JP2005531643A - 直径が少なくとも1マイクロメートルの粒子を含んでなる走査懸濁液 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は医薬分野に関する。さらに詳しくは、本発明は診断および放射線治療の分野に関する。
信頼性のある詳細な診断は、疾患の効果的な治療の重要な必要条件であることが多い。特に個々の患者について有意な差異を示す疾患には、非常に慎重かつ正確な診断が必要とされる。このような疾患には、例えば腫瘍関連疾患が含まれる。患者が腫瘍を患っていることが分かっている場合、疾病状態への確かな眼識を得ることが重要である。例えば腫瘍の増殖および位置を確定し、身体の別の部分への転移があるかどうかなどを判断する。さらに、腫瘍への薬剤のターゲティングについての適切な情報は、治療効率を増加させる。
その粒子が少なくとも1μmの直径からなる、磁場を少なくとも一部分乱すことのできる粒子を含んでなる走査懸濁液を個体へ投与し、
走査画像を取得し、かつ
該画像が腫瘍の存在を示すかどうか判断する
ことを含んでなる、腫瘍を検出する方法を提供する。
磁場を少なくとも一部分乱すことのできる粒子を含んでなる走査懸濁液を、個体へ投与し、
個体の走査画像を得、
個体内の該粒子の分布を測定し、
該粒子を含んでなる治療用組成物を個体へ投与する
ことを含んでなる、腫瘍を患う個体を治療する方法を提供する。該治療用組成物中の粒子は、診断用組成物中の粒子よりも放射性が高く、かつ/または、少なくとも1種類の治療上有効な化合物とともに提供される。
第一の工程で、走査画像、より詳しくは本発明の走査懸濁液を与えた患者のMRI画像を得、
第二の工程で、該走査懸濁液中の該粒子と本質的に同一の化学構造を持ち、該走査懸濁液よりも放射性が高くなるようにした粒子を用いて、腫瘍の治療のための治療用懸濁液を製造する
ことを含んでなる、腫瘍を治療するための治療用組成物の製造方法を提供する。
例えば、中性子放射化した放射性ホルミウム付加ポリ(L−乳酸)微粒子(Ho−PLLA−MS)は、患者の治療のためのγ線カメラおよびβ粒子を用いるイメージングに使用できるγ線を放射する。動物試験では、これらの微粒子を腫瘍に対し標的化でき、γ線カメラで容易にイメージングされうることが分かった。ホルミウムは常磁性体なので、MRIなどの非放射性走査法によっても見ることができる。従って、非放射性ホルミウム付加微粒子をイメージングすることが可能である。放射性微粒子での治療の前に非放射性ホルミウム付加微粒子をイメージングすることは、患者および医療関係者への放射線を減少することにつながる。その場合、上記に説明したように、電離放射線への(過度の)被曝に対して特別な予防策を講じる必要はない。さらに、これならば分布パターンの測定により多くの時間を使うことができる。これならば該粒子が個体の体内に存在している間中該分布を測定できるのに対し、放射性トレーサー量は放射能が減衰する前に検出するべきである。
微粒子の製造
放射性ホルミウム付加微粒子を、既に述べたように調製した[14]。要するに、ホルミウムアセチルアセトネート[20]を、溶媒蒸発によりポリ(L−乳酸)へ組み込み、篩にかけた後、20〜50μmの微粒子を得た。オランダ国ペッテン(Petten)の高中性子束原子炉のPRS施設において1時間の照射によって微粒子の中性子放射化を行った。イン・ビボ(in-vivo)およびエクス・ビボ(ex-vivo)実験中の投与の前に、この微粒子を超音波洗浄器中で10分間超音波処理し、Gelofusine(商標)(Vifor Medical SA, Switzerland)中に懸濁した。
寒天ゲルマトリックスの調製のため、乾燥寒天粉末(20g;Life technologies GIBCO BRL, Paisley, Scotland)を塩化マンガン(II)四水和物(900mg; Merck, Darmstadt, Germany)とともに冷脱イオン水(1000g)中に混入した。このマンガン−塩化物を用いて肝臓NMR特性をシミュレートした。ホルミウムまたはイットリウムを付加したポリ(L−乳酸)微粒子(Ho−PLLA−MSまたはY−PLLA−MS)を寒天液中に攪拌しながら懸濁した。この微粒子懸濁液および寒天懸濁液を100℃になるまで10分間加熱した結果、透明な流動ゲルを得た。このゲルを互いに異なる割合で加えてHo−PLLA−MSおよびY−PLLA−MS濃縮物を生じた。混合したゲルを冷却しながら超音波処理した。室温まで冷却してしまうと、このゲルは光学的に透明で、均一に分布した微粒子が目に見える。
全ての実験は、オランダ動物実験法(The Netherlands Experiments on Animals Act)(1977)および欧州条約のガイドライン(the European Convention guidelines )(86/609/EC)に従って行われた。承認は大学動物実験委員会より得た。実験は、3000〜4000gの雌の病原体フリーのニュージーランド・ホワイト近交系hsdIFウサギを用いて行った(Harlan, Horst, The Netherlands)。このウサギを個別にスチールのケージに入れ、毎日約100gのウサギ用「完全食」ペレットを与えた。水は自由に与えた。腫瘍を有する3匹のウサギを3または4週間後に犠牲にした。腫瘍のないウサギはSPECTおよびMRI画像を撮った直後に屠殺した。
開腹手術(laparatomies)中の鎮痛および鎮静を、0.5mlのメサドン(10mg/ml; Veterinary Pharmacy, University of Utrecht, The Netherlands)および0.5ml Ventranquil(商標)(アセプトマジン、10mg/ml; Sanofi Sante Animale Benelux BV, Maassluis, The Netherlands)で達成した。その後、吸入麻酔薬(anasteticum)としてHypnomidate(商標)(2mg/ml; B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany)ならびにN20およびハロタン(Albic BV, Maassluis, The Netherlands)の静脈注射によってウサギを麻酔した。3mlのEuthesate(ペントバルビタール、200mg/ml; Apharmo b. v., Arnhem The Netherlands)を用いてウサギを屠殺にした。
VX2細胞系統[21]を、オランダ、ユトレヒト大学医療センターの口腔顎顔面外科(the Department of Oral and Maxillofacial Surgery of the University Medical Center, Utrecht, The Netherlands)[22]から得た。ウサギの臀部領域での皮下継代によってVX2腫瘍を増殖させた。腫瘍を解剖した後、小さい部分(直径2mm)を移植用に選んだ。
腫瘍の(2または3)部分をAbbocath(商標)18G(Abbocath Ltd., Ireland)を用いて外側左葉(left lateral lobe)に注入した。注射傷を組織グルー(Histoacryl, B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany)で塞いだ。約12日後、最初の超音波検査(HDI 3000 ATL, EntosTM CL10-5 transducer)を行って腫瘍増殖をチェックした。
腫瘍が直径20mm以上に達したら、ホルミウム付加微粒子を投与するために2回目の開腹手術を行った。胃十二指腸動脈をAbbocath(商標)24G(Abbott Ltd., Ireland)でカニューレ留置した。逆流を、5%グルコース中の0.1%メチレンブルーで確認した。Herba et al.[23]に記載されるものと類似のフラッシュ前の投与系をAbbocath(商標)と接続した。懸濁した微粒子を投与し、注射量を算出するため、注射前および後の放射線量についてシリンジを計量した。胃十二指腸動脈を組織グルー(Histoacryl, B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany)と連結した、または可能であればそれで塞いだ。放射性の微粒子の投与前、投与後3日および17日に、MR画像を撮影した。SPECT画像は投与後3日に撮影した。微粒子の存在を検証するため、肝臓をパラフィンで包埋し、ヘマトキシリン−エオシンで染色した後に組織学的に評価した。
肝臓はターミナル動物実験で用いたウサギから得た。これらのex-vivo実験を行うために余分なウサギは屠殺していない。針を心臓の左心室に突き刺し、右外耳を切り取った。ウサギを生理食塩水およびヘパリン、つまり500mlにヘパリン1ml(Leo Pharma BV, Weesp, 5000IE/1ML)でフラッシュした。肝臓を取り出し、肝動脈をAbbocath(商標)24Gでカニューレ留置した。肝動脈を経由して生理食塩水およびヘパリンで再び肝臓をフラッシュした。この肝臓を生理食塩水中に5℃で最長30時間保存した。動的MRイメージング実験中に、懸濁した微粒子を肝動脈を経由して投与した。
全てのMR検査は1.5T(Gyroscan ACS-NT 15, Philips Medical Systems)で操作して全身の系について行った。イメージングプロトコールにはT1を強調したSEのイメージングおよびT2を強調したSEのイメージングが含まれた。異なる濃度に対するホルミウムおよびイットリウム微粒子の緩和特性の測定を、反転回復シーケンスと組み合わせたマルチエコースピンエコー(SE)測定法を用いて行った。長期的緩和(R1=1/T1)および横緩和(R2=1/T2)率を、得られたシグナルの最小2乗適合によって決定した。グラジエントエコー(FFE)イメージングに関する横緩和率(R2*=1/T2*)を、0.91msのエコー間隔に25エコーを得るマルチグラジエントエコーシーケンスを用いて測定した。
放射性微粒子の投与後、デュアルヘッドカメラ(Vertex-MCD, ADAC, Milpitas, CA)を用いてウサギの全身および腹部のイメージングを行った。平面およびSPECT画像を生成した。SPECT取得には180℃の検出器がそれぞれ1停止ごとに30sで32回停止する回転を必要とした。
微粒子
溶媒の蒸発によって調製した微粒子は、篩にかけた後、直径20〜50μmの3〜5グラムの球形の粒子となり(図1)、ホルミウム含有量は15〜17%(w/w)となった。
ファントム 反転回復実験でのマルチスピンエコーにより測定したR1およびR2は、ホルミウム微粒子の濃度に主に依存していた、図2。最小2乗適合は、ΔR2=1.93×[HoMS]s-1を意味し、[HoMS]はmg/gである。これは撹乱する粒子がプロトンの拡散距離と比較して大きいので[24]、静止した常磁性体がこのサイズを乱すためと予想される。図3はR2*のHoMS濃度への依存を示す。横緩和は、HoMSの磁化率を、キュリーの法則を用いて分離したHoイオン(10.4 ボーア磁子)の磁気モーメントおよび微粒子のHo含有量から算出する、静的ディフェージング型(static dephasing regime)[25]を予測したものに一致する。平均的なヒト大静脈のスケールモデルにおける肺の短絡を評価するため、ホルミウム付加微粒子の通過を検出すると、動的MRIが一注入量全てを検出する能力があることが分かった(表1)、これは6.7mgおよび48mgの用量に関して図9に説明されている。後者の用量を徐々に注入して経時的な微粒子の短絡をシミュレートした。この図はベースライン値の取得後、数ミリグラムの用量が容易に検出されることを示している。その他の全ての注入用量について、測定された緩和率の変化は投与された微粒子の量に直線的に比例した。
腫瘍の移植の結果、「受容」率は100%となった。16日後この腫瘍は直径約23mmに達した。この腫瘍を超音波で見られるように十分血管新生させた。腫瘍サイズは、ルーラーで測定した体積で10〜17cm3(12.7±4.1cm3)変化した(図4)。
投与後、投与系には約6%の放射能が付着した。560〜640MBqの放射能に対応する48〜50mg量の放射性ホルミウム微粒子を腫瘍を有する肝臓へ効果的に投与した。
シンチグラム画像上で放射能は特に腫瘍および肝臓に見られた(図5)。肝臓で放射能は不均一に分布した。微粒子の蓄積増加が腫瘍内および腫瘍の周囲に見られた。
ホルミウム付加微粒子の投与前のウサギのMRIは、VX2腫瘍を視覚化するのに理想的な診断ツールという結果となった(図6a)。腫瘍は均質的で丸く、くっきりと縁取られた病変のように見える。肝臓組織と比較して腫瘍は、T1強調画像では低信号、T2強調画像上では高信号の病変のように現れる。ホルミウム付加微粒子の投与後の、ホルミウム付加微粒子の蓄積によってもたらされる磁場の攪乱は、腫瘍内および肝臓内に見られた(図6b〜c)。T2強調画像は、肝臓および特に腫瘍の周囲の黒い部分の増加によって示されるようにホルミウムに対してより感受性が高くなっている。腫瘍の核内にはホルミウムの蓄積は見られなかった(図6d)。
微粒子の投与の処理は3つのex-vivoウサギ肝臓で行った。動脈中の蓄積を動的MRを用いて観察した。最初に小さい血管を肝臓の縁まで微粒子で満たした(図8c 1〜4)。その後微粒子の蓄積が大きな血管に現れ、肝臓の中心に現れた(図8c 4〜8)。これらの実験中、0〜100mgの微粒子を用いた。図8中の画像5の後、塞栓形成した新しい血管はほとんどなかった(その時約40mgの微粒子が投与された)。
この研究でMRIを放射性および非放射性ホルミウム付加微粒子のイメージングに使用することの実現可能性を調査した。in-vivoおよびex-vivo実験中、肝臓での体内分布を検査し、その後、VX2腫瘍を移植したウサギ肝動脈へ動脈内投与した。
SPECTおよびMRIでのHo−PLLA−MSの検出比較
SPECT MRI
治療用微粒子のイメージング + +
治療用微粒子の定量化 + +
肺の短絡を評価するための放射性トレース量 + +
肺の短絡を評価するための非放射性のトレース量 − +
直接解剖学的基準 − +
高解像度 − +
軟組織のコントラスト(腫瘍) − +
長期の治療後イメージング − +
高選択性投与 − +
投与中の干渉可能性 − +
Claims (42)
- 磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子を含んでなり、該粒子が少なくとも1μmの直径からなる走査懸濁液。
- MRI走査懸濁液を含んでなる、請求項1に記載の走査懸濁液。
- 該粒子がホルミウムを含んでなる、請求項1または2に記載の走査懸濁液。
- 該粒子が、5×1013cm−2・s−1の中性子束で1時間照射される間にその構造を本質的に維持することの可能な組成物を含んでなる、請求項1〜3のいずれか一項に記載の走査懸濁液。
- 該粒子が微粒子を含んでなる、請求項1〜4のいずれか一項に記載の走査懸濁液。
- 該粒子がポリ(L)−乳酸を含んでなる、請求項1〜5のいずれか一項に記載の走査懸濁液。
- 該組成物が、5×1013cm−2・s−1の中性子束で1時間照射される間にその構造を本質的に維持することの可能な化合物と化学結合したホルミウムを含んでなる、請求項3〜6のいずれか一項に記載の走査懸濁液。
- 走査懸濁液の製造のための、磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子であって、少なくとも1μmの直径からなる粒子の使用。
- 走査画像を得るための、請求項1〜7のいずれか一項に記載の走査懸濁液の使用。
- 該粒子の流動挙動を測定するための、請求項8または9に記載の使用。
- 血管形成部位を検出するための、請求項8〜10のいずれか一項に記載の使用。
- 腫瘍を検出するための、請求項8〜11のいずれか一項に記載の使用。
- 該腫瘍が肝臓転移を含む、請求項12に記載の使用。
- 該走査懸濁液がMRI走査懸濁液を含む、請求項8〜13のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が、腫瘍内で該粒子の固着を可能にするのに十分な大きさの直径からなる、請求項8〜14のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が、少なくとも一部分、非腫瘍血管を流動することの可能なものである、請求項15に記載の使用。
- 該粒子が1〜10μmの直径からなる、請求項8〜16のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が3〜5μmの直径からなる、請求項8〜16のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が10〜200μmの直径からなる、請求項8〜16のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が20〜50μmの直径からなる、請求項8〜16のいずれか一項に記載の使用。
- 該粒子が微粒子を含んでなる、請求項8〜20のいずれか一項に記載の使用。
- 該微粒子がポリ(L−乳酸)微粒子を含んでなる、請求項21に記載の使用。
- 該粒子がホルミウムを含んでなる、請求項8〜22のいずれか一項に記載の使用。
- 腫瘍を検出する方法であって、
請求項1〜7のいずれか一項に記載の走査懸濁液を個体へ投与し、
走査画像を得、かつ
その画像が腫瘍の存在を示すかどうかを判断する
ことを含んでなる、方法。 - 診断用組成物および治療用組成物を含んでなるパーツキットであって、
診断用組成物および治療用組成物が、磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な、本質的に同一の化学構造の粒子を含んでなり、治療用組成物が診断用組成物よりも放射性の高い、パーツキット。 - 診断用組成物が本質的に非放射性である、請求項25に記載のパーツキット。
- 該粒子がホルミウムを含んでなる、請求項25または26の記載のパーツキット。
- 走査懸濁液を個体へ投与し、その後該個体の走査画像を生成することを含んでなる、走査画像を得る方法であって、
走査懸濁液が請求項1〜7のいずれか一項に記載の走査懸濁液を含んでなる、方法。 - 腫瘍を患う個体を治療する方法であって、
磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子を含んでなる走査懸濁液を、個体へ投与し、
個体の走査画像を得、
個体内での該粒子の分布を測定し、
個体へ該粒子を含んでなる治療用組成物を投与し、ここで、治療用組成物中の該粒子は診断用組成物中の粒子よりも放射性が高い
ことを含んでなる、方法。 - 請求項25に記載のパーツキットの製造のための、磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子の使用。
- 磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子の薬剤としての使用であって、
該粒子の用量が本質的に同一の化学構造を有する粒子を用いて得られた走査画像から導き出されたものである、使用。 - 磁場を少なくとも一部分乱すことの可能な粒子の、腫瘍治療用薬剤の製造のための使用であって、
該粒子の用量が本質的に同一の化学構造を有する粒子を用いて得られた走査画像から導き出されたものである、使用。 - 該腫瘍が肝臓の転移を含む、請求項29または32に記載の方法または使用。
- 該粒子が少なくとも1μmの直径からなる、請求項29〜33のいずれか一項に記載の方法または使用。
- 該粒子がホルミウムを含んでなる、請求項29〜34のいずれか一項に記載の方法または使用。
- 該粒子が、5×1013cm−2・s−1の中性子束で1時間照射される間にその構造を本質的に維持することの可能な組成物を含んでなる、請求項29〜35のいずれか一項に記載の方法または使用。
- 該粒子が微粒子を含んでなる、請求項29〜36のいずれか一項に記載の方法。
- 該粒子がポリ(L−乳酸)微粒子を含んでなる、請求項29〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 該組成物が、5×1013cm−2・s−1の中性子束で1時間照射される間にその構造を本質的に維持することの可能な化合物と化学結合したホルミウムを含んでなる、請求項29〜38のいずれか一項に記載の方法。
- 腫瘍の治療のための治療用組成物の製造方法であって、
第一の工程で、走査画像、より詳しくは、請求項1〜7のいずれか一項に記載の走査懸濁液を与えた患者のMRI画像を得、
第二の工程で、該走査懸濁液中の該粒子と本質的に同一の化学構造を持ち、該走査懸濁液中の粒子よりも放射性が高くなるようにした粒子を用いて、腫瘍の治療のための治療用懸濁液を製造する、
ことを含んでなる、方法。 - 走査画像の取得の前に一定量の粒子を製造し、該粒子量の第一部分を走査懸濁液の製造に用い、該粒子量の第二部分を治療用懸濁液の製造に用いる、請求項40に記載の方法。
- 該粒子を治療用放射性懸濁液に用いるための放射線の線量、および/または治療用懸濁液に用いる粒子の量が、少なくとも一部は取得した走査画像に基づく、請求項40または41に記載の方法。
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