JP2005521119A - アポトーシス誘導ホスホジエステルオリゴヌクレオチドのコンホメーション−活性の関係 - Google Patents
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Abstract
Description
98:4844, 2001)。
、オリゴヌクレオチドの生物活性を予測する際に有用であるオリゴヌクレオチドにおける新規三次元コンホメーションまたは構造モチーフの特定が引き続き必要とされる。癌細胞におけるアポトーシスのような応答を含む細胞応答を予測する能力が必要とされる。
する能力を保有するかどうかを予測するためのオリゴヌクレオチド配列の評価に有用なコンピュータを使った方法を提供することである。
本発明は、細胞増殖を阻害する、細胞周期進行を停止させる、カスパーゼを活性化させる、PARPを切断する、かつ/または細胞においてアポトーシスを誘導するオリゴヌクレオチド組成物の能力を予測するオリゴヌクレオチド組成物のin silicoでの評価またはスクリーニングのための合理的基盤を提供し、それによりin vivoまたはin vitroでのさらなる試験のために特定のオリゴヌクレオチド組成物を選定する手段を提供する。
本発明は、当業者に使用されるケミカルドローイングソフトウェアを操作し、かつ中心のパラメータを測定するのに十分なメモリーおよび演算速度を有する任意のコンピュータを用いて実施され得ることが理解されよう。中心の様々なパラメータの測定は、描いた構造を三次元構造に変換するソフトウェアを用いて達成される。
な方法
以下の工程は、オリゴヌクレオチド配列における中心を特定するための本発明の一般的な方法について記載する。
310°K範囲を超過することが観察された。
る。
以下の中心の説明にはその重要な特徴が含まれている。図2aおよび図2bはこれらの特徴を示す。図1は、中心の一般的な配向(前面、後面、下面、上面、左側面および右側面)を提供する。
塩基がリン酸ネックレスと同じ平面またはそれと反対の平面において垂直配向で隣接する場合、中心は隣接である(A型)として定義される。塩基の順序が連続していない場合に、中心は非隣接である(B型)として定義される。好ましい配向はA型またはB型であり、より好ましい配向はA型およびB型であり、最も好ましい配向は、リン酸ネックレスに垂直な同じ平面で塩基を有するA型である。1つの配列がA型およびB型の両方を保有することができる。所定の配列中に2つ中心が見られる場合、A1は、5’末端での第1の中心を表し、A2は、3’末端での第2の中心を表す。
x軸は、中心に関連したリン原子間の原子間距離を表す。2つのリン原子が包含される(例えば、5’−N1pN2pN3−3’(ここで、Nxはプリンまたはピリミジンデオキシリボヌクレオシドを表し、Pはリン酸基を表す))場合、xはおよそ700〜1360pmである。4つのリン酸原子が包含される場合、xはおよそ750〜1300pmである(例えば、5’−N1pN2pN3pN4pN5−3’(ここで、Nxは、2〜4の範囲の整数としてプリンまたはピリミジンデオキシリボヌクレオシド数を表し、Pは、整数としてリン酸基数を表す))。
Y軸は、リン酸骨格と関与する塩基の最も遠い原子との間の最長距離を表す。これは、所定の塩基の回転およびどの原子(基)が考慮されるか(メチル、カルボニルまたはアミノ基)に依存する。Yは、およそ780〜2200pmである。Yに関して好ましい距離は存在しない。
Z軸は、上部から眺めた場合の中心の前面から後面までの距離を表す。Zは、約400〜1300pmである。好ましい距離は存在しない。
次の定義パラメータαは、リン酸基からのアミノ/アミド基の最も遠いフレーミング距離である。α距離は、約900〜1500pmである。
次の定義パラメータβは、アミノ/アミド基の最も遠い分子間距離である。値は、約300〜1700pmである。
この結合は、分子の大きさおよび形状ならびに原子間距離を安定化する。水素結合距離は、約300pm以下であるはずである。最も頻繁に観察される結合は、カルボニル基とアミノ基またはアミド基とによるものである。次に最も頻繁な水素結合型は、分子のカルボニル基と3’または5’末端にある水酸基とによるものである。最後の水素結合型は、カルボニル基とリン酸の水酸基との間である。好ましい水素結合型は3つの型すべてを含
み、より好ましい水素結合は、カルボニル基とアミノ/アミド基とによるもの、およびカルボニル基とリン酸基とによるものであり、最も好ましい水素結合は、カルボニルとアミノ/アミド基とによるものである。
最終パラメータは、5’または3’末端水酸基とそれらの対応するリン酸基に対する距離である。好ましい距離は、約320〜650pmであり、より好ましい距離は、390〜420pmであり、最も好ましい距離は約380pmである。
カタログと技術ガイド 2002−2003(Apoptosis Catalog and Technical Guide 2002-2003)、特に5〜295頁)(この全体が参照により本明細書に援用される)により記載されている。かかるアッセイとしては、DNA断片化、アポトーシス、ミトコンドリアマーカー、小胞体マーカー、遊離ヌクレオソーム、核マトリックスタンパク質を分析するように設計されたアッセイ、カスパーゼ1〜14、グルタチオン、スーパーオキシドジスムターゼ、bcl−2ファミリーの成員を含むがこれらに限定されない多数のカスパーゼおよび関連タンパク質の検出ならびに活性、Fas/TNR−Rスーパーファミリー、PARP関連産物の分析、アポトーシスシグナルトランスデューサーの分析、死受容体、Apo2、デコイ受容体を含む様々なシグナル伝達受容体の分析、アポトーシス膜タ
ンパク質、神経系アポトーシスマーカー、細胞周期および細胞増殖に関する多数のマーカー、有糸分裂キナーゼの分析、ブロモデオキシウリジンアッセイ、およびp53アッセイが挙げられる。本発明の解析方法により特定される配列の有効性の評価はまた、Oncogene
Research Products, P.O. Box 12087, La Jolla, California, 92039 (アポトーシス カタログと技術ガイド 2002−2003(Apoptosis Catalog and Technical Guide 2002-2003)、特に99〜104頁および214〜255頁、この全体が参照により本明細書に援用される)により記載されるように、アポトーシスの誘導物質および細胞同調試薬のような他の作用物質および治療剤の存在下で決定され得る。かかる作用物質としては、アクチノマイシンD、アンフィドコリン(amphidocolin)、A23187、カフェイン、カンプトテシン、シクロヘキシミド、デキサメタゾン、ドキソルビシン、5−フルオロウラシル、ヒドロキシ尿素、パクリタキセル、スタウロスポリン、チミジン、ビンブラスチン、レチノイン酸、エトポシド、オカダ酸、ビンクリスチンおよびメトトレキサートが挙げられるが、これらに限定されない。
ホスホジエステルおよびホスホロチオエート配列は、アバカス セグメンテッド(Abacus Segmented)合成技術を用いて、シグマ−ゲノシス(Sigma-Genosys) (Woodlands, TX)により調製された。別記しない限り、配列は、加圧滅菌した脱イオン水中または薬学的に許容可能な緩衝液(例えば、生理食塩水が挙げられるが、これに限定されない)中に、使用直前に分散させた。
ヒトジャーカットT細胞白血病細胞は、アメリカン タイプ カルチャー コレクション(American Type Culture Collection) (Rockville, MD)から入手した。ジャーカットT細胞は、10%熱失活(56℃、30分)ウシ胎児血清を補充したRPMI 1640培地(すべてSigma Aldrich, Canadaから)、5%CO2雰囲気中、37℃で維持した。細胞は、6ウェル平底組織培養プレートにおいて2×105個の細胞/mlで培地に播種し、最終濃度53μMのオリゴヌクレオチドとともに培養した。他の濃度のオリゴヌクレオチドの試験により、オリゴヌクレオチドは濃度に依存してアポトーシスを誘導することを示した。
アポトーシスは、製造業者の指示書に従って、細胞をアネキシンV FITCおよびヨウ化プロピジウム(PI)(BD Pharmingen, San Diego, CA USA)で染色することにより測定した。フローサイトメトリー(FCM)により細胞蛍光を測定した。プログラムCELLQuestを使用して、FACSCalibur計器(励起 488nm、アネキシンVに関して放出530nm、およびPIに関して放出580nm)を用いてFCMおよびデータ解析を実施した。
Chem3Dバージョン5.0および6.0ソフトウェア(CambridgeSoft Corporation
, Cambridge,MA)を用いて、特定の配列の三次元画像を創り出した。原子運動をシュミレートするためにニュートン力学を用いて、最小エネルギーコンホメーションの分子動力学計算(MM2、Allinger N.L., J. Comput. Chem., 1993, 14:755-68) をデフォルト値300°Kで実施して、モデルの温度が増加するにつれ運動エネルギーを付加した。分子動力学が正当である分子動力学の値ならびに温度範囲は言及されている。中心と定義される分子内原子団の非存在または存在を特定するために、三次元モデリングが実施された。電気陰性電荷(リン酸および塩基カルボニル基)および電気陽性電荷(アミノ、アミドまたは3’および5'末端にある水酸基)の空間的配置もまた解析された。分子内原子団が三次元モデルで観察された場合、空間的特性は、オリゴヌクレオチドにおけるリン酸基の局在化、アミン/アミド基の局在化、および水酸基または分子内原子団(複数可)の位置により規定された。得られた構造は、左側の5’末端および右側の3’末端で示される。
コンピュータによる解析とアポトーシス誘導活性との対比結果を表1に纏めた。3〜8個の塩基を含有するオリゴヌクレオチドで、20%未満のアポトーシス値のものは、特定可能な三次元のフレーミングされた中心を保有しない。弱いアポトーシス活性を有する配列の典型例の三次元構造を図3、図4および図5に示す。
コンピュータによる解析とアポトーシス誘導活性との対比結果を表2に纏めた。3〜8個の塩基を含有するオリゴヌクレオチドで、20%より大きく40%未満のアポトーシス活性を示すものは、特定可能なA型またはB型のいずれかの中心を保有した。典型例の三次元構造を図6〜図8に示す。
コンピュータによる解析とアポトーシス誘導活性との対比結果を表3に纏めた。3〜7個の塩基を含有するオリゴヌクレオチドで、41%以上80%以下のアポトーシス活性を示すものは、特定可能なA型またはB型のいずれかの中心を保有した。典型例の三次元構造を図9〜図13に示す。
ホスホジエステル骨格を有する配列GGGTGG(表3および図12)およびホスホロチオエート骨格を有する配列GGGTGG(表1および図5)の活性ならびに三次元コンホメーションの比較により、アポトーシス誘導活性の変化(それぞれ50%および0%)は最初の3つのGの優勢な平面配向に起因した強力な電気陰性度のフレーミングされた中心の損失と相関すること、ならびに前面の底部にあるG4のアミノ基および上面の最上部にあるG5のアミノ基がフレーミングされた中心から最後の2つのGを締め出していることを示している。
3’修飾配列 GGGTGG−リン酸(表3、図9)、5’修飾配列 リン酸−GGGTGG(表3、図11)はすべて、フレーミングされた中心を含有していた。活性中心を含有するオリゴヌクレオチドの3’修飾、5’修飾または3’,5’修飾は、かかる中心の損失を引き起こすコンホメーション変化をもたらさない。
表4の配列を本発明の方法で解析して、それらが中心を保有するかどうかを割り出した。配列が、勝手に20%に設定したアポトーシス誘導能力を保有するかどうかに従って予測を行った。換言すると、アポトーシス活性の予測は20%を上回る活性であることを意味した。続いて、配列をアポトーシス活性に関してin vitroで試験した。結果を表4に示し、アポトーシス活性を予測する際に非常に高い成功率を示す。上記方法は、解析される配列それぞれに関して成功した。これらのデータは、本発明のin silicoでの方法がアポトーシス活性の種々の度合いを有する配列を特定し、それにより生物学的試験に関する配列の選定に優先順位を付けるための基盤を提供することを示す。
Claims (7)
- オリゴヌクレオチド配列の生物活性を予測するコンピュータを使った方法であって、前記オリゴヌクレオチド配列が少なくとも1つの中心を含有するかどうかを判断するために前記オリゴヌクレオチド配列の解析を含む方法。
- 前記解析は、電気陰性度、電気陽性度、分子内水素結合および原子間距離に関して配列を調べることを含む、請求項1に記載の方法。
- オリゴヌクレオチド配列の生物活性を予測するコンピュータを使った方法であって、
ケミカルドローイングソフトウェアを用いて前記配列を描く工程、
描いた配列を誤りに関して点検する工程、
描いた配列の三次元モデルを創り出す工程、
前記三次元モデルのエネルギーを最小化する工程、
化学解析ソフトウェアを用いて分子動力学を算出する工程、
表示手段上に前記三次元モデルの溶媒接近可能表面を表示する工程、
前記三次元モデル中の球状および線状ドメインを特定する工程、
分子内水素結合を特定する工程、
電気陰性中心を形成することが可能なリン酸基を特定する工程、
前記電気陰性中心中の前記リン酸基について電気陽性フレーミングに関して前記三次元モデル中の塩基の空間的配向を評価する工程、
アミノ/アミド基とリン酸基由来の3’および5’水酸基との原子間距離を測定する工程、
および前記配列が前記生物活性を保有するかどうかを予測する工程、
を含む方法。 - アミノ/アミド基とリン酸基由来の3’および5’水酸基との原子間距離を測定する工程とは、
前記中心と関連したリン酸間の、第1の原子間距離Xを測定する工程、
リン酸と関与する塩基中の最も遠い原子との間の、第2の原子間距離αを測定する工程、アミドまたはアミノ基間の最も遠い原子間距離として、第3の原子間距離βを測定する工程、
前記中心の前面から後面の間の、第4の原子間距離Zを測定する工程、
およびリン酸骨格と関与する塩基中の最も遠い原子との間の最大距離として、第5の原子間距離Yを測定する工程、
を含む、請求項3に記載の方法。 - Yが約780〜2200pmであり、Zが約400〜1300pmであり、αが約900〜1500pmであり、βが約300〜1700pmであり、かつXが約700〜1360pmの間である場合に、前記配列に中心が存在する、請求項4に記載の方法。
- 前記生物活性は、細胞増殖の阻害、細胞周期停止またはアポトーシスの誘導である、請求項1または3に記載の方法。
- 前記生物活性に関して前記配列を試験することをさらに含む、請求項1または3に記載の方法。
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