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JP2001512974A - 形態形成タンパク質 - Google Patents

形態形成タンパク質

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JP2001512974A JP53688498A JP53688498A JP2001512974A JP 2001512974 A JP2001512974 A JP 2001512974A JP 53688498 A JP53688498 A JP 53688498A JP 53688498 A JP53688498 A JP 53688498A JP 2001512974 A JP2001512974 A JP 2001512974A
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Abstract

(57)【要約】 b57タンパク質および関連する核酸が提供される。特定の活性、特に骨形成タンパク質を拮抗するための能力を有するDANまたはb57ドメインを含むいくつかの種およびタンパク質由来の天然のDANおよびb57ホモログが含まれる。タンパク質は、本発明の核酸で形質転換された宿主細胞から組換え的に産生され得る。また、開示された遺伝子と特異的にハイブリダイズし得る単離されたハイブリダイゼーションプローブおよびプライマー、特定の結合因子、および本発明の組成物を作製する方法および使用する方法が提供される。

Description

【発明の詳細な説明】 形態形成タンパク質 本国際出願は、1997年2月19日に出願された米国仮出願第60/038,279号の優先 権を主張する。本明細書中で引用されたすべての刊行物および特許出願は、個々 の刊行物または特許出願がそれぞれ、参考として援用されると具体的にそして個 々に示されているように、本明細書中に参考として援用される。 序論 本発明の分野は、細胞機能を調節し、そして特に、骨形成タンパク質に拮抗す るタンパク質である。 細胞増殖、分化、および機能の天然の調節因子は、重要な医薬品、臨床および 実験ツール、ならびに治療的介入のための標的を提供してきた。種々のこのよう な調節因子は、基本的な細胞分化経路および発生経路に対する深い効果を有する ことが示されている。例えば、最近クローン化されたケルベロス(cerberus)タ ンパク質は、脊椎動物胚の前方内胚葉においてヘッド構造の形成を誘導する。同 様に、ノギン(noggin)タンパク質は脊椎動物胚にヘッド構造を誘導し、そして、 中胚葉運命(fate)を腹部運命(例えば、血液および間葉)から背部運命(例えば 筋肉および脊索)に向けなおし得、そして表皮運命を前方神経運命に向け直し得 る。コーディン(chordin)の活性は、共通の作用機構を反映して、ノギンの活性 と類似し、すなわち骨形成タンパク質(BMP)に拮抗し、それによってその機能を 防げる。BMPは、異なる生物学的状況において多様な生物学的活性を有する(軟 骨組織、骨および結合組織の誘導、ならびに腎臓、歯、腸、皮膚、および髪の発 育における役割を含む)。 異なるメンバーのTGFβスーパーファミリーは、細胞に異なる宿命に従うこと を指示し得る(例えば、TGFβは、神経冠を、平滑筋を形成するように誘導し、 他方BMP2は、同じ細胞を、神経細胞になるように誘導する)。Xenopus実験にお いて、分離した動物キャップ(cap)細胞(将来的に外胚葉)は、BMP4に応答して表 皮になるが、アクチビンに応答して中胚葉になる。アクチビンとBMP4との間の配 列同一性は低いので、それらが異なる運命を誘導することは驚くべきことではな い。より驚くべきことは、配列が極めて密接に関連する、BMPサブファミリーの メンバーが、異なる運命を誘導し得ることである。印象的な例が、筋肉へのBMP を含浸妊娠させたマトリクスの移植から生じる。;効果が組織学的にモニターさ れる場合、BMP2,BMP4およびBMP7は、軟骨内骨形成を誘導するが、関連分子であ るBMP12/GDF7は、腱と類似の結合組織を誘導する。同様に、BMP4は、菱脳神経冠 において細胞死を誘導し得るが、関連タンパク質ドルサリン(dorsalin)は、誘 導しない。 異なるBMPファミリーメンバーは異なる運命を誘導し得るので、BMPのサブセッ トをブロックすることにおいて特異性を有するBMPアンタゴニストは、細胞に、 対して提示されるBMP中の平衡を変化させ、従って細胞運命を改善し得る。ヒト の健康および疾患における相対的BMP発現の重要性の観点において、特に細胞機 能およびBMP機能の調節因子(例えば、ノギンおよびケルベウス)は、臨床的お よび生物工学的な適用の宿主に価値ある試薬を提供する。本発明は、細胞機能の 調節因子の新しいファミリーに関する。 発明の要旨 本発明は、DAN(Differential-screening-selected gene Aberrative in Neuro blastoma)およびb57タンパク質、ならびに関連する核酸に関する方法および組成 物を提供する。異なる種由来の天然のDANおよびb57同族体ならびにDANまたはb57 ドメインを含み、そしてDANまたはb57特異的活性(特にBMP2またはBMP4のような 骨形成タンパク質に拮抗する能力)を有するタンパク質が含まれる。タンパク質 は、本発明の核酸で形質転換された宿主細胞から組換え的に産生され得る。本発 明は、開示された遺伝子に特異的にハイブリダイズすることが可能である、単離 されたハイブリダイゼーションプローブおよびプライマー、特異的抗体のような 特異的な結合因子、ならびに本発明の組成物を作製するための方法および診断( 例えば、b57転写物のための遺伝子ハイブリダイゼーションスクリーニング)、 治療(例えば、b57遺伝子発現を調整するための遺伝子治療)、および生物薬剤 産業(例えば、リード薬理学的製剤について化学ライブラリーをスクリーニング するための試薬)における使用のための方法を提供する。 本発明のDANおよびb57タンパク質の好ましい適用は、付加されたタンパク質が 、培地の成分および/または細胞外表面と特異的に相互作用し細胞の生理学にお ける変化を達成する条件下で、外来性DANまたはb57タンパク質を有する細胞また は細胞を取り囲む培地を接触させることによって、細胞外表面を含む細胞の生理 学を改変することを包含する。生物学的活性薬剤についてスクリーニングするの ための方法もまた好ましい。そしてこの方法は、細胞外DANまたはb57タンパク質 特異的結合標的および候補薬剤の存在下で、薬剤の存在がなければ、タンパク質 が参照親和性で結合標的と特異的に結合する条件下でDANまたはb57タンパク質を インキュベートする工程;結合標的へのタンパク質の結合親和性を検出して、薬 剤により偏った親和性を決定する工程を包含し、ここで、試薬の偏った親和性と 参照親和性との間の差異は、薬剤がタンパク質の結合標的への結合を調整するこ とを示す。図面の簡単な説明 図1A〜1B ヒトb57がBMP2およびBMP4と結合することの証明。 図2 ヒトb57がBMP2の生物学的活性をブロックすることの証明 図3 Xenopusb57(またグレムリン(Gremlin)とも呼ばれる)がBMP2の活 性をブロックする。細胞へ添加する前に、78pM、156pM、313pM、625pM、1.25nM 、2.5nMまたは5nMのBMP2を、最終濃度が83nMまたは21nMのグレムリンのグレムリ ンCOS上清、模擬トランスフェクト培地、または新鮮DMEMとプレインキュベート した。アルカリフォスファターゼ活性を24時間後にアッセイした。約83nMのグレ ムリンが、BMP2活性を完全にブロックする。約21nMのグレムリンが試験したBMP2 用量を部分的にブロックする。 発明の詳細な説明 本発明は、DANおよびb57タンパク質を提供する。これらは、天然のDANおよびb 57タンパク質、ならびにDANもしくはb57アミノ酸配列、あるいはアッセイ識別可 能なDANもしくはb57特異的活性を有するそれらの機能的DANまたはb57タンパク質 ドメインを含む組換えタンパク質を含む。従って、タンパク質は、開示された天 然のDANおよびb57タンパク質の欠失変異体であり得、そして融合生成物(例えば 、非b57ポリペプチドとの)として提供され得る。本発明のDANおよびb57タンパ ク質ドメインは、DANまたはb57特異的活性または機能を有し、そして互いに機能 的に区別され、そしてケルベルスおよびノギン同族体とは機能的に区別される。 このようなドメインは、天然のDANまたはb57タンパク質の少なくとも6つ、そし て好ましくは少なくとも8つの連続した残基を含む(Enomotoら(1994)Oncogen e 9:2785-2791によって報告されたDAN配列および本明細書中に開示されたヒトb5 7配列を参照のこと)。好ましいb57タンパク質は、種間で保存されたb57配列を 含む。 DANは細胞内ジンクフィンガータンパク質であると述べる従来の教示とは反対 に、出願人は、天然のDANタンパク質が、構造上および機能上b57に関連し、そし て本明細書に記載されるb57タンパク質とDANタンパク質との両方が、BMPのよう な特定の形態形成タンパク質のアンタゴニストとして細胞外的に活性であるとい うことを開示することに注目すべきである。DANまたはb57特異的活性または機能 は、便利なインビトロアッセイ、細胞ベースのアッセイ、またはインビボアッセ イ、例えば、インビトロ結合アッセイ、細胞培養アッセイ、動物において(例え ば、免疫応答、遺伝子治療、トランスジェニックなど)などによって決定され得 る。結合アッセイは、DANまたはb57タンパク質の結合標的との特異的分子相互作 用が評価される任意のアッセイを包含する。結合標的は、TGFβタンパク質、形 態形成タンパク質、好ましくはBMP2またはBMP4のような骨形成タンパク質、シャ ペロン、またはDANまたはb57活性またはその位置を直接調整する他の調節因子の ような天然の結合標的、または特異的免疫タンパク質のような非天然結合標的( 例えば、抗体)、または以下に記載されるアッセイにおいて同定される薬剤のよ うなDANまたはb57特異的薬剤であり得る。一般に、結合特異性は、バイオアッセ イ(例えば、注入された胚性外胚葉から神経組織を誘導するための能力)、TGF βタンパク質結合平衡定数(通常、少なくとも約107M-1、好ましくは、少なくと も約108M-1、より好ましくは、少なくとも約109M-1)、本発明のタンパク質がDA Nまたはb57発現細胞においてネガティブ変異体として機能する能力、または異種 宿主(例えば、げっ歯類またはウサギ)においてDANまたはb57特異的抗体を誘発 する能力などによってアッセイされる。 本願発明のタンパク質は、単離され得るかまたは純粋であり得る。「単離され た」タンパク質は、その天然の状態で会合されているいくつかの物質をもはや伴 なわないタンパク質であって、そして所定のサンプルにおいて、全タンパク質の 、好ましくは少なくとも約0.5重量%、そしてより好ましくは少なくとも約5重 量%を構成するタンパク質である。「純粋」タンパク質は、所定のサンプルにお いて、全タンパク質の少なくとも約90重量%、そして好ましくは少なくとも約99 重量%を構成する。本発明のタンパク質およびタンパク質ドメインは合成され得 るか、組換え技術によって産生され、または細胞から精製され得る。多種多様の 分子および生化学的方法は、本発明の組成物の生化学的合成、分子発現および精 製のために利用可能である(例えば、Molecular Cloning,A Laboratory Manual (Sambrookら、Cold Spring Harbor Laboratory)、Current Protocols in Molecu lar Biology(Ausubelら編、Greene Publ.Assoc.Wiley−Interscience,NY) を参照のこと)。天然のDANおよびb57タンパク質を単離するための例示的な方法 は、cDNAライブラリーを発現すること(例えば、Xenopus卵巣細胞由来のもの) 、および胚軸形成について発現産物をアッセイすることを含む。この方法ならび にDANタンパク質およびb57タンパク質を検出することになじみ易い他の適切なバ イオアッセイは、Lemaire,P.ら(1995)Cell 81:85−94;Smith,W.C.およびHarla nd,R.M.(1992)Cell 70:829−40;Smith,W.C.およびHarland,R.M.(1991)Cell 6 7:753−765;Piccolo,S.ら(1996)Cell86:589-98;およびZimmerman,L.B.ら(1996 )Cell 86:599-606によって記載されている。 本願のタンパク質は、免疫原、スクリーニングアッセイにおける標的、細胞増 殖、分化および/または機能を調整するための生物活性試薬などとしての使用を 含む多種多様な使用を見い出す。例えば、本発明は、付加されたタンパク質が、 培地の成分および/または細胞外表面の成分と特異的に相互作用して細胞の生理 学における変化を達成する条件下で、細胞または、細胞を取り囲む培地を、外来 性DANまたはb57タンパク質と接触することによって細胞外表面を含む細胞の生理 学を改変するための方法を提供する。これらの方法に従って、細胞外表面は形質 膜関連レセプターを含む;外来性DANまたはb57は、細胞によって作製されないタ ンパク質または、細胞にとって作製される場合、非天然レベル、時期または生理 学的場所で発現されるタンパク質をいう;そして適切な培地は、インビトロ培養 培地、および血液、滑液などのような生理学的液体を含む。本発明のタンパク質 の効果的投与は、望ましくない(例えば、異所的な)骨形成を減少させ、形態形 成タンパク質を要求する細胞(例えば、BMP依存性神経芽細胞腫およびグリオー マ)の増殖を阻害し、培養においてモルホジェン依存性細胞運命/分化を改変す るなどするために、例えば、移植用細胞または注入などを用いて使用され得る。 タンパク質は、任意の便利な方法(例えば、マイクロインジェクション、組換え 酵素のプロモーター特異的発現、脂質ビヒクルの標的化送達など)によって、細 胞の特定集団に導入され得るか、発現され得るか、または抑制され得る。 本発明は天然のおよび非天然のDANおよびb57特異的結合因子、このような因子 を同定する方法および作製する方法、ならびに診断、治療、および薬剤開発進展 におけるそれらの使用を提供する。DANまたはb57特異的結合因子は、BMPのよう なb57特異的リガンド、体細胞性組換えタンパク質レセプター様特異的抗体また はT細胞抗原レセプター(例えば、HarlowおよびLane(1988)Antibodies,A Lab oratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratoryを参照のこと)のようなレセ プターを含み、そしてまた、ワンハイブリッド、ツーハイブリッドおよびスリー ハイブリッドスクリーニングのようなアッセイで同定された他の天然結合因子、 および以下に記載するような化学ライブラリーのスクリーニングで同定される非 天然結合因子を含む。特定の目的の因子は、DANまたはb57の機能を調整する。 本発明は、翻訳可能な転写物、ハイブリダイゼーションプローブ、PCRプライ マー、診断用核酸などとしての使用、ならびにDANおよびb57遺伝子および遺伝子 転写物の存在を検出することにおける使用、およびさらなるDANおよびb57同族体 および構造アナログをコードする核酸を検出または増幅することにおける使用を 含む多種多様な適用を見い出す、b57核酸およびDAN核酸を提供する。例えば、Xe nopusおよびニワトリb57配列データはI.M.A.G.E共同体のESTデータベースを検索 するために使用され、そしてヒトcDNAクローン272074が、DNA配列決定によって 、相同配列ホモログを含むように識別された。挿入物は、合成mRNAの合成のため の適切なベクターである、CS105中にクローン化された(Turner,D.L.,およびWei ntraub,H.(1994)Genes Dev.8,1434−47;Baker,J.C.,およびHarland,R.M.(1996) Genes & Development 10)。ヒト遺伝子産物のb57特異的機能は、Xenopus胚への cDNAクローンの精製された合成転写物の注入によって決定された。このアッセ イは、異所性体軸または巨大頭の誘導によって例証されるように、BMP活性のア ンタゴニストについての生物アッセイを提供する。ヒトb57クローン由来の転写 物を注射した胚は、Xenopusb57注入胚と同様の、巨大頭および部分的異所性体軸 を有した。これは、ヒト遺伝子産物のためのb57特異的生物学的機能を示す。 同様に、Xenopusのケルベロス(cerberus)の配列データは、I.M.A.G.Eコンソ ーシアム(consortium)ESTデータベースの検索のために使用され、そしてヒトc DNAクローン272074が、相同配列を含むと識別された。このクローンは、Genome System,Inc.(St.Louis,MO)から得られ、そしてABI 373A DNAシーケンサーおよ びTaq Dideoxy Terminator Cycle Sequencing Kit(Applied Biosystem,Inc.,Fo ster City,CA)を用いて配列決定された。ヒトb57をコードするヌクレオチド配 列は、本明細書中に配列番号1として示され、そしてヒトb57の推定アミノ酸配 列は、本明細書中に配列番号2として示される。 本発明の核酸は、合成配列/非天然配列の核酸であり、および/または単離さ れた核酸(すなわち、所定の画分中に存在する全核酸の、少なくとも約0.5%重量 、より好ましくは少なくとも約5%重量を好ましくは構成する核酸、その天然状態 に関連するいくつかの物質を全く伴わない)であり、通常は組換え体でありこれ は本発明の核酸が、天然の染色体上に結合するヌクレオチド以外のヌクレオチド に結合した非天然配列または天然配列を含むことを意味する。配列番号1のヌク レオチド配列またはそのフラグメントを含む核酸は、天然の染色体に結合される 配列以外の配列に直接に隣接するか、または天然の染色体に結合される配列以外 の配列に直接隣接する10kb未満(好ましくは2kb未満)の天然隣接領域に隣接す るような、配列またはフラグメントを末端に含む。核酸は通常RNAまたはDNAであ るが、改変された安定性などを提供するために他の塩基またはヌクレオチドアナ ログを含む核酸の使用がしばしば有利である。 開示されたDANおよびb57のタンパク質のアミノ酸配列は、選択発現系のために 最適化されたDANまたはb57タンパク質コード核酸の逆翻訳のために使用されるか (Hoolerら、(1993),Gene 136:323-328:Martinら、(1995),Gene 154.150-166) 、または天然のb57コード核酸配列の単離における使用のための変性オリグヌク レオチドプライマーおよびプローブを生成するために使用される(「GCG」ソフト ウェア、Genetics Computer Group Inc.,Madison,WI)。DANコード核酸およびb5 7コード核酸は、発現ベクターの一部であり得、例えば、b57媒介シグナル伝達関 連疾患の候補薬の有効性などのような機能上の研究のためのトランスジェニック 動物についての発現およびスクリーニングのために組換え宿主細胞に取り込まれ 得る。発現系は、代替的な翻訳後のプロセスを介して、b57タンパク質の構造的 改変および機能的改変をもたらすために選択および/または変更される。 本発明はまた、核酸ハイブリダイゼーションプローブ、およびDNAまたはb57の cDNA特異的配列を有し、そして配列番号1を用いる特異的ハイブリダイゼーショ ンをもたらすのに充分な複製プライマー/増幅プライマーを提供する。特異的ハ イブリダイゼーションは、一般的にストリンジェントな条件を必要とし、例えば 、 5×SSPE(0.18M NaCl、0.01M NaPO4、pH7.7、0.001M EDTA)緩衝液中に30%のホ ルムアミドを含む緩衝液中で、42℃の温度でハイブリダイズし、そして0.2×SPP Eを用いて42℃での洗浄に供したときに結合を維持し;好ましくは、5×SPPE緩衝 液中に50%のホルムアミドを含む緩衝液中で、42℃の温度でハイブリダイズし、 そして42℃の0.2×SPPEを用いて、42℃での洗浄に供したときに結合を維持する 。DANおよびb57のcDNAホモログはまた、BLASTX(Altschulら、(1990)Basic Loca l Alignment Search Tool,J.Mol Biol.215:403-410)のような配列アルゴリズム を用いて他のタンパク質と区別され得る。 DANおよびb57のハイブリダイゼーションプローブは、臨床および研究サンプル における野生型および変異対立遺伝子の同定における使用を見出す。変異対立遺 伝子は高処理能力臨床診断のための対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチド(ASO )プローブの生成に使用される。DANおよびb57の核酸はまた、細胞性発現、また は活性なDANもしくはb57の細胞内濃縮もしくは生存性の調節のために使用される 。DANおよびb57の阻害性核酸は、代表的には、開示された天然b57コード配列の 相補体を含むアンチセンス-1本鎖配列である。所定のDANまたはb57のタンパク 質発現のアンチセンス調節は、調節配列遺伝子に作動可能に連結されたアンチセ ンス核酸を使用し得る。細胞は、遺伝子の転写が、内在性のDANコードmRNAまた はb57コードmRNAに結合可能なアンチセンス転写物を産生するように方向付けら れたプロモーター配列を有するDANまたはb57の配列を含むベクターを用いトラン スフェクトされる。アンチセンス核酸の転写は、構成的または誘導的であり、そ してベクターは安定な染色体外維持または組み込みを提供する。あるいは、所定 のDNAまたはb57のタンパク質をコードするゲノムDNAまたはRNAに結合する一本鎖 アンチセンス核酸は、宿主においてまたは宿主から一時的に単離された標的細胞 に、標的化されたタンパク質の発現を実質的に減少させる濃度で、投与され得る 。DANまたはb57の発現の増強は、対応する遺伝子産物の機能的発現を増加させる DANまたはb57の核酸を標的化された細胞型に導入することによりもたらされる。 このような核酸は、DANまたはb57の発現ベクター、内在性対立遺伝子の機能的発 現をアップレギュレートするベクター、または変異対立遺伝子の標的化された補 正のための置換ベクターであり得る。核酸を生細胞に導入するための技術は当該 分野で公知であり、そしてレトロウイルスに基づくトランスフェクション、ウイ ルスコートタンパク質-リポソーム媒介トランスフェクションなどを含む。 本発明は、細胞内の機能を調節可能なDANまたはb57のレベルで、活性な因子に ついて、薬剤、化合物またはリード化合物の効果的な同定方法を提供する。一般 的にこれらのスクリーニング方法は、DANまたはb57と天然のDANまたはb57結合標 的との相互作用を調節する化合物についてのアッセイを含む。結合因子について の種々の広範なアッセイが提供され、これにはタンパク質-タンパク質結合アッ セイ、イムノアッセイ、細胞に基づくアッセイなどが挙げられる。好ましい方法 は、自動化された費用効果的な、リード化合物についての化学的ライブラリーの 高処理能力スクリーニングに従う。 インビトロ、結合アッセイは、DANまたはb57のタンパク質を含む成分の混合物 を使用し、これは別のペプチド、または検出もしくは固着などのためのタグのよ うなポリペプチドを有する融合生成物の一部であり得る。アッセイ混合物は、天 然DANまたはb57結合標的(例えば、BMPのようなTGFβタンパク質)を含む。天然 の結合標的が使用される一方で、一部分が、アッセイにおいて従来測定可能な被 験体のDANまたはb57に対する結合親和性および結合活性を提供する限り、そのタ ンパク質の部分の使用が頻繁に好まれる。アッセイ混合物はまた、薬学的な候補 因子を含む。候補因子は、代表的にはそれらは有機化合物であり、好ましくは小 有機化合物であるが、多数の化学的分類を包含し、そして候補因子は合成化合物 または天然化合物のライブラリーを含む広範な種々の供給源から得られる。塩、 緩衝液、中性タンパク質のような種々の他の試薬(例えば、アルブミン、界面活 性剤、プロテアーゼインヒビター、ヌクレアーゼインヒビター、抗菌剤など)が また含まれる。混合成分は、不可欠な結合を提供する任意のオーダーで添加され 得、そしてインキュベートは、最適な結合を容易にする任意の温度で行われ得る 。混合物は、薬学的候補因子の存在を除いて、DANまたはb57は、細胞結合標的、 参考結合親和性を有する一部分またはアナログに特異的に結合する条件下でイン キュベートされる。インキュベーション時間は最適な結合について選択されるが 、また、迅速な高処理能力スクリーニングを容易にするために最小化されている 。 インキュベーション後、DANまたはb57と1つ以上の結合標的との間の偏因子 (agent-biased)結合は、任意の従来法により検出される。細胞を含まない結合 型アッセイのために、分離工程は非結合成分から結合成分を分離するためによく 用いられる。分離は、膜濾過またはゲルクロマトグラフィーなどによる洗浄に続 く沈澱、固定化などによりもたらされ得る。細胞を含まない結合アッセイのため に、成分の1つは、通常、標識物を含むか、または標識物に結合される。標識物 は放射能、発光、光学密度もしくは電子密度などのような直接的検出またはエピ トープタグ、酵素のような間接的検出を提供し得る。種々の方法は、標識物の性 質および他のアッセイ成分(光学密度、電子密度、放射性発光、非放射性エネル ギー転移を介する)に依存するか、または抗体結合物などを用いて間接的に検出 される標識物の検出のために使用され得る。因子の非存在下におけるDANまたはb 57タンパク質の標的で因子に対する結合親和性と因子の存在下における結合親和 性と比較された場合の差異は、因子がDANまたはb57のタンパク質の対応する結合 標的への結合を調節することを示す。本明細書中で使用される差異は統計学的に 有意であり、好ましくは少なくとも50%、より好ましくは少なくとも90%の差異を 示す。 本発明は、培地と接触する細胞外表面を含む細胞の生理機能を改変するための 方法を提供し、前記方法は、前記培地成分の少なくとも1つおよび前記細胞外表 面と特異的に相互作用し、前記タンパク質が、前記細胞の生理機能において変化 をもたらす条件下で、前記培地を外因性DANまたはb57タンパク質と接触させる工 程を包含する。 本発明はさらに生物学的に活性な因子をスクリーニングするための方法を提供 し、前記方法は、以下の工程を包含する:a)DANまたはb57タンパク質を、細胞 外DANまたはb57のタンパク質に特異的に結合する標的物および候補因子の存在条 件下でインキュベートする工程であって、それによって、しかし前記因子の存在 について、前記タンパク質が参照親和性で前記結合標的と特異的に結合する;b )偏因子(agent-biased)親和性を決定するために前記結合標的に対する前記タ ンパク質の結合親和性を検出する工程。ここで偏因子親和性と参照親和性との間 の差異は、前記因子が、前記結合標的に対する前記タンパク質の結合を調節する ことを示す。 本発明の1つの実施態様は、配列番号2で示されるアミノ酸配列またはb57特 異的活性を有するそのフラグメントを含む、単離されたb57タンパク質である。 本発明の別の実施態様は、配列番号2で示されるアミノ酸配列またはb57特異 的活性を有するそのフラグメントを含む、b57タンパク質をコードする組換え核 酸である。 なお別の実施態様は、配列番号1で示されるヌクレオチド配列または配列番号 1の少なくとも18連続塩基を有するそのフラグメントを含む単離された核酸、お よび天然DANおよびケルベロス(cerberus)のcDNAの存在下で配列番号1の配列 を有する核酸に特異的にハイブリダイズするのに充分である核酸である。 本発明はまた、例えば診断適用におけるタンパク質の検出に有用である、本明 細書中に記載されるb57タンパク質に対する抗体を提供する。このb57タンパク質 に対するモノクローナル抗体の調製のために、連続的な細胞株の培養による抗体 分子の産生を提供する任意の技術が用いられ得る。例えば、ハイブリドーマ技術 は、本来、KohlerおよびMilstein(1975,Nature 256:495-497)により開発され 、そしてトリオーマ技術、ヒトB細胞ハイブリドーマ技術(Kozborら、1983,Im munology Today 4:72)、およびヒトモノクローナル抗体を産生するためのEBVハ イブリドーマ技術(Coleら、1985、「Monoclonal Antibodies and Cancer Thera py」、Alan R.Liss,Inc.77〜96頁)などが、本発明の範囲内にある。 診断または処置的な利用のためのモノクローナル抗体はヒトモノクローナル抗 体またはキメラヒト-マウス(または、他の種)モノクローナル抗体であり得る 。ヒトモノクローナル抗体は、当該分野で公知の多数の技術のいずれか(例えば 、Tengら、1983,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.80:7308-7312;Kozborら、1983,Imm unology Today 4:72-79;Olssonら、1982,Meth.Enzymol.92:3-16)により作製さ れ得る。キメラ抗体分子は調製され得、これはヒト定常域を有するマウス抗原結 合ドメインを含む(Morrisonら、1984,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.81:6851、Ta kedaら、1985,Nature 314:452)。 当該分野で公知の種々の手順は、本明細書中に記載されるb57タンパク質のエ ピトープに対するポリクローナル抗体の産生のために使用され得る。抗体産生の ために、種々の宿主動物は、b57タンパク質またはそのフラグメントもしくは誘 導体の注射により免疫され得、ウサギ、マウスおよびラットを含むがこれらには 限られない。種々のアジュバントは、宿主種に依存して免疫学的応答の増強のた めに使用され得、フロイント(完全および不完全)アジュバンド、ミネラルゲル (例えば、水酸化アルミニウム)、界面活性物質(例えば、リゾレシチン)、プ ルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、オイルエマルジョン、キーホ ールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、およびBCG(カルメット-ゲ ラン桿菌)およびCorynebacterium parvumのような潜在的に有用なヒトアジュバ ントを含むがこれらには限定されない。 選択されたb57タンパク質エピトープに対する抗体の分子クローンは、公知の 技術により調製され得る。組換えDNA方法論(例えば、Maniatisら、1982,Molecu lar Cloning,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Sprin g Habor,New Yorkを参照のこと)は、モノクローナル抗体分子、またはその抗原 結合領域をコードする核酸配列を構築するために使用され得る。 本発明は、抗体分子およびその抗体分子のフラグメントを提供する。分子のイ ディオタイプを含む抗体フラグメントは、公知の技術により産生され得る。例え ば、このようなフラグメントには、抗体分子のペプシン消化により生成され得る F(ab')2フラグメント、F(ab')2フラグメントのジスルフィド架橋の還元により生 成され得るFab'フラグメント、ならびにパパインおよび還元剤を用いて抗体分子 を処理することにより生成され得るFabフラグメントが挙げられる。抗体分子は 、公知の技術(例えば、免疫吸着クロマトグラフィーもしくは免疫アフィニティ クロマトグラフィー、HPLC(高速液体クロマトグラフィー)のようなクロマトグ ラフィー法、またはこれらを組み合わせた方法)により精製され得る。 本発明はさらに、DANまたはb57タンパク質もしくはそのフラグメントを骨形成 タンパク質(BMP)活性のアンタゴニストとして使用する方法を提供する。好ま しくは、本発明は、前記BMPをb57と接触させる工程を包含する骨形成タンパク質 (BMP)の機能に拮抗する方法を提供する。本発明の方法は、b57がBMPに結合す る条件下で行われる。本発明の好ましい実施態様において、b57は哺乳動物b57で あり、そしてさらに好ましくはヒトb57またはBMPに結合し得るそれらのフラグメ ントである。さらに好ましい、本発明の実施態様において、ヒトb57は、BMP2ま たはBMP4の機能に拮抗するために使用される。 BMPに対するアンタゴニストは、動物(特に、ヒト)のBMP関連障害の予防およ び処置に有用であり得る。従って、本発明の目的は、動物、好ましくは哺乳動物 、特にヒトにおける疾患状態でのBMP機能に効果的に拮抗する物質を同定するこ とである。本発明の別の目的は、BMPを阻害する新たな化合物を調製することで ある。本発明のさらなる別の目的は、哺乳動物における疾患状態でのBMP機能に 拮抗する方法を開発することである。BMP機能に関連する障害を予防または処置 する方法の開発がまた、本発明の目的である。 正常な骨形成におけるこれらの役割に加えて、BMPは、異常な骨成長を促進す る疾患に関与すると考えられる。例えば、BMPは、患者にいかなる動作も妨げる 異常な「第2骨格」を生じる、進行性骨化性線維形成異常(FOP)として公知の 疾患において原因的役割を担うと報告されている。 従って、本発明の目的は、進行性骨化性線維形成異常(FOP)を含むがこれに 限定されない疾患または障害の処置のための新たな分子を提供することである。 b57は、BMPのブロッカーであるので、この疾患のための治療薬剤としての望みを 提供する。さらに、異常な骨成長は、股関節置換手術(hip replacement surgery )後に生じ得、従って外科手術の結果を台無しにする。これは、病理学的骨成長 でのより一般的な例であり、そしてb57のようなBMPブロッカーが、治療的に有用 であり得る状況である。b57は、外傷、熱傷、または脊髄傷害後の骨の病理学的 形成のような他の形態の異常な骨形成を処置するためにもまた有用である。さら にb57は、転移性前立腺ガンまたは骨肉腫に関連して見られる異常な骨成長に関 連するBMPの望ましくない作用を処置または予防するために有用であり得る。 さらなる実施態様において、本発明のb57の核酸、タンパク質およびペプチド は哺乳動物におけるBMP活性をブロックするために使用され得る。 本発明はまた、本明細書中に記載されるようなb57分子および適切なキャリア を含む組成物を提供する。b57を含み得る活性成分は、注射(例えば、静脈内注 射、腹腔内注射、筋肉内注射、皮下注射、神経内膜注射、神経周囲注射、脊髄内 注射、脳室内注射、硝子体内注射、くも膜下腔内注射など)を含むがこれらには 限られない適切な任意の経路により、上皮内層または粘膜皮膚内層(例えば、口 腔粘膜、直腸粘膜、腸管粘膜など)を介した吸収により;または細胞性移植物も しくは組織性移植物を含む持続性放出移植物により、インビボで、全身的または 局所的に投与されるために適切なキャリア中に処方されるべきである。 投与様式に依存して、活性成分は、生理食塩水のような液体キャリア中に処方 され得るか、リポソーム、マイクロカプセル、ポリマーまたはワックスベースの 調製物および制御された放出調製物に組み込まれ得るか、または錠剤、丸剤、も しくはカプセルの形態に処方され得る。 処方物に用いられる活性成分の濃度は、必要とされる有効用量および使用され る投与様式に依存する。使用される用量は、有効である活性成分の循環血漿濃度 を達成するために充分であるべきである。有効用量は、インビトロまたは動物モ デルの試験系由来の用量−応答曲線から外挿され得る。 その上、本発明はさらに、BMP活性を調節または調整するためのフォン・ビル ブラント因子の使用を提供する。ニワトリb57(chB57)、ヒトb57(hB57)およ びXenopus b57(xB57)、ヒトDANおよびマウスDAN、マウスのケルベロス(cerbe rus)およびXenopusのケルベロスならにびヒトフォン・ビルブラント因子(VWF )のカルボキシ末端ドメインを整列させることにより(表1を参照)、出願人ら は、これらの種々のタンパク質の間に著しい相同性(9つの別々のシステイン残 基の保存を含む)を発見した。この著しい相同性を考えれば、フォン・ビルブラ ント因子はまた、BMP活性を調節または調整するために有用であり得ると期待さ れる。 以下のプロトコルは、高処理能力ヒトb57-BMP結合アッセイのために使用され 得る: A.試薬: −中性アビジン:PBS中に20μg/ml −ブロッキング緩衝液:PBS中に5% BSA、0.5% Tween 20;室温にて1時間 −アッセイ緩衝液:100mM KCl、20mM HEPES pH7.6、1mM MgCl2、1% グリセロ ール、0.5% NP-40、50mM β-メルカプトエタノール、1mg/ml BSA、プロテアーゼ インヒビターのカクテル。 −33Pヒトb57タンパク質の10×ストック:200,000〜250,000cpmの標識ヒトb57 (Beckmanカウンター)を補充した10-8〜10-6Mの「コールド」ヒトb57。スクリ ーニングの間、4℃の小型冷蔵庫(microfridge)に置く。 −プロテアーゼインヒビターカクテル(1000×):10mlのPBS中に、10mgのト リプシンインヒビター(BMB番号109894)、10mgのアプロチニン(BMB番号236624 )、25mgのベンズアミジン(Benzamidine)(Sigma番号B-6506)、25mgのロイペ プチン(BMB番号1017128)、10mgのAPMSF(BMB番号917575)および2mMのNaVO3( Sigma番号S-6508) −BMP:PBS中に、10-7〜10-4Mのビオチン化BMP B.アッセイプレートの調製 −1ウェルあたり120μlのストックN-アビジンを用いて、一晩4℃でコートす る。 −200μlのPBSを用いて2回洗浄する。 −150μlのブロッキング緩衝液を用いてブロックする。 −200μlのPBSを用いて2回洗浄する。 C.アッセイ −1ウェルあたり40μlのアッセイ緩衝液を添加する。 −10μlの化合物または抽出物を添加する。 −10μlの33P-b57タンパク質(20〜25,000cpm/0.1〜10pmol/ウェル=10-9〜10- 7 Mの最終濃度) −25℃で15分間振とうする。 −さらに45分間25℃でインキュベートする。 −40μlのビオチン化BMP(アッセイ緩衝液中に、0.1〜10pmole/40μl) −1時間室温でインキュベートする。 −200μlのPBSで4回洗浄することにより反応を停止する。 −150μlのシンチレーションカクテルを添加する。 −トップカウントにおいて計数する。 D.全てのアッセイについてのコントロール(各プレートに配置される) i.非特異的結合 ii.80%阻害で可溶(非ビオチン化b57)。 以下の実施例は、例示のために提供され、制限のために提供されるのではない。 実施例 1.ヒトb57クローンの配列決定 すでに述べたように、Xenopus cerberus配列データをI.M.A.G.E consortiumの ESTデータベースを検索するためのプローブとして使用し、そしてヒトcDNAクロ ーン272074を相同配列を含むと認めた。このクローンはGenome Systems,Inc. (St.Louis,MO)から入手し、そしてABI 373A DNAシークエンサーおよびTaqジ デオキシターミネーターサイクルシークエンシングキット(Applied Biosystems ,Inc.,Foster City,CA)を用いて配列決定した。ヒトb57をコードするヌクレ オチド配列を配列番号1として示し、そしてヒトb57の推定アミノ酸配列を配列 番号2として示す。 配列番号1.ヒトb57をコードするヌクレオチド配列配列番号2.ヒトb57の推定アミノ酸配列 ヒトb57はcerberus(Bouwmeesterら、1996)およびDAN(Enomotoら、1994)を 含むタンパク質のファミリーに属する(表1を参照のこと)。これらのb57関連 物は、骨形成タンパク質(BMP)ファミリーの異なるメンバーのアンタゴニスト として機能すると仮定されてきた。BMPファミリーは、お互いに種々の程度の相 同性を示す多くの異なるメンバーを有し、そしてBMPファミリーは、BMPだけでは なく、増殖分化因子(GDF)、トランスフォーミング増殖因子βおよびそのホモ ログ(TGFβs)、アクチビン、インヒビン、dorsalin、ならびにnodal、vegetal 、vegetal関連物、および数種の新しいメンバー(Furutaら、1997)もまた含む 。BMPは、多くの異なる生物学的プロセスにおいて重要な役割を演ずることが示 され、従ってそれらの活性の天然に存在するアンタゴニストの存在には、大きな 興味があり、かつ薬理学的な可能性がある。 BMPアンタゴニストの、cerberus/b57/DANファミリー以外のものとして、BMPに 対する数種の他のアンタゴニスト、すなわち、noggin(SmithおよびHarland、19 92;Zimmermanら、1996)、chordin(Piccoloら、1996)およびfollistatin(He mmati-Brivanlouら、1994)が知られている。これらはcerberus/b57/DANファミ リーには属さず、そしてこれらはまた、お互いに全く相同性を共有しない。にも かかわらず、nogginおよびchordinはBMP2およびBMP4に結合し、そしてBMPレセプ ターとの相互作用を遮断することにより、それらの生物学的作用を阻害すること が示されている。 本発明者らは、哺乳動物発現系を用いたヒトb57の発現を本明細書中に記載し 、そして標準的な実験室の技術(例えば、Molecular Cloning,A Laboratory Ma nual(Sambrookら、Cold Spring Harbor Laboratory)を参照のこと)を用いて 、いくつかのタグ化した形態のhb57、例えばhb57-FcΔCl、hb57-FLAG、およびhb 57myc3を生成した。hb57をまた、E.coliで発現および再フォールディングさせ 、そしてウサギ抗b57ポリクローナル抗血清をそれに対し惹起させた(Quality Co ntrolled Biochemicals,Inc.,Hopkinton,Massachusetts,01748 USAによる契 約の下で調製された抗血清#Q-1523-1およびQ-1523-2)。組換えhb57タンパク質を 用いて、本発明者らは、hBMP2およびhBMP4に対するhb57の結合、およびnogginが この相互作用を拮抗する能力を試験した。本発明者らはまた、細胞を基盤にした ア ッセイにおいて、hb57がhBMP2の生物学的活性を遮断する能力を試験した。2.hb57発現プラスミドpRG622の構築 ヒトb57(hb57)の遺伝子をコードするDNAフラグメントを、プライマー、 N1-hb57(5’-GAGAGTCATGAAAAAGAAAGGGTCCCAAGGTGC-3’)および C1-hb57(5’-GAGAGGCGGCCGCTCATTAATCCAAATCGATGGATATGCAAC-3’) を用いて、ESTクローンからPCR増幅した。得られた509bpのフラグメントをBspHI およびNotIで消化し、次いでpRG536のNcoI-Not I部位に連結した。クローンを同 定し、pRG622と名付け、次いでE.coli 1RFJ143株に形質転換した。構築物は、D NA配列分析により確認した。3.hb57の精製 pRG622を含むE.coli RFJ143株をLB培地中で増殖させ、そして1mM IPTGの添加 によりhb57の発現を誘導した。誘導された細胞を遠心分離によって収集し、10容 量の100mM Tris-HCl,pH8.5、20mM EDTA中で再懸濁し、そしてNiro-Soave Panda 細胞破壊器を通過させることにより溶解した。細胞溶解物を遠心分離し、そして ペレットを10容量の9M尿素、50mM Tris-HCl,pH8.5、1mM EDTA、100mM Na2SO3、 10mM Na2S4O6中で再懸濁、そして室温で16時間撹拌した。可溶化された封入体を 、8M尿素、20mM MES,pH6.0、200mM NaCl、1mM EDTAで平衡化したSephacryl S-3 00カラムで分画した。hb57を含む画分を集め、1M尿素、50mM Tris-HCl,pH8.0、 2M NaCl、0.1mM EDTA、0.5mMシステインで10倍希釈した。4℃にて1〜2日インキ ュベーションの後、再フォールディングしたhb57を、JupiterC5カラムを用いる 逆相クロマトグラフィーにより精製した。0.1% TFA中1.3%/分の、30%〜50%のア セトニトリル勾配により、正しく再フォールディングしたタンパク質をカラムか ら溶出した。hb57を含む画分を集め、減圧下で乾燥させ、そして20mM Tris-HCl ,pH8.0、150mM NaCl、0.1mM EDTA中で再懸濁した。4.hb57がBMP2およびBMP4に結合することの証明 一つの実施例において、hb57myc3(1mlのCOS7由来無血清調整培地)をhBMP2 (1μg/ml)またはhBMP4(1μg/ml)と共に、ヒトnogginタンパク質(hNGΔB2、 10μg/ml)の非存在下または存在下で、同時インキュベーションを行った。hb57 とBMPとの間の安定な複合体の形成を、プロテインG-Sepharoseビーズ(Pharmaci a)に結合した抗mycモノクローナル抗体(9E10;1μg/ml)を用いて、hb57および 会合タンパク質を免疫沈降させることによって決定した。無血清調整培地を20mM Tris pH7.6、150mM NaCl、0.1% Tween 20(TBST)、1mg/mlウシ血清アルブミン (BSA)をこれらの試薬の10×濃縮物の添加により作製した後、結合反応をこの 培地中で実行した。結合は、反応容量1.1mlで、プロテインG-Sepharoseの懸濁状 態を保つように連続的に混合させて、25℃で1時間進行させ、ビーズが遠心沈澱 した時点以降に、1回TBSTで洗浄し、新しいエッペンドルフチューブに移し、そ してTBSTで3回洗浄した。ビーズに結合したタンパク質を、25μlのLaemli SDS- PAGE試料緩衝液の添加によって可溶化し、そして4〜12%NuPAGE/MES勾配ゲル(N ovex)にロードし、これを還元条件下で泳動した。タンパク質を続いてImmobilo n Pに転移させ、そしてそれぞれのタンパク質に対して惹起されたポリクローナ ル抗血清を用いて、BMP2またはBMP4の存在についてウェスタンブロットした。 図1A〜1Bに見られるように、hb57myc3はhBMP2(図1A、レーン1)およびhBMP4 (図1B、レーン1)の両方に結合する。これらの条件下ではある程度の結合の減 少が見られたが、この相互作用は1M NaCl中で安定であるらしい(図1A、レーン 2;および図1B、レーン2)。10μgのhNGの添加は完全にこの相互作用を遮断し (図1A、レーン3;および図1B、レーン3)、これはおそらく、hBMP2またはhBM P4に結合すること、およびそれらがhb57myc3に結合する能力を遮断することによ る。さらに、hb57myc3が反応から除外された場合には、hBMP2またはhBMP4のビー ズへの結合は見られなかった(図1A、レーン6;および図1B、レーン6)。この ことは、hBMP2またはhBMP4のビーズへの非特異的な結合はなく、そして観察され た結合はhb57依存的であることを示す。異なるタグ化形態のhb57を使用して、そ してまた、20mM Tris-HCl,pH7.6、200mM KCl、0.1% Nonidet P=40、1mg/mlウシ 血清アルブミン(BSA)を含む異なる緩衝液系を使用して、同一の結果が得られ ていることに留意すべきである。比較のために、また、ポジティブコントロール として、hBMP2およびhBMP4をまた、hNGΔB2Fc(hNGムテインhNGΔB2のFcタ グ化形態)に結合するそれらの能力について試験した。hBMP2およびhBMP4の両方 が、以前に得られた結果(Zimmermanら、1996)と一致して、hNGΔB2Fcに結合し (図1A、レーン4;および図1B、レーン4)、そして相互作用は、タグ化されて いないhNGの添加により遮断された(図1A、レーン5;および図1B、レーン5) 。まとめると、これらの結果は、hb57によって認識されるhBMP2およびhBMP4上の エピトープが同じか、またはnogginによって認識されるエピトープとオーバーラ ップしているか、または、あるいはnogginのhBMP2およびhBMP4への結合が、hb57 の結合を立体的に遮断していることを示す。5.hb57がBMP生物学的活性を遮断することの証明 別の実施例において、E.coliにおいて発現され、再フォールディングされたh b57を、C2C12マウス多能性間葉前駆細胞株中でhBMP2の生物学的活性を遮断する 能力について試験した。C2C12細胞は、BMP2およびBMP4に応答することが示され ている(Katagiriら、1994)。この応答の一つの特徴は、アルカリ性ホスファタ ーゼの発現のアップレギュレーションであり、その活性は、細胞または細胞溶解 物中で、比色定量基質を使用して容易に測定され得る。図2に示すように、C2C1 2細胞は、約200ng/ml hBMP2で最大応答が、そして最小の応答が約10ng/ml hBMP2 で得られるように、hBMP2と応答する(見かけのEC50は70ng/mlである)。この応 答を遮断するhb57の能力を、1μg/mlで開始するhBMP2の用量反応を行う間に、異 なった量(3μg/ml、または1μg/ml、または0.3μg/ml)のhb57の同時インキュ ベーションによって試験した。図2に見られ得るように、3μg/mlのhb57の包含 は、0.5μg/mlで使用した場合、hBMP2応答の完全な遮断を導く。1μg/mlのhb57 を使用すると、hBMPが約0.3μg/mlの場合にhBMP2応答の約50%阻害、およびhBMP が約0.12μg/mlの場合に完全な阻害が見られる。BMP2刺激されたC2C12における アルカリ性ホスファターゼの誘導の遮断は、b57による増殖の阻害に起因したの ではなかったことを確認するために、同一に処理したプレートを、細胞の増殖を 測定するMMTアッセイ(Mosmann,1983)に供した。hb57処理による細胞増殖への 影響は見られなかった。このことにより、このアッセイにおいて、アルカリ性ホ スファターゼ発現の阻害は、hBMP2活性の遮断に起因することが示される。従っ て、hb57はBMP2活性の強力なアンタゴニストであり、そしてこれは、BMP2に直接 結合すること、およびその生物学的作用を遮断することによって、この効果を仲 介するようである。結合の結果と総合すると、hb57はまたhBMP4の活性をも遮断 することが仮定される。 Xenopusb 57(Gremlin)をまた、サイトカインアッセイにおいて、精製BMP-2 の活性を拮抗するその能力について試験した。マウス骨髄間質細胞株W-20-17は 、BMP処理に応じたアルカリ性ホスファターゼの誘導によるBMP活性についての直 接的、定量的なバイオアッセイを提供する(Thiesら、Endocrinology 130:1318- 24(1992))。精製したBMP-2を最終濃度約83nM GremlinのGremlin COS上清とプレ インキュベーションすると、用量78pM〜5nMでBMP-2活性を完全に遮断した。約21 nMグレムリンにおいて、BMP-2活性は減少し、しかし除去はされなかった(図3 を参照のこと)。偽のトランスフェクトされたCOS上清には効果がなかった。同 様の結果がBMP-4で得られた。6.hb57の組織発現 本発明者らは、異なる成人組織から調製したRNAの分析によってヒトb57の発現 を試験した。表2は、試験された組織およびこれらの組織で検出されたhb57の発 現のレベルを列挙する。これほどの多くの異なる組織におけるhb57の発現は、そ れが生物的に重要な役割を演じていることを示す。この仮説を支持する証拠の一 端は、ラットのhb57ホモログであるdrm(Topolら1997)の発現が形質転換細胞に おいてダウンレギュレートされることである。同様の観察は、b57に対する相同 性により関連されるDAN(Ozakiら、1995;Ozakiら、1996;Enonlotoら、1994) に対してなされた。 7.実施例2〜6の材料および方法 a.結合アッセイ: 結合は、20mM Tris pH7.6、150mM NaCl、0.1% Tween 20(TBST)、1g/mlウシ 血清アルブミン(BSA)中で、25℃で連続的な混合により行った。抗myc9E10モノ クローナル抗体またはFcタグ化hNGΔB2Fcのいずれかを捕捉するために、プロテ インG-Sepharose(G-Se)を使用した。非特異的に結合したタンパク質をTBSTを 用いて1回洗浄し、次いでG-Seビーズを新しいチューブに移し、そしてもう3回 TBSTで洗浄することにより、ビーズから除去した。結合したhBMP2およびhBMP4を 、抗hBMP2または抗hBMP4ポリクローナル抗血清を用いるウェスタンブロッティン グによって可視化した。b.抗hBMP2および抗hBMP4ウェスタン: 抗体は、組換えhBMP2またはhBMP4で免疫したウサギに由来した。抗体調製物は 放血したウサギからの全血清であった。 1.5%脱脂粉乳(NFDM)を含む20mM Tris pH7.6、150mM NaCl、0.1% Tween 20( TBST)中で、1時間以上フィルターをブロックする。 2.2.5% NFDM/TBST中で1時間、1:20,000希釈で抗hBMP2または1:10,000希釈で 抗hBMP4を用いてブローブ(probe)する。 3.TBSTで各回10分間、3回洗浄する。 c.)50ng/ml(1:20,000希釈)を用いてプローブする。 5.TBSTで各回10分間、3回洗浄する。 6.TBS(Tween-20なし)で各回5〜10分間、3回洗浄する。 7.ECLを行う(Pierce)。c.C2C12バイオアッセイプロトコール ((Katagiriら、1994)を改変) 1.DMEM+15%FBS+Pen/Str+グルタミン中で、96ウェルプレートにC2C12を50 0細胞/ウェルで播種する。重要:トリプシン処理の間およびプレーティングに 先だって、細胞は単一分散しなければならない。細胞の塊は、誤った結果および 応答における可変性を与える。 2.翌日BMPおよび他の因子を各々のウェルに加える。 重要点: a.C2C12はBMP2およびBMP4に応答する。細胞をこれらの因子と共に3日間イン キュベートする場合、1〜2μg/mlで最大の応答が得られ得る。バックグラウンド 以上の応答は、10ng/mlで見られる。細胞をBMPと共に4日間インキュベートする 場合、1ng/ml程度の少ない濃度で応答が見られ、そして最大応答は300ng/mlで得 られる。4日間のインキュベーション期間の間、培地の交換は必要ない。 b.BMP2およびBMP4の両方に対するインキュベーションは、各々の因子単独の等 価量として予想される、上記の付加的な応答を導かない。 c.BMP2またはBMP4の希釈は、どちらも直接的にアッセイ培地中で行われなけれ ばならない(濃度が10μg/ml以下に保たれる限りにおいて)。 d.BMP2およびBMP4に対する応答は、等モル量のヒトnogginの添加によって遮断 され得る。 3.使用するBMPのレベルに依存して、3〜4日間インキュベートする。 4.培地を吸引し、PBSで1回洗浄し、ウェルあたり0.05mlのddH2Oを加える。 翌日まで-20℃にて凍結するか、またはステップ5に進む。 5.3回凍結-融解を行って細胞を溶解させる。このためにドライアイストレー が使用され得る。 6.0.05mlの2×Alk-Phos基質/緩衝液混合物(Sigma N2720)を加える。 7.展開を続ける-通常約40分を要する。50% w/v NaOH溶液を使用することによ り各々のウェル中のpHを14に移すことにより、展開を停止する。 8.A405を測定する。d.ノーザン分析 I.プローブ調製 1.NgoMIおよびBglIIを用いて、20μgのプラスミドpCAE304(pMT21.hb57)を制限 処理する。 2.486bpフラグメント(約2μg)をゲル精製し、そして100μlのddH2Oに溶出す る。 3.Prime-It II Random Primer Labeling Kit(Stratagene)を用いて、次のプロ トコールに従ってプローブを標識する: a.4μlの精製したhb57フラグメント+20μl H20+10μlランダムオリゴヌクレオ チドプライマーを、チューブ内で混合する。 b.反応チューブを、沸騰湯浴中で5分間熱処理し、次いで室温に放置する。 c.10μlの5×dCTPプライマー緩衝液+5μlの[α-32P]dCTP+1μl Exo(-)クレノ ウ酵素(5u/μl)をチューブ内に添加する。 d.チューブを37〜40℃で30分間インキュベートする。 4.標識したプローブをMicroSpinカラム(Pharmacia Biotech)を用いて精製する 。 II.ヒト多組織ノーザン(MTN)ブロット(CLONTECH)のノーザンブロッティング : 1.20mlのPreHyb溶液+ssDNA(10μl/ml)中で、65℃において2時間以上、ハイブ リダイゼーションオーブンを使用して、ブロットをプレハイブリダイズする。 2.標識したプローブを95℃で5分間変性させ、すぐにチューブを氷上に置く。 3.プローブをPreHyb溶液に直接添加し、65℃で一晩、ブロットにハイブリダイズ させる。 4.ブロットを100mlの2×SSC+0.1%SDSで、65℃において2回、それぞれ1時間ず つ洗浄する。 5.ブロットをフィルムに曝露する。e.文献 前述の本発明は幾分詳細に例示の目的で記載され、および理解の明確化のため に実施例を記載したが、ある変更および改変が、添付の請求の範囲の精神または 範囲から逸脱することなくそこになされ得ることは、本発明の教示を考慮して当 業者に容易に明らかである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) A61P 43/00 111 C07K 16/18 C07K 14/435 C12N 1/19 16/18 1/21 C12N 1/19 C12P 21/02 C 1/21 21/08 5/10 C12Q 1/68 A C12P 21/02 C12N 15/00 ZNAA 21/08 5/00 B C12Q 1/68 A61K 37/02 (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FI,FR,GB,GR,IE,IT,L U,MC,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF ,CG,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE, SN,TD,TG),AP(GH,GM,KE,LS,M W,SD,SZ,UG,ZW),EA(AM,AZ,BY ,KG,KZ,MD,RU,TJ,TM),AL,AM ,AT,AU,AZ,BA,BB,BG,BR,BY, CA,CH,CN,CU,CZ,DE,DK,EE,E S,FI,GB,GE,GH,HU,IL,IS,JP ,KE,KG,KP,KR,KZ,LC,LK,LR, LS,LT,LU,LV,MD,MG,MK,MN,M W,MX,NO,NZ,PL,PT,RO,RU,SD ,SE,SG,SI,SK,SL,TJ,TM,TR, TT,UA,UG,US,UZ,VN,YU,ZW (72)発明者 バレンズエラ,デイビッド エム. アメリカ合衆国 ニューヨーク 11010, フランクリン スクエア,グランジ スト リート 216 (72)発明者 エコノミデス,アリス アメリカ合衆国 ニューヨーク 10027, ニューヨーク,マウント モリス パーク ダブリュー.12 (72)発明者 ハーランド,リチャード エム. アメリカ合衆国 カリフォルニア 94556, モラガ,バーチウッド ドライブ 402 (72)発明者 フス,デイビッド アメリカ合衆国 カリフォルニア 04706, アルバニー,カインズ アベニュー 401 (72)発明者 スタール,ニール アメリカ合衆国 ニューヨーク 10512, カーメル,ケント ショア ドライブ,ア ール.ディー.ナンバー10

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.哺乳動物b57をコードする単離された核酸分子。 2.以下: (a)配列番号1に示されるヒトb57のコード領域を含む、ヌクレオチド配列; (b)(a)のヌクレオチド配列にストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、 そして、骨形成タンパク質BMP2およびBMP4を拮抗するための生物学的活性を有す る分子をコードする、ヌクレオチド配列;または (c) 遺伝子コードの縮重を除けば(a)または(b)のヌクレオチド配列にハイブリ ダイズし、そして骨形成タンパク質BMP2およびBMP4を拮抗するための生物学的活 性を有する分子をコードする、ヌクレオチド配列、 からなる群から選択される配列を有する、請求項1に記載の単離された核酸分子 。 3.請求項1または2に記載の核酸分子を含むベクター。 4.請求項3に記載のベクターであって、前記核酸分子が宿主細胞中の発現を指 向し得る発現制御配列に作動可能に連結される、ベクター。 5.プラスミドである、請求項3または4に記載のベクター。 6.請求項1または2に記載の核酸によってコードされる、単離されたタンパク 質。 7.単離されたヒトb57タンパク質であって、配列番号2に示されるアミノ酸配 列を有するか、または骨形成タンパク質BMP2およびBMP4を拮抗するための生物学 的活性を有する該配列のフラグメントを有する、タンパク質。 8.宿主細胞中に請求項3または4に記載のベクターを含む、宿主ベクター系。 9.請求項8に記載の宿主ベクター系であって、前記宿主細胞が細菌、酵母、昆 虫または哺乳動物細胞である、宿主ベクター系。 10.請求項6または7に記載のタンパク質を産生するための方法であって、タ ンパク質の産生を許容する条件下で請求項8または9の宿主ベクター系の細胞を 増殖させる工程、およびそのように産生されたタンパク質を回収する工程を包含 する、方法。 11.請求項1または2に記載の核酸にストリンジェントな条件下で特異的にハ イブリダイズし得る、核酸プローブまたはプライマー。 12.請求項6または7に記載のタンパク質に特異的に結合する抗体。 13.モノクローナル抗体である請求項12に記載の抗体。 14.ポリクローナル抗体である請求項12に記載の抗体。 15.請求項6または7に記載のタンパク質およびキャリアを含む、薬学的組成 物。 16.請求項12、13または14に記載の抗体およびキャリアを含む、薬学的 組成物。 17.請求項10に記載の方法によって産生されるタンパク質。 18.免疫グロブリン定常領域へ融合する請求項6または7に記載のタンパク質 を含む、リガンド体。 19.請求項18に記載のリガンド体であって、免疫グロブリン定常領域がヒト IgG1のFc部分である、リガンド体。 20.ヒトまたは動物身体の処置方法における、または診断方法における使用の ための、請求項6もしくは7に記載のタンパク質、請求項12、13もしくは1 4に記載の抗体、請求項15もしくは16に記載の薬学的組成物、または請求項 18もしくは19に記載のリガンド体。 21.骨形成タンパク質(BMP)の機能を拮抗するための方法における使用のため の医薬の製造における、請求項6または7に記載のタンパク質の使用。 22.前記タンパク質がヒトb57である、請求項21に記載の使用。 23.前記BMPがBMP2またはBMP4である、請求項21または22に記載の使用。 24.動物のBMP関連障害を予防または処置することにおける使用のための、請 求項21〜23のいずれか1項に記載の使用。 25.ヒトの処置のための請求項24に記載の使用。 26.前記BMP関連障害が異常な骨成長である、請求項25に記載の使用。 27.前記BMP関連障害が進行性骨化性線維形成異常(FOP)である、請求項25に 記載の使用。 28.前記異常な骨成長が股関節置換手術後に生じる、請求項25に記載の使用 。 29.前記異常な骨成長が外傷、熱傷もしくは脊髄傷害後、または転移性前立腺 ガンまたは骨肉種とともに生じる、請求項25に記載の使用。 30.骨形成タンパク質(BMP)の機能を拮抗するための方法であって、請求項6 または7に記載のタンパク質と該BMPとを接触させる工程を包含する、方法。 31.骨形成タンパク質(BMP)の機能を拮抗するための方法であって、b57と該BM Pとを接触させる工程を包含する、方法。
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