JP2002512003A - パラミキソウイルスワクチンのためのアルファウイルスベクター - Google Patents
パラミキソウイルスワクチンのためのアルファウイルスベクターInfo
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Abstract
(57)【要約】
DNAベクターは少なくともアルファウイルスRNAゲノムの部分に相補的であり、完全なアルファウイルスDNAゲノム複製領域の補体を有する第1DNA配列、およびパラミキソウイルス蛋白質、特に呼吸系発疹ウイルス融合(RSVF)蛋白質またはRSV F蛋白質と特異的に反応する抗体を発生するRSVF蛋白質断片を符号化する第2DNA配列からなり、第1および第2DNA配列はプロモータ、好適にはイントロンAを含む、サイトメガロウイルスプロモータの転写制御下にある。このようなベクターもin vivoで発現すると、RSV F蛋白質の免疫保護能力を強化するためにプロモータ配列とアルファウイルス配列の間に配置された追加のヌクレオチド配列を含む。このようなDNAベクターは、それへの投与により、ヒト宿主を含む、RSVまたはその他のパラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対して宿主に免疫形成するために使用され、このような目的のために薬学的に受容可能な担体と免疫原組成物として製剤される。このようなベクターは試料中のRSVまたは他のパラミキソウイルス感染の検出のための抗体を作るためにも使用される。
Description
【0001】 (発明の分野) 本発明はパラミキソウイルス科ワクチンの分野に関し、および特にアルファウ
イルスベクターにおける呼吸系発疹ウイルス(RSV)の融合(F)蛋白質を符
号化するDNAからなるワクチンに関する。
イルスベクターにおける呼吸系発疹ウイルス(RSV)の融合(F)蛋白質を符
号化するDNAからなるワクチンに関する。
【0002】 (発明の背景) ヒト呼吸系発疹ウイルス(RSV)は乳児、年少の子供および施設に収容され
た高齢者における重症な気道感染の原因となる主要病原体として同定された(本
出願を通じて参考文献1、2、3、4−種々の参考文献は本発明が関わる技術の
状態をより十分に記述するために括弧内に引用される。各引用に対する完全な文
献情報は請求範囲の直前の明細書末尾に見られる。これらの参考文献の開示は本
開示への参考文献によりここに含まれる。) 地球的死亡率及び罹患率の数字は有効なRSVワクチンに対する差し迫った需
要があることを示す(参考文献5、6)。米国だけで、年間約十万人の子供がR
SV感染から生じる肺炎および細気管支炎の重症例で入院させられる。RSV感
染の子供に対する入院患者および外来医療は米国で毎年三億四千万ドル以上の経
費と評価された。世界保健機構(WHO)および国立アレルギー及び感染性疾患
研究所(NIAID)ワクチン諮問委員会はワクチン開発でHIVに対してのみ
RSVを第2に格づけた。年間死亡率および罹患率の数字の両方ならびにRSV
感染を管理するための驚くほどの健康管理経費が有効なRSVワクチンの開発を
積極的に追求するために刺激を与えた。しかし、このようなワクチンはまだ入手
できない。
た高齢者における重症な気道感染の原因となる主要病原体として同定された(本
出願を通じて参考文献1、2、3、4−種々の参考文献は本発明が関わる技術の
状態をより十分に記述するために括弧内に引用される。各引用に対する完全な文
献情報は請求範囲の直前の明細書末尾に見られる。これらの参考文献の開示は本
開示への参考文献によりここに含まれる。) 地球的死亡率及び罹患率の数字は有効なRSVワクチンに対する差し迫った需
要があることを示す(参考文献5、6)。米国だけで、年間約十万人の子供がR
SV感染から生じる肺炎および細気管支炎の重症例で入院させられる。RSV感
染の子供に対する入院患者および外来医療は米国で毎年三億四千万ドル以上の経
費と評価された。世界保健機構(WHO)および国立アレルギー及び感染性疾患
研究所(NIAID)ワクチン諮問委員会はワクチン開発でHIVに対してのみ
RSVを第2に格づけた。年間死亡率および罹患率の数字の両方ならびにRSV
感染を管理するための驚くほどの健康管理経費が有効なRSVワクチンの開発を
積極的に追求するために刺激を与えた。しかし、このようなワクチンはまだ入手
できない。
【0003】 ホルマリン不活化(FI−RSV)および弱毒ウイルスワクチンは臨床試験で
有効性を示すことに失敗した(参考文献7、8、9、10)。さらに、生じたホ
ルマリン不活化RSVワクチンは野性型RSVへの被曝に続くある子供の疾患を
促進した(参考文献7、8、9、10)。RSV疾患の相乗作用に含まれる機構
の解明は安全なRSVワクチンの設計、特に血清反応陰性個体群のために重要で
ある。最近の実験的証拠は、細胞媒介反応の平衡失調が免疫相乗作用に寄与する
ことを示唆する。FI−RSVで免疫形成され、ウイルスに挑戦させられたマウ
スで観察された強化した組織病理学はCD4+細胞またはインターロイキン−4
(IL−4)およびIL−10の両方の枯渇で阻害される。
有効性を示すことに失敗した(参考文献7、8、9、10)。さらに、生じたホ
ルマリン不活化RSVワクチンは野性型RSVへの被曝に続くある子供の疾患を
促進した(参考文献7、8、9、10)。RSV疾患の相乗作用に含まれる機構
の解明は安全なRSVワクチンの設計、特に血清反応陰性個体群のために重要で
ある。最近の実験的証拠は、細胞媒介反応の平衡失調が免疫相乗作用に寄与する
ことを示唆する。FI−RSVで免疫形成され、ウイルスに挑戦させられたマウ
スで観察された強化した組織病理学はCD4+細胞またはインターロイキン−4
(IL−4)およびIL−10の両方の枯渇で阻害される。
【0004】 RSV融合(F)糖蛋白質はウイルスの主要免疫原蛋白質の1つである。この
外被糖蛋白質は宿主細胞膜へのウイルスの融合とウイルスの細胞から細胞へのス
プレッドの両方を媒介する(参考文献1)。F蛋白質は、N末端F2およびC末
端F1部分からなるジスルフィド結合二量体を形成するために蛋白質分解的に開
裂される前駆体分子として合成される(参考文献11)。F蛋白質のアミノ酸配
列はRSV亜群AおよびB中に高度に保存され、交差保護的抗原である(参考文
献6、12)。バクロウイルス発現系では、RSV F蛋白質の切断分泌バージ
ョンがTrichoplusia ni挿入細胞に発現された(参考文献13)
。組換え蛋白質はコトンラットにおいて保護的であることを示した(参考文献1
3)。
外被糖蛋白質は宿主細胞膜へのウイルスの融合とウイルスの細胞から細胞へのス
プレッドの両方を媒介する(参考文献1)。F蛋白質は、N末端F2およびC末
端F1部分からなるジスルフィド結合二量体を形成するために蛋白質分解的に開
裂される前駆体分子として合成される(参考文献11)。F蛋白質のアミノ酸配
列はRSV亜群AおよびB中に高度に保存され、交差保護的抗原である(参考文
献6、12)。バクロウイルス発現系では、RSV F蛋白質の切断分泌バージ
ョンがTrichoplusia ni挿入細胞に発現された(参考文献13)
。組換え蛋白質はコトンラットにおいて保護的であることを示した(参考文献1
3)。
【0005】 パラインフルエンザウイルス感染に対する生ウイルスワクチンおよび糖蛋白質
サブユニットワクチンの開発に関する研究は追求される。ホルマリン不活化PI
V種1、2、3ワクチンによる臨床試験は、このワクチンが有効でないことを示
した(参考文献14、15、16)。ワクチンがRSV感染の予防に有効でない
だけでなく、後にRSVに感染するようになるワクチン摂取者の多くがより重症
の疾患を受けることを示したホルマリン不活化RSVワクチンによる臨床試験後
、化学的不活化ワクチンの追加の開発は続けられなかった。パラインフルエンザ
ワクチンの研究の大部分は、PIV−1およびPIV−2に対して報告されるよ
り有意に少ない研究の候補PIV−3ワクチン(参考文献17)に集中した。P
IV−3ワクチンへの最近の接近は密接に関連したウシパラインフルエンザウイ
ルス種3の使用およびウイルスの低温適応による弱毒ウイルスの発生を含んだ(
参考文献18、19、20、21)。
サブユニットワクチンの開発に関する研究は追求される。ホルマリン不活化PI
V種1、2、3ワクチンによる臨床試験は、このワクチンが有効でないことを示
した(参考文献14、15、16)。ワクチンがRSV感染の予防に有効でない
だけでなく、後にRSVに感染するようになるワクチン摂取者の多くがより重症
の疾患を受けることを示したホルマリン不活化RSVワクチンによる臨床試験後
、化学的不活化ワクチンの追加の開発は続けられなかった。パラインフルエンザ
ワクチンの研究の大部分は、PIV−1およびPIV−2に対して報告されるよ
り有意に少ない研究の候補PIV−3ワクチン(参考文献17)に集中した。P
IV−3ワクチンへの最近の接近は密接に関連したウシパラインフルエンザウイ
ルス種3の使用およびウイルスの低温適応による弱毒ウイルスの発生を含んだ(
参考文献18、19、20、21)。
【0006】 パラインフルエンザウイルス種3ワクチン開発への別の接近は、表面糖蛋白質
ヘマグルチニン−ノイラミニダーゼ(HN)および融合(F)蛋白質に集中する
サブユニット接近である(参考文献22、23、24)。HN抗原、典型種II
糖蛋白質は血球凝集およびノイラミニダーゼ活性の両方を示し、シアル酸含有宿
主細胞受容体へのウイルスの付着の原因となる。I型F糖蛋白質はウイルス外被
の細胞膜との融合ならびにウイルスの細胞から細胞へのスプレッドを媒介する。
最近、HNおよびF糖蛋白質の両方が膜融合に対して必要であることが示された
。F糖蛋白質はジスルフィド結合したF2およびF1部分へ蛋白質分解的に開裂
させられる不活性前駆体(F)として合成される。PIV−1、−2および−3
のHNおよびF蛋白質は構造的に同様であるので、それらは抗原的に区別される
。PIV種の1つのHNおよびF蛋白質に対して中和する抗体は交差保護的でな
い。このように、有効PIVサブユニットワクチンはパラインフルエンザウイル
スの3つの異なる種からのHNおよびF糖蛋白質を含まねばならない。いずれか
の糖蛋白質に対する抗体はin vitroで中和する。直接の相関が中和抗体
力価の水準と乳児におけるPIV−3感染への抵抗の間に観察された。パライン
フルエンザウイルス種3に対する天然サブユニットワクチンが2つの表面糖蛋白
質の保護性を研究した。典型的に、糖蛋白質は非イオン性界面活性剤を用いてウ
イルスから抽出され、さらにレクチン親和性または免疫親和性クロマトグラフィ
ー法を用いて精製される。しかし、これらの方法のいずれも全ての状況下のワク
チンの大規模生産には完全に適当ではないだろう。小動物保護モデル(ハムスタ
ーおよびコトンラット)では、糖蛋白質による免疫形成は生きているPIV−3
による感染を防ぐことを示した(参考文献25、26、27、28、29)。
ヘマグルチニン−ノイラミニダーゼ(HN)および融合(F)蛋白質に集中する
サブユニット接近である(参考文献22、23、24)。HN抗原、典型種II
糖蛋白質は血球凝集およびノイラミニダーゼ活性の両方を示し、シアル酸含有宿
主細胞受容体へのウイルスの付着の原因となる。I型F糖蛋白質はウイルス外被
の細胞膜との融合ならびにウイルスの細胞から細胞へのスプレッドを媒介する。
最近、HNおよびF糖蛋白質の両方が膜融合に対して必要であることが示された
。F糖蛋白質はジスルフィド結合したF2およびF1部分へ蛋白質分解的に開裂
させられる不活性前駆体(F)として合成される。PIV−1、−2および−3
のHNおよびF蛋白質は構造的に同様であるので、それらは抗原的に区別される
。PIV種の1つのHNおよびF蛋白質に対して中和する抗体は交差保護的でな
い。このように、有効PIVサブユニットワクチンはパラインフルエンザウイル
スの3つの異なる種からのHNおよびF糖蛋白質を含まねばならない。いずれか
の糖蛋白質に対する抗体はin vitroで中和する。直接の相関が中和抗体
力価の水準と乳児におけるPIV−3感染への抵抗の間に観察された。パライン
フルエンザウイルス種3に対する天然サブユニットワクチンが2つの表面糖蛋白
質の保護性を研究した。典型的に、糖蛋白質は非イオン性界面活性剤を用いてウ
イルスから抽出され、さらにレクチン親和性または免疫親和性クロマトグラフィ
ー法を用いて精製される。しかし、これらの方法のいずれも全ての状況下のワク
チンの大規模生産には完全に適当ではないだろう。小動物保護モデル(ハムスタ
ーおよびコトンラット)では、糖蛋白質による免疫形成は生きているPIV−3
による感染を防ぐことを示した(参考文献25、26、27、28、29)。
【0007】 PIV−3のHNおよびF糖蛋白質も組換えDNA法を用いて生産された。H
NおよびF糖蛋白質はバクロウイルス発現システムを用いる昆虫細胞中で、ワク
シニアウイルスおよびアデノウイルス組換え体の使用で生産された(参考文献3
0、31、32、33、34)。バクロウイルス発現システムでは、PIV−3
糖蛋白質の全長および切断形の両方ならびにキメラF−HN融合蛋白質が発現さ
れた。組換え蛋白質は小動物モデルにおいて保護的であることを示した(199
1年11月29日に提出され、この譲受人に譲渡された、WO91/00104
、米国特許出願番号07/773,949参照)。
NおよびF糖蛋白質はバクロウイルス発現システムを用いる昆虫細胞中で、ワク
シニアウイルスおよびアデノウイルス組換え体の使用で生産された(参考文献3
0、31、32、33、34)。バクロウイルス発現システムでは、PIV−3
糖蛋白質の全長および切断形の両方ならびにキメラF−HN融合蛋白質が発現さ
れた。組換え蛋白質は小動物モデルにおいて保護的であることを示した(199
1年11月29日に提出され、この譲受人に譲渡された、WO91/00104
、米国特許出願番号07/773,949参照)。
【0008】 セムリキ森林ウイルス(SFV)はトガウイルス科のアルファウイルス属の一
員である。成熟ウイルス粒子は5’−キャップ形成および3’―ポリアデニル化
される正の極性のssRNAゲノムの単一コピーを含む。細胞に導入するとmR
NAおよび裸のRNAが感染を開始するように機能する。感染/形質導入におい
て、ゲノムの5窒フ三分の二は自己開裂により非構造性蛋白質(nsP1から4
へ)に加工されるポリ蛋白質に翻訳される。一旦ns蛋白質が合成されると、プ
ラス鎖(42S)ゲノムを全長マイナス鎖に複製する原因となる(参考文献14
)。これらのマイナス鎖はついで新しいプラス鎖(42S)ゲノムおよび26S
サブゲノムmRNAの合成のためのテンプレートとして役立つ(参考文献14)
。ゲノムの最後の三分の一と共直線性である、このサブゲノムmRNAはSFV
構造性蛋白質を符号化する。
員である。成熟ウイルス粒子は5’−キャップ形成および3’―ポリアデニル化
される正の極性のssRNAゲノムの単一コピーを含む。細胞に導入するとmR
NAおよび裸のRNAが感染を開始するように機能する。感染/形質導入におい
て、ゲノムの5窒フ三分の二は自己開裂により非構造性蛋白質(nsP1から4
へ)に加工されるポリ蛋白質に翻訳される。一旦ns蛋白質が合成されると、プ
ラス鎖(42S)ゲノムを全長マイナス鎖に複製する原因となる(参考文献14
)。これらのマイナス鎖はついで新しいプラス鎖(42S)ゲノムおよび26S
サブゲノムmRNAの合成のためのテンプレートとして役立つ(参考文献14)
。ゲノムの最後の三分の一と共直線性である、このサブゲノムmRNAはSFV
構造性蛋白質を符号化する。
【0009】 1991年LiljestromおよびGaroff(参考文献15)はSF
V cDNAレプリコンに基づく一連の発現ベクターを設計した。これらのベク
ターは異種挿入物に対する道を作るために削除されたウイルス構造性蛋白質遺伝
子を有したが、nsP1から4へのレプリカーゼ複合体お生産に対する非構造性
符号化領域を保存した。RNA複製のために必要な短い5’及び3’配列要素も
保存された。ポリリンカー部位は全て三個のフレームにおける翻訳停止部位が続
く26S促進因子下流に挿入された。Spe1部位はin vitro転写反応
で使用のためのプラスミドの線形化に対するSFV cDNAの3’末端の直後
に挿入された。
V cDNAレプリコンに基づく一連の発現ベクターを設計した。これらのベク
ターは異種挿入物に対する道を作るために削除されたウイルス構造性蛋白質遺伝
子を有したが、nsP1から4へのレプリカーゼ複合体お生産に対する非構造性
符号化領域を保存した。RNA複製のために必要な短い5’及び3’配列要素も
保存された。ポリリンカー部位は全て三個のフレームにおける翻訳停止部位が続
く26S促進因子下流に挿入された。Spe1部位はin vitro転写反応
で使用のためのプラスミドの線形化に対するSFV cDNAの3’末端の直後
に挿入された。
【0010】 異種蛋白質を符号化するSFV RNAの注入は多くの研究で異種蛋白質の発
現および抗体の誘導を生じることを示した(参考文献16、17)。免疫形成の
目的で異種蛋白質を発現するSFV RNAの使用はプラスミドDNA免疫形成
に関連したいくつかの利点を有する。例えば、ウイルス抗体を符号化するSEV
RNAはウイルスに対する抗体による中和のために力価の喪失無しにそのウイ
ルスに対する抗体の存在で導入される。また、蛋白質はin vivoで発現さ
れるので、蛋白質はウイルスそれ自体で発現された蛋白質と同じ立体配座を有す
るはずである。従って、免疫原性、保護エピトープおよび恐らく免疫強化の喪失
に導く蛋白質精製中に生じる立体配座変化に関する懸念はプラスミドDNA免疫
形成で避けられる。
現および抗体の誘導を生じることを示した(参考文献16、17)。免疫形成の
目的で異種蛋白質を発現するSFV RNAの使用はプラスミドDNA免疫形成
に関連したいくつかの利点を有する。例えば、ウイルス抗体を符号化するSEV
RNAはウイルスに対する抗体による中和のために力価の喪失無しにそのウイ
ルスに対する抗体の存在で導入される。また、蛋白質はin vivoで発現さ
れるので、蛋白質はウイルスそれ自体で発現された蛋白質と同じ立体配座を有す
るはずである。従って、免疫原性、保護エピトープおよび恐らく免疫強化の喪失
に導く蛋白質精製中に生じる立体配座変化に関する懸念はプラスミドDNA免疫
形成で避けられる。
【0011】 この譲受人に譲渡された、1995年6月7日に提出された同時係属米国特許
出願番号08/476,397および参考文献(WO96/040945)によ
りここに含まれるものの開示において、RSV感染に対するDNA免疫形成のた
めのRSV F蛋白質を符号化するDNAを含むプラスミドベクターの使用が記
載された文献がある。この譲受人に譲渡された、1997年7月18日に提出さ
れた同時係属米国特許出願番号08/896,500および文献によりここに含
まれるものの開示において、RSV感染に対するDNA免疫形成のためのRSV
G蛋白質符号化DNAを含むプラスミドベクターの使用が記載される文献があ
る。
出願番号08/476,397および参考文献(WO96/040945)によ
りここに含まれるものの開示において、RSV感染に対するDNA免疫形成のた
めのRSV F蛋白質を符号化するDNAを含むプラスミドベクターの使用が記
載された文献がある。この譲受人に譲渡された、1997年7月18日に提出さ
れた同時係属米国特許出願番号08/896,500および文献によりここに含
まれるものの開示において、RSV感染に対するDNA免疫形成のためのRSV
G蛋白質符号化DNAを含むプラスミドベクターの使用が記載される文献があ
る。
【0012】 この譲受人に譲渡された、1997年9月4日に提出された、私の同時係属米
国特許出願番号08/923,556および参考文献に含まれるものの開示にお
いて、私は、免疫形成に対するRNA転写物を作るために、パラミクソウイルス
蛋白質、特にRSV−Fを含む、セムリキ森林ウイルスベクターを含み、アルフ
ァウイルスベクターを用いるDNAベクターを記載する。
国特許出願番号08/923,556および参考文献に含まれるものの開示にお
いて、私は、免疫形成に対するRNA転写物を作るために、パラミクソウイルス
蛋白質、特にRSV−Fを含む、セムリキ森林ウイルスベクターを含み、アルフ
ァウイルスベクターを用いるDNAベクターを記載する。
【0013】 WO95/27044、参考文献でここに含まれるものの開示において、アル
ファウイルスRNA配列に相補的なcDNAに基づくアルファウイルスcDNA
ベクターの使用が記載される。一旦、異種プロモータの転写制御下でcDNAか
ら転写されると、アルファウイルスRNAはそれ自体のレプリカーゼにより自己
複製し、転写組換えRNA分子のコピー数をそれによって増幅することができる
。
ファウイルスRNA配列に相補的なcDNAに基づくアルファウイルスcDNA
ベクターの使用が記載される。一旦、異種プロモータの転写制御下でcDNAか
ら転写されると、アルファウイルスRNAはそれ自体のレプリカーゼにより自己
複製し、転写組換えRNA分子のコピー数をそれによって増幅することができる
。
【0014】 RSVによる感染は重症の疾患に導く。RSVおよびその他のパラミクソウイ
ルスにより生じた疾患に対する防御のために、ワクチンを含む、免疫原製剤のi
n vivo投与のために改良したベクターを提供することが有用で、望ましい
。特に、疾患増大を生じない(免疫強化)、血清反応陰性乳児を含む、ヒトで免
疫原性で防御的であるワクチンを提供することが望ましい。
ルスにより生じた疾患に対する防御のために、ワクチンを含む、免疫原製剤のi
n vivo投与のために改良したベクターを提供することが有用で、望ましい
。特に、疾患増大を生じない(免疫強化)、血清反応陰性乳児を含む、ヒトで免
疫原性で防御的であるワクチンを提供することが望ましい。
【0015】 (発明の概要) 本発明は新規な免疫原物質および呼吸系発疹ウイルスにより生じた疾患に対し
て免疫形成のためのこのような新規な物質に基づいた免疫形成手順を提供する。
特に、本発明はパラミキソウイルス科による感染で生じた疾患に対するDNAワ
クチンの提供を指向する。
て免疫形成のためのこのような新規な物質に基づいた免疫形成手順を提供する。
特に、本発明はパラミキソウイルス科による感染で生じた疾患に対するDNAワ
クチンの提供を指向する。
【0016】 本発明の1つの側面に従って、少なくともアルファウイルスRNAゲノムの部
分に相補的で、in vivo複製を可能にする完全なアルファウイルスRNA
ゲノム複製領域の補体を有する第1のDNA配列;パラミキソウイルス蛋白質と
特異的に反応する抗体を発生するパラミキソウイルス蛋白質または蛋白質断片を
符号化する第2DNA配列で、複製に本質的でない第1DNA配列の領域に挿入
される第2DNA配列;プロモータの転写制御下にある第1および第2DNA配
列;および宿主においてベクターからin vivoで発現すると、パラミキソ
ウイルス蛋白質の免疫保護能力を強化する第2DNA配列に隣接して位置した第
3DNA配列からなる、ベクターが提供される。
分に相補的で、in vivo複製を可能にする完全なアルファウイルスRNA
ゲノム複製領域の補体を有する第1のDNA配列;パラミキソウイルス蛋白質と
特異的に反応する抗体を発生するパラミキソウイルス蛋白質または蛋白質断片を
符号化する第2DNA配列で、複製に本質的でない第1DNA配列の領域に挿入
される第2DNA配列;プロモータの転写制御下にある第1および第2DNA配
列;および宿主においてベクターからin vivoで発現すると、パラミキソ
ウイルス蛋白質の免疫保護能力を強化する第2DNA配列に隣接して位置した第
3DNA配列からなる、ベクターが提供される。
【0017】 パラミキソウイルス蛋白質はパラインフルエンザウイルス(PIV)および呼
吸系発疹ウイルス(RSV)からなる群から選ばれる。PIV蛋白質はPIV−
1、PIV−2、PIV−3またはPIV−4、特にPIV−3のHNおよびF
糖蛋白質からである。RSV蛋白質は特にRSVのFまたはG糖蛋白質である。
吸系発疹ウイルス(RSV)からなる群から選ばれる。PIV蛋白質はPIV−
1、PIV−2、PIV−3またはPIV−4、特にPIV−3のHNおよびF
糖蛋白質からである。RSV蛋白質は特にRSVのFまたはG糖蛋白質である。
【0018】 第2DNA配列は全長RSV F蛋白質を符号化し、または経膜アンカおよび
細胞質テールを欠くRSV F蛋白質を符号化する。経膜アンカおよび細胞質テ
ールに対する符号化領域の欠如はRSV F蛋白質の分泌形を生じる。選択的に
、前述の米国特許出願08/896,500に記載のように、第2DNA配列は
全長RSV−G蛋白質または経膜領域を欠く切断RSV G蛋白質を符号化し、
蛋白質の分泌形を生じる。
細胞質テールを欠くRSV F蛋白質を符号化する。経膜アンカおよび細胞質テ
ールに対する符号化領域の欠如はRSV F蛋白質の分泌形を生じる。選択的に
、前述の米国特許出願08/896,500に記載のように、第2DNA配列は
全長RSV−G蛋白質または経膜領域を欠く切断RSV G蛋白質を符号化し、
蛋白質の分泌形を生じる。
【0019】 アルファウイルスは好適にはセムリキ森林ウイルスであり、第1DNA配列は
プラスミドpSFVIに含まれるセムリキ森林ウイルス配列である。
プラスミドpSFVIに含まれるセムリキ森林ウイルス配列である。
【0020】 第3ヌクレオチド配列はin vivoで、異所性mRNAスプライシングを
防ぐ一対のスプライス部位からなり、ここで実質的に投与におけるベクターから
の全ての転写mRNAがRSV蛋白質を符号化する。このような第3ヌクレオチ
ド配列は好適には第1ヌクレオチド配列とプロモータ配列の間に配置される。こ
のような第3ヌクレオチド配列は同時係属米国特許出願番号08/476、39
7(WO96/040945)の図8に示されるように、ウサギβ−グロビンイ
ントロンIIのものである。
防ぐ一対のスプライス部位からなり、ここで実質的に投与におけるベクターから
の全ての転写mRNAがRSV蛋白質を符号化する。このような第3ヌクレオチ
ド配列は好適には第1ヌクレオチド配列とプロモータ配列の間に配置される。こ
のような第3ヌクレオチド配列は同時係属米国特許出願番号08/476、39
7(WO96/040945)の図8に示されるように、ウサギβ−グロビンイ
ントロンIIのものである。
【0021】 プロモータ配列は即時早期サイトメガロウイルス(CMV)プロモータである
。ヒトサイトメガロウイルスイントロンA配列はプロモータの下流および第3ヌ
クレオチド配列の上流で提供される。
。ヒトサイトメガロウイルスイントロンA配列はプロモータの下流および第3ヌ
クレオチド配列の上流で提供される。
【0022】 F蛋白質を符号化し、発明の1つの実施態様に従って提供されるベクターは特
異的にpMP44であり、図1Dに示される同定特性を有する。
異的にpMP44であり、図1Dに示される同定特性を有する。
【0023】 ベクターの投与に従って、ここに提供されるベクターはRSV感染またはRS
V F蛋白質もしくはRSV G蛋白質のin vivo発現による疾患に対し
て宿主を免疫形成するために使用され、経膜領域またはその他のパラミキソウイ
ルス蛋白質を欠く。本発明の追加の側面に従って、それ故に、呼吸系発疹ウイル
スまたはその他のパラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対して宿主に免
疫形成する方法が提供され、それはここに提供されたベクターの有効量を宿主に
投与することからなる。
V F蛋白質もしくはRSV G蛋白質のin vivo発現による疾患に対し
て宿主を免疫形成するために使用され、経膜領域またはその他のパラミキソウイ
ルス蛋白質を欠く。本発明の追加の側面に従って、それ故に、呼吸系発疹ウイル
スまたはその他のパラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対して宿主に免
疫形成する方法が提供され、それはここに提供されたベクターの有効量を宿主に
投与することからなる。
【0024】 本発明はまた呼吸系発疹ウイルスによる感染で生じた疾患に対して宿主を保護
するためにRSV FまたはG蛋白質と特異的に反応する抗体を発生できるRS
V FもしくはG蛋白質またはRSV若しくはG蛋白質の断片を符号化する遺伝
子を用いる新規な方法を含み、それは遺伝子を分離することからなり;少なくと
もアルファウイルスRNAゲノムの部分と相補的で、前記遺伝子とDNA配列が
プロモータの転写制御下にあるベクターを形成するために複製に対して本質的で
ない前記DNA配列の領域の完全なアルファウイルスRNAゲノム複製領域の補
体を有するDNA配列に前記遺伝子を操作的に結合し;宿主にRSV Fまたは
G蛋白質による強化した免疫保護を生じる免疫保護強化配列に遺伝子を操作的に
結合し、好適には制御配列とアルファウイルス配列の間に免疫保護強化配列を導
入することにより;および宿主にベクターを導入する。対応する手順はその他の
パラミキソウイルス科に対して使用される。
するためにRSV FまたはG蛋白質と特異的に反応する抗体を発生できるRS
V FもしくはG蛋白質またはRSV若しくはG蛋白質の断片を符号化する遺伝
子を用いる新規な方法を含み、それは遺伝子を分離することからなり;少なくと
もアルファウイルスRNAゲノムの部分と相補的で、前記遺伝子とDNA配列が
プロモータの転写制御下にあるベクターを形成するために複製に対して本質的で
ない前記DNA配列の領域の完全なアルファウイルスRNAゲノム複製領域の補
体を有するDNA配列に前記遺伝子を操作的に結合し;宿主にRSV Fまたは
G蛋白質による強化した免疫保護を生じる免疫保護強化配列に遺伝子を操作的に
結合し、好適には制御配列とアルファウイルス配列の間に免疫保護強化配列を導
入することにより;および宿主にベクターを導入する。対応する手順はその他の
パラミキソウイルス科に対して使用される。
【0025】 さらに、本発明は、呼吸系発疹ウイルス(RSV)による感染で生じた疾患に
対して宿主の保護のためにワクチンを生産する方法を含み、それはRSVまたは
G蛋白質を符号化する第1DNA配列を分離することからなり、それから経膜ア
ンカおよび細胞質テールが欠如し;少なくともアルファウイルスRNAゲノムの
部分に相補的で、前記第1および第2DNA配列がプロモータの転写制御下にあ
るベクターを形成する複製に本質的でない前記第2DNA配列の領域に完全なア
ルファウイルスゲノム複製領域を有する第2DNA配列に前記第1DNA配列を
操作的に結合し;宿主中のベクターからin vivoで発現すると、RSV
FまたはG蛋白質の免疫保護能力を強化するために第3ヌクレオチド配列に第1
ヌクレオチド配列を操作的に結合し;およびin vivo投与のためのワクチ
ンとしてベクターを調剤する。対応する手順はその他のパラミキソウイルス科に
対して使用される。
対して宿主の保護のためにワクチンを生産する方法を含み、それはRSVまたは
G蛋白質を符号化する第1DNA配列を分離することからなり、それから経膜ア
ンカおよび細胞質テールが欠如し;少なくともアルファウイルスRNAゲノムの
部分に相補的で、前記第1および第2DNA配列がプロモータの転写制御下にあ
るベクターを形成する複製に本質的でない前記第2DNA配列の領域に完全なア
ルファウイルスゲノム複製領域を有する第2DNA配列に前記第1DNA配列を
操作的に結合し;宿主中のベクターからin vivoで発現すると、RSV
FまたはG蛋白質の免疫保護能力を強化するために第3ヌクレオチド配列に第1
ヌクレオチド配列を操作的に結合し;およびin vivo投与のためのワクチ
ンとしてベクターを調剤する。対応する手順はその他のパラミキソウイルス科に
対して使用される。
【0026】 本発明はさらに、ここに記載された方法ならびにベクターの免疫有効量からな
る免疫原組成物により作られた、ヒト宿主を含む、宿主への投与のためのワクチ
ンを含む。
る免疫原組成物により作られた、ヒト宿主を含む、宿主への投与のためのワクチ
ンを含む。
【0027】 (発明の一般的説明) 上述のように、一般に、本発明はDNAベクターを用いるDNA免疫形成によ
りパラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対する宿主の保護に関する。特
に、発明は呼吸系発疹ウイルス(RSV)による感染で生じた疾患に対して宿主
の保護に関するが、特異的にそれに制限されない。続く説明は、RSV Fまた
はGと特異的に反応する抗体を発生するRSV FまたはG蛋白質およびその断
片を符号化するDNA配列を用いることに特異的に関する。
りパラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対する宿主の保護に関する。特
に、発明は呼吸系発疹ウイルス(RSV)による感染で生じた疾患に対して宿主
の保護に関するが、特異的にそれに制限されない。続く説明は、RSV Fまた
はGと特異的に反応する抗体を発生するRSV FまたはG蛋白質およびその断
片を符号化するDNA配列を用いることに特異的に関する。
【0028】 本出願では、用語「RSV F蛋白質」および「RSV G蛋白質」は、RS
Vの種々の系統で天然に生じるものおよび免疫原特性を保持しながら符号化する
遺伝子のPCR増幅で導入されるもの、経膜アンカーおよび細胞質テールを欠く
RSV FおよびGの分泌形、ならびにRSV FおよびG蛋白質および機能的
同族と特異的に反応する抗体を発生できる断片を含む、そのアミノ酸配列の変化
を有する蛋白質を含む、全長RSV FおよびG蛋白質を定義するために使用さ
れる。本出願では、第1蛋白質が免疫学的に第2蛋白質と同じ機能に関連しおよ
び/または有するならば、第2蛋白質の「機能的同族」である。例えば、機能的
同族は蛋白質の断片またはその置換、付加もしくは欠落突然変異体である。
Vの種々の系統で天然に生じるものおよび免疫原特性を保持しながら符号化する
遺伝子のPCR増幅で導入されるもの、経膜アンカーおよび細胞質テールを欠く
RSV FおよびGの分泌形、ならびにRSV FおよびG蛋白質および機能的
同族と特異的に反応する抗体を発生できる断片を含む、そのアミノ酸配列の変化
を有する蛋白質を含む、全長RSV FおよびG蛋白質を定義するために使用さ
れる。本出願では、第1蛋白質が免疫学的に第2蛋白質と同じ機能に関連しおよ
び/または有するならば、第2蛋白質の「機能的同族」である。例えば、機能的
同族は蛋白質の断片またはその置換、付加もしくは欠落突然変異体である。
【0029】 ベクターは少なくともアルファウイルスRNAゲノム、特異的にはセムリキ森
林ウイルスの部分に相補的で、in vivoで複製を可能にする完全なアルフ
ァウイルスRNAゲノム複製領域の補体を有する第1DNA配列を含むように構
成される。RSV FまたはG蛋白質を符号化する第2DNA配列は複製に本質
的でない第1DNA配列の領域に挿入される。第1および第2DNA配列はベク
ターで免疫形成された宿主中にRSV蛋白質の発現を可能にするプロモータの転
写制御下にある。
林ウイルスの部分に相補的で、in vivoで複製を可能にする完全なアルフ
ァウイルスRNAゲノム複製領域の補体を有する第1DNA配列を含むように構
成される。RSV FまたはG蛋白質を符号化する第2DNA配列は複製に本質
的でない第1DNA配列の領域に挿入される。第1および第2DNA配列はベク
ターで免疫形成された宿主中にRSV蛋白質の発現を可能にするプロモータの転
写制御下にある。
【0030】 プロモータ配列は即刻早期サイトメガロウイルス(CMV)プロモータである
。このプロモータは参考文献36に記載される。ラウス肉腫ウイルスLTRsの
ような構成プロモータ、およびメタロチオネインプロモータのような誘発性プロ
モータ、および組織特異性プロモータを含んで、何らかの他の慣用のプロモータ
が使用される。
。このプロモータは参考文献36に記載される。ラウス肉腫ウイルスLTRsの
ような構成プロモータ、およびメタロチオネインプロモータのような誘発性プロ
モータ、および組織特異性プロモータを含んで、何らかの他の慣用のプロモータ
が使用される。
【0031】 組換えベクターは宿主にin vivoで発現されるとRSV FまたはG蛋
白質の免疫保護能力を強化するためにアルファウイルスに隣接して配置された第
3ヌクレオチド配列を含む。このような強化はin vivo発現の増加、例え
ば、mRNA安定性の増加、転写および/または翻訳の強化で、提供される。こ
の追加の配列は好適にはプロモータ配列とアルファウイルスの間に配置される。
白質の免疫保護能力を強化するためにアルファウイルスに隣接して配置された第
3ヌクレオチド配列を含む。このような強化はin vivo発現の増加、例え
ば、mRNA安定性の増加、転写および/または翻訳の強化で、提供される。こ
の追加の配列は好適にはプロモータ配列とアルファウイルスの間に配置される。
【0032】 この強化配列は転写中の異所性mRNAスプライシングを防ぐために一対のス
プライス部位からなるので、実質的に全ての転写mRNAは関心のある遺伝子、
例えば、RSV F蛋白質を符号化するそのままのアルファウイルスRNAであ
る。特異的に、ウサギβ−グロビンイントロンII配列は参考文献37に記載の
ようなスプライス部位を提供する。
プライス部位からなるので、実質的に全ての転写mRNAは関心のある遺伝子、
例えば、RSV F蛋白質を符号化するそのままのアルファウイルスRNAであ
る。特異的に、ウサギβ−グロビンイントロンII配列は参考文献37に記載の
ようなスプライス部位を提供する。
【0033】 追加の強化はプロモータと増強構造配列の間に追加のDNA配列を含むことで
得られる。このような追加のDNA配列は即刻早期サイトメガロウイルスイント
ロンA配列からなる。
得られる。このような追加のDNA配列は即刻早期サイトメガロウイルスイント
ロンA配列からなる。
【0034】 ここに提供されたベクターは、動物に投与されると、投与される動物における
抗体反応および保護の授与で示されるように、in vivoRSV F蛋白質
発現を生じる。以下の実施例に詳述される結果から分かるように、DNAベクタ
ーは高い抗F IgG抗体タイターおよび授与保護を生じた。
抗体反応および保護の授与で示されるように、in vivoRSV F蛋白質
発現を生じる。以下の実施例に詳述される結果から分かるように、DNAベクタ
ーは高い抗F IgG抗体タイターおよび授与保護を生じた。
【0035】 前述の米国特許出願番号08/476,397および08/896,500と
比較して、ここに記載されたベクターは低い薬量および短い時間を用いて保護免
疫反応を提供する。天然のRSV Fを用いる前述の米国特許出願番号08/9
23,558、08/896,550および08/476,397と比較して、
ここに記載のベクターはDNAの摂取を増加し、免疫反応を強化することで知ら
れる物質、カルジオトキシンによる動物モデルの前処理の欠如で保護免疫反応を
生じる。
比較して、ここに記載されたベクターは低い薬量および短い時間を用いて保護免
疫反応を提供する。天然のRSV Fを用いる前述の米国特許出願番号08/9
23,558、08/896,550および08/476,397と比較して、
ここに記載のベクターはDNAの摂取を増加し、免疫反応を強化することで知ら
れる物質、カルジオトキシンによる動物モデルの前処理の欠如で保護免疫反応を
生じる。
【0036】 ここに提供されたベクターもRSVからの追加の抗原、少なくとも1つの他の
病原体またはサイトカインのような少なくとも1つの免疫調節剤を符号化する第
4のヌクレオチド配列からなる。このようなベクターはキメラまたはバイシスト
ロン構造に前記第4ヌクレオチド配列を含む。選択的に、第4ヌクレオチド配列
を含むベクターは分離して構成され、ここに提供されたDNAベクターと共に、
宿主に共投与される。
病原体またはサイトカインのような少なくとも1つの免疫調節剤を符号化する第
4のヌクレオチド配列からなる。このようなベクターはキメラまたはバイシスト
ロン構造に前記第4ヌクレオチド配列を含む。選択的に、第4ヌクレオチド配列
を含むベクターは分離して構成され、ここに提供されたDNAベクターと共に、
宿主に共投与される。
【0037】 さらに、シムリキ森林ウイルス配列の3’末端で適当なin vivo開裂を
保証するために、シムリキ森林ウイルスセグメントの3’末端で、肝炎デルタウ
イルスリボソーム配列が提供される。この効果を達成するために何らかの他の慣
用の配列が使用される。
保証するために、シムリキ森林ウイルスセグメントの3’末端で、肝炎デルタウ
イルスリボソーム配列が提供される。この効果を達成するために何らかの他の慣
用の配列が使用される。
【0038】 技術に熟練した人には、本発明の種々の実施態様がRSV感染の予防接種、診
断および治療の分野で多くの応用を有することは明白である。このような用途の
追加の無制限の議論がさらに以下に示される。
断および治療の分野で多くの応用を有することは明白である。このような用途の
追加の無制限の議論がさらに以下に示される。
【0039】 1.ワクチンの調製および使用 ワクチンとしての使用に好適な免疫原性組成物は、RSVのF遺伝子またはR
SVのG遺伝子、および他のパラミクソウイルス遺伝子、および本明細書中に開
示されているベクターから調製することができる。ワクチンは、抗F抗体または
抗G抗体の産生を誘導する個体での免疫応答を高める。DNAベクターを含有す
る免疫原性組成物(ワクチンを含む)は、生理学的に受容可能な液体溶液での注
射剤、あるいはポリヌクレオチドを投与するための乳剤として調製することがで
きる。核酸は、レシチンリポソーム、または(例えば、国際特許公開WO93/
24640(参考文献38)に記載されている)核酸リポソームとしてこの分野
で知られている他のリポソームなどのリポソームと組み合わせることができる。
あるいは、DNAベクターは、下記においてより詳細に記載されている補助薬と
組み合わせることができる。カチオン性脂質を含むリポソームは、DNAおよび
RNAなどのポリアニオンと自発的かつ迅速に相互作用して、100%までのポ
リヌクレオチドが捕捉されるリポソーム/核酸の複合体をもたらす。さらに、こ
のようなポリカチオン性複合体は細胞膜と融合して、リソソーム小胞の分解性酵
素を迂回するポリヌクレオチドの細胞内送達をもたらす。PCT特許出願公開W
O94/27435は、遺伝子的に免疫化するための組成物であって、カチオン
性脂質およびポリヌクレオチドを含む組成物を記載している。核酸の細胞内取り
込みを助ける媒介因子(カルシウムイオン、ウイルスタンパク質、および他のト
ランスフェクションを容易にする媒介因子など)を都合良く使用することができ
る。
SVのG遺伝子、および他のパラミクソウイルス遺伝子、および本明細書中に開
示されているベクターから調製することができる。ワクチンは、抗F抗体または
抗G抗体の産生を誘導する個体での免疫応答を高める。DNAベクターを含有す
る免疫原性組成物(ワクチンを含む)は、生理学的に受容可能な液体溶液での注
射剤、あるいはポリヌクレオチドを投与するための乳剤として調製することがで
きる。核酸は、レシチンリポソーム、または(例えば、国際特許公開WO93/
24640(参考文献38)に記載されている)核酸リポソームとしてこの分野
で知られている他のリポソームなどのリポソームと組み合わせることができる。
あるいは、DNAベクターは、下記においてより詳細に記載されている補助薬と
組み合わせることができる。カチオン性脂質を含むリポソームは、DNAおよび
RNAなどのポリアニオンと自発的かつ迅速に相互作用して、100%までのポ
リヌクレオチドが捕捉されるリポソーム/核酸の複合体をもたらす。さらに、こ
のようなポリカチオン性複合体は細胞膜と融合して、リソソーム小胞の分解性酵
素を迂回するポリヌクレオチドの細胞内送達をもたらす。PCT特許出願公開W
O94/27435は、遺伝子的に免疫化するための組成物であって、カチオン
性脂質およびポリヌクレオチドを含む組成物を記載している。核酸の細胞内取り
込みを助ける媒介因子(カルシウムイオン、ウイルスタンパク質、および他のト
ランスフェクションを容易にする媒介因子など)を都合良く使用することができ
る。
【0040】 ポリヌクレオチドの免疫原性調製物はまた、生分解性の時間放出粒子を含むマ
イクロカプセルとして配合することができる。例えば、米国特許第5,151,
264号は、Bio Vecteurs Supra Moleculaire
s(BVSM)と呼ばれている一種のリン脂質/糖脂質/多糖の粒子状キャリア
を記載している。この粒子状キャリアは、生物学的活性を有する様々な分子をそ
の層の1つに輸送することを目的としている。
イクロカプセルとして配合することができる。例えば、米国特許第5,151,
264号は、Bio Vecteurs Supra Moleculaire
s(BVSM)と呼ばれている一種のリン脂質/糖脂質/多糖の粒子状キャリア
を記載している。この粒子状キャリアは、生物学的活性を有する様々な分子をそ
の層の1つに輸送することを目的としている。
【0041】 米国特許第5,075,109号は、50:50のポリ(DL−ラクチド−c
o−グリコリド)における抗原(トリニトロフェニル化されたキーホールリンペ
ットヘモシアニンおよびブドウ球菌のエンテロトキシンB)のカプセル化を記載
している。他のカプセル化ポリマーとして、ポリ(グリコリド)、ポリ(DL−
ラクチド−co−グリコリド)、コポリオキサラート類、ポリカプロラクトン、
ポリ(ラクチド−co−カプロラクトン)、ポリ(エステルアミド)、ポリオル
トエステル、ならびにポリ(艨|ヒドロキシ酪酸)およびポリ無水物などが提案
されている。
o−グリコリド)における抗原(トリニトロフェニル化されたキーホールリンペ
ットヘモシアニンおよびブドウ球菌のエンテロトキシンB)のカプセル化を記載
している。他のカプセル化ポリマーとして、ポリ(グリコリド)、ポリ(DL−
ラクチド−co−グリコリド)、コポリオキサラート類、ポリカプロラクトン、
ポリ(ラクチド−co−カプロラクトン)、ポリ(エステルアミド)、ポリオル
トエステル、ならびにポリ(艨|ヒドロキシ酪酸)およびポリ無水物などが提案
されている。
【0042】 PCT特許出願公開WO91/06282は、複数の生体接着性マイクロスフ
ェアおよび抗原を含む送達ビヒクルを記載している。このようなマイクロスフェ
アは、デンプン、ゼラチン、デキストラン、コラーゲンまたはアルブミンから作
製される。この送達ビヒクルは、粘膜を経由するワクチンの取り込みを特に目的
としている。この送達ビヒクルは、吸収強化剤をさらに含有することができる。
ェアおよび抗原を含む送達ビヒクルを記載している。このようなマイクロスフェ
アは、デンプン、ゼラチン、デキストラン、コラーゲンまたはアルブミンから作
製される。この送達ビヒクルは、粘膜を経由するワクチンの取り込みを特に目的
としている。この送達ビヒクルは、吸収強化剤をさらに含有することができる。
【0043】 RSVのF遺伝子またはG遺伝子およびベクターは、それらと適合し得る薬学
的に受容可能な賦形剤と混合することができる。そのような賦形剤として、水、
生理食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールおよびそれらの組み合
わせを挙げることができる。免疫原性組成物およびワクチンは、湿潤剤または乳
化剤、pH緩衝化剤、あるいはそれらの効力を高めるための補助薬などの補助的
な物質をさらに含有することができる。免疫原性組成物およびワクチンは、局所
麻酔による注射部位の前処置の後で可能であるが、皮下注射、静脈内注射、皮内
注射または筋肉内注射によって非経口的に投与することができる。あるいは、本
発明によって得られる免疫原性組成物は、粘膜表面での免疫応答が惹起されるよ
うに配合および送達することができる。従って、免疫原性組成物は、例えば、鼻
腔経路または経口(胃内)経路によって粘膜表面に投与することができる。ある
いは、坐薬および経口配合物を含む他の投与様式が望ましい場合がある。坐薬の
場合、バインダーおよびキャリアには、例えば、ポリアルカレングリコールまた
はトリグリセリドを含むことができる。経口配合物には、通常用いられている賦
形剤を含むことができる。そのような賦形剤は、例えば、製薬規格のサッカリン
、セルロースおよび炭酸マグネシウムなどである。
的に受容可能な賦形剤と混合することができる。そのような賦形剤として、水、
生理食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールおよびそれらの組み合
わせを挙げることができる。免疫原性組成物およびワクチンは、湿潤剤または乳
化剤、pH緩衝化剤、あるいはそれらの効力を高めるための補助薬などの補助的
な物質をさらに含有することができる。免疫原性組成物およびワクチンは、局所
麻酔による注射部位の前処置の後で可能であるが、皮下注射、静脈内注射、皮内
注射または筋肉内注射によって非経口的に投与することができる。あるいは、本
発明によって得られる免疫原性組成物は、粘膜表面での免疫応答が惹起されるよ
うに配合および送達することができる。従って、免疫原性組成物は、例えば、鼻
腔経路または経口(胃内)経路によって粘膜表面に投与することができる。ある
いは、坐薬および経口配合物を含む他の投与様式が望ましい場合がある。坐薬の
場合、バインダーおよびキャリアには、例えば、ポリアルカレングリコールまた
はトリグリセリドを含むことができる。経口配合物には、通常用いられている賦
形剤を含むことができる。そのような賦形剤は、例えば、製薬規格のサッカリン
、セルロースおよび炭酸マグネシウムなどである。
【0044】 免疫原性調製物およびワクチンは、投薬配合物と適合し得る方法で、そして治
療的に効果的で、保護的かつ免疫原性であるような量で投与される。投与量は、
処置しようとする個体に依存する。これには、例えば、RSVのFタンパク質お
よびそれに対する抗体を合成し、そして必要な場合には、細胞媒介型免疫応答を
産生する個体の免疫系の能力が含まれる。投与に必要な有効成分の正確な量は、
実施者の判断に依存する。しかし、好適な用量範囲は、当業者によって容易に決
定することができ、RSVのF遺伝子またはG遺伝子およびベクターを約1μg
〜約1mgの程度とすることができる。最初の投与用量および追加抗原刺激用量
に関して適切な方法もまた変化し得るが、最初に投与し、その後、引き続く複数
回の投与を含むことができる。投薬もまた、投薬経路に依存する場合があり、そ
して宿主の大きさによって変化する。1つの病原体だけに対して保護するワクチ
ンは、一価のワクチンである。いくつかの病原体の抗原性物質を含有するワクチ
ンは混合ワクチンであり、これもまた本発明に属する。そのような混合ワクチン
は、例えば、様々な病原体、または同じ病原体の様々な株、または様々な病原体
の組み合わせに由来する物質を含有する。
療的に効果的で、保護的かつ免疫原性であるような量で投与される。投与量は、
処置しようとする個体に依存する。これには、例えば、RSVのFタンパク質お
よびそれに対する抗体を合成し、そして必要な場合には、細胞媒介型免疫応答を
産生する個体の免疫系の能力が含まれる。投与に必要な有効成分の正確な量は、
実施者の判断に依存する。しかし、好適な用量範囲は、当業者によって容易に決
定することができ、RSVのF遺伝子またはG遺伝子およびベクターを約1μg
〜約1mgの程度とすることができる。最初の投与用量および追加抗原刺激用量
に関して適切な方法もまた変化し得るが、最初に投与し、その後、引き続く複数
回の投与を含むことができる。投薬もまた、投薬経路に依存する場合があり、そ
して宿主の大きさによって変化する。1つの病原体だけに対して保護するワクチ
ンは、一価のワクチンである。いくつかの病原体の抗原性物質を含有するワクチ
ンは混合ワクチンであり、これもまた本発明に属する。そのような混合ワクチン
は、例えば、様々な病原体、または同じ病原体の様々な株、または様々な病原体
の組み合わせに由来する物質を含有する。
【0045】 本発明の特定の実施形態において、RSVのFタンパク質またはGタンパク質
をコードする第1のヌクレオチド配列を含むベクターは、免疫系の細胞を含む特
定の細胞にベクターを標的化する標的化分子と一緒に送達することができる。
をコードする第1のヌクレオチド配列を含むベクターは、免疫系の細胞を含む特
定の細胞にベクターを標的化する標的化分子と一緒に送達することができる。
【0046】 DNAベクターは、様々な手順によって宿主に送達することができる。例えば
、Tang他(参考文献39)は、ウシ成長ホルモン(BGH)をコードするD
NAでコーティングされた金微粒子をマウスの皮膚に導入することによって、抗
BGH抗体がマウスにおいて産生したことを開示し、Furth他(参考文献4
0)は、ジェット注入器が、生きた動物の皮膚、筋肉、脂肪組織および乳房組織
をトランスフェクションするために使用できることを示した。
、Tang他(参考文献39)は、ウシ成長ホルモン(BGH)をコードするD
NAでコーティングされた金微粒子をマウスの皮膚に導入することによって、抗
BGH抗体がマウスにおいて産生したことを開示し、Furth他(参考文献4
0)は、ジェット注入器が、生きた動物の皮膚、筋肉、脂肪組織および乳房組織
をトランスフェクションするために使用できることを示した。
【0047】 2.免疫アッセイ 本発明のRSVのF遺伝子またはG遺伝子およびベクターは、酵素結合免疫吸
着アッセイ(ELISA)、RIAおよび他の非酵素結合型抗体結合アッセイま
たはこの分野で知られている手順を含む免疫アッセイにおいて使用される抗F抗
体または抗G抗体を作製するための免疫源として有用である。ELISAアッセ
イにおいて、ベクターが、RSVのFタンパク質またはGタンパク質に対して、
あるいは他のパラミクソウイルスのタンパク質に対して特異的な抗体を作製する
ために最初に宿主に投与される。これらのRSVF特異的抗体またはRSVG特
異的抗体が、特定の表面に、例えば、ポリスチレン製マイクロタイタープレート
のウエルなどの抗体を結合し得る特定の固定化される。完全に吸着していない抗
体を除くために洗浄した後、試験サンプルに関して抗原性的に中性であることが
知られているウシ血清アルブミン(BSA)の溶液などの非特異的なタンパク質
をそのような特定の表面に結合させることができる。これにより、固定化表面に
おける非特異的な吸着部位がブロッキングされ、従って、抗血清の表面への非特
異的な結合によって生じるバックグラウンドを減らすことができる。
着アッセイ(ELISA)、RIAおよび他の非酵素結合型抗体結合アッセイま
たはこの分野で知られている手順を含む免疫アッセイにおいて使用される抗F抗
体または抗G抗体を作製するための免疫源として有用である。ELISAアッセ
イにおいて、ベクターが、RSVのFタンパク質またはGタンパク質に対して、
あるいは他のパラミクソウイルスのタンパク質に対して特異的な抗体を作製する
ために最初に宿主に投与される。これらのRSVF特異的抗体またはRSVG特
異的抗体が、特定の表面に、例えば、ポリスチレン製マイクロタイタープレート
のウエルなどの抗体を結合し得る特定の固定化される。完全に吸着していない抗
体を除くために洗浄した後、試験サンプルに関して抗原性的に中性であることが
知られているウシ血清アルブミン(BSA)の溶液などの非特異的なタンパク質
をそのような特定の表面に結合させることができる。これにより、固定化表面に
おける非特異的な吸着部位がブロッキングされ、従って、抗血清の表面への非特
異的な結合によって生じるバックグラウンドを減らすことができる。
【0048】 次いで、固定化表面は、免疫複合体(抗原/抗体)の形成が促進される方法で
臨床的材料または生物学的材料などの試験サンプルと接触させられる。この手順
には、BSA、ウシγグロブリン(BGG)および/またはリン酸緩衝化生理食
塩水(PBS)/ツィーンの溶液などの希釈剤でサンプルを希釈することを含む
ことができる。サンプルは、次いで、約2時間〜4時間、約20℃〜37℃の程
度などの温度でインキュベーションすることができる。インキュベーション後、
サンプルと接触した表面を洗浄して、免疫複合体を形成しなかった物質が除かれ
る。洗浄手順には、PBS/ツィーンまたはホウ酸緩衝液などの溶液で洗浄する
ことを含むことができる。試験サンプルおよび結合したRSVF特異的抗体の特
異的な免疫複合体を形成させ、そしてその後の洗浄を行った後、免疫複合体形成
の存在およびその量さえも決定することができる。
臨床的材料または生物学的材料などの試験サンプルと接触させられる。この手順
には、BSA、ウシγグロブリン(BGG)および/またはリン酸緩衝化生理食
塩水(PBS)/ツィーンの溶液などの希釈剤でサンプルを希釈することを含む
ことができる。サンプルは、次いで、約2時間〜4時間、約20℃〜37℃の程
度などの温度でインキュベーションすることができる。インキュベーション後、
サンプルと接触した表面を洗浄して、免疫複合体を形成しなかった物質が除かれ
る。洗浄手順には、PBS/ツィーンまたはホウ酸緩衝液などの溶液で洗浄する
ことを含むことができる。試験サンプルおよび結合したRSVF特異的抗体の特
異的な免疫複合体を形成させ、そしてその後の洗浄を行った後、免疫複合体形成
の存在およびその量さえも決定することができる。
【0049】 (生物学的寄託物) RSVのFタンパク質をコードする遺伝子を含有し、本明細書中で参照される
いくつかのベクターは、ブタペスト条約に従い、そして本特許出願が行われる前
に、American Type Culture Collection(A
TCC)(所在地:10801 University Boulevard、
Manassas、VA 20110−2209、アメリカ)に寄託された。
いくつかのベクターは、ブタペスト条約に従い、そして本特許出願が行われる前
に、American Type Culture Collection(A
TCC)(所在地:10801 University Boulevard、
Manassas、VA 20110−2209、アメリカ)に寄託された。
【0050】 寄託されたプラスミドサンプルは、この米国特許出願に基づいて特許が付与さ
れたときに一般に入手可能になり、そして寄託物の取り扱いに関する制限はその
ときに除かれるであろう。非生存寄託物は取り換えられる。本明細書中に記載さ
れ、そして請求される発明は、寄託されたプラスミドによって範囲が限定される
ものではない:寄託された実施形態は本発明を単に例示するものとして意図され
るからである。本特許出願において寄託されたのと類似または等価な抗原をコー
ドする等価なプラスミドまたは類似するプラスミドはいずれも本発明の範囲に含
まれる。
れたときに一般に入手可能になり、そして寄託物の取り扱いに関する制限はその
ときに除かれるであろう。非生存寄託物は取り換えられる。本明細書中に記載さ
れ、そして請求される発明は、寄託されたプラスミドによって範囲が限定される
ものではない:寄託された実施形態は本発明を単に例示するものとして意図され
るからである。本特許出願において寄託されたのと類似または等価な抗原をコー
ドする等価なプラスミドまたは類似するプラスミドはいずれも本発明の範囲に含
まれる。
【0051】 寄託物の一覧 プラスミド ATCC番号 寄託日 pMP37 97905 1997年2月27日 pMP42 実施例 上記の開示は、本発明を一般的に説明している。より完全な理解は、下記の具
体的な実施例を参照することによって得ることができる。これらの実施例は、例
示するために記載されているだけであり、本発明の範囲を限定することを目的と
していない。状況により示唆され、あるいは役に立つ均等物の形態および代替に
おける様々な変化は包含される。特定の用語が本明細書中で用いられているが、
そのような用語は、説明的な意味で意図されており、限定するためのものではな
い。
体的な実施例を参照することによって得ることができる。これらの実施例は、例
示するために記載されているだけであり、本発明の範囲を限定することを目的と
していない。状況により示唆され、あるいは役に立つ均等物の形態および代替に
おける様々な変化は包含される。特定の用語が本明細書中で用いられているが、
そのような用語は、説明的な意味で意図されており、限定するためのものではな
い。
【0052】 本開示およびこれらの実施例において使用されているが、明確に記載されてい
ない分子遺伝学、タンパク質生化学および免疫学の方法は、科学的文献に詳細に
報告されており、そして当業者の能力の範囲に十分含まれる。
ない分子遺伝学、タンパク質生化学および免疫学の方法は、科学的文献に詳細に
報告されており、そして当業者の能力の範囲に十分含まれる。
【0053】 実施例1 本実施例は、図1A〜1Bに概略されているように、短縮化されたRSVのF
遺伝子を含有するセムリキ森林熱ウイルス(SFV)のDNA発現ベクターを構
築するためのスキームを記載する。
遺伝子を含有するセムリキ森林熱ウイルス(SFV)のDNA発現ベクターを構
築するためのスキームを記載する。
【0054】 プラスミドVR1012をPstIで制限消化し、次いで、T4DNAポリメ
ラーゼを用いて平滑末端にした。β−グロビンのイントロンIIをベクターpS
G5(Stratagene)から切り出し、そしてプラスミドVR1012に
連結してプラスミドpIIEを作製した。次いで、プラスミドpIIEをSal
IおよびEcoRVで制限消化して、下記のヌクレオチド配列を有するPCRフ
ラグメントに連結した: TCGACATGGCGGATGTGTGACATACACGACGCCAA
AAGATTTTGTTCCAGCTCCTGCCACCTCCGCTACGC
GAGAGATTAACCACCCACGATGGCCGCCAAAGTGCA
TGTTGATATTGAGGCTGACAGCCCATTCATCAAGTC
TTTGCAGAAGGCATTTCCGTCGTTCGAGGTGGAGTC
ATTGCAGGTCACACCAAATGACCATGCAAATGCCAG
AGCATTTTCGCACCTGGCTACCAAATTGATCGAGCA
GGAGACTGACAAAGACACACTCATCTTGGAT(配列番号
7)。この配列は、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATAT
CCAAGATGAGTGTG(配列番号5)を有するプライマーSAL−SF
Vと、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATATCCAAGA
TGAGTGTG(配列番号6)を有するプライマーECO−SFVとを用いて
pSFVIから得られた。次いで、得られたプラスミドpMP38をEcpRV
およびBamHIで制限消化し、次いで脱リン酸化した。次いで、プラスミドp
SVFIlink(同時係属中の特許出願第 (b/o1038−76
6)を参照のこと)をSpeIで制限消化して、芟^肝炎リボザイム(図5、配
列番号2および配列番号3)に連結した。次いで、連結反応物をEcoRVで制
限消化して、SFV−RSVFの大部分+リボザイムのフラグメントを取り出し
た。次いで、このフラグメントを、EcoRV/BamHIで制限消化したpM
P38に連結してpMP41を作製した。
ラーゼを用いて平滑末端にした。β−グロビンのイントロンIIをベクターpS
G5(Stratagene)から切り出し、そしてプラスミドVR1012に
連結してプラスミドpIIEを作製した。次いで、プラスミドpIIEをSal
IおよびEcoRVで制限消化して、下記のヌクレオチド配列を有するPCRフ
ラグメントに連結した: TCGACATGGCGGATGTGTGACATACACGACGCCAA
AAGATTTTGTTCCAGCTCCTGCCACCTCCGCTACGC
GAGAGATTAACCACCCACGATGGCCGCCAAAGTGCA
TGTTGATATTGAGGCTGACAGCCCATTCATCAAGTC
TTTGCAGAAGGCATTTCCGTCGTTCGAGGTGGAGTC
ATTGCAGGTCACACCAAATGACCATGCAAATGCCAG
AGCATTTTCGCACCTGGCTACCAAATTGATCGAGCA
GGAGACTGACAAAGACACACTCATCTTGGAT(配列番号
7)。この配列は、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATAT
CCAAGATGAGTGTG(配列番号5)を有するプライマーSAL−SF
Vと、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATATCCAAGA
TGAGTGTG(配列番号6)を有するプライマーECO−SFVとを用いて
pSFVIから得られた。次いで、得られたプラスミドpMP38をEcpRV
およびBamHIで制限消化し、次いで脱リン酸化した。次いで、プラスミドp
SVFIlink(同時係属中の特許出願第 (b/o1038−76
6)を参照のこと)をSpeIで制限消化して、芟^肝炎リボザイム(図5、配
列番号2および配列番号3)に連結した。次いで、連結反応物をEcoRVで制
限消化して、SFV−RSVFの大部分+リボザイムのフラグメントを取り出し
た。次いで、このフラグメントを、EcoRV/BamHIで制限消化したpM
P38に連結してpMP41を作製した。
【0055】 実施例2 本実施例は、図2に概略されているように、プラスミドpMP44を構築する
ための代わりのスキームを記載する。
ための代わりのスキームを記載する。
【0056】 プラスミドVR1012をPstIで制限消化し、次いで、T4DNAポリメ
ラーゼを用いて平滑末端にした。β−グロビンのイントロンIIをベクターpS
G5(Stratagene)から切り出し、そしてプラスミドVR1012に
連結してプラスミドpIIEを作製した。次いで、プラスミドpIIEをSal
IおよびEcoRVで制限消化して、下記のヌクレオチド配列を有するPCRフ
ラグメントに連結した: TCGACATGGCGGATGTGTGACATACACGACGCCAA
AAGATTTTGTTCCAGCTCCTGCCACCTCCGCTACGC
GAGAGATTAACCACCCACGATGGCCGCCAAAGTGCA
TGTTGATATTGAGGCTGACAGCCCATTCATCAAGTC
TTTGCAGAAGGCATTTCCGTCGTTCGAGGTGGAGTC
ATTGCAGGTCACACCAAATGACCATGCAAATGCCAG
AGCATTTTCGCACCTGGCTACCAAATTGATCGAGCA
GGAGACTGACAAAGACACACTCATCTTGGAT(配列番号
7)。この配列は、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATAT
CCAAGATGAGTGTG(配列番号5)を有するプライマーSAL−SF
Vと、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATATCCAAGA
TGAGTGTG(配列番号6)を有するプライマーECO−SFVとを用いて
pSFVIから得られた。次いで、得られたプラスミドpMP38をEcpRV
およびBamHIで制限消化し、次いで脱リン酸化した。次いで、プラスミドp
SVFIlink(同時係属中の特許出願第 (b/o1038−76
6)を参照のこと)をSpeIで制限消化して、δ肝炎リボザイム(図5、配列
番号2および配列番号3)に連結した。
ラーゼを用いて平滑末端にした。β−グロビンのイントロンIIをベクターpS
G5(Stratagene)から切り出し、そしてプラスミドVR1012に
連結してプラスミドpIIEを作製した。次いで、プラスミドpIIEをSal
IおよびEcoRVで制限消化して、下記のヌクレオチド配列を有するPCRフ
ラグメントに連結した: TCGACATGGCGGATGTGTGACATACACGACGCCAA
AAGATTTTGTTCCAGCTCCTGCCACCTCCGCTACGC
GAGAGATTAACCACCCACGATGGCCGCCAAAGTGCA
TGTTGATATTGAGGCTGACAGCCCATTCATCAAGTC
TTTGCAGAAGGCATTTCCGTCGTTCGAGGTGGAGTC
ATTGCAGGTCACACCAAATGACCATGCAAATGCCAG
AGCATTTTCGCACCTGGCTACCAAATTGATCGAGCA
GGAGACTGACAAAGACACACTCATCTTGGAT(配列番号
7)。この配列は、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATAT
CCAAGATGAGTGTG(配列番号5)を有するプライマーSAL−SF
Vと、ヌクレオチド配列5秩|TCCACCTCCAAGATATCCAAGA
TGAGTGTG(配列番号6)を有するプライマーECO−SFVとを用いて
pSFVIから得られた。次いで、得られたプラスミドpMP38をEcpRV
およびBamHIで制限消化し、次いで脱リン酸化した。次いで、プラスミドp
SVFIlink(同時係属中の特許出願第 (b/o1038−76
6)を参照のこと)をSpeIで制限消化して、δ肝炎リボザイム(図5、配列
番号2および配列番号3)に連結した。
【0057】 次いで、連結反応生成物をEcoRVで制限消化して、SFVレプリコン+図
6A〜6Cに概略されるヌクレオチド配列を有するリボザイムを取り出した。次
いで、このフラグメントを、EcoRV/BamHIで制限消化したpMP38
に連結してpMP42を作製した。RSVのF遺伝子フラグメントをBamHI
による制限消化によってpMP37から取り出し、そしてこのフラグメントをp
MP42のBamHI部位に連結して、pMP44を作製した。pMP44のヌ
クレオチド配列を図3A〜3Eに示す。
6A〜6Cに概略されるヌクレオチド配列を有するリボザイムを取り出した。次
いで、このフラグメントを、EcoRV/BamHIで制限消化したpMP38
に連結してpMP42を作製した。RSVのF遺伝子フラグメントをBamHI
による制限消化によってpMP37から取り出し、そしてこのフラグメントをp
MP42のBamHI部位に連結して、pMP44を作製した。pMP44のヌ
クレオチド配列を図3A〜3Eに示す。
【0058】 実施例3 本実施例は、pMP44によるマウスの免疫化および得られた免疫原性の結果
を記載する。
を記載する。
【0059】 BALB/Cマウスを、プラスミドpMP44を用いて筋肉内(i.m.)経
路によって免疫化した。6匹のBALB/Cマウスの前脛骨筋に、100μgの
プラスミドpMP44をそれぞれ両側に注射した。この量は、コピー数に基づい
て、従来型ベクターの約94μgに等しい。これらのマウスは、4週間後に同一
の方法で追加免疫された。コントロール群は、本出願人による上記の米国特許出
願第08/923,558号に記載されているように25μgのSFV−RSV
FのRNAで2回免疫化されたが、筋肉はカルジオトキシンによる前処理は行わ
れなかった。免疫化プロトコルを下記の表1に示す:
路によって免疫化した。6匹のBALB/Cマウスの前脛骨筋に、100μgの
プラスミドpMP44をそれぞれ両側に注射した。この量は、コピー数に基づい
て、従来型ベクターの約94μgに等しい。これらのマウスは、4週間後に同一
の方法で追加免疫された。コントロール群は、本出願人による上記の米国特許出
願第08/923,558号に記載されているように25μgのSFV−RSV
FのRNAで2回免疫化されたが、筋肉はカルジオトキシンによる前処理は行わ
れなかった。免疫化プロトコルを下記の表1に示す:
【0060】
【表1】
【0061】 マウスは下記のように接種された: 1.25μgのRNAを、50μlのPBSで、それぞれの後ろ脚の筋肉に注
射した。
射した。
【0062】 2.100μgのDNAを、50μlのPBSで、それぞれの後ろ脚の筋肉に
注射した。
注射した。
【0063】 血清を、4週間目および6週間目のマウスから採取した。これらの血清におい
ける抗RSVF抗体力価(IgG)を、実施例3に記載されているように、酵素
結合免疫吸着アッセイ(ELISA)によって測定した。
ける抗RSVF抗体力価(IgG)を、実施例3に記載されているように、酵素
結合免疫吸着アッセイ(ELISA)によって測定した。
【0064】 BALB/Cマウスの血清における抗RSVFのIgG抗体の応答を図4にま
とめる。DNA構築物(pMP44)で免疫化されたマウスは、SFV−RSV
FのRNAで免疫化されたマウスよりも大きな抗F力価を有していた。
とめる。DNA構築物(pMP44)で免疫化されたマウスは、SFV−RSV
FのRNAで免疫化されたマウスよりも大きな抗F力価を有していた。
【0065】 2回目の免疫化を行った2週間後、マウスに、104プラーク形成単位(pf
u)のRSVのA1株(BG−4A)を鼻腔内に免疫原投与した。4日後、動物
を屠殺した。肺を無菌的に取り出し、重量を測定し、そして2mLの完全な培養
培地でホモジネーションした。肺のホモジネーション化物におけるウイルス力価
を、以前の記載(参考文献41)に従ってvero細胞を使用して二連で測定し
た。
u)のRSVのA1株(BG−4A)を鼻腔内に免疫原投与した。4日後、動物
を屠殺した。肺を無菌的に取り出し、重量を測定し、そして2mLの完全な培養
培地でホモジネーションした。肺のホモジネーション化物におけるウイルス力価
を、以前の記載(参考文献41)に従ってvero細胞を使用して二連で測定し
た。
【0066】 下記の表2から理解されるように、pMP44のDNAによるマウスの免疫化
によって、マウス(5/6)は生RSVの抗原投与に対して保護されたが、これ
は、SFV−RSVFのRNAによる免疫化が得られたときに保護が得られなか
ったこととは対照的であった。この結果は、カルジオトキシンによる前処置の後
で保護が得られるという結果が示される米国特許出願第08/923,558号
、同第08/476,397号および同第08/896,500号に記載されて
いるように、SFV−RSVFのRNAを使用して得られる完全な保護と対比さ
れる。
によって、マウス(5/6)は生RSVの抗原投与に対して保護されたが、これ
は、SFV−RSVFのRNAによる免疫化が得られたときに保護が得られなか
ったこととは対照的であった。この結果は、カルジオトキシンによる前処置の後
で保護が得られるという結果が示される米国特許出願第08/923,558号
、同第08/476,397号および同第08/896,500号に記載されて
いるように、SFV−RSVFのRNAを使用して得られる完全な保護と対比さ
れる。
【0067】
【表2】
【0068】 実施例4 本実施例は、抗RSVF抗体力価の測定を記載する。
【0069】 Nunc−MaxiSorpプレートのウエルを、一晩、室温で、0.05M
の炭酸塩−重炭酸塩緩衝液(pH9.6)で希釈した2.5ngの免疫アフィニ
ティー精製したRSVのFタンパク質でコーティングした。ウエルの非特異的結
合に対するブロッキングを、0.1%BSA/PBSを室温で30分間加え、そ
の後、0.1%BSA/PBS+0.1%ツィーン20の洗浄緩衝液で2回洗浄
することによって行った。2倍または4倍の連続希釈列のマウス血清をウエルに
加えた。1時間のインキュベーションを室温で行った後、プレートを洗浄緩衝液
で5回洗浄して、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識結合物を洗浄緩衝
液での適切な最適希釈度で加えた。すべてのIgGアッセイには、Jackso
n Immuno Research Labortory Inc.(Bal
timore、MD、アメリカ)から得られるF(ab’)2ヤギ抗マウスIg
G(H+L特異的)−HRPを使用した。Serotec(Toronto、O
ntario、カナダ)から得られるヒツジ抗マウスIgG1−HRPをIgG
1アッセイにおいて使用し、そしてCaltag Labortories(S
an Francisco、CA、アメリカ)から得られるヤギ抗マウスIgG
2aをIgG2aアッセイにおいて使用した。室温で1時間のインキュベーショ
ンを行った後、プレートを洗浄緩衝液で5回洗浄して、過酸化水素(基質)をテ
トラメチルベンジジンの存在下で加えた。反応を、2M硫酸を加えることによっ
て停止させた。発色を、Multiscan Titertekプレート読み取
り装置により450nmの光学密度(OD)で読み取った。力価は、ODが約2
倍になった最終希釈度の逆数とした。このODは、開始希釈度におけるアッセイ
の陰性コントロールよりも大きくなければならない。各動物の免疫化前の血清を
陰性コントロールとして使用した。
の炭酸塩−重炭酸塩緩衝液(pH9.6)で希釈した2.5ngの免疫アフィニ
ティー精製したRSVのFタンパク質でコーティングした。ウエルの非特異的結
合に対するブロッキングを、0.1%BSA/PBSを室温で30分間加え、そ
の後、0.1%BSA/PBS+0.1%ツィーン20の洗浄緩衝液で2回洗浄
することによって行った。2倍または4倍の連続希釈列のマウス血清をウエルに
加えた。1時間のインキュベーションを室温で行った後、プレートを洗浄緩衝液
で5回洗浄して、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識結合物を洗浄緩衝
液での適切な最適希釈度で加えた。すべてのIgGアッセイには、Jackso
n Immuno Research Labortory Inc.(Bal
timore、MD、アメリカ)から得られるF(ab’)2ヤギ抗マウスIg
G(H+L特異的)−HRPを使用した。Serotec(Toronto、O
ntario、カナダ)から得られるヒツジ抗マウスIgG1−HRPをIgG
1アッセイにおいて使用し、そしてCaltag Labortories(S
an Francisco、CA、アメリカ)から得られるヤギ抗マウスIgG
2aをIgG2aアッセイにおいて使用した。室温で1時間のインキュベーショ
ンを行った後、プレートを洗浄緩衝液で5回洗浄して、過酸化水素(基質)をテ
トラメチルベンジジンの存在下で加えた。反応を、2M硫酸を加えることによっ
て停止させた。発色を、Multiscan Titertekプレート読み取
り装置により450nmの光学密度(OD)で読み取った。力価は、ODが約2
倍になった最終希釈度の逆数とした。このODは、開始希釈度におけるアッセイ
の陰性コントロールよりも大きくなければならない。各動物の免疫化前の血清を
陰性コントロールとして使用した。
【0070】 (開示の要約) 本開示を要約すると、本発明は、RSVのFタンパク質またはRSVのGタン
パク質、あるいは他のパラミクソウイルスのタンパク質をコードする遺伝子を含
有するいくつかの新規なアルファウイルス由来のDNAベクター、およびそのよ
うなベクターを使用する免疫化方法、およびそのようなベクターを使用する診断
方法を提供する。改変もまた本発明の範囲内であり得る。
パク質、あるいは他のパラミクソウイルスのタンパク質をコードする遺伝子を含
有するいくつかの新規なアルファウイルス由来のDNAベクター、およびそのよ
うなベクターを使用する免疫化方法、およびそのようなベクターを使用する診断
方法を提供する。改変もまた本発明の範囲内であり得る。
【0071】
【表3】
【0072】
【表4】
【0073】
【表5】
【0074】
【表6】
【図1A】 ベクターpMP44の構築の手順の図解を示す。
【図1B】 ベクターpMP44の構築の手順の図解を示す。
【図2A】 ベクターpMP44の構築の手順の図解を示す。
【図2B】 ベクターpMP44の構築の手順の図解を示す。
【図3A】 プラスミドpMP44のヌクレオチド配列(配列番号:1)を含むものである
。
。
【図3B】 プラスミドpMP44のヌクレオチド配列(配列番号:1)を含むものである
。
。
【図3C】 プラスミドpMP44のヌクレオチド配列(配列番号:1)を含むものである
。
。
【図3D】 プラスミドpMP44のヌクレオチド配列(配列番号:1)を含むものである
。
。
【図3E】 プラスミドpMP44のヌクレオチド配列(配列番号:1)を含むものである
。
。
【図4】 開始後4週および追加免疫後2週で採られたマウスの血清の抗RSV Fタイ
ターを示す。
ターを示す。
【図5】 肝炎デルタリボザイムを符号化する合成オリゴヌクレオチドに対するヌクレオ
チド配列(配列番号:2、3)を示す。
チド配列(配列番号:2、3)を示す。
【図6A】 図5のリボザイムに結合したSFV EcoRV−SpeI断片に対するヌク
レオチド配列を示す。
レオチド配列を示す。
【図6B】 図5のリボザイムに結合したSFV EcoRV−SpeI断片に対するヌク
レオチド配列を示す。
レオチド配列を示す。
【図6C】 図5のリボザイムに結合したSFV EcoRV−SpeI断片に対するヌク
レオチド配列を示す。
レオチド配列を示す。
【手続補正書】
【提出日】平成12年7月11日(2000.7.11)
【手続補正1】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正内容】
【特許請求の範囲】
【化1】
のプラスミドpMP44の特性を有する請求項1〜11のいずれかに記載のベク
ター。
【化2】
のプラスミドpMP44の特性を有する請求項14に記載のワクチンの製造方法
。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) C07K 14/135 C12N 15/00 ZNAA (81)指定国 EP(AT,BE,CH,CY, DE,DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,I T,LU,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ ,CF,CG,CI,CM,GA,GN,GW,ML, MR,NE,SN,TD,TG),AP(GH,GM,K E,LS,MW,SD,SZ,UG,ZW),EA(AM ,AZ,BY,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM) ,AL,AM,AT,AU,AZ,BA,BB,BG, BR,BY,CA,CH,CN,CU,CZ,DE,D K,EE,ES,FI,GB,GE,GH,GM,HR ,HU,ID,IL,IS,JP,KE,KG,KP, KR,KZ,LC,LK,LR,LS,LT,LU,L V,MD,MG,MK,MN,MW,MX,NO,NZ ,PL,PT,RO,RU,SD,SE,SG,SI, SK,SL,TJ,TM,TR,TT,UA,UG,U S,UZ,VN,YU,ZW (72)発明者 リー、 シャオマオ カナダ国 エル4ジェイ 3イー5 オン タリオ州 トーンヒル グレンマノー ウ ェイ 106 Fターム(参考) 4B024 AA01 AA11 BA32 CA01 CA07 CA10 DA02 DA03 EA02 EA04 FA02 FA20 GA11 HA17 4C085 AA03 BA57 DD62 DD63 4C086 AA01 AA02 AA03 AA04 EA16 MA01 MA04 NA14 ZB09 4H045 AA11 AA20 AA30 BA10 CA01 DA86 EA31 FA74
Claims (38)
- 【請求項1】 少なくともアルファウイルスRNAゲノムの部分に相補的で
あり、in vivoで複製を可能にする完全なアルファウイルスRNAゲノム
複製領域の補体を有する第1DNA配列;および パラミキソウイルスと特異的に反応する抗体を発生するパラミキソウイルス蛋
白質または蛋白質断片を符号化する第2DNA配列、第2DNA配列は複製に本
質的でない第1DNA配列の領域に挿入され、第1および第2DNA配列はプロ
モータの転写制御下にあることからなる、ベクター。 - 【請求項2】 パラミキソウイルス蛋白質がパラインフルエンザウイルス(
PIV)および呼吸系発疹ウイルス(RSV)からなる群から選ばれる、請求項
1のベクター。 - 【請求項3】 PIV蛋白質がPIV−1、PIV−2、PIV−3および
PIV−4からなる群から選ばれる、請求項2のベクター。 - 【請求項4】 前記PIV蛋白質がPIV−3のHNおよびF糖蛋白質から
なる群から選ばれる請求項3のベクター。 - 【請求項5】 RSV蛋白質がRSVのFまたはG蛋白質からなる群から選
ばれる、請求項4のベクター。 - 【請求項6】 第2ヌクレオチド配列が全長RSV FまたはRSV G蛋
白質を符号化する、請求項1のベクター。 - 【請求項7】 第2ヌクレオチド配列が経膜アンカおよび細胞質テールを欠
く切断RSV FまたはRSV G蛋白質を符号化する、請求項1のベクター。 - 【請求項8】 アルファウイルスがセムリキ森林ウイルスである、請求項1
のベクター。 - 【請求項9】 第1DNA配列がプラスミドpSFV1に含まれるセムリキ
森林ウイルス配列である、請求項1のベクター。 - 【請求項10】 プロモータ配列が即刻早期サイトメガロウイルス(CMV
)プロモータである、請求項1のベクター。 - 【請求項11】 宿主中のベクターからin vivoで発現するときパラ
ミキソウイルス蛋白質の免疫保護能力を強化するために第2DNA配列に隣接し
て配置された第3DNA配列からさらになる、請求項1のベクター。 - 【請求項12】 第3ヌクレオチド配列がin vivoで実質的にベクタ
ー領域投与からの全ての転写RNAがRSV蛋白質を符号化する、異所性mRN
Aスプライシングを防ぐために一対のスプライス部位からなる、請求項11のベ
クター。 - 【請求項13】 第3ヌクレオチド配列が第1ヌクレオチド配列とプロモー
タ配列の間に配置される、請求項12のベクター。 - 【請求項14】 前記第3ヌクレオチド配列がウサギβ−グロビンイントロ
ンIIのものである、請求項13のベクター。 - 【請求項15】 前記プロモータ配列が即刻早期サイトメガロウイルス(C
MV)プロモータであり、ヒトサイトメガロウイルスイントロンA配列がプロモ
ータの下流および第3ヌクレオチド配列の上流に提供される、請求項10のベク
ター。 - 【請求項16】 第1ヌクレオチド配列の3’末端でin vivoで適当
な開裂を保証するために第1ヌクレオチド配列の3’末端で第4ヌクレオチド配
列からさらになる、請求項15のベクター。 - 【請求項17】 前記第4ヌクレオチド配列が肝炎デルタウイルスリボザイ
ム配列である、請求項16のベクター。 - 【請求項18】 図2Dに示されるプラスミドpMP44の同定特性を有す
る、請求項1のベクター。 - 【請求項19】 配列番号:1を有する、請求項1のベクター。
- 【請求項20】 請求項1に請求されたようなベクターの有効量を宿主に投
与することからなる、パラミキソウイルスによる感染で生じた疾患に対して宿主
に免疫形成する方法。 - 【請求項21】 前記ベクターが図2Dに示されるプラスミドpMP44の
同定特性を有する、請求項21の方法。 - 【請求項22】 前記ベクターが配列番号:1を有する、請求項21の方法
。 - 【請求項23】 前記遺伝子を分離すること; 少なくともアルファウイルスRNAゲノムの部分に相補的であり、前記遺伝子
およびDNA配列がプロモータの転写制御下にある、ベクターを形成するために
複製に本質的でない前記DNA配列の領域で完全なアルファウイルスRNAゲノ
ム複製領域の補体を有すること;および 宿主にベクターを導入することからなる、 RSV FもしくはG蛋白質または呼吸系発疹ウイルスによる感染で生じた疾
患に対して宿主を保護するためにRSV FもしくはG蛋白質と特異的に反応す
る抗体を発生することができるRSV FもしくはG蛋白質の断片を符号化する
遺伝子を用いる方法。 - 【請求項24】 RSV F蛋白質を符号化する前記遺伝子が経膜領域を欠
くRSV F蛋白質を符号化する、請求項23の方法。 - 【請求項25】 前記プロモータが即刻早期サイトメガロウイルスプロモー
タからなる、請求項24の方法。 - 【請求項26】 前記宿主において前記RSV F蛋白質への強化した免疫
保護を生じるために免疫保護強化配列に前記遺伝子を操作的に結合する段階を含
む、請求項25の方法。 - 【請求項27】 前記免疫保護強化配列が前記制御配列と前記遺伝子の間の
前記ベクターに導入される、請求項26の方法。 - 【請求項28】 前記免疫保護強化配列がそれによって実質的にそままの転
写mRNAがRSV F蛋白質を符号化する、異所性mRNAスプライシングを
防ぐために一対のスプライス部位からなる、請求項27の方法。 - 【請求項29】 前記免疫保護強化配列がウサギβ−グロビンイントロンI
Iのものである、請求項28の方法。 - 【請求項30】 前記ベクターがプラスミドpMP44である、請求項23
の方法。 - 【請求項31】 前記ベクターが配列番号:1を有する、請求項23のベク
ター。 - 【請求項32】 RSVまたはG蛋白質を符号化する第1DNA配列を分離
し、それから経膜アンカおよび細胞質テールが欠如すること; 少なくともアルファウイルスRNAゲノムの部分に相補的であり、前記第1お
よび第2DNA配列がプロモータの転写制御下にあるベクターを形成するために
複製に本質的でない前記第2DNA配列の領域に完全なアルファウイルスゲノム
複製領域を有する、第2DNA配列に前記第1DNA配列を操作的に結合するこ
と;および in vivo投与のためのワクチンとしてベクターを調剤することからなる
、 呼吸系発疹ウイルス(RSV)による感染で生じた疾患に対する宿主の保護の
ためのワクチンの生産の方法。 - 【請求項33】 前記ベクターが図2Dに示されたpMP44の同定特性を
有する、請求項32の組成物。 - 【請求項34】 前記ベクターが配列番号:1を有する、請求項32の方法
。 - 【請求項35】 請求項32の方法により生産された、ヒト宿主を含む、宿
主への投与のためのワクチン。 - 【請求項36】 請求項1のベクターの免疫有効量からなる、免疫原組成物
。 - 【請求項37】 前記ベクターが図2DのpMP44の同定特性を有する、
請求項36の組成物。 - 【請求項38】 前記ベクターが配列番号:1を有する、請求項36の組成
物。
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