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JP2003327536A - ヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤 - Google Patents

ヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤

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Publication number
JP2003327536A
JP2003327536A JP2002261024A JP2002261024A JP2003327536A JP 2003327536 A JP2003327536 A JP 2003327536A JP 2002261024 A JP2002261024 A JP 2002261024A JP 2002261024 A JP2002261024 A JP 2002261024A JP 2003327536 A JP2003327536 A JP 2003327536A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
salt
pseudoerythromycin
hemiketal
methyl
anhydro
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2002261024A
Other languages
English (en)
Inventor
Satoshi Omura
智 大村
Kiyoko Akagawa
清子 赤川
Toshiaki Sunatsuka
敏明 砂塚
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kitasato Institute
Original Assignee
Kitasato Institute
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kitasato Institute filed Critical Kitasato Institute
Priority to JP2002261024A priority Critical patent/JP2003327536A/ja
Priority to US10/294,587 priority patent/US7034005B2/en
Priority to CA002412065A priority patent/CA2412065A1/en
Priority to RU2002131253/15A priority patent/RU2250770C2/ru
Priority to KR1020020072632A priority patent/KR20030074097A/ko
Priority to AU2002302115A priority patent/AU2002302115B2/en
Priority to DE60204211T priority patent/DE60204211T2/de
Priority to EP02258095A priority patent/EP1350510B1/en
Priority to ES02258095T priority patent/ES2241967T3/es
Priority to PT02258095T priority patent/PT1350510E/pt
Priority to AT02258095T priority patent/ATE295729T1/de
Priority to DK02258095T priority patent/DK1350510T3/da
Priority to CNB021559244A priority patent/CN1183915C/zh
Priority to MXPA02012320A priority patent/MXPA02012320A/es
Publication of JP2003327536A publication Critical patent/JP2003327536A/ja
Priority to HK03108943.8A priority patent/HK1056838B/en
Priority to US11/232,930 priority patent/US20060025357A1/en
Pending legal-status Critical Current

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    • A61K31/7048Compounds having saccharide radicals and heterocyclic rings having oxygen as a ring hetero atom, e.g. leucoglucosan, hesperidin, erythromycin, nystatin, digitoxin or digoxin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
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Abstract

(57)【要約】 【課題】 T細胞、マクロファージあるいは樹状細胞な
どの免疫担当細胞に感染し、免疫系の破壊をもたらすヒ
ト免疫不全症候群ウイルスの感染増殖抑制であり、安価
な化学療法剤によるHIV−1感染患者の治療に有用で
あり、加えてHAART療法において補助剤として臨床
できるヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤
を得るものである。 【解決手段】 ヒト単球由来M型マクロファージにおけ
るHIV−1の感染、増殖抑制作用を有するマクロライ
ド誘導体を有効成分とする、ヒト免疫不全症候群ウイル
スの感染、増殖抑制剤である。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明はT細胞、マクロファージ
あるいは樹状細胞などの免疫担当細胞に感染し、免疫系
の破壊をもたらすヒト免疫不全症候群ウイルス(HIV
−1)の感染増殖抑制に関し、更に詳しくはヒト単球由
来M型マクロファージへのヒト免疫不全症候群ウイルス
の感染及び増殖を抑制するヒト免疫不全症候群ウイルス
の感染、増殖抑制剤に関する。
【0002】
【従来の技術】ヒト免疫不全症候群ウイルス(HIV−
1)は全世界で約4000万人が感染し、このうち後天
性免疫不全症候群(AIDS)発症者は約500万人と
推定されている全世界的な感染症である。1990年代
前半よりHIV−1感染患者の高活性抗レトロウイルス
療法(HAART療法;highly activea
ntiretroviral therapy)が登場
し、臨床の場で応用された結果、AIDS患者の血漿中
のウイルス量の減少と末梢血中のCD4数の回復を認め
るなど、大きな治療効果を挙げている。
【0003】しかし、一方でリンパ網内組織におけるマ
クロファージ(MΦ)指向性ウイルスの残存が認められ
ること(Tae−Wook Chun,Richard
T.Davey Jr.,Mario Ostrow
ski,J.Shawn Justement,Del
phine Engel,James I.Mulli
ns & Anthony S.Fauci:Rela
tionship between pre−exis
ting viral reservoires an
d the re−emergence of pla
sma viremia after discont
inuation of highlyactive
anti−retroviral therapy,N
atMed 6:757−761,2000及びLew
is K.Schrager,M.Patricia
D’Souza;Cellular and Anat
omical Reservoirs of HIV−
1 in Patients Receiving P
otent AntiretroviralCombi
nation Therapy,Jama 280:6
7−71,1998)、HAART療法を受けた患者に
おいて約半年から数年にかけてHAART療法に抵抗性
を示すいわゆる耐性株の出現なども危惧されている。
【0004】さらにHAART療法は治療費が高額であ
ることから、先進国での患者に優先的に投与され、全世
界のHIV患者の約80%以上を抱える発展途上国では
経済格差のためこの治療の恩恵を受けることができず、
ウイスルの国際的拡散の阻止に貢献しえないこと、また
耐性株の出現を抑えるため多剤併用療法の継続が必要と
なり、腹部症状や造血器障害による治療脱落者も報告さ
れていることから、HAART療法の医学的・社会的適
応限界が指摘されている。
【0005】HIV−1はT細胞やマクロファージ、樹
状細胞等の免疫担当細胞に感染し、免疫系の破壊をもた
らすウイルスであるが、近年の多くの研究結果から、H
IV−1の感染維持と病原性発現に、マクロファージに
おけるHIV−1の感染と増殖が重要な役割を果してい
ることが明らかになりつつあり(SwinglerS,
Mann A,Jacque J,Brichacek
B,Sasseville VG,Williams
K,Lackner AA,JanoffEN,Wa
ng R,Fisher D,Stevenson
M.:HIV−1 Nef mediates lym
phocyte chemotaxis and ac
tivation by infected macr
ophages.Nat Med 5:997−100
3,1999)、それ故、マクロファージにおけるHI
V−1の感染、増殖を抑制する新規薬剤の開発がつよく
求められている。
【0006】今まで多くのマクロファージにおけるHI
V−1の感染実験が行われてきたが、マクロファージ細
胞株を用いたものが多く、これら細胞株を用いた実験結
果は必ずしも生体内の組織マクロファージの機能を反映
していなかった。赤川らは、HIV−1の増殖を促すマ
クロファージと増殖を抑制するマクロファージの2種類
のマクロファージをヒト単球から分化誘導することに成
功し、また、増殖を抑制しているマクロファージはヒト
の肺胞マクロファージのモデルになること等を明らかに
することにより、より生体内のマクロファージに似た系
でHIV−1の感染、増殖、増殖抑制機構の解析を行う
ことを可能にした(赤川清子、小室巌、持田恵子:単球
由来マクロファージの多様性、炎症と免疫Vol.8
360−366,2000、Komuro,I.,Ke
icho,N.,Iwamoto,I.,and Ak
agawa,K.S.:Human alveolar
macrophages and GM−CSF−in
duced monocyte−derived ma
crophages are resistant t
o H2 2 via their high bas
al− andinducible−levels o
f catalase activity,J.Bio
l.Chem.276:24360−24364,20
01、Hashimoto,S.,Komuro,
I.,Yamada,M.,Akagawa,K.
S.:IL−10 inhibits GM−CSF−
dependent human monocyte
survival at theearly stag
e of the culture and inhi
bits the generation of ma
crophages,J.Immunol.167:3
619−3625,2001、Hashimoto,
S.,Yamada,M.,Motoyoshi,K.
and Akagawa,K.S.:Enhancem
ent of macrophage−colony−
stimulating factor−induce
d growth and differentiat
ion of human monocytes by
interleukin−10,BLOOD 89:
315−321,1997、Akagawa,K.
S.,Takasuka,N.,Nozaki,Y.,
Komuro,I.,Miyuki,A.,Ueda,
M.,Naito,M.and Takahashi,
K.,:Generationof CD1+ Re1B
+ Dendritic Cells and TRAP
−positive Osteoclast−like
Multi−nucleated Giant Ce
lls from Human Monocytes,
BLOOD 88:4029−4039,1996、及
びMatsuda,S.,Akagawa,K.,Ho
nda,M.,Yokota,Y.,Takebe,
Y.and Takemori,T.,:Suppre
ssionof HIV replication i
n human monocyte−derived
macrophages induced by gr
anulocyte/macrophage colo
ny−stimulating factor,AID
S Research and Human Retr
oviruses,11:1131−1138,199
5)。
【0007】一方、マクロライドはびまん性汎細気管支
炎(DBP)や耳鼻科領域の病気の治療に有効であるこ
と、その作用は抗生物質としての作用の他、宿主細胞の
抗炎症作用誘導などによることが知られている(炎症・
免疫とマクロライド UPTO DATE,清水喜八
郎、大村智監修、工藤翔二編:医薬ジャーナル社、大
阪、1996)。特に各組織のマクロライドの蓄積性を
検討したところ、末梢血リンパ球と比較して、マクロフ
ァージでは数百倍から一千倍に達するという報告もあ
り、これら薬剤のマクロファージに対する作用は重要と
考えられる。
【0008】以上の背景のもと、本発明者らはHAAR
T療法の欠点を補い、マクロファージにおけるHIV−
1の感染増殖を抑制し、リンパ網内系組織からのマクロ
ファージ指向性HIV−1の排除を目指す薬剤の開発、
特に世界的レベルから見たときのエイズに対する治療戦
略として、安価な化学療法剤が開発されればHIV−1
感染患者の治療に有用であると考えた。
【0009】
【発明が解決しようとする課題】そこで、本発明者らは
既知の各種マクロライド誘導体にヒト単球由来M型マク
ロファージにおけるHIV−1の感染、増殖を阻止する
作用があるか否かを鋭意検討したところ、意外にもヒト
単球由来M型マクロファージにおけるHIV−1の感
染、増殖を阻止する作用があることを見出し、その増殖
の阻止メカニズムはウイルス増殖に必要なマクロファー
ジのチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制とP38
MAPKの活性化の抑制によることを明らかにし、本発
明を完成するに至った。本発明の目的は、安価な化学療
法剤によるHIV−1感染患者の治療に有用であり、加
えてHAART治療において補助剤として臨床できるヒ
ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤を提供す
るものである。
【0010】
【課題を解決するための手段】本発明はHIV−1の増
殖抑制作用を有するマクロライド誘導体を有効成分とす
る、ヒト免疫不全症候群ウイルスの増殖抑制剤である。
本増殖抑制剤はヒト単球由来M型マクロファージにおけ
るHIV−1の増殖抑制作用を有し、ウイルス増殖抑制
は増殖に必要なマクロファージのチロシンカイネースH
ck蛋白の発現抑制とP38MAPKの活性化を抑制す
る作用に基づくものである。このようなHIV−1の増
殖抑制作用を有する既知のマクロライド誘導体であれば
全て本発明に包含される。
【0011】本発明において用いられる好ましいマクロ
ライド誘導体としては、オキサシクロテトラデカン−
2,10−デイオン,4[(2,6−ジデオキシ−3−
O−メチル−α−L−リボ−ヘキソピラノシル)オキ
シ]−14−エチル−7,12,13−トリヒドロキシ
−3,5,7,9,11,13−ヘキサメチル−6−
[[3,4,6−トリデオキシ−3−(ジメチルアミ
ノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノシル]オキシ];
11−(1’−ヒドロキシプロピル)−3−[2,6−
ジデオキシ−3−C−メチル−α−L−リボ−ヘキソピ
ラノシル]オキシ]−5−[(3,4,6−トリデオキ
シ−3−(ジメチルアミノ)−β−D−キシロ−ヘキソ
ピラノシル)オキシ]−2,4,6,8,11,14−
ヘキサメチル−10,13,15−トリ−オキサトリシ
クロ[9.2.1.1.9.6 ]−ペンタデカン−1−ワ
ン;6,15,16−トリオキサトリシクロ[10.
2.1.11,4]ヘキサデカン,エリスロマイシン誘
導体;4,13−ジオキサビシクロ[8.2.1]トリ
デック−12−エン−5−ワン,7−[(2,6−ジデ
オキシ−3−C−メチル−α−L−リボ−ヘキソピラノ
シル)オキシ]−3−(1,2−ジヒドロキシ−1−メ
チルブチル)−2,6,8,10,12−ペンタメチル
−9−[[3,4,6−トリデオキシ−3−(ジメチル
アミノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノシル]オキ
シ];オキサシクロテトラデカン−2,10−ディオ
ン,4−[(2,6−ジデオキシ−3−O−メチル−α
−L−リボ−ヘキソピラノシル)オキシ]−14−エチ
ル−12,13−ジヒドロキシ−7−メトキシ−3,
5,7,9,11,13−ヘキサメチル−6−[[3,
4,6−トリデオキシ−3−(ジメチルアミノ)−β−
D−キシロ−ヘキソピラノシル]オキシ];デ(3’−
N−メチル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシ
ンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−
N−メチル)−3’−N−スルフォニル−8,9−無水
−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
またはその塩;デ(3’−N−メチル)−[3’−N−
(3−ヒドロキシ−1−プロピル)]−8,9−無水−
シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールま
たはその塩;デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2
−アセトキシエチル)−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
(3’−N−メチル)−3’−N−シアノメチル−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩;デ(3’−N−メチル)−3’
−N−(2−フルオロエチル)−8,9−無水−シュー
ドエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはそ
の塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−8,9−無水−
シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールま
たはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−エチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’
−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジエチル−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)
−3’−N−アリル−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−
デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジアリ
ル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,
9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−
メチル)−3’−N−プロパルギル−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’
−N,N−ジプロパルギル−8,9−無水−シュードエ
リスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその
塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−プロピ
ル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,
9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−
メチル)−3’,3’−N,N−ジプロピル−8,9−
無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタ
ールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−
3’−N−ヘキシル−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス
−デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジヘ
キシル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−
N−メチル)−3’−N−ベンジル−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’
−N,N−ジベンジル−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビ
ス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2−プロピ
ル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−
N−メチル)−3’,3’−N,N−ジ−(10−ブロ
モ−1−デカニル)−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス
−デ(3’−N−メチル)−3’−N−アセチル−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩;デ(3’−ジメチルアミノ)−
3’−ピペリジノ−8,9−無水−シュードエリスロマ
イシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
(3’−ジメチルアミノ)−3’−ピロリジノ−8,9
−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケ
タールまたはその塩;デ(3’−ジメチルアミノ)−
3’−モルフォリノ−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
(3’−ジメチルアミノ)−3’−[ヘキサヒドロ−1
(1H)−アゼピニル]−8,9−無水−シュードエリ
スロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;
デ(12−ヒドロキシ)−デ[12−(1−ヒドロキシ
プロピル)]−12−ヒドロキシオキシム−8,9−無
水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケター
ルまたはその塩;デ[12−(1−ヒドロキシプロピ
ル)]−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ(12−ヒドロ
キシ)−デ[12−(1−ヒドロキシプロピル)]−1
2−アミノ−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
A 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−N
−メチル)−デ[12−(1−ヒドロキシプロピル)]
−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9
−ヘミケタールまたはその塩;デ(3−O−クラジノ
ル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;及びデ(3−O−
クラジノシル)−デ(3’−N−メチル)−8,9−無
水−シュードエリスロマイシンA6,9−ヘミケタール
またはその塩が挙げられる。
【0012】本発明を理解するために、マクロファージ
指向性HIV−1のヒト単球由来マクロファージにおけ
る増殖抑制機構について説明する。
【0013】[I]実験材料と実験方法 (1−1)ヒト単球由来マクロファージの作成と肺胞マ
クロファージ 単球は既に報告したように(Hashimoto,
S.,Komuro,I.,Yamada,M.,Ak
agawa,K.S.:IL−10 inhibits
GM−CSF−dependent human m
onocyte survival at the e
arly stage of the culture
and inhibits the generat
ion ofmacrophages,J.Immun
ol.167:3619−3625,2001)磁気細
胞分離システム(MACS)(Miltenyi Bi
otec社、独国)により、抗ヒトCD14抗体マイク
ロビーズ(MiltenyiBiotec社、独国)を
用い、健常人ボランテイアのバフィーコートよりリンホ
プレップ(Nycomed社、ノルウエイー国)にて分
離したヒト末梢血単核球(PMBC)より、ポジテイブ
セレクションにて回収した。
【0014】単球由来マクロファージは回収した単球を
M−CSF(macrophagecolony−st
imulating factor)(104 U/m
l、森永乳業より供与)および顆粒球、マクロファージ
コロニー刺激因子(GM−CSF、granulocy
te−macrophage colony−stim
ulating factor)(500U/ml、大
阪、日本シェーリングプラウ社より供与またはR&S
genzyme−TECHNE社より入手可能)存在下
にFCS10%添加RPMI1640培地(日水製薬
社、東京)(以後培地と称する)で、7〜8日培養する
ことにより作成した。
【0015】ヒト単球より、M−CSFで分化誘導し作
成したマクロファージはM型マクロファージ(M型MΦ
もしくはM−MΦ)と称し、またヒト単球よりGM−C
SFにて分化誘導し作成したマクロファージはGM型マ
クロファージ(GM型MΦもしくはGM−MΦ)と称
し、肺胞マクロファージ(肺胞MΦもしくはA−MΦ)
は健常人ボランテイアの肺胞洗浄により得た肺胞洗浄液
中の細胞を回収し培地に浮遊後、プラスチックへ粘着さ
せ、非粘着細胞を洗いのぞいたあとの粘着細胞を肺胞M
Φとした。
【0016】(1−2)HIV−1のマクロファージへ
の感染 HIV−1のマクロファージへの感染は、M型MΦ、G
M型MΦ及び肺胞MΦ(2.5×105 /wellに調
整、Flacon No3043:Becton Di
ckinson Labware社、米国)に、マクロ
ファージ指向性ウイルス株であるHIV−1JR-FL とH
IV−1BAL を低濃度(p24抗原価50ng/ml、
TCID503000/mlのウイルスを最終濃度100
pg/ml)で2時間接触感染させた後、マクロファー
ジに未吸着のウイルスを洗い除き、新鮮培地を加えて培
養した。尚、M型MΦの場合の培地はM−CSF(10
4U/ml)を、GM型MΦの場合はGM−CSF(5
00U/ml)を添加した培地を用いた。
【0017】接触感染に用いたウイルス量はHIV−1
Carrier患者の肺組織におけるウイルス量が数
十pg/ml〜数百pg/mlであり、感染した肺胞M
Φでのウイルス量は104 個に数コピーであることから
(Nakata,K.,Weiden,M.,Hark
in,T.,Ho,D.,and Rom,W.N.
(1995).Low copy number an
d limited variability of
proviral DNA in alveolar
macrophages from HIV−1−in
fected patients:evidence
for genetic differences i
n HIV−1 between lung and
bloodmacrophage populatio
ns.Mol Med 1,747−757)、本実験
例でのウイルス量をこのCarrier期のレベルにあ
わせて行った。
【0018】(1−3)HIV−1の感染・増殖の測定 ウイルスの増殖は、感染後培養上清中に放出されるウイ
ルス粒子を2種類の抗p24抗体(Nu24と10B
5)を用いたサンドイッチELISA法により検討した
(Tunetugu−Yokota,Y.,Akaga
wa,K.,Kimoto,H.,Suzuki,
K.,Iwasaki,M.,Yasuda,S.,H
ausser,G.,Hultgren,C.,Mey
erhans,A.,and Takemori
T.:Monocyte−derivedcultur
ed dendritic cells are su
sceptible to human immuno
deficiency virusinfection
and transmit virus to re
sting T cells in the proc
ess of nominal antigen pr
esentation.J.Virology,69:
4544−4547,1995)。LTR(HIV l
ong terminal repeat(LTR))
−gag遺伝子のプライマーとして下記のJAM62と
JAM65を用いた。また、nested PCRの内
部プライマーとしては下記のJAM63とJAM64を
用いた。
【0019】JAM62;5’−GCTTCAAGTA
GTGTGTGCCCGTCTG−3’ JAM65;5’−AATCGTTCTAGCTCCC
TGCTTGCCC−3’ JAM63;5’−GTGTGACTCTGGTAAC
TAGAGATCC−3’ JAM64;5’−CCGCTTAATACTGACG
CTCTCGCAC−3’
【0020】(1−4)チロシンカイネースHck蛋白
及び転写因子C/EBPβ蛋白の発現の測定 マクロファージにおけるチロシンカイネースHck蛋白
及び転写因子C/EBPβ蛋白の発現は、マクロファー
ジをSDS−PAGEサンプルバッファーに可溶化後、
10%SDS−ポリアクリルアミド電気泳動を行い、そ
の後ゲル上の蛋白をイモビロンP膜(ミリポア社、米
国)にトランスファーし、これら蛋白に対する抗体を用
いてウエスタンブロットにより検討した。チロシンカイ
ネースHck蛋白に対する抗体(N−30)及びC/E
BPβ蛋白に対する抗体(C−19)は、サンタクルー
ズ社(米国)より購入した。ウエスタンブロットはAm
ersham ELC Regent(Amersha
m International plc,Bucki
nghamshire,英国)を用いて検出した。バン
ドの強さは、PSL(photostimulatin
g luminescence)値(A/mm2 )で表
した。
【0021】(1−5)チロシンカイネースHck蛋白
及び転写因子C/EBPβ蛋白のアンチセンスによるマ
クロファージの処理 チロシンカイネースHck蛋白及びC/EBPβ蛋白の
アンチセンス(AS)、これらに対応したセンス(S)
及び転写翻訳に無関係なノンセンス(NS)オリゴヌク
レオチドプローブとしては下記のものをそれぞれ使用し
た。
【0022】phosphorothioate−mo
dified AS−Hck;5’−TTCATCGA
CCCCATCCTGGC−3’ phosphorothioate−modified
S−Hck;5’−GCCAGGATGGGGTCG
ATGAA−3’ phosphorothioate−modified
NS−Hck;5’−CCATATTTCCCGCT
CGCGTG−3’ phosphorothioate−modified
AS−C/EBPβ;5’−CAGGCGTTGCA
TGAACGCGG−3’ phosphorothioate−modified
S−C/EBPβ;5’−CCGCGTTCATGC
AACGCCTG−3’ phosphorothioate−modified
NS−C/EBPβ;5’−CCAGAGAGGGC
CCGTGTGGA−3’
【0023】これらのプローブはリポフェクチン(Li
pofectin、Life Technology
社、米国)を5μMの濃度に溶解した無血清RPMI1
640培地に室温で30分間溶解した後、10%FCS
添加RPMI1640培地と共にマクロファージに添加
し(最終濃度2μM)、37℃24時間培養した。尚、
対照群としてはカチオニン剤であるリポフェクチンのみ
で処理した。その後、細胞を培地で洗浄し、オリゴヌク
レオチドを含まない10%FCS添加RPMI1640
培地を加え、更に24時間培養後、HIV−1の感染を
行った。
【0024】(1−6)P38MAPK及びERK1/
2の活性化の測定 P38MAPK及びERK1/2の活性化は、P38M
APK抗体、抗ERK1/2抗体、抗チロシンリン酸化
P38MAPK抗体及び抗チロシンリン酸化ERK1/
2抗体(New England Biolabs,I
nc.米国)を用い、これら分子のリン酸化反応をウエ
スタンブロットにより調べた。
【0025】[2]結果 (2−1)M型MΦ及びGM型MΦにおけるマクロファ
ージ指向性HIV−1株の増殖応答性 (2−1−1)HIV−1感染M型MΦとGM型MΦに
おける培養上清中のp24蛋白量 M型MΦとGM型MΦにHIV−1JR-FL 株およびHI
V−1BAL 株を感染させ14日間培養した。定時的にこ
れらマクロファージの培養上清中のp24蛋白量を検討
した。いずれのHIV−1株においても、M−MΦにお
いてのみ、培養上清にp24蛋白が認められた(図1
(A)、(B)参照)。
【0026】(2−1−2)HIV−1感染M型MΦと
GM型MΦにおける細胞変性 HIV−1JR-FL 株及びHIV−1BAL 株を感染させた
M−MΦとGM−MΦでの形態的観察を経時的に行った
ところ、ウイルスを産生するM−MΦにおいてのみ培養
2日目より細胞集合化(cluster)と細胞融合
(cell fusion)の形成が認められ、培養4
〜7日目頃より多核巨細胞(MGC:multinuc
leatic giant cells)の形成が認め
られた(図2(A)参照)。一方、ウイルス産生を認め
ないGM−MΦにおいては形態的変化を認めなかった
(図2(B)参照)。これらの結果は、マクロファージ
指向性HIV−1株感染時のマクロファージにおけるc
lustering、cell−fusion及びMG
C形成などの細胞変性効果はウイルス増殖の判定の指標
にできることを示唆する。
【0027】(2−1−3)HIV−1感染M型MΦと
GM型MΦにおける細胞内p24蛋白の分布の解析 M−MΦとGM−MΦにHIV−1JR-FL 及びHIV−
BAL 株を感染させ、感染8日目にp24抗体による免
疫染色を行ったところ、M−MΦにおいてはMGCとそ
の周囲の細胞にp24蛋白の発現が認められた(図3
(A)参照)。一方、GM−MΦにおいてはp24蛋白
の発現は認められなかった(図3(B)参照)。これら
の結果は、GM型MΦにおけるウイルス産生抑制機構は
ウイルス粒子の細胞内形成(forming)や発芽形
成(budding)の段階以前での抑制機構と推定さ
れた。
【0028】(2−1−4)HIV−1感染M型MΦと
GM型MΦにおけるウイルスDNAの検出 M−MΦとGM−MΦにHIV−1JR-FL 株およびHI
V−1BAL 株を感染させ、感染2日後にウイルスDNA
形成をLTR−gagプライマーを用いたnested
PCR法にて調べた結果、ウイルスの増殖を認めたM
−MΦ及びウイルスの増殖を認めなかったGM−MΦの
いずれにおいてもウイルスDNA形成が検出された(図
4(A)及び(B)参照)。これらの結果は、ウイルス
の増殖を認めなかったGM型MΦでもウイルスの細胞内
への進入とRNAからDNAへの変換は起きていること
を示しており、GM型MΦにおけるウイルス産生抑制機
構がウイルスDNA形成以後にあることを示している。
【0029】(2−1−5)M型MΦとGM型MΦにお
けるチロシンカイネースHck蛋白及びC/EBPβ蛋
白の発現とHIV−1感染による発現の変化 ヒト単球由来M型MΦはHIV−1の増殖を強く誘導
し、GM型MΦはウイルスの増殖を抑制することから、
これら両マクロファージにおけるHIV−1感染感受性
の違いが宿主蛋白の発現の違いによるものか否か検討し
た。その結果、チロシンカイネースHck蛋白と転写因
子C/EBPβ蛋白の発現が両マクロファージで異なる
ことが明らかになった。
【0030】ウイルスが感染していない時、チロシンカ
イネースHck蛋白はM−MΦでは発現が高く、GM−
MΦでは発現は低かった(図5参照)。HIV−1BAL
株感染2日目、M−MΦのチロシンカイネースHck蛋
白の発現は増強したが、GM−MΦのチロシンカイネー
スHck蛋白の発現は逆に低下した(図5参照)。一
方、ウイルスが感染していない時のC/EBPβ蛋白の
発現は、M−MΦでは高分子型(37kDa)のものの
みが発現していたが、GM−MΦでは高分子型と低分子
型(23kDa)の両方の蛋白の発現が認められた(図
6参照)。HIV−1BAL 株感染2日後、M−MΦのC
/EBPβ蛋白の発現は変化を認めなかったが、GM−
MΦでは低分子型C/EBPβ蛋白の発現が著明に増加
し、高分子型と低分子型比(L/S ratio)の変
化が誘導された(図6参照)。
【0031】(2−1−6)ヒト肺胞MΦのHIV−1
感染感受性の検討とチロシンカイネースHck蛋白及び
C/EBPβ蛋白の発現 ヒト単球よりGM−CSFで誘導したGM型MΦは、ヒ
トの肺胞マクロファージと形態、表面マーカーの発現、
及び活性酸素産生能、カタラーゼの発現などで似ている
ことを明らかにした(赤川清子、小室巌、持田恵子:単
球由来マクロファージの多様性、炎症と免疫 Vol.
8 360−366,2000、Akagawa,K.
S.,Takasuka,N.,Nozaki,Y.,
Komuro,I.,Miyuki,A.,Ueda,
M.,Naito,M.andTakahashi,
K.:Generation of CD1+ Re1B
+Dendritic Cells and TRAP
−positive Osteoclast−like
Multi−nucleated GiantCel
ls from Human Monocytes,B
LOOD 88:4029−4039,1996、及び
Komuro,I.,Keicho,N.,Iwamo
to,I.,and Akagawa,K.S.:Hu
manalveolar macrophages a
nd GM−CSF−induced monocyt
e−derived macrophages are
resistant to H2 2 via the
ir high basal− and induci
ble−levels of catalase ac
tivity,J.Biol.Chem.276:24
360−24364,2001)。
【0032】そこで、単球由来GM型MΦとヒト肺胞M
ΦのHIV−1感染感受性が似ているか否か検討した。
HIV−1BAL 株を肺胞MΦ(A−MΦ)に感染後、ウ
イルスDNAをnested PCR法にて測定し、ま
たウイルスの増殖は培養上清中のp24蛋白量をELI
SAで測定した。ウイルスDNAは感染後調べたいずれ
の時期にも認められた(図7(B)参照)が、培養14
日目まで培養上清中にp24蛋白を検出できずウイルス
の産生を認めなかった(図7(A)参照)。
【0033】また、肺胞MΦのチロシンカイネースHc
k蛋白とC/EBPβ蛋白の発現をウエスタンブロット
で検討した結果、ウイルス感染に伴いチロシンカイネー
スHck蛋白の発現低下とC/EBPβ蛋白のアイソフ
ォームの発現変化、即ち低分子型C/EBPβ(23k
Da)の発現が著明に増加し、L/S ratioの低
下が認められた(図8参照)。これらの結果は、ヒトの
肺胞MΦとヒト単球由来GM型MΦにけるウイルス産生
抑制機構が同一である可能性が高いことを示唆してい
る。
【0034】(2−1−7)チロシンカイネースHck
蛋白に対するアンチセンスオリゴヌクレオチド処理M型
MΦにおけるHck蛋白の発現低下とHIV−1の増殖
抑制 チロシンカイネースHck蛋白に対するアンチセンス
(Hck−AS)で24時間前処理した後、更に24時
間培養したM−MΦにおけるチロシンカイネースHck
蛋白の発現を検討した結果、対照群(L)と比較して有
意にチロシンカイネースHck蛋白の発現が低下してい
た(図9参照)。しかし、センスプローブ(Hck−
S)や無関係なプローブ(Hck−NS)で処理したM
−MΦではチロシンカイネースHck蛋白の発現の抑制
は認められなかった(図9参照)。
【0035】各種オリゴヌクレオチドで前処理したこれ
らのM型MΦにHIV−1BAL 株を感染し、感染2日後
のチロシンカイネースHck蛋白の発現を調べた結果、
アンチセンス(Hck−AS)を添加した群でのみチロ
シンカイネースHck蛋白の発現低下が認められ、セン
スプローブ(Hck−S)や無関係なプローブ(Hck
−NS)で処理したM型MΦではチロシンカイネースH
ck蛋白の発現抑制は認められなかった(図10参
照)。また感染4、7及び10日後の培養上清中のp2
4蛋白量を調べた結果、アンチセンス(Hck−AS)
で処理したM型MΦでは、何れの時点でも有意なp24
蛋白量を認めなかったが、センスプローブ(Hck−
S)や無関係なプローブ(Hck−NS)で処理したM
型MΦでは、リポフェクチンのみで処理した対照群
(L)と同じようにp24蛋白量の経時的増加が認めら
れた(図10参照)。これらの結果は、M型MΦにおけ
るチロシンカイネースHck蛋白の発現がM型MΦにお
けるHIV−1の増殖に必要であることを示している。
【0036】(2−1−8)C/EBPβアンチセンス
オリゴヌクレオチド処理GM型MΦにおけるC/EBP
βの発現とHIV−1の増殖応答 C/EBPβに対するアンチセンス(C/EBPβ−A
S)で24時間前処理した後、更に24時間培養したG
M型MΦ、及びこのマクロファージにHIV−1BAL
を感染させた2日後のGM型MΦでは、高分子アイソフ
ォーム(37kDa)の発現が比較的維持されたのに対
し、低分子型アイソフォーム(23kDa)の発現が顕
著に低下し、L/S ratioの増加が認められた
(図11参照)。また、C/EBPβ−AS前処理GM
型MΦへのHIV−1の感染はウイルスの増殖を誘導し
培養上清中にp24蛋白が認められた(図12参照)。
このHIV−1増殖促進効果やC/EBPβの発現変化
はC/EBPβ−SやC/EBPβ−NSを添加した群
には認められなかった(図11及び図12参照)。
【0037】以上の実験結果から、ヒト単球由来M型M
ΦとGM型MΦは、マクロファージ指向性HIV−1に
対する感染感受性が異なり、M型MΦではウイルスの増
殖が強く誘導され、GM型MΦでは逆にウイルスの増殖
は抑制されることが明らかとなった。また、M型MΦと
GM型MΦにおけるHIV−1の増殖パターンの違い
は、これら細胞におけるチロシンカイネースHck蛋白
および転写因子C/EBPβ蛋白の高分子型アイソフォ
ームと低分子型アイソフォームの発現の違いに一致す
る。そして、アンチセンスオリゴヌクレオチドを用いて
チロシンカイネースHck蛋白とC/EBPβ蛋白のア
イソフォームの発現を特異的に制御することにより、M
型MΦでのウイルス産生を完全に制御し、逆にGM型M
Φでのウイルス産生を誘導することができた。
【0038】これらの結果より、チロシンカイネースH
ck蛋白はM型MΦにおけるHIV−1の増殖に必須で
あり、C/EBPβ蛋白の低分子型はGM型MΦにおけ
るHIV−1の増殖抑制に重要な役割を果していること
が明らかとなった。また、ヒトの肺胞MΦのHIV−1
の感染感受性とチロシンカイネースHck蛋白とC/E
BPβ蛋白の発現の解析から、ヒトの肺胞MΦとヒト単
球由来GM型MΦにおけるHIV−1増殖抑制機構が同
一であることから、GM型MΦでの解析が生体組織での
肺胞MΦの解析につながる可能性が高いと考えられる。
これらの実験結果は、ヒト単球由来M型MΦにおけるH
IV−1増殖機構を解析することが、HIV−1増殖抑
制作用を有する薬剤の開発の基礎実験系として有用であ
ることを示している。
【0039】以上の結果を踏まえて、ウイルス増殖に必
要なマクロファージのチロシンカイネースHck蛋白の
発現抑制とP38MAPKの活性化抑制作用を有する好
ましいマクロライド誘導体としては下記の物質が挙げら
れ、これらの物質は購入あるいは文献記載の方法によっ
て容易に入手可能である。
【0040】オキサシクロテトラデカン−2,10−ジ
オン,4[(2,6−ジデオキシ−3−O−メチル−α
−L−リボ−ヘキソピラノシル)オキシ]−14−エチ
ル−7,12,13−トリヒドロキシ−3,5,7,
9,11,13−ヘキサメチル−6−[[3,4,6−
トリデオキシ−3−(ジメチルアミノ)−β−D−キシ
ロ−ヘキソピラノシル]オキシ];Oxacyclot
etradecane−2,10−dione,4
[(2,6−dideoxy−3−O−methyl−
α−L−ribo−hexopyranosyl)ox
y]−14−ethyl−7,12,13−trihy
droxy−3,5,7,9,11,13−hexam
ethyl−6−[[3,4,6−trideoxy−
3−(dimethylamino)−β−D−xyl
o−hexopyranosyl]oxy](シグマ社
製、米国);以下EMと称する。
【0041】11−(1’−ヒドロキシプロピル)−3
−[2,6−ジデオキシ−3−C−メチル−α−L−リ
ボ−ヘキソピラノシル]オキシ]−5−[(3,4,6
−トリデオキシ−3−(ジメチルアミノ)−β−D−キ
シロ−ヘキソピラノシル)オキシ]−2,4,6,8,
11,14−ヘキサメチル−10,13,15−トリ−
オキサトリシクロ[9.2.1.1.9.6 ]−ペンタデ
カン−1−ワン;11−(1’−hydroxypro
pyl)−3−[2,6−dideoxy−3−C−m
ethyl−α−L−ribo−hexopyrano
syl]oxy]−5−[(3,4,6−trideo
xy−3−(dimethylamino)−β−D−
xylo−hexopyranosyl)oxy]−
2,4,6,8,11,14−hexamethyl−
10,13,15−tri−oxatricyclo
[9.2.1.1.9.6 ]−pentadecane−
1−one(P.Kurath,P.H.Jones,
R.S.Egan,and T.J.Perun,Ex
operimentia 27,362(1971)参
照);以下EM201と称する。
【0042】6,15,16−トリオキサトリシクロ
[10.2.1.11,4]ヘキサデカン,エリスロマ
イシン誘導体,または6,9,12−アンヒドロエリス
ロマイシンA;6,15,16−Trioxatric
yclo[10.2.1.11,4]hexadeca
ne,erythromycin derivativ
e,or 6,9,12−Anhydroerythr
omycin A(P.Kurath,P.H.Jon
es,R.S.Egan,and T.J.Peru
n,Exoperimentia 27,362(19
71)参照);以下EM202と称する。
【0043】4,13−ジオキサビシクロ[8.2.
1]トリデック−12−エン−5−ワン,7−[(2,
6−ジデオキシ−3−C−メチル−α−L−リボ−ヘキ
ソピラノシル)オキシ]−3−(1,2−ジヒドロキシ
−1−メチルブチル)2,6,8,10,12−ペンタ
メチル−9−[[3,4,6−トリデオキシ−3−(ジ
メチルアミノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノシル]
オキシ];4,13−Dioxabicyclo[8.
2.1]tridec−12−en−5−one,7−
[(2,6−dideoxy−3−C−methyl−
α−L−ribo−hexopyranosyl)ox
y]−3−(1,2−dihydroxy−1−met
hylbutyl)−2,6,8,10,12−pen
tamethyl−9−[[3,4,6−trideo
xy−3−(dimethylamino)−β−D−
xylo−hyxopyranosyl]oxy](特
開平7−247299号参照);以下EM703と称す
る。
【0044】オキサシクロテトラデカン−2,10−ジ
オン,4−[(2,6−ジデオキシ−3−O−メチル−
α−L−リボ−ヘキソピラノシル)オキシ]−14−エ
チル−12,13−ジヒドロキシ−7−メトキシ−3,
5,7,9,11,13−ヘキサメチル−6−[[3,
4,6−トリデオキシ−3−(ジメチルアミノ)−β−
D−キシロ−ヘキソピラノシル]オキシ];Oxacy
clotetradecane−2,10−dion
e,4−[(2,6−dideoxy−3−O−met
hyl−α−L−ribo−hexopyranosy
l)oxy]−14−ethyl−12,13−dih
ydroxy−7−methoxy−3,5,7,9,
11,13−hexamethyl−6−[[3,4,
6−trideoxy−3−(dimethylami
no)−β−D−xylo−hyxopyranosy
l]oxy](S.Morimoto,Y.Misaw
a,T.Adachi,T.Nagata,Y.Wat
anabe,and S.Omura,J.Antib
iotics 43,286(1990)参照、または
Apin Chemicals Ltd社製(英国)及
び和光純薬工業社製(日本国);以下CAMと称する。
【0045】エリスロマイシン誘導体としては、デ
(3’−N−メチル)−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
(3’−N−メチル)−3’−N−スルフォニル−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩;デ(3’−N−メチル)−
[3’−N−(3−ヒドロキシ−1−プロピル)]−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−N−メチル)−
3’−N−(2−アセトキシエチル)−8,9−無水−
シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールま
たはその塩;デ(3’−N−メチル)−3’−N−シア
ノメチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−N−
メチル)−3’−N−(2−フルオロエチル)−8,9
−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケ
タールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチ
ル)−3’−N−エチル−8,9−無水−シュードエリ
スロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;
ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−
ジエチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’
−N−メチル)−3’−N−アリル−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’
−N,N−ジアリル−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス
−デ(3’−N−メチル)−3’−N−プロパルギル−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチ
ル)−3’,3’−N,N−ジプロパルギル−8,9−
無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタ
ールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−
3’−N−プロピル−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス
−デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジプ
ロピル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−へミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−
N−メチル)−3’−N−ヘキシル−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’
−N,N−ジヘキシル−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビ
ス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−ベンジル−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチ
ル)−3’,3’−N,N−ジベンジル−8,9−無水
−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
またはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−
N−(2−プロピル)−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビ
ス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジ
−(10−ブロモ−1−デカニル)−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;及びビス−デ(3’−N−メチル)−3’−
N−アセチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシ
ンA6,9−ヘミケタールまたはその塩が挙げられる。
【0046】別のエリスロマイシン誘導体としては、デ
(3’−ジメチルアミノ)−3’−ピペリジノ−8,9
−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケ
タールまたはその塩;デ(3’−ジメチルアミノ)−
3’−ピロリジノ−8,9−無水−シュードエリスロマ
イシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
(3’−ジメチルアミノ)−3’−モルフォリノ−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩;及びデ(3’−ジメチルアミ
ノ)−3’−[ヘキサヒドロ−1(1H)−アゼピニ
ル]−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタールまたはその塩が挙げられる。
【0047】更にエリスロマイシン誘導体としては、デ
(12−ヒドロキシ)−デ[12−(1−ヒドロキシプ
ロピル)]−12−ヒドロキシオキシム−8,9−無水
−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
またはその塩が挙げられる。
【0048】更に別のエリスロマイシン誘導体として
は、デ[12−(1−ヒドロキシプロピル)]−8,9
−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケ
タールまたはその塩;デ(12−ヒドロキシ)−デ[1
2−(1−ヒドロキシプロピル)]−12−アミノ−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタールまたはその塩、及びデ(3’−N−メチ
ル)−デ[12−(1−ヒドロキシプロピル)]−8,
9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
ケタールまたはその塩が挙げられる。
【0049】更にまた別のエリスロマイシン誘導体とし
ては、デ(3−O−クラジノシル)−8,9−無水−シ
ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
はその塩;及びデ(3−O−クラジノシル)−デ(3’
−N−メチル)−8,9−無水−シュードエリスロマイ
シンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩が挙げられ
る。
【0050】上述の各種エリスロマイシン誘導体は、本
発明者である大村智、砂塚敏明らによって見出され、新
しい抗炎症剤として期待し得るシュードエリスロマイシ
ン誘導体として国際特許出願され、公開番号WO02/
14338A1として国際公開された。WO02/14
338A1には前述の各種エリスロマイシン誘導体の合
成法及び化学構造が詳細に記載されているが、各シュー
ドエリスロマイシン誘導体の合成法の概略を以下に説明
する。
【0051】シュードエリスロマイシンA エノール
エーテル(EM701)の合成 EM(12.4g)の氷酢酸溶液を室温で2時間攪拌し
た後、炭酸水素ナトリウム水溶液をゆっくり加え中和し
た。反応液はクロロホルムで抽出し有機層を芒硝で脱水
した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。こ
の粗物質を精製してエリスロマイシンA エノール エ
ーテル(7.7g)を得た。続いてこれ(7.6g)の
メタノール溶液に炭酸カリウム(1.4g)を加え2時
間還流した。溶媒を留去後、残渣を炭酸水素ナトリウム
水溶液に溶解しクロロホルムで抽出した。芒硝で脱水し
ろ過・留去後、得られる粗物質をシリカゲルカラムクロ
マトグラフイーで精製してEM701(5.9g)を得
た。
【0052】デ−(3’−N−メチル)−8,9−シュ
ードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM
703)の合成 EM701(6.9g)のメタノール(52.0mL)
−水(13.0mL)溶液に室温下酢酸ナトリウム
(3.9g)とヨウ素(2.5g)を順に少量ずつ加え
た後50℃に昇温して3時間攪拌した。その攪拌の間1
N水酸化ナトリウム水溶液を加えてpHが常に8−9に
なるように調節した。TLCで反応終了を確認した後、
反応液はアンモニア水(7.5mL)−水(200m
L)で希釈し、ジクロロメタンで抽出した。有機層を芒
硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を
得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイ
ーで精製してEM703(4.8g)を得た。
【0053】ビス−デ(3’−N−メチル)−8,9−
無水−シュードエリスロマイシンA6,9−ヘミケター
ル(EM721)の合成 ナトリウム(4.5g)をメタノール(15mL)に加
え、ナトリウムメトキシドのメタノール溶液を調製した
後、EM703(195.4mg)とヨウ素(353.
6mg)を0℃下順次加え3時間攪拌した。TLCで反
応終了を確認した後、チオ硫酸ナトリウム(0.8
g)、アンモニウム水溶液(0.5mL)、水(80m
L)を加えジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で
脱水した後、芒硝をろ過し、溶媒を留去して粗物質を得
た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイー
で精製してEM721(166.3mg)を得た。
【0054】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−エチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM722)の合成 EM721(21.0mg)のジメチルホルムアミド
(1.0mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(26.6μL)とヨウ化エチル(12.2μL)
を加え室温で4時間攪拌した。TLCで反応終了を確認
した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで抽出し
た。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留
去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムク
ロマトグラフイーで精製してEM722(7.0mg)
を得た。
【0055】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジエチル−8,9−無水−シュードエリ
スロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM723)
の合成 EM721(21.0mg)のジメチルホルムアミド
(1.0mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(26.6μL)とヨウ化エチル(12.2μL)
を加え室温で4時間攪拌した。TLCで反応終了を確認
した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで抽出し
た。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留
去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムク
ロマトグラフイーで精製してEM723(10.3m
g)を得た。
【0056】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−アリル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM724)の合成 EM721(117.8mg)とN,N−ジイソプロピ
ルエチルアミン(298.6μL)を加えたジクロロメ
タン(5.7mL)溶液に0℃下、臭化アリル(14
8.3μL)を加え室温へ昇温後2時間攪拌した。TL
Cで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロ
ロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝
をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシ
リカゲルカラムクロマトグラフイーで精製して、EM7
24(21.9mg)を得た。
【0057】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジアリル−8,9−無水−シュードエリ
スロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM725)
の合成 EM721(117.8mg)とN,N−ジイソプロピ
ルエチルアミン(298.6μL)を加えたジクロロメ
タン(5.7mL)溶液に0℃下、臭化アリル(14
8.3μL)を加え室温へ昇温後2時間攪拌した。TL
Cで反応を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメ
タンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ
過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカ
ゲルカラムクロマトグラフイーで精製してEM725
(64.3mg)を得た。
【0058】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−アセチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
A 6,9−ヘミケタール(EM726)の合成 EM721(34.8mg)のジクロロメタン(1.6
mL)溶液に0℃下、無水酢酸(8.4μL)を加え1
0分間攪拌した後室温へ昇温し、更に30分間攪拌し
た。TLCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈
しジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した
後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗
物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製し
て、EM726(33.4mg)を得た。
【0059】デ(3’−N−メチル)−3’−N−スル
フォニル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM727)の合成 EM703(87.6mg)のジクロロメタン(4.2
mL)溶液に0℃下、塩化メタンスルフォニル(9.3
μL)を加え3時間攪拌した。TLCで反応終了を確認
した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで抽出し
た。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留
去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムク
ロマトグラフイーで精製してEM727(37.2m
g)を得た。
【0060】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−プロパルギル−8,9−無水−シュードエリスロマイ
シンA 6,9−ヘミケタール(EM728)の合成 EM721(106.3mg)とN,N−ジイソプロピ
ルエチルアミン(269.3μL)のジクロロメタン
(5.2mL)溶液に3−ブロモプロピン(137.8
μL)を加え室温で24時間攪拌した。TLCで反応終
了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで
抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶
媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカ
ラムクロマトグラフイーで精製してEM728(41.
3mg)を得た。
【0061】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジプロパルギル−8,9−無水−シュー
ドエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM7
29)の合成 EM721(106.3mg)とN,N−ジイソプロピ
ルエチルアミン(269.3μL)のジクロロメタン
(5.2mL)溶液に3−ブロモプロピン(137.8
μL)を加え室温で24時間攪拌した。TLCで反応終
了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで
抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶
媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカ
ラムクロマトグラフイーで精製してEM729(27.
9mg)を得た。
【0062】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−プロピル−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
A 6,9−ヘミケタール(EM730)の合成 EM721(23.5mg)のアセトニトリル(2.3
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(5
9.6μL)と1−ヨードプロパン(33.3μL)を
順次加え80℃で20時間還流した。TLCで反応終了
を確認した後、反応液は水でろ過しジクロロメタンで抽
出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒
を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラ
ムクロマトグラフイーで精製してEM730(5.7m
g)を得た。
【0063】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジプロピル−8,9−無水−シュードエ
リスロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM73
1)の合成 EM721(23.5mg)のアセトニトリル(2.3
mL)溶液のアセトニトリル(2.3mL)溶液にN,
N−ジイソプロピルエチルアミン(59.6μL)と1
−ヨードプロパン(33.3μL)を順次加え80℃で
20時間還流した。TLCで反応終了を確認した後、反
応液は水で希釈しジクロロメタンで抽出した。有機層を
芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質
を得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフ
イーで精製してEM731(12.0mg)を得た。
【0064】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−ベンジル−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
A 6,9−ヘミケタール(EM732)の合成 EM721(88.8mg)とN,N−ジイソプロピル
エチルアミン(450.1μL)のジクロロメタン
(4.3mL)溶液にベンジルクロライド(297.3
μL)を室温で加え96時間攪拌した。TLCで反応終
了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで
抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶
媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカ
ラムクロマトグラフイーで精製してEM732(49.
9mg)を得た。
【0065】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジベンジル−8,9−無水−シュードエ
リスロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM73
3)の合成 EM721(26.8mg)とアセトニトリル(1.3
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(1
35.9μL)とベンジルクロライド(89.7μL)
を順次加え80℃で60時間還流した。TLCで反応終
了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで
抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶
媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカ
ラムクロマトグラフイーで精製してEM733(19.
6mg)を得た。
【0066】デ(3’−ジメチルアミノ)−3’−ピペ
リジノ−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(734)の合成 EM721(16.8mg)のアセトニトリル(4.9
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
2.5μL)と1,5−ジブロモペンタン(33.2μ
L)を順次加え80℃で24時間還流した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM734(1
3.3mg)を得た。
【0067】デ(3’−ジメチルアミノ)−3’−ピロ
リジノ−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM735)の合成 EM721(15.9mg)のアセトニトリル(4.6
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
0.2μL)と1,4−ジプロモブタン(27.6μ
L)を順次加え80℃で24時間還流した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM735(1
1.9mg)を得た。
【0068】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
−(2−プロピル)−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタール(EM736)の合
成 EM721(90.6mg)のアセトニトリル(4.4
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
59.2μL)と2−ブロモプロパン(247.5μ
L)を順次加え60℃で72時間攪拌した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM736(2
5.3mg)を得た。そして、原料のEM721を4
7.1mg回収した。
【0069】デ(3−O−クラジノシル)−8,9−無
水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケター
ル(EM737)の合成 EM701(201.6mg)のジメチルホルムアミド
(5.6mL)溶液にp−トルエンスルホン酸・一水和
物(80.3mg)を加え50℃で8時間攪拌した。T
LCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈し飽和
炭酸水素ナトリウム水溶液でpHを8.0に調節した
後、ジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水し
た後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この
粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製し
てEM737(84.7mg)を得た。
【0070】ビス−デ(3’−N−メチル)3’−N−
ヘキシル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM738)の合成 EM721(80.6mg)のアセトニトリル(3.9
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
08.5μL)と1−ブロモヘキサン(328.7μ
L)を順次加え60℃で24時間攪拌した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM738(3
3.7mg)を得た。そして、原料のEM721を2
4.6mg回収した。
【0071】ビス−デ(3’−N−メチル)3’,3’
−N,N−ジヘキシル−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM739)の
合成 EM721(22.9mg)のアセトニトリル(1.1
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(1
16.0μL)と1−ブロモヘキサン(93.6μL)
を順次加え60℃で72時間攪拌した。TLCで反応終
了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタンで
抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶
媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカ
ラムクロマトグラフイーで精製してEM739(20.
1mg)を得た。
【0072】デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2
−フルオロエチル)−8,9−無水−シュードエリスロ
マイシンA 6,9−ヘミケタール(EM740)の合
成 EM703(70.0mg)のジメチルホルムアミド
(3.3mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(347.7μL)と1−ブロモ−2−フルオロエ
タン(148.6μL)を室温で加え48時間攪拌し
た。TLCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈
しジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した
後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗
物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製して
EM740(36.0mg)を得た。そして、原料のE
M703を25.5mg回収した。
【0073】デ(3’−N−メチル)−3’−シアノメ
チル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM742)の合成 EM703(64.6mg)のジメチルホルムアミド
(3.1mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(320.9μL)とブロモアセトニトリル(12
8.3μL)を室温で加え4時間攪拌した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM742(5
3.1mg)を得た。
【0074】デ(12−ヒドロキシ)−デ[12−(1
−ヒドロキシプロピル)]−12−オキソ−8,9−無
水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケター
ル(EM705)の合成 EM701(508.0mg)のジクロロメタン(2
4.0mL)溶液に四酢酸鉛(508.0mg)を加え
室温で40分攪拌した。TLCで反応終了を確認した
後、反応液は飽和食塩水−飽和炭酸水素ナトリウム水溶
液(1:1v/v)で希釈しジクロロメタンで抽出し
た。有機層を芒硝で脱水後、芒硝をろ過し、溶媒を留去
して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロ
マトグラフイーで精製してEM705(282.7m
g)を得た。
【0075】デ(12−ヒドロキシ)−デ[12−(1
−ヒドロキシプロピル)]−12−ヒドロキシオキシム
−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9
−ヘミケタールまたはその塩(EM743)の合成 EM705(116.5mg)とヒドロキシルアミン塩
酸塩(32.0mg)を加えたエタノール(0.9m
L)溶液にピリジン(0.9mL)を0℃下ゆっくり加
え3時間攪拌した。TLCで反応終了を確認した後、反
応液は水で希釈しジクロロメタンで抽出した。有機層を
芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質
を得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフ
イーで精製してEM743(114.5mg)を得た。
【0076】デ(3’−N−メチル)−3’−N−3−
ヒドロキシ−1−プロピル−8,9−無水−シュードエ
リスロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM74
4)の合成 EM703(68.1mg)のジメチルホルムアミド
(3.3mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(338.3μL)と3−ブロモ−1−プロパノー
ル(175.6μL)を室温で加え48時間攪拌した。
TLCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジ
クロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、
芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質
をシリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製してEM
744(27.7mg)を得た。
【0077】デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2
−アセトキシエチル)−8,9−無水−シュードエリス
ロマイシンA 6,9−ヘミケタール(EM745)の
合成 EM703(21.5mg)のジメチルホルムアミド
(1.0mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルア
ミン(106.8μL)と2−ブロモエチルアセテート
(67.6μL)を室温で加え48時間攪拌した。TL
Cで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロ
ロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝
をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシ
リカゲルカラムクロマトグラフイーで精製してEM74
5(6.0mg)を得た。
【0078】デ[12−(ヒドロキシプロピル)]−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタール(EM746)の合成 −78℃下、EM705(37.7mg)のメタノール
(2.9mL)溶液に水酸化ほう素ナトリウム(21.
8mg)を加え30分間攪拌した。次いで0℃に昇温し
更に30分攪拌した。TLCで反応終了を確認した後、
アセトン(0.5mL)を加えて反応を停止し、反応液
は水で希釈しジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝
で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得
た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイー
で精製してEM746(35.8mg)を得た。
【0079】デ(3’−ジメチルアミノ)−3’−モル
フォリノ−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
6,9−ヘミケタール(EM747)の合成 EM721(18.1mg)のアセトニトリル(2.6
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
5.8μL)とビス(2−ブロモエチル)エーテル(3
3.1μL)を順次加え80℃で24時間攪拌した。T
LCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジク
ロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒
硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質を
シリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製してEM7
47(12.0mg)を得た。
【0080】デ(3’−ジメチルアミノ)−3’−[ヘ
キサヒドロ−1(1H)−アゼピニル]−8,9−無水
−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
(EM748)の合成 EM721(19.5mg)のアセトニトリル(2.8
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエルアミン(4
9.5μL)と1,6−ジブロモヘキサン(43.6μ
L)を順次加え80℃で24時間還流した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM748(1
1.7mg)を得た。
【0081】ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
3’−N,N−ジ(10−ブロモ−1−デカニル)−
8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−
ヘミケタール(EM749)の合成 EM721(18.0mg)のアセトニトリル(2.6
mL)溶液にN,N−ジイソプロピルエチルアミン(4
5.6μL)と1,10−ジブロモデカン(58.9μ
L)を順次加え80℃で36時間還流した。TLCで反
応終了を確認した後、反応液は水で希釈しジクロロメタ
ンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過
し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質をシリカゲ
ルカラムクロマトグラフイーで精製してEM749(1
4.9mg)を得た。
【0082】デ(12−ヒドロキシ)−デ[12−(ヒ
ドロキシプロピル)]−12−アミノ−8,9−無水−
シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
(EM750)の合成 EM743(15.5mg)のエタノール(2.3m
L)溶液に酸化モリブデン(IV)(10.0mg)と
水酸化ほう素ナトリウム(10.5mg)を0℃下加え
4時間攪拌した。TLCで反応終了を確認した後、アセ
トン(0.5mL)を加え反応を停止し、反応液は飽和
食塩水−飽和炭酸水素ナトリウム水溶液(1:1v/
v)で希釈しジクロロメタンで抽出した。有機層を芒硝
で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得
た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマトグラフイー
で精製してEM750(13.4mg)を得た。
【0083】デ(3’−N−メチル)−デ(12−ヒド
ロキシ)−デ−[12−(1−ヒドロキシプロピル)]
−12−オキソ−8,9−無水−シュードエリスロマイ
シンA6,9−ヘミケタール(EM706)の合成 EM701(508.0mg)のジクロロメタン(2
4.0mL)溶液に四酢酸鉛(508.0mg)を加え
室温で40分攪拌した。TLCで反応終了を確認した
後、反応液は飽和食塩水−飽和炭酸水素ナトリウム水溶
液(1:1v/v)で希釈しジクロロメタンで抽出し
た。有機層を芒硝で脱水後、芒硝をろ過し溶媒を留去し
て粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマ
トグラフイーで精製してEM706(71.6mg)を
得た。
【0084】デ(3’−N−メチル)−デ[12−(1
−ヒドロキシプロピル)]−8,9−無水−シュードエ
リスロマイシンA 6.9−ヘミケタール(EM75
1)の合成 EM706(38.8mg)のメタノール(3.0m
L)溶液に水酸化ほう素ナトリウム(22.9mg)を
0℃下加え1時間攪拌した。TLCで反応終了を確認し
た後、アセトン(0.5mL)を加え反応を停止し、反
応液は飽和食塩水−飽和炭酸水素ナトリウム水溶液
(1:1v/v)で希釈しジクロロメタンで抽出した。
有機層を芒硝で脱水した後、芒硝をろ過し溶媒を留去し
て粗物質を得た。この粗物質をシリカゲルカラムクロマ
トグラフイーで精製してEM751(31.4mg)を
得た。
【0085】デ(3−O−クラジノシル)−デ(3’−
N−メチル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシ
ンA 6,9−ヘミケタール(EM754)の合成 EM703(132.4mg)のジメチルホルムアミド
(3.8mL)溶液にp−トルエンスルホン酸・一水和
物(53.9mg)を加え50℃で6時間攪拌した。T
LCで反応終了を確認した後、反応液は水で希釈し飽和
炭酸水素ナトリウム水溶液でpHを8に調節した後ジク
ロロメタンで抽出した。有機層を芒硝で脱水した後、芒
硝をろ過し溶媒を留去して粗物質を得た。この粗物質を
シリカゲルカラムクロマトグラフイーで精製してEM7
54(50.2mg)を得た。
【0086】
【実施例】以下本発明の実施例について具体的に説明す
るが、本発明はこれのみに限定されるものではない。本
発明の増殖抑制効果を示すためマクロライド誘導体とし
てEM、EM201、EM202、EM703、CA
M、EM722、EM730、EM732、EM73
6、EM734、EM735、EM747、EM74
8、EM743、EM746、EM750及びEM75
1を100mMの濃度のDMSOに溶解し、その後培地
で希釈して用いた。尚、マクロライド誘導体を溶解する
のに用いたDMSOのみで処理したM型MΦを対照群と
した。M型MΦとGM型MΦにHIV−1BAL 株を2時
間接触感染させた後、30μMのEM、EM201、E
M202、EM703、CAM、EM722、EM73
0、EM732、EM736、EM734、EM73
5、EM747、EM748、EM743、EM74
6、EM750及びEM751を添加し14日間培養
し、経時的に培養上清中のp24蛋白量を測定した。
【0087】実施例1 本発明で用いたEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMのM型MΦとGM型MΦとにおけるHI
V−1の増殖に対する影響対照群と比較して、EM20
1及びEM703を添加したM型MΦでは培養14日目
において殆どp24蛋白を検出せず、ウイルスの産生が
つよく抑制された(図13参照)。CAMを添加したM
型MΦでは約1/2程度の抑制を認めたが、EMやEM
202を添加した群ではEM201及びEM703と比
較するとつよくはないがウイルスの産生抑制が認められ
た(図13参照)。GM型MΦではEM、EM201、
EM202、EM703及びCAMを添加した群におい
ても、対照群と同様ウイルスの産生をすべての測定時点
で殆ど認めなかった(図14参照)。また、成人の健康
人ボランティア3人より採取したヒト単球由来M型MΦ
を用いた実験においても前記の図13と全く同様の結果
が得られた(図15参照)。
【0088】EM201及びEM703によるM型MΦ
でのHIV−1BAL 株増殖抑制作用は濃度依存的で3μ
M以上ではウイルス産生を完全に阻止した(図16参
照)。300μMでのウイルス増殖は、EM201及び
EM703のみならず他のEM、EM202及びCAM
にも認められたが、対照群でも認められたことにより薬
剤の溶解に用いたDMSOの細胞毒性によることが考え
られたので、以後の実験は30μMで使用することにし
た。
【0089】実施例2 本発明で用いたEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMのHIV−1感染M型MΦの細胞変性に
対する影響 M型MΦにHIV−1BAL 株を2時間接触感染させたの
ち、30μMのEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMを添加培養し細胞の形態を観察した。対
照群及びEM、EM202、CAMを添加した群では実
施例1に示したp24蛋白量の増加と一致してMGC形
成が僅かに認められたが、EM201及びEM703添
加群ではMGC形成などの細胞変性効果は認められなか
った(図17参照)。
【0090】実施例3 本発明で用いたEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMのHIV−1感染M型MΦのHck蛋白
に対する影響 既に述べたように、M型MΦはチロシンカイネースHc
k蛋白を強く発現しており、チロシンカイネースHck
蛋白の発現をアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いて
制御することで、M型MΦにおけるHIV−1の増殖を
抑制することができる。この結果は、チロシンカイネー
スHck蛋白の発現はM型MΦにおけるHIV−1の増
殖に必須であることを示している。EM201やEM7
03はM型MΦのHIV−1の増殖を抑制したことよ
り、これら薬剤で処理したM型MΦではチロシンカイネ
ースHck蛋白の発現が抑制されることが示唆された。
【0091】そこで、M型MΦにHIV−1BAL 株を2
時間接触させた後、30μMのEM、EM201、EM
202、EM703及びCAMを添加培養し、感染2日
後にチロシンカイネースHck蛋白の発現をウエスタン
ブロットで調べた。ウイルスの増殖抑制があまりつよく
なかったEM、EM202及びCAMでは対照群(DM
SOのみで処理)と較べて強くはないがチロシンカイネ
ースHck蛋白の発現抑制は認められた(図18参
照)。ウイルスの増殖抑制作用をつよく認めたEM20
1及びEM703ではチロシンカイネースHck蛋白の
発現が強く抑制された(図18参照)。
【0092】実施例4 本発明で用いたEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMのHIV−1感染M型MΦのp38MA
PKとERK1/2の活性化に対する影響p38MAP
KとERK1/2(p42/44MAPK)は細胞内シ
グナル伝達機構として種々の応答に関与している。HI
V−1BAL 株を感染させたM型MΦにおけるp38MA
PKとERK1/2のチロシンリン酸化をウエスタンブ
ロットにより検討した。その結果、ウイルス感染により
p38MAPKのチロシンリン酸化がつよく誘導された
が、ERK1/2のチロシンリン酸化は弱かった。この
結果は、M型MΦにおけるウイルス増殖にp38MAP
Kの活性化が重要であることを示している。
【0093】そこで、M型MΦにおけるウイルス増殖抑
制作用を有するEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMがp38MAPK及びERK1/2の活
性化にどのように影響するか検討した。HIV−1BAL
株を感染させたM型MΦに30μMのEM、EM20
1、EM202、EM703及びCAMを投与し、培養
2日目にp38MAPKのチロシン酸化をウエスタンブ
ロットにより検討した。ウイルス増殖抑制作用があまり
強くなかったEM、EM202及びCAM投与群では対
照群に較べて強くはないがp38MAPKのチロシンリ
ン酸化を低下することが認められた。一方、ウイルスの
増殖を強く抑制したEM201及びEM703投与群に
おいては、p38MAPKのチロシンリン酸化が有意に
低下した(図19(A)参照)。いずれの群もp38M
APKのTotal量(リン酸化されているものとされ
ていないものの総和)は同じであった。この結果は、E
M、EM201、EM202、M703及びCAMによ
るM型MΦでのウイルス増殖抑制はp38MAPKの活
性化の抑制が関与していることを示唆する。
【0094】一方、ウイルス増殖抑制作用があまり強く
なかったEM、EM202及びCAM投与群では対照群
と同様ERK1/2のチロシンリン酸化が弱く認められ
たが、ウイルス増殖抑制作用が強かったEM201及び
EM703投与群においてはERK1/2のチロシンリ
ン酸化の亢進を認めた。いずれの群もERK1/2のT
otal量(リン酸化されているものとされていないも
のの総和)は同じであった(図19(B)参照)。
【0095】実施例5 本発明で用いたEM、EM201、EM202、EM7
03及びCAMのHIV−1感染M型MΦのウイルス増
殖に対するp38MAPK阻害剤の影響実施例4の結果
より、M型MΦにおけるHIV−1の増殖にはp38M
APKの活性化が重要であること、またEM、EM20
1、EM202、EM703及びCAMによるHIV−
1の増殖抑制作用はこれら物質のp38MAPKの活性
化抑制作用によることが示唆された。
【0096】そこで、HIV−1BAL 株を感染させたM
型MΦにp38MAPK阻害剤であるSB203580
(4−[4−fluorophennyl]−2−[4
−methylsulfinylphenyl]−5−
[4−pyridyl]−1H−imidazole)
及びPD98059(2−[2−amino−3−me
thoxyphenyl]−4H−1−benzopy
ran−4−ome)を10μMの濃度に添加してウイ
ルスへの影響を調べた。
【0097】HIV−1BAL 株を感染させたM型MΦに
SB203580を10μMの濃度で添加培養したと
き、14日目においてもp24蛋白量は殆ど検出されず
ウイルスの増殖が阻止された(図20参照)。一方、E
RK1/2阻害剤であるPD98059を10μMの濃
度に添加した場合、p24蛋白量は対照群と変わらずウ
イルスの増殖を認めた(図20参照)。この実験結果か
ら、M型MΦにおけるマクロファージ指向性HIV−1
株の増殖にはp38MAPKの活性化が必須であり、E
RK1/2の関与は低いと考えられた。
【0098】実施例6 本発明で用いたEM722、EM730、EM732及
びEM736のM型MΦにおけるHIV−1の増殖に対
する影響 M型MΦにHIV−1BAL 株を2時間接触感染させた
後、種々の濃度のEM722、EM730、EM732
及びEM736を添加し、10日間培養し、経時的に培
養上清中のp24蛋白量を測定した。尚、本マクロライ
ド誘導体を溶解するのに用いたDMSOのみで処理した
群を対照群とした。
【0099】培養日数を応ごとにDMSOのみを添加し
た対照群の培養上清中のp24蛋白量の増加が認めら
れ、HIV−1の増殖が認められた。しかし、対照群と
比較して、EM722、EM730、EM732及びE
M736を添加した群では、薬剤の濃度に依存してp2
4蛋白の産生が抑えられウイルス産生の抑制が認められ
た。特に30μMの濃度ではEM722、EM730、
EM732及びEM736のいずれの薬剤もほぼ完全に
ウイルス産生を抑制した(図21参照)。これらの薬剤
に類縁の各薬剤EM727、EM744、EM745、
EM742、EM740、EM721、EM723、E
M724、EM725、EM728、EM729、EM
731、EM738、EM739、EM733、EM7
49及びEM726についても同様の結果が得られた。
また、成人の健康人ボランテイア3人より採取したヒト
単球由来M型MΦを用いた実験においても前記の図21
と全く同様の結果が認められた。
【0100】実施例7 本発明で用いたEM734、EM735、EM747及
びEM748のM型MΦにおけるHIV−1の増殖に対
する影響M型MΦにHIV−1BAL 株を2時間接触感染
させた後、種々の濃度のEM734、EM735、EM
747及びEM748を添加し、10日間培養し、経時
的に培養上清中のp24蛋白量を測定した。尚、マクロ
ライド誘導体を溶解するのに用いたDMSOのみで処理
した群を対照群とした。
【0101】培養日数を応ごとにDMSOのみを添加し
た対照群の培養上清中のp24蛋白量の増加が認めら
れ、HIV−1の増殖が認められた。しかし、対照群と
比較して、EM734、EM735、EM747及びE
M748を添加した群では、薬剤の濃度に依存してp2
4蛋白の産生が抑えられウイルス産生の抑制が認められ
た。特に30μMの濃度ではEM734、EM735、
EM747及びEM748のいずれの薬剤もほぼ完全に
ウイルス産生を抑制した(図22参照)。また、成人の
健康人ボランテイア3人より採取したヒト単球由来M型
MΦを用いた実験においても前記の図22と全く同様の
結果が認められた。
【0102】実施例8 本発明で用いたEM743のM型MΦにおけるHIV−
1の増殖に対する影響M型MΦにHIV−1BAL 株を2
時間接触感染させた後、種々の濃度のEM743を添加
し、10日間培養し、経時的に培養上清中のp24蛋白
量を測定した。尚、本マクロライド誘導体を溶解するの
に用いたDMSOのみで処理した群を対照群とした。
【0103】培養日数を応ごとにDMSOのみを添加し
た対照群の培養上清中のp24蛋白量の増加が認めら
れ、HIV−1の増殖が認められた。しかし、対照群と
比較して、EM743を添加した群では、薬剤の濃度に
依存してp24蛋白の産生が抑えられウイルス産生の抑
制が認められた。特に30μMの濃度ではほぼ完全にウ
イルス産生を抑制した(図23参照)。また、成人の健
康人ボランテイア3人より採取したヒト単球由来M型M
Φを用いた実験においても前記の図23と全く同様の結
果が認められた。
【0104】実施例9 本発明で用いたEM746、EM750及びEM751
のM型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影響 M型MΦにHIV−1BAL 株を2時間接触感染させた
後、種々の濃度のEM746、EM750及びEM75
1を添加し、10日間培養し、経時的に培養上清中のp
24蛋白量を測定した。尚、本マクロライド誘導体を溶
解するのに用いたDMSOのみで処理した群を対照群と
した。
【0105】培養日数を応ごとにDMSOのみを添加し
た対照群の培養上清中のp24蛋白量の増加が認めら
れ、HIV−1の増殖が認められた。しかし、対照群と
比較して、EM746、EM750及びEM751を添
加した群では、薬剤の濃度に依存してp24蛋白の産生
が抑えられウイルス産生の抑制が認められた。特に30
μMの濃度ではEM746、EM750及びEM751
のいずれの薬剤もほぼ完全にウイルス産生を抑制した
(図24参照)。また、成人の健康人ボランテイア3人
より採取したヒト単球由来M型MΦを用いた実験におい
ても前記の図24と全く同様の結果が認められた。
【0106】実施例10 本発明で用いたEM754のM型MΦにおけるHIV−
1の増殖に対する影響M型MΦにHIV−1BAL 株を2
時間接触感染させた後、種々の濃度のEM754を添加
し10日間培養し、経時的に培養上清中のp24蛋白量
を測定した。尚、本マクロライド誘導体を溶解するのに
用いたDMSOのみで処理した群を対照群とした。
【0107】培養日数を応ごとにDMSOのみを添加し
た対照群の培養上清中のp24蛋白量の増加が認めら
れ、HIV−1の増殖が認められた。しかし、対照群と
比較して、EM754を添加した群では、薬剤の濃度に
依存してp24蛋白の産生が抑えられウイルス産生の抑
制が認められた。特に30μMの濃度ではほぼ完全にウ
イルス産生を抑制した(図25参照)。この薬剤に類縁
の薬剤EM737についても同様の結果が得られた。ま
た、成人の健康人ボランテイア3人より採取したヒト単
球由来M型MΦを用いた実験においても前記の図25と
全く同様の結果が認められた。
【0108】上述のように本マクロライド誘導体は、ヒ
ト単球由来M型MΦにおけるマクロファージ指向性HI
V−1の増殖抑制作用があることを認めた。特にM型M
Φにおけるマクロファージ指向性HIV−1の増殖を強
く阻止する作用があることを認めたEM201及びEM
703は3μMの濃度でもウイルスの増殖をほぼ完全に
制御した。EM201及びEM703のウイルス増殖抑
制効果は、ウイルス接触感染後、初回の培養液にEM2
01及びEM703を添加しただけで、培養後14日目
においても、95%以上の十分な抑制効果が認められ
た。
【0109】更にEM、EM202及びCAMについて
も薬剤の濃度に依存してウイルスの産生の抑制が認めら
れ、同様の抑制はEM722、EM730、EM73
2、EM736、EM734、EM735、EM74
7、EM748、EM743、EM746、EM75
0、EM751及びEM754についても30μMの濃
度でほぼ完全に抑制することが認められた。このことか
ら、この抑制効果は組織マクロファージに特異的に蓄積
し、長期間作用するマクロライドの薬理的性質が深く関
与していることが認められた。
【0110】前述のように、チロシンカイネースHck
蛋白の発現はM型MΦにおけるHIV−1の増殖に必須
であるが、本発明に用いた各種マクロライド誘導体はM
型MΦのチロシンカイネースHck蛋白の発現を抑制し
たことより、この抑制作用がこれら物質のHIV−1増
殖抑制作用の作用機構の一つであることが示唆された。
またウイルス増殖抑制効果を示した本発明の各種マクロ
ライド誘導体はp38MAPKのチロシンリン酸化を抑
制したことより、HIV−1増殖抑制がこれら物質によ
るp38MAPKの活性化抑制に基づくことが示唆され
た。
【0111】
【発明の効果】以上のように本発明は、HIV−1の増
殖抑制作用を有するマクロライド誘導体を有効成分とす
る、ヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤と
して有用であるばかりでなく、HAART療法において
補助剤として臨床できることが期待される。
【図面の簡単な説明】
【図1】(A)はHIV−1JR-FL 株感染M型MΦとG
M型MΦにおける培養上清中のp24蛋白量を示したも
のであり、(B)はHIV−1BAL 株感染M型MΦとG
M型MΦにおける培養上清中のp24蛋白量を示したも
のである。
【図2】(A)はHIV−1JR-FL 株及びHIV−1
BAL 株感染M型MΦとにおける細胞変性を示したもので
あり、(B)はHIV−1JR-FL 株及びHIV−1BAL
株感染GM型MΦにける細胞変性を示したものである。
【図3】(A)はHIV−1JR-FL 株及びHIV−1
BAL 株感染M型MΦにおける細胞内p24蛋白の分布を
示したものであり、(B)はHIV−1JR-FL 株及びH
IV−1BAL 株感染GM型MΦにおける細胞内p24蛋
白の分布を示したものである。
【図4】(A)はHIV−1JR-FL 株感染M型MΦとG
M型MΦにおけるウイルスDNAの検出を示したもので
あり、(B)はHIV−1BAL 株感染M型MΦとGM型
MΦにおけるウイルスDNAの検出を示したものであ
る。
【図5】M型MΦとGM型MΦにおけるHck蛋白の発
現とHIV−1BAL 株感染による発現の変化を示したも
のである。
【図6】M型MΦとGM型MΦにおけるC/EBPβ蛋
白の発現とHIV−1BAL 株感染による発現の変化を示
したものである。
【図7】(A)はHIV−1BAL 株をヒト肺MΦ(A−
MΦ)に感染後培養上清中にp24蛋白の検出によるH
IV−1増殖応答を示したものであり、(B)はウイル
スDNAの検出を示したものである。
【図8】ヒト肺胞MΦにおけるHck蛋白およびC/E
BPβ蛋白の発現とHIV−1 BAL 株感染による発現の
変化を示したものである。
【図9】チロシンカイネースHck蛋白に対するアンチ
センスオリゴヌクレオチド処理M型MΦにおけるチロシ
ンカイネースHck蛋白の発現をHIV−1BAL 株感染
前後で示したものである。
【図10】チロシンカイネースHck蛋白に対するアン
チセンスオリゴヌクレオチド処理M型MΦにおけるHI
V−1の増殖抑制を示したものである。
【図11】C/EBPβ蛋白に対するアンチセンスオリ
ゴヌクレオチド処理GM型MΦのC/EBPβ蛋白の発
現をHIV−1BAL 株感染前後で示したものである。
【図12】C/EBPβ蛋白に対するアンチセンスオリ
ゴヌクレオチド処理GM型MΦにおけるHIV−1の増
殖を示したものである。
【図13】マクロライド誘導体EM、EM201、EM
202、EM703及びCAMをそれぞれ添加したM型
MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影響をDMSO
と比較して示したものである。
【図14】マクロライド誘導体EM、EM201、EM
202、EM703及びCAMをそれぞれ添加したGM
型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影響をDMS
Oと比較して示したものである。
【図15】マクロライド誘導体EM、EM201、EM
202、EM703及びCAMをそれぞれ添加した異な
るヒト(3人)より作成したM型MΦにおけるHIV−
1の増殖に対する影響をDMSOと比較して示したもの
である。
【図16】M型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する
マクロライド誘導体EM、EM201、EM202、E
M703及びCAMの濃度の影響をDMSOと比較して
示したものである。
【図17】マクロライド誘導体EM、EM201、EM
202、EM703及びCAMをそれぞれ添加したHI
V−1感染M型MΦの細胞変性に対する影響をDMSO
と比較して示したものである。
【図18】HIV−1感染M型MΦのチロシンカイネー
スHck蛋白発現に対するマクロライド誘導体EM、E
M201、EM202、EM703及びCAMの影響を
DMSOと比較して示したものである。
【図19】(A)はHIV−1感染M型MΦのp38M
APKの活性化とそれに対するマクロライド誘導体E
M、EM201、EM202、EM703及びCAMの
影響をDMSOと比較して示したものであり、(B)は
HIV−1感染M型MΦのERK1/2の活性化とそれ
に対するマクロライド誘導体EM、EM201、EM2
02、EM703及びCAMの影響をDMSOと比較し
て示したものである。
【図20】HIV−1BAL 株感染M型MΦのウイルス増
殖に対するp38MAPK(SB203580)阻害剤
およびERK1/2(PD98059)阻害剤の影響を
コントロールと比較して示したものである。
【図21】マクロライド誘導体EM722、EM73
0、EM732及びEM736を各種濃度で添加したM
型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影響をDMS
Oと比較して示したものである。
【図22】マクロライド誘導体EM734、EM73
5、EM747及びEM748を各種濃度で添加したM
型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影響をDMS
Oと比較して示したものである。
【図23】マクロライド誘導体EM743を各種濃度で
添加したM型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影
響をDMSOと比較して示したものである。
【図24】マクロライド誘導体EM746、EM750
及びEM751を各種濃度で添加したM型MΦにおける
HIV−1の増殖に対する影響をDMSOと比較して示
したものである。
【図25】マクロライド誘導体EM754を各種濃度で
添加したM型MΦにおけるHIV−1の増殖に対する影
響をDMSOと比較して示したものである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C07H 17/08 C07H 17/08 L (72)発明者 砂塚 敏明 東京都港区白金5丁目9番1号 社団法人 北里研究所内 Fターム(参考) 4C057 BB02 BB05 CC03 DD03 KK11 KK12 KK13 KK25 4C086 AA01 AA02 EA12 EA13 MA01 MA04 NA14 ZB33 ZC02 ZC20 ZC55

Claims (34)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 HIV−1の増殖抑制作用を有するマク
    ロライド誘導体を有効成分とする、ヒト免疫不全症候群
    ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  2. 【請求項2】 ヒト単球由来マクロファージにおけるH
    IV−1の感染、増殖抑制である請求項1記載のヒト免
    疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  3. 【請求項3】 ヒト単球由来マクロファージがM型Mク
    ロファージである請求項1又は2記載のヒト免疫不全症
    候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  4. 【請求項4】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファージ
    におけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制とP
    38MAPKの活性化抑制である請求項2又は3記載の
    ヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  5. 【請求項5】 マクロライド誘導体がオキサシクロテト
    ラデカン−2,10−デイオン,4[(2,6−ジデオ
    キシ−3−O−メチル−α−L−リボ−ヘキソピラノシ
    ル)オキシ]−14−エチル−7,12,13−トリヒ
    ドロキシ−3,5,7,9,11,13−ヘキサメチル
    −6−[[3,4,6−トリデオキシ−3−(ジメチル
    アミノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノシル]オキ
    シ]である請求項1記載の感染、増殖抑制剤。
  6. 【請求項6】 請求項5記載の化合物がヒト単球由来M
    型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作用を
    有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制
    剤。
  7. 【請求項7】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファージ
    におけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制とP
    38MAPKの活性化抑制である請求項6記載のヒト免
    疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  8. 【請求項8】 マクロライド誘導体が11−(1’−ヒ
    ドロキシプロピル)−3−[2,6−ジデオキシ−3−
    C−メチル−α−L−リボ−ヘキソピラノシル]オキ
    シ]−5−[(3,4,6−トリデオキシ−3−(ジメ
    チルアミノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノシル)オ
    キシ]−2,4,6,8,11,14−ヘキサメチル−
    10,13,15−トリ−オキサトリシクロ[9.2.
    1.1. 9.6 ]−ペンタデカン−1−ワンである請求項
    1記載のヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制
    剤。
  9. 【請求項9】 請求項8記載の化合物がヒト単球由来M
    型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作用を
    有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制
    剤。
  10. 【請求項10】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MAPKの活性化抑制である請求項9記載のヒト
    免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  11. 【請求項11】 マクロライド誘導体が6,15,16
    −トリオキサトリシクロ[10.2.1.11,4]ヘ
    キサデカン,エリスロマイシン誘導体である請求項1記
    載のヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  12. 【請求項12】 請求項11記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  13. 【請求項13】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MAPKの活性化抑制である請求項12記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  14. 【請求項14】 マクロライド誘導体が4,13−ジオ
    キサビシクロ[8.2.1]トリデック−12−エン−
    5−ワン,7−[(2,6−ジデオキシ−3−C−メチ
    ル−α−L−リボ−ヘキソピラノシル)オキシ]−3−
    (1,2−ジヒドロキシ−1−メチルブチル)−2,
    6,8,10,12−ペンタメチル−9−[[3,4,
    6−トリデオキシ−3−(ジメチルアミノ)−β−D−
    キシロ−ヘキソピラノシル]オキシ]である請求項1記
    載のヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  15. 【請求項15】 請求項14記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  16. 【請求項16】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MAPKの活性化抑制である請求項15記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  17. 【請求項17】 マクロライド誘導体がオキサシクロテ
    トラデカン−2,10−ディオン,4−[(2,6−ジ
    デオキシ−3−O−メチル−α−L−リボ−ヘキソピラ
    ノシル)オキシ]−14−エチル−12,13−ジヒド
    ロキシ−7−メトキシ−3,5,7,9,11,13−
    ヘキサメチル−6−[[3,4,6−トリデオキシ−3
    −(ジメチルアミノ)−β−D−キシロ−ヘキソピラノ
    シル]オキシ]である請求項1に記載のヒト免疫不全症
    候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  18. 【請求項18】 請求項17記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  19. 【請求項19】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MAPKの活性化抑制である請求項18記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  20. 【請求項20】 マクロライド誘導体がデ(3’−N−
    メチル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−N−
    メチル)−3’−N−スルフォニル−8,9−無水−シ
    ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
    はその塩;デ(3’−N−メチル)−[3’−N−(3
    −ヒドロキシ−1−プロピル)]−8,9−無水−シュ
    ードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたは
    その塩;デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2−ア
    セトキシエチル)−8,9−無水−シュードエリスロマ
    イシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;デ
    (3’−N−メチル)−3’−N−シアノメチル−8,
    9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
    ケタールまたはその塩;デ(3’−N−メチル)−3’
    −N−(2−フルオロエチル)−8,9−無水−シュー
    ドエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはそ
    の塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−8,9−無水−
    シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールま
    たはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N
    −エチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’
    −N−メチル)−3’,3’−N,N−ジエチル−8,
    9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
    ケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)
    −3’−N−アリル−8,9−無水−シュードエリスロ
    マイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス
    −デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジア
    リル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−
    N−メチル)−3’−N−プロパルギル−8,9−無水
    −シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタール
    またはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
    3’−N,N−ジプロパルギル−8,9−無水−シュー
    ドエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはそ
    の塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−プロ
    ピル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−
    N−メチル)−3’,3’−N,N−ジプロピル−8,
    9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミ
    ケタールまたはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)
    −3’−N−ヘキシル−8,9−無水−シュードエリス
    ロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビ
    ス−デ(3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジ
    ヘキシル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ(3’
    −N−メチル)−3’−N−ベンジル−8,9−無水−
    シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールま
    たはその塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’,
    3’−N,N−ジベンジル−8,9−無水−シュードエ
    リスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその
    塩;ビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−(2−
    プロピル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
    A 6,9−ヘミケタールまたはその塩;ビス−デ
    (3’−N−メチル)−3’,3’−N,N−ジ−(1
    0−ブロモ−1−デカニル)−8,9−無水−シュード
    エリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその
    塩;及びビス−デ(3’−N−メチル)−3’−N−ア
    セチル−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA
    6,9−ヘミケタールまたはその塩から選ばれた請求項
    1記載のヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制
    剤。
  21. 【請求項21】 請求項20記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  22. 【請求項22】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MARKの活性化抑制である請求項21記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  23. 【請求項23】 マクロライド誘導体がデ(3’−ジメ
    チルアミノ)−3’−ピペリジノ−8,9−無水−シュ
    ードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたは
    その塩;デ(3’−ジメチルアミノ)−3’−ピロリジ
    ノ−8,9−無水−シュードエリスロマイシンA 6,
    9−ヘミケタールまたはその塩;デ(3’−ジメチルア
    ミノ)−3’−モルフォリノ−8,9−無水−シュード
    エリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその
    塩;及びデ(3’−ジメチルアミノ)−3’−[ヘキサ
    ヒドロ−1(1H)−アゼピニル]−8,9−無水−シ
    ュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまた
    はその塩から選ばれた請求項1記載のヒト免疫不全症候
    群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  24. 【請求項24】 請求項20記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  25. 【請求項25】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MARKの活性化抑制である請求項24記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  26. 【請求項26】 マクロライド誘導体がデ(12−ヒド
    ロキシ)−デ[12−(1−ヒドロキシプロピル)]−
    12−ヒドロキシオキシム−8,9−無水−シュードエ
    リスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその塩
    である請求項1記載のヒト免疫不全症候群ウイルスの感
    染、増殖抑制剤。
  27. 【請求項27】 請求項26記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  28. 【請求項28】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MARKの活性化抑制である請求項27記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  29. 【請求項29】 マクロライド誘導体がデ[12−(1
    −ヒドロキシプロピル)]−8,9−無水−シュードエ
    リスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはその
    塩;デ(12−ヒドロキシ)−デ[12−(1−ヒドロ
    キシプロピル)]−12−アミノ−8,9−無水−シュ
    ードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたは
    その塩;およびデ(3’−N−メチル)−デ[12−
    (1−ヒドロキシプロピル)]−8,9−無水−シュー
    ドエリスロマイシンA 6,9−ヘミケタールまたはそ
    の塩から選ばれた請求項1記載のヒト免疫不全症候群ウ
    イルスの感染、増殖抑制剤。
  30. 【請求項30】 請求項29記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  31. 【請求項31】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MARKの活性化抑制である請求項30記載のヒ
    ト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑制剤。
  32. 【請求項32】 マクロライド誘導体がデ(3−O−ク
    ラジノル)−8,9−無水−シュードエリスロマイシン
    A 6,9−ヘミケタールまたはその塩;又はデ(3−
    O−クラジノシル)−デ(3’−N−メチル)−8,9
    −無水−シュードエリスロマイシンA 6,9−ヘミケ
    タールまたはその塩から選ばれた請求項1記載の感染、
    増殖抑制剤。
  33. 【請求項33】 請求項32記載の化合物がヒト単球由
    来M型マクロファージにおけるHIV−1の増殖抑制作
    用を有するヒト免疫不全症候群ウイルスの感染、増殖抑
    制剤。
  34. 【請求項34】 ウイルス増殖抑制作用はマクロファー
    ジにおけるチロシンカイネースHck蛋白の発現抑制と
    P38MARKの活性化抑制であるヒト免疫不全症候群
    ウイルスの請求項33記載の感染、増殖抑制剤。
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