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FR3018821A1 - Nouveaux flavonoides o-alpha-glucosyles sur le cycle b, procede d'obtention et utilisations - Google Patents

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FR3018821A1
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FR
France
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amino acid
seq
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Pending
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FR1452461A
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English (en)
Inventor
Sandrine Morel
Isabelle Andre
Yoann Brison
Emmanuelle Cambon
Yannick Malbert
Denis Pompon
Magali Remaud-Simeon
Philippe Urban
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
INST NAT SCIENCES APPLIQ
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut National des Sciences Appliquees de Toulouse INSA
Institut National de la Recherche Agronomique INRA
Original Assignee
INST NAT SCIENCES APPLIQ
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut National des Sciences Appliquees de Toulouse INSA
Institut National de la Recherche Agronomique INRA
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Publication date
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Priority to FR1456417A priority patent/FR3018822B1/fr
Priority to US15/128,673 priority patent/US10647739B2/en
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Abstract

La présente invention est relative à un procédé de fabrication de dérivés de flavonoïde O-α-glucosylé comprenant au moins une étape d'incubation d'au moins un glucane-saccharase avec un flavonoïde et au moins un saccharose, le flavonoïde étant de formule (I) : Elle concerne également de nouveaux dérivés de flavonoïde O-α-glucosylés ainsi que leur utilisation.

Description

Domaine de l'invention La présente invention se rapporte au domaine de la glucosylation de flavonoïdes et plus particulièrement de l'a-glucosylation de certains flavonoïdes, afin d'obtenir des dérivés de flavonoïdes 0-a-glucosylés, notamment sur leur cycle aromatique B, au niveau de fonctions hydroxyle non vicinales. La présente invention concerne également les composés 0-a-glucosylés obtenus à l'issu d'un procédé de glucosylation de l'invention et la mise en oeuvre de ces composés à différentes fins, notamment cosmétiques ou thérapeutiques.
Art antérieur Les flavonoïdes sont des composés ayant une structure carbonée en C6-C3-C6 dont le squelette est un système cyclique de type 1-benzopyrane, dans lequel le cycle aromatique est défini en tant que cycle A et le cycle pyranique est défini en tant que cycle C, et qui comprend également un substituant phénylique, sur le cycle pyranique, en tant que cycle B.
Ils constituent un groupe de 8000 composés largement répandus dans le règne végétal où ils sont responsables de la couleur d'une partie des fleurs et des fruits. Ils peuvent ainsi y intervenir dans la protection contre les radiations solaires, dans la résistance contre les micro-organismes pathogènes de la plante et contre les animaux herbivores, ainsi que dans les relations d'interaction avec les autres organismes de l'environnement, tels que les champignons symbiotiques, les bactéries voire les insectes (Quideau S et al., Angew. Chem. Int. End. 2011 50 : 586-621). Il leur est par ailleurs attribué de nombreuses propriétés biologiques notamment des propriétés antioxydantes, antihépatotoxiques, antiallergiques, anti-inflammatoires, antiulcéreuses et antitumorales (Harborne J et al., Phytochemistry 2000 55 : 481-504; Quideau S et al., Angew. Chem. Int. End. 2011 50 : 586-621). Les flavonoïdes peuvent être hydroxylés en de nombreuses positions, et ces groupements hydroxyle sont fréquemment méthylés, acétylés, prénylés ou sulfatés. Dans les plantes, ils sont le plus souvent présents sous forme d'hétérosides solubles C- ou 0-glycosylés. Il existe à ce jour plusieurs voies d'obtention de flavonoïdes glucosylés.
De nombreux flavonoïdes existent naturellement sous la forme d'hétérosides. In vivo, la glucosylation repose sur l'utilisation de glucosyl-transférases de type Leloir, capables de transférer le résidu glucosyle d'un nucléotide-sucre (UDP-glucose) sur le squelette du flavonoïde. Ces enzymes, contribuant à la synthèse de métabolites secondaires dans les plantes, sont reconnues pour avoir un large spectre de substrats accepteurs.
Toutefois, leurs niveaux de production par les cellules végétales sont très faibles et la réaction de 3-glucosylation est la plus courante, comparativement à l'a-glucosylation. La glucosylation cellulaire peut avoir diverses incidences et influer sur l'adressage et/ou la toxicité des produits obtenus. Ainsi, bien que ce ne soit pas une règle absolue, il faut relever que généralement la glycosylation des flavonoïdes permet d'accroitre la stabilité et la solubilité, et par conséquence la disponibilité, de ces molécules. Plusieurs UDP glycosyl-transférases ont été isolées et clonées dans différents microorganismes. Les formes naturelles ou recombinantes de ces enzymes peuvent ainsi être mises en oeuvre in vitro pour la production de flavonoïdes glucosylés.
Par exemple, l'UDP glycosyl-transférase (UGT) de Bacillus cereus a été exprimée dans Escherichia cou (E. cou). Cette enzyme glucosyle l'apigénine, la génistéine, le kaempférol, la lutéoline, la naringénine et la quercétine. La position 3 est la position préférentiellement glucosylée, mais en l'absence de fonction hydroxyle sur cette position, la glucosylation a lieu sur la position 7. Les produits obtenus par l'enzyme recombinante sont identiques à ceux produits par l'enzyme sauvage (Ko J H et al., FEMS Microbiol. Lett. 2006, 258 : 263-268). De même, l'UDP-glucosyltransférase YjiC de Bacillus lichenifonnis DSM 13 a été utilisée pour glucosyler l'apigénine. Deux formes f3-mono-glucosylées, en position 4' ou en position 7, ont été obtenues. Une forme P-diglucosylée sur les positions 4' et 7 a également été caractérisée structural ement (Gurung R.B. et al., Mol. Cells 2013, 36(4) : 355-361). L'oléandomycine glycosyl-transférase (01eD GT) de Streptomyces antibioticus a été exprimée dans E. cou BL 21. L'enzyme purifiée catalyse la glucosylation de plusieurs flavonoïdes : apigénine, chrysine, daidzéine, génistéine, kaempférol, lutéoline, naringénine et quercétine, à partir d'UDP-glucose. La meilleure conversion (90 %) a été obtenue avec la naringénine à 20 jaM en 5 h. Aucune indication sur la position de glucosylation n'est précisée dans la publication. (Choi S H et al., Biotechnol. Lett. 2012, 34 : 499-505). L'UDP-glycosyltransférase RhGT1 de Rosa hybrida a été testée sur une collection de 24 flavonoïdes. Elle montre des résultats comparables à ceux obtenus avec l'oléandomycine glycosyl-transférase en terme de reconnaissance d'accepteurs (Wang L et al., Carbohydr. Res. 2013, 368 : 73-77). A ce jour, six UDP-glycosyl-transférases microbiennes sont connues pour avoir une activité de glucosylation sur les flavonoïdes (Wang L et al., Carbohydr. Res. 2013, 368 : 73-77).
La glycosylation des flavonoïdes in vitro peut être réalisée par l'emploi d'enzymes du type glycoside-hydrolases, transglycosylases de type cyclodextrine-glucanotransférase ou glycoside-phosphorylases. Plus particulièrement, la glycosylation enzymatique des flavonoïdes in vitro peut être réalisée via la mise en oeuvre de glucane-saccharases. Une telle voie de synthèse conduit à l'obtention de flavonoïdes a-glucosylés, et repose sur l'utilisation de glucane-saccharases appartenant aux familles 13 ou 70 des glycosides-hydrolases (GH 13 et GH 70) (Classification CAZy - Henrissat B, Davies GJ, Curr. Op. Struct. Biol. 1997, 7: 637-644). Les glucane-saccharases sont des transglucosylases qui catalysent à partir de saccharose la synthèse d'homopolymères, constitués d'unités a-D-glucosyle, appelés glucane. Ces glucanes sont généralement de très haute masse molaire (108 Da), et présentent des structures variées dues à la présence de différents types de liaisons osidiques (a-1,2, a-1,3, a-1,4, et/ou a-1,6) ainsi qu'à leur localisation dans le polymère. Des isomères du saccharose et du glucose sont aussi produits à partir du saccharose mais en très faibles quantités comparativement au polymère. Plus particulièrement, ces enzymes sont capables de glucosyler des molécules hydroxylées dites « accepteurs », introduites dans le milieu réactionnel en supplément du saccharose, tels que des flavonoïdes. Le degré de glucosylation de l'accepteur dépend de sa structure ainsi que de celle de l'enzyme. Ainsi, un accepteur efficace, ou bon accepteur, pourra détourner quasi totalement la synthèse de polymères au profit de sa propre glucosylation. Au contraire, un accepteur inefficace, ou mauvais accepteur, ne pourra que très faiblement détourner la synthèse de polymères et ne sera donc que très peu, voire pas, glucosylé. C'est pourquoi ces enzymes sont étudiées depuis de nombreuses années afin notamment de proposer des outils enzymatiques innovants, performants pour la synthèse de molécules originales, et répondant à des besoins industriels notamment en termes de synthèse de nouveaux gluco-conjugués d'intérêt. En effet, pour des raisons évidentes, l'industrie est en recherche constante de nouveaux composés, pouvant notamment être produits dans des quantités suffisantes, et notamment à un coût le plus faible possible. Dès 1995, la glucosylation de la catéchine avec une glucosyltransférase de Streptococcus sobrinus 6715 (sérotype g) a été réalisée, dans un tampon phosphate 100 mM (pH 6) en présence de 1 g/L de catéchine et de 2 % de saccharose (Nakahara et al., Appl. Environ Microbiol. 1995, 61: 2768-2770). Le produit monoglucosylé obtenu avec un rendement de 13,7 % est la 4'-0-a-D-glucopyranosyl-H-catéchine.
Une enzyme similaire, la glucosyltransférase-D de Streptococcus muons GS-5 a également été testée quelques années après sur le même substrat (Meulenbeld G et al., Appl. Env. Microbiol. 1999, 65: 4141-4147). Deux produits de monoglucosylation ont ainsi été isolés : la 4'-0-a-D-glucopyranosyl-H-catéchine et la 7-0-a-D-glucopyranosyl-H-catéchine, ainsi qu'un produit di-glucosylé, la 4',7-0-a-D-glucopyranosyl-H-catéchine. Une étude a été réalisée en 2000 pour déterminer la spécificité de la glucosyltransférase-D de Streptococcus muons GS-5. Plusieurs accepteurs ont été testés (catéchol, 3-méthoxycatéchol, 3-méthylcatéchol, 4-méthylcatéchol, phénol, 3-hydroxyphénol, alcool benzylique, alcool 2-hydroxybenzylique, alcool 2-méthoxybenzylique, 1-phény1-1,2-éthanediol, 4-méthylphénol, 3-méthylphénol, alcool 3,5-dihydroxybenzylique, 2-méthoxy-4-méthylphénol, alcool 2-méthoxybenzylique, alcool 3-méthoxybenzylique et catéchine) (Meulenbeld G Hartmans S., Biotechnol. Bioeng. 2000, 70: 363-369). Seuls les accepteurs possédant deux groupements hydroxyle adjacents, et donc vicinaux, sur le cycle aromatique B ont été glucosylés.
Quelques années plus tard, la glucosylation enzymatique d'une flavone (la lutéoline) et de deux flavanols (la quercétine et la myricétine) a été effectuée en utilisant deux glucane-saccharases : la dextrane-saccharase de Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512F et l'alternane-saccharase de Leuconostoc mesenteroides NRRL B-23192 (Bertrand A et al., Carbohydr. Res. 2006, 341 : 855-863). Les réactions ont été effectuées dans un mélange de solvants aqueux-organiques pour améliorer la solubilité des substrats. Un taux de conversion de 44 % a été atteint après 24 heures de réaction catalysée par la dextrane-saccharase dans un mélange à 70 % de tampon aqueux acide acétique/acétate de sodium et de 30 % de bis(2-méthoxyéthyl) éther. Deux produits ont été caractérisés par RMN : la 3'-0-a-D-glucopyranosyllutéoline et la 4'-0-a-D-glucopyranosyllutéoline. En présence de l'alternane-saccharase, trois produits supplémentaires, à savoir la 4'-0-a-Dtriglucopyranosyllutéoline et deux formes de 4'-0-a-D-diglucopyranosyllutéoline, ont été obtenus avec un taux de conversion en lutéoline de 8 %. Les deux enzymes ont également été utilisées pour glucosyler la quercétine et la myricétine avec des taux de conversion respectifs de 4 % et 49 %. Aucune glucosylation n'a toutefois été observée lorsque ces deux enzymes ont été utilisées avec de la diosmétine, de la diosmine et de la 7-3-D-glucopyranosyldiosmétine. La glucosylation de la quercétine en présence de saccharose et de glucane- saccharase de la souche Leuconostoc mesenteroides NRRL B-1299 a également été décrite dans la demande coréenne KR20060063703.
L'épigallocatéchine gallate a également été glucosylée en présence de saccharose et de la glucane-saccharase de Leuconostoc mesenteroides B-1299CB (Moon et al., Journal of Molecular Catalysis B : Enzymatic. 2006, 40: 1-7). Un mélange de trois produits a été obtenu : - un produit de monoglucosylation : la 4"-0-a-D-glucopyranosylépigallocatéchine gallate (15,7 %) ; et - deux produits de di-glucosylation : la 7,4"-0-a-D-glucopyranosylépigallocatéchine (22,7 %) et la 4',4"-di-O-a-D-glucopyranosylépigallocatéchine gallate (23,8 %). La glucosylation de la quercétine a été réalisée en 2007 en présence de saccharose et de la glucane-saccharase de Leuconostoc mesenteroides B-1299CB (Moon Y H et al., Enzyme Microb. Technol. 2007, 40: 1124-1129). Un mélange de deux produits monoglucosylés est obtenu : la 4'-0-a-D-glucopyranosylquercétine et la 3'-0-a-Dglucopyranosylquercétine. L'amylosaccharase de Deinococcus geothermalis a été exprimée dans E. colt et étudiée pour la glucosylation de la (+)-catéchine et la 3'-0-a-D-maltosylcatéchine (Cho H K et al., Enzyme Microb. Technol. 2011, 49(2) : 246-253). Dans la demande de brevet américain US20110183930A1, Auriol et al. ont décrit la préparation de dérivés phénoliques obtenus par condensation enzymatique entre des composés phénoliques sélectionnés parmi les pyrocatéchols ou leurs dérivés, et le résidu glucosyle provenant du saccharose. La production de ces dérivés de composés phénoliques est réalisée avec une glucosyltransférase (EC 2.4.1.5). Les 0-a-D-glucosides de composés phénoliques synthétisés présentent une solubilité dans l'eau supérieure à celle de leur parent polyphénol. Ces composés y sont notamment décrits pour leur utilisation en tant qu'agent antioxydant, antiviral, antibactérien, immunostimulant, antiallergique, antihypertenseur, anti- ischémique, antiarythmique, antithrombique, hypocholestérolémiant, antilipopéroxidant, hépatoprotecteurs, anti-inflammatoires, anticarcinogènes, antimutagènes, antinéoplasiques et vasodilatateurs. La glucosylation de l'astragaline en présence de saccharose et de la glucanesaccharase de Leuconostoc mesenteroides B-512FMCM a également été réalisée (Kim G E et al., Enzyme Microb Technol. 2012, 50 : 50-56). Neuf produits ont été isolés, à savoir : - deux produits de monoglucosylation : le kaempférol-3-0-3-D-glucopyranosyl-(1->6)-0-a-Dglucopyranoside et le kaempférol-3-0-3-D-glucopyranosyl-(1->3)-0-a-D-glucopyranoside ; et - sept produits de polyglucosylation de l'astragaline (liaisons de type a-(1->6)).
La glucosylation de l'ampélopsine a en outre été réalisée en présence de saccharose et de la glucane-saccharase de Leuconostoc mesenteroides B-1299CB4. Cinq produits de glucosylation ont été isolés et le produit de monoglucosylation caractérisé : il s'agit de la 4'-0-a-D-glucopyranosylampélopsine (Woo H J et al., Enzyme Microb. Technol. 2012 51 : 311-318). Toutefois, à la connaissance des inventeurs, et malgré le très grand nombre d'expérimentations effectuées depuis de nombreuses années dans le domaine, la glucosylation de flavonoïdes monohydroxylés ou hydroxylés de façon non-vicinale, sur le cycle B, n'a jamais été réalisée.
Il existe en conséquence un besoin, dans l'état de la technique, pour la disponibilité de flavonoïdes a-glucosylés, et notamment 0-a-glucosylés, sur des groupements hydroxyles non vicinaux, notamment sur le cycle B.
Résumé de l'invention Ainsi, la présente invention fournit un procédé de fabrication de dérivés de flavonoïde 0-a-glucosylés comprenant au moins une étape d'incubation d'une glucanesaccharase avec un flavonoïde et au moins un saccharose, dans lequel: (A) ledit flavonoïde est de formule (I) suivante : R7 25 dans laquelle le cycle C représente un cycle choisi dans le groupe constitué des cycles de formules (II), (III), (IV) ou (V) suivantes: (III) (IV) (V) dans lesquels : l'un des groupements R1, R2 ou R3 représente un cycle B de formule (VI) suivante : Rio RI? dans lequel : (a) un seul des groupements choisi parmi R8, R9, R10, R11 et R12 représente un groupement hydroxyle, les autres groupements parmi R8, R9, R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S ; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (C1-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3 ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU (b)R8 et un seul des groupements choisis parmi R10, R11 et R12 représentent un groupement hydroxyle, R9 et les autres groupements parmi R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S ; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU (C)R9 et un seul des groupements choisis parmi R11 et R12 représentent un groupement hydroxyle, les groupements R8, R10, et l'autre groupement parmi R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU Gen) et R12 représentent un groupement hydroxy, les groupements R8, R9, et R11, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (C1-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en Ci-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement - C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU (e) R8, R10 et R12 représentent un groupement hydroxy, les groupements R9 et R11, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en Ci-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ;-SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en Ci-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; les groupements RI, R2 et R3 qui ne représentent pas un cycle B de formule (VI), identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; une amine en C1-C3 ; un groupement-COOH ; -C(0)0(C2-C3) ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; R1', R2' et R3', identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S ; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C2-C3 ; une amine en Ci-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3 ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; ou les groupements R1 et R1' lorsque R1 ne représente pas un cycle B de formule (VI), ou R2 et R2' lorsque R2 ne représente pas un cycle B de formule (VI), ou R3 et R3' lorsque 30 R3 ne représente pas un cycle B de formule (VI), forment ensemble un groupement =0; R4, R5, R6 et R7, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S ; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -OH; -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; et (B) ladite glucane-saccharase étant choisie dans le groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, E, F, G, H, I, K, M, N, P, Q, S, T, V et Y; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 2, ladite séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, F, G, H, K, L, M, N, P, S, V et Y; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 3, ladite séquence ayant un acide aminé X3 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, G, I, K, M, N et W ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 5, ladite séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, G, I, K, L, M, R, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 6, ladite séquence ayant un acide aminé X6 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, G, Q, S et T ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 7, ladite séquence ayant un acide aminé X7 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A et G; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 8; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 9; ladite séquence ayant un acide aminé X8 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I et L - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 10 ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 11.
Les inventeurs ont en effet montré, de manière totalement inattendue, que certaines glucane-saccharases spécifiques mutées, décrites ci-après dans le présent texte, possèdent la capacité de générer de nouveaux flavonoïdes 0-a-glucosylés sur des groupements hydroxyles non vicinaux, notamment sur le cycle B. Ces enzymes mutées possèdent en effet une activité de glucosylation supérieure, voire très supérieure à leur formes sauvages, de ces flavonoïdes spécifiques, habituellement considérés comme étant de mauvais récepteurs, car très difficiles à glucosyler, notamment sur le cycle B. Plus particulièrement, une glucane-saccharase mise en oeuvre dans un procédé de l'invention a une séquence peptidique choisie dans lequel la glucane-saccharase est choisie dans le groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de H, N ou S; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 2, ladite séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, F, L, M, S ou V ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 3, ladite séquence ayant un acide aminé X3 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué 20 de A et N ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V ou W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 5, ladite 25 séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, K, R ou V ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 9, ladite séquence ayant un acide aminé X9 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C ou L. 30 L'invention a également pour objet un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé obtenu par le procédé de l'invention. L'invention concerne en outre un composé de formule (IX) suivante : (IX) 13 0 dans laquelle (i) X13 représente une chaîne constituée d'au moins deux groupements a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, ou (ii) X13 représente un seul groupement a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, à la condition qu'au moins l'un de X14 et X15 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside. Une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside selon l'invention peut plus particulièrement être constituée de 1 à 500.000 groupements a-glucoside, de 1 à 400.000 groupements a-glucoside, de 1 à 300.000 groupements a-glucoside, de 1 à 200.000 groupements a-glucoside, de 2 à 100.000 groupements a-glucoside, de 5 à 50.000 groupements a-glucoside, de 10 à 25.000 groupements a-glucoside ou de 10 à 10.000 groupements a-glucoside. L'invention est encore relative à un composé de formule (X) suivante : 16 0 (X) dans laquelle X16 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, et X17 et X18, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside. La présente invention concerne également l'utilisation cosmétique, à titre d'agent antioxydant, d'au moins un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé conforme à l'invention. La présente invention vise en outre un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé conforme à l'invention, pour son utilisation pharmaceutique dans le traitement et/ou la prévention de l'hépatotoxicité, des allergies, de l'inflammation, des ulcères, des tumeurs, des troubles ménopausiques, ou des maladies neurodégénératives. Un autre aspect de l'invention concerne un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé conforme à l'invention pour son utilisation pharmaceutique à titre de veinotonique.
Enfin, la présente invention est relative à l'utilisation d'un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé conforme à l'invention à titre d'agent photovoltaïque, d'agent répulsif des insectes, d'agent de blanchiment, d'agent pesticide, fongicide et/ou bactéricide. Dans le cadre de la présente invention, et sauf mention différente dans le texte, on entend par : - groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S : un alkyle ou un alkylène ; - alkyle : un groupe aliphatique hydrocarboné saturé, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 10, de préférence de 1 à 6 atomes de carbone ; - cycloalkyle : un groupe alkyle cyclique comprenant de 3 à 10 chaînons, de préférence de 3 à 8 chaînons. Le groupe cycloalkyle est éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène et/ou groupes alkyles ; - hétérocycle : un groupe alkyle cyclique comprenant de 4 à 9 chaînons, de préférence de 3 à 8 chaînons, et constitué de 1 à 3 cycles, comprenant entre 3 et 6 atomes de carbone et 1 ou plusieurs hétéroatomes, par exemple 1, 2 ou 3 hétéroatomes, de préférence 1 ou 2, choisis parmi l'azote, l'oxygène et le soufre. Le groupe hétérocycle est éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène et/ou groupes alkyles ; - groupe alkyle partiellement cyclique : on entend un groupe alkyle dont seulement une partie forme un cycle ; - alkylène : un groupe alkylène divalent, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 10, de préférence de 1 à 6, atomes de carbone ; - aryle : un groupe aromatique cyclique comprenant entre 5 et 9 atomes de carbone, par exemple un groupe phényle ; - hétéroaryle : un groupe aromatique cyclique comprenant entre 3 et 10 atomes dont 1 ou plusieurs hétéroatomes, par exemple entre 1 et 4 hétéroatomes, tels que l'azote, l'oxygène ou le soufre, ce groupe comprenant un ou plusieurs cycles, de préférence 1 ou 2 cycles. Les hétérocycles peuvent comprendre plusieurs cycles condensés. Les hétéroaryles sont éventuellement substitués par un ou plusieurs groupes alkyles ou un atome d'oxygène. A titre d'exemples, on peut citer les groupes thiényle, pyridinyle, pyrazolyle, imidazolyle, thiazolyle et triazolyle ; - halogène : un atome de chlore, de fluor, de brome ou d'iode ; - alcool en C1-C3 : un alcool choisi parmi le méthanol, l'éthanol, le propanol et isopropanol ; - un (Ci-C3)alcoxy : un groupement choisi parmi un méthoxyle, un éthoxyle, un propyloxyle, et un isopropyloxyle ; - acyle en C2-C3 : un groupement choisi parmi un acétyle, un propylacétyle et un isopropylacétyle ; - amine en C1-C3 : un groupement choisi parmi une méthylamine, une éthylamine et une propylamine ; - imine en C1-C3 : un groupement choisi parmi une méthylimine, une éthylimine et une propylimine ; Dans la présente demande le terme « glycoside » est employé afin de désigner un motif glycoside. Les motifs glycoside sont connus de l'homme du métier. A titre d'exemples de glycosides monosaccharides, les glycosides suivants peuvent être cités : glucose, fructose, sorbose, mannose, galactose, talose, allose, gulose, idose, glucosamine, N-acétylglucosamine, mannoamine, galactosamine, acide glucuronique, rhamnose, arabinose, acide galacturonique, fucose, xylose, lyxose et ribose. A titre d'exemples de glycosides di- ou oligo- saccharides, les glycosides suivants peuvent être cités: - di-saccharides: maltose, gentiobiose, lactose, cellobiose, isomaltose, melibiose, laminaribiose, chitobiose, xylobiose, mannobiose, sophorose, nigerose, kojibiose, rutinose, robinose, - oligo-sacchacaride: panose, galactotriose, P-glucotriose, P-glucotétraose, galactotétraose, les maltodextrines notamment, maltotriose, isomaltotriose, maltotetraose, maltopentaose, maltoheptaose. Peuvent également être cités à titre d'exemples de glycosides: - les dérivés de l'amidon, notamment le maltose, les maltodextrines, - les dérivés de la cellulose, - les pectines et leurs dérivés, - la chitine, le chitosane et leurs dérivés, - les glucoaminoglucanes et leurs dérivés, - les dérivés du xyloglucanes, - les galactomannanes et leurs dérivés. Au sens de l'invention, on entend par « une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) » un enchaînement de 1 à 6 glycosides mentionnés ci-dessus. De même, au sens de la présente invention, on entend par « une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside un enchaînement de une à 600.000 unités glucosyle liées les unes aux autres par des liaisons a.
Description des figures La Figure 1 illustre les efficacités de glucosylation de l'apigénine (histogramme - Ordonnée de gauche - %), les niveaux d'activité relative sur saccharose seul (- points noirs - Ordonnée de droite - UA) et les concentrations massiques en apigénine glucosylée (valeurs portées au-dessus de l'histogramme - mg/L), des enzymes ASNp WT, DSR-S vardelA4N WT et de leurs mutants ASNp 1228F, ASNp 1228L, ASNp 1228M, ASNp F229A, ASNp F229N, ASNp A289W, ASNp F290C, ASNp F290K et DSR-S vardelA4N S512C. La Figure 2 illustre la superposition des chromatogrammes IJV (2340 nm) pour les six mutants représentatifs des six catégories de profils de produits de glucosylation de l'apigénine. Le nom des enzymes correspondants à ces réactions est indiqué à côté de chaque chromatogramme : ASNp A289W, DSR-S vardelAAN S512C, ASNp F290K, ASNp F290C, ASNp F229N et ASNp 1228F. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 3 illustre la superposition des chromatogrammes UV (2340 nm) pour les sept mutants représentatifs des six catégories de profils de produits de glucosylation de la naringénine. Le nom des enzymes correspondants à ces réactions est indiqué à côté de chaque chromatogramme : ASNp F290V, ASNp R226N, ASR C-APY del, a-1,2 BrS, ASNp A289C, ASNp A289P/F290C et ASNp 1228A. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units).
La Figure 4 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme ASNp sauvage (ASNp WT), en comparaison avec le standard d'apigénine. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 5 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp 1228F. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 6 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp 1228L. En abscisse : Temps de rétention en 20 minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 7 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp 1228M. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. 25 La Figure 8 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp F229A. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 9 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation 30 de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp F229N. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 10 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp A289W. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 11 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp F290C. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 12 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante ASNp F290K. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil. La Figure 13 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de l'apigénine, pour l'enzyme mutante DSR-S vardelA4N S512C. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La nature des différents pics est indiquée directement sur le profil.
La Figure 14 illustre le spectre de masse haute résolution en mode électrospray positif pour la forme mono-glucosylée de l'apigénine obtenue avec l'enzyme mutante DSR-S vardelA4N S512C. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative. La Figure 15 illustre le spectre MS/MS haute résolution en mode électrospray négatif pour la forme mono-glucosylée de l'apigénine (à m/z 431,11) obtenue avec l'enzyme 20 mutante DSR-S vardelA4N S512C. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative. La Figure 16 illustre le spectre de masse haute résolution en mode électrospray positif pour la forme mono-glucosylée de l'apigénine obtenue avec l'enzyme mutante ASNp A289W. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative. 25 La Figure 17 illustre le spectre de masse haute résolution en mode électrospray positif pour les formes di-glucosylées de l'apigénine obtenue avec l'enzyme mutante ASNp A289W. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative. La Figure 18 illustre le spectre MS/MS haute résolution en mode électrospray négatif pour une des deux formes di-glucosylées de l'apigénine (à m/z 593,16) obtenue avec 30 l'enzyme mutante ASNp A289W. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative. Structure de l'ion m/z à 353,0667, signature d'une glucosylation de chacune des deux positions 5 et 7 du cycle A de l'apigénine.
La Figure 19 illustre le spectre MS/MS haute résolution en mode électrospray négatif pour une des deux formes di-glucosylées de l'apigénine (à m/z 593,16) obtenue avec l'enzyme mutante ASNp A289W. En abscisse : rapport m/z ; En ordonnée : abondance relative.
Fragmentation de la forme di-glucosylée sur la position 4' du cycle B de l'apigénine conduisant à l'ion m/z à 269,0451. La Figure 20 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pourr l'enzyme ASNp sauvage (ASNp WT), en comparaison avec le standard de naringénine. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : 10 Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 21 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pour l'enzyme mutante ASNp 1228A. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 22 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation 15 de la naringénine, pour l'enzyme mutante ASNp A289C. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 23 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pour l'enzyme sauvage tronquée ASR-C-APY-del. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). 20 La Figure 24 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pour l'enzyme mutante ASNp A289P/F290C. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 25 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pour l'enzyme sauvage a-1,2 BrS. En abscisse : Temps de rétention en 25 minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 26 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation de la naringénine, pour l'enzyme mutante ASNp F290V. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units). La Figure 27 illustre le profil de chromatographie UV obtenu après glucosylation 30 de la naringénine, pour l'enzyme mutante ASNp R226N. En abscisse : Temps de rétention en minutes ; En ordonnée : Absorbance en mAU (Milliabsorbance Units).
Description détaillée de l'invention Afin de rendre disponibles de nouveaux flavonoïdes 0-a-glucosylés, le demandeur a mis au point un nouveau procédé de synthèse de nouvelles structures d'a-gluco-flavonoïdes spécifiquement glycosylés sur des hydroxyles non vicinaux, en particulier du cycle B. Ce procédé met en oeuvre des glucane-saccharases spécifiques mutées, identifiées par le demandeur, aptes à effectuer une telle glucosylation. Ces enzymes spécifiques ne nécessitent pour cela que la présence de saccharose, une agro-ressource renouvelable et bon marché. A ce titre, un procédé selon l'invention est avantageusement peu couteux.
Glucane-saccharases de l'invention La présente invention concerne en premier lieu un procédé de fabrication de dérivés de flavonoïde 0-a-glucosylés comprenant au moins une étape d'incubation d'une enzyme de l'invention avec un flavonoïde de formule (I) et au moins un saccharose.
Comme indiqué précédemment, les enzymes de l'invention sont avantageusement aptes à glucosyler des flavonoïdes au niveau de fonction(s) hydroxyle(s) non-vicinale(s), notamment présentent sur le cycle B. Ces enzymes consistent plus particulièrement en des glucane-saccharases appartenant aux familles 13 et 70 des glycoside-hydrolases (GH13 et GH70).
Les glucane-saccharases appartenant à la famille 13 sont naturellement produites par les bactéries des genres Deinococcus, Neisseria ou Alteromonas. Les glucane-saccharases appartenant à la famille 70 sont quant à elles naturellement produites par des bactéries lactiques des genres Leuconostoc, Lactobacillus, Streptococcus ou Weissela sp..
Comme indiqué précédemment, différentes glucane-saccharases sauvages des familles 13 ou 70 des glycoside-hydrolases ont déjà été utilisées pour la production de flavonoïdes glucosylés, mais aucune d'entre elle n'a à ce jour été décrite comme étant capable de glucosyler les flavonoïdes plus particulièrement visés dans la présente invention, à savoir ceux monohydroxylés sur le cycle B ou possédant des fonctions hydroxyles non-vicinales sur le cycle B. Or, comme montré dans les exemples, les inventeurs ont déterminé des variants de ces enzymes, mutés au niveau de leur site de fixation aux flavonoïdes, et aptes à glucosyler de tels composés de manière efficace.
L'ensemble des enzymes sauvages ou mutées décrites dans la présente demande étaient connues de l'homme du métier mais n'avait à ce jour jamais été mise en oeuvre afin de glucosyler des flavonoïdes selon l'invention. La séquence nucléotidique de la forme sauvage de l'enzyme ASNp (AmyloSucrase Neisseria polysaccharea) (famille GH13) a pour référence GenBank AJ011781.1 tandis que sa séquence polypeptidique a pour référence Uniprot Q9ZEU2. La séquence nucléotidique de la forme sauvage de l'enzyme DSR-S (issue de la souche Leuconostoc mesenteroides B-512F) a pour référence GenBank 109598. Des références bibliographiques décrivant ces enzymes mutées sont indiquées dans les Tableaux 1 et 4. En outre, la méthode d'obtention des enzymes mutées est décrite dans la demande de brevet européen EP 2 100 966 Al. Les séquences peptides des différentes enzymes mutées ou non selon l'invention sont indiquées dans la présente demande. Ainsi, une enzyme selon l'invention peut être synthétisée par des méthodes classiques de chimie de synthèse, soit des synthèses chimiques homogènes en solution ou en phase solide. A titre illustratif, l'homme de l'art peut utiliser les techniques de synthèse de polypeptide en solution décrite par HOUBEN WEIL (1974, In methode der Organischen Chemie, E. Wunsh ed., volume 154 et 15-II, Thieme, Stuttgart.). Une enzyme selon l'invention peut être également synthétisée chimiquement en phase liquide ou solide par des couplages successifs des différents résidus d'acides aminés (de l'extrémité N-terminale vers l'extrémité C-terminale en phase liquide, ou de l'extrémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale en phase solide). L'homme de l'art peut notamment utiliser la technique de synthèse peptidique en phase solide décrite par Merrifield (MERRIFIELD RB, (1965a), Nature, vol.207 (996): 522-523 ; MERRIFIELD RB, (1965b), Science, vol.150 (693):178- 185. ) Selon un autre aspect, une enzyme selon l'invention peut être synthétisée par recombinaison génétique, par exemple selon un procédé de production comprenant les étapes suivantes : (a) préparer un vecteur d'expression dans lequel a été inséré un acide nucléique codant la séquence peptidique d'une enzyme de l'invention, ledit vecteur comprenant également les séquences régulatrices nécessaires à l'expression dudit acide nucléique dans une cellule hôte choisie ; (b) transfecter une cellule hôte avec le vecteur recombinant obtenu à l'étape (a) ; (c) cultiver la cellule hôte transfectée à l'étape b) dans un milieu de culture approprié; (d) récupérer le surnageant de culture des cellules transfectées ou le lysat cellulaire desdites cellules, par exemple par sonication ou par choc osmotique ; et (e) séparer ou purifier, à partir dudit milieu de culture, ou à partir du culot de lysat cellulaire, l'enzyme de l'invention ainsi obtenue.
Pour purifier une enzyme selon l'invention qui a été produite par des cellules hôtes transfectées ou infectées par un vecteur recombinant codant ladite enzyme, l'homme de l'art peut avantageusement mettre en oeuvre des techniques de purification décrites par MolinierFrenkel (2002, J. Viral. 76, 127-135), par Karayan et al. (1994, Virology 782-795) ou par Novelli et al. (1991, Virology 185, 365-376).
Ainsi, des glucane-saccharases utilisables dans un procédé de l'invention sont choisies dans un groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, E, F, G, H, I, K, M, N, P, Q, S, T, V et Y; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 2, ladite séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, F, G, H, K, L, M, N, P, S, V et Y; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 3, ladite séquence ayant un acide aminé X3 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, G, I, K, M, N et W ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 5, ladite séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, G, I, K, L, M, R, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 6, ladite séquence ayant un acide aminé X6 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, G, Q, S et T ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 7, ladite séquence ayant un acide aminé X7 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A et G; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 8; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 9; ladite séquence ayant un acide aminé X8 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, Jet L - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 10 ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 11. Il doit être compris de cette formulation que les acides aminés définis comme étant respectivement X1, X2, X3, X4, X5, X6, X7 et X8 sont présents et tels que définis ci-dessus dans les glucane-saccharases de l'invention ayant au moins 80 % d'identité avec, respectivement, une séquence SEQ ID NO : 1 à 9, telles que définies ci-dessus.
Comme montré dans les exemples, toutes les enzymes possédant l'une de ces séquences peptidiques présentent une capacité statistiquement supérieure à celle de l'enzyme sauvage à glucosyler les flavonoïdes de l'invention, présentant des fonctions hydroxyle non-vicinales, notamment sur le cycle B. La présente invention englobe également les séquences dont la séquence d'acides aminés a au moins 80%, 81 %, 82%, 83 %, 84%, 85 %, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91 %, 92 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % ou 100 % d'identité en acides aminés avec l'une des séquences SEQ ID NO : 1 à 11 telles que définies précédemment et une activité biologique de même nature. Par activité biologique de même nature en ce qui concerne les séquences 20 peptidiques 1 à 11, on entend une même capacité à glucosyler des flavonoïdes monohydroxylés ou hydroxyles de façon non-vicinale sur le cycle B. Le « pourcentage d'identité » entre deux séquences d'acides nucléiques ou d'acides aminés, au sens de la présente invention, est déterminé en comparant les deux séquences alignées de manière optimale, à travers une fenêtre de comparaison. 25 La partie de la séquence nucléotidique dans la fenêtre de comparaison peut ainsi comprendre des additions ou des délétions (par exemple des « gaps ») par rapport à la séquence de référence (qui ne comprend pas ces additions ou ces délétions) de manière à obtenir un alignement optimal entre les deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions 30 auxquelles une base nucléique identique (ou un acide aminé identique) est observé pour les deux séquences comparées, puis en divisant le nombre de positions auxquelles il y a identité entre les deux bases nucléiques (ou entre les deux acides aminés) par le nombre total de positions dans la fenêtre de comparaison, puis en multipliant le résultat par cent afin d'obtenir le pourcentage d'identité en nucléotides (ou en acides aminés) des deux séquences entre elles.
L'alignement optimal des séquences pour la comparaison peut être réalisé de manière informatique à l'aide d'algorithmes connus. De manière tout à fait préférée, le pourcentage d'identité de séquence est déterminé à l'aide du logiciel CLUSTAL W (version 1.82) les paramètres étant fixés comme 5 suit : (1) CPU MODE = ClustalW mp ; (2) ALIGNMENT = « full » ; (3) OUTPUT FORMAT = « aln w/numbers » ; (4) OUTPUT ORDER = « aligned » ; (5) COLOR ALIGNMENT = « no » ; (6) KTUP (word size) = « default » ; (7) WINDOW LENGTH = « default » ; (8) SCORE TYPE = « percent » ; (9) TOPDIAG = « default » ; (10) PAIRGAP = « default » ; (11) PHYLOGENETIC TREE/TREE TYPE = « none » ; (12) MATRIX = « default » ; (13) GAP 10 OPEN = « default » ; (14) END GAPS = « default » ; (15) GAP EXTENSION = « default » ; (16) GAP DISTANCES = « default » ; (17) TREE TYPE = « cladogram » et (18) TREE GRAP DISTANCES = « hide ». Plus particulièrement, la présente invention concerne également les séquences dont la séquence d'acides aminés a 100 % d'identité en acides aminés avec les acides aminés 225 à 15 450 des séquences SEQ ID NO: 1 à 9, et au moins 80 %, 81 %, 82 %, 83 %, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91 %, 92%, 93 %, 94%, 95%, 96%, 97%, 98 %, 99 % ou 100 % d'identité en acides aminés avec le reste des séquences SEQ ID NO: 1 à 9 telles que définies précédemment, et une activité biologique de même nature. Parmi les 68 séquences d'intérêt de l'invention, 24 d'entre elles s'avèrent plus 20 particulièrement intéressantes en termes d'activité de glucosylation. Ainsi, selon un mode de réalisation, les glucane-saccharases préférentiellement utilisées dans un procédé de l'invention sont choisies dans le groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué 25 de H, N ou S ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 2, ladite séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué deA,C,F,L,M,SouV; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 3, ladite 30 séquence ayant un acide aminé X3 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué de A et N; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V ou W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 5, ladite séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, K, R ou V ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 9, ladite séquence ayant un acide aminé X9 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C ou L. Elles présentent en effet toutes une efficacité de glucosylation sur les flavonoïdes de l'invention supérieure de 5 %, 10 %, 15 %, 20 %, 25 %, 30 %, 35 %, 40 %, 45 %, 50 %, 55 % ou 60 % comparativement et respectivement à une activité de 0,5 +/- 0,5 % ou 4,7 +1- 1,7 % pour l'enzyme sauvage (voir notamment les Tableaux 2 et 3). Flavonoïdes, dérivés et mises en oeuvre a) Flavonoïdes mis en oeuvre dans un procédé de l'invention Les flavonoïdes spécifiquement mis en oeuvre dans un procédé de l'invention sont de formule (I) telle que décrite précédemment. Selon un mode de réalisation, un seul des groupements choisi parmi R8, R9, R10, R11 et R12, représente un groupement hydroxyle, les autres groupements parmi R8, R9, R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S ; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en Ci-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en Ci-C3 ; et un thioalkyle en Ci-C3 ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; De préférence, le groupement R10 représente un groupe hydroxyle. De préférence, les groupements R8, R9, R11 et R12 représentent des atomes d'hydrogène.
Selon un mode de réalisation préféré, le groupement R10 représente un groupe hydroxyle et les groupements R8, R9, R11 et R12 représentent des atomes d'hydrogène. Selon un mode de réalisation, le cycle C représente un cycle de formule (II) ou (IV) telle que définies précédemment.
Selon un mode de réalisation de l'invention, le groupement R1 représente un cycle B de formule (VI) telle que définie précédemment. Selon un mode de réalisation, les groupements RI', R2 et R2' représentent des atomes d'hydrogène, et R3 et R3' forment ensemble un groupement =0.
Selon un mode de réalisation préféré, le groupement R1 représente un cycle B de formule (VI), les groupements RI', R2 et R2' représentent des atomes d'hydrogène, et R3 et R3' forment ensemble un groupement =0. Selon un mode de réalisation préféré, le cycle C représente un cycle de formule (II) ou (IV), le groupement R1 représente un cycle B de formule (VI), les groupements RI', R2 et R2' représentent des atomes d'hydrogène, et R3 et R3' forment ensemble un groupement =0. Selon un mode de réalisation, deux des groupements R4, R5, R6 et R7 représentent un groupement hydroxyle, les deux autres groupements étant tels que précédemment définis. De préférence, les deux groupements représentant un groupement hydroxyle sont les groupements R4 et R6.
Selon un mode de réalisation, deux des groupements R4, R5, R6 et R7 représentent un groupement hydroxyle, les deux autres groupements représentant un atome d'hydrogène. Selon un mode de réalisation, les groupements R5 et R7 représentent des atomes d'hydrogène. Selon un mode de réalisation préféré, les groupements R4 et R6 représentent un groupement hydroxyle et les groupements R5 et R7 représentent un atome d'hydrogène. Selon un mode de réalisation, un flavonoïde mis en oeuvre dans un procédé de l'invention est de formule (VII) ou (VIII) suivantes : H Un flavonoïde de l'invention peut être mis en oeuvre dans un procédé de l'invention à un ratio molaire saccharose sur flavonoïde compris entre 1 et 35 000, le mélange réactionnel comprenant au moins l'(les) enzyme(s), le saccharose et le(s) flavonoïde(s) récepteur(s).
De préférence, le ratio molaire saccharose sur flavonoïde est compris entre 7 et 292, le mélange réactionnel comprenant au moins l'(les) enzyme(s), le saccharose et le(s) flavonoïde(s) récepteur(s). b) Dérivés de flavonoïdes 0-a-21ucosylés La présente invention concerne également certains dérivés de flavonoïde 0-a-glucosylé. Ceux sont aptes à être obtenus à partir d'un procédé de l'invention. La présente invention vise plus particulièrement des composés de formule (IX) suivante : 13 (IX) 0 dans laquelle (i) X13 représente une chaîne constituée d'au moins deux groupements a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un alkyle en C1-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, ou (ii) X13 représente un seul groupement a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, à la condition qu'au moins l'un de X14 et X15 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside. Comme illustré dans Moulis et al. Understanding the polymerization mechanism of glycoside-hydrolase family 70 glucansucrases, J. Biol. Chem. 2006, 281: 31254-31267, un composé selon l'invention, et glucosylé à l'aide d'une glucane-saccharase conforme à l'invention, peut en effet comprendre une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside. La présente invention vise également des composés de formule (X) suivante : 16 dans laquelle X16 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, et X17 et X18, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside. c) Mise en oeuvre des dérivés de flavonoïdes 0-a-21ucosylés de l'invention Selon un mode de réalisation, les dérivés de flavonoïdes 0-a-glucosylés de l'invention peuvent être utilisés à titre d'agent antioxydant (Heim et al., J. Nutr. Biochem., 2002, 13 : 572-584). Selon un mode de réalisation, les dérivés de flavonoïdes 0-a-glucosylés de l'invention peuvent être mis en oeuvre pour leur utilisation pharmaceutique dans le traitement et/ou la prévention de l'hépatotoxicité, des allergies, de l'inflammation, des ulcères, des tumeurs, des troubles ménopausiques ou des maladies neurodégénératives (Harborne J. et al., Phytochemistry, 2000 55: 481-504; Quideau S. et al., Angew. Chem. Int. End. 2011, 50: 586-621). Selon un mode de réalisation, les dérivés de flavonoïdes 0-a-glucosylés de l'invention peuvent être mis en oeuvre pour leur utilisation pharmaceutique à titre de veinotonique. (Katsenis K., Curr. Vasc. Pharmacol. 2005, 3(1), 1-9) De plus, selon un mode de réalisation de l'invention, les dérivés de flavonoïdes 0-a-glucosylés de l'invention peuvent être mis en oeuvre à titre : - d'agent photovoltaïque (voir notamment à cet effet le document Meng et al., Nano Lett. 2008, 8(10), 3266-72; Narayan M. R., Renew. Sust. Energ. Rev. 2012, 16, 208- 215 ; US 2009/0071534 Al) - d'agent répulsif des insectes (voir notamment à cet effet les documents JP 2002060304; JP 2003104818; Benavente-garcia et al., J. Agric. Food Chem., 1997, 45 (12), 4505-4515 ; Singh et al., Natural product sciences, 1997, 3(1), 49-54; Diwan et Saxena, Int. J. Chem. Sci., 2010, 8(2), 777-782; Regnault-Roger et al., J. Stored Prod Res, 2004, 40, 395-408) ; - d'agent de blanchiment (voir notamment à cet effet le document Barkat Ali Khan et al., Asian J. Chem., 2011, 23(2), pp 903-906; demandes de brevet WO 2008140440 Ai; WO 2005094770 Ai; Zhu W. & Gao J., J. Invest. Dermatol. Symposium Proceedings, 2008, 13, 20-24 ; Kim J.H. et al., J. Invest. Dermatol., 2008, 128, 1227-1235) ; ou - d'agent pesticide, fongicide et/ou bactéricide (voir notamment à cet effet les documents WO 2013043031, CN 102477024 et CN 101002557). La présente invention est aussi illustrée, sans n'y être aucunement limitée, par les exemples qui suivent.
EXEMPLES Exemple 1: Production et mise en oeuvre de 2lucane-saccharases recombinantes pour la 2lucosylation de l'api2énine et de la narin2énine Une librairie de 183 variants incluant 174 mutants, simples ou doubles, construits à partir de l'amylosaccharase de N polysaccharea (famille GH13 des glycoside-hydrolases) et 10 variants, construits à partir des glucane-saccharases DSR-S, ASR et a-1,2 BrS (appartenant à la famille GH70) ont été testés pour leur aptitude à glucosyler l'apigénine et la naringénine. L'origine des glucane-saccharases sélectionnées pour l'étude est reportée dans les Tableaux 1 et 4. Les Tableaux 1 et 4 illustrent en effet un certain nombre des glucane-saccharases testées dans les exemples du présent texte et précise : colonne 1 : l'organisme dont l'enzyme est originaire ; colonne 2 : les différentes enzymes sauvages testées ainsi que les positions mutées du site actif de ces enzymes sauvages dans les glucane-saccharases mutées également testées ; colonne 3 : les spécificités de liaisons majoritaires lors de la synthèse du polymère naturel ; colonne 4 : les références bibliographiques dans lesquelles ces enzymes, aussi bien sous formes sauvages que mutées, ont été décrites dans l'état de la technique.
Ces enzymes ont été utilisées sous forme recombinante et sont exprimées chez Escherichia cou. 1.1. Production des enzymes en microplaques L'ensemble des souches d'Escherichia cou surexprimant les glucane-saccharases hétérologues des familles GH13 et GH70, sauvages ou leurs mutants, sont maintenues au format microplaque 96 puits afin de faciliter les futures étapes de criblage de glucosylation des flavonoïdes. A partir des microplaques source, une pré-culture de ces souches d'E. cou est réalisée pendant 22 heures à 30°C, 700 rpm dans des microplaques 96 puits, dans 200 jaL de milieu de culture LB supplémenté avec 100jag/mL d'ampicilline. Ces précultures sont utilisées à leur tour pour ensemencer les microplaques « deep- well » dont chaque puits contient 1 mL par puits de milieu auto-inductible ZYM5052 contenant notamment 0,2 % (p/v) d'a-lactose, 0,05 % (p/v) de D-glucose, 0,5 % (p/v) de glycérol et 0,05 % (p/v) de L-arabinose (Studier et al., 2005). Après 22 heures de culture à 30°C et à 700 rpm, la suspension cellulaire est centrifugée pendant 20 minutes à 3000 g à 4°C. Les culots cellulaires sont resuspendus dans les microplaques « deep-well » 96 puits, avec 300 jaL de tampon phosphate salin (24 mM phosphate de sodium/potassium et 274 mM NaC1) contenant 0,5 g/L de lysozyme et 5 mg/L de RNAse pancréatique bovine. Puis on réalise une incubation de 30 minutes à 30°C sous agitation, ces microplaques étant ensuite stockées une nuit à -80°C. Après décongélation, les microplaques sont vigoureusement agitées puis centrifugées pendant 20 minutes à 3000 g à 4°C. Les lysats cellulaires centrifugés contenant les enzymes recombinantes sont transférés dans des microplaques 96 puits « deep-well » propres. 1.2. Mise en oeuvre des réactions d'accepteur Les extraits enzymatiques obtenus sont utilisés pour mener les réactions de criblage enzymatique de glucosylation de flavonoïdes. L'activité enzymatique de chaque lysat cellulaire centrifugé est évaluée au format microplaque, en poids final après 30 minutes d'incubation en présence de 146 mM final de saccharose, par dosage des sucres réducteurs par l'acide 3,5-dinitrosalicylique (DNS). Finalement, après dilution dans de l'eau ultrapure, l'absorbance est lue à 540 nm. Les réactions d'accepteurs des flavonoïdes sont ensuite réalisées en microplaques « deep-well », dans un volume de 300 jaL, à des concentrations finales, en saccharose de 146 mM, en flavonoïde de 2,5 mM (apigénine) ou 5 mM (naringénine) (initialement dissous dans 100 % DMSO), et 1401aL de lysat cellulaire centrifugé. La concentration finale en DMSO dans le milieu réactionnel est de 3 % (v/v). L'incubation est menée à 30°C et à 700 rpm. Au bout de 24 heures, les enzymes sont dénaturées à 95°C pendant 15 minutes. Ces microplaques sont stockées à -80°C en vue de l'évaluation rapide de la glucosylation des flavonoïdes par chromatographie en phase liquide couplée à la spectrométrie de masse (HPLC-MS ou LC-MS). 1.3. Techniques analytiques En vue de leurs analyses par HPLC-MS, les milieux réactionnels extensivement homogénéisés sont dilués au 1/30e dans du DMSO. La séparation des flavonoïdes et de leurs formes glucosylées est effectuée en phase inverse avec une colonne ProntoSIL Eurobond® 53x3,0 mm 120-3-C18-AQ (porosité de 120 Â, granulométrie de 3 jam, greffage C18, Bischoff Chromatography, Allemagne).
Cette colonne est maintenue à 40°C sur un système HPLC Dionex Ultimate 3000 équipé d'un détecteur UV/Vis. Ce système est couplé à un spectromètre de masse, simple quadrupole (Thermo Scientific, MSQ Plus). La phase mobile est composée d'un mélange eau ultrapure (Solvant A) / acétonitrile de qualité LC-MS (solvant B) contenant chacun 0,05 % (v/v) d'acide formique. La séparation est assurée en 10 minutes par un gradient en solvant B défini comme suit : 0 min, 15 % (v/v) ; 3 min, 25 % (v/v) ; 6,5 min, 49,5 % (v/v) ; 6,6 min, 80 % (v/v) ; 6,8 min, 15 % (v/v) ; et 10 min, 15 % (v/v). L'ionisation en spectrométrie de masse sur l'équipement MSQ Plus est réalisée en mode électrospray positif (ESI+) pour l'apigénine et négatif (EST-) pour la naringénine.
La tension du capillaire est réglée à 3000 V, celle du cône à 75 V. La température du bloc source est fixée à 450°C. Le système LC-MS/MS utilisé pour l'analyse en spectrométrie de masse haute résolution ou en fragmentation MS/MS comprend un système de séparation chromatographique Ultimate 3000 (Dionex) couplé à un spectromètre de masse hybride piège linéaire/Orbitrap (LQT Orbitrap, Thermo Fischer Scientific). L'ionisation en spectrométrie de masse sur l'équipement LQT Orbitrap est cette fois-ci réalisée soit en mode électrospray positif (ESI+) soit en mode négatif (EST-). Exemple 2 : Détermination des efficacités de 2lucosylation de l'api2énine par l'amylosaccharase recombinante de N polvsaccharea et par ses variants Les réactions en présence d'accepteur ont été mises en oeuvre en appliquant les conditions décrites dans l'exemple 1. L'efficacité de glucosylation du flavonoïde a été déterminée à partir de la formule suivante : Efficacité de glucosylation = ((aire de pic de(s) flavonoïde(s) glucosylé(s))) / ((aire de pic de(s) flavonoïde(s) glucosylé(s)) + aire du pic de flavonoïde aglycone résiduel) x 100 Les efficacités de glucosylation des flavonoïdes, exprimées en pourcentage, ont été calculées à partir des aires des pics des différents produits analysés, comme décrit dans l'exemple 1, par HPLC équipé d'un détecteur UV (2340 nm), après 24 h de réaction. Les valeurs obtenues sont reportées dans le Tableau 2.
Le Tableau 2 illustre l'efficacité de glucosylation, au cours du criblage en microplaques, de l'apigémne pour la forme sauvage de l'ASNp (amylosaccharase recombinante de N polysaccharea) ainsi que pour ses 174 mutants de son site actif. En ordonnée : les positions de mutation de l'enzyme sauvage (ASNp WT) ; en abscisse : l'acide aminé substituant celui présent dans la séquence de l'enzyme sauvage.
Ainsi, à titre illustratif, le pourcentage de 1,7 % indiqué ligne 2, colonne 2 a été obtenu à l'aide d'une enzyme muté en position 226 par la substitution de l'acide aminé R (Arginine) par l'acide aminé A (Alanine). Chaque case représente une mutation simple sur les positions R226, 1228, F229, A289, F290, 1330, V331, D394 et R446 ou une mutation double, à savoir deux mutations simples au niveau de deux de ces positions. La barre grise dans chaque case figure le niveau d'efficacité de glucosylation par rapport au mutant le plus efficace. Les résultats obtenus pour l'enzyme sauvage sont indiqués au dessus du Tableau 2 ainsi qu'aux intersections R226R, 12281, F229F, A289A, F290F, 13301, V331V, D394D et R446R. Les 3 variants double mutants sont indiqués sous le Tableau 2. Pour la forme sauvage de l'enzyme ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea), l'efficacité de glucosylation est très faible (0,5 ± 0,5 ; n=16). Les efficacités de glucosylation obtenus pour R226R, 12281, F229F, A289A, F290F, 13301, V331V, D394D et R446R données dans le Tableau 2 sont également comprises dans la gamme de valeurs 0,5 ± 0,5. Avec une efficacité de glucosylation de l'apigénine supérieure à celle de l'enzyme sauvage (supérieure à 1 %), un grand nombre d'enzymes mutantes ressortent de ce criblage. Plus particulièrement, avec une efficacité de glucosylation de l'apigénine supérieure à 5 %, huit enzymes ressortent plus particulièrement du criblage. Les efficacités de glucosylation pour ces huit enzymes mutées sont respectivement les suivantes : ASNp 1228F : 9,9%; ASNp 1228L: 11,1 %; ASNp 1228M: 5,4%; ASNp 25 F229A : 5,6 %; ASNp F229N : 5,7 %; ASNp A289W : 22,1 %; ASNp F290C : 5,4 %; et ASNp F290K : 8,9 %. Cela illustre l'intérêt d'employer des enzymes issues de l'ingénierie dirigée pour la glucosylation d'accepteurs faiblement reconnus tels que les flavonoïdes monohydroxylés ou hydroxyles de façon non-vicinale, notamment sur le cycle B. 30 Exemple 3 : Détermination des efficacités de 2lucosylation de l'api2énine par les 2lucane-saccharases de la famille GH70 Les glucane-saccharases de la famille GH70 testées pour leur activité de glucosylation de l'apigénine sont répertoriées dans le Tableau 4.
Le Tableau 4 illustre les glucane-saccharases de la famille GH70 (glycosidehydrolase 70) testées dans les exemples du présent texte. Ainsi, ASR C-APY-del WT représente la forme tronquée de l'ASR (alternane- saccharase), DSR-S vardelA4N WT représente la forme tronquée sauvage DSR-S (dextransucrase) et, par exemple, DSR-S vardelA4N F353T représente la forme tronquée de la DSR-S mutée en position 353 par la substitution de l'acide aminé F (Phénylalanine) par l'acide aminé T (Thréonine). Les résultats de glucosylation de l'apigénine par les glucane-saccharases de la famille GH70 sont reportés dans le Tableau 5. Le Tableau 5 illustre l'efficacité de glucosylation de l'apigénine pour la forme sauvage du variant tronqué de DSR-S (vardelA4N WT), pour la forme sauvage tronquée de l'ASR (ASR C-APY-del WT), pour la forme sauvage de l'enzyme a-1,2 BrS, et pour sept mutants de DSR-S vardelA4N.
La barre grise dans chaque case figure le niveau d'efficacité de glucosylation par rapport au mutant le plus efficace. Alors que la forme sauvage du variant tronqué de DSR-S (DSR-S vardelA4N WT) ne présente qu'une très faible activité de glucosylation (0,5 %), le mutant S512C présente une efficacité de glucosylation de l'apigénine plus élevée (13,9 %). Exemple 4: Comparaison des efficacités de 2lucosylation de l'api2énine pour les enzymes les plus efficaces Parmi les enzymes testées des familles de GH13 et GH70, neuf mutants ont des efficacités de glucosylation de l'apigénine supérieures à 5 %, à savoir ASNp 1228F, ASNp 1228L, ASNp 1228M, ASNp F229A, ASNp F229N, ASNp A289W, ASNp F290C, ASNp F290K et DSR-S (vardelA4N S512C). Ces efficacités sont comparées pour ces neuf mutants les plus efficaces, avec leurs activités relatives en présence de saccharose seul (voir Figure 1).
Les activités d'hydrolyse du saccharose des enzymes sauvages, ASNp WT (GH13) ou DSR-S vardelA4N WT (GH70), ont été prises comme références pour le calcul des activités relatives d'hydrolyse du saccharose de leurs mutants respectifs.
Bien que les mutants présentent des activités sur saccharose seul plus faibles que celles des enzymes sauvages, les efficacités de glucosylation de ces mêmes mutants sont de 10 à 44 fois plus importantes que pour les enzymes sauvages. Plus globalement, le coefficient de corrélation entre les efficacités de glucosylation de l'apigénine et les activités d'hydrolyse du saccharose, calculé pour l'ensemble des enzymes mutantes de l'amylosaccharase de N. polysaccharea, est de 0,08. Cela illustre l'intérêt du procédé pour identifier des enzymes peu actives sur saccharose seul mais capables de glucosyler les flavonoïdes de l'invention. Dans le cas de l'enzyme mutante ASNp A289W, une concentration massique de 149 mg/mL d' apigénine glucosylée est atteinte.
Il s'agit de concentration minimale obtenue en microplaque. Ainsi, un facteur 10 d'amélioration peut être attendu après optimisation du milieu. Exemple 5 : Analyse LC-MS des produits de 2lucosylation de l'api2énine Les neufs mutants mentionnés à l'exemple 4 peuvent être classés en 6 catégories suivant le profil de produits de glucosylation obtenu en LC-MS. La superposition des chromatogrammes UV (2340 nm) pour un représentant de chacun de ces 6 catégories de profils (respectivement ASNp A289W, DSR-S (vardelA4N S512C), ASNp F290K, ASNp F290C, ASNp F229N et ASNp I228F) est présentée en Figure 2. La superposition de ces chromatogrammes met en évidence la diversité de formes d' apigénine glucosylée à laquelle il est possible d'aboutir. Les profils LC-MS obtenus pour ASNp WT et les neuf mutants les plus efficaces mentionnés à l'exemple 4 sont représentés aux Figures 4 à 13. Les masses molaires telles que déterminées par LC-MS dans l'exemple 1 du pic d' apigénine glucosylée le plus intense pour chacun des neufs mutants sont les suivantes : Figure 5 : 432,7 g/mol Figure 6 : 432,7 g/mol Figure 7 : non déterminée Figure 8 : 432,8 g/mol Figure 9 : 432,7 g/mol Figure 10: 594,8 g/mol Figure 11: donnée non disponible Figure 12 : donnée non disponible Figure 13 : 432,7 g/mol.
L'enzyme sauvage a une très faible efficacité de glucosylation sur l'apigénine (0,5 %). En effet, si on compare le standard d'apigénine avec les produits finaux de la réaction de glucosylation, on détecte l'apparition sur le chromatogramme UV de plusieurs pics, de très faibles intensités, d'apigénine glucosylée (Figure 4).
Les mutants I228F (Figure 5), I228L (Figure 6) et I228M (Figure 7) ont des profils de produits similaires entre eux. Toutefois, des variations entre les proportions des différentes formes d'apigénine glucosylée sont observées avec le mutant I228M (Figure 7). Le groupe de mutants F229A (Figure 8) et F229N (Figure 9) présentent également des profils de produits similaires.
Enfin, le mutant F290K a un profil de produits plus complexe que celui du mutant F290C. Exemple 6: Analyse LC-MS haute résolution et LC-MS/MS des produits de 2lucosylation de l'api2énine Une étude a été réalisée, par LC-MS haute résolution et LC-MS/MS (résultats obtenus chez Imagif), sur les produits de glucosylation de l'apigénine obtenus avec les enzymes mutantes ASNp A289W et DSR-S vardelAAN S512C. Le produit de glucosylation de l'apigénine produit par le mutant d'enzyme DSR-S vardelMN S512C est une forme monoglucosylée (Figure 13) dont le temps de rétention est de 4,23 min, et dont le rapport m/z en mode électrospray positif a été déterminé à 433,1119 (Figure 14). L'analyse LC-MS/MS en mode électrospray négatif de cette forme monoglucosylée produite par DSR-S vardelA4N S512C a conduit à l'identification de deux ions majoritaires dont les rapports m/z ont été déterminés à 269.0451 et 268.9360 (Figure 15), permettant ainsi de supporter l'obtention d'une 0-glucosylation sur la position 4' du cycle B de l'apigénine. L'enzyme ASNp A289W glucosyle l'apigénine pour donner un produit monoglucosylé dont le temps de rétention est de 4,25 min (Figure 10) et dont le rapport m/z en mode électrospray positif a été déterminé à 433,1120 (Figure 16). Cette analyse a également montré que le pic de produit de glucosylation éluant à 3,68 min (Figure 10) correspond à une diglucosylation de l'apigénine. Le rapport m/z en mode électrospray positif a été déterminé à 595,1645 (Figure 17). L'analyse LC-MS/MS en mode électrospray négatif révèle que deux formes diglucosylées de l'apigénine co-éluent à 3,68 min. L'analyse LC-MS/MS en mode électrospray négatif de la première forme diglucosylée produite par ASNp A289W a conduit à l'identification de trois ions majoritaires dont les rapports m/z ont été déterminés à 353,0660, 311,0555 et 269,0451 (Figure 18). Cela permet ainsi de supporter l'obtention d'une forme diglucosylée pour laquelle chacune des positions 5 et 7 du cycle A est 0-glucosylée. L'analyse LC-MS/MS en mode électrospray négatif de la seconde forme diglucosylée produite par ASNp A289W a conduit à l'identification d'un seul ion majoritaire dont le rapport m/z a été déterminé à 269.0451 (Figure 19), permettant ainsi de supporter l'obtention d'une di-O-glucosylation sur la position 4' du cycle B, uniquement, de l'apigénine. Exemple 7 : Détermination des efficacités de 2lucosylation de la narin2énine par l'amylosaccharase recombinante de N polvsaccharea et par ses variants Les réactions en présence d'accepteur ont été mises en oeuvre en appliquant les conditions décrites dans l'exemple 1. L'efficacité de glucosylation du flavonoïde a été déterminée à partir de la formule énoncée à l'exemple 2. Les efficacités de glucosylation des flavonoïdes, exprimées en pourcentage, ont été calculées à partir des aires des pics des différents produits analysés, comme décrit dans l'exemple 1, par HPLC équipé d'un détecteur UV (2340 nm), après 24 h de réaction. Les valeurs obtenues sont reportées dans le Tableau 3. Le Tableau 3 illustre l'efficacité de glucosylation, au cours du criblage en microplaques, de la naringénine pour la forme sauvage de l'ASNp (amylosaccharase recombinante de N polysaccharea) ainsi que pour les 174 mutants de son site actif. En ordonnée : les positions de mutation de l'enzyme sauvage (ASNp WT) ; en abscisse : l'acide aminé substituant celui présent dans la séquence de l'enzyme sauvage. Ainsi, à titre illustratif, le pourcentage de 2,4 % indiqué ligne 2, colonne 2 a été obtenu à l'aide d'une enzyme muté en position 226 par la substitution de l'acide aminé R (Arginine) par l'acide aminé A (Alanine). Chaque case représente une mutation simple sur les positions R226, 1228, F229, A289, F290, 1330, V331, D394 et R446 ou une mutation double, à savoir deux mutations simples au niveau de deux de ces positions.
La barre grise dans chaque case figure le niveau d'efficacité de glucosylation par rapport au mutant le plus efficace. Les résultats obtenus pour l'enzyme sauvage sont indiqués en-haut du Tableau 3 ainsi qu'aux intersections R226R, 12281, F229F, A289A, F290F, 13301, V331V, D394D et R446R. Les résultats obtenus pour les enzymes doublement mutées sur les positions 289 et 290 sont indiquées en bas du Tableau 3. Pour la forme sauvage de l'enzyme ASNp l'efficacité de glucosylation est réduite (4.7 ± 1.7; n=16). Avec une efficacité de glucosylation de la naringénine supérieure à celle de l'enzyme sauvage (supérieure à 6,4 %), un grand nombre d'enzymes mutantes ressortent de ce criblage. Plus particulièrement, avec une efficacité de glucosylation de la naringénine supérieure à 10 %, seize enzymes mutantes ressortent plus particulièrement du criblage. Sept de ces enzymes mutantes ont en particulier une efficacité de glucosylation de la naringénine supérieure à 20 % et deux d'entre elles ont une efficacité supérieure à 50 %. Les efficacités de glucosylation pour ces seize enzymes mutées sont respectivement les suivantes : ASNp R226H : 13,5 %; ASNp R226N : 16,0 %; ASNp R2265 : 14,1 %; ASNp 1228A: 70,2 %; ASNp 1228C: 30,9 %; ASNp 1228S: 16,4 %; ASNp 1228V: 12,3 %; et ASNp A289C : 27,8%; ASNp A2891: 11,2%; ASNp A289N : 14,5 %; ASNp A289P : 10,3 %; ASNp A289V : 21,8%; ASNp F290R : 11,2%; ASNp F290V : 21,1 %; ASNp A289P/F290C : 50,9 %; ASNp A289P/F290L : 22,9 %. La glucosylation de la naringénine illustre l'intérêt d'employer des enzymes issues de l'ingénierie dirigée pour la glucosylation d'accepteurs faiblement reconnus tels que les flavonoïdes. Exemple 8: Détermination des efficacités de 2lucosylation de la narin2énine par les 2lucane-saccharases de la famille GH70 Les glucane-saccharases de la famille GH70 testées pour leur activité de glucosylation de l'apigénine sont répertoriées dans le Tableau 4. Les résultats de glucosylation de la naringénine par les glucane-saccharases de la famille GH70 sont reportés dans le Tableau 6.
Le Tableau 6 illustre l'efficacité de glucosylation de la naringénine pour la forme sauvage du variant tronqué de DSR-S (vardelA4N WT), pour la forme sauvage tronquée de l'ASR (ASR C-APY-del WT), pour la forme sauvage de l'enzyme a-1,2 BrS et pour sept mutants de DSR-S vardelA4N.
La barre grise dans chaque case figure le niveau d'efficacité de glucosylation par rapport au mutant le plus efficace. La forme sauvage du variant tronqué de l'ASR (ASR C-APY-del WT) présente une efficacité de glucosylation de 27,1 %. L'enzyme sauvage a-1,2 BrS présente une efficacité de glucosylation de la naringénine de 26,8 %. Exemple 9 : Analyse LC-MS des produits de 2lucosylation de la narin2énine Les dix-huit mutants ayant une efficacité de glucosylation de la naringénine supérieure à 10 % discutés aux exemples 7 et 8 peuvent être classés en sept catégories suivant le profil de produits de glucosylation, obtenu en LC-MS. La superposition des chromatogrammes UV (2340 nm) pour un représentant de chacune de ces sept catégories de profils est présentée en Figure 3. La superposition de ces chromatogrammes met en évidence la diversité de formes de naringénine glucosylée à laquelle il est possible d'aboutir. Les profils LC-MS obtenus pour ASNp WT, les cinq enzymes mutantes de l'ASNp et les deux glucane-saccharases de la famille GH70 les plus efficaces sont représentés aux Figures 20 à 27. Les masses molaires, telles que déterminées par LC-MS dans l'exemple 1, du pic de naringénine glucosylée le plus intense pour chacun de ces profils sont les suivantes : Figure 20 : non déterminé Figure 21: 433,6 g/mol Figure 22 : 595,5 g/mol Figure 23 : 758,4 g/mol Figure 24 : 595,5 g/mol Figure 25 : 433,8 g/mol Figure 26 : 433,8 g/mol Figure 27 : 758,0 g/mol L'enzyme sauvage (Figure 20) a une efficacité réduite de glucosylation sur la naringénine (4,7 %). En effet, si on compare le standard de naringénine avec les produits finaux de la réaction de glucosylation, on détecte l'apparition sur le chromatogramme UV de plusieurs pics, de faibles intensités, de naringénine glucosylée (Figure 20).
Les profils de glucosylation de la naringénine obtenus avec les enzymes ASNp R226N, ASNp I228A, ASNp A289C, ASNp F290V, ASNp A289P/F290C, ASR-C-APY-del ou a-1,2 BrS sont tous distincts (Figures 21 à 27). Organisme Glucane-saccharase Liaisons Références majoritaires dans le polymère naturel Albenne C. et al., I Biol. Chem., 2004 279(1) 726-734 Neisseria ASNp WT et 152 mutants Champion E., 2008. Thèse de simples et 3 mutants doubles du doctorat, INSA, Toulouse polysaccharea site actif a-(1->4) Champion C. et al., I Am. Chem. (EC 2.4.1.4) (Positions 228, 229, 289, 290, Soc., 2009, 131, 7379-7389 330, 331, 394, 446) Champion C. et al., I Am. Chem. Soc., 2012, 134, 18677-18688 EP 08290238 . 8 Tableau 1 I ASNp WI (n=16) 0,5 A C D E F G I-1 1 K L M N P Q. R 5 T V W Y R226 , 1,4 0,7 1,4 2,7 1/ 1,5 1,71,1 C,9 1,7 1,3 2,2 2,4 0,3 1,6 1,9 1,5 nd 1,1 1228 0,0 0.0 2,2 0,5 9,9 2,6 _:=3 0,8 3,6 11,1 5,4 1,q 2,4 0,2 0,0 1,7 0,2 0,9 0,2 2,0 F229 5,6 4,7 0,7 0,6 0,8 1,8 0,5 2,3 1,1 0,5 1,2 5,7 0,2 0,1 0,0 0,0 0,0 0,1 1,2 0,2 A289 0,6 1,0 0,3 0,0 0,7 0,3 0,0 0,9 0,4 0,6 0,1 0,7 0,0 0,2 0,3 0,4 0,4 0,0 22,1 0,8 F290 1,9 54 1,6 0,5 08 0,5 0,3 3,2 8,9 2,4 2,0 0,5 0,0 0,4 3,5 0,5 06 3,8 2,2 0,3 1330 0,4 0,4 0,5 0,6 0,2 0,6 0,6 08 0,2 0,0 0,0 0,1 0,2 0,2 0,0 0,0 0,0 0,2 0,0 0,0 V331 0,5 1,2 0,9 07 0,4 1,9 0,1 0,3 0,2 0,3 0,1 10 0,0 0,2 0,2 0,4 0,0 0,2 0,2 0,4 D394 3,2 0,4 0,1Ù,6 0,0 1,2 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,1 0,0 0,0 0,6 , R446 0,1 0,0 0,1 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,1 0,0 1,9 nd 0,3 0,0 nd 0,0 0,0 A289P/ A289P/ A289P/ F290C F2901 F290L 2,1 1 3,0 2,9 nd : donnée non disponible ASNp WT (n=16) 4,7 A C D E F G H 1 K L M N P Q R S T V W Y R226 2,4 3,9 3,9 1,0 I 4,6 I 4,8 13,5 4,9 1 5,1 3,7 3,5 16,0 3,1 4,7 2,5 14,1 8,7 5,9 id 2,3 1228 70,2 30,9 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 3,3 2,2 6,1 1,4 0,0 16,4 6,0 112,3 0,0 0,0 F229 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 6,9 0,0 A289 3,4 27,8 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0 e 11,2 0,0 0,0 0,0 14,5 10,3 0,0 0,0 0,0 2,2 g 0,0 0,0 ' 21,8 F290 0,0 0,0 00 0,0 0,0 ï:, 7,4 1 3,4 0,0 0,0 i 4,5 R 6,4 00 3,4 0,0 Li 11,2 2,4 0,0 ,-â, 21,1 0,0 0,0 1330 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 1,1 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 V331 0,0 5,4 0,0 0,0 0,0 6,9 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 00 0,0 It 6,8 0,0 1 6,7 7,2 4,7 0,0 3,8 D394 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 R446 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 6,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 A289P/ A289P/ A289P/ F290C F290I F290L 50,9 1,6 22,9 nd : donnée non disponible Organisme Glucane-saccharase Liaisons Références majoritaires dans le polymère naturel Leuconostoc DSR-S vardel.A4N WT a-(1->6) Moulis. C., 2006. Thèse de mesenteroides B-512F doctorat, INSA, Toulouse (EC 2.4.1.5) et Moulis C. et al., FEiVIS Microbiol. Lett, 2006 261 203-210 Leuconostoc 7 mutants de DSR-S a-(1->6) Irague R. et al., Anal. mesenteroides B-512F vardel.A4N : F3531 ou S512C Chem. 2011 83(4) 1202- (EC 2.4.1.5) ou F3 53W ou 1206 H463R/T464D/S512T ou H463R/T464V/S512T ou D460A/H463S/T464L ou D460M/H463Y/T464M/S512C Leuconostoc mesenteroides NRRL B- /a-(1->6) Joucla. G., 2003. Thèse de 1355 ASR C-APY-del doctorat, INSA, Toulouse (EC 2.4.1.140) et Joucla G et al., FEBS Lett 2006 580(3) 763-768 Tableau 4 43 0,s 2,5 I 1 1 1.3,9 Tableau 5 Le nombre indiqué dans chaque case est le pourcentage d'efficacité de glucosylation.
Tableau 6 Le nombre indiqué dans chaque case est le pourcentage d'efficacité de glucosylation 2.7,1 2E,8 0,0 0,0 0,0 OSR-S viectel_14N5 SEQUENCES : Série SEQ ID NO : 1 : (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) R226,0 SPNS QYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF SRRMDTHFPKLMNELD SVYG NNEALLPMLEMLLAQAWQSYS QRNS SLKDIDIARENNPDWIL SNKQV GGV CYVDLFA G DLKGLKDKIPYFQELGLTYLEILMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHT SNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYYIFPDRRMPD QYDRTLX IFPDQHPGGFS QLED GRWVWTTFNSF QWDLNY SNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVAFIWKQMGTS CENLPQAHALIRAFNAVM RIAAPAVFFK SE AIVHPD QVVQYI GQ DEC QIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWTF ADEDAAYLGI S GYDHRQFLNRFFVNRFDGSF ARGVPF QYNPS TGD CRV S GT AAALVGL AQDDPHAVDRIKLLYSIALSTGGLPLIYLGDEVGTLNDDDWSQDSNKSDDSRWAHRPR YNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQ SNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNNA LLAFGNF SEYPQTVTAHTLQ AMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTL QPYQVMWLEIA Série SEQ ID NO : 2: (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) I228X2) SPNS QYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF S RRMD THFPKLMNELD S VY G NNEALLPMLEMLLAQAWQSYS QRNS SLKDIDIARENNPDWIL SNKQV GGV CYVDLFA G DLKGLKDKIPYFQELGLTYLEILMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHT SNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYYIFPDRRMPDQYDRTLRE X2FPDQHPGGFS QLEDGRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDIL RMDAVAFIWKQMGT S CENLP Q AHALIRAFNAVMRIAAPAVFFK S EAIVHPD QVV QYI G QDECQIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWT FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LA QDDPHAVDRIKLLYSIAL ST GGLPLIYL GDEVGTLNDDDWS QDSNKSDDSRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNFSEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA Série SEQ ID NO : 3 : (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) F229X3) SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF SRRMD THFPKLMNELD S VY G NNEALLPMLEMLLAQAWQSYSQRNS SLKDIDIARENNPDWILSNKQVGGVCYVDLFAG 5 DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYY1FPDRRMPDQYDRTLREI X3PDQHPGGF S QLEDGRWVWTTFNSF QWDLNY SNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVAFIWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVM RIAAPAVFFK SE AIVHPD QVVQYIG Q DEC QIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWTF 10 ADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVGL A QDDPHAVDRIKLLY SIAL S T GGLPLIYL GDEVGTLNDDDW S QD SNKSDD SRWAHRPR YNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQ SNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNNA LLAFGNF SEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA 15 SEQ ID NO: 4: (Protéine = séquence mutée de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) A289X4) SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF SRRMDTHFPKLMNELDSVYG NNEALLPMLEMLLAQAWQSYSQRNS SLKDIDIARENNPDWILSNKQVGGVCYVDLFAG 20 DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYY1FPDRRMPDQYDRTLREI FPDQHPGGF SQLEDGRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVX4FIWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVMRIAAPAVFFKSEAIVHPDQVVQYIG QDEC QIGYNPL QMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWT 25 FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LAQDDPHAVDRIKLLYSIAL ST GGLPLIYLGDEVGTLNDDDWS QD SNKSDD SRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNF SEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA 30 Série SEQ ID NO : 5 : (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) F290X5) SPNS QYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF S RRMD THFPKLMNELD S VY G NNEALLPMLEMLLAQAWQSYS QRNS SLKDIDIARENNPDWIL SNKQV GGV CYVDLFA G DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYYIFPDRRMPDQYDRTLREI FPDQHPGGF S QLEDGRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVAX5IWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVMRIAAPAVFFKSEAIVHPDQVVQYIG QDECQIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWT FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LAQDDPHAVDRIKLLYSIALSTGGLPLIYLGDEVGTLNDDDWSQDSNKSDDSRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNF SEYPQTVTAHTLQ AMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA Série SEQ ID NO : 6: (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) V331X6) SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQFSRRMDTHFPKLMNELDSVYG NNEALLPMLEMLLAQAWQSYSQRNSSLKDIDIARENNPDWILSNKQVGGVCYVDLFAG DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVSSYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYYIFPDRRMPDQYDRTLREI FPDQHPGGFSQLEDGRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVAFIWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVMRIAAPAVFFKSEAIX6HPDQVVQYIG QDECQIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWT FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LAQDDPHAVDRIKLLYSIALSTGGLPLIYLGDEVGTLNDDDWSQDSNKSDDSRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHMIAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNFSEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA30 Série SEQ ID NO : 7 : (Protéines = séquences mutées de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) D394X9 SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF SRRMDTHFPKLMNELDSVYG NNEALLPMLEMLLAQAWQSYSQRNS SLKDIDIARENNPDWIL SNKQV GGV CYVDLFA G DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVS SYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYY1FPDRRMPDQYDRTLREI FPDQHPGGF S QLEDGRWVWTTFNSFQWDLNY SNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVAFIWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVM RIAAPAVFFKSEAIVHPDQVVQYIGQ DEC QIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDX7IGWT FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LAQDDPHAVDRIKLLYSIALSTGGLPLIYLGDEVGTLNDDDWSQDSNKSDDSRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHM IAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNF SEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA SEQ ID NO: 8: (Protéine = séquence mutée de la glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) R446Q) SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQF SRRMDTHFPKLMNELDSVYGNNEALLP MLEMLLAQAWQ SYSQRNS SLKDIDIARENNPDWILSNKQVGGVCYVDLFAGDLKGLK DKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVSSYRDVNPALGTIGDLREVIAALHEA GISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYY1FPDRRMPDQYDRTLREIFPDQHP GGF S QLED GRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILRMDAVAF IWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVMRIAAPAVFFKSEAIVHPDQVVQYIGQDECQIGY NPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWTFADEDAA YLGI S GYDHRQFLNRFFVNRFD GSFARGVPF QYNP ST GD C QV S GTAAALVGLAQDDPH AVDRIKLLYSIAL ST GGLPLIYLGDEVGTLNDDDW S QD SNKSDD SRWAHRPRYNEALY A QRNDP S T AA GQIYQDLRHM IAVRQ SNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNNALLAFGN F SEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA30 Série SEQ ID NO : 9 : (Protéines = séquences doublement mutées de 1(1 glucane-saccharase ASNp (Amylosucrase Neisseria polysaccharea) A289P/F290X8) SPNSQYLKTRILDIYTPEQRAGIEKSEDWRQFSRRMDTHFPKLMNELDSVYG NNEALLPMLEMLLAQAWQSYSQRNSSLKDIDIARENNPDWILSNKQVGGVCYVDLFAG DLKGLKDKIPYFQELGLTYLHLMPLFKCPEGKSDGGYAVSSYRDVNPALGTIGDLREVI AALHEAGISAVVDFIFNHTSNEHEWAQRCAAGDPLFDNFYYIFPDRRMPDQYDRTLREI FPDQHPGGFSQLEDGRWVWTTFNSFQWDLNYSNPWVFRAMAGEMLFLANLGVDILR MDAVPX8IWKQMGTSCENLPQAHALIRAFNAVMRIAAPAVFFKSEAIVHPDQVVQYIG QDECQIGYNPLQMALLWNTLATREVNLLHQALTYRHNLPEHTAWVNYVRSHDDIGWT FADEDAAYLGISGYDHRQFLNRFFVNRFDGSFARGVPFQYNPSTGDCRVSGTAAALVG LAQDDPHAVDRIKLLYSIALSTGGLPLIYLGDEVGTLNDDDWSQDSNKSDDSRWAHRP RYNEALYAQRNDPSTAAGQIYQDLRHMIAVRQSNPRFDGGRLVTFNTNNKHIIGYIRNN ALLAFGNFSEYPQTVTAHTLQAMPFKAHDLIGGKTVSLNQDLTLQPYQVMWLEIA SEQ ID NO: 10 : (Protéine = séquence mutée de la glucane-saccharase tronquée DSR-S vardelA4N - S512C) TQQVSGKYVEKDGSWYYYFDDGKNAKGL STIDNNIQYFYESGKQAKGQY VTIDNQTYYFDKGSGDELTGLQ SIDGNIVAFNDEGQQIFNQYYQSENGTTYYFDDKGHA ATGIKNIEGKNYYFDNLGQLKKGF SGVIDGQIMTFDQETGQEVSNTTSEIKEGLTTQNTD Y SEHNAAHGTD AEDFENID GYLTA S SWYRPTGILRNGTDWEPSTDTDFRPIL SVWWPD KNT QVNYLNYMADL GFI S NAD S FET GD S Q S LLNEA S NYVQKS IEM KI S AQ Q STEWLKD AMAAFIVAQPQWNET SEDMSNDHLQNGALTYVNSPLTPDANSNFRLLNRTPTNQTGEQ AYNLDNSKGGFELLLANQEDNSNVVVEAE QLNWLYYLMNF GTITANDADANFDGIRV DAVDNVDADLLQIAADYFKLAYGVDQNDATANQHLSILEDWSHNDPLYVTDQGSNQL TMDDYVHTQLIWSLTKS SDIRGTMQRFVDYYMVDRSNDSTENEAIPNYSFVRAHDCEV QTVIAQIVSDLYPDVENSLAPTTEQLAAAFKVYNEDEKLADKKYTQYNMASAYAMLLT NKDTVPRVYYGDLYTDDGQYMATKSPYYDAINTLLKARVQYVAGGQ SMSVDSNDVL T SVRYGKDAMT ASDT GT SETRTEGIGVIV SNNAEL QLED GHTVTLHMGAAHKNQ AYR ALLSTTADGLAYYDTDENAPVAYTDANGDLIFTNESIYGVQNPQVSGYLAVWVPVGA Q QD QD ARTA S D TTTNT S DKVFH S NAALD S QVIYE GF S NF Q AFATD S S EYTNVVIA QNA D QFKQWGVT SF QLAPQYRS STDTSFLDSIIQNGYAFTDRYDLGYGTPTKYGTADQLRD AIKALHASGIQAIADWVPDQIYNLPEQELATVTRTNSFGDDDTDSDIDNALYVVQSRGG GQYQEMYGGAFLEELQALYPSLFKVNQISTGVPIDGSVKITEWAAKYFNGSNIQGKGA GYVLKDMGSNKYFKVV SNTED GDYLPKQLTNDL SETGFTHDDKGIIYYTL S GYRAQNA FIQDDDNNYYYFDKTGHLVTGLQKINNHTYFFLPNGIELVKSFL QNED GTIVYFDKKGH QVFDQYITDQNGNAYYFDDAGVMLKSGLATIDGHQQYFDQNGVQVKDKFVIGTDGYK YYFEPGSGNLAILRYVQNSKNQWFYFDGNGHAVTGFQTINGKKQYFYNDGHQSKGEFI DAD GDTFYT S ATD GRLVTGVQKINGITYAFDNTGNLITNQYYQLADGKYMLLDD S GRA KT GFVL QD GVLRYFD QNGE QVKDAIIVDPD TNL S . V Ô1V2DIGIMINGaô-O S MIO S VNIÀa-O IVHAAÔNÙÀVIVIAIN NINVNAa-OÀdVOSJADMILL21dADIVÙÀGAANIAAdSJSXÙGIMÀÙIONAIVIÀMÔN DÙVGSHÔNIAdAIÙÙNÀNIAÀGAJÙVOVa-OÀdVINANOGaIÙXVAIIVNIVAAÙGJI VLIV2DIGIMI S Ô-ONIKEIÀÀINDAT\IS ÀVNS IHAÀ21-ONV SUL GOVMNVO SINIÀdVN1 GUIÙ S SNAMNGGNIAIVÔTAIIIISIV2IS GAMAÙ ÔNNIIMIA1Ù VO ÀV GÔO ÔNIAÙ 0 AHÔ-ONÀGVINOMSOÙ921ÀdVNITIOGN2TONSNAKIÙÔNIMIAÔNÙVIVHNGAM AI ÙDOIAAÙ S MAIO ô GlaIÀÙ ô S AIAI ÔNNÀNINVIO V1NÀO dô2lÀdVNITIO S INAJANÔNINGHLININIVÔS GIMÀÙIONJSIISMGNOSANVADVILAÙÙ-ONÀÙNSIAID VIÙÀDNAÙÀdVNITIDGN2INVÀS IÔNININALLIALLIV2IS GAMINÙDÙIGDOVILII NA1S ADN S GIÀÙXIAÙ AÔNNNÀS ÇZ JIDDIGIAdADIÙAIIGNISIIGSdTIJNY\INÙNSANJÀÙDIÙMGNIAÀDIAIOIDIANION INÀNVSMaNDIIGIGlaV2IINS GAIÀÀASOIONDOÀNNAGÀaÀNINSXJIGdÀVVNING 1JaDO ÀNNÙÀNDIJOAINAAMAIÙ IO ALES INNONA1GA2INI S VAaN-OdINÀIÙNVAAG VINAÙIAIOS SITIÔNIVÙXIGaGNIOÀNIdNanIGÀXGLIVAONGIIS GIJINGÙ S SXÀÙ d viNaJsnomSNJIGVNGVIAAKIÀT\RINIdiNdôJNSJVaMINIS G1VVNS H1ANO CNA OZ sNascrILXVGÙÙaIVITMAAWSIÀ-DSAaSKInHANINIÙGKIGÙNSJAIGONGGINI AdVNNS S sxsanKatITTIVXÀMÔN21HVVOINWILANS GNSINISdGNVIAADIOÙIXI aNIDIGNIVITAIVONOJXASKIAONGGANIIÙDOVAJÙNXVAWIVILLGJKISÔNÔTAIÀÙ GGÔMAIG9 ÀÀMMAIGNNITYIVÀV S dINÀÙNÀNNaDRIÙ GaÀKIS IDNÙIÙ adIJNI MGVOIVOELWVOANGÙIGNGHVHIIS ÀNdWAI\lai SNNVXGVEINGO aNGÙEINS I DdONEIS)DINVaXIGSafIVGÙHLLLLOVGIOVaNISIHVNVaNGNNGAOÀVVUIÀGÀ IXÙIIGNSAJGAVGRIISCHNSNNaNDÙIIISOJNTIÀKPANIGaVÙAIdNISNGAGNVTI JOEISNGVNXÀNSNANdEIGSNÙÀNIÀDOÙJdOIHÀaSGSNMIÀÙÙNLISdÙDGIILLTI ANNIMOELNOIÙSDINanewôôvvaNT-nôGINIGÀAVSÔNIADal\IÙWIWIÀNAÙIG NNdMMAIrld2IJGNGISVAMOELOHSIIÙVd21)011IaVEInGNINNJNS aSINNAANH 01 ÙIÀGNINNISdVIAIIIÀÙÀSDNDIGNGJÀÀDIDGININVÔONIÙOIVIGNINDNI9K19 NIVaNNNOEUÀANGONDIÀÙDIdVINAASNINIONNOaJÀÀLLOGIIVIHONIÙaOIH aGJÀÙHONAGNIONIVN-0ÔNGIÀVAUSIaNIOGNGNIIWVÀXONIAVNJVIVNOS VGJÀÀIAOGASXIÙIINVÔNOISIGJÀÙINOaAGKIONAdôNGHS GAÀÔMIAIDamsx SON S DILMIOND S NNGJÀÀVNGGINNIa-ONI ÙÀO INdGJÀÙ amôr-io S AÔNO S ô GIÀAJÙ-OGNaAÀÙDONISINIadIASNSdAGIINAdVIISaNAONGSNSNIÙNNOÙGd1 ÙVNIdÙIGÔNGGVNIINVGV S 1GOVNÙVS AôdAda)DIGIAaNIIdNGÙDXÔDEIGÙ ô SÙLLOAdIÙIGVSALLAVSADINAVJVIVVVAMSNOSNKDDRIIIHNUIA1 (vg z'J-v asmumpans-aunang nj ap amanbas = aumeom) : : om ai Ôqs TZ8810E

Claims (17)

  1. REVENDICATIONS1. Procédé de fabrication de dérivés de flavonoïde 0-a-glucosylés comprenant au moins une étape d'incubation d'une glucane-saccharase avec un flavonoïde et au moins un saccharose, dans lequel: (A) ledit flavonoïde est de formule (I) suivante : dans laquelle le cycle C représente un cycle choisi dans le groupe constitué des cycles de formule (II), (III), (IV) ou (V) suivantes : (I I I) R3 R3 (IV) (V) dans lesquels : l'un des groupements RI, R2 OU R3 représente un cycle B de formule (VI) suivante : Rio R12 dans lequel : (a) un seul des groupements choisi parmi R8, R9, R10, R11 et R12 représente un groupement hydroxyle, les autres groupements parmi R8, R9, R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3 ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; ou (b)R8 et un seul des groupements choisis parmi R10, R11 et R12 représentent un groupement hydroxyle, R9 et les autres groupements parmi R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (C1-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU(c)R9 et un seul des groupements choisis parmi R11 et R12 représentent un groupement hydroxyle, les groupements R8, R10, et l'autre groupement parmi R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU Gen) et R12 représentent un groupement hydroxy, les groupements R8, R9, et R11, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ;-SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; OU (e)R8, R10 et R12 représentent un groupement hydroxy, les groupements R9 et R11, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (CIC3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en Ci-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; - CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en Ci-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; les groupements RI, R2 et R3 qui ne représentent pas un cycle B de formule (VI), identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un alkyle en Ci-C6, linéaire ou ramifié ; une amine en C1-C3 ; un groupement -COOH ;-C(0)0(C2-C3) ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; R1', R2' et R3', identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C2-C3 ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; ou les groupements R1 et R1' lorsque R1 ne représente pas un cycle B de formule (VI), ou R2 et R2' lorsque R2 ne représente pas un cycle B de formule (VI), ou R3 et R3' lorsque R3 ne représente pas un cycle B de formule (VI), forment ensemble un groupement =0; R4, R5, R6 et R7, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en Ci-Cio linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en C1-C3 ; un groupement -OH ; -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en C1-C3 ; une imine en C1-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en C1-C3 ; un thioalkyle en C1-C3; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; et (B) ladite glucane-saccharase étant choisie dans le groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, E, F, G, H, I, K, M, N, P, Q, S, T, V et Y; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 2, ladite séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, F, G, H, K, L, M, N, P, S, V et Y ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 3, ladite séquence ayant un acide aminé X3 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, G, I, K, M, N et W ;- une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO : 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la séquence SEQ ID NO : 5, ladite séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, D, G, I, K, L, M, R, V et W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 6, ladite séquence ayant un acide aminé X6 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, G, Q, S et T; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 7, ladite séquence ayant un acide aminé X7 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A et G; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 8; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO : 9, ladite séquence ayant un acide aminé X8 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I et L ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 10 ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 11.
  2. 2. Procédé selon la revendication 1, dans lequel un seul des groupements choisi parmi R8, R9, R10, R11 et R12, de préférence R10, représente un groupement hydroxyle, les autres groupements parmi R8, R9, R10, R11 et R12, identiques ou différents, étant choisis dans le groupe comprenant un atome d'hydrogène ; un groupement hydrocarboné en C1-C10 linéaire ou ramifié, saturé ou insaturé, éventuellement interrompu par au moins un hétéroatome choisi parmi 0, N ou S; un atome d'halogène ; un aryle en C5-C9 ; un hétérocycle en C4-C9 ; un groupement (Ci-C3)alcoxy ; un acyle en C2-C3 ; un alcool en Ci-C3 ; un groupement -COOH ; -NH2 ; -CONH2 ; -CHO ; -SH ; -C(0)0(C2-C3) ; une amine en Ci-C3 ; une imine en Ci-C3 ; un groupement nitrile ; un halogénoalkyle en Ci-C3 ; et un thioalkyle en C1-C3 ; un groupement -C(W) ; et un groupement -0(W) ; W représentant une chaîne constituée de 1 à 6 glycoside(s) ; les groupements R8, R9, R11 et R12 représentant de préférence des atomes d'hydrogène.
  3. 3. Procédé selon la revendication 2, dans lequel R10 représente un groupement hydroxyle et R8, R9, R11 et R12 représentent des atomes d'hydrogène.
  4. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel le cycle C représente un cycle de formule (II) ou (IV) telles que définies en revendication 1.
  5. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel R1 représente un cycle B de formule (VI) telle que définie en revendication 1.
  6. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel R1', R2 et R2' représentent des atomes d'hydrogène, et R3 et R3' forment ensemble un groupement =0.
  7. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel deux des groupements R4, R5, R6 et R7, de préférence R4 et R6, représentent un groupement hydroxyle, les deux autres groupements étant tels que définis en revendication 1.
  8. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel R5 et R7 représentent des atomes d'hydrogène.
  9. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ledit flavonoïde est de formule (VII) ou (VIII) suivantes : 15 OH
  10. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel la 20 glucane-saccharase est choisie dans le groupe comprenant : - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 1, ladite séquence ayant un acide aminé X1 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de H, N ou S; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 2, ladite 25 séquence ayant un acide aminé X2 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de A, C, F, L, M, S ou V ; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 3, ladite séquence ayant un acide aminé X3 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué de A et N;- une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 4, ladite séquence ayant un acide aminé X4 représentant une acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, I, N, P, V ou W; - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 5, ladite séquence ayant un acide aminé X5 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C, K, R ou V ; et - une séquence ayant au moins 80 % d'identité avec la SEQ ID NO: 9, ladite séquence ayant un acide aminé X9 représentant un acide aminé choisi dans le groupe constitué de C ou L.
  11. 11. Dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé obtenu par le procédé tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 10.
  12. 12. Composé de formule (IX) suivante : 13 0 (IX) dans laquelle (i) X13 représente une chaîne constituée d'au moins deux groupements a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en C1-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, ou (ii) X13 représente un seul groupement a-glucoside, et X14 et X15, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en C1-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, à la condition qu'au moins l'un de X14 et X15 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside.
  13. 13. Composé de formule (X) suivante : 0 16 dans laquelle X16 représente une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside, et X17 et X18, identiques ou différents, sont choisis dans le groupe comprenant un atome hydrogène ; un alkyle en C1-C6, linéaire ou ramifié ; un groupement -C(0)0(C2-C3) ; et une chaîne constituée de 1 à 600.000 groupements a-glucoside.
  14. 14. Utilisation cosmétique, à titre d'agent antioxydant, d'au moins un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé tel que défini dans l'une des revendications 12 et 13.
  15. 15. Dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé tel que défini dans l'une des revendications 12 et 13, pour son utilisation pharmaceutique dans le traitement et/ou la prévention de l'hépatotoxicité, des allergies, de l'inflammation, des ulcères, des tumeurs, des troubles ménopausiques, ou des maladies neurodégénératives.
  16. 16. Dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé tel que défini dans l'une des revendications 12 et 13, pour son utilisation pharmaceutique à titre de veinotonique.
  17. 17. Utilisation d'un dérivé de flavonoïde 0-a-glycosylé tel que défini dans l'une des revendications 12 et 13, à titre d'agent photovoltaïque, d'agent répulsif des insectes, d'agent de blanchiment, d'agent pesticide, fongicide et/ou bactéricide.
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