FR3117339A1 - Utilisation des bactériorubérines et leurs dérivés glycosylés pour prévenir et traiter les maladies impliquant une dérégulation de l’agrégation des protéines, comme les maladies neurodégénératives - Google Patents

Abstract

U tilisation des bactériorubérines et leur s dérivés glycosylé s pour prévenir et traiter les maladies impliquant une dérégulation de l’agrégation des protéines, comme les maladies neurodégénératives L’invention concerne une composition comprenant au moins une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple une maladie dégénérative, avantageusement une maladie neurodégénérative, une fibrose, avantageusement une fibrose pulmonaire, ou un diabète. L’invention concerne aussi une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie présentant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, et une méthode de traitement ou prévention d’une maladie dégénérative. Figure pour l'abrégé : NEANT

Description

Utilisation des bactériorubérines et leurs dérivés glycosylés pour prévenir et traiter les maladies impliquant une dérégulation de l’agrégation des protéines, comme les maladies neurodégénératives

Domaine de l’invention

La présente invention concerne une composition comprenant au moins une bactériorubérine et/ou au moins une bactériorubérine glycosylée pour le traitement ou la prévention d’une maladie impliquant une dérégulation de l’agrégation des protéines, comme les maladies dégénératives avantageusement neurodégénérative, notamment une maladie choisie parmi la maladie d'Alzheimer (ALS), la maladie de Parkinson (PD), la maladie de Huntington, l'atrophie corticale postérieure ou encore la sclérose latérale amyotrophique (SLA) ainsi que les maladies neurodégénératives oculaires choisies parmi la dégénérescence maculaire, la rétinite pigmentaire et la rétinopathie.

Etat de la technique

Les maladies dégénératives, et en particulier le maladies neurodégénératives telles que la maladie d'Alzheimer (ALS), la maladie de Parkinson (PD), la maladie de Huntington, l'atrophie corticale postérieure ou encore la sclérose latérale amyotrophique ainsi que les maladies neurodégénératives oculaires, sont des pathologies chroniques invalidantes à évolution lente. Elles provoquent généralement une détérioration du fonctionnement des cellules nerveuses, en particulier les neurones, pouvant conduire à la mort cellulaire ou à la neurodégénérescence. Les troubles induits par les maladies neurodégénératives sont variés et peuvent être d'ordre cognitivo-comportemental, sensoriel et moteur (Duggeret al.2017).

Il est difficile de jauger l’impact global des maladies neurodégénératives sur la population humaine mondiale ; l’organisation mondiale de la santé (OMS) estime que jusqu’à un milliard d’êtres humains pourraient être touchés si on considère toutes les manifestations de ces conditions dont les confins sont parfois flous ; ces chiffres ont vocation à augmenter au vu du vieillissement croissant de la population dans les pays développés et en cours de développement.

Au fur et à mesure que la recherche progresse, de nombreuses similitudes apparaissent reliant ces maladies les unes aux autres, notamment au niveau cellulaire par l'agrégation de protéines atypiques ou dépliées et la mort neuronales induites. La découverte de ces similitudes offre l'espoir d'avancées thérapeutiques qui pourraient améliorer simultanément de nombreuses maladies, en particulier en agissant sur les mécanismes de l’agrégation des protéines intracellulaires dans les neurones.

Les caroténoïdes sont des composés isoprénoïdes linéaires hautement conjugués responsables de la majorité de la pigmentation jaune, orange et rouge observée dans les organismes sur terre (Armstrong, 1997). La biosynthèse des caroténoïdes se produit dans tous les êtres vivants, à l'exception des animaux chez lesquels les caroténoïdes sont introduits par l'alimentation (Britton, 1995). Bien qu’environ un millier de caroténoïdes différents aient été identifiés dans la nature et qu’ils présentent des caractéristiques structurelles très variées, tous les caroténoïdes connus partagent un squelette conjugué linéaire lipophile, obtenus en passant par des voies biosynthétiques hautement conservées (Britton, 2004). Les caroténoïdes sont synthétisés à partir de la condensation linéaire des unités d'isoprène, dérivées du métabolisme primaire (Armstrong, 1994). Des modifications covalentes à chaque extrémité de la chaîne donnent lieu à la diversité structurelle observée des caroténoïdes connus (Armstrong, 1997). La désaturation des chaînes génère le chromophore, caractéristique des caroténoïdes, qui se traduit par une région d'électrons délocalisés facilement excitables ; ces propriétés sont à la base de deux caractéristiques fondamentales communes à tous les caroténoïdes, à savoir leurs propriétés photochimiques et leur action antioxydante (Britton, 1995).

Le terme de caroténoïde regroupe les molécules des familles des carotènes et des xanthophylles.

Parmi les caroténoïdes présentant le potentiel antioxydant le plus important, on se doit de mentionner les bactériorubérines, des carotènes tétra-hydroxylés à 50 atomes de carbone. Les bactériorubérines et leurs dérivés se retrouvent dans des bactéries extrêmophiles, notamment les archées halophiles et certaines actinobactéries psychrophiles ; dans ces microorganismes, ils jouent un rôle important dans la protection de l’ADN et des membranes contre l’irradiation solaire ainsi que les stress environnementaux thermiques et osmotiques auxquels ces organismes sont constamment confrontés (Mandelliet al.2012). En particulier, ces carotènes se retrouvent dans l’actinobactérie psychrophileArthrobacter (Micrococcus) agilis.Cette bactérie est également capable de synthétiser des formes glycosylées des bactériorubérines, c’est-à-dire, dont les groupement hydroxyles terminales sont substitués avec des sucres (Fonget al.2001).

Il est connu que plusieurs caroténoïdes peuvent aider à prévenir, ralentir ou traiter des maladies neurodégénératives. Ainsi la demande de brevet WO2014/155189 divulgue l’utilisation de plusieurs xanthophylles, notamment la lutéine et la zéaxanthine pour le traitement et la prévention du PD et l’ALS.

La demande WO2008/038119 divulgue le traitement du PD par une composition contenant : (a) un complexe de coenzyme Q10 et au moins une cyclodextrine; et (b) au moins un caroténoïde, notamment un carotène choisi parmi l’α-carotène, β- carotène et lycopène.

Il est également connu que les caroténoïdes glycosylés peuvent être utiles dans le traitement et prévention de maladies neurodégénératives : à titre d’exemple, une action neuroprotectrice a été associée à la crocine, un caroténoïde glycosylé responsable de la couleur jaune du safran (Farkhondehet al.2018).

Malgré l’utilité des caroténoïdes déjà employés dans la prévention des maladies neurodégénératives, il subsiste un besoin évident pour des nouveaux remèdes aptes à contraster de façon plus efficace l’émergence de ces pathologies.

Buts de l’invention

L’invention a pour but de résoudre le problème technique consistant à fournir un composé ou une composition possédant une activité chaperon, c’est-à-dire ayant la capacité de lutter contre la dénaturation et l’agrégation de protéines, protégeant ainsi des protéines cellulaires.

Ainsi, l’invention a également pour but de résoudre le problème technique consistant à fournir un composé ou une composition protégeant au moins une protéine intracellulaire ou extracellulaire à la fois du stress oxydatif et de la dénaturation.

L’invention a pour but de résoudre le problème technique consistant à fournir un composé ou une composition utile dans le traitement et la prévention d’une maladie présentant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple de maladies dégénératives.

Description de l’invention

De façon surprenante, la Demanderesse a découvert qu’une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, possède une activité chaperon, les rendant ainsi utiles dans le traitement et la prévention de maladies impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple une maladie dégénérative, avantageusement une maladie neurodégénérative, une fibrose, avantageusement une fibrose pulmonaire, ou un diabète. Parmi les maladies neurodégénératives, on peut citer en particulier les maladies neurodégénératives caractérisées par l’accumulation d’agrégats de protéines dans les neurones, comme l’ALS et le PD. Dans la partie expérimentale, il est montré que les bactériorubérines, et encore plus les bactériorubérines glycosylées permettent de stabiliser les protéines et en ralentir leur inactivation/dénaturation. L’effet chaperon de ces molécules peut jouer un rôle important dans le traitement de ces pathologies, en protégeant les neurones.

La présente invention concerne également une composition comprenant une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans le traitement ou la prévention d’une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple une maladie dégénérative, avantageusement une maladie neurodégénérative, une fibrose, avantageusement une fibrose pulmonaire, ou un diabète.

L’invention concerne notamment une composition comprenant une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans le traitement ou la prévention d’une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines en réduisant la formation d’agrégats protéiques toxiques, et en particulier dans les neurones.

L’invention concerne notamment une composition comprenant une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans le traitement ou la prévention d’une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines en réduisant la dénaturation de protéines.

Ainsi la présente invention concerne une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans le traitement ou la prévention d’une maladie dégénérative, avantageusement d’une maladie neurodégénérative.

La présente invention concerne également une composition comprenant une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans le traitement ou la prévention d’une maladie dégénérative, avantageusement d’une maladie neurodégénérative .

La présente invention concerne également une méthode de traitement ou prévention d’une maladie dégénérative, avantageusement d’une maladie neurodégénérative dans laquelle une composition comprenant au moins une bactériorubérine et/ou au moins une bactériorubérine glycosylée est administrée à un sujet en ayant besoin.

Typiquement, la maladie neurodégénérative est choisie parmi la maladie d'Alzheimer (ALS), la maladie de Parkinson (PD), la maladie de Huntington, l'atrophie corticale postérieure ou encore la sclérose latérale amyotrophique (SLA) ainsi que les maladies neurodégénératives oculaires choisies parmi la dégénérescence maculaire, la rétinite pigmentaire et la rétinopathie, avantageusement pour le traitement de la maladie d'Alzheimer (ALS), la maladie de Parkinson (PD).

Les compositions selon l’invention peuvent également être utiles pour traiter d’autres pathologies présentant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple, une fibrose, avantageusement une fibrose pulmonaire, ou un diabète.

Bactériorubérine (CAS No 32719-43-0), également connue sous le nom de « α-Bactériorubérine ».

L’«-Bactériorubérine » présente la structure suivante :

La α-bactériorubérine comprend 4 groupements hydroxyle terminaux, dont chacun est susceptible d’être substitué par liaison éther avec un groupement du type sucre, voire un ou plusieurs sucres liés de façon covalente. Par « forme glycosylée de la bactériorubérine » ou « bactériorubérine glycosylée » on entend une bactériorubérine dont au moins un groupement hydroxyle est substitué avec un ou plusieurs, par exemple deux ou trois, résidus de sucres par le biais d’une liaison éther entre le squelette de la bactériorubérine et le sucre.

Une « bactériorubérine glycosylée isolée » selon l’invention est obtenue par synthèse par biotechnologie, par synthèse chimique, suivies typiquement d’une purification, ou, alternativement par purification d’une bactériorubérine glycosylée naturellement contenue dans une bactérie naturelle.

Par exemple, une « bactériorubérine glycosylée » selon l’invention répond à la structure suivante :

dans laquelle R est indépendamment choisi parmi un atome d’hydrogène, un ou plusieurs, par exemple deux, voire trois,, résidus de sucres et où R à moins une occurrence représente un ou plusieurs, par exemple deux, voire trois résidus de sucres.

Dans un mode de réalisation préféré, le sucre est un hexose ou un désoxyhexose choisi dans le groupe constitué par l’allose, l’altrose, le glucose, le mannose, le gulose, l’idose, le galactose, le fucose, fructose, le fucose.

Dans un mode de réalisation préféré, une composition selon l’invention comprend au moins une bactériorubérine glycosylée choisie parmi les bactériorubérines monoglycosylées, les bactériorubérines diglycosylées, les bactériorubérines triglycosylées, les bactériorubérines tétraglycosylées, les bactériorubérines pentaglycosylées, les bactériorubérines hexaglycosylées, les bactériorubérines heptaglycosylées, les bactériorubérines octaglycosylées, les bactériorubérines nonaglycosylées, les bactériorubérines decaglycosylées, les bactériorubérines undecaglycosylées, et les bactériorubérines dodecaglycosylées. Avantageusement il s’agit au moins une bactériorubérine glycosylée choisie parmi les bactériorubérines monoglycosylées, les bactériorubérines diglycosylées, les bactériorubérines triglycosylées, et les bactériorubérines tetraglycosylées.

Avantageusement, ladite composition comprend un mélange de bactériorubérines monoglycosylées, bactériorubérines diglycosylées et bactériorubérines tetraglycosylées ; et de préférence un mélange de bactériorubérines monoglycosylées et bactériorubérines diglycosylées. Dans une mode de réalisation privilégié, la composition selon l’invention est essentiellement exempte de formes non glycosylées de bactériorubérine.

Avantageusement, l’extrait total de caroténoïdes contenant les bactériorubérines glycosylées selon l’invention est un extrait bactérien, de préférence d’Actinobactérie, encore plus avantageusement de la famille Microccoccaceae.Avantageusement, il s’agit des espècesMicrococcus roseusetArthobacter agilis.

Les bactériorubérines glycosylées peuvent être obtenues par extraction et purification par exemple par chromatographie, des extraits totaux de caroténoïdes d’actinobactérie des genresMicrococcusouArthrobacte r,avantageusement les espècesA . agiliset/ou M.roseus. L’espèceA. agilisest également connue sous le nomMicrococcus agilis. Ainsi les extraits et souches décrites dans les publications Strandet al.1997, Fonget al.2001 et dans la demande de brevet WO 2014/167247 peuvent être utilisés comme source de bactériorubérines glycosylées. De préférence, les souches d’A. agilisutilisées comme sources des bactériorubérines glycosylées au sens de l’invention sont la souche MB813 (décrite dans Fonget al.2001) et/ou SB5 (décrite dans la demande de brevet WO 2014/167247). Les méthodes pour obtenir des extraits de caroténoïdes totaux de ces espèces bactériennes sont connus à l’homme du métier et sont par exemple décrites dans Strandet al.1997, Fonget al.2001 ainsi que la demande de brevet WO 2014/167247. Ces méthodes ne permettent toutefois pas d’isoler les différentes bactériorubérines glycosylées.

De façon surprenante, la Demanderesse a mis au point une méthode permettant d’isoler de façon efficace les formes glycosylées de la bactériorubérine d’un extrait de caroténoïdes d’A. agilis. La présente invention décrit une méthode pour purifier et isoler la bactériorubérine et ses formes glycosylées.

Ainsi, la présente invention concerne également la bactériorubérine isolée et/ou une bactériorubérine glycosylée isolée, ainsi que leurs mélanges, notamment pour les utilisations et applications décrites dans la présente invention.

En d’autres termes, l’invention couvre une bactériorubérine glycosylée séparée et purifiée, notamment à partir d’un extrait de bactérie extrêmophile, et de préférence d’Arthrobacter agilis,pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie dégénérative, avantageusement d’une maladie neurodégénérative.

Dans un mode de réalisation préféré, un extrait total de caroténoïdes contenant les bactériorubérines glycosylées selon l’invention correspond aux caroténoïdes contenus dans la matière première MIRORUBERINE commercialisée par la société GREENTECH et correspondant à la désignation INCI Micrococcus lysate. Alternativement, les bactériorubérines glycosylées selon l’invention peuvent être obtenues par biotechnologie, ou par synthèse chimique, par exemple par le biais d’une glycosylation contrôlée des formes natives de bactériorubérines, typiquement d’α-bactériorubérines, par exemple en partant de l’α-bactériorubérine. Cette glycosylation peut être obtenue par voie chimique ou par biotechnologie, de préférence par biotechnologie en utilisant de glycosyltransférases adaptées. A titre d’exemple, la matière première HALORUBINE commercialisée par la société HALOTEK GMBH peut être utilisée comme source d’α-bactériorubérine dans la synthèse des bactériorubérines glycosylées au sens de l’invention.

Avantageusement, une composition selon l’invention comprend l’α-bactériorubérine. La α-bactériorubérine peut être obtenue par extraction de actinobactéries susmentionnées, qui synthétisent également des formes glycosylées de la bactériorubérine. Alternativement, l’α-bactériorubérine peut être extraite des cultures d’une ou plusieurs archées halophiles, comme par exemple les espècesHalobacterium salinarum, Halorubrum sodomense, Haloarcula valismortis , Salinibacter ruber.Ainsi, la matière première HALORUBINE commercialisée par la société HALOTEK et correspondant à la désignation INCIHalobacterium salinarumcarotenoides peut être utilisée dans les compositions selon l’invention.

Dans un mode de réalisation alternatif, une composition selon l’invention comprend au moins une bactériorubérine et une bactériorubérine glycosylée. En d’autres termes, cette composition comprend un mélange de formes glycosylées de la bactériorubérine, et de formes non glycosylées, et avantageusement un mélange de α-bactériorubérine, de bactériorubérines monoglycosylées, de bactériorubérines diglycosylées. Avantageusement, le ratio entre formes non glycosylées et formes glycosylées est compris entre 2/1 et 1/2.

Dans un mode de réalisation, une composition selon l’invention comprend une ou plusieurs bactériorubérines glycosylées et ne comprend essentiellement pas de forme non-glycosylée de bactériorubérine. Par«ne comprend essentiellement pas de forme non-glycosylée de bactériorubérine » ou « essentiellement exempte de formes non glycosylées de bactériorubérine », on entend que l’on cherche à éviter et à éliminer la forme non-glycosylée de bactériorubérine, mais qu’elle peut être présente sous forme de traces. De préférence de telles traces ne sont pas détectables par analyse.

Avantageusement, une composition selon l’invention comprend un mélange de bactériorubérines monoglycosylées, bactériorubérines diglycosylées, bactériorubérines tetraglycosylées ; et de préférence un mélange de bactériorubérines glycosylées essentiellement constitué de bactériorubérines monoglycosylées et bactériorubérines diglycosylées, et ledit mélange comprenant de préférence 20 à 80% en masse de bactériorubérines monoglycosylées et 20 à 80% en masse de bactériorubérines diglycosylées par rapport à la masse totale du mélange de bactériorubérines glycosylées.

Les compositions pharmaceutiques comprenant au moins un bactériorubérine et/ou une bactériorubérine glycosylée selon l’invention se présentent généralement sous forme dosée. Ainsi, la composition comprenant au moins un bactériorubérine et/ou une bactériorubérine glycosylée peut se présenter sous forme de comprimé, dragée, gélule, suppositoire, solution injectable ou buvable, ou encore goutte et elle est apte à être administrée par voie orale, oromucosale, rectale, vaginale, intramusculaire parentérale ou ophtalmique.

Parmi les compositions pharmaceutiques selon l'invention, il sera cité plus particulièrement celles qui conviennent pour l'administration orale, oromucosale, parentérale (intraveineuse, intramusculaire ou sous-cutanée), per ou transcutanée, intravaginale, rectale, nasale, perlinguale, buccale, oculaire ou respiratoire.

Les compositions pharmaceutiques selon l'invention pour les injections parentérales comprennent notamment les solutions stériles aqueuses et non aqueuses, les dispersions, les suspensions ou émulsions ainsi que les poudres stériles pour la reconstitution des solutions ou des dispersions injectables.

Les compositions pharmaceutiques selon l'invention, pour les administrations orales solides, comprennent notamment les comprimés simples ou dragéifiés, les comprimés sublinguaux, les sachets, les gélules, les granules, et pour les administrations liquides orales, nasales, buccales ou oculaires, comprennent notamment les émulsions, les solutions, les suspensions, les gouttes, les sirops et les aérosols.

Les compositions pharmaceutiques pour l'administration rectale ou vaginale sont préférentiellement des suppositoires ou ovules, et celles pour l'administration per ou transcutanée comprennent notamment les poudres, les aérosols, les crèmes, les pommades, les gels et les patchs.

Les compositions pharmaceutiques citées précédemment illustrent l'invention mais ne la limitent en aucune façon.

Parmi les excipients ou véhicules inertes, non toxiques, acceptables pour un être humain ou pharmaceutiquement acceptables, on peut citer à titre indicatif et non limitatif les diluants, les solvants, les conservateurs, les agents mouillants, les émulsifiants, les agents dispersants, les liants, les agents gonflants, les agents désintégrants, les retardants, les lubrifiants, les absorbants, les agents de suspension, les colorants, les aromatisants, etc.

La posologie utile varie selon l'âge et le poids du patient, la voie d'administration, la composition pharmaceutique utilisée, la nature et la sévérité de l'affection. A titre d’exemple, la composition selon l’invention peut être administrée une fois par mois, semaine ou jour et elle peut contenir de 1 mg à 1 g de bactériorubérines glycosylées et/ou bactériorubérines non glycosylées ou l’un quelconque de leurs mélanges.

Les bactériorubérines glycosylées selon l’invention sont adaptées à leur utilisation dans des compléments alimentaires et nutraceutiques. Les méthodes pour formuler les compléments alimentaires sont connu à l’homme du métier. Avantageusement, les compléments alimentaires se présentent sous forme de comprimé ou gélule. Chaque dose peut contenir, à titre d’exemple, de 1 mg à 1 g de bactériorubérines glycosylées et/ou bactériorubérines non glycosylées et l’un quelconque de leurs mélanges.

Dans un comprimé, la cellulose microcristalline est par exemple utilisée en tant qu'agent de charge. Elle est utilisée de 10 à 30 % en poids par rapport au poids total du complément alimentaire, plus avantageusement autour de 20 % en poids.

Le phosphate dicalcique et le phosphate tricalcique sont utilisés comme agents de compression pour préparer des comprimés. Le phosphate dicalcique est utilisé de 10 à 30% en poids par rapport au poids total du complément alimentaire, plus avantageusement autour de 15 % en poids. Le phosphate tricalcique est utilisé en une quantité variant de 2,5 à 7,5 % en poids par rapport au poids total du complément alimentaire, et plus avantageusement autour de 5 % en poids.

La silice hydratée, le stéarate de magnésium et la silice colloïdale peuvent avantageusement être utilisés comme fluidifiants dans le complément alimentaire sous forme de comprimés ou de gélules. Ils sont introduits en une quantité située aux alentours de 2 % en poids, 1 % en poids et 0,6 % en poids par rapport au poids total du complément alimentaire, respectivement.

D'autres adjuvants, tels que des arômes (arômes naturels ou chimiques, de fruits ou autres) ou des pigments sont avantageusement incorporés dans la préparation du complément alimentaire.

Lorsque le complément alimentaire se présente sous forme de capsule molle ou de gélule, l'enveloppe de ces capsules molles ou de ces gélules peut contenir notamment de la gélatine animale telle que la gélatine de poisson, de la glycérine, ou un matériau d'origine végétale tel qu'un dérivé de cellulose ou d'amidon, ou une protéine végétale. Dans un mode de réalisation préféré, une ou plusieurs bactériorubérines glycosylées selon l’invention incorporées dans les gélules peuvent être solubilisée dans un corps gras, avantageusement de triglycéride caprylique et/ou caprique, et de préférence stabilisées par du tocophérol. Ainsi un grade alimentaire de la matière première MIRORUBERINE commercialisée par la société GREENTECH et correspondant aux désignations INCI caprylic/capric triglyceride & tocopherol & Micrococcus lysate peut être utilisé dans les compléments alimentaires selon l’invention.

La manière dont l’invention peut être réalisée et les avantages qui en découlent ressortiront mieux des exemples de réalisation qui suivent, donnés à titre indicatif et non limitatif, à l’appui des figures annexées.

La montre la composition d’un extrait de caroténoïdes de l’isolat SB5 de l’espèce A. agilis. : BR= α-Bacterioruberine, BR-MonoG : forme monoglycosylée , BR-DiG : forme di-glycosylée, BR-DiG2 : Autre forme de BR-DiG, BR-TetraG : forme tétraglycosylée.

La montre le pourcentage de protection contre la chaleur d’un extrait total de caroténoïdes d’A. agilis (Snow bacteria extract -> SBE), de la bactériorubérine (BR), des bactériorubérines monoglycosylées (BR-MonoG) et des bactériorubérines diglycosylées (BR-DiG).

La montre le pourcentage de protection contre le stress oxydant d’un extrait total de caroténoïdes d’A. agilis (Snow bacteria extract -> SBE), de la bactériorubérine (BR), des bactériorubérines monoglycosylées (BR-MonoG) et des bactériorubérines diglycosylées (BR-DiG).

, Les Figures 4 et 5 représentent respectivement les résultats sur un réseau de neurites ( ) et l’hyperphosphorylation de Tau ( ) des neurones corticaux lésés par le glutamate et la protection conférée par la neurotrophine BDNF et les caroténoïdes d’A. agilis (SBE). Les résultats sont exprimés en pourcentage de la condition de contrôle sous forme de moyenne +/- erreur type (n = 4-6). Traitement statistique : One-way ANOVA suivie par le test de Différence Significative Minimale (LSD) de Fisher. * = p< 0.05 a été considéré significatif.

Exemples de réalisation

Exemple I – Purification des bactériorubérines glycosylées d’un extrait de caroténoïdes de la bactérie A. agilis

I -1 But de l’étude

Le but de cette étude est d’isoler et quantifier les molécules contenues dans un extrait de caroténoïdes totaux de la bactérieA. agilis.

I-2 Matériels et méthodes

I-2.1 Extrait

L’extrait total de caroténoïdes de la bactérieA. agiliscontenu dans la matière première GREENTECH dénommée «Miroruberine » et correspondant à la désignation INCI Micrococcus lysate a été utilisé dans cette étude, issue de la souche SB5. Cet extrait dit « SBE » peut être obtenu en employant la méthode décrite dans la publication de la demande de brevet WO2014167247.

I-2.2 Chromatographie sur colonne et sur couche mince

L’extrait SBE a été repris dans du tétrahydrofurane (THF) jusqu’à solubilisation complète. Une étape de séparation des Bactériorubérines glycosylées par chromatographie sur gel de silice a été réalisée dans une colonne en verre après dilution du SBE dans du THF.

1. Suspension du gel de silice dans un mélange DCM/méthanol (10/1) avant d’être coulé dans la colonne

2. Après sédimentation du gel de silice, 1 cm de sable est ajouté avant d’effectuer 3 lavages avec le mélange DCM/méthanol

3. 0,5 ml de SBE dilué dans le THF sont déposés sur le sable et laissés ainsi 5 minutes

4. 50 ml de mélange DCM/méthanol (10/1) sont ajoutés progressivement permettant de collecter séparément les fractions 1, 2, 3 et 4

5. 40 ml de mélange DCM/méthanol (8/2) sont ajoutés progressivement permettant la collecte séparée des fractions 5 et 6

6. 40 ml de mélange DCM/méthanol (5/5) sont ajoutés progressivement permettant la collecte de la fraction 7

7. 40 ml de mélange DCM/méthanol (3/7) sont ajoutés progressivement pour permettre la collecte de la fraction 8

8. Toutes les fractions sont ensuite comparées par CCM (DCM/méthanol (10/1)) avec le SBE et quantifiées par absorption (en utilisant le maximum d’absorption de chaque fraction).

I-2.3 Séparation des fractions par HPLC

Equipement: Nexera XR, pompe binaire (Shimadzu)

Colonne : C18; Intersustainable Swift 5μm 4,6 x 150 mm Producteur: GL Sciences

Phases mobiles:

A: 20% H2O dans MeOH

B: 20% EtOAc dans MeOH

Flux: 1,5 ml / min

Volume d'injection: 50 μL

	A	B
1 min	100	0
20 min	0	100

I-3 Résultats et discussion

Dans cette purification, la première étape de séparation par chromatographie sur colonne a permis de collecter les diverses fractions dont la pureté a été confirmée par CCM et par HPLC-DAD, en le comparant au spectre d’absorbance de l’extrait natif ; la quantification des différentes formes a été réalisées par absorption UV à 500nm.

Chacune des molécules de chacune des fractions collectées par chromatographie a été identifiée par spectroscopie Maldi-TOF-TOF en utilisant un appareil AUTOFLEX (Brucker). La méthode utilisée est "CHCA and DHB Matrix without TFA in reflector aquisition". La répartition entre les différentes formes a été calculée en combinant les résultats obtenus avec les quantifications effectuées sur ces fractions par HPLC-DAD ( ). La fraction 1 correspond au bêta-carotène, produit secondaire de la synthèse de bactériorubérine, mais cette molécule ne représente que 0,79% de l’extrait. La fraction 4 présente le même profil d’extrait d’Halobacter salinarium (Halorubine) dont la molécule majoritaire est la bactériorubérine (BR) Cette molécule représente environ la moitié de l’extrait sec ( ).

Deux formes diglycosylées, migrant séparément (BR-DiG1 et BR-DiG2) ont été identifiées. Les formes diglycosylées représentent >22% de l’extrait.

La forme monoglycosylée BR-MonoG représente >26% de l’extrait. La forme tétraglycosylée (BR-TetraG) ne représente que 0,01% de l’extrait ( ).

Exemple I I – Protection et stabilisation des protéines par un extrait de caroténoïdes de A. agilis ainsi que les bactériorubérines et formes glycosylées isolées le composant

II-1 But de l’étude

Le but de cette étude est de comparer les capacités de protection des protéines des différents composants d’un extrait de caroténoïdes de l’actinobactérieA. agilisséparés par chromatographie et HPLC. Plus spécifiquement, nous avons testé toutes les fractions majoritaires pour évaluer leur capacité de protéger l’enzyme phosphatase alcaline :

- Contre la dénaturation via leur effet de protection des protéines de la dénaturation (test AP-Heat) (effet chaperon)

- Contre l’oxydation (test APox) (Effet protecteur du stress oxydant).

II-2 Matériels et méthodes

II-2.1 Echantillons à tester

SBE	SBE = Snow bacteria extract ; Extrait total de caroténoïdes d’A. agilis ;cet extrait la matière première correspondant à la désignation INCI ì Micrococcus lysate (GREENTECH) ; la méthode d’ extraction décrite dans la demande de brevet WO2014-A-16727
BR	α-bactériorubérine extraite de la matière première GREENTECH correspondant à la désignation INCI Micrococcus lysate (GREENTECH) isolée et purifiée selon l’exemple I
BR-MonoG	bactériorubérine monoglycosylée extraite de la matière première GREENTECH correspondant à la désignation INCI Micrococcus lysate (GREENTECH) isolée et purifiée selon l’exemple I
BR-DiG	bactériorubérine diglycosylée extraites de la matière première GREENTECH correspondant à la désignation INCI Micrococcus lysate (GREENTECH) isolée et purifiée selon l’exemple I

Quatre doses ont été testées pour SBE, BR, BR-MonoG et BR-DiG : 20 µM, 10 µM, 5 µM, 2,5 µM, 1,25µM

II-2.2 Test APox et AP-Heat

Test APox et protocole :

Ce test est décrit dans la demande de brevet FR3002544-A1- et mesure l’aptitude d’une substance à protéger l’enzyme phosphatase alcaline d’un stress oxydant.

Matériel nécessaire :

- Phosphatase alcaline (PA) bovine (Sigma P0114)

- Substrat liquide de la PA (Sigma P7998)

- Peroxyde d’hydrogène à 30%

- Solution de FeO₄S (30mg dans 1ml d’H₂O)

- Plaque 96 puits à fond plat

- Lecteur de plaque à 405nm

Dans chaque puits, sont déposés :

- 10 µl de PA diluée à 10-5 dans du MgSO4 10^-2M.

- 4 µl de molécule à tester, de solvant (contrôle négatif) ou d’H₂O (contrôle positif) +6 µL d’H₂O

- 30 µl d’une solution de peroxyde d’hydrogène (à partir d’une solution mère composée de 940µl H₂O + 40µl H₂O₂30% + 20 µl FeO₄S 10_-2) ou 30µl d’H₂O (contrôle positif)

Laisser incuber 15 min à 37°C.

Ajouter 50 µl de substrat liquide.

Lecture de DO à 405nm pendant 20 min à 37°C.

Test AP-Heat et protocole :

Ce test est issu d’une modification du test APox, pour mesurer le potentiel de protection des protéines non plus contre le stress oxydant mais contre la dénaturation (stress thermique). En effet, sous l’effet de la chaleur, les protéines se dénaturent et les enzymes perdent leur activité. En jouant sur la température et le temps d’incubation on peut déterminer les conditions nécessaires pour inhiber 90% de l’activité de la phosphatase alcaline (55°C pendant 1 heure).

Matériel nécessaire :

• Phosphatase alcaline (PA) bovine (Sigma P0114)
• Substrat liquide de la phosphatase alcaline (Sigma P7998)
• Bloc chauffant
• Plaque 96 puits à fond plat
• Lecteur de plaque à 405nm

Dans chaque puits, on dépose :

• 10µL de PA diluée à 10^-5dans du MgSO₄10^-2M
• 4µL de molécule à tester ou de solvant seul + 6µL d’H₂O

Laisser incuber pendant 15min sous agitation à 37°C.

Laisser incuber 1h à 37°C ou à 55°C sur un bloc chauffant.

Ajouter 50µL de substrat liquide.

Lecture des DO à 405nm pendant 20min à 37°C.

Le pouvoir de protection d’une molécule dite X contre la dénaturation (PPX) est calculé en faisant le ratio de l’activité de la phosphatase alcaline (PA) à 55°C (condition stressée) sur son activité à 37°C (condition basale) en présence de la molécule. Ce ratio est ensuite normalisé grâce au même ratio mais obtenu en présence du solvant seul.

Schématiquement, le calcul est le suivant :

PPX = (APA _X55 -(APA _X37 x APA _S55 /APA _S37 ))/ (APA _X37 -(APA _X37 x APA _S55 /APA _S37 ))

Avec :

APA_X55: activité de la PA en présence de la molécule X à 55°C

APA_X37: activité de la PA en présence de la molécule X à 37°C

APA_S55: activité de la PA en présence du solvant à 55°C

APA_S37: activité de la PA en présence du solvant à 37°C

Et en considérant que :

• APA_X37correspond à une protection de l’enzyme de 100%
• APA_X37x APA_S55/APA_S37correspond à une protection nulle.

L’activité de l’enzyme pour chaque condition est calculée en faisant la moyenne des valeurs de densité optique mesurées à 405nm pour les réplicats, valeurs auxquelles on retranche la valeur moyenne des puits dits « blancs » (réactifs seuls), soit :

APA= [(DO replicat 1 – DO blanc) + (DO replicat 2 – DO blanc) + (DO replicat 3 – DO blanc)] / 3

Ces calculs ne peuvent s’appliquer qu’avec des valeurs de DO situées dans la partie linéaire de la courbe, généralement comprises entre 0,15 et 1,5.

Toutes les mesures d’activité de l’enzyme ont été réalisées sur un lecteur de plaque 96 puitsEnSight – Perkin Elmer.

II-3 Résultats et discussion

Les résultats du test dit « AP-heat » sont montrés en . Les formes glycosylées de la bactériorubérine (BR-MonoG, BR-DiG) ainsi que l’extrait SBE, qui correspond à un mélange de α-bactériorubérine (BR) et de formes glycosylées de ce caroténoïde, en particulier la forme diglycosylée (BR-DiG), protègent la protéine de façon plus efficace que la BR même. Cet effet se retrouve de façon cohérente à toutes les concentrations testées.

Les résultats du test APOX sont montrés en . Ces résultats montrent que les formes glycosylées présentent un plus fort potentiel de protection que la BR non-glycosylées et que cet effet est en parfaite adéquation avec l’effet chaperon. Dans ce cas encore un fois la protection de la protéine de l’oxydation est particulièrement prononcée pour la forme diglycosylée de la bactériorubérine (BR-DiG) ainsi que l’extrait total SBE. Cet effet se retrouve de façon cohérente à toutes les concentrations testées.

Ces résultats indiquent que la bactériorubérine (BR) mais surtout les formes glycosylées de la bactériorubérine (en particulier BR-MonoG, BR-DiG), ainsi que l’extrait SBE, qui correspond à un mélange de α-bactériorubérine (BR) et de formes glycosylées de ce caroténoïde, et tout particulièrement la forme diglycosylée (BR-DiG), permettent de protéger les protéines intracellulaires à la fois du stress oxydatif et de la dénaturation, qui est généralement suivie par la formation d’agrégats dans les cellules. Ainsi, la bactériorubérine (BR) mais surtout les formes glycosylées de la bactériorubérine (en particulier BR-MonoG, BR-DiG), ainsi que l’extrait SBE, qui correspond à un mélange de α-bactériorubérine (BR) et de formes glycosylées de ce caroténoïde, et tout particulièrement la forme diglycosylée (BR-DiG), se prêtent donc à leur exploitation pour la mise au point de traitement visant à réduire la formation d’agrégats protéiques toxiques, par exemple dans les neurones, ou dans une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines.

Exemple III – Effet neuroprotecteur sur modèle de neurones

III-1 But de l’étude

Le but de l’étude était d'évaluer l'effet neuroprotecteur d’un extrait de caroténoïdes de la bactérieA. agilisriches en bactériorubérines glycosylées dénommé « SBE » sur l’excitotoxicité du glutamate dans un modèle cellulaire mimant la maladie d'Alzheimer (ALS).

Le système glutamatergique, et en particulier les récepteurs NMDA (récepteurs glutamatergiques) joue un rôle majeur dans les processus d'apprentissage et de mémoire. La plasticité synaptique peut être régulée par la signalisation du récepteur NMDA.

Une suractivation des récepteurs NMDA est une caractéristique pathologique courante dans de nombreuses maladies neurodégénératives, y compris celles conduisant à un déficit cognitif comme la maladie d'Alzheimer. Dans cette optique, un traitement pharmacologique précoce avec des substances réduisant la sur-stimulation du glutamate est une voie pour traiter les patients diagnostiqués avec un déclin cognitif. La protéine Tau est une protéine associée aux microtubules impliquée dans la stabilité du microtubule et le transport axonal. L’hyperphosphorylation pathologique de Tau déclenche la formation d'enchevêtrements neurofibrillaires et participe activement, en association avec les oligomères de protéine bêta-amyloïde, au processus neurodégénératif de l’ALS. De plus, l’excitotoxicité du glutamate et la phosphorylation de la protéine Tau sont des phénomènes étroitement liés.

Dans cet exemple, le BDNF (Brain-Derived Neurotrophic Factor, facteur neurotrophique issu du cerveau) a été utilisé comme témoin positif, car cette neurotrophine est connue pour promouvoir la survie et la différenciation des neuronesin vivoetin vitro.

III-2 Matériels et méthodes

III-2 -1. Culture primaire de neurones corticaux

Toutes les expériences ont été réalisées ont suivi les réglementations en vigueur dans l'Union européenne (Directive 2010/63 / UE).

Des neurones corticaux murins ont été cultivés comme décrit parCallizot et al., 2013. Les cellules ont été mécaniquement dissociées par trois passages forcés à travers la pointe d'une pipette de 10 ml. Les cellules ont ensuite été centrifugées à 515 x g pendant 10 minutes à 4 °C. Le surnageant a été retiré et le culot a été repris dans un milieu de culture défini constitué de milieu Neurobasal avec une solution à 2% de supplément de B27, 2 mmol / litre de L-glutamine, 2% de solution de PS et 10 ng/mL de BDNF. Les cellules viables ont été comptées dans un cytomètre Neubauer, en utilisant le test d'exclusion au bleu trypan. Les cellules ont été ensemencées à une densité de 25000 par puits dans une plaque de 96 puits pré-enduite de poly-L-lysine et ont été cultivées à 37 °C dans un incubateur à CO₂(5%). Le milieu a été changé tous les 2 jours. Les expériences ont été par la suite effectués sur les plaques à 96 puits (n = 6 puits de culture par condition). Dans les 96 puits de chaque plaque, seuls 60 ont été utilisés. Les puits des première et dernière lignes et colonnes n'ont pas été utilisés pour éviter tout effet de bord et ont été remplis d'eau stérile.

III-2 - 2 Composés d'essai et intoxication au glutamate

Les composés suivants ont été testés dans cet exemple :

Composé testé	Concentration
Contrôle (véhicule)	-
Glutamate	(20 µM, 20 min) / véhicule
SBE	1 µM
BDNF	homodimère 1,85 nM = 50 ng / mL

Les composés à tester ont été solubilisés dans du DMSO et la concentration a été ajustée afin d’assurer une concentration de DMSO dans le milieu de culture de 0,1%. Au jour 13 de la culture, les composés ont été pré-incubés avec des neurones corticaux primaires pendant 1 heure, avant l'application de glutamate. Par la suite, le même jour, les neurones corticaux ont été exposés au glutamate pendant 20 min. Le glutamate a été ajouté à une concentration finale de 20 µM (dilué dans le milieu témoin) en présence de SBE ou de BDNF (utilisé comme témoin positif). Au bout de 20 minutes, le glutamate a été éliminé et du milieu de culture frais avec les composés à l’étude a été ajouté pendant 48 heures supplémentaires.

III-2 - 3 Evaluation des effets des composés par immunomarquage

48 heures après l’intoxication au glutamate, le surnageant de culture cellulaire a été retiré en utilisant des pipettes automatiques multicanaux. Les cellules ont ensuite été lavées avec une solution saline tamponnée au phosphate (PBS). Les neurones corticaux ont été fixés par une solution froide d'éthanol (95%) et d'acide acétique (5%) pendant 5 min à -20 °C. Ils ont été lavés à nouveau deux fois dans du PBS, puis perméabilisés. Les sites non spécifiques ont été bloqués avec une solution de PBS contenant 0,1% de saponine et 1% de FCS, pendant 15 min à température ambiante. Les cellules ont été incubées pendant 2 heures avec respectivement :

a) un anticorps monoclonal de souris anti-MAP-2 (microtubule-associated-protein 2) à une dilution de 1/400 dans du PBS, avec 1% de sérum de veau fœtal et 0,1% de saponine. Cet anticorps se lie spécifiquement aux neurones et neurites, permettant l'étude du réseau de neurites.

b) un anticorps monoclonal de souris AT100 anti-phosphorylé Tau sur Thr212/Ser214 à la dilution de 1/400 dans du PBS contenant 1% de sérum de veau fœtal et 0,1% de saponine. Cet anticorps permet d’étudier l’hyperphosphorylation de la protéine Tau.

Ces anticorps ont été révélés avec les anticorps secondaires Alexa Fluor 488 IgG chèvre anti-souris, Alexa Fluor 568 IgG chèvre anti-poulet anti-souris, Alexa fluor 568 IgG chèvre anti-lapin. Ces anticorps secondaires ont été incubés avec les préparations des neurones à la dilution 1/400 dans du PBS contenant 1% de FCS, 0,1% saponine, pendant 1 heure à température ambiante.

Pour chaque condition, 30 images par puits ont été automatiquement prises en utilisant ImageXpress (Molecular Devices) à un grossissement de 20x. Toutes les images ont été générées en utilisant les mêmes paramètres d'acquisition. À partir d'images, des analyses ont été automatiquement effectuées par Custom Module Editor® (Molecular Devices). Les paramètres suivants ont été examinés :

• Réseau de neurites total (longueur du neurite positif à MAP-2)
• Hyperphosphorylation de la protéine Tau (chevauchement Tau / MAP-2, µm² de chevauchement)

III-2 - 4 Traitement statistique des données

Les données sont exprimées en pourcentage du témoin. Toutes les valeurs montrent la moyenne +/- erreur standard de la moyenne de 4-6 puits par condition. Les graphiques et les analyses statistiques sur les différentes conditions (ANOVA suivi du test LSD de Fisher [tous les groupes versus groupe glutamate]) ont été effectuées à l'aide du logiciel GraphPad Prism version 8.1.2. * P <0,05 était considéré comme significatif.

III-3 Résultats et discussion

Intégrité du réseau de neurites : L’intoxication au glutamate a induit une réduction significative (60%) dans la densité du réseau de neurites ( ). Comme attendu, le BDNF exerce un effet protecteur significatif sur l'intégrité du réseau de neurites (réseau de neurites total = 85%,). L'application de SBE a considérablement amélioré l'intégrité du réseau de neurites La longueur totale du réseau de neurites a atteint 83%, un résultat significatif et comparable à celui obtenu avec la neurotrophine.

Hyperphosphorylation de la protéine Tau (AT100): L’intoxication au glutamate a induit une augmentation significative de la zone AT100 correspondant à une hyperphosphorylation de la protéine Tau et une accumulation de la protéine dans le cytoplasme des neurones (+193% du témoin négatif (100%= valeur 0); ). Comme prévu, le traitement avec la neurotrophine BDNF entraine une réduction importante et significative de l'hyperphosphorylation de Tau (+121%). Tout comme le BDNF, l'application de SBE réduit significativement la phosphorylation de Tau (+137%).

En synthèse, l’extrait SBE exerce un effet neuroprotecteur sur le réseau de neurites et cet effet est accompagné par une réduction importante de l'hyperphosphorylation de la protéine Tau dans le cytoplasme des neurones.

Ainsi, une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, peut être utilisé dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie neurodégénérative.

Bibliographie

Armstrong GA (1994) Eubacteria show their true colors - genetics of carotenoid pigment biosynthesis from microbes to plants.J Bacteriol. 176:4795–4802.

Armstrong, GA (1997). Genetics of eubacterial carotenoid biosynthesis: A colorful tale. In: Ornston, LN., editor. Annu Rev Microbiol. USA: Annual Reviews Inc.; . p. 629-659.

Britton G. (1995) Structure and properties of carotenoids in relation to function.FASEB J.9:1551–1558.

Britton, GL-JSPH. (2004) Carotenoids handbook. Basel; Boston: Birkhäuser Verlag.

Callizot N, Combes M, Steinschneider R, Poindron P. (2013). Operational dissection of β-amyloid cytopathic effects on cultured neurons.J Neurosci Res.91: 706-16.

Dugger BN, Dickson DW (2017) Pathology of NeurodegenerativeDiseases Cold Spring Harb Perspect Biol 9(7): a028035.

Farkhondeh T, Samarghandian S, Shaterzadeh Yazdi H, Samini F (2018) The protective effects of crocin in the management of neurodegenerative diseases: a review.Am J Neurodegener Dis 7:1-10.

Fong N, Burgess M, Barrow K, Glenn D (2001) Carotenoid accumulation in the psychrotrophic bacteriumArthrobacter agilisin response to thermal and salt stressAppl Microbiol Biotechnol 56, 750–756.

Mandelli F, Miranda VS, Rodrigues E, Mercadante AZ.. (2012) Identification of carotenoids with high antioxidant capacity produced by extremophile microorganisms. worldJ Microbiol Biotechnol

28:1781-1790.

Strand A, Shivaji, S, Liaaen-Jensen (1997) Bacterial carotenoids 55. C50-carotenoids 25: revised structures of carotenoids associated with membranes in psychrotrophicMicrococcus roseus.Bioch. Syst. & Eco. 25(6) : 547-552

Claims (15)

1. Composition comprenant au moins une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie impliquant une dérégulation dans l’agrégation de protéines, comme par exemple une maladie dégénérative, avantageusement une maladie neurodégénérative, une fibrose, avantageusement une fibrose pulmonaire, ou un diabète.
2. Composition pour son utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que la maladie est une maladie neurodégénérative choisie parmi la maladie d'Alzheimer (ALS), la maladie de Parkinson (PD), la maladie de Huntington, l'atrophie corticale postérieure, la sclérose latérale amyotrophique (SLA) ainsi que les maladies neurodégénératives oculaires choisies parmi la dégénérescence maculaire, la rétinite pigmentaire et la rétinopathie.
3. Composition pour son utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en que la maladie neurodégénérative est la maladie d'Alzheimer (ALS) ou la maladie de Parkinson (PD).
4. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que l’au moins une bactériorubérine glycosylée est choisie parmi les bactériorubérines monoglycosylées, les bactériorubérines diglycosylées, les bactériorubérines triglycosylées, les bactériorubérines tétraglycosylées, les bactériorubérines pentaglycosylées, les bactériorubérines hexaglycosylées, les bactériorubérines heptaglycosylées, les bactériorubérines octaglycosylées, les bactériorubérines nonaglycosylées, les bactériorubérines decaglycosylées, les bactériorubérines undecaglycosylées, et les bactériorubérines dodecaglycosylées.
5. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que l’au moins une bactériorubérine glycosylée est choisie parmi les bactériorubérines monoglycosylées, les bactériorubérines diglycosylées, les bactériorubérines triglycosylées, les bactériorubérines tetraglycosylées.
6. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu’elle comprend au moins un extrait comprenant au moins une bactériorubérine et/ou une bactériorubérine glycosylée.
7. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu’elle comprend au moins une bactériorubérine et une bactériorubérine glycosylée, avantageusement un mélange de α-bactériorubérine, de bactériorubérine monoglycosylée et de bactériorubérine diglycosylée.
8. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée ratio entre formes non glycosylées et formes glycosylées de bactériorubérine est compris entre 2/1 et 1/2.
9. Composition pour son utilisation selon l’une des revendication précédentes, caractérisée en ce qu’elle est essentiellement exempte de formes non glycosylées de bactériorubérine.
10. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu’elle se présente sous forme de comprimé, dragée, gélule, suppositoire, solution injectable ou buvable, ou encore goutte et elle est apte à être administrée par voie oromucosale, orale, rectale, vaginale, intramusculaire parentérale ou ophtalmique.
11. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu’elle se présente sous forme de complément alimentaire.
12. Composition pour son utilisation selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée ce qu’elle contient de 1 mg à 1 g de bactériorubérines glycosylées et/ou bactériorubérines non glycosylées ou leurs mélanges.
13. Bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie présentant une dérégulation dans l’agrégation de protéines.
14. Bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation selon la revendication 14, caractérisée en ce que la maladie est une maladie dégénérative, avantageusement une maladie neurodégénérative.
15. Composition comprenant au moins une bactériorubérine, de préférence sous forme glycosylée, éventuellement en mélange avec différentes formes de bactériorubérines glycosylées, ou un extrait en comprenant, pour son utilisation dans une méthode de traitement ou prévention d’une maladie dégénérative, et avantageusement une maladie neurodégénérative.