撓性１５ａａリンカー（Ｇｌｙ_４Ｓｅｒ）_３を有するヒトコドン最適化ｇｂｌｏｃｋ（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ）として注文した。Ｃ末端セリン－グリシンリンカーＧｌｙ_４Ｓｅｒおよびヘキサヒスチジンタグを、修飾されたプライマーを使用して付加し、ＰＣＲ断片として増幅させ、ウマ２Ａペプチドによって分離させて、ＣＡＲの下流において、修飾されたＳＦＧベクターにサブクローニングした。

ＣＡＲエフェクターおよび標的細胞からの標的特異的ＩＬ－２およびＩＦＮγの放出を測定するために、結腸直腸がん標的細胞を、９６ウェルの平底プレートに、２００μｌ当たり１×１０^５個の細胞の濃度で、１８～２４時間または結合するまで、播種した。続いて、１００μｌの培地を除去し、１００μｌ中５×１０^４個のＣＡＲ Ｔ細胞または対照細胞を、それぞれのウェルに添加し、ＩＬ－２測定については２日間、またはＩＦＮγ測定については７日間、インキュベートした。１００μｌの培地を除去し、サイトカイン濃度を、ＩＬ－２またはＩＦＮγ特異的ＥＬＩＳＡを使用してアッセイした。

結果：
図９は、ＬＳ１２３細胞（細胞表面ＥｐＣＡＭを発現し、ｐ５３におけるＲ１７５Ｈ変異を有する）に対する、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌する汎指向性ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１）発現Ｔ細胞からのＩＬ－２サイトカイン放出を示す。

抗ＣＤ１９＿ＦＭＣ６３ ＣＡＲ、またはＥｐＣＡＭ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性結合体と組み合わせた抗ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３）を含むＴ細胞を、陰性対照として使用した。これらの細胞は、ＨＴ－２９およびＬＳ１２３標的に対して、非形質導入細胞と同程度の、低いかまたはバックグラウンドレベルのＩＬ－２を生成した。

抗ＥｐＣＡＭ標的化ＣＡＲ（抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）を含むＴ細胞を、陽性対照として使用した。これらの細胞は、それぞれ、結腸直腸標的細胞ＨＴ－２９およびＬＳ１２３に対して、４４２８ｐｇ／ｍｌおよび４２４９ｐｇ／ｍｌのＩＬ－２を分泌した。

ｐ５３を標的とするＥｘｏＡｍｐ ＣＡＲを含み、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌するＴ細胞は、Ｒ１７５Ｈ変異体ｐ５３細胞株ＬＳ１２３に対して、約１８９ｐｇ／ｍｌでＩＬ－２を分泌した。図９は、これらのＴ細胞が、ｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを発現しない細胞株ＨＴ－２９に対して、非常に低いかまたはバックグラウンドレベルのＩＬ－２を分泌したことを示す。

試験したすべてのＣＡＲについて、標的の不在下（エフェクター単独）では、ＩＬ－２のレベルは検出できなかった。

図１０は、ＬＳ１２３細胞（細胞表面ＥｐＣＡＭを発現し、ｐ５３におけるＲ１７５Ｈ変異を有する）に対する、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌する汎指向性ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１）発現Ｔ細胞からのＩＦＮγサイトカイン放出を示す。

抗ＣＤ１９＿ＦＭＣ６３ ＣＡＲ、またはＥｐＣＡＭ／ＣＤ１９を標的とする二重特異性結合体と組み合わせた抗ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３）を含むＴ細胞を、陰性対照として使用した。これらの細胞は、ＨＴ－２９およびＬＳ１２３標的に対して、非形質導入細胞と同程度の、低いかまたはバックグラウンドレベルのＩＦＮγを生成した。

抗ＥｐＣＡＭ標的化ＣＡＲ（抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）を含むＴ細胞を、陽性対照として使用した。これらの細胞は、それぞれ、結腸直腸標的細胞ＨＴ－２９およびＬＳ１２３に対して、２３７３５ｐｇ／ｍｌおよび２２５５３ｐｇ／ｍｌのＩＦＮγを分泌した。

ｐ５３を標的とするＥｘｏＡｍｐ ＣＡＲを含み、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌するＴ細胞は、Ｒ１７５Ｈ変異体ｐ５３細胞株ＬＳ１２３に対して、約７６２５ｐｇ／ｍｌでＩＦＮγを分泌した。図１０は、これらのＴ細胞が、ｐ５３変異体Ｒ１７５Ｈを発現しない細胞株ＨＴ－２９に対して、非常に低いかまたはバックグラウンドレベルのＩＦＮγを分泌したことを示す。

試験したすべてのＣＡＲについて、標的の不在下（エフェクター単独）では、ＩＦＮ－γのレベルは検出できなかったか、非常に低い／バックグラウンドレベルであった。

この実施例において使用した例示的な配列は、以下である：
抗ＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０－ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ＥｐＣＡＭ ＣＡＲ、抗ＥｐＣＡＭ ＭＴ１１０ ｓｃＦｖ＿ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン（配列番号１４）。
抗ＣＤ１９＿ＦＭＣ６３－ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ＣＤ１９ ＣＡＲ、抗ＣＤ１９ ＦＭＣ６３ ｓｃＦｖ ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン。（配列番号２）
ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９－ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ｐ５３ ＣＡＲ、抗ｐ５３ ｐＡｂ４２１ ｓｃＦｖ ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン、ならびにＥｐＣＡＭ（ＭＴ１１０＿ＬＨ）およびｍｕｔｐ５３ Ｒ１７５Ｈ（７Ｂ９＿ＨＬ）を標的とするヘキサヒスチジンタグ付き二重特異性結合体（配列番号１５）。
ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／ＦＭＣ６３－ＲＱＲ８マーカー遺伝子を共発現する抗ｐ５３ ＣＡＲ、抗ｐ５３ ｐＡｂ４２１ ｓｃＦｖ ＬＨの配向、ＩｇＧ１ヒンジスペーサー、ＣＤ２８ＴＭドメイン、ならびに４１ＢＢおよびＣＤ３Ｚ細胞内ドメイン、ならびにＥｐＣＡＭ（ＭＴ１１０＿ＬＨ）およびＣＤ１９（ＦＭＣ６３＿ＨＬ）を標的とするヘキサヒスチジンタグ付き二重特異性結合体（配列番号１６）。

（実施例６）
ＥＸＯＡＭＰ ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞傷害アッセイ
ｉｎ ｖｉｔｒｏリアルタイム細胞傷害殺滅アッセイを行った。ｍＫａｔｅ２陽性結腸直腸がん標的細胞であるＬＳ１２３を、９６ウェルの平底プレートに、２００μｌ当たり２×１０^４個の細胞の濃度で、５０：５０の培地／条件培地（成長ＬＳ１２３細胞由来）で、１８～２４時間または結合するまで、播種した。続いて、５０μｌの培地を除去し、５０μｌ中８×１０^４個のＣＡＲ Ｔ細胞または対照細胞を、４：１のＥ：Ｔ（ＣＡＲ：標的）比で、それぞれのウェルに添加し、１２０時間インキュベートし、ＩｎｃｕＣｙｔｅ Ｓ３ Ｌｉｖｅ－Ｃｅｌｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｅｓｓｅｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ）でアッセイした。１ウェルごとに、毎時間、２つの画像を、１０倍の倍率で取得した。データを、ＩｎｃｕＣｙｔｅ（登録商標）Ｚｏｏｍソフトウェアを使用して分析して、画像ごとにｍＫａｔｅ２陽性核を検出し、その数をカウントした。

結果
図１１は、細胞表面ＥｐＣＡＭを発現し、変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈを有するＬＳ１２３細胞に対する、ＥｐＣＡＭおよび変異体ｐ５３ Ｒ１７５Ｈに対する二重特異性結合体（＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０／７Ｂ９）を分泌する汎指向性ｐ５３ ＣＡＲ（ａＰ５３＿４２１）発現Ｔ細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏリアルタイム細胞傷害を示す。対照エフェクターには、非形質導入細胞（ＮＴ）および陽性対照ＣＡＲ抗ＥｐＣＡＭ（ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０）が含まれる。

図１１は、ＥｘｏＡｍｐ特異的ＣＡＲ ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０－７Ｂ９が、標的ＬＳ１２３細胞を特異的に溶解することができたことを示す。ＥｘｏＡｍｐ特異的ＣＡＲ ａＰ５３＿４２１ ＋ＢＳＢ＿ＭＴ１１０－７Ｂ９の標的細胞の５０％を殺滅させるのにかかった時間（ＫＴ５０）は、ＫＴ５０が２７．６３時間であった陽性対照ａＥｐＣＡＭ＿ＭＴ１１０と比較して、６０．１８時間であった。

Claims (25)

1. （ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）と、
   （ｉｉ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
   細胞表面抗原に結合する第２の結合ドメイン
   を含む二重特異性タンパク質をコードするポリヌクレオチドと
   を含む細胞。
2. 前記細胞表面抗原が、細胞表面組織抗原である、請求項１に記載の細胞。
3. 前記腫瘍抗原が、細胞表面腫瘍抗原ではなく、好ましくは、前記腫瘍抗原が、膜貫通ドメイン；グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）－アンカーなどの脂質アンカーを含まない、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
4. 前記腫瘍抗原が、シグナルペプチドを含まない、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
5. 前記腫瘍抗原が、腫瘍において、対応する非がん性組織と比較して高いレベルで発現されるか、または前記抗原が、腫瘍特異的である、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
6. 前記腫瘍抗原の前記第１または第２のエピトープが、腫瘍特異的変異を含む、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
7. 前記変異が、置換、挿入、または欠失から選択される、請求項６に記載の細胞。
8. 前記腫瘍抗原が、融合タンパク質であり、好適には、前記融合タンパク質が、少なくとも２つのドメインを含んでもよく、第１のドメインが腫瘍抗原の第１のエピトープを含み、第２のドメインが前記腫瘍抗原の第２のエピトープを含む、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
9. 前記腫瘍抗原の前記第１または第２のエピトープが、腫瘍特異的翻訳後修飾を含む、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
10. 前記腫瘍特異的翻訳後修飾が、リン酸化であり、好適には、前記腫瘍抗原エピトープのうちの１つが、リン酸化部位であり得る、請求項９に記載の細胞。
11. ａ）前記ＣＡＲの前記結合ドメインが、前記腫瘍に特異的である腫瘍抗原の第１のエピトープに結合し、かつ／または
    ｂ）前記二重特異性タンパク質の前記第１の結合ドメインが、前記腫瘍に特異的である腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する、
    先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
12. 前記細胞が、免疫エフェクター細胞、例えば、アルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、またはマクロファージである、先行する請求項のいずれかに記載の細胞。
13. （ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする第１の核酸配列と、
    （ｉｉ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含む二重特異性タンパク質をコードする第２の核酸配列と
    を含む核酸構築物。
14. 前記第１および第２の核酸配列が、共発現部位によって分離されている、請求項１３に記載の核酸構築物。
15. （ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする第１の核酸配列と、
    （ｉｉ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含む二重特異性タンパク質をコードする第２の核酸配列と
    を含む核酸配列のキット。
16. 請求項１３または１４に記載の核酸構築物を含むベクター。
17. （ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含むＣＡＲをコードする核酸配列を含む、第１のベクターと、
    （ｉｉ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含む二重特異性タンパク質をコードする核酸配列を含む、第２のベクターと
    を含む、ベクターのキット。
18. 請求項１から１２のいずれかに記載の複数の細胞、請求項１３もしくは１４に記載の核酸構築物、請求項１５で規定される第１の核酸配列および第２の核酸配列、請求項１６に記載のベクター、または請求項１７で規定される第１および第２のベクターを含む医薬組成物。
19. 疾患の処置および／または予防において使用するための、請求項１８に記載の医薬組成物。
20. 前記疾患が、がんである、請求項１９に記載の使用のための医薬組成物。
21. 請求項１から１２のいずれかに記載の細胞を作製するための方法であって、請求項１３もしくは１４に記載の核酸構築物、請求項１５で規定される第１の核酸配列および第２の核酸配列、請求項１６に記載のベクター、または請求項１７で規定される第１および第２のベクターを、前記細胞に導入するステップを含む、方法。
22. （ｉ）腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメイン、膜貫通ドメイン、およびシグナル伝達ドメインを含む受容体構成成分と、
    ｉｉ）前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含む二重特異性タンパク質と
    を含むＣＡＲ系。
23. 前記系が、
    ａ）前記受容体構成成分を発現するアルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、もしくはマクロファージ、および／または
    ｂ）前記二重特異性タンパク質を発現するアルファ－ベータＴ細胞、ＮＫ細胞、ガンマ－デルタＴ細胞、サイトカイン誘導性キラー細胞、もしくはマクロファージ
    を含み、ならびに／または
    ｃ）前記受容体構成成分および前記二重特異性タンパク質が、同じ細胞によって発現される、ならびに／または
    ｄ）前記二重特異性タンパク質が、前記系に投与される、
    請求項２２に記載の系。
24. ＣＡＲ発現細胞と組み合わせてがんの処置において使用するための、二重特異性タンパク質であって、
    前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含み、
    前記ＣＡＲが、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含む、
    二重特異性タンパク質。
25. 二重特異性タンパク質と組み合わせてがんの処置において使用するための、ＣＡＲ発現細胞であって、
    前記ＣＡＲが、腫瘍抗原の第１のエピトープに結合する結合ドメインを含み、
    前記二重特異性タンパク質が、
    前記腫瘍抗原の第２のエピトープに結合する第１の結合ドメイン、および
    細胞表面組織抗原のエピトープに結合する第２の結合ドメイン
    を含む、
    ＣＡＲ発現細胞。

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