JP2002544171A - 敗血症におけるｃｃｒ４アンタゴニスト - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 ＣＣＲ４受容体アンタゴニストは、敗血症および／または敗血症性ショックの治療および／または予防用に使用される。典型的に本発明のアンタゴニストは、幾つかのクラスから選択されるが、好ましくは抗−ＣＣＲ４抗体である。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の分野】

ＣＣＲ４受容体アンタゴニストは、敗血症および／または敗血症性ショックを
治療および／または予防するために、治療的有効量で投与することができる。典
型的には、本発明のアンタゴニストは幾つかのクラスの中から選択されるが、好
ましくは抗−ＣＣＲ４抗体である。

【０００２】

【発明の背景】

ケモカインおよびその受容体は、ルーチンの免疫学的監視及び炎症プロセスか
らＨＩＶによる細胞の感染まで、生物学における多くのプロセスの重要な部分で
ある。この２年間、各種の生物情報学及びクローニングの基本戦略は、多くのケ
モカイン及び受容体の爆発的な同定を導いている。その状況が完全とはほど遠い
としても、幾つかのテーマが現れている。

【０００３】 ケモカイン（または化学誘因物質サイトカイン）は、身体で生ずるルーチンの
免疫学的監視、並びに病気中の特有な細胞集団の活性化および回復の両方におい
て関与する小タンパク質の大きなファミリーである。１０年前まで、炎症部位に
特異的白血球サブ集団を動員するための輸送コントローラーとして作用し得るタ
ンパク質に関しては、僅かに知られていたに過ぎない。そのような因子の調査に
よって始めて、インターロイキン８（ＩＬ−８）、好中球化学誘因物質、及び単
球走化性タンパク質１（ＭＣＰ−１）、単球及びＴ−細胞化学誘因物質の同定が
導かれた。これらケモカインのアミノ酸配列は、４つの保存されたシステイン残
基の２つの異なるパターンを示した：ＩＬ−８においては、２つのＮ末端システ
インが単一アミノ酸により分離されてＣＸＣモチーフを形成するのに対して、Ｍ
ＣＰ−１においては、それらは近接してＣＣモチーフを形成している。これらの
スペーシングは、２つの基本的なケモカインサブクラス、ＣＸＣ（−ケモカイン
としても知られる）及びＣＣ（−ケモカインとしても知られる）を生じる。タン
パク質同定レベルは２０％と低いことはあり得るが、両方のグループ中の単量体
タンパク質の三次元構造は殆ど重ね合わさることが可能である。

【０００４】 同定された最初の２つのＣＸＣケモカイン受容体は、好中球上で優先的に見出
され、かつそれはＣＸＣケモカインが急性炎症の案内役であったことが定説とな
った。多くの研究が、急性呼吸窮迫症候群及び敗血症性ショックのような疾患に
おけるその役割に向けられている（Ｆｏｌｋｅｓｓｏｎ Ｈ．Ｇ．ら（１９９５
）、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、９６：１０７−１１６）。反対に、ＣＣケ
モカイン受容体は、リンパ球、単球、マクロファージ、好酸球、好塩基性細胞、
更には血小板をも含む非常に広範な細胞で発現され、かつ喘息、関節炎及びアテ
ローム性動脈硬化症のような慢性の炎症性疾患と関連している。最近発見された
ＣＸＣケモカイン受容体ＣＸＣＲ３とＣＸＣＲ４がＴ細胞で発現され、かつＣＸ
ＣＲ５がＢ細胞で発現されるために、この二項対立は解除された。加えて、ネズ
ミ好中球が活性ＣＣケモカイン受容体を発現できること、及びヒト好中球がイン
ターフェロン（ＩＦＮ−γ）とインキュベーション後にＣＣケモカインに対し応
答性になることが過去に知られている（Ｂｏｎｅｃｃｈｉら（１９９８））。

【０００５】 ＣＣケモカイン受容体ＣＣＲ１−５は、多重ＣＣケモカインに結合する。その
新規ケモカインが入手可能になった結果、リガンド範囲もまた幾つかの受容体用
について拡大された。例えば、新規ＣＣケモカインである胸腺および活性−関連
ケモカイン（ＴＡＲＣ）およびマクロファージ由来ケモカイン（ＭＤＣ）もまた
、ＣＣＲ４に結合する（Ｉｍａｉら、１９９７；Ｉｍａｉら、１９９８）のに対
して、ＣＣＲ４は当初マクロファージ炎症タンパク質１（ＭＩＰ−１）、ＲＡＮ
ＴＥＳ（正常なＴ発現及び分泌の活性化を調節した）及び単球化学誘因物質タン
パク質１（ＭＣＰ−１）によって活性化されるものとして記述され、ＣＸＣＲ４
、ＣＣＲ６及びＣＸ３ＣＲ１は、多くのケースで試験した３０のうち一つのケモ
カインにのみ結合する高い選択性を残している。新規ケモカインが発見されると
きに、この明らかな選択性が維持されるかどうかを考慮する余地が残されている
。該受容体の制限された発現が制限リガンド結合パターンに関連しているという
アイデアは魅力あるが、しかしこれは最近の発見の根拠のない影響に過ぎないで
あろう。

【０００６】 炎症におけるケモカインの役割は、炎症モデルにおけるモノクローナル抗体の
使用によっても実証されている：ＭＩＰ−１抗体は、Ｓ．マンソニ卵抗原モデル
において好酸球増加症を有意に減じる（Ｓｔａｎｄｉｆｏｒｄ Ｔ．Ｊ．ら（１
９９５）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５５：１５１５−１５２４）；ＩＬ−８に対
する抗体はウサギにおいて好中球介在敗血症を予防した（Ｆｏｌｋｅｓｓｏｎ
Ｈ．Ｇ．ら（１９９５）、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、９６：１０７−１１
６；Ｙｏｋｏｉ Ｋ．Ｉ．ら（１９９７）Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．、７６：３７
５−３８４）；および抗−ＭＣＰ−１抗体は、糸球体腎炎（Ｌｌｏｙｄ Ｃ．Ｍ
．ら（１９９７）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、１８５：１３７１−１３８０）及び肉
芽腫モデル（Ｆｌｏｒｙ Ｃ．Ｍ．ら（１９９３）Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．、６
９：３９６−４０４）において細胞漸増を有意に減じた。これらの結果は、該シ
ステムの複雑性が明らかであるにもかかわらず、単一のケモカイン又は受容体の
消去が病理学のモデルを有意に変えることができることを確証する。

【０００７】

【発明の説明】

今回、ＣＣＲ４が敗血症において重要な役割を演じること、およびＣＣＲ４受
容体アンタゴニストが敗血症および／または敗血症性ショックを治療および／ま
たは予防するため治療的有効量で投与できることが見出された。典型的には、本
発明のアンタゴニストは幾つかのクラスの中から選択されるが、好ましくは抗−
ＣＣＲ４抗体である。

【０００８】 したがって、本発明の主要な目的は、ＣＣＲ４アンタゴニストの治療的有効量
を投与することを含む、患者における敗血症および／または敗血症性ショックを
治療および／または予防するための方法を提供することである。

【０００９】 本発明の更なる目的は、敗血症および／または敗血症性ショックを治療する薬
学組成物の製造における、薬学上許容されるキャリアと組合わせたＣＣＲ４アン
タゴニストの使用である。この方法で製造された薬学組成物は本発明の更なる目
的でもある。

【００１０】 敗血症は、創傷又は身体組織に入り込んだ細菌によって生じる重篤な感染であ
り、膿の形成、又は血液中への細菌の拡散に到る。敗血症は、身体の何処からで
も生じ得る細菌感染の結果である。共通の部位は、尿生殖器管、肝臓又は胆管（
肝臓分泌）、消化管、および肺である。より少ない共通部位は、静脈ライン、手
術創傷、手術ドレーン、および褥瘡性潰瘍または床ずれとして知られる皮膚崩壊
の部位である。該感染は陽性血液培養によって通常確認される。該感染は、敗血
症性ショックと称するショックに到り得る。低血圧および心理状態の変化は、シ
ョックの早期警戒徴候となり得る。

【００１１】 大部分の標準的な抗生物質に耐性である、生体によって引き起こされた敗血症
の発生の増加が最近見られている。したがって、敗血症のための新規な治療が大
いに求められる。敗血症は、特に弱体化した免疫系を持った人々において生命を
脅かす情況となり得る。敗血症に関係付けられる危険因子には、例えば近頃の細
菌性肺炎、髄膜炎、抗生物質に応答しない尿管感染症、骨髄炎、細菌性腹膜炎、
最近の歯科処置、最近の内視鏡処置、最近の心臓血管処置、留置尿路カテーテル
、最近の大手術、蜂巣炎、抗体での最近の治療などが含まれる。免疫系が治療に
より又はある種の疾患により抑制された人々は、敗血症のより高いリスクをもっ
ている。敗血症の発生数は、１０、０００人中２人である（参照：ｈｔｔｐ：／
／ｈｅａｌｔｈ．ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ／ｈｅａｌｔｈ／Ｄｉｓｅａｓｅｓ＿ａｎ
ｄ＿Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ／Ｄｉｓｅａｓｅ＿Ｆｅｅｄ＿Ｄａｔａ／Ｓｅｐｓｉ
ｓ／）。

【００１２】 敗血症性ショックは、菌血症ショックとも呼ばれる。それは、身体を通る血流
が不十分で、低血圧および尿放出量減少をもたらすような場合に起こる、重篤で
且つ異常な状態である。それは圧倒的な感染により生じる。敗血症性ショックは
、非常に老齢及び非常に若年で、また他の潜在的な病気に罹った人々においてよ
り頻発する。多くの細菌が敗血症性ショックをもたらし得る。細菌によって放出
された毒素は、組織損傷と正常な血液循環を妨げることがある。その危険因子は
、糖尿病；血液病理学的な癌、及び尿生殖器系、肝臓又は胆管系、および消化器
系の疾患のような潜在的な病気を含む。その発生率は毎年１、０００、０００人
の中の略３人である（参照：ｈｔｔｐ：／／ｈｅａｌｔｈ．ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ
／ｈｅａｌｔｈ／Ｄｉｓｅａｓｅｓ＿ａｎｄ＿Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ／Ｄｉｓｅ
ａｓｅ＿Ｆｅｅｄ＿Ｄａｔａ／Ｓｅｐｔｉｃ＿ｓｈｏｃｋ）。

【００１３】 敗血症および敗血症性ショックの古典的な治療は、敗血症又は敗血症性ショッ
クが予期されたら直ちに、抗生物質による直接的な治療を行うことである。通常
は静脈内に行われる抗生物質の投与は、原因となる感染生物が血液培養によって
同定されるより更に前である必要がある。ますます多くの微生物が、特に病院内
に存在する微生物が抗生物質に耐性になっているという事実に鑑みて、敗血症お
よび／または敗血症性ショックを治療するための更なる可能性が大いに望まれて
いる。本発明は、そのような治療、すなわちＣＣＲ４アンタゴニストを用いた治
療を提供する。ＣＣＲ４アンタゴニストは、抗生物質での患者の治療に加えて、
好ましく適用することができる。

【００１４】 「薬学上許容される」とは、有効成分の生物学的活性の有効な効果に干渉せず
、かつ投与される宿主に対し毒性でない如何なるキャリアをも包含することを意
味する。例えば、非経口投与のために、上記有効成分は、食塩水、ブドウ糖溶液
、血清アルブミン及びリンゲル液のような賦形剤中で、注射のための単位投薬形
態において調製し得る。薬学上許容されるキャリアと並んで、本発明の組成物は
、安定化剤、賦形剤、緩衝剤及び保存料のような添加物の少量をも含めることが
できる。

【００１５】 そのような活性成分の投与は、静脈内、筋肉内又は皮下ルートによりなし得る
。各々の成分の望まれる血中レベルを確立し得る、投与の他のルートは、本発明
に含まれる。

【００１６】 ここで請求した組成物の有効成分は、ＣＣＲ４アンタゴニストである。好まし
くは、それらは高い親和性でＣＣＲ４に結合するペプチドである。該ペプチドは
典型的には特異的エピトープに結合し、そして受容体活性を阻止する。本発明の
より好ましい実施形態において、ＣＣＲ４−アンタゴニストは、抗−ＣＣＲ４抗
体である。ＣＣＲ４抗体及び該抗体のフラグメント、変異体もしくは合成構造物
又はそのような分子の誘導体、並びにＣＣＲ４−アンタゴニストは、ＷＯ９６／
２３０６８中に特に記載されたようにして調製できる。

【００１７】 ここで用いた「抗体」の用語は、遺伝子操作した抗体を含め、ポリクローナル
抗体、モノクローナル抗体、Ｆ（ａｂ’）_２及びＦａｂフラグメントのようなそ
れらの抗原結合性フラグメント等を含む。特異的な抗体は、典型的には１０^７／
Ｍ以上のＫ_ｄでＣＣＲ４ポリペプチドに結合する。抗体の親和性は、当業者によ
って容易に実証することができる（例えば、Ｒｏｉｔ、基本免疫学（Ｅｓｓｅｎ
ｔｉａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）、第５版、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎ
ｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ、１９８４参照）。

【００１８】 ポリクローナル及びモノクローナル抗体の製造方法は当該分野で周知である（
例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、分子クローニング：実験室マニュアル（Ｍｏｌｅ
ｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ−Ｍａｎｕａｌ）、
第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ ｈａｒｂｏｒ、ＮＹ、１９８９；およびＨｕ
ｒｒｅｌ、Ｅｄ．、モノクローナルハイブリドーマ抗体：技術と適用（Ｍｏｎｏ
ｃｌｏｎａｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ａｎｉｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｔｅｃｈｎｉｑ
ｕｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）。ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ、Ｉｎｃ．
、Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ、ＦＬ、１９８２参照）。当業者に明白なように、ポリ
クローナル抗体は、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ニワトリ、ウサギ、マウ
ス及びラットのような各種の温血動物から生産することができる。ペプチド又は
ポリペプチドの免疫原性は、フロイント完全又は不完全アジュバントのようなア
ジュバントの使用により増強し得る。当業者に周知の各種アッセイは、ポリペプ
チドに特異的に結合する抗体を検出するために利用できる（Ｈａｒｌｏｗ及びＬ
ａｎｅ編纂、抗体：実験室マニュアル（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒ
ａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂ
ｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、１９８８参照）。

【００１９】 モノクローナル抗体は、例えばＡ．Ｊｏｈｎｓｔｏｎｅ及びＲ．Ｔｈｏｒｐｅ
、実践の免疫化学（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ｉｎ ｐｒａｃｔｉｃｅ
）、第２版、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉ
ｏｎｓ、１９８７、３５−４３頁に記載されたような十分確立された方法によっ
て得ることができる。

【００２０】 一般に、モノクローナル抗体は、生物学的試料又は他の外来物質で動物を免疫
化すること、該動物から抗体生産細胞を得ること、およびこの抗体生産細胞を腫
瘍性細胞、例えば腫瘍細株と融合させ、モノクローンとして単離されかつ培養さ
れるハイブリドーマを生産することによって製造される。該モノクローナルハイ
ブリドーマは、インビトロで培養されてもよく、又は宿主動物中で腫瘍としてイ
ンビボで増殖されてもよい。各抗体生産細胞系は単独の抗体を生産するため、そ
れぞれのハイブリドーマのモノクローナル培養は、インビトロで増殖したハイブ
リドーマ培養の培地から又は腫瘍保持宿主動物の腹水又は血清の何れかで得るこ
とができる均質な抗体集団を生産する。抗体生産細胞と腫瘍細胞の融合を生じる
多くのハイブリドーマが、動物の免疫系が他の外来物質に対する反応において生
成された抗体を分泌するであろうから、全てのクローンが、所望の外来物質又は
抗原に対して特異的なわけではない。異なるクローンによって生産された抗体が
同じ分子の異なる抗原決定基と反応し得るため、患者の抗原に対するモノクロー
ナル抗体でさえも、クローン毎に異なるであろう。従って、各々のクローンから
生じた抗体又は抗体を含有する培地、血清又は腹水液を得、患者の生物学的物質
との反応性を試験し、またそれが認識する他の生物学的物質（もしあれば）を決
定することによってその特異性を試験することが必要である。

【００２１】 組換えＤＮＡ技術によって製造する時、該抗体は、適当な細胞、例えば、微生
物、植物、動物又はヒト細胞の中に、該抗体又はそのフラグメントをコードして
いるＤＮＡ配列をクローニングすること、および当該抗体又はフラグメントの生
産を導く条件下で該細胞を培養すること、および該培養物から抗体又はそのフラ
グメントを回収することによって生産し得る。クローン化抗体の製造のための可
能性のある方法は、例えば、Ｌ．Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら、１９８８年（ラット可
変領域とヒト定常領域のキメラ抗体の調製を記載している）；Ｍ．Ｂｅｔｔｅｒ
ら、１９８８年（キメラマウス−ヒトＦａｂフラグメントの生産を記載している
）；Ｓｈａｒｒａ及びＰｌｕｃｋｔｈｕｍ、１９８８年（抗原結合可変ドメイン
を含むイムノグロブリンＦｖフラグメントのクローニングを記載している）；お
よびＥ．Ｓ．Ｗａｒｄら、１９８９年（単離した抗原−結合可変ドメイン（「単
一−ドメイン抗体」）のクローニングを記載している）に記載される。［全般的
なヒト化モノクローナル抗体については、例えば、分子生物学とバイオテクノロ
ジー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ
ｇｙ）（第３版）、Ｗａｌｋｅｒ及びＧｉｎｇｏｌｄ編纂、Ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ
Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １９９３年、３５７−３８５頁
参照］。

【００２２】 ＣＣＲ４ポリペプチドに特異性を持つモノクローナル抗体または他の遺伝子操
作した抗体は、敗血症および／または敗血症性ショックの治療のための治療薬と
して好ましい。該抗体は、免疫原性を減じるためヒト化し得る。ヒト化は、元の
ネズミ抗体の相補性−決定領域（ＣＤＲ）をヒト抗体の定常領域にグラフトする
ことによって行われる。各種の方法が、グラフト化抗体の特異性および親和性を
確保するために使用され得る（Ｑｕｅｅｎら、１９８８年）。

【００２３】 ＣＣＲ４ポリペプチドに対する抗体は、単離用に、アフィニティー精製用に、
診断アッセイ用に、ＣＣＲ４ポリペプチドの循環レベルの測定用に、およびイン
ビトロ及びインビボでＣＣＲ４活性を阻止するためのアンタゴニストとして使用
し得る。（例えば、固定化アフィニティーリガンド技術（Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅ
ｄ Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｌｉｇａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ）。Ｈｅｒｍａｎ
ｓｏｎら編纂、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、サンディエゴ（Ｓａｎ Ｄｉｅ
ｇｏ）、ＣＡ、１９９２年、１９５−２０２頁参照）。

【００２４】 ＣＣＲ４アンタゴニストは、各種の手法において患者に投与することができる
。投与のルートは、皮内、経皮（例えば徐放性処方で）、筋肉内、腹腔内、静脈
内、皮下、経口、硬膜外、局所、及び鼻内ルートを含む。治療的に有効な他の如
何なるルートを使用してもよく、例えば上皮又は上皮組織を通しての吸収、又は
ＣＣＲ４アンタゴニストをコード化しているＤＮＡ分子を（例えばベクターを介
して）患者に投与して、ＣＣＲ４アンタゴニストをインビボで発現させる遺伝子
治療を用いることができる。加えて、ＣＣＲ４アンタゴニストは、薬学上許容さ
れる界面活性剤、賦形剤、キャリア、希釈剤及び賦形剤のような生物学的活性剤
の他の成分と一緒に投与することができる。

【００２５】 非経腸的（例えば静脈内、皮下、筋肉内）投与のため、ＣＣＲ４アンタゴニス
トは、薬学上許容される賦形剤（例えば水、食塩水、ブドウ糖溶液）及び等張性
（例えばマンニトール）又は化学的安定性（例えば保存料と緩衝剤）を維持する
添加剤と組合わせて、溶液、懸濁液、エマルジョン又は凍結乾燥粉末として処方
することができる。該処方は、通常用いられる技術により滅菌される。

【００２６】 ＣＣＲ４アンタゴニストの治療的有効量は、アンタゴニストのタイプ、ＣＣＲ
４への該アンタゴニストの親和性、競合アンタゴニストによって示される何れか
の残留細胞障害活性、投与のルート、患者の臨床的状態（内因性ＣＣＲ４活性の
非−毒性レベルの維持の望ましい人を含む）を含む多くの変数の関数であろう。
「治療的有効量」は、投与の時に、ＣＣＲ４アンタゴニストがＣＣＲ４の生物学
的活性の阻害をもたらす量である。患者に単一又は多重服用量として投与される
用量は、ＣＣＲ４アンタゴニストの薬物動態学特性、投与のルート、患者の状態
及び特徴（性別、年齢、体重、健康状態、サイズ）、症状の度合、現行の治療、
治療の頻度及び望まれる効果を含む種々の因子に応じて変化するであろう。確立
された用量範囲の調節および操作は、十分に当業者の技量の範囲内であり、また
個体におけるＣＣＲ４の阻害を測定するインビトロ及びインビボの方法の範囲内
である。

【００２７】 通常、有効成分の一日当たり用量は、体重キログラム当たり約０．０１ないし
１００ミリグラムとすることができる。通常、分割用量または徐放性形態での、
一日当り１〜１００ミリグラム／キログラムの投与量は、望ましい結果を得るた
めに有効である。第２の又は次の投与は、患者に投与した最初の又は先の用量と
同じが、それ未満又はそれより多くの用量で実行することができる。第２の又は
その後の投与は、敗血症／敗血症性ショック又は関連した徴候の再発の間に、又
は再発の前に投与することができる。「再発」又は「再発生」の用語は、敗血症
又は敗血症性ショックのそれぞれの徴候の１つ以上の発生を包含するように定義
される。

【００２８】 以下、図面を参照して実施例により本発明を例示するが、これらは如何なる意
味でも本発明を限定するものではない。

【００２９】

【実施例】

実施例１：ＣＣＲ４ノックアウトマウスの生産 方法 １．ＣＣＲ４欠損マウスの生産 ネズミＣＣＲ４遺伝子は、プローブとしてネズミＣＣＲ４ｃＤＮＡを用いるプ
ラークハイブリダイゼーションによってλＦＩＸＩＩベクター（Ｓｔｒａｔａｇ
ｅｎｅ）中のＨＭ−１胎児幹細胞ライブラリーから単離した。（Ｈｏｏｇｅｗｅ
ｒｆ Ａ．Ｊ．ら、（１９９６）、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．
Ｃｏｍｍｕｎ．２１８、３３７−３４３）。１２．１８ｋｂと１３．０８ｋｂの
２つの独特のクローンは、特異的プライマーを用いて、ＰＣＲによってｍＣＣＲ
４コード配列を含むことを示した。サザンブロディングによってＣＣＲ４コード
配列を含むことが同定されたゲノムＤＮＡの８．５ｋｂフラグメントは、ｐＣＣ
Ｒ４を生産するためｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＳＫ−中にサブクローニン
グした。全体のＣＣＲ４コード配列は、ＮｈｅＩ／ＨｐａＩフラグメントとして
取り出し、ｎｅｏカセット（プラスミドｐＭＣｌｎｅｏＰｏｌｙＡ（Ｃｌｏｎｔ
ｅｃｈ）から入手）で置換した。得られた構築物は、ＥｃｏＲＶとＥｃｏ４７−
３消化し、４９０４ｂｐの相同な長腕と１３１８ｂｐの相同な短腕を含むプラス
ミドを生成するように再連結した。最後に、チミジンキナーゼ（ｔｋ）カセット
を標的ベクターを生産するためプラスミドのＨｉｎｄＩＩＩ／ＸｈｏＩ部位に挿
入した。該標的ベクターは、ＮｏｔＩで線状化し、以前に記載された通りＨＭ−
１胎児幹細胞内にエレクトロポレーションした（Ｃｏｎｑｕｅｔ Ｆ．ら、（１
９９４）、Ｎａｔｕｒｅ ３７２、２３７−２４３）。ガンシクロビルとＧ４１
８耐性クローンを選択した。ＤＮＡは、ＤＮＡｚｏｌ（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）を
用いて耐性クローンから単離し、トランスジーンの存在をＰＣＲで検出し、さら
にｐＣＣＲ４のＡｖｒＩＩ／ＮｓｉＩ消化で得られた４６６ｂｐプローブを用い
てゲノムＤＮＡのＰｓｔＩ消化に続いてサザンハイブリダイゼーションによって
実証した。７つの独立したトランスジーン−含有ＥＳ細胞は、標準法に従って胚
盤胞注射によってキメラマウスを生産するために用いた（ＭｃＭａｈｏｎ Ａ．
Ｐ．及びＢｒａｄｌｅｙ Ａ．（１９９０）。２つの１００％キメラのメスをヘ
テロ接合性ＣＣＲ４（＋／−）マウスを生産するため１００％キメラのオスと対
合させ、ヘテロ接合性マウスの対からの同腹子は、サザンブロット分析によって
又はテイルＤＮＡについてＰＣＲによってホモ接合性ＣＣＲ４（−／−）ノック
アウトマウスの存在を分析した。

【００３０】 化学走性アッセイはミクロＢｏｙｄｅｎチャンバー法を用いて実行した。組換
えヒトおよびマウスケモカインはＲ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓから購入した。

【００３１】 ２．逆転写酵素ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＲ） 全ＲＮＡは、Ｔｒｉｚｏｌ（商標）（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）を用いて胸腺細胞
、脾臓細胞又は腹膜洗浄細胞から単離した。胸腺細胞と脾臓細胞からの全ＲＮＡ
又は１ｘ１０^６腹膜滲出細胞からの全ＲＮＡの１μｇは、製造者の指示に従って
Ｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ（商標）（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）およびオリゴｄＴ_{１２ −１８} プライマーを用いて逆転写した。ｃＤＮＡ合成反応の２０分の１は、Ａｍ
ｐｌｉＴａｑ（商標）（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ、Ｎｏｒｗｏｏｄ、ＣＡ）お
よびＭＩＰ−２（Ｘ５３７９８）、ｍＭＤＣ（ＡＦ０５２５０５）およびｍＣＣ
Ｒ４（Ｘ９０８６２）で登録のＧｅｎｂａｎｋ／ＥＭＢＬデータベースに基づい
たＰＣＲプライマーを用いる２５サイクルのＰＣＲにかけた。ＰＣＲ生産物は、
臭化エチジウムで染色した１％アガロースゲル上で分析し、正確な分子量で移動
するバンドは、直接配列決定によって確認した。半定量的ＲＴ−ＰＣＲのため、
バンドはＫｏｄａｋ Ｄｉｇｉｔａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅのバージョン１．０ソフ
トウェアを用いて定量し、結果物はｍＲＮＡの任意単位として表した。

【００３２】 ３．ＴＨ１とＴＨ２細胞のインビトロ分化 自然ＣＣＲ４^＋／＋およびＣＣＲ４^−／−マウスのリンパ節及び脾臓からのＣ
Ｄ８^＋とＩｇ^＋消耗細胞は、ネズミＩＬ−１２（５００ｐｇ／ｍｌ、Ｒ＆Ｄ Ｓ
ｙｓｔｅｍｓ、アビンドン（Ａｂｉｎｇｄｏｎ）、英国）プラス抗−ＩＬ−４モ
ノクローナル抗体（１０μｇ／ｍｌ）又はネズミＩＬ−４（５００Ｕ／ｍｌ、Ｉ
ｍｍｕｎｏＫｏｎｔａｃｔ、フランクフルト（Ｆｒａｎｋｆｕｒｔ）、ドイツ）
プラス抗−ＩＦＮ−γモノクローナル抗体（１０μｇ／ｍｌ、Ｐｈａｒｍｉｎｇ
ｅｎ）の何れか一方の存在中で以前記載された（１６）とおり抗−ＣＤ３抗体（
１４５−２Ｃ１１、Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、サンディエゴ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ
）、ＣＡ）で被覆した平板培地上で４日間培養した。５日間の培養期間後、細胞
は洗浄し、ネズミＩＬ−２（５０Ｕ／ｍｌ、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）の存在中
、抗−ＣＤ３−被覆した９６−ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ）上でウェル当た
り２ｘ１０^５細胞の密度で２４時間再び刺激した。

【００３３】 ４．動物及び治療 ホモ接合性ＣＣＲ４^−／−マウスは、４世代でＣ５７ＢＬ／６マウス（Ｃｅｎ
ｔｒｅ ｄ’Ｅｌｅｖａｇｅ Ｊａｎｖｉｅｒ、Ｌｅ Ｇｅｎｅｓｔ Ｓａｉｎ
ｔ−Ｉｓｌｅ、フランス）と戻し交配した。第４の戻し交配からのヘテロ接合（
ＣＣＲ４^＋／−）対合からの年齢及び重量適合ＣＣＲ４^−／−およびＣＣＲ４^{＋ ／＋} 同腹子は、系統バックグラウンド用コントロールとしてこの実験で用いた。
何れかの性別のマウス（２０−２５ｇ）は、ミョウバン（Ｓｅｒｖａ、ハイデル
ベルグ、ドイツ）の０．２ｍｌ中オバルブミン（ＯＶＡ；Ａ−５５０３、Ｓｉｇ
ｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐ．、セントルイス、ＭＯ）の１０μｇで腹腔
内（ｉ．ｐ．）免疫化した。コントロールマウスは、食塩水（０．９％ｗ／ｖＮ
ａＣｌ）単独の注射を与えた。１４日後、マウスは２％ＦＯＲＥＮＥ（商標）（
Ａｂｂｏｔ、Ｃｈａｍ、スイス）吸入で麻酔し、ＯＶＡの５０μｇを以前に記載
された通り鼻内から肺（食塩水５０μｌ中）に投与した。コントロールマウスは
５０μｌ食塩水のみを与えた。この手法は５日間毎日繰り返した。Ｔｓｕｙｕｋ
ｉら、１９９７）。動物は、６０ｍｇ／ｋｇペントバルビトンの致死量注射によ
って最後に屠殺した。統計解析は、生存曲線の解析用にＬｏｎｇ−Ｒａｎｋ試験
（２テイル）を実行したことを除いて、スチューデントＴ試験を用いた。

【００３４】 大腸菌０５５：Ｂ５（Ｌｉｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒ
ｉｅｓ、Ｉｎｃ．Ｃａｍｐｂｅｌｌ、ＣＡ）からのフェノール抽出した細菌リポ
ポリサッカリド（ＬＰＳ）は、高−用量ＬＰＳショックモデル用に６０、９０、
及び１２０ｍｇ／ｋｇｉ．ｐ．で投与した。低用量ＬＰＳショックモデル用に、
マウスに０．５ｍｌ食塩水中８ｍｇのＤ−ガラクトサミン（Ｄ−Ｇａｌ）（Ｆｌ
ｕｋａ、Ｂｕｃｈｓ、スイス）の１、２、および４μｇを与えた。動物は図中に
示した時点でＣＯ_２窒息によって屠殺した。

【００３５】 ５．化学走性アッセイ ＣＣＲ４^＋／＋とＣＣＲ４^−／−マウスからの脾臓は、７０μｍナイロン細胞
ストレーナー（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を通して分散した。赤血球
は低張性溶解で除去した。細胞は遠心分離で収穫し、５％ＦＣＳと２ｍＭグルタ
ミンを含むＲＰＭＩ培地中に再懸濁した。化学走性アッセイは、５μｍフィルタ
ーでのミクロ−Ｂｏｙｄｅｎチャンバー法を用いて実行した（Ｌｕｓｔｉ−Ｎａ
ｒａｓｉｍｈａｎら、１９９６年）。組換えヒトおよびマウスケモカインは、Ｒ
＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓから購入し又はウマにおいて作った。

【００３６】 結果 ネズミＣＣＲ４遺伝子は、図１ａ中に示した標的ベクターを用いて相同的組換
えを通して削除した。標的ＥＳ細胞は、生殖細胞系を経てトランスジーンに運ば
れてキメラマウスを生産するために使用される。サザンブロット解析はＣＣＲ４
遺伝子が標的化されていることを実証した（図１ｂ）。ＣＣＲ４ノックアウトマ
ウスは生育可能であり、正常に発育することが明らかであり、かつ非抑圧情況に
おいて公然の形態学的な又は行動の欠陥がないことが示された。通常、ＣＣＲ４
ｍＲＮＡはＴ細胞において、優先的には胸腺、脾臓及び末梢血液中で発現される
（Ｐｏｗｅｒ Ｃ．Ａ．ら、（１９９５）、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０、
１９４９５−１９５００；Ｈｏｏｇｅｗｅｒｆ Ａ．Ｊ．ら、（１９９６）、Ｂ
ｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２１８、３３７−３４
３）。逆転写酵素（ＲＴ）−ＰＣＲは、ＣＣＲ４用のｍＲＮＡが、標的動物の脾
臓と胸腺中に存在しないことを実証するために使用した（図１ｃ）。さらに、Ｃ
ＣＲ４欠損マウス中の末梢マクロファージがＣＣＲ４ｍＲＮＡを発現しないこと
が示された（図１ｄ）。

【００３７】 ＭＩＰ−１αとＲＡＮＴＥＳ用の受容体として元から同定されたとしても、Ｃ
ＣＲ４は、実際に２つの最近記載されたケモカイン、胸腺及び活性化調節ケモカ
イン（ＴＡＲＣ）（Ｉｍａｉ Ｔ．ら、（１９９７）、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ
．２７２、１５０３６−１５０４２）及びマクロファージ由来ケモカイン（ＭＤ
Ｃ）（Ｉｍａｉ Ｔ．ら、（１９９８）、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７３、１
７６４−１７６８）用の高アフィニティー受容体である。したがって、企図され
たＣＣＲ４リガンドへの応答を移動するように標的化した及び野生型マウスから
単離した脾臓細胞と胸腺の能力を分析した。ＣＣＲ４−／−マウスからの脾臓細
胞はＴＡＲＣ又はＭＤＣに対する化学走性応答がなく、一方ＣＣＲ４＋／＋マウ
スからの脾臓細胞は特徴的な用量応答曲線（図１ｅ）で応答し、この実験で削除
した遺伝子が内因性ＴＡＲＣ及びＭＤＣ受容体であることが確認された。しかし
ながら、ＣＣＲ４−／−マウスから単離した脾臓細胞は、ヒトのＭＩＰ−１αに
もネズミＭＩＰ−１αにも応答しなかった（データは示さず）。これは、ＲＡＮ
ＴＥＳに対する応答はＣＣＲ４＋／＋と−／−マウスの両方で類似であったこと
から、驚くべきことである。今日まで記載されたＲＡＮＴＥＳ受容体の全ては（
ＣＣＲ１、ＣＣＲ５、及びマウスでのＣＣＲ３）、インビトロでＭＩＰ−１αに
結合すること及び応答シグナルをもまた示している。該実験で用いた細胞集団の
ＲＴ−ＰＣＲ解析は、ＣＣＲ４遺伝子の欠失がｍＲＮＡレベルでこれらの応答の
発現に干渉していないことを実証した（データは示さず）。これらの結果から、
これらの条件下で、ＣＣＲ４がＭＩＰ−１α用の生理学的な受容体であることを
示す。

【００３８】 実施例２：Ｔｈ２型疾患におけるＣＣＲ４欠失 方法 １．気管支高度応答性の評価 気管支高度応答性（ＢＨＲ）は、Ｂｕｘｃｏ（登録商標）装置（ＥＭＫＡ Ｔ
ｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、パリ(Ｐａｒｉｓ)、フランス）を用い、吸入したメタ
コリン（ＭＣｈ）（Ａｌｄｒｉｃｈ−Ｃｈｅｍｉｅ、Ｓｔｅｉｎｈｅｉｎ、ドイ
ツ）に応答する全身プレチスモグラフィ（Ｈａｍｅｌｍａｎｎら、１９９７）に
よって呼吸圧力曲線を記録することによって測定した。その気道反応性は、以前
に記載された通り増加した休止（Ｐｅｎｈ）で表した。

【００３９】 ２．血液と洗浄液の解析 血液（２０μｌ）は、ヘパリン処理したマイクロピペット中にマウスの後部−
眼窩叢から採取し、血小板測定用のＵｎｏｐｅｔｔｅ ｍｉｃｒｏ ｃｏｌｌｅ
ｃｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍに移した（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ、Ｒｕ
ｔｈｅｒｆｏｒｄ、ＮＪ）。血小板の３つの個別のサンプルは、血球計でカウン
トした。１００細胞の最小値が計測され、３つのカウントの算術平均を計算した
（Ｔａｃｃｈｉｎｉ−Ｃｏｔｔｉｅｒら、１９９８）。ＯＶＡ−特異的ＩｇＭ、
ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａとＩｇＥ滴定値は、標準ＥＬＩＳＡプロトコル（１９）を
用いＯＶＡでの最終的な鼻内治療の後３日で得られた血清サンプルで測定した。
血清中及び培地上清中のネズミＴＮＦα、及び血清中のＩＬ−１β、ＩＬ−６お
よびＭＩＰ−１αの定量は、製造者のプロトコルに従ってサイトカイン−特異的
ＥＬＩＳＡｓを用いて測定した（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）。

【００４０】 ＢＡＬと腹膜洗浄細胞を採取し、識別的細胞計数をＤｉｆｆ−Ｑｕｉｃｋ（商
標）（Ｂａｘｔｅｒ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｄｕｄｉｎｇｅｎ、スイス）で
染色したサイトスピン調製物で実行した。２００細胞の最小値がＢＡＬ用のサン
プル当たり３フィールド、及び腹膜洗浄用のサンプル５フィールドで、フィール
ド当たり計測された。

【００４１】 フローサイトメトリーによる腹膜細胞の表現型の解析のため、洗浄した細胞は
、１％ＢＳＡと０．０１％アジドを含むＰＢＳ（ＦＡＣＳ緩衝液）中に１０^６細
胞／ｍｌで再懸濁した。細胞は、４℃で１０分間、Ｆｃ ｂｌｏｃｋ（Ｐｈａｒ
ｍｉｎｇｅｎ）とともにインキュベーションし、ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄し、
ＦＩＴＣ−標識ラット抗−マウスＦ４／８０抗体（Ｓｅｒｏｔｅｃ、オックスフ
ォード（Ｏｘｆｏｒｄ）、英国）と２０分間インキュベーションした。細胞は２
回洗浄し、２００μｌＦＡＣＳ緩衝液中に再懸濁し、ＣｅｌｌＱｕｅｓｔ（商標
）ソフトウェアを備えたＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＦＡＣＳｃａｎ（
登録商標）フローサイトメータで解析した。

【００４２】 結果 数が増加している報告は、ＣＣＲ４リガンドＴＡＲＣとＭＤＣにもまた応答す
るヒトＴｈ２偏光細胞（Ｓａｌｌｕｓｔｏ Ｆ．ら、（１９９８）、Ｊ．Ｅｘｐ
．Ｍｅｄ．１８７、８７５−８８３；Ｂｏｎｅｃｃｈｉ Ｒ．ら、（１９９８）
Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８７、１２９−１３４；Ｄ’Ａｍｂｒｏｓｉｏ Ｄ．ら
、１９９８）において高度に発現され、Ｔｈ２応答の進行においてこの受容体の
役割の可能性を示唆している。しかしながら現在、このパラダイムがネズミＴ細
胞に適用できるかは不明である。

【００４３】 したがって、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）に応答するＴｈ１とＴｈ２サイト
カインを生産する野生型及びＣＣＲ４ノックアウトマウスからの単純な脾臓細胞
の能力、Ｔ細胞の潜在ポリクローナルアクチベーターが評価された。ＣＣＲ４−
／−からの脾臓細胞は、ＣＣＲ４＋／＋マウスに匹敵するＩＬ−２及びＩＦＮ−
γのレベルと、Ｔｈ２サイトカインＩＬ−４の僅かに上昇したレベルとを生産し
、ＣＣＲ４−／−マウスからの細胞がこれらのサイトカインの生産において全般
的に欠陥がなかったことを示している（図２ａ）。

【００４４】 Ｔ細胞のインビトロでの識別におけるＣＣＲ４の役割を次に述べる。Ｎａｉｖ
ｅＣＤ４^＋Ｔ細胞は、Ｔｈ１細胞分化を誘導する、ＩＬ−１２プラス抗−ＩＬ−
４抗体の存在中、又はＴｈ２細胞分化を誘導する、ＩＬ−４プラス抗−ＩＦＮ−
γ抗体の存在中の何れかで抗−ＣＤ３抗体で被覆した平板培地上で４日間培養し
た。次いで細胞は、２４時間抗−ＣＤ３抗体で再刺激した。ＩＬ−４の存在中で
培養したＣＤ４^＋Ｔ細胞は、再刺激後にＩＬ−４の生産において有意の差は示さ
なかった（ＣＣＲ４^＋／＋Ｔ細胞：１０５±１５ｐｇ／ｍｌおよびＣＣＲ４^{−／ −} Ｔ細胞：１９０±１０ｐｇ／ｍｌ）。同じく、ＩＬ−１２で培養したＴ細胞は
、ＩＦＮ−γの匹敵するレベルを生産した（ＣＣＲ４^＋／＋：７６±１９ｎｇ／
ｍｌおよびＣＣＲ４^−／−：４９±８ｎｇ／ｍｌ）。これらの結果は、インビト
ロで、Ｔｈ２とＴｈ１細胞分化はＣＣＲ４^−／−マウスにおいて損なわれなかっ
たことを示す。 インビトロで得られたＴｈ２Ｔ細胞がＣＣＲ４を発現することが以前に示され
ているように、この実験において用いた細胞が化学走性解析でＣＣＲ４リガンド
に応答できるかどうかを試験した。ＣＣＲ４^−／−マウスから得られた細胞は、
ＭＤＣへの応答を移動することに失敗し、一方ＣＣＲ４^＋／＋マウスから得られ
た細胞は、ＭＤＣに対する強度の化学走性応答を有した（図２ｂ）。類似の結果
は、ＴＡＲＣを用いて得られた（データは示さず）。加えて、野生型及びＣＣＲ
４^−／−マウスの両方からインビトロで得られたＴｈ２Ｔ細胞はＲＡＮＴＥＳに
応答した（図２ｂ）。

【００４５】 次に、気道炎症のオバルブミン−誘導ネズミモデル、主にＴｈ２型疾患におい
てＣＣＲ４欠失の効果を研究した。

【００４６】 免疫化ＣＣＲ４^−／−と^＋／＋同腹子において繰り返した鼻内オバルブミン（
ＯＶＡ）チャレンジは、食塩水−チャレンジマウスと比べた場合、動物の両グル
ープにおいて、吸入したメタコリンに対する気管支高度反応性（Ｈａｍｅｌｍａ
ｎｎ Ｅ．ら、（１９９７）、Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐｉｒ．Ｃｒｉｔ．Ｃａｒｅ
Ｍｅｄ．１５６、７６６−７７５）において有意の増加の結果となった（図２ｃ
）。Ｐｅｎｈ値は、０．８±０．１０、食塩水およびＯＶＡ−チャレンジＣＣＲ
４^＋／＋マウスではそれぞれ１．７７±０．２であり、食塩水−及びＯＶＡ−チ
ャレンジＣＣＲ４^−／−マウスにおいてはそれぞれ０．６４±０．１１と１．８
８±０．３３であった。匹敵するオバルブミン誘導好塩基性細胞は、気道におけ
るＴｈ２応答の選択的誘導（Ｃｈｖａｔｃｈｋｏ Ｙ．ら、（１９９６）、Ｊ．
Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８４、２３５３−２３６０）と一致して見られる、ＣＣＲ４ ^＋／＋ と^−／−同腹子において観測された（図２ｄ）。有意でない相違が、全細
胞計数の何れか一方の気管支気胞洗浄液において、又はＯＶＡ−チャレンジＣＣ
Ｒ４^＋／＋と^−／−同腹子の間の他の白血球集団（マクロファージ、リンパ球及
び好中球）において観測された（図２ｄ）。

【００４７】 有効な抗原プライミングが末梢において生起していることを確認するため、Ｏ
ＶＡ−感作化及びチャレンジしたＣＣＲ４^＋／＋と^−／−同腹子においてＯＶＡ
−特異的ＩｇＭ、ＩｇＧ１およびＩｇＥの血清滴定値を分析した、図２ｅ参照（
Ｂｌｙｔｈ Ｄ．Ｉ．ら、１９９６）Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐ．Ｃｅｌｌ Ｍｏｌ．
Ｂｉｏｌ．１４、４２５−４３８）。再び、ＯＶＡ−特異的ＩｇＭ、ＩｇＧ１お
よびＩｇＥ滴定値は、ＣＣＲ４^＋／＋と^−／−同腹子において匹敵した（図２ｅ
）。総合すれば、これらの結果は、ＣＣＲ４遺伝子の欠失は、インビトロのＴｈ
２応答の進展を損なわないことを示唆する。

【００４８】 実施例３：ＬＰＳ−誘導敗血症性ショックにおけるＣＣＲ４ノックアウト動物 本実施例で用いた方法は、実施例１と２から採用できる。

【００４９】 ＣＣＲ４は、血小板（Ｐｏｗｅｒら、１９９５年）、単球（Ｐｏｗｅｒら、１
９９５年）およびマクロファージ（Ｐａｒｕｍｓ、ＤとＰｏｗｅｒ、Ｃ．Ａ．、
非公開データ及びまた図１ｄ）のような他の細胞型でもまた発現される。

【００５０】 したがってＬＰＳ誘導エンドトキシンショック、これらの細胞型が関与してい
る炎症モデル（Ｐａｊｈｒｔら、１９９６年とＦｒｅｕｄｅｎｂｅｒｇら、１９
８６年）のなかでＣＣＲ４欠失の効果が評価される。ＬＰＳ（６０−１２０ｍｇ
／ｋｇ）はＣＣＲ４^＋／＋とＣＣＲ４^−／−同腹子にｉ．ｐ．注射し、生存率は
６日間毎日観測した（図３ａ）。全てのＣＣＲ４^＋／＋マウスはＬＰＳ注射後２
日と４日の間に死亡した。逆に１５のＣＣＲ４^−／−マウスのうち１４匹は６日
間生存し、６０ｍｇ／ｋｇＬＰＳに有意な耐性を示している（Ｐ＜０．００１）
。確かに、ＣＣＲ４^−／−マウスは１２０ｍｇ／ｋｇまでのＬＰＳ用量に顕著に
耐性であった。コントロールマウス（食塩水注射したＣＣＲ４^−／−マウス、ｎ
＝４、及びＣＣＲ４^＋／＋マウス、ｎ＝４）は、６日間の実験を通して生き残り
かつ健康であった（データは示さず）。おもしろいことに、ＬＰＳ投与後最初の
数時間の間に、ＣＣＲ４^＋／＋マウスは、ふるえ及び嗜眠のような内毒素血症の
徴候をさらに示した。したがって、これらの効果はＣＣＲ４^＋／＋マウスにおけ
るよりも外見上穏やかであった。

【００５１】 ＬＰＳの高用量の腹腔内注射は、顕著な血小板減少症および肝臓と脾臓におけ
る血小板の蓄積につながった（Ｓｈｉｂａｚａｋｉら、１９９６年）。ＣＣＲ４ ^−／− 及びＣＣＲ４^＋／＋マウスからの血液サンプルは、血小板の類似の数を含
んでいた。さらに、別個の実験において、高用量ＬＰＳの注射後の最初の２０時
間において、血中血小板計数における重なり合いの減少がＣＣＲ４^＋／＋（ｎ＝
３）とＣＣＲ４^−／−マウス（ｎ＝３）の両方で起こり、２つのグループの間の
血小板移動に明白な相違がないことを示した。しかしながら、その血小板計数は
処置後５日でＣＣＲ４^−／−マウスにおいて正常に戻った。

【００５２】 比較として、低用量ＬＰＳ内毒素ショックモデルにおけるＣＣＲ４欠失の効果
を実験した。このモデルにおいて、低用量のＬＰＳ（１、２及び４μｇ）に対す
るマウスの感受性は、Ｄ−ガラクトサミン（Ｄ−ｇａｌ）の８ｍｇの共−注射に
より増加される（Ｇａｌａｎｏｓら、１９７９年）。ＬＰＳとＤ−ｇａｌの組み
合わせのｉ．ｐ．注射の２４時間以内に、１２匹のＣＣＲ４^＋／＋マウスのうち
１匹のみが生存した一方で、１２匹のＣＣＲ４^−／−同腹子のうちの９匹がＬＰ
Ｓの１μｇプラスＤｇａｌで治療した時に生存し（Ｐ＜０．０２）（図３ｃ）、
低−用量ＬＰＳに対する増加した耐性をもまた示した。しかしながら、Ｄ−ｇａ
ｌとともにＬＰＳの４μｇを投与した時、試験した全てのＣＣＲ４^−／−マウス
が死亡したが、野生型マウスに比較して６時間遅い。

【００５３】 血流中にＬＰＳのような細菌生産物の存在は、循環虚脱となり、かつ急性肺疾
患を含む潜在致命的な状態に結び付けられる重篤な低血圧症となる。ＬＰＳ投与
は、肺の中の血管浸透性の増加に到る（Ｓｔａｎｄｉｆｏｒｄ Ｔ．Ｊ．ら、（
１９９５）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５５、１５１５−１５２４）。この結果のよ
うに、マウスは気管支高度反応性に進行した（Ｙ．Ｃｈｖａｔｃｈｋｏら、準備
中の原稿）。気管支高度反応性は、ＬＰＳ注射後９時間及び１８時間でピークを
もってＣＣＲ４^＋／＋マウスにおいてのみ観測された（図３ｄ）。ＣＣＲ４^{−／ −} マウスは、気管支高度反応性が僅かにあるか又は無かった。

【００５４】 ＬＰＳは、単球／マクロファージ及び好中球からのＴＮＦαとＩＬ−１βのよ
うな炎症性サイトカインの放出を刺激する。それは、ＬＰＳ誘導肺応答がＴＮＦ
αの生成に先行されることを示した。おもしろいことに、ＣＣＲ４^−／−マウス
は、ＣＣＲ４^＋／＋マウスに比べてＬＰＳ注射に応答するＴＮＦαの有意なレベ
ルで放出しなかった（図４ａ）。これは、観測されたＬＰＳに対する耐性が、部
分的にＣＣＲ４がＴＮＦαの調節に間接的に参与し得ることを含む減少したＴＮ
Ｆαのためであり得ることを示唆する。ＴＮＦαに加え、血清中で減少したＩＬ
−１βもまた観測された（図４ｂ）。ＩＬ−６の生産（主に幹細胞による）は、
グラム陰性細菌感染又はＴＮＦα注入後に生じる（Ａｋｉｒａ Ｓ．ら、（１９
９３）、Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５４、１−７８）。ＣＣＲ４＋／＋とＣＣＲ
４−／−マウスの間にＩＬ−６生産において差がないことが観測され（図４ｃ）
、ＣＣＲ４−／−マウスにおいてＴＮＦαとＩＬ−１βの調節がＩＬ−６のそれ
と独立的であることを示唆している。

【００５５】 次いで、サイトスピン分析によってＬＰＳ注射後の各種時間で腹膜洗浄の細胞
組成を見た。早期の時点で補充された白血球の数と種類において主要な相違は無
かった（図５ａ−ｆ）。しかしながらＬＰＳ処置の２４時間後、ＣＣＲ４−／−
マウスの腹膜洗浄中の白血球集団は、幾らかのマクロファージとともに検出可能
なリンパ球は無く、大部分が好中球で構成される（＞８０％）（図５ｇ）一方、
ＣＣＲ４＋／＋マウスにおいて、マクロファージは、好中球の数が早期の時点で
見られそれから顕著に増加したとしても、洗浄細胞の７０％近くを構成した（図
５ｈ）。ＣＣＲ４−／−マウスにおいて見られた増加した好中球補充は、マクロ
ファージ補充（後述する）における欠陥に応答し得る。ＬＰＳ処置１．５時間及
び３時間後で、ＣＣＲ４＋／＋からの洗浄液は、これらのマウスにおいて増加し
た血管浸透性又は脊椎管内出血の表示となり得る多数の赤血球を含んでいた（図
５ｄ、ｆ）。赤血球は、ＣＣＲ４−／−マウスの洗浄においては不在か又は極端
に減じられた（図５ｃ、ｅ）。ＣＣＲ４＋／＋マウスにおける上昇したＴＮＦα
生産は、増加した血管浸透性と結び付けられる。ＣＣＲ４−／−マウスで観測さ
れた脊椎管内出血の不在は、現在この仮説の裏付けにおいて実験的証拠がないと
しても、変化した血小板機能を生じる可能性もある。

【００５６】 次に、腹膜洗浄細胞におけるマクロファージ（Ｆ４／８０）と顆粒球（ＧＲ１
）マーカーの発現をＦＡＣｓによって解析した。幾つかのＧＲ１陽性染色細胞が
洗浄において最初に検出されたが、ＬＰＳ処置後２４時間までＣＣＲ４＋／＋と
−／−マウスの両方で漸増した（図６ａ）。この時点でＣＣＲ４＋／＋マウスと
比べてＣＣＲ４−／−マウス中に存在するＧＲ１陽性細胞の顕著な差があった。
反対に、Ｆ４／８０陽性細胞（図６ｂ）は、ＬＰＳ処置後、時間とともにマウス
の両方のグループで減少した。おもしろいことに、２４時間でＣＣＲ４−／−マ
ウスにおいて、Ｆ４／８０発現細胞の全数の顕著な減少のみでなく、Ｆ４／８０
発現レベルにおける減少もあった（図６ｃ、ｄ）。これらの結果は、特有なマク
ロファージ集団発現Ｆ４／８０における欠如又は不足を意味する。該Ｆ４／８０
抗原は、その細胞外ドメインがＥＧＦドメイン反復を構成する異常な７つのトラ
ンスメンブレン受容体である。そのリガンドおよび機能は、不明な点を残すもの
の、ＣＣＲ４−／−マウスにおけるＬＰＳ耐性のメカニズムにおいて重要となり
得ることを示唆する。

【００５７】 ＬＰＳは、単球、マクロファージ及び好中球からＴＮＦα及びＩＬ−１βのよ
うなプロ−炎症性サイトカインの放出を刺激することが知られる（Ｇｕｔｉｅｒ
ｒｅｚ−Ｒａｍｏｓら、１９９７）。したがって高用量ＬＰＳ応答の効果はより
詳細に研究された。血清ＴＮＦαレベルのシャープな増加は、ＬＰＳ注射後１．
５時間でＣＣＲ４^＋／＋マウスで観測され、処置後４時間でベースラインに戻っ
た。おもしろいことに、ＣＣＲ４^−／−マウスはＬＰＳ注射後血清ＴＮＦαの有
意なレベル増加がなかった（１．５時間でＰ＜０．００２）（図７ａ）。単純な
ＣＣＲ４^−／−マウスからの腹膜洗浄によって単離した細胞は、単純なＣＣＲ４ ^＋／＋ マウスから単離した細胞と比べて、ＬＰＳの存在中１８時間培養した時、
ＴＮＦαの有意に低いレベルを生産した（２０１±１８ｐｇ／ｍｌと比べて１０
７±１１ｐｇ／ｍｌ、Ｐ＜０．００７９）（図７ｂ）。加えて、ＣＣＲ４^−／− マウスにおいて血清ＩＬ−１βの６倍増加がＣＣＲ４^＋／＋マウスと比べた場合
、ＬＰＳ注射後３時間で観測された（Ｐ＜０．００２）（図７ｃ）。これは、観
測されたＬＰＳに対する耐性が、ある程度減じられたＴＮＦαとＩＬ−１β生産
のためであり得ることを示唆し、ＣＣＲ４がこれらのサイトカインの生産に直接
関与していることを意味している。反対に、ＩＬ−６生産は変化が無く（データ
は示さず）、ＣＣＲ４^−／−マウスにおいてＩＬ−６の調節はＴＮＦαとＩＬ−
１βのそれと独立することができることを示唆している。ＣＣＲ４^−／−サンプ
ルの更なる解析は、血清ＭＩＰ−１αレベルの並行的増加もまた明らかにし（１
．５時間でＰ＜０．０２４９）（図７ｄ）、マクロファージ欠損の可能性を示し
ている。

【００５８】 腹膜洗浄の細胞組成は、早期の時点で細胞の全数でほどなく見られ、そのため
に高用量ＬＰＳの注射後（図８ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｘ−軸）の各種の時間で評価さ
れた。高用量ＬＰＳ処置後２４時間で、マウスの両方のグループの洗浄中で検出
した好中球の数は匹敵した（図８ａ）。これは、これまでに予期されたように、
好中球においてＣＣＲ４の発現のための証拠ではない。さらに、チオグリコレー
ト処置後の野生型マウスの腹腔から単離した好中球は、化学走性アッセイでＣＣ
Ｒ４リガンドに応答しないことが示された。加えてＣＣＲ４−／−マウスからチ
オグリコレートで引き出された好中球は、ＭＩＰ−１αとＭＩＰ−２と正常に応
答する（非公式データ）。しかしながらＣＣＲ４−／−マウスは、ＣＣＲ４＋／
＋マウスより有意により少数のマクロファージを有した（Ｐ＜０．００９９）（
図８ｂ）。これらの知見は、マクロファージ結合ケモカイン、マクロファージ炎
症性タンパク質−２（ＭＩＰ−２）（Ｗａｌｌｅｙら、１９９７年；Ｇｏｄｉｓ
ｋａら、１９９７年）のｍＲＮＡ発現で観測された減少と一致する、図８ｃとｄ
参照。マクロファージマーカー用のＦＡＣｓ解析によるサイトスピンで見られた
マクロファージ数における明らかな相違は、このように確認された。

【００５９】 ＬＰＳ誘導致死率に対する耐性は、ＭＩＦ（マクロファージ移動阻害因子）−
／−マウス（Ｒｏｄｅｎｂｕｒｇら、１９９８年）を含む遺伝子標的化マウスの
数において現に示されている。ＣＣＲ４欠失マウスにおけるＬＰＳ耐性の可能性
のあるメカニズムは、腹膜のマクロファージによるＭＩＦ生産のダウンレギュレ
ーションのためとなり得る。しかしながら、ＲＴ−ＰＣＲによって測定されたよ
うなＭＩＦｍＲＮＡのレベルでこれのための証拠はなかった（データは示さず）
。

【００６０】 ＬＰＳ処置に続いて起こる細胞内事象に関して非常に多くのことが知られてい
る一方で、細胞表面で生じる実際の事象及びＬＰＳが宿主細胞活性を誘導するこ
とによるシグナル伝達メカニズムに関しては相対的に僅かしか知られていない。
現在許容されるモデルにおいて、ＬＰＳモノマーは、トランスメンブレンドメイ
ンを欠いている主要なＬＰＳ受容体、ＣＤ１４に対し、脂質交換分子ＬＢＰ（Ｂ
ｏｚｚａら、１９９９年）によって触媒的に転移される。該ＬＰＳトランスメン
ブレン共受容体誘発受容体様４（Ｔｌｒ４）は、ＬＰＳ−ＣＤ１４複合体との反
応後、細胞の応答の開始のために応答可能である。ＬＰＳシグナリングにおける
Ｔｌｒ４の誘発は、ＬＰＳの致命的な効果に対するそれらの耐性にしたがって実
証されている。腹膜洗浄細胞におけるＣＣＲ４マウスと比べてＣＣＲ４−／−マ
ウスにおけるＴｌｒ４ｍＲＮＡの発現における違いはなく（データは示さず）、
かつＬＰＳ耐性はＣＣＲ４−／−マウス中の変異したＴｌｒ４コード配列の存在
のためではない。

【００６１】 ＬＰＳ誘導細胞刺激の正確なメカニズムの同定は、細菌病因論の我々の理解の
ためおよびグラム陰性細菌感染に対する保護のための計画の開発のために重要で
ある。ＣＣＲ４遺伝子の標的化した欠失は、ＬＰＳ誘導敗血症においてこの受容
体の予期し得なかった役割を明らかにしている。

【００６２】 結論として、高用量ＬＰＳ処置２４時間後にＣＣＲ４^−／−マウスの腹膜にお
いて見出されたマクロファージの数の有意な減少がある。同時に血清サイトカイ
ンＴＮＦα、ＩＬ−１βおよびＭＩＰ−１αと結びついたマクロファージが減少
した。加えて、腹膜洗浄細胞は、活性化したマクロファージによって主に生産さ
れると思われる、ケモカインＭＤＣとＭＩＰ−２のためのｍＲＮＡのレベルが減
少している。総合すれば、これらの結果は、ＬＰＳ処置後２４時間でＦ４／８０ ^＋ 集団の消失によって裏付けられる、マクロファージ機能の欠如又は特有な集団
の不在の何れかと一致する。ＬＰＳ誘導した細胞刺激の正確なメカニズムの同定
は、細菌病因論の我々の理解のため及びグラム陰性細菌感染に対する保護のため
の計画の開発のため重要である。

【００６３】 ＣＣＲ４遺伝子の標的化した欠失は、ＬＰＳ誘導エンドトキシンショックにお
いてこの受容体の予期し得なかった役割を明らかにしている。したがって、抗体
又はケモカイン受容体アンタゴニストの何れか一方のＣＣＲ４の中和化は、敗血
症および／または敗血症性ショックの治療のための新規な治療的アプローチであ
る。

【００６４】

【参照文献】

【図面の簡単な説明】

【図１ａ】 標的化計画。部分的制限地図での野生型ＣＣＲ４配座（上部）、標的ベクター
（中部）及び相同的組換え後に標的化したアレルの予測した構造（下部）。遺伝
子のコード領域は、黒ボックスとして示される。ネオマイシン耐性遺伝子は暗灰
色とし、チミジンキナーゼ遺伝子は明灰色とした。矢印はトランスジーンを発現
しているＥＳ細胞クローンを同定するために用いたＰＣＲプライマーの位置を示
す。ゲノムＤＮＡのスクリーニング用に用いたプローブは、太い黒棒で示される
（プローブ）。制限部位：Ｐ、ＰｓｔＩ；Ｎ、ＮｈｅＩ；Ｎｓ、ＮｓｉＩ；Ａ、
ＡｖｒＩ；Ｘ、ＸｈｏＩ；Ｅ５、ＥｃｏＲＶ；Ｅｃ、Ｅｃｏ４７−３；Ｈ、Ｈｐ
ａＩ；Ｈ３、ＨｉｎｄＩＩＩ。

【図１ｂ】 野生型（＋／＋）、ヘテロ接合体（＋／−）及びホモ接合ノックアウトマウス
ＣＣＲ４（−／−）からのＰｓｔＩ消化したテイルＤＮＡの典型的サザンブロッ
ト分析。野生型アレル（４．５ｋｂ）と標的化アレル（３．４ｋｂ）の予測した
バンドサイズが矢印によって示される。

【図１ｃ】 ＣＣＲ４＋／＋（ライン１、２、５、６）−／−マウス（レーン３、４、７、
８）の脾臓（ライン１ないし４）と胸腺（レーン５ないし８）中のケモカイン受
容体ｍＲＮＡのＲＴ−ＰＣＲ分析。

【図１ｄ】 ＣＣＲ４＋／＋マウス（レーン１ないし３）とＣＣＲ４−／−マウス（レーン
４ないし６）から単離した腹膜のマクロファージ中のＣＣＲ４ｍＲＮＡのＲＴ−
ＰＣＲ分析。矢印によって示されたＣＣＲ４ＰＣＲ生成物の予期されるバンドサ
イズは１．１ｋｂである。

【図１ｅ】 ＣＣＲ４リガンドＴＡＲＣ、ｈＭＩＰ−α、ＲＡＮＴＥＳ、およびＭＤＣに応
答する脾臓細胞の化学走性。ＣＣＲ４＋／＋から単離した脾臓細胞は丸で、また
−／−マウスは四角で表される。示された結果は、化学走性の各濃度で３重測定
の平均値であり、かつ少なくとも４つの実験の例示である。

【図２ａ】 ＣＣＲ４−／−マウス（白棒）とＣＣＲ４＋／＋マウス（斜線付棒）からのＣ
ｏｎＡ刺激した自然脾臓細胞によるサイトカイン生産。自然マウスからの脾臓は
、培地に分散し（１０^６細胞／ｍｌ）、そして５μｇ／ｍｌＣｏｎＡで刺激した
。サイトカインレベルは２４時間後にＥＬＩＳＡで測定される。

【図２ｂ】 ＭＤＣ（上方パネル）とＲＡＮＴＥＳ（下方パネル）へのインビトロで誘導し
たＴＨ２Ｔ細胞の化学走性応答。ＣＣＲ４＋／＋（中空の印）とＣＣＲ４−／−
（黒パネル）。

【図２ｃ】 ＣＣＲ４欠損マウスのアレルギー性気道炎症の進行。メタコリンに対する増加
した気道応答は、全身プレチスモグラフィによって測定した。この方法は、メタ
コリン吸引の前と後に呼吸圧力曲線を記録することによって麻酔していないマウ
スにおける自然発生的呼吸の測定を与える。その曲線から、高められた中断の値
（Ｐｅｎｈ）は、気管支高度応答性（ＢＨＲ）の指数として計算されかつ用いら
れる。０．２ｍｌのミョウバン中ＯＶＡの１０μｇで開始し、次いで０．９％Ｎ
ａＣｌ（丸ｎ＝１０）又はＯＶＡ（０．３ｍｇ／ｍｌ）（丸ｎ＝１３）の何れか
の５０μｌで鼻内チャレンジ後のＣＣＲ４＋／＋マウス（中空の印）とＣＣＲ４
−／−（黒印）マウスにおけるＢＨＲ。

【図２ｄ】 気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）液中の全細胞カウントと個別の白血球集団（好塩基
性細胞、マクロファージ、リンパ球及び好中球）。最後のＯＶＡ−チャレンジの
７２時間後のＣＣＲ４＋／＋（白棒ｎ＝１３）とＣＣＲ４（−／−）（斜線付棒
）。

【図２ｅ】 ＯＶＡ−開始及びチャレンジしたマウスの血清中のＯＶＡ−特異的Ｉｇ滴定値
。ＣＣＲ４＋／＋（中空の印）とＣＣＲ４−／−（黒印）。血液は、最後の鼻内
ＯＶＡチャレンジの７２時間後に採取し、ＥＬＩＳＡによって抗−ＯＶＡＩｇＭ
（四角）、ＩｇＧ１（ダイヤモンド）、ＩｇＧ２（丸）及びＩｇＥ（三角）の存
在中で試験した。データは、測定した各パラメータごとに少なくとも３つの異な
る実験の典型的な一つの実験から示される。

【図３ａ】 ＬＰＳの６０ｍｇ／ｋｇ（四角、ｎ＝１５）、９０ｍｇ／ｋｇ（丸、ｎ＝４）
および１２０ｍｇ／ｋｇ（三角、ｎ＝４）を腹腔内注射したＣＣＲ４＋／＋とＣ
ＣＲ４−／−マウスの生存曲線。

【図３ｂ】 ６０ｍｇ／ｋｇＬＰＳの注射後のＬＰＳ誘導血小板減少症。ＣＣＲ４＋／＋、
白丸（ｎ＝３）；ＣＣＲ４−／−、黒丸（ｎ＝３）。

【図３ｃ】 ＬＰＳの１μｇ（四角、ｎ＝１２）、２μｇ（丸、ｎ＝４）及び４μｇ（三角
、ｎ＝４）プラスＤ−ｇａｌ（８ｍｇ）をｉ．ｐ．注射したＣＣＲ４＋／＋（中
空の印）とＣＣＲ４−／−（黒印）マウスの生存曲線。該データは３つの異なる
実験から示される。

【図３ｄ】 ＬＰＳの腹腔内注射後の気管支の高度反応性。結果は、少なくとも２つの実験
の典型的なグループ当たり６ＣＣＲ４＋／＋とＣＣＲ４−／−マウスの平均値±
ｓ．ｄ．である。

【図４ａ】 ＬＰＳ処置後のＣＣＲ４＋／＋マウス（黒い四角）とＣＣＲ４−／−マウス（
白い四角）中の血清ＴＮＦの測定。ｘ−軸について、ＬＰＳ処置後の時間が示さ
れ、ｙ−軸について、測定した血清タンパク質の量が示される。サイトカインは
、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓから購入したキットを用いたＥＬＩＳＡによって測定
した。示された結果は、少なくとも２つの異なる実験の典型的なグループ当たり
３匹の動物の平均値±ｓ．ｄ．である。

【図４ｂ】 図４ａと同様であるが、ＩＬ−１βで測定した。

【図４ｃ】 図４ａと同様であるが、ＩＬ−６で測定した。

【図５】 ５ａ： サイトスピンによる腹膜洗浄細胞の分析。８−１１週齢のマウスはＬ
ＰＳを注射し、０、１．５、３および２４時間後にＣＯ_２窒息により屠殺した。
腹膜細胞は、０．９％ＮａＣｌでの洗浄で回収し、カウントし、かつ５ｘ１０^４ 細胞をサイトスピンにかけるとともにＤｉｆｆ−Ｑｕｉｋで染色した。図５ａは
、ＣＣＲ４−／−細胞においてＬＰＳの０時間後（すなわち、前）での細胞のミ
クログラフを示した。 ５ｂ： 図５ａと同様であるが、ＣＣＲ４＋／＋細胞中。 ５ｃ： 図５ａと同様であるが、ＬＰＳ注射１、５時間後。 ５ｄ： 図５ｂと同様であるが、ＬＰＳ注射１、５時間後。 ５ｅ： 図５ａと同様であるが、ＬＰＳ注射３時間後。 ５ｆ： 図５ｂと同様であるが、ＬＰＳ注射３時間後。 ５ｇ： 図５ａと同様であるが、ＬＰＳ注射２４時間後。 ５ｈ： 図５ｂと同様であるが、ＬＰＳ注射２４時間後。

【図６ａ】 ＬＰＳ処置後の腹膜洗浄細胞のＦＡＣｓ分析。洗浄細胞は、図５中に記載した
とおり採取され、ＦＡＣｓ緩衝液中に１０^６／ｍｌで再懸濁させた。細胞は、最
初に４℃で１０分間、Ｆｃブロック（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）でインキュベーシ
ョンし、ＦＡＣｓ緩衝液で２回洗浄し、さらにＧＲ１（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）
標識したＰＥとともに２０分間インキュベーションした。ＧＲ１抗原は、顆粒球
用のマーカーである。細胞は２回洗浄し、２００μｌのＦＡＣＳ緩衝液で再懸濁
し、Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＦＡＣｓｔａｒで分析した。図６ａは
、ＬＰＳ処置後、０（すなわちＬＰＳ処置前）、１、５又は３又は２４時間後の
ＧＲ１陽性細胞のパーセンテージを示す。

【図６ｂ】 図６ａと同様であるが、Ｆ４／８０（Ｓｅｒｏｔｅｃ）標識したＦＩＴＣを用
い、Ｔ４／８０はマクロファージマーカーである。

【図６ｃ】 ＬＰＳ注射０時間後（すなわち、前）の時点でＦ４／８０陽性細胞のＦＡＣｓ
結果。太い線はＣＣＲ４＋／＋を表し、細い線はＣＣＲ４−／−マウスを表す。

【図６ｄ】 図６ｃと同様であるが、ＬＰＳ注射２４時間後の分析。

【図７ａ】 ＬＰＳ誘導サイトカインの経時変化。６０ｍｇ／ｋｇＬＰＳ処置後のＴＮＦα
の血清レベル。

【図７ｂ】 １μｇ／ｍｌＬＰＳで刺激した腹膜洗浄細胞によるＴＮＦαのインビトロ生産
、ＣＣＲ４^＋／＋マウス（白棒、ｎ＝３）とＣＣＲ４^−／−マウス（斜線付棒、
ｎ＝３）。示した結果は少なくとも２つの異なる実験の典型例である。

【図７ｃ】 図７ａと同様であるが、ＩＬ−１βの血清レベルを示した。

【図７ｄ】 図７ａと同様であるが、ＭＩＰ−１αの血清レベルを示した。

【図８ａ】 該図のｘ−軸で示した高用量ＬＰＳ処置後の各種時間（ｘ−軸）での腹膜洗浄
から調整したサイトスピン切片上の腹膜洗浄好中球の分析。

【図８ｂ】 図８ａと同様であるが、マクロファージを分析した。

【図８ｃ】 半定量ＰＴ−ＰＣＲによって測定された腹膜細胞により発現したマクロファー
ジケモカインのＬＰＳ処置（各種の時間、ｘ−軸）の効果。図８ｃはＣＣＲ４＋
／＋マウス（白棒、ｎ＝３）とＣＣＲ４−／−（斜線付棒、ｎ＝３）についての
ＭＩＰ−２発現を示す。

【図８ｄ】 図８ｃと同様であるが、ｍＭＤＣケモカインを分析した。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 13/00 Ａ６１Ｐ 17/02 17/02 25/00 25/00 31/04 31/04 37/00 37/00 41/00 41/00 43/00 １１１ 43/00 １１１ Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ )，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ， ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ， ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，Ｃ Ｎ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ， ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，Ｋ Ｐ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ， ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，Ｓ Ｇ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者 パワー、クリスティーヌ・エー スイス国、シーエイチ−1288 エール−ラ −ビル、シュマン・デ・トロワ・ナント ３ (72)発明者 コンケ、フランソワ フランス国、1006 ローザンヌ、リュ・ド ゥ・ビュノン ９、ユニベルシテ・ドゥ・ ローザンヌ、アンスティテュート・ドゥ・ ビヨロジー・セリュレール・エ・ドゥ・モ ルフォロジー (72)発明者 クバッコ、ヨーランデ スイス国、シーエイチ−1232 コンフィグ ノン、シュマン・デュ・ビュアローネ 46 Ｆターム(参考） 4C084 AA02 AA17 BA44 CA18 DA01 NA14 ZA011 ZA591 ZA661 ZA671 ZA751 ZA811 ZA821 ZA891 ZA961 ZB021 ZB351 ZC411 4C085 AA14 BB17 CC03 DD61 EE05

Claims (10)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 敗血症の治療および／または予防用の薬学組成物の製造にお
   ける、薬学上許容されるキャリアと組合わせたＣＣＲ４アンタゴニストの使用。
2. 【請求項２】 敗血症性ショックの治療および／または予防用の薬学組成物
   の製造にける、薬学上許容されるキャリアと組合わせたＣＣＲ４アンタゴニスト
   の使用。
3. 【請求項３】 前記ＣＣＲ４アンタゴニストがＣＣＲ４に結合可能なポリペ
   プチドである請求項１又は２に記載の使用。
4. 【請求項４】 前記ＣＣＲ４アンタゴニストが抗−ＣＣＲ４抗体又はそのフ
   ラグメントである、請求項１〜３の何れか１項に記載の使用。
5. 【請求項５】 モノクローナル抗体がキメラモノクローナル抗体、ヒト化モ
   ノクローナル抗体又はそのフラグメントからなる群から選択される、請求項４に
   記載の使用。
6. 【請求項６】 ＣＣＲ４アンタゴニストの治療的有効量を患者に投与するこ
   とを含む、敗血症を治療および／または予防する方法。
7. 【請求項７】 ＣＣＲ４アンタゴニストの治療的有効量を患者に投与するこ
   とを含む、敗血症性ショックを治療および／または予防する方法。
8. 【請求項８】 薬学上許容されるキャリアとともにＣＣＲ４アンタゴニスト
   を含有する、敗血症の治療および／または予防における薬学組成物。
9. 【請求項９】 薬学上許容されるキャリアとともにＣＣＲ４アンタゴニスト
   を含有する、敗血症性ショックの治療および／または予防における薬学組成物。
10. 【請求項１０】 前記ＣＣＲ４アンタゴニストが請求項１〜５の何れか１項
    に記載の特徴を有する、請求項８または９に記載の薬学組成物。