[go: up one dir, main page]

FI95607B - Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi - Google Patents

Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi Download PDF

Info

Publication number
FI95607B
FI95607B FI942639A FI942639A FI95607B FI 95607 B FI95607 B FI 95607B FI 942639 A FI942639 A FI 942639A FI 942639 A FI942639 A FI 942639A FI 95607 B FI95607 B FI 95607B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
pulp
hexenuronidase
activity
preparation
enzyme
Prior art date
Application number
FI942639A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI942639A0 (fi
FI95607C (fi
Inventor
Tapani Vuorinen
Maija Tenkanen
Liisa Viikari
Johanna Buchert
Matti Siika-Aho
Anita Teleman
Michael Bailey
Original Assignee
Valtion Teknillinen
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Valtion Teknillinen filed Critical Valtion Teknillinen
Publication of FI942639A0 publication Critical patent/FI942639A0/fi
Priority to FI942639A priority Critical patent/FI95607C/fi
Priority to DE69524408T priority patent/DE69524408D1/de
Priority to AU26172/95A priority patent/AU2617295A/en
Priority to EP95920911A priority patent/EP0764226B1/en
Priority to ES95920911T priority patent/ES2169134T3/es
Priority to PT95920911T priority patent/PT764226E/pt
Priority to US08/750,069 priority patent/US6830655B2/en
Priority to PCT/FI1995/000317 priority patent/WO1995033883A1/en
Priority to AT95920911T priority patent/ATE210216T1/de
Priority to CA002191859A priority patent/CA2191859A1/en
Publication of FI95607B publication Critical patent/FI95607B/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI95607C publication Critical patent/FI95607C/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01031Beta-glucuronidase (3.2.1.31)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/14Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C5/00Other processes for obtaining cellulose, e.g. cooking cotton linters ; Processes characterised by the choice of cellulose-containing starting materials
    • D21C5/005Treatment of cellulose-containing material with microorganisms or enzymes
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Paper (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)

Description

95607
Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi
Esillä oleva keksintö koskee patenttivaatimuksen 1 johdannon mukaista menetelmää 5 selluloosamassojen, etenkin sulfaattimenetelmällä ja jatketuilla keittomenetelmillä valmistettujen selluloosamassojen, käsittelemiseksi.
Keksintö koskee myös patenttivaatimuksen 20 johdannon mukaista entsyymivalmistetta sekä menetelmää entsyymiä tuottavien kantojen eristämiseksi kuten myös menetelmää 10 halutun entsyymin valmistamiseksi.
Perinteisissä kloorivalkaisuissa selluloosamassojen jäännösligniini liuotetaan kloorin tai klooridioksidin avulla. Nykyisin massat valkaistaan usein happikaasulla, vetyperoksidilla, otsonilla tai yhdistetyillä valkaisusekvensseillä, jotka sisältävät näitä aineita sekä 15 yllä mainittuja, perinteisiä valkaisukemikaaleja. Hemisellulaaseilla tai ligniiniä pilkkovilla entsyymeillä suoritettuja entsyymikäsittelyjä on yhdistetty perinteisiin ja uusiin val-kaisusarjoihin, jolloin on saatu aikaan kuitujen valkaistavuuden paraneminen. Valkaista-vuuden paranemiseen tarvittavat entsyymimäärät ovat pieniä ja entsyymikäsittely voidaan helposti sisällyttää massan valmistusmenetelmiin.
20
Tavanomaisesti entsyymeillä on käsitelty suoraan kuituja, jotka ovat peräisin sellunkeit-toprosesseista. Aiemmassa PCT-patenttihakemuksessa, joka on julkaistu numerolla WO 93/11296, on osoitettu, että entsyymien mahdollisuudet vaikuttaa tehokkaasti massoihin täysin perustuvat selluloosakuitujen ominaisuuksiin. Täten esimerkiksi ksy-25 lanaasit eivät toimi suotuisimmin, kun pintavaraus, se on zeta-potentiaali, on hyvin alhainen. Tämän lisäksi alhaisessa pH-arvossa käsitelty sulfaattimassa, jossa massan hemiselluloosien karboksyyliryhmät ovat happamessa muodossa (eivätkä sisällä metalli-vastaioneja), on jokseenkin huono entsyymikäsittelyjen (hemisellulaasikäsittelyjen) substraatti. Poistamalla entsyymien avulla hemiselluloosien karboksyylihapporyhmiä 30 sellumassoista, voidaan muuttaa sellumassan sekä pintavaraus että metalli-ionipitoisuut-ta. Aiemman patenttihakemuksemme menetelmän mukaan metyyliglukuronihapporyhmät voidaan poistaa siten, että sellumassaa käsitellään entsyymi valmisteella, jolla on väittä- 2 95607 mätöntä glukuronidaasientsyymiaktiivisuutta. Tämä aktiivisuus pilkkoo ksylaaniketjun ksyloosiyksikön ja karboksyylihapposivuketjun välisen sidoksen, jolloin karboksyylihap-poiyhmä poistuu.
5 Vaikka glukuronidaasientsyymikäsittelyllä on saatu jokseenkin lupaavia tuloksia, vielä enemmän on parannettava sellaisten massojen, erityisesti sulfaattimassojen sekä joidenkin muunnetun (jatketun) keiton avulla saatujen massojen, modifiointia, jotka sisältävät erittäin pieniä määriä glukuronihappoja.
10 Esillä olevan keksinnön yhteydessä on havaittu yllättäen, että ksyloosiyksikön happamet sivuketjut eivät koostu yksinomaan 4-O-metyyli-a-D-glukuronihaposta tai a-D-gluku-ronihaposta, kuten nykyisin arvellaan, vaan tavanomaisen sulfaattimenetelmän samoin kuin muutamien uusien, jatkettujen keittomenetelmien yhteydessä, olennainen osa 4-metyyliglukuronihappoa (seuraavassa lyhennetty MeGluA.ksi) itse asiassa muutetaan 15 tyydyttymättömäksi johdannaisekseen, nimittäin 4-deoksi-a-L-treo-4-hekseeniuroniha-poksi tai hekseeniuronihapoksi (HexA). Tämä karboksyylihappo voi esiintyä valkaisu-olosuhteiden mukaan myös valkaistussa massassa.
Edellä esitettyihin havaintoihin viitaten, esillä oleva keksintö saa aikaan sellaisen uuden 20 ratkaisun teollisten massojen modifioimiseksi, joka perustuu ajatukseen poistaa selektiivisesti ainakin osa hekseeniuronihapporyhmistä, jotka sisältyvät massaan.
Täsmällisemmin sanottuna esillä olevalle keksinnölle on tunnusomaista se, mikä on esitetty patenttivaatimuksen 1 tunnusmerkkiosassa.
25
Esillä olevan keksinnön entsyymivalmisteelle on tunnusomaista se, mikä on esitetty patenttivaatimuksen 17 tunnusmerkkiosassa. Menetelmälle heksenuronidaasiaktiivisuutta tuottavien mikro-organismikantojen eristämiseksi on tunnusomaista se, mikä on esitetty patenttivaatimuksen 22 tunnusmerkkiosassa ja menetelmälle heksenuronidaasin tuottami-30 seksi on tunnusomaista se, mikä on esitetty patenttivaatimuksen 25 tunnusmerkkiosassa.
It 3 95607 Määritelmät
Esillä olevassa keksinnössä termiä "glukuronihapporyhmät" käytetään 4-O-metyyli-a-D-glukuronihapon tai α-D-glukuronihapporyhmien lyhennyksenä. "Hekseeniuronihappo-5 ryhmät" on 4-deoksi-a-L-treo-4-hekseeniuronihapon lyhennys.
Termillä "entsyymivalmiste" nimitetään mitä tahansa tuotetta, joka sisältää ainakin yhtä entsyymiä. Tällainen entsyymivalmiste voi siten olla kasvatusliuos, joka sisältää yhtä tai useampaa entsyymiä, tai eristetty entsyymi tai yhden tai useamman entsyymin seos.
10 Entsymaattisen aktiivisuuden lisäksi valmiste edullisesti sisältää sellaisia apuaineita, joita yleisesti käytetään paperi- ja selluteollisuun käyttöön tarkoitetuissa entsyymival-misteissa. Nämä apuaineet koostuvat tyypillisesti esimerkiksi puskurointi- ja stabilointiaineista.
15 Termi "uronidaasi" tässä yhteydessä käytettynä kattaa sekä hekseeniuronidaasin että glukuronidaasin.
"Oleellinen määrä hekseeniuronidaasia" tai "oleellinen määrä glukuronidaasia" ilmaisee, että entsyymivalmisteen uronidaasi- tai glukuronidaasiaktiivisuudet ovat suhteellisen 20 korkeat. Toisin sanoen, määrät ovat riittävät, jotta saadaan aikaan happamien ryhmien ja ksyloosiyksiköiden välisten sidosten hydrolyysi. Entsyymivalmisteen uronidaasiaktii-visuuksien tulisi erityisesti olla niin korkeita, että oleellinen osa substraatin uroni-happoryhmiä voidaan poistaa saattamalla substraatti kosketuksiin entsyymin kanssa.
25 Esillä olevassa keksinnössä termiä "kraftprosessi" käytetään "sulfaattiprosessin" synonyyminä, ja se merkitsee keittomenetelmää, jonka pääasialliset keittokemikaalit koostuvat natriumsulfidista ja natriumhydroksidista. "Uudet" ja "muunnetut" (eli modifioidut) keittomenetelmät tarkoittavat sellunkeittomenetelmiä, jotka perustuvat tavanomaisen sulfaattikeiton jatkamiseen, kunnes lignoselluloosamateriaalin kappaluku on 30 laskenut alle arvon noin 20. Näihin menetelmiin liittyy tyypillisesti happikäsittely.
4 95607
Kuvio esittää metyyliglukuronihapporyhmien muuttumista hekseeniuronihapporyhmiksi sellunkeittoajan funktiona.
Esillä olevan keksinnön ominaispiirteet ja edut kuvataan tarkemmin seuraavassa yksi-5 tyiskohtaisessa selityksessä ja sovellutusesimerkeissä.
Esillä olevassa keksinnössä hekseeniuronihappojen olemassaolo on osoitettu - hydrolysoimalla ksylaanipolymeeriä ksylanaasilla, kun männystä keitetään massaa kraftprosessin avulla, ja 10 - erottamalla happamet oligosakkaridit neutraaleista ja - analysoimalla happamet oligosakkaridit ‘Hilla ja 13C NMR.llä.
Käytettyä valmistustapaa kuvataan yksityiskohtaisemmin työskentelyesimerkeissä 1 ja 2.
15 NOESY- ja vastaavasti HMBC-menetelmillä saatujen kaksiulotteisten NMR-ristipiikkien perusteella päätellään, että hekseeniuronihappo on kiinnittynyt a-(l-*2)-sidoksella sisäiseen ksy loosiin.
On havaittu, että tavanomaisen sulfaattikeiton jälkeen ksy läänin karboksyylihapporyh-20 mistä noin 65 prosenttia muodostuu hekseeniuronihaposta, kun kysymys on koivun kraftmassasta. Mäntysulfaattimassan kohdalla vastaava prosenttiluku on noin 80. Jotkut uudet keittomenetelmät, erityisesti EMCC, MCC/02 ja jatkuva sellunkeitto, joka on yhdistetty happikäsittelyyn, tuottavat sellua, joissa karboksyylihapporyhmät lähes yksinomaan muodostuvat hekseeniuronihapoista. Kuviossa on esitetty kokeellisia tuloksia, 25 jotka osoittavat metyyliglukuronihapon muuttumisen hekseeniuronihapoiksi kraftprosessin aikana. Kuviosta käy ilmi, että mitä pitempi keittoaika, sitä suurempi osa karbok-syylihapporyhmistä muodostuu hekseeniuronihapporyhmistä. Taulukko 1 esittää tulokset, jotka koskevat erilaisten massojen HexA- ja MeGlcA-tuIoksia.
it 5 95607
Taulukko 1. T. reesei:n ksylanaasilla (pl 9,0) saatujen teollisten havupuumasso-jen hydrolyysituotteiden koostumus
Keittomenetel- Kappa Ksyloosi MeGlcA HexA Xyl (% 5 mä (SCAN) (%ofd.w.) (mol-%) (mol-%) teoreetti sesta)
Jatkettu erä + 13,10 6,3 nd 0,8 9,8 AQ______ EMCC_ 18,90 63__nd__2,8 9,3_
Erä__26,80 8,5__0A__AA__10,4 10 Super-batch/02 6,40 5,6 nd 0,4 5,8 MCC/Q2__11,80__83__nd__AA__83_
Jatkuva/02 20,30 8,8 nd 5,5 8,2 AQ = antrakinoni 15 EMCC = Extended modified continuous cook (jatkettu, modifioitu jatkuva keitto) nd = ei osoitettu
Tavanomaisen hiilihydraattianalyysin yhteydessä suoritettava hapan hydrolyysi hajottaa hekseeniuronihapon, mikä osaltaan selittää sen, miksi mainittua happoa ei ole aiemmin 20 havaittu tavanomaisen hiilihydraattianalyysin yhteydessä.
Keksintöön liittyvät lisähavainnot osoittavat, että uronihappojen kahden tyypin suhteelliset määrät valkaistussa massassa vaihtelevat valkaisuolosuhteiden mukaan, kuten taulukossa 2 on esitetty.
25 6 95607
Taulukko 2. Valkaisun vaikutus havupuusulfaattimassan (kappaluku 25,9) pintaksylaanin koostumukseen 5 Valkaisu- Vaaleus HexA MeGluA Ara Xyl sekvenssi (mol-%) (mol-%) (mol-%) (mol-%) _Q__nd__4^8__09__05__86,8 QO__408__08__00__05__86,6 QOQZ__605__03__00__06__90,1 10 QOQZE__608__06__00__7,9 89,6 QOQZEP 80,4__06__01__08__89,5 QOQP__705__4/7__U__04__86,8 QOQPZ__804__03__02__04__91,9 QOQPZE 80,8__02__U__7,4 91,3 15 QOQPZEP 88,5__03__03__06__90,8 QOQPPP 82,2__43__02__03__87,0 QOQDEDED 88,1__OO__1,2 7,5 90,8 Q = EDTA-käsittely, O = happi, P = peroksidi, E = alkalinen uutto, D = kloori-20 dioksidi.
Kuten edellä esitetyistä tuloksista käy ilmi, siinä tapauksessa, että valkaisussa käytetään peroksidia tai happea, hekseeniuronihappo muodostaa ksylaanin ksyloosiyksiköiden happamien sivuketjujen pääosan. Hapetus, esimerkiksi klooridioksidilla tai otsonilla, 25 tuhoaa valkaisun aikana hekseeniuronihapon.
Hekseeniuronidaasia tuottavien kantojen eristäminen ja entsyymin tuottaminen
Esillä olevan keksinnön mukaan ainakin osa hekseeniuronihapporyhmistä poistetaan 30 massasta selektiivisesti. Tämä selektiivinen poisto voidaan aikaansaada entsymaattisesti siten, että käytetään hekseeniuronidaasia, tai kemiallisesti käyttämällä aineita, jotka 7 95607 selektiivisesti reagoivat kaksoissidoksen kanssa vaikuttamatta huomattavasti molekyylin jäljelle jäävään osaan. On edullista käyttää hekseeniuronidaasia.
Esillä oleva keksintö koskee siten menetelmää sellaisten mikrobikantojen eristämiseksi, 5 jotka pystyvät tuottamaan hekseeniuronidaasia. Yhteenvetona esitettynä keksintö käsittää vaiheet, joissa - kootaan mikro-organismia sisältävän orgaanisen aineen näytteet sellutehtaasta tai sen läheisyydestä tai mistä tahansa mahdollisesta lähteestä, joka sisältää materiaalia, jolla on tämä hiilihydraattirakenne, 10 - näytteet sekoitetaan esimerkiksi fysiologisessa keittosuolaliuoksessa, - laimennetun liuoksen erät siirrostetaan levyille, sopivalle elatusalustalle, - levyjä inkuboidaan ja niitä viljellään, jotta saadaan pesäkkeitä, - eristetään pesäkkeet, jotka kasvavat nopeasti, ja - nopeasti kasvavat pesäkkeet haluttaessa puhdistetaan ja niiden hekseeniuronidaasiak-15 tiivisuus määritetään.
Elatusalusta sisältää oligomeerejä, joissa on hekseeniuroni- happoa tai ksylaania, sopivien typen ja hiilen lähteiden kanssa. Menetelmää kuvataan yksityiskohtaisemmin esimerkeissä 5 ja 6.
20
Hekseeniuronidaasia voidaan tuottaa mikrobikannoilla, jotka eristetään edellä esitetyllä menetelmällä viljelemällä mikro-organismia kasvatusalustalla, jossa on oligomeerejä, jotka sisältävät hekseeniuronihappoa tai ksylaania.
25 Keksinnön edullisen sovellutusmuodon mukaan käytettävä entsyymivalmiste sisältää sellaisen mikro-organismin viljelynesteen tai -alustan, joka tuottaa uronidaasia ja joka on eristetty edellä kuvatulla tavalla. Tällainen viljelyneste mieluummin väkevöidään ennen käyttöä. Toisen edullisen sovellutusmuodon mukaan entsyymivalmiste sisältää puhdistetun entsyymin, joka on eristetty viljelynesteestä.
« 30 8 95607
Lignoselluloosamateriaalien käsittelyyn sopivalla entsyymivalmisteella on oleellinen uronidaasiaktiivisuus ja se sisältää vain pieniä määriä hemisellulaaseja (ksylanaaseja), jos ollenkaan.
5 Keksintö ei kuitenkaan rajoitu tässä esitettyihin entsyymin alkuperiin eikä eristys-menetelmään, ja entsyymi voidaan saada myös muilla menetelmillä.
Täten on mahdollista tuottaa uronidaasientsyymiä mikro-organismeilla, jotka on muta-toitu tai geneettisesti konstruoitu siten, että ne tuottavat haluttua entsyymiä, tai muilla 10 tuottoisäntäkannoilla, joihin on siirretty tätä koodaava geeni.
Uronidaasientsyymivalmiste voi olla peräisin mikro-organismista, joka valitaan sellaisesta ryhmästä, joka koostuu sukujen Trichoderma (esim. T. reesei, T. harzianum), Aspergillus (esim. A. niger, A. awamori, A. lerreus, A.oryzae), Schizophyllum (esim.
15 S. commune), Aureobasidium (esim. A. pullulans), Phanerochaete (esim. P. chrysospo-rium), Fusarium (esim. F. oxysporum), Agarius (esim. A. bisporus), Penicillium (esim.
P. janthinellum, P. digitatum), Streptomyces (esim. S. olivochromogenes, S. flavo-griseus) ja Bacillus (esim. B. subtilis, B. circulans) mikro-organismien joukosta. Se voi olla peräisin myös mikro-organismikannasta, joka valitaan ryhmästä, johon kuuluvat 20 Thermoascus auranticus, Curvularia inequalis, Tyromyces palustris, Cryptonectria parasitica, Myceliopthora thermophila ja Thermobacter auranticus. Voidaan käyttää myös mikro-organismeja, jotka tuottavat ksantanaasia ja pektinaasia.
Erittäin sopivia ovat myös kannat, jotka on eristetty sellutehtaan lähistöltä ja jotka 25 pystyvät pilkkomaan HexA.ta sisältäviä ksylaaneja.
Kaikkia näitä mikro-organismeja voidaan käyttää sellaisten uronidaasien tuottamiseen, jotka hydrolysoivat ksylaanin uronihapposivuryhmiä (HexA:ta tai MeGlcA.ta).
30 Edullisen soivellutusmuodon mukaan entsyymivalmisteet tuotetaan siten, että viljellään mitä tahansa yllä mainittuja, uronidaasia tuottavia mikro-organismeja viljelyalustassa, joka sisältää ksylaania.
. · 9 95607
Esillä oleva keksintö perustuu siihen ajatukseen, että ksylaania sisältävästä hiilihydraat-tisubstraatista poistetaan hekseeniuronihappoiyhmät pilkkomalla ksyloosiyksiköiden ja happamien sivuketjujen väliset sidokset. Vastakohtana edellä mainituille, voimakkaille hapetusmenetelmille, jotka eivät ainoastaan hajota hekseeniuronihapporyhmiä vaan 5 vaikuttavat myös materiaalin koko hiilihydraattiosan kemialliseen rakenteeseen, esillä olevan keksinnön mukaan vaaditaan, että mainitut ryhmät on poistettava selektiivisesti.
Sellaisissa tapauksissa, joissa ksylaani sisältää sekä HexA:ta että MeGlcA:ta, yleensä on toivottavaa poistaa spesifisesti molemmat sivuryhmät. Uronihapporyhmät poistetaan 10 mieluummin entsymaattisesti siten, että substraatti saatetaan kosketuksiin vastaavan hydrolaasin kanssa, se on vastaavasti hekseeniuronidaasin ja glukuronidaasin kanssa.
Esillä olevan keksinnön mukaan massoista valmistetun paperin teknisiä ominaisuuksia voidaan modifioida entsymaattisesti poistamalla karboksyylihapporyhmät nimenomaan 15 massakuitujen pinnalta. Etenkin esillä olevaa keksintöä voidaan käyttää sellumassoille, jotka on valmistettu sulfaattiprosessin tai muunnetun (sulfaatti-) prosessin avulla, kuten edellä mainittiin.
Erään edullisen sovellutusmuodon mukaan hekseeniuronihapporyhmät poistetaan ennen 20 sellumassan valkaisua. Kun sellusta poistetaan karboksyyliryhmät, myös sen sisältämät metallikationit poistuvat. Tällä tavalla valkaisukemikaalien, erityisesti komplekseja muodostavien aineiden, kuten esimerkiksi EDTA:n tai DTPA:n, kulutus vähentyy.
Koska esillä olevan keksinnön mukainen käsittely vähentää massojen metalli-ionipitoi-suutta, vetyperoksidia ja happea voidaan edellisesti käyttää valkaisukemikaalina.
25
Erään toisen edullisen sovellutusmuodon mukaan massan karboksyylihappomääriä modifioidaan siten, että käytetään hekseeniuronidaasia sellaisella tavalla, että hemisellu-laasien tai muiden entsyymien vaikutus kuitumateriaaleihin voidaan optimoida ja sitä voidaan tehostaa ilman mitään kuidun hemiselluloosien hydrolyysiä. Mitä suurempi on 30 entsyymivalmisteen suhteellinen hekseeniuronidaasiaktiivisuus, sitä helpompaa on saavuttaa tämä päämäärä. TFC-massojen (kokonaan kloorittomien massojen) valkaistu- 95607 10 vuutta voidaan lisätä uronidaasikäsittelyllä (käsittelyillä, jotka suoritetaan uronidaaseil-la).
Hekseeniuronidaasikäsittely voidaan suorittaa erikseen, samanaikaisesti jonkin muun 5 käsittelyn kanssa tai ennen sellaista käsittelyä. On erityisen edullista yhdistää hek- seeniuronidaasi-käsittely glukuronidaasikäsittelyyn. Kun hekseeniuronidaasikäsittely on samanaikaista sellaisen hemisellulaasikäsittelyn kanssa, jossa käytetään esimerkiksi ksylanaasia tai mannanaasia, on edullista käyttää entsyymivalmistetta, johon on lisätty uronidaasia tai joka on tuotettu kannalla, jota geneettisesti on parannettu suuren uroni-10 daasiaktiivisuuden tuottamiseksi, jotta saadaan valmiste, jolla luonteenomaisesti on korkea uronidaasiaktiivisuus. Keksinnön mukaaan hekseeniuronidaasikäsittely voidaan yhdistää myös käsittelyihin, jotka suoritetaan sellulaaseilla ja (tai) ligniiniä muuntavilla aktiivisuuksilla. Viimeksi mainittujen entsyymien esimerkkeinä voidaan mainita ligniini-peroksidaasi, lakkaasi ja Mn:ia tarvitseva peroksidaasi.
15
Kemiallisten massojen (sellun) lisäksi keksinnön menetelmä soveltuu myös minkä tahansa lignoselluloosien käsittelyyn, se on, mekaanisille tai kemimekaanisille massoille. Täten esillä olevissa tutkimuksissa on yllättäen havaittu, että selluloosamassojen jälki-kellertymistä voidaan vähentää hekseeniuronidaasi- ja (tai) glukuronidaasikäsittelyllä.
20
Kuten esimerkissä 12 alla esitetään, keksinnön mukaista käsittelyä voidaan käyttää myös valkaistusta massasta valmistetun paperin teknisten ominaisuuksien parantamiseen. Taulukon 2 tuloksista käy ilmi, että peroksidilla tai hapella valkaistuissa TCF-sellu-loosissa on huomattavia määriä hekseeniuronihapporyhmiä.
25
Keksinnön mukaisella menetelmällä saadaan aikaan huomattavia etuja. Niinpä kun massaa käsitellään uronidaasilla, kuten tässä aiemmin kuvattiin, ennen tai samanaikaisesti muulla entsyymillä (esimerkiksi ksylanaasilla) suoritettavan massan käsittelyn kanssa entsymaattisen hydrolyysin astetta voidaan lisätä, erityisesti siinä tapauksessa, 30 että substraattina käytetään metallitonta massaa. Esillä oleva keksintö tekee mahdolliseksi poistaa karboksyyliryhmät massoista, jotka eivät sisällä mitään merkittäviä • määriä metyyliglukuronihapporyhmiä.
Il 11 95607 Käsittelyn vaikutus perustuu erityisesti varattujen ryhmien poistoon eikä hemisellu-loosan kokonaishydrolyysiin. Esillä olevan menetelmän vaikutus perustuu uronihappo-ryhmien entsymaattiseen poistoon, jotta pintavaraus muutetaan edulliseen muotoon verrattuna lisäkäsittelyihin, jotka ovat joko kemiallisia tai entsymaattista. Muuttamalla 5 kuvattuja tekijöitä (kuten esimerkiksi pinta varausta), voidaan säädellä esimerkiksi niiden entsyymien toimintaa, jotka vaikuttavat kuitusubstraatin edullisimpiin osiin. Keksintö tekee mahdolliseksi vaikuttaa suoraan sellaisten kemikaalien tyyppiin ja määrään, joilla teollisessa mittakaavassa on uutettava ligniini kuiduista ja joita voidaan lisäksi käyttää, jotta parannetaan vähän klooria sisältäviä tai kloorittomia valkaisumenetelmiä, ja täten 10 vähentää ympäristön saastumista.
Siten että selluloosaa käsitellään uronidaasientsyymillä, voidaan hydrolysoida uronihap-poryhmiä, jotka sitovat metallia, mikä tehostaa selluloosan metalli-ionien poistoa. Sen tähden komplekseja muodostavien aineiden (esimerkiksi EDTA:n tai DTP A. n) käyttöä 15 ennen TCF-valkaisua voidaan vähentää tai se voidaan kokonaan poistaa.
Glukuronihapporyhmien entsymaattista poistoa voidaan käyttää eräiden pieniä määriä karboksyyliryhmiä sisältävien massojen, kuten esimerkiksi metallittomien tai sellaisten massojen, tuotannon parantamiseen.
20
Keksinnön mukaiselle menetelmälle on myös ominaista, että sillä voidaan muuntaa sellaisen paperin teknisiä ominaisuuksia, jota valmistetaan kemiallisista ja mekaanisista massoista.
25 Esimerkit
Keksinnön mukaista menetelmää kuvataan seuraavissa esimerkeissä, jotka eivät millään muotoa rajoita keksintöä. Aiemmassa PCT-hakemuksessa (WO 93/11296) esitetään valmistuksen yksityiskohdat α-glukuronidaasille, jota voidaan käyttää yhdessä hek-30 seeniuronidaasin kanssa.
12 95607
Kuten edellä mainittiin, karboksyylihapporyhmien ja niihin sidottujen vastaionien lukumäärä vaikuttaa massan sähköiseen varaukseen. Näitä tekijöitä voidaan kuvata erilaisilla kemiallisilla ja fysikaalisilla parametreillä ja kuitujen (massojen) pintavaraus voidaan mitata zeta-potentiaalin avulla (Melzer 1972). Massojen metalli-ionipiloisuus voidaan 5 mitata siten, että niiden metallit analysoidaan atomiabsorptiospektrofotometrillä. Massojen karboksyylihappopitoisuus voidaan mitata esimerkiksi Sjöströmin menetelmällä (KCL-menetelmä, 192:68). Entsyymien toimintaa kuiduissa voidaan kuvata sokereiden vapautumisena ja ligniinifragmenttien uutettavuutena entsyymikäsittelyn jälkeen.
10
Esimerkki 1
Hekseeniuronihappoa sisältävien (HexA) oligosakkaridien valmistus
Koivun sulfaattimassaa, jonka kappaluku oli 17 - 18, saatiin Kaukaan sellutehtaalta 15 (Enso-Gutzeit Oy). Ensin massan koostumus analysoitiin seuraavasti, jotta varmistuttiin siitä, että sen hekseeniuronihapposisältö oli riittävä. Massaa hydrolysoitiin T. reesein ksylanaasilla (pl 9) 40 °C:ssa 24 tunnin ajan. Massakoostumus hydrolyysissä oli 5-prosenttinen, entsyymiannos oli 10 000 nkat/g massaa ja pH säädettiin 5,0:ksi rikkihapolla. Hydrolyysin jälkeen näyte suodatettiin, keitettiin ja se lyofilisoitiin. Lyofilisaatti 20 analysoitiin NMR:llä. Hydrolysaatin sokeriaineosat olivat seuraavat: - ksyloosiyksiköitä 95 % - hekseeniuronihappoa 4,2 % (sidottu ksyloosiyksiköihin) - metyyliglukuronihappoa 0,8 % (sidottu ksyloosiyksiköihin) 25 HexA:ta sisältävien oligomeerien vapauttamiseksi 223 kg märkää massaa lisättiin asteittain 400 litraan vettä (koostumus, joka muodostui, oli noin 6-prosenttinen) entsyymikäsittelyn ensimmäisten 24 tunnin aikana ja selluloosaa hydrolysoitiin kaupallisilla sellu-laasi- (Econase, Oy Alko Ab) sekä ksylanaasivalmisteilla (Ecopulp, Oy Alko Ab). Entsyymiannokset, jotka olivat peräisin molemmista valmisteista, olivat seuraavat: 30 endoglukanaasia (aktiivisuus määritetty hydroksietyyliselluloosaa kohtaan, IUPAC, 1989) 6200 nkat/g kuivaa massaa sekä ksylanaasia (määritetty Bailey et al.:n menetel-I mällä, 1992) 10500 nkat/g kuivaa massaa. Hydrolyysiolosuhteet olivat seuraavat: läm- 13 95607 pötila 40 - 45 °C, pH 5 ja kesto kolme (3) päivää. Hydrolyysi lopetettiin keittämällä 15 minuutin ajan. Jäähdyttämisen jälkeen hydrolysaattia ravisteltiin varovaisesti +5 °C:ssa yön ajan.
5 Hydrolysaatti kirkastettiin painesuodatuksella Seitz Orion C-40:n metallilevykehys-suodattimella (suodatuspinta-ala 1,7 m2). Suodatuspaine oli 100 kPa.ta (1 baari). Hyd-rolysaattiin lisättiin ennen suodatusta 3,5 kg suodatuksen apuainetta (piimaata, Celite Standard Super-Cel). Saatiin noin 600 litraa kirkasta suodosta 20 minuutin kuluessa. Hydrolysaatin happamet hydrolyysituotteet analysoitiin kromatografisesti Dionex-pyl-10 väällä (KCL, Espoo). Identifioidut happamet aineosat olivat seuraavat: metyyligluku-ronihappo 390 mg/1, glukuronihappo 98 mg/1 ja kolme oligomeeriä, jotka olivat substi-tuoidut hekseeniuronihapolla (nimitetty (HexAXnl:ksi, HexAX^ksi ja HexAX^ksi) ja joiden konsentraatiot olivat seuraavat: - HexAXnl 280 U/l 15 - HeAX„2 400 U/l - HexAX„3 20 U/l, jolloin 1 U vastaa vastetta ilmaisinsignaalissa, joka on suuruudeltaan 1,0.
NMR.llä analysoitiin sellaisten pääkomponenttien rakenne, jotka sisältävät hek-20 seeniuronihappoa (HexAXnl ja HexAX^). Nämä yhdisteet muodostuivat hek- seeniuronihappoyksiköstä, joka on kiinnitetty ksylobioosin ei pelkistävään päähän pienemmässä ja ksylotrioosin ei pelkistävään päähän suuremmassa oligosakkaridissa.
Hydrolysaatti syötettiin kymmenenä (10) 50 litran suuruisena eränä anioninvaihtajaan 25 (Dowex 1 X 2, 100 - 200 meshiä, Cl-muoto, 2,2 kg), joka oli pakattu kuuden (6) litran vetoiseen pylvääseen (BP-252, Pharmacia, läpimitta 25,2 cm, korkeus 11 cm). Virtausnopeus oli noin 450 ml/minuutti, ja käytetyt eluentit olivat: 1. 1-molaarinen NaAc (geelin regenerointia varten), 2. tislattu vesi (tasapainottamista varten ennnen näytteen syöttöä), 3. näytteen syöttö, 4. tislattu vesi (pylvään pesua varten), 5. 0,1-molaarinen 30 natriumasetaatti (happamien tuotteiden eluointia varten alhaisessa ionivahvuudessa) ja 6.
1-molaarinen natriumasetaatti (eluointia varten suuremmassa ionivahvuudessa ja geelin : regenerointia varten). Koottiin jakeet, joiden koot olivat 450 ml tai 900 ml, ja ne ana- 14 95607 lysoitiin. Kaikki kymmenen kierrosta olivat samanlaisia konduktivisuuden ja UV-absor-banssin perusteella, jotka määritettiin eluoiduista jakeista. Absorboitumattomassa materiaalissa ei havaittu mitään happamia oligomeerejä.
5 Huippujakeet 4 kierroksesta yhdistettiin ja lyofilisoitiin. Näiden poolien koostumukset esitetään seuraavassa taulukossa.
Taulukko 3. Oligomeeripoolien koostumus
10 Valmiste Tilavuus Kuiva-aine HexAX^+HexAX^+HexAX^ MeGIcA GIcA
I % U/ml{**) 1000 UH mg/l g mg/1 g
P-229 B-C I
(pieni suola- 3,9 1,65 2900 11 200 0,78 50 0,20 15 pitoisuus)
P-229 B-C II
(suuri suola- 3,5 7,4 7800 27 6800 24 700 2.5 pitoisuus)
P-229 D-F I
20 (pieni suola- 3.8 1.93 3600 14 580 2.2 50 0,19 pitoisuus)
P-229 D-F II
(suuri suola- 3,8 7,4 8800 33 7600 29 640 2,4 pitoisuus) 25 - (**) Hekseeniuronihappoa sisältävien oligomeerien määrät ilmaistaan mielivaltaisina yksiköinä, koska ei ole 30 saatavilla mitään standardeja. Voidaan arvioida, että 1 U on yhtä paljon kuin 1,5 - 3,0 mg.
1 g lyofilisoitua valmistetta P-229 B-C II liuotettiin 10 mlraan tislattua vettä. Näyte pantiin Bio-Gelin P-2-pylvääseen (Bio-Rad, korkeus 90 cm, tilavuus 1,8 1), joka aiemmin oli tasapainotettu tislatulla vedellä. 15 ml:n suuruiset jakeet koottiin eluoinnin 35 aikana, joka suoritettiin tislatulla vedellä. Sellaiset jakeet, jotka sisälsivät suurimmat pitoisuudet HexAX2:hta, yhdistettiin ja haihduttamalla väkevöitiin 10 ml.ksi. Tämän jälkeen samanlainen geelisuodatus toistettiin kaksi kertaa. Kolmannen geelisuodatuksen 15 95607 jälkeen huippujae sisälsi enemmän kuin 95 prosenttia HexAX2:hta, mikä pääteltiin kromatografisen analyysin perusteella ja varmistettiin NMRrllä.
Jotta saatiin oligomeerien raaka jae, lyofilisoitua valmistetta P-229 B-C II, jonka ase-5 taattipitoisuus oli pieni, liuotettiin 60 mlraan tislattua vettä. Näyte pantiin Sephadex G10 -pylvääseen (Pharmacia, korkeus 55 cm, tilavuus 1,1 1), joka aiemmin oli tasapainotettu tislatulla vedellä. Yhdistettiin sellaiset jakeet, joilla oli korkeimmat hekseeni-uronihappoa sisältävien oligomeerien pitoisuudet. Koottu pooli sisälsi noin 5 g näitä oligomeerejä. Voitiin valmistaa suuri erä hekseeniuronihappoa sisältävää materiaalia, 10 josta suolat oli poistettu, siten että ajo toistettiin useita kertoja.
Viitteet:
Bailey, M.J., Biely, P. ja Poutanen, K. (1992), Interlaboratory testingr of methods for assay of xylanase activity, J. Biotechnol. 23, 257 - 270.
15 IUPAC (International Union of Pure and Applied Chemistry) (1989), Measurement of cellulase activities. Pure Appi. Chem. 59, 257 - 268.
Esimerkki 2
Ksylaania sisältävän hekseeniuronihapon (HexA) valmistus 20
Glukuronoksylaania (Roth 7500, 7,5 g) käsiteltiin natrium-boorihydridillä (100 mg) aikalisissä olosuhteissa (150 ml 1-molaarista NaOH.ta). Ksylaani liuotettiin ensin ja saatiin kirkas liuos. Astia suljettiin ja astian ilma korvattiin typellä. Liuosta inkuboitiin huoneenlämpötilassa yön ajan. Tämän jälkeen suljettua astiaa inkuboitiin 150 °C:ssa 2 25 tunnin ajan ja se jäähdytettiin kylmällä vedellä.
Liuos poistettiin astiasta ja siihen lisättiin 7,5 ml glyserolia. Liuos neutraloitiin pH 7:ksi muurahaishapolla. Lisättiin pisaroittani 150 ml metanolia samalla jatkuvasti sekoittaen ja saostuma, joka muodostui, poistettiin sentrifiigoimalla. Muodostunut saostu-30 ma pestiin ensin etanoli-vedellä (1:1, 150 ml) ja sitten metanolilla (150 ml). Saostuma kuivattiin huoneenlämpötilassa. Kuivan saostuman paino oli 6,31 g (84 prosenttia alku-: peräisestä ksyläänistä).
16 95607
Valmistetun ksylaanin analysoimiseksi sen pieni näyte jauhettiin käsin, minkä jälkeen se hydrolysoitiin T. reesein ksylanaasilla (pl 9) 40 °C:ssa 24 tunnin ajan. Hydrolyysissä ksylaanin pitoisuus oli 10 g/1, entsyymiannos 10 000 nkat/g ksylaania, ja puskuri oli 50 mmolaarinen natriumasetaatti, pH 5,0. Hydrolyysin jälkeen näyte sentrifugoitiin, keitet-5 tiin ja lyofilisoitiin. Lyofilisaatti analysoitiin NMR:llä. Hydrolysaatin sokeriaineosat olivat seuraavat: - ksyloosiyksiköitä 95 % - hekseeniuronihappoa 4,1 % (sitoutunut ksyloosiyksiköihin) 10 - tunnistamattomia sokeriaineosia 0,9 %
Esimerkki 3 15 Hekseeniuronidaasiaktiivisuuden ilmaiseminen
Hekseeniuronidaasiaktiivisuus ilmaistiin ohutkerroskromatografian avulla, jossa käytettiin seuraavaa menettelytapaa: 20 20 μΐ entsyyminäytettä inkuboitiin 20 μ1:η kanssa hekseeniuronidaasisubstraania (puh distettu hekseeniuronoksylobioosi, HexAX2, joka oli valmistettu, kuten kuvataan esimerkissä 1, 0,2-prosenttista liuosta 50-mmolaarisessa natriumsitraatissa, pH 5,3) inkuboitiin 60 minuutin ajan 50 °C:ssa. Reaktioseosta pantiin arviolta 2 μΐ pienenä täplänä lähelle (etäisyys noin 1 cm) kromatografialevyn yhtä sivua (DC-Alufolien, Kieselgel 25 60, Merck artikkelinumero 5553). Levy asetettiin näytepuoli alaspäin lasikammioon, jossa oli ajoliuos (50 tilavuusprosenttia asetonia, 40 tilavuusprosenttia n-butanolia ja 10 tilavuusprosenttia tislattua vettä, 1,0 - 1,5 cm syvyydeltä astian pohjalla). Ajokammio suljettiin ja liuotinrintaman annettiin nousta noin levyn keskustaan.
30 Hydrolyysireaktiossa tuotettu ksylobioosi ilmaistiin siten, että levy kehitettiin kuivaamalla sitä ilmassa noin 10 minuutin ajan. Tämä jälkeen levy ruiskutettiin kehitteellä (10 prosenttia H20:ta, 10 prosenttia väkevöityä rikkihappoa, 80 prosenttia etanolia ja 0,2 n.
17 95607 prosenttia 3,5-dihydroksitolueenia, orsiinia: Merck 820933). Levy kuivattiin (noin 10 minuuttia paperilla) ja se kehitettiin, siten että sitä inkuboitiin 105 - 110 °C:ssa 10 minuutin ajan. Muodostunut ksylobioosi (ja ksyloosi, kun entsyyminäytteessä oli /3-ksy-losidaasia) voitiin ilmaista värjäytyneenä täplänä samalla etäisyydellä lähtöviivasta kuin 5 standardisokerit (1 - 5 μΐ 0,2-prosenttista vesiliuosta käytettiin hydrolysaatin tavoin). Ksylobioosin muodosmminen ilmaisi, että hekseeniuronihapon ja ksyloosin välinen sidos oli pilkkoutunut, mikä antoi yhtä suuret moolimäärät hekseeniuronihappoa ja ksylobioosia mloksena hekseeniuronidaasiaktiivisuudesta, jota oli entsyyminäytteessä.
10 Esimerkki 4
Hekseeniuronidaasiaktiivisuuden määrän määrittäminen
Hekseeniuronidaasiaktiivisuuden määrä määritettiin kromatografisesti menettelytavalla, joka oli seuraava: 15 400 μΐ entsyyminäytettä inkuboitiin 100 μ1:η kanssa hekseeniuronidaasisubstraattia (hekseeniuronoksylobioosia, HexAX2, 0,2-prosenttinen liuos 50-mmolaarisessa natrium-sitraatissa, pH 5,3) 10 minuutin ajan 50 °C:ssa, minkä jälkeen reaktio lopetettiin keittämällä. Reaktioseos analysoitiin ksylobioosin suhteen HPLC-kromatografialla. Käytetty 20 pylväs oli HC-40 (Hamilton, Ca+2-muoto). Eluenttina käytettiin Milli-Q -vettä, ja eluointinopeus oli 0.5 ml min1. Yhden moolin suuruinen määrä ksylobioosia, joka vapautui reaktiossa, vastasi yhden määrää hekseeniuronihapporyhmiä, joita vapautui reaktiossa samanaikaisesti. Tämän suhteen perusteella voitiin tarkasti kvantitoida aktiivisuus (se on, hekseeniuronidaasiaktiivisuus), joka pilkkoi sidoksen hekseeniuronihapon ja 25 ksylobioosin väliltä.
Esimerkki 5
Hekseeniuronihappoa sisältäviä oligomeerejä käyttävien mikrobikantojen eristäminen selektiivisillä agarlevyillä 30
Koottiin maanäytteitä, hylättyä kraftmassaa ja tarkemmin määrittelemätöntä kiinteää • materiaalia Oy Sunila Ab Kotkan sulfaattisellutehtaan varastoalueelta ja sisäpuolelta.
18 95607
Koottiin myös vesi- ja sedimenttinäytteitä tehtaan alueelta ja sellutehtaan välittömästä läheisyydestä.
Näytteiden laimennussarjat valmistettiin fysiologisessa NaCl-liuoksessa. 100 μΐ suumi-5 set erät sopivia laimennuksia siirrostettiin steriloidulle agarille, joka sisälsi: - 0,5 % hekseeniuronihappo-oligomeerejä, jotka oli valmistettu, kuten kuvataan esimerkissä 1, - Yeast Nitrogen Basea, (Difco) 10 - 1,8 % agaria - 0,05 % Triton X-100:a pesäkekoon rajoittamista varten
Levyjä inkuboitiin 30 °C:ssa ja pesäkkeiden kasvu havainnoitiin. Sellaiset pesäkkeet, jotka kasvoivat nopeasti, eristettiin ja puhdistettiin käyttämällä mikrobiologisia standar-15 ditekniikoita ja niitä tutkittiin hekseeniuronidaasiaktiivisuuden tuoton suhteen. Tämän menettelytavan tuloksena saatiin useita eristyksiä, jotka pystyivät kasvamaan ksylo-oligomeerijakeella, joka sisälsi hekseeniuronihappoa.
Esimerkki 6 20 Rikastusviljelmä hekseeniuronidaasia tuottavien mikrobikantojen eristämiseksi
Materiaalinäytteet otettiin Kotkassa, Suomessa, sellaisen tehtaan sisäpuolelta, joka tuotti kraftmassaseosta. Otetut näytteet sisälsivät valunutta massaa, jätteitä ja laskeumia seiniltä, koneista ja muista rakenteista, ja otettiin myös jätevesinäytteitä.
25
Laboratoriossa pienet alanäytteet, joiden paino oli 1 - 5 g, lietettiin ja sekoitettiin vorte-xin avulla steriiliin keittosuolaliuokseen ja siitä 1 ml:n suuruiset erät siirrettiin 100 ml:n pulloihin, jotka sisälsivät 20 ml alustaa, joka koostui liuoksista, jotka sisälsivät kroma-tografisesti puhdistettua HeGlcAX2:hta ja HeGlcAX2:hta sekä 0,67 g Γ1 Yeast Nitrogen 30 Basea (YNB, Difco). Pulloja ravisteltiin 3 päivän ajan nopeudella 150 kierrosta minuutissa, 30 °C:ssa. Silmukallinen (noin 10 μΐ) täten saatua, tiheää mikrobiviljelmää siir-: rettiin sitten tuoreeseen alustaan, jonka koostumus oli sama, ja viljelyt toistettiin.
Il 19 95607
Lopulliset viljelmäsuodokset sentrifugoitiin, jotta mikrobit poistettiin, ja kirkkaat sentri-fugaatit laimennettiin tislatulla vedellä suhteessa 1:100. Näiden lainmennusten optiset absorbanssit mitattiin 230 nm:ssä, jossa aallonpituudessa hekseeniuronihapon kaksoissi-doksella on maksimi absorbanssinsa. Nämä mittaukset ilmaisivat, että hekseeniuroni-5 happoryhmiä sisältävien oligomeerien pitoisuudet olivat vähentyneet lähes nollaksi kaikissa viljelmäsuodoksissa (taulukko 4). Spektrometrin antamat tulokset varmistettiin oligosakkaridianalyysin avulla, jossa käytettiin HPLC.tä: HeGlcAX2 ja HeGlcAX3 olivat hävinneet täydellisesti kaikista viljelyalustoista (taulukko 4). Mitään muita neutraa-leita tai happamia mono- ja oligosakkarideja ei havaittu merkittävinä määrinä alustassa 10 eikä viljelmäsuodoksissa.
Viljelmien mikroskooppihavainnot ilmaisivat, että kolmea viljelmää hallitsi yksi ainoa mikrobilaji (yksi on nimitetty mikrokokiksi ja kaksi erilaisiksi Bacillus-lajeiksi), kun taas hiiva hallitsi yhtä viljelmistä. Puhtaiden kantojen identifiointi suoritetaan standardi 15 mikrobiologisin tekniikoin.
Taulukko 4. HexA-substituoitujen ksylo-oligosakkaridien erottaminen viljel-mäsuodoksista, jotka saivat alkunsa sellutehtaasta kerättyjen materiaalinäytteiden suspensiosta 20
Viljelmä pH A230 Jäljelle jääneet oligosakkaridit (mg l1) ____Xj__HeGlcAX2 HeGlcAX, Väliaine__6J1__0,690__24__3600__5100 1__Vb__0,170__29__0__0 25 2__7^9__0,055__10__0__0 3 __7£__0,170__55__0__0 4 7,9 0,040 (+) 0 0 30 Nämä tulokset osoittavat, että sellaiset mikrobit, jotka eristettiin rikastusviljelmän avulla, tuottivat entsyymiä, joka pystyi helpottamaan HeGlcAX2:n ja HeGlcAX3:n meta- 20 95607 boliaa sillä tavalla, että hekseeniuronihapporyhmä käytettiin täydellisesti hyväksi. Täten on ilmeistä, että kyseessä olevat kannat tuottavat hekseeniuronidaasientsyymiä.
Esimerkki 7 5 Hekseeniuronidaasin tuottaminen ravistelupulloissa
Niitä eristyksiä, jotka saatiin esimerkissä 6 kuvatulla tavalla, viljeltiin ravistelupulloissa (tilavuus 250 ml, 50 ml alustaa). Viljeltiin 30 °C:ssa, pyörivässä ravistelijassa (200 kierrosta minuutissa). Ennen viljelyä alustaa steriloitiin 120 °C:ssa 20 minuutin ajan.
10 Käytetty alusta sisälsi: hiilen lähteenä ja induktorina 0,5 prosenttia hekseeniuronihappo-oligomeerejä, jotka valmistettiin, kuten kuvattiin esimerkissä 1, Yeast Nitrogen Basea (Difco) typenlähteenä ja muita ravintoaineita. Viiden päivän mittaisen viljelyn jälkeen viljelmäsupematanteista voitiin ilmaista hekseeniseeniuronidaasiaktiivisuus, kuten esimerkissä 3 kuvattiin.
15
Esimerkki 8
Hekseeniuronidaasin puhdistus
Sellaista eristystä, joka saatiin esimerkissä 6 kuvatulla tavalla, viljeltiin laboratorion 20 bioreaktorissa (työskentelytilavuus 10 litraa). Viljelyolosuhteet olivat seuraavat: lämpötila 30 °C, ravistelu 400 - 500 kierrosta minuutissa, ilmastus 5 litraa min'1 ja pH-mini-mi 4,0. Ennen viljelyä alustaa steriloitiin 120 °C:ssa 15 minuutin ajan. Käytetty alusta sisälsi: hiilenlähteenä ja induktorina 1,0 prosentin hekseeniuronihappo-oligomeerejä, jotka oli valmistettu, kuten esimerkissä 1 kuvataan, sekä sopivia typen lähteitä ja muita 25 ravinteita. Kun saavutettiin stationäärivaihe, viljely pysäytettiin ja mikrobisolut ja kiinteä materiaali erotettiin sentrifugoimalla.
Viljelynesteen hekseeniuronidaasiaktiivisuus voitiin erottaa muista hydrolyyttisistä aktiivisuuksista (esimerkiksi ksylaanista) tavanomaisilla kromatografisilla proteiininpuhdis-30 tusmenetelmillä, erityisesti ioninvaihtokromatografialla, hydrofobisellä interaktiokroma-tografialla, geelisuodatuksella, kromatofokusoinnilla ja affmiteettikromatografialla.
21 95607
Esimerkki 9
Sulfaattimassasta valmistetun paperin kellertymisen vähentäminen
Valkaisematonta ja valkaistua (OQPPP) kraftmassaa käsiteltiin hekseeniuronidaasilla.
5 Käsittelyn jälkeen massasta valmistettiin levyjä ja niiden lämpövanheneminen mitattiin. Hekseeniuronidaasikäsittely vähensi mitattua pc-arvoa verrattuna levyihin, jotka valmistettiin käsittelemättömästä massasta.
Esimerkki 10 10 EDTA:n kulutuksen väheneminen peroksidivalkaisussa
Ruskeaa sulppukraftmassaa käsiteltiin hekseeniuronidaasilla ennen peroksidivalkaisua. Massan metallikationien määrä mitattiin hekseeniuronidaasikäsittelyn jälkeen. Hekseeniuronidaasikäsittely vähensi EDTA:n määrää, joka tarvittiin metallin poistoon ennen 15 peroksidikäsittelyä. Kun entsyymiannos oli riittävä, EDTA-käsittely voitiin jättää pois.
Esimerkki 11
Hekseeniuronidaasin vaikutus TCF-valkaisuun 20 Ruskea sulppumassaa käsiteltiin ksylanaasilla ja hekseeniuronidaasilla. Yhdistetyn käsittelyn tuloksena parani vaaleus, joka valkaisussa saatiin. Massa valkaistiin siten, että • käytettiin a) peroksidia, b) otsonia.
Esimerkki 12 25 Paperin teknisten ominaisuuksien muuntaminen hekseeniiniuronidaasilla TCF:llä valkaistua massaa käsiteltiin hekseeniuronidaasilla. Tämän tuloksena hek-seeniuronihapporyhmiä poistui, ja paperin tekniset ominaisuudet muuttuivat myöhemmin ja sen kierrätettävyys parani.

Claims (26)

  1. 95607
  2. 1. Menetelmä lignoselluloosamateriaalien, erityisesti sellumassojen, muuntamiseksi, tunnettu siitä, että selektiivisesti poistetaan ainakin osa massan hekseeniuronihap- 5 poryhmistä.
  3. 2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hek-seeniuronihapporyhmät poistetaan saattamalla massa kosketuksiin entsyymivalmisteen kanssa, jolla on oleellinen heksenuronidaasiaktiivisuus. 10
  4. 3. Patenttivaatimuksen 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että massa saatetaan kosketuksiin heksenuronidaasi-valmisteen kanssa, joka sisältää vain vähäisiä määriä hemisellulaaseja, jos ollenkaan.
  5. 4. Patenttivaatimuksen 2 tai 3 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hek- senuronidaasivalmiste pääasiallisesti sisältää heksenuronidaasia tuottavan mikro-organismin viljelyalustan.
  6. 5. Jonkin patenttivaatimuksista 2-4 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että 20 massa saatetaan kosketuksiin heksenuronidaasivalmisteen kanssa, joka on peräisin mikro-organismikannasta, joka on valittu ryhmästä, joka koostuu sukujen Trichoderma (esim. T. reesei, T. harzianum), Aspergillus (esim. A. niger, A. awamori, A. terreus, A.oryzae), Schizophyllum (esim. S. commune), Aureobasidium (esim. A. pullulans), Phanerochaeie (esim. P. chrysosporium), Fusarium (esim. F. oxysporum), Agarius 25 (esim. A. bisporus), Penicillium (esim. P. janthinellum, P. digitatum), Streptomyces (esim. S. olivochromogenes, S. flavogriseus) ja Bacillus (esim. B. subtilis, B. circulans) mikro-organismien joukosta.
  7. 6. Jonkin patenttivaatimuksista 2-4 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että 30 massa saatetaan kosketuksiin heksenuronidaasivalmisteen kanssa, joka on peräisin mikro-organismikannalta, joka on valittu ryhmästä, johon kuuluvat Thermoascus au- li 95607 ranticus, Curvularia inequalis, Tyromyces palustris, Cryptonectria parasitica, Myce-liopthora thermophila ja Thermobacter auranticus.
  8. 7. Patenttivaatimuksen 4 tai 5 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hek-5 senuronidaasivalmiste on peräisin geneettisesti muunnetusta kannasta, joka sisältää geenin, joka koodittaa heksenuronidaasia.
  9. 8. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että massan hek-seeniuronihapporyhmät poistetaan massan metallien määrän vähentämiseksi. 10
  10. 9. Patenttivaatimuksen 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että entsyymival-miste sisältää heksenuronidaasiaktiivisuuden lisäksi glukuronidaasiaktiivisuutta.
  11. 10. Jonkin patenttivaatimuksista 1-8 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että 15 hekseeniuronihapporyhmät poistetaan etenkin hapella tai peroksidilla suoritetun massan kloorivapaan valkaisun tehostamiseksi.
  12. 11. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hekseeniuronihapporyhmät poistetaan massan jälkikellertymisen vähentämiseksi. 20
  13. 12. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että hek- • seeniuronihapporyhmät poistetaan massan paperiteknisten ominaisuuksien parantamisek si.
  14. 13. Patenttivaatimuksen 2 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että ensin massaa käsitellään entsyymivalmisteella, jolla on oleellista heksenuronidaasi- ja valinnaisesti glukuronidaasiaktiivisuutta ja myöhemmin se saatetaan kosketuksiin entsyymivalmisteen kanssa, jolla on hemisellulaasi-, sellulaasi ja (tai) ligninaasiaktiivisuutta.
  15. 14. Jonkin aiemman patenttivaatimuksen mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että massaa käsitellään samanaikaisesti entsyymivalmisteella, jolla on heksenuronidaasiaktii- 95607 visuutta, ja entsyymivalmisteella, jolla on hemisellulaasi-, sellulaasi- ja (tai) ligniiniä muuntavaa aktiivisuutta.
  16. 15. Patenttivaatimuksen 1 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että käsiteltävä 5 lignoselluloosamateriaali on muutettu massaksi tavanomaisella sulfaattikeitolla tai jatketulla keittomenetelmällä.
  17. 16. Patenttivaatimuksen 1, 14 tai 15 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että massaa käsitellään entsyymivalmisteella, jotta saataisiin tehostetuksi muiden entsyymi- 10 en, kuten esimerkiksi hemisellulaasin, sellulaasin tai ligninaasin, massaan kohdistuva vaikutus.
  18. 17. Entsyymivalmiste, joka on käyttökelpoinen lignoselluloosamateriaalien, erityisesti selluloosamassojen, käsittelyssä, tunnettu siitä, että se sisältää oleellisen määrän 15 heksenuronidaasiaktiivisuutta yhdessä sellaisten sopivien apuaineiden kanssa, joita käytetään paperi- ja massateollisuuden entsyymivalmisteissa.
  19. 18. Patenttivaatimuksen 17 mukainen entsyymivalmiste, tunnettu siitä, että sisältää myös oleellisen määrän glukuronidaasiaktiivisuutta. 20
  20. 19. Patenttivaatimuksen 17 mukainen entsyymivalmiste, tunnettu siitä, että hek- • senuronidaasientsyymi on peräisin uronidaasia tuottavasta mikro-organismikannasta, joka valitaan ryhmästä, johon pääasiallisesti kuuluvat Trichoderma reesei, Schizophyl-lum commune, Aspergillus niger, Thermoascus auranticus, Agaricus bisporus, Asper- 25 gillus awamori, Aspergillus niger, Curvularia inequalis, Schizophyllum commune, Tyromyces palustris, Streptomyces flavogriseus, S. olivochromogenes ja muut Strepto- • myces-kannat, Cryptonectria parasitica, Myceliopthora thermophila, Penicillium jant-hinellum, Penicillium digitatum, Aspergillus terreus, Thermobacter auranticus, Aero-basidium pullulans, Aspergillus oryzae, Phanerochaete chrysosporium, Bacillus cir- 30 culans ja B. subtilis. Il 95607
  21. 20. Patenttivaatimuksen 19 mukainen entsyymivalmiste, tunnettu siitä, että hek-senuronidaasivalmiste on peräisin geneettisesti muunnetusta kannasta, joka sisältää geenin, joka koodittaa heksenuronidaasia.
  22. 21. Patenttivaatimuksen 18 tai 19 mukainen entsyymivalmiste, tunnettu siitä, että heksenuronidaasivalmiste pääasiallisesti käsittää heksenuronidaasia tuottavan mikro-organismikannan viljely alustan, joka valinnaisesti on väkevöity.
  23. 22. Menetelmä sellaisten mikrobikantojen eristämiseksi, jotka pystyvät tuottamaan hek-10 senuronidaasia, tunnettu siitä, että - sellutehtaasta tai sen läheisyydestä kootaan näytteet mikro-organismi-pitoisesta orgaanisesta aineesta, - näytteet sekoitetaan fysiologiseen suolaliuokseen, - suolaliuoslaimennusten eriä siirrostetaan sopivalle kasvualustalle, 15. levyjä inkuboidaan ja niitä viljellään, jotta saadaan pesäkkeitä, - ne pesäkkeet, jotka kasvavat nopeasti, eristetään ja - valinnaisesti puhdistetaan nopeasti kasvavat pesäkkeet ja määritetään niiden hek-senuronidaasiaktiivisuus.
  24. 23. Patenttivaatimuksen 22 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että kasva tusalusta sisältää hekseeniuronihappo-oligomeerejä yhdessä sopivien typpi- ja hiililähtei-’ den kanssa.
  25. 24. Patenttivaatimuksen 22 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että kasva-25 tusalusta sisältää ksylaania, jossa on hekseeniuroni-happosivuryhmiä. : 25. Menetelmä heksenuronidaasin valmistamiseksi, tunnettu siitä, että kasvatetaan patenttivaatimuksen 22 mukaan eristettyä kantaa kasvualustalla, joka sisältää hek-seeniuronihappo-oligomeerejä tai ksylaania. 30 95607
  26. 26. Patenttivaatimuksen 25 mukainen menetelmä, tunnettu siitä, että geeni, joka koodittaa patenttivaatimuksen 22 mukaan eristetyn kannan heksenuronidaasia, on siirretty mikro-organismiin, jota kasvatetaan sopivalla kasvatusalustalla. i K 95607
FI942639A 1994-06-03 1994-06-03 Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi FI95607C (fi)

Priority Applications (10)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI942639A FI95607C (fi) 1994-06-03 1994-06-03 Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi
ES95920911T ES2169134T3 (es) 1994-06-03 1995-06-05 Metodo y preparado enzimatico para el tratamiento de pulpas de celulosa.
AU26172/95A AU2617295A (en) 1994-06-03 1995-06-05 Method and enzymatic preparation for treatment of cellulose pulps
EP95920911A EP0764226B1 (en) 1994-06-03 1995-06-05 Method and enzymatic preparation for treatment of cellulose pulps
DE69524408T DE69524408D1 (de) 1994-06-03 1995-06-05 Verfahren und enzymatische herstellung zur behandlung von zellstoffpulpe
PT95920911T PT764226E (pt) 1994-06-03 1995-06-05 Processo e preparacao enzimatica para o tratamento de pastas de celulose
US08/750,069 US6830655B2 (en) 1994-06-03 1995-06-05 Method of modifying a xylan-containing carbohydrate substrate having hexenuronic acid groups attached to the xylan
PCT/FI1995/000317 WO1995033883A1 (en) 1994-06-03 1995-06-05 Method and enzymatic preparation for treatment of cellulose pulps
AT95920911T ATE210216T1 (de) 1994-06-03 1995-06-05 Verfahren und enzymatische herstellung zur behandlung von zellstoffpulpe
CA002191859A CA2191859A1 (en) 1994-06-03 1995-06-05 Method and enzymatic preparation for treatment of cellulose pulps

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FI942639A FI95607C (fi) 1994-06-03 1994-06-03 Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi
FI942639 1994-06-03

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI942639A0 FI942639A0 (fi) 1994-06-03
FI95607B true FI95607B (fi) 1995-11-15
FI95607C FI95607C (fi) 1996-02-26

Family

ID=8540852

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI942639A FI95607C (fi) 1994-06-03 1994-06-03 Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi

Country Status (10)

Country Link
US (1) US6830655B2 (fi)
EP (1) EP0764226B1 (fi)
AT (1) ATE210216T1 (fi)
AU (1) AU2617295A (fi)
CA (1) CA2191859A1 (fi)
DE (1) DE69524408D1 (fi)
ES (1) ES2169134T3 (fi)
FI (1) FI95607C (fi)
PT (1) PT764226E (fi)
WO (1) WO1995033883A1 (fi)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6210801B1 (en) 1996-08-23 2001-04-03 Weyerhaeuser Company Lyocell fibers, and compositions for making same
US6306334B1 (en) 1996-08-23 2001-10-23 The Weyerhaeuser Company Process for melt blowing continuous lyocell fibers
US6331354B1 (en) 1996-08-23 2001-12-18 Weyerhaeuser Company Alkaline pulp having low average degree of polymerization values and method of producing the same
US6146494A (en) * 1997-06-12 2000-11-14 The Procter & Gamble Company Modified cellulosic fibers and fibrous webs containing these fibers
JP4556344B2 (ja) * 2001-05-11 2010-10-06 王子製紙株式会社 新規ヘキセンウロニダーゼ、それをコードする遺伝子、およびそれらの使用
SE520956C2 (sv) * 2001-12-05 2003-09-16 Kvaerner Pulping Tech Kontinuerlig kokning med extra uppehållstid för avdragen vätska utanför kokaren
WO2003074780A1 (en) * 2002-03-06 2003-09-12 Iogen Bio-Products Corporation Xylanase treatment of chemical pulp
SE525872C2 (sv) * 2002-09-06 2005-05-17 Stora Enso Ab Metod att tillverka mekanisk massa med reducerad energikonsumtion
US20040112555A1 (en) * 2002-12-03 2004-06-17 Jeffrey Tolan Bleaching stage using xylanase with hydrogen peroxide, peracids, or a combination thereof
US7201847B1 (en) * 2003-07-30 2007-04-10 Michael Bowling Wastewater treatment method utilizing white rot and brown rot fungi
WO2006126983A1 (en) * 2005-05-04 2006-11-30 Novozymes North America, Inc. Chlorine dioxide treatment compositions and processes
JP2006219767A (ja) * 2005-02-08 2006-08-24 Univ Of Tsukuba 製紙用化学パルプ中の不飽和ウロン酸の除去方法
US7922705B2 (en) * 2005-10-03 2011-04-12 The Procter & Gamble Company Densified fibrous structures and methods for making same
US20080227161A1 (en) * 2007-03-16 2008-09-18 Weyerhaeuser Company Methods for producing a hydrolysate and ethanol from lignocellulosic materials
WO2010011957A2 (en) * 2008-07-25 2010-01-28 The Regents Of The University Of California Enzymatic hydrolysis of cellulosic biomass through enhanced removal of oligomers
US9970157B2 (en) * 2013-08-09 2018-05-15 Novozymes A/S Reducing content of hexenuronic acids in cellulosic pulp
CN113026409A (zh) * 2021-03-29 2021-06-25 边静 一种利用棕榈纤维制生物无硫半化学浆的方法
CN116042414B (zh) * 2023-01-04 2025-03-28 华中农业大学 一种灰色链霉菌h114及抑菌代谢物制备方法和应用

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2643800C2 (de) * 1976-09-29 1986-10-30 Fritz Werner Industrie-Ausrüstungen GmbH, 6222 Geisenheim Verfahren zur Herstellung von Xylose durch enzymatische Hydrolyse von Xylanen
FI89613C (fi) * 1991-12-05 1993-10-25 Valtion Teknillinen Foerfarande foer enzymatisk behandling av cellulosamassor

Also Published As

Publication number Publication date
WO1995033883A1 (en) 1995-12-14
EP0764226A1 (en) 1997-03-26
FI942639A0 (fi) 1994-06-03
DE69524408D1 (de) 2002-01-17
US20040069426A1 (en) 2004-04-15
US6830655B2 (en) 2004-12-14
FI95607C (fi) 1996-02-26
PT764226E (pt) 2002-05-31
ATE210216T1 (de) 2001-12-15
AU2617295A (en) 1996-01-04
EP0764226B1 (en) 2001-12-05
CA2191859A1 (en) 1995-12-14
ES2169134T3 (es) 2002-07-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI95607B (fi) Menetelmä ja entsyymivalmiste selluloosamassojen käsittelemiseksi
Bailey et al. Effect of pH on production of xylanase by Trichoderma reesei on xylan-and cellulose-based media
AU649703B2 (en) A method for enzymatically treating pulp with an enzyme system from thermomonospora fusca
FI121469B (fi) Mikrotetraspora-lajista eristettyjä lämpöstabiileja ksylanaaseja ja menetelmä niiden käyttämiseksi
EP0851914B1 (en) Purified mannanase from bacillus amyloliquefaciens and method of preparation
AU624279B2 (en) Method for bleaching with reduced organic chlorides
CA2019411A1 (en) Enzymatic delignification of lignocellulosic material
FI109037B (fi) Kemiallisen lignoselluloosamassan entsyymikäsittely
US5834301A (en) Method of removing color from kraft wood pulps
FI96783B (fi) Aureobasidium pullulansin käyttö massan valkaisussa
US5369024A (en) Xylanase from streptomyces roseiscleroticus NRRL-11019 for removing color from kraft wood pulps
US5183753A (en) Preparation of xylanase by cultivating thermomyces lanuginosus dsm 5826 in a medium containing corn cobs
JPH02210086A (ja) パルプの漂白方法
WOOD Jeffries et al.[45] Date of Patent: Nov. 10, 1998

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Owner name: VALTION TEKNILLINEN TUTKIMUSKESKUS

BB Publication of examined application
MM Patent lapsed