[go: up one dir, main page]

ES2636980T3 - Un dominio de unión de ATP sintasa bacteriana - Google Patents

Un dominio de unión de ATP sintasa bacteriana Download PDF

Info

Publication number
ES2636980T3
ES2636980T3 ES05794520.6T ES05794520T ES2636980T3 ES 2636980 T3 ES2636980 T3 ES 2636980T3 ES 05794520 T ES05794520 T ES 05794520T ES 2636980 T3 ES2636980 T3 ES 2636980T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
atom
ile
phe
gly
twenty
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
ES05794520.6T
Other languages
English (en)
Inventor
K.J.L.M. Andries
Hinrich W.H. GÖHLMANN
J.-M.E.F.M. Neefs
Peter K.M. Verhasselt
Johann Winkler
Marc René DE JONGE
Lucien Maria Henricus Koymans
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Janssen Pharmaceutica NV
Original Assignee
Janssen Pharmaceutica NV
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Janssen Pharmaceutica NV filed Critical Janssen Pharmaceutica NV
Application granted granted Critical
Publication of ES2636980T3 publication Critical patent/ES2636980T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Active legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/35Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Mycobacteriaceae (F)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • A61P31/06Antibacterial agents for tuberculosis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)

Abstract

Una proteína atpE mutante aislada que comprende una secuencia polipeptídica seleccionada de SEQ ID Nº 01 que comprende al menos una mutación puntual situada en uno cualquiera de los sitios de unión de ATPasa situados entre los aminoácidos 14 a 34 o entre los aminoácidos 54 a 69, y la SEQ ID Nº 03 que comprende al menos una mutación puntual situada en uno cualquiera de los aminoácidos 20 a 40, o de los aminoácidos 60 a 75, en donde dicha proteína induce resistencia al compuesto antimicrobiano DARQ J de la Figura 1.

Description

imagen1
imagen2
imagen3
imagen4
imagen5
imagen6
imagen7
5
15
25
35
45
55
tienen para la subunidad A los códigos Ser 206 -Leu 207 -Leu 209 y Arg 210 en las Tablas 3, 4 y 5), en donde dichos aminoácidos tienen las coordenadas atómicas de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5 o coordenadas estructurales homólogas que comprenden una desviación media cuadrática de átomos distintos de hidrógeno de menos de aproximadamente 1,5 Å, preferiblemente no más de 0,75 Å, cuando están superpuestos a las posiciones de los átomos de que no son hidrógeno de las correspondientes coordenadas atómicas de las Tablas 3, 4 o 5. En una realización particular, el sitio de unión comprende los aminoácidos Ala21, Gly25 de una primera subunidad C; los aminoácidos Ala24, Gly27, Phe53, Phe54, Val57, Gly58, Glu61, Tyr64, Phe65 de una segunda subunidad C; los aminoácidos Met17, Gly19, Gly20, Ala21, Ile22, Gly23, Ala24, Gly25, Ile26, Gly27, Asp28, Gly29, Ala31, Phe53, Thr56, Val57, Gly58, Leu59, Val60, Glu61, Ala62, Ala63/Pro63, Tyr64, Phe65 de una tercera subunidad C y los aminoácidos Leu183, Leu185 y Arg186 de una subunidad A; en donde dichos aminoácidos tienen las coordenadas atómicas de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5 o las coordenadas estructurales homólogas que comprenden una desviación media cuadrática de átomos distintos de hidrógeno de menos de aproximadamente 1,5 Å, preferiblemente no más de 0,75 Å, cuando están superpuestos a las posiciones de los átomos de que no son hidrógeno de las correspondientes coordenadas atómicas de las Tablas 3, 4 o 5. En una realización aún más particular, el sitio de unión consiste en los aminoácidos Ala21, Gly25 de una primera subunidad C; los aminoácidos Ala24, Gly27, Phe53, Phe54, Val57, Gly58, Glu61, Tyr64, Phe65 de una segunda subunidad C; los aminoácidos Met17, Gly19, Gly20, Ala21, Ile22, Gly23, Ala24, Gly25, Ile26, Gly27, Asp28, Gly29, Ala31, Phe53, Thr56, Val57, Gly58, Leu59, Val60, Glu61, Ala62, Ala63/Pro63, Tyr64, Phe65 de una tercera subunidad C y los aminoácidos Leu183, Leu185 y Arg186 de una subunidad A; en donde dichos aminoácidos tienen las coordenadas atómicas de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5. En la realización más particular, el sitio de unión consiste en los aminoácidos Ala21, Gly25 de una primera subunidad C; los aminoácidos Ala24, Gly27, Phe53, Phe54, Val57, Gly58, Glu61, Tyr64, Phe65 de una segunda subunidad C; los aminoácidos Met17, Gly19, Gly20, Ala21, Ile22, Gly23, Ala24, Gly25, Ile26, Gly27, Asp28, Gly29, Ala31, Phe53, Thr56, Val57, Gly58, Leu59, Val60, Glu61, Ala62, Ala63/Pro63, Tyr64, Phe65 de una tercera subunidad C y los aminoácidos Leu183, Leu185 y Arg186 de una subunidad A; en donde dichos aminoácidos tienen las coordenadas atómicas de la Tabla 3.
Según esto, un objetivo de la presente invención es evaluar el potencial de un compuesto de ensayo para interactuar con una proteína atpE usando las coordenadas atómicas que se esbozan anteriormente, en programas de cribado informatizados. En una realización, la presente invención proporciona un método para evaluar el potencial de un compuesto de ensayo para interactuar con una proteína atpE, comprendiendo dicho método; -técnicas de modelado molecular para generar la estructura tridimensional de un sitio de unión de una parte F0 de una ATPasa; -emplear medios informáticos para realizar una operación de ajuste entre el compuesto de ensayo y la estructura tridimensional del sitio de unión; y – analizar los resultados de dicha operación de ajuste para cuantificar la asociación del compuesto de ensayo con la estructura tridimensional del sitio de unión. En una realización adicional de la presente invención, la estructura tridimensional del sitio de unión se genera usando las coordenadas atómicas de las Tablas 3, 4 o 5 o las coordenadas estructurales homólogas que comprenden una desviación media cuadrática de átomos distintos de hidrógeno de menos de aproximadamente 1,5 Å, preferiblemente no más de 0,75 Å, cuando están superpuestos a las posiciones de los átomos de que no son hidrógeno de las correspondientes coordenadas atómicas de las Tablas 3, 4 o 5. En una realización particular, la estructura tridimensional se genera usando las coordenadas atómicas de los aminoácidos Ala21, Gly25 de la cadena A de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5; los aminoácidos Ala24, Gly27, Phe53, Phe54, Val57, Gly58, Glu61, Tyr64, Phe65 de la cadena K de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5; los aminoácidos Met17, Gly19 Gly20, Ala21, Ile22, Gly23, Ala24, Gly25, Ile26, Gly27, Asp28, Gly29, Ala31, Phe53, Thr56, Val57, Gly58, Leu59, Val60, Glu61, Ala62, Ala63/pro63, Tyr64, Phe65 de la cadena L de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5; y los aminoácidos Ser206, Leu207, Leu207 y Arg210 de la cadena M de cualquiera de las Tablas 3, 4 o 5.
En este cribado, la calidad de ajuste de estos compuestos al sitio de unión se puede juzgar bien mediante complementariedad de conformación o bien mediante la energía de interacción estimada (Meng, E.C. y cols., J. Coma.Chem 13:505-524 (1992)).
Uso del sitio de unión
El diseño de compuestos que se unen a, promueven o inhiben la actividad funcional de atpE según esta invención implica generalmente la consideración de dos factores. En primer lugar, el compuesto debe ser capaz de asociarse físicamente y estructuralmente con atpE. Interacciones moleculares no covalentes importantes en la asociación de atpE con el compuesto incluyen enlace de hidrógeno, interacciones de van der Waals e hidrófobas. En segundo lugar, el compuesto debe ser capaz de asumir una conformación que le permita asociarse con atpE. Aunque ciertas porciones del compuesto pueden no participar directamente en la asociación con atpE, esas porciones pueden influir sin embargo en la conformación global de la molécula. Esto, a su vez, puede tener un impacto significativo sobre las afinidades de unión, la eficacia terapéutica, las cualidades farmacológicas y la potencia. Estos requisitos de conformación incluyen la estructura tridimensional global y la orientación de la entidad química o compuesto en relación con la totalidad o una porción del sitio activo u otra región de atpE o la separación entre grupos funcionales de un compuesto que comprende varias entidades químicas que interactúan directamente con atpE.
El efecto agonista, antagonista o de unión inhibidor potencial predicho de un ligando u otro compuesto sobre atpE se puede analizar antes de su síntesis real y probar el uso de técnicas de modelado informatizadas. Si la estructura teórica del compuesto dado sugiere una interacción y asociación insuficientes entre él y atpE, la síntesis y la prueba
9 5
15
25
35
45
55
65
del compuesto se pueden obviar. Sin embargo, si el modelado informatizado indica una fuerte interacción, entonces la molécula se puede sintetizar y probar con respecto a su capacidad para interactuar con atpE. De este modo, se puede evitar la síntesis de compuestos no operativos. En algunos casos, se sintetizan compuestos inactivos predichos durante el modelado y a continuación se prueban para desarrollar una SAR (relación estructura-actividad) para compuestos que interactúan con una región específica de atpE.
Un experto en la técnica puede usar uno de los varios métodos para cribar entidades químicas fragmentos, compuestos o agentes con respecto a su capacidad para asociarse con atpE y más particularmente con los bolsillos de unión individuales o los sitios activos de atpE. Este procedimiento puede comenzar mediante la inspección visual, por ejemplo, del sitio activo en el cribado informático basado en las coordenadas atómicas de atpE o atpE complejada con un ligando. Las entidades químicas, los compuestos o los agentes seleccionados se pueden situar a continuación en una variedad de orientaciones, o acoplarse dentro de un bolsillo de unión individual de atpE. El acoplamiento se puede efectuar usando un software tal como Quanta y Sybyl, seguido por minimización energética y dinámica molecular con campos de fuerza de la mecánica molecular estándar, tales como CHARMM y AMBER.
Programas informáticos especializados también pueden ayudar en el procedimiento de selección de entidades químicas. Estos incluyen, pero no se limitan a: GRID (Goodford, P. J., "A Computational Procedure for Determining Energetically Favorable Binding Sites on Biologically Important Macromolecules," J. Med. Chem. 28:849-857 (1985), disponible de Oxford University, Oxford, RU); MCSS (Miranker, A. y M. Karplus, "Functionality Maps of Binding Sites: A Multiple Copy Simultaneous Search Method." Proteins: Structure, Function and Genetics 11: 29-34 (1991), disponible de Molecular Simulations, Burlington, Mass.); AUTODOCK (Goodsell, D. S. y A. J. Olsen, "Automated Docking of Substrates to Proteins by Simulated Annealing" Proteins: Structure. Function, and Genetics 8:195-202 (1990), disponible de Scripps Research Institute, La Jolla, Calif.); y DOCK (Kuntz, I. D. y cols., "A Geometric Approach to Macromolecule-Ligand Interactions," J.-Mol. Biol. 161:269-288 (1982), disponible de University of California, San Francisco, Calif.).
El uso de una software tal como GRID, un programa que determina probables sitios de interacción entre sondas con diversas características de los grupos funcionales y la superficie macromolecular, se usa para analizar los sitios superficiales para determinar estructuras de proteínas o compuestos inhibidores similares. Los cálculos de GRID, con grupos inhibidores adecuados en moléculas (p. ej., aminas primarias protonadas) como la sonda se usan para identificar puntos calientes potenciales alrededor de posiciones accesibles a niveles de contorno energético adecuados. El programa DOCK se puede usar para analizar un sitio activo o sitio de unión al ligando y sugiere ligandos con propiedades estéricas complementarias.
Una vez que se han seleccionado las entidades químicas, los compuestos o los agentes adecuados, se pueden ensamblar en un solo ligando o compuesto o inhibidor o activador. En ensamblaje puede proceder mediante inspección visual de la relación de los fragmentos entre sí sobre la imagen tridimensional. Esto puede estar seguido por construcción de modelos manuales usando un software tal como Quanta o Sybyl.
Programas útiles para ayudar a conectar las entidades químicas, los compuestos o los agentes individuales incluyen, pero no se limitan a: CAVEAT (Bartlett, P. A. y cols., "CAVEAT: A Program to Facilitate the Structure-Derived Design of Biologically Active Molecules." En Molecular Recognition in Chemical and Biological Problems, Special Pub., Royal Chem. Soc., 78, pp. 82-196 (1989)); sistemas de bases de datos 3D tales como MACCS-3D (MDL Information Systems, San Leandro, Calif. y Martin, Y.C., "3D Database Searching in Drug Design", J. Med. Chem. 35: 2145-2154 (1992); y HOOK (disponible de Molecular Simulations, Burlington, Mass.).
Están disponibles varias metodologías para buscar bases de datos tridimensionales para probar hipótesis de farmacóforos y seleccionar compuestos para el cribado. Estas incluyen el programa CAVEAT (Bacon y cols., J. Mol. Biol. 225:849-858 (1992)). A modo de ejemplo, CAVEAT usa bases de datos de compuestos cíclicos que pueden actuar como "espaciadores" para conectar cualquier número de fragmentos químicos ya situados en el sitio activo. Esto permite a un experto en la técnica generar rápidamente cientos de posibles modos de conectar los fragmentos que ya se sabe o se sospecha que son necesarios para una unión fuerte.
En lugar de proceder a construir un activador, agonista o antagonista inhibidor de atpE en un modo por etapas una entidad química en un momento que se describe anteriormente, estos compuestos se pueden diseñar como un todo
o "de novo" usando bien un sitio activo vacío o que incluye opcionalmente alguna porción o porciones de moléculas conocidas. Estos métodos incluyen: LUDI (Bohm, H.-J., "The Computer Program LUDI: A New Method for the De Novo Design of Enzyme Inhibitors", J. ComR. Aid. Molec. Design, 6, pp. 61-78 (1992), disponible de Biosym Technologies, San Diego, Calif.); LEGEND (Nishibata, Y. y A. Itai, Tetrahedron 47:8985 (1991), disponible de Molecular Simulations, Burlington, Mass.); y LeapFrog (disponible de Tripos Associates, St. Louis, Mo.).
A modo de ejemplo, el programa LUDI puede determinar una lista de sitios de interacción en los que situar tanto un enlace de hidrógeno como fragmentos hidrófobos. LUDI usa a continuación una biblioteca de enlazadores para conectar hasta cuatro sitios de interacción diferentes en los fragmentos. A continuación, se usan grupos "de puenteo" menores tales como --CH2-y --COO--para conectar estos fragmentos. Por ejemplo, para la enzima
10 5
15
25
35
45
55
65
DHFR, las colocaciones de grupos funcionales clave en el bien conocidos inhibidor metotrexato fueron reproducidas por LUDI. Véase además Rotstein y Murcko, J. Med. Chem. 36: 1700-1710 (1992).
Según esta invención, también se pueden emplear otras técnicas de modelado molecular. Véase, p. ej., Cohen, N.
C. y cols., "Molecular Modeling Software and Methods for Medicinal Chemistry, J. Med. Chem. 33:883-894 (1990). Véase además Navia, M. A. y M. A. Murcko, "The Use of Structural Information in Drug Design," Current Opinions in Structural Biology, 2, pp. 202-210 (1992).
Una vez que un compuesto se ha diseñado o seleccionado mediante los métodos anteriores, la afinidad con la que ese compuesto se puede unir o asociar con atpE se puede probar y optimizar mediante evaluación informatizada y/o al probar la actividad biológica después de sintetizar el compuesto. Los inhibidores o los compuestos pueden interactuar con la atpE en más de una conformación que sea similar en la energía de unión global. En esos casos, la energía de deformación de la unión se toma como la diferencia entre la energía del compuesto libre y la energía media de las conformaciones observadas cuando el compuesto se une a atpE.
Un compuesto diseñado o seleccionado por unirse o asociarse con atpE se puede optimizar informáticamente de forma adicional de modo que en su estado unido preferiblemente carezca de interacción electrostática repulsiva con atpE. Estas interacciones no complementarias (p. ej., electrostáticas) incluyen interacciones repulsivas carga-carga, dipolo-dipolo y carga-dipolo. Específicamente, la suma de todas las interacciones electrostáticas entre el inhibidor y atpE cuando el inhibidor está unido preferiblemente realiza una contribución neutra o favorable a la entalpía de unión. También se diseñarán mediante estos métodos compuestos que se unen débilmente, a fin de determinar SAR. Véanse, por ejemplo, las Solicitudes de EE. UU. Nº 60/275.629, 60/331.235, 60/379.617 y 10/097.249.
Está disponible en la técnica un software informático específico para evaluar la energía de deformación y la interacción electrostática de los compuestos. Ejemplos de programas diseñados para estos usos incluyen: Gaussian 92, revisión C (M. J. Frisch, Gaussian, Inc., Pittsburgh, Pa., COPYRGT 1992); AMBER, versión 4.0 (P. A. Kollman, University of California at San Francisco, COPYRGT 1994); QUANTA/CHARMM (Molecular Simulations, Inc., Burlington, Mass. COPYRGT 1994); e Insight II/Discover (Biosysm Technologies Inc., San Diego, Calif. COPYRGT 1994). Otros sistemas de hardware y paquetes de software serán conocidos por los expertos en la técnica.
Una vez que un compuesto que se asocia con atpE se ha seleccionado o diseñado óptimamente, según se describe anteriormente, se pueden hacer entonces sustituciones en algunos de sus átomos o grupos laterales a fin de mejorar o modificar sus propiedades de unión. Generalmente, las sustituciones iniciales son conservativas, es decir, el grupo de sustitución tendrá aproximadamente iguales tamaño, conformación, hidrofobia y carga que el grupo original. Por supuesto, se debe entender que se pueden evitar componentes conocidos en la técnica por alterar la conformación. Estos compuestos químicos sustituidos se pueden analizar a continuación con respecto a la eficacia de ajuste a atpE mediante los mismos métodos informáticos descritos con detalle, anteriormente.
La presente invención proporciona además sistemas, particularmente sistemas informáticos, que contienen las coordenadas de secuencia y/o estructura descritas en la presente. Estos sistemas están diseñados para realizar la determinación estructural y el diseño racional de fármacos para atpE o para el sitio de unión en la parte F0 de la ATPasa. Los sistemas informáticos se refieren a los medios de hardware, los medios de software y los medios de almacenamiento de datos usados para analizar las coordenadas de secuencia y/o estructura de la presente invención en cualquiera de los métodos informáticos descritos con detalle, anteriormente. Los medios de hardware mínimos del sistema informático de la presente invención comprenden una unidad de procesamiento central (CPU), medios de entrada, medios de salida y medios de almacenamiento de datos. Un experto en la técnica puede apreciar fácilmente cuáles de los sistemas informáticos actualmente disponibles son adecuados para el uso en la presente invención.
Según esto, un objetivo de la presente invención es proporcionar un medio de almacenamiento de datos legible informáticamente que contenga las coordenadas estructurales descritas en la presente. Según se usa en la presente, "medio de almacenamiento de datos legible informáticamente" se refiere a cualquier medio que pueda ser leído a al que se pueda acceder directamente mediante un ordenador. Estos medios incluyen, pero no se limitan a: medios de almacenamiento magnéticos, tales como discos flexibles, medios de almacenamiento en disco duro y cinta magnética; medios de almacenamiento ópticos tales como discos ópticos o CD-ROM; medios de almacenamiento eléctricos tales como RAM y ROM; e híbridos de estas categorías tales como medios de almacenamiento magnéticos/ópticos.
Métodos de tratamiento
Como ya se mencionó anteriormente, también es un objetivo de la presente invención proporcionar el uso de compuestos identificados usando cualquiera de los susodichos métodos de cribado en un método para tratar a un sujeto con una infección microbiana. En general, los patógenos bacterianos se pueden clasificar como patógenos grampositivos o gramnegativos. Se considera generalmente que los compuestos antimicrobianos con actividad contra patógenos tanto grampositivos como gramnegativos tienen un amplio espectro de actividad. Los compuestos de la presente invención se consideran activos contra patógenos bacterianos grampositivos y/o gramnegativos. En
11
imagen8
imagen9
imagen10
5
15
25
35
45
55
estreptomicina, amikacina, etambutol y moxifloxacina. Un análisis adicional de mutantes de M. tuberculosis y M. smegmatis con una sensibilidad reducida a J mostraba que no había mutaciones en las regiones de ADN girasa gyrA y gyrB, secuencias en las que típicamente se desarrolla resistencia a quinolonas. Esto confirma que el objetivo molecular para J es diferente del de las fluoroquinolonas.
Un enfoque para determinar el objetivo molecular para J e inferir un mecanismo de acción es identificar y comparar mutaciones que confieren resistencia en cepas de M. tuberculosis y M. smegmatis sensibles y resistentes. Los genomas de la cepa de M. tuberculosis BK12 resistente y las dos cepas de M. smegmatis R09 y R10 resistentes, así como la M. smegmatis parental, se secuenciaron casi hasta la terminación. Se identificaron mutaciones que confieren resistencia mediante el análisis comparativo de las secuencias genómicas de cepas de M. tuberculosis y
M. smegmatis sensibles y resistentes (Fig. 2). Se mostró que el único gen afectado en los tres mutantes independientes frente al tipo silvestre parental correspondiente codifica atpE, una parte de la subunidad F0 de ATP sintasa. Esto sugiere que atpE es responsable de la resistencia a J en las cepas mutantes, indicando que J inhibe un nuevo objetivo de M. tuberculosis, la bomba de protones de ATP sintasa.
Se realizaron estudios complementarios para mostrar que el gen de atpE mutante es responsable de la resistencia a J y mediante inferencia directa que el producto del gen de atpE es el objetivo de J en las micobacterias. Dado el hecho de que se sabe que todos los genes del operón de ATP sintasa tienen que ser expresados de un modo coordinado, es decir todos los genes que codifican la parte F0 tienen que ser expresados desde la misma localización, se amplificó la parte F0 del operón a partir de la cepa de M. smegmatis resistente (D32V) y se seleccionaron clones que no adquirieran mutaciones adicionales a través del procedimiento de PCR. Se transformó
M. smegmatis silvestre con un plásmido que contenía el fragmento F0 mutante así seleccionado. Esto volvía las células resistentes a J con una MIC prácticamente idéntica a la de la cepa resistente M. smegmatis R09 (D32V),. Además, cuando el plásmido se reaislaba de estos transformantes y el gen de atpE se secuenciaba, se mostró que había permanecido el alelo mutante (D32V).
El efecto real de DARQ J sobre la producción de ATP en M. tuberculosis se demostró adicionalmente al medir el efecto de J sobre el ATP celular total presente en las micobacterias usando el ATP Bioluminescence Luciferase Assay Kit HS II de Roche. Este ensayo se basa en la conversión conducida por ATP de D-luciferina en oxiluciferina que se puede medir a 526 nm.
imagen11
Brevemente, se probó el efecto de DARQ J sobre el ATP total en M. tuberculosis tanto silvestre como en la cepa mutante. Se usó DCCD, que es un inhibidor muy conocido de ATP sintasa, como un control positivo y se usó isoniazida, que es un inhibidor para la biosíntesis de ciertos componentes de la pared celular, pero no tiene efecto sobre la producción de ATP, como un control negativo.
Como se puede observar en la Fig. 3, el tratamiento de la M. tuberculosis silvestre con DARQ J conduce a una disminución dependiente de la dosis en la producción de ATP en estas bacterias. En contraste, la isoniazida no tiene efecto sobre la producción de ATP. Como ya se describió anteriormente en la presente, exponer estas bacterias a una alta concentración de la DARQ J elevaba los mutantes de M. tuberculosis resistentes a diarilquinolinas. Cuando estas M. tuberculosis resistentes se trataban con DARQ J, estas bacterias no mostraban ninguna disminución en la producción de ATP incluso con 100 veces la concentración inhibidora mínima (MIC) de este compuesto. En contraste DCCD era capaz de bloquear la producción de ATP en estos bacilos, sugiriendo que DARQ J y DCCD tienen diferentes bolsillos de unión en ATP sintasas.
Modelado e identificación informáticos de la región de unión de DARQ J
Para investigar adicionalmente el diferente modo de acción de DCCD y DARQ J, se generó un modelo 3D generado informáticamente de la ATP sintasa para la M. tuberculosis tanto silvestre como mutante DARQ J. Las coordenadas atómicas proporcionadas en las Tablas 4 y 5 se computaron al preparar un modelo de la estructura 3D de las secuencias de aminoácidos publicadas P63691 y AJ865377. Se encontró que el sitio de unión real de DARQ J estaba situado en la zona de contacto de las subunidades A y C, más en particular alrededor del aminoácido 'Arg 210' de la subunidad A y 'Glu 61' de la subunidad C, como se indica en las tablas 3, 4 o 5. Esto se ajusta bien a los resultados observados para el cribado de mutaciones que confieren resistencia en cepas de M. tuberculosis y M. smegmatis sensibles y resistentes, descritas anteriormente.
El modelo se basa en la optimización de la colocación relativa de las hélices A y C de la estructura de ATPasa y la orientación del esqueleto y la cadena lateral de aminoácidos hacia una deformación interna calculada mínima. La
15 5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
geometría se obtuvo por medio de un número de ciclos de estimulación dinámica molecular y relajaciones mecánicas moleculares partiendo de la geometría helicoidal general previamente publicada de un organismo diferente [E-Coli PDB código de entrada 1C17 -V.K. Rastogi y M.E. Girvin, Nature, 402, 263-268 (1999)]. La dinámica molecular y la relajación realizaron ambas con una parametrización de campo forzado basada en MMFF94s [Halgren, T.A. (1996), J. Comput. Chem., 17, 490-519], pero se podría emplear cualquier estado del software de dinámica molecular de la técnica [Berendsen, H.J.C., van der Spoel, D. y van Drunen, R., Comp. Phys. Comm. 91 (1995), 43-56; Lindahl, E., Hess, B. y van der Spoel, D., J. Mol. Mod. 7 (2001) 306-317.] seguido por una optimización geométrica adecuada [J. W. Ponder y F. M. Richards, J. Comput. Chem., 8, 1016-1024 (1987).].
Las coordenadas calculada en las tablas 3, 4 y 5 comprenden la parte (con un volumen de radio de 30 angstroms) de la estructura predicha de la región considerada pertinente para la inhibición de la actividad de ATPasa de MTB en estas enzimas, basándose en el modo de inhibición propuesto y en la presencia de mutaciones puntuales inductoras de resistencia en ensayos biológicos.
Análisis
La DARQ J es un miembro de una nueva clase química de agentes anti-TB con una MIC igual a o menor que la de compuestos de referencia. Su espectro es único en su especificidad para micobacterias, incluyendo especies atípicas importantes en seres humanos; MAC, M. kansasii y las M. fortuitum y M. abscessus de desarrollo rápido. Este espectro antimicobacterianamente específico difiere del de la isoniazida, que no tiene actividad contra MAC. El uso clínico de J se dirigirá en gran parte al tratamiento de TB e infecciones micobacterianas. La incapacidad de J para inhibir no micobacterias se debe traducir en que se desarrollen menos presión menos y menor riesgo de resistencia en otras especies bacterianas, en comparación con anticuerpos con espectros más amplios (9).
El objetivo y el mecanismo de acción de J es diferente del de otros agentes anti-TB. Una comparación de las secuencias de ATP sintasas de diferentes bacterias y de ATP sintasa eucariótica, y en particular de la cadena C de la subunidad F0 del complejo de ATPasa, junto con el modelado 3D de las ATP sintasas de la M. tuberculosis silvestre y mutante, proporciona una razón fundamental para la especificidad del espectro antibacteriano y, en un grado menor, el perfil de seguridad.
El estudio dinámico realizado sobre los modelos de ATPasas de Mycobacterium construidos muestran que en estas estructuras existe una cavidad (el sitio de unión según las coordenadas atómicas de la Tabla 3) en la zona de contacto de las subunidades A y C (alrededor del aminoácido 'Arg 210' de la subunidad A y 'Glu 61' de la subunidad C). Las tablas 4 y 5 proporcionan las coordenadas de dos variantes estudiadas de los átomos alrededor de este sitio, y su posición media. El inhibidor DARQ J es capaz de interferir con la etapa de transferencia protónica normal que implica a estos dos aminoácidos al prohibir que estos dos aminoácidos interactúen. La estereoespecificidad de DARQ J se puede entender por la asimetría del sitio de unión predicho; el enantiómero quiral activo se ajusta a esta cavidad óptimamente, otras formas del compuesto y variantes de ATPasa coinciden peor.
El sitio de unión que los presentes inventores han derivado está sobre una parte totalmente diferente del sistema de ATPasa que DCCD (las DARQs están en la parte de la membrana de la enzima, la unión a DCCD se produce aproximadamente 90 angstroms más allá dentro de la célula; basándose en la estructura de PDB de una cristal de ATPasa bovina "1E79" – publicado en C.Gibbons, M.G.Montgomery, A.G.W. Leslie, J.E.Walker, Nat.Struct.Biol.,7,1055 (2000). Por lo tanto, los átomos que podrían estar implicados potencialmente con la inhibición tipo DCCD de ATPasa de MTB no están en la región listada en las tablas de coordenadas del sitio de unión (que solo abarca junto la porción de membrana de la enzima) y, recíprocamente, esta parte de la enzima implicada en el modo de inhibición de DARQ J no está presente en la estructura de "1E79" publicada (que sólo muestra la parte intracelular). Esta diferencia en el sitio de unión puede explicar la diferente respuesta de M. tuberculosis observada en el ensayo de producción de ATP in vitro.
A pesar de lo anterior, estudios más antiguos con DCCD sobre ATPasas mitocondriales sugieren otro sitio de unión situado alrededor de un aminoácido ácido en un ambiente lipófilo de la región F0 de la enzima, p. ej. por Sebald W, Machleidt W, Wachter E., Proc Natl Acad Sci U S A. 1980 Feb;77(2):785-789. Esta posición de unión en ATPasas mitocondriales se puede considerar análoga a la descrita para la especie Mycobacterium en la presente.
Al mismo tiempo, la elección como objetivo de un nuevo mecanismo asegura que las capas de TB actualmente en circulación con mutaciones de resistencia a tratamientos disponibles no sean resistentes cruzadamente a J. Es obvio a partir de los presentes estudios in vitro que J tiene un efecto antibacteriano al menos tan alto contra aislados de MDR-TB, incluso contra aquellos con una resistencia amplia a cuatro fármacos, como contra cepas de M. tuberculosis pansensibles silvestres normales. Esta observación es importante ya que demuestra claramente que no hay resistencia cruzada con fármacos anti-TB existentes. Dada la identificación adicional del bolsillo de unión de la parte de membrana de la ATPasa, los resultados de este estudio permitirán un desarrollo adicional de nuevos compuestos antibacterianos, en particular compuestos antimicobacterianos que eligen como objetivo la síntesis de ATP en estos organismos.
16
REFERENCIAS
5 1. Global Alliance for TB Drug Development, Developing a faster TB cure (2004; http://www.tballiance.org).
2. E. L. Corbett y cols., Arch. Intern. Med. 163, 1009 (2003).
3. UNAIDS, AIDS epidemic update 2003 (2003; www.unaids.org/Unaids/EN/Resources).
4. World Health Organization, Tuberculosis (2004; http://www.who.int/health topics/tuberculosis/en/).
5. R. J. O'Brien, P. P. Nunn, Am. J. Respir. Crit. Care Med. 163, 1055 (2001).
10 6. World Health Organization, Tuberculosis Fact Sheet No 104 (2004; http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs104/en/).
7. A. J. Claxton, J. Cramer, C. Pierce, Clin. Ther. 23, 1296 (2001).
8. N. Lounis y cols., Antimicrob. Agents Chemother. 45, 3482 (2001).
9. A. S. Ginsburg, J. H. Grosset, W. R. Bishai, Lancet Infect. Dis. 3, 432 (2003). 15 10. C. K. Stover y cols., Nature 405, 962 (2000).
11. Guillemont J, Emile G, Patente (Publicación Internacional Número WO 2004/011436. Fecha de Publicación Internacional 5 de febrero de 2004).
12. Barbachyn MR, Brickner SJ, Patente (Publicación Internacional Número: WO 93/09103, Fecha de Publicación Internacional: 13 de mayo de 1993, Solicitud Internacional Número: PCT/US92/08267, Fecha de Presentación 20 Internacional: 1992).
13. R. Jain, B. Vaitilingam, A. Nayyar, P. B. Palde, Bioorg. Med. Chem. Lett. 13, 1051 (2003).
14. C. M. Kunin, W. Y. Ellis, Antimicrob. Agents Chemother. 44, 848 (2000).
15. L. Savini, L. Chiasserini, A. Gaeta, C. Pellerano, Bioorg. Med Chem 10, 2193 (2002).
16. S. Vangapandu, M. Jain, R. Jain, S. Kaur, P. P. Singh, Bioorg. Med. Chem. 12, 2501 (2004). 25 17. K. Andries y cols., Science 307, 223 (2005).
17
imagen12
imagen13
imagen14
Tabla 3 (continuación)
ÁTOMO
90 SD MET L 17 10,846 -13,177 10,983 1,00 0,00 S
ÁTOMO
91 CE MET L 17 11,507 -14,142 9,610 1,00 0,00 C
ÁTOMO
92 N GLY L 19 7,665 -8,503 5,731 1,00 0,00 N
ÁTOMO
93 CA GLY L 19 6,955 -8,955 4,577 1,00 0,00 C
ÁTOMO
94 C GLY L 19 6,222 -10,215 4,817 1,00 0,00 C
ÁTOMO
95 O GLY L 19 5,027 -10,326 4,589 1,00 0,00 O
ÁTOMO
96 N GLY L 20 7,028 -11,189 5,274 1,00 0,00 N
ÁTOMO
97 CA GLY L 20 6,545 -12,472 5,462 1,00 0,00 C
ÁTOMO
98 C GLY L 20 5,400 -12,516 6,352 1,00 0,00 C
ÁTOMO
99 O GLY L 20 4,328 -12,921 5,962 1,00 0,00 O
ÁTOMO
100 N ALA L 21 5,696 -12,094 7,607 1,00 0,00 N
ÁTOMO
101 CA ALA L 21 4,773 -12,247 8,668 1,00 0,00 C
ÁTOMO
102 C ALA L 21 3,441 -11,568 8,418 1,00 0,00 C
ÁTOMO
103 O ALA L 21 2,401 -12,101 8,724 1,00 0,00 O
ÁTOMO
104 CB ALA L 21 5,365 -11,795 9,953 1,00 0,00 C
ÁTOMO
105 N ILE L 22 3,503 -10,313 7,908 1,00 0,00 N
ÁTOMO
106 CA ILE L 22 2,293 -9,551 7,618 1,00 0,00 C
ÁTOMO
107 C ILE L 22 1,551 -10,212 6,464 1,00 0,00 C
ÁTOMO
108 O ILE L 22 0,349 -10,406 6,550 1,00 0,00 O
ÁTOMO
109 CB ILE L 22 2,557 -8,055 7,417 1,00 0,00 C
ÁTOMO
110 CG1 ILE L 22 2,757 -7,350 8,740 1,00 0,00 C
ÁTOMO
111 CG2 ILE L 22 1,424 -7,339 6,679 1,00 0,00 C
ÁTOMO
112 CD1 ILE L 22 3,979 -7,733 9,410 1,00 0,00 C
ÁTOMO
113 N GLY L 23 2,307 -10,532 5,345 1,00 0,00 N
ÁTOMO
114 CA GLY L 23 1,730 -11,131 4,153 1,00 0,00 C
ÁTOMO
115 C GLY L 23 0,953 -12,395 4,473 1,00 0,00 C
ÁTOMO
116 O GLY L 23 -0,212 -12,517 4,150 1,00 0,00 O
ÁTOMO
117 N ALA L 24 1,683 -13,360 5,127 1,00 0,00 N
ÁTOMO
118 CA ALA L 24 1,102 -14,632 5,548 1,00 0,00 C
ÁTOMO
119 C ALA L 24 -0,076 -14,444 6,468 1,00 0,00 C
ÁTOMO
120 O ALA L 24 -1,054 -15,158 6,348 1,00 0,00 O
ÁTOMO
121 CB ALA L 24 2,105 -15,541 6'. 198 1,00 0,00 C
ÁTOMO
122 N GLY L 25 0,067 -13,469 7,438 1,00 0,00 N
ÁTOMO
123 CA GLY L 25 -0,962 -13,170 8,392 1,00 0,00 C
ÁTOMO
124 C GLY L 25 -2,268 -12,811 7,747 1,00 0,00 C
ÁTOMO
125 O GLY L 25 -3,300 -13,370 8,064 1,00 0,00 O
ÁTOMO
126 N ILE L 26 -2,180 -11,796 6,833 1,00 0,00 N
ÁTOMO
127 CA ILE L 26 -3,331 -11,306 6,108 1,00 0,00 C
ÁTOMO
128 C ILE L 26 -3,969 -12,476 5,367 1,00 0,00 C
ÁTOMO
129 O ILE L 26 -5,165 -12,691 5,457 1,00 0,00 O
ÁTOMO
130 CB ILE L 26 -2,991 -10,132 5,190 1,00 0,00 C
ÁTOMO
131 CG1 ILE L 26 -2,576 -8,894 5,997 1,00 0,00 C
ÁTOMO
132 CG2 ILE L 26 -4,165 -9,810 4,293 1,00 0,00 C
ÁTOMO
133 CD1 ILE L 26 -1,882 -7,842 5,205 1,00 0,00 C
ÁTOMO
134 N GLY L 27 -3,109 -13,215 4,602 1,00 0,00 N
21
imagen15
imagen16
imagen17
imagen18
Tabla 4
ÁTOMO
1 N ALA A 21 6,345 -14,031 -0,384 1,00 0,00 N
ÁTOMO
2 CA ALA A 21 5,507 -14,175 0,805 1,00 0,00 C
ÁTOMO
3 C ALA A 21 4,183 -13,425 0,676 1,00 0,00 C
ÁTOMO
4 O ALA A 21 3,126 -14,005 0,893 1,00 0,00 O
ÁTOMO
5 CB ALA A 21 6,228 -13,751 2,081 1,00 0,00 C
ÁTOMO
6 N ILE A 22 4,282 -12,074 0,350 1,00 0,00 N
ÁTOMO
7 CA ILE A 22 3,090 -11,221 0,235 1,00 0,00 C
ÁTOMO
8 C ILE A 22 2,159 -11,728 -0,869 1,00 0,00 C
ÁTOMO
9 O ILE A 22 0,946 -11,670 -0,719 1,00 0,00 O
ÁTOMO
10 CB ILE A 22 3,362 -9,687 0,133 1,00 0,00 C
ÁTOMO
11 CG1 ILE A 22 4,114 -9,223 -1,134 1,00 0,00 C
ÁTOMO
12 CG2 ILE A 22 4,108 -9,189 1,374 1,00 0,00 C
ÁTOMO
13 CD1 ILE A 22 3,187 -8,776 -2,254 1,00 0,00 C
ÁTOMO
14 N GLY A 23 2,782 -12,213 -2,016 1,00 0,00 N
ÁTOMO
15 CA GLY A 23 2,049 -12,734 -3,156 1,00 0,00 C
ÁTOMO
16 C GLY A 23 1,095 -13,831 -2,732 1,00 0,00 C
ÁTOMO
17 O GLY A 23 -0,107 -13,720 -2,928 1,00 0,00 O
ÁTOMO
18 N ALA A 24 1,708 -14,925 -2,131 1,00 0,00 N
ÁTOMO
19 CA ALA A 24 0,944 -16,088 -1,682 1,00 0,00 C
ÁTOMO
20 C ALA A 24 -0,144 -15,660 -0,712 1,00 0,00 C
ÁTOMO
21 O ALA A 24 -1,298 -16,015 -0,897 1,00 0,00 O
ÁTOMO
22 CB ALA A 24 1,797 -17,177 -1,039 1,00 0,00 C
ÁTOMO
23 N GLY A 25 0,280 -14,904 0,373 1,00 0,00 N
ÁTOMO
24 CA GLY A 25 -0,589 -14,587 1,491 1,00 0,00 C
ÁTOMO
25 C GLY A 25 -1,877 -13,947 1,018 1,00 0,00 C
ÁTOMO
26 O GLY A 25 -2,953 -14,520 1,129 1,00 0,00 O
ÁTOMO
27 N ILE A 26 -1,699 -12,685 0,473 1,00 0,00 N
ÁTOMO
28 CA ILE A 26 -2,827 -11,831 0,104 1,00 0,00 C
ÁTOMO
29 C ILE A 26 -3,654 -12,542 -0,969 1,00 0,00 C
ÁTOMO
30 O ILE A 26 -4,871 -12,600 -0,857 1,00 0,00 O
ÁTOMO
31 CB ILE A 26 -2,401 -10,397 -0,323 1,00 0,00 C
ÁTOMO
32 CG1 ILE A 26 -1,597 -9,649 0,770 1,00 0,00 C
ÁTOMO
33 CG2 ILE A 26 -3,603 -9,553 -0,763 1,00 0,00 C
ÁTOMO
34 CD1 ILE A 26 -2,318 -9,454 2,099 1,00 0,00 C
ÁTOMO
35 N GLY A 27 -2,942 -13,062 -2,046 1,00 0,00 N
ÁTOMO
36 CA GLY A 27 -3,584 -13,678 -3,199 1,00 0,00 C
ÁTOMO
37 C GLY A 27 -4,550 -14,779 -2,803 1,00 0,00 C
ÁTOMO
38 O GLY A 27 -5,716 -14,754 -3,175 1,00 0,00 O
ÁTOMO
39 N ASP A 28 -3,985 -15,780 -2,024 1,00 0,00 N
ÁTOMO
40 CA ASP A 28 -4,732 -16,946 -1,539 1,00 0,00 C
ÁTOMO
41 C ASP A 28 -5,998 -16,489 -0,825 1,00 0,00 C
ÁTOMO
42 O ASP A 28 -7,077 -17,007 -1,083 1,00 0,00 O
ÁTOMO
43 CB ASP A 28 -3,917 -17,846 -0,588 1,00 0,00 C
ÁTOMO
44 CG ASP A 28 -2,860 -18,655 -1,307 1,00 0,00 C
ÁTOMO
45 OD1 ASP A 28 -2,422 -18,431 -2,426 1,00 0,00 O
26
imagen19
imagen20
Tabla 4 (continuación)
ÁTOMO
135 O ALA K 31 -12,931 -11,178 10,696 1,00 0,00 O
ÁTOMO
136 CB ALA K 31 -9,624 -11,033 10,283 1,00 0,00 C
ÁTOMO
137 N GLY K 32 -11,816 -9,610 11,974 1,00 0,00 N
ÁTOMO
138 CA GLY K 32 -12,719 -9,669 13,109 1,00 0,00 C
ÁTOMO
139 C GLY K 32 -14,138 -9,365 12,675 1,00 0,00 C
ÁTOMO
140 O GLY K 32 -15,039 -10,185 12,801 1,00 0,00 O
ÁTOMO
141 N PHE K 53 -10,783 -14,377 18,969 1,00 0,00 N
ÁTOMO
142 CA PHE K 53 -9,482 -14,955 18,629 1,00 0,00 C
ÁTOMO
143 C PHE K 53 -8,723 -14,019 17,685 1,00 0,00 C
ÁTOMO
144 O PHE K 53 -7,574 -13,689 17,947 1,00 0,00 O
ÁTOMO
145 CB PHE K 53 -9,600 -16,376 18,045 1,00 0,00 C
ÁTOMO
146 CG PHE K 53 -8,257 -17,051 17,883 1,00 0,00 C
ÁTOMO
147 CD1 PHE K 53 -7,577 -17,020 16,639 1,00 0,00 C
ÁTOMO
148 CD2 PHE K 53 -7,660 -17,740 18,968 1,00 0,00 C
ÁTOMO
149 CE1 PHE K 53 -6,333 -17,661 16,487 1,00 0,00 C
ÁTOMO
150 CE2 PHE K 53 -6,416 -18,382 18,810 1,00 0,00 C
ÁTOMO
151 CZ PHE K 53 -5,753 -18,344 17,571 1,00 0,00 C
ÁTOMO
152 N PHE K 54 -9,409 -13,608 16,543 1,00 0,00 N
ÁTOMO
153 CA PHE K 54 -8,767 -12,782 15,516 1,00 0,00 C
ÁTOMO
154 C PHE K 54 -8,164 -11,541 16,176 1,00 0,00 C
ÁTOMO
155 O PHE K 54 -6,978 -11,270 16,042 1,00 0,00 O
ÁTOMO
156 CB PHE K 54 -9,706 -12,321 14,380 1,00 0,00 C
ÁTOMO
157 CG PHE K 54 -10,176 -13,399 13,433 1,00 0,00 C
ÁTOMO
158 CD1 PHE K 54 -9,257 -14,099 12,611 1,00 0,00 C
ÁTOMO
159 CD2 PHE K 54 -11,561 -13,654 13,273 1,00 0,00 C
ÁTOMO
160 CE1 PHE K 54 -9,716 -15,014 11,644 1,00 0,00 C
ÁTOMO
161 CE2 PHE K 54 -12,014 -14,563 12,300 1,00 0,00 C
ÁTOMO
162 CZ PHE K 54 -11,094 -15,240 11,482 1,00 0,00 C
ÁTOMO
163 N ILE K 55 -9,075 -10,749 16,863 1,00 0,00 N
ÁTOMO
164 CA ILE K 55 -8,727 -9,405 17,324 1,00 0,00 C
ÁTOMO
165 C ILE K 55 -7,693 -9,410 18,450 1,00 0,00 C
ÁTOMO
166 O ILE K 55 -6,827 -8,544 18,477 1,00 0,00 O
ÁTOMO
167 CB ILE K 55 -9,943 -8,495 17,647 1,00 0,00 C
ÁTOMO
168 CG1 ILE K 55 -10,898 -9,081 18,707 1,00 0,00 C
ÁTOMO
169 CG2 ILE K 55 -10,688 -8,166 16,349 1,00 0,00 C
ÁTOMO
170 CD1 ILE K 55 -12,005 -8,127 19,121 1,00 0,00 C
ÁTOMO
171 N THR K 56 -7,833 -10,391 19,426 1,00 0,00 N
ÁTOMO
172 CA THR K 56 -6,922 -10,464 20,567 1,00 0,00 C
ÁTOMO
173 C THR K 56 -5,505 -10,773 20,080 1,00 0,00 C
ÁTOMO
174 O THR K 56 -4,555 -10,147 20,530 1,00 0,00 O
ÁTOMO
175 CB THR K 56 -7,422 -11,383 21,713 1,00 0,00 C
ÁTOMO
176 OG1 THR K 56 -6,750 -11,036 22,925 1,00 0,00 O
ÁTOMO
177 CG2 THR K 56 -7,216 -12,880 21,504 1,00 0,00 C
ÁTOMO
178 N VAL K 57 -5,382 -11,788 19,134 1,00 0,00 N
ÁTOMO
179 CA VAL K 57 -4,079 -12,161 18,578 1,00 0,00 C
29
imagen21
Tabla 4 (continuación)
ÁTOMO
225 C TYR K 64 6,472 -8,042 19,015 1,00 0,00 C
ÁTOMO
226 O TYR K 64 7,665 -8,258 19,180 1,00 0,00 O
ÁTOMO
227 CB TYR K 64 5,069 -10,062 19,359 1,00 0,00 C
ÁTOMO
228 CG TYR K 64 4,322 -11,015 20,266 1,00 0,00 C
ÁTOMO
229 CD1 TYR K 64 4,486 -11,028 21,679 1,00 0,00 C
ÁTOMO
230 CD2 TYR K 64 3,483 -11,993 19,678 1,00 0,00 C
ÁTOMO
231 CE1 TYR K 64 3,829 -11,984 22,471 1,00 0,00 C
ÁTOMO
232 CE2 TYR K 64 2,857 -12,979 20,459 1,00 0,00 C
ÁTOMO
233 CZ TYR K 64 3,033 -12,965 21,859 1,00 0,00 C
ÁTOMO
234 OH TYR K 64 2,416 -13,902 22,671 1,00 0,00 O
ÁTOMO
235 N PHE K 65 5,971 -7,269 17,972 1,00 0,00 N
ÁTOMO
236 CA PHE K 65 6,881 -6,566 17,058 1,00 0,00 C
ÁTOMO
237 C PHE K 65 7,823 -5,649 17,839 1,00 0,00 C
ÁTOMO
238 O PHE K 65 9,014 -5,614 17,560 1,00 0,00 O
ÁTOMO
239 CB PHE K 65 6,180 -5,739 15,966 1,00 0,00 C
ÁTOMO
240 CG PHE K 65 5,527 -6,570 14,890 1,00 0,00 C
ÁTOMO
241 CD1 PHE K 65 4,136 -6,471 14,655 1,00 0,00 C
ÁTOMO
242 CE1 PHE K 65 3,536 -7,174 13,596 1,00 0,00 C
ÁTOMO
243 CZ PHE K 65 4,312 -8,000 12,767 1,00 0,00 C
ÁTOMO
244 CE2 PHE K 65 5,693 -8,121 12,994 1,00 0,00 C
ÁTOMO
245 CD2 PHE K 65 6,298 -7,409 14,046 1,00 0,00 C
ÁTOMO
246 N ASN K 67 8,600 -5,837 21,135 1,00 0,00 N
ÁTOMO
247 CA ASN K 67 9,499 -6,640 21,975 1,00 0,00 C
ÁTOMO
248 C ASN K 67 10,712 -7,094 21,170 1,00 0,00 C
ÁTOMO
249 O ASN K 67 11,841 -6,910 21,603 1,00. 0,00 O
ÁTOMO
250 CB ASN K 67 8,840 -7,875 22,619 1,00 0,00 C
ÁTOMO
251 CG ASN K 67 7,877 -7,498 23,726 1,00 0,00 C
ÁTOMO
252 OD1 ASN K 67 6,675 -7,388 23,534 1,00 0,00 O
ÁTOMO
253 ND2 ASN K 67 8,480 -7,263 24,941 1,00 0,00 N
ÁTOMO
254 N LEU K 68 10,429 -7,744 19,975 1,00 0,00 N
ÁTOMO
255 CA LEU K 68 11,456 -8,357 19,131 1,00 0,00 C
ÁTOMO
256 C LEU K 68 12,495 -7,303 18,752 1,00 0,00 C
ÁTOMO
257 O LEU K 68 13,684 -7,496 18,968 1,00 0,00 O
ÁTOMO
258 CB LEU K 68 10,830 -9,066 17,909 1,00 0,00 C
ÁTOMO
259 CG LEU K 68 11,796 -9,975 17,120 1,00 0,00 C
ÁTOMO
260 CD1 LEU K 68 11,014 -11,105 16,449 1,00 0,00 C
ÁTOMO
261 CD2 LEU K 68 12,577 -9,208 16,051 1,00 0,00 C
ÁTOMO
262 N GLY L 14 14,989 -7,715 8,662 1,00 0,00 N
ÁTOMO
263 CA GLY L 14 13,793 -6,924 8,905 1,00 0,00 C
ÁTOMO
264 C GLY L 14 12,803 -7,025 7,757 1,00 0,00 C
ÁTOMO
265 O GLY L 14 11,628 -7,291 7,964 1,00 0,00 O
ÁTOMO
266 N ILE L 16 12,496 -9,152 5,091 1,00 0,00 N
ÁTOMO
267 CA ILE L 16 11,861 -10,451 4,837 1,00 0,00 C
ÁTOMO
268 C ILE L 16 10,744 -10,700 5,848 1,00 0,00 C
ÁTOMO
269 O ILE L 16 9,660 -11,122 5,468 1,00 0,00 O
31
imagen22
imagen23
Tabla 4 (continuación)
ÁTOMO
360 O GLY L 32 -12,428 -18,788 7,620 1,00 0,00 O
ÁTOMO
361 N THR L 51 -11,764 -26,332 14,771 1,00 0,00 N
ÁTOMO
362 CA THR L 51 -10,467 -26,987 14,935 1,00 0,00 C
ÁTOMO
363 C THR L 51 -9,452 -26,599 13,848 1,00 0,00 C
ÁTOMO
364 O THR L 51 -8,351 -26,190 14,199 1,00 0,00 O
ÁTOMO
365 CB THR L 51 -10,589 -28,519 15,109 1,00 0,00 C
ÁTOMO
366 OG1 THR L 51 -11,578 -28,792 16,105 1,00 0,00 O
ÁTOMO
367 CG2 THR L 51 -9,288 -29,157 15,580 1,00 0,00 C
ÁTOMO
368 N PRO L 52 -9,797 -26,799 12,499 1,00 0,00 N
ÁTOMO
369 CA PRO L 52 -8,818 -26,678 11,427 1,00 0,00 C
ÁTOMO
370 C PRO L 52 -8,028 -25,377 11,428 1,00 0,00 C
ÁTOMO
371 O PRO L 52 -6,825 -25,388 11,203 1,00 0,00 O
ÁTOMO
372 CB PRO L 52 -9,592 -26,833 10,125 1,00 0,00 C
ÁTOMO
373 CG PRO L 52 -10,863 -27,542 10,527 1,00 0,00 C
ÁTOMO
374 CD PRO L 52 -11,104 -27,123 11,962 1,00 0,00 C
ÁTOMO
375 N PHE L 53 -8,777 -24,222 11,638 1,00 0,00 N
ÁTOMO
376 CA PHE L 53 -8,158 -22,904 11,575 1,00 0,00 C
ÁTOMO
377 C PHE L 53 -7,070 -22,835 12,640 1,00 0,00 C
ÁTOMO
378 O PHE L 53 -5,919 -22,563 12,328 1,00 0,00 O
ÁTOMO
379 CB PHE L 53 -9,165 -21,749 11,710 1,00 0,00 C
ÁTOMO
380 CG PHE L 53 -8,486 -20,406 11,576 1,00 0,00 C
ÁTOMO
381 CD1 PHE L 53 -8,068 -19,938 10,308 1,00 0,00 C
ÁTOMO
382 CD2 PHE L 53 -8,232 -19,601 12,715 1,00 0,00 C
ÁTOMO
383 CE1 PHE L 53 -7,415 -18,699 10,186 1,00 0,00 C
ÁTOMO
384 CE2 PHE L 53 -7,598 -18,352 12,585 1,00 0,00 C
ÁTOMO
385 CZ PHE L 53 -7,185 -17,903 11,320 1,00 0,00 C
ÁTOMO
386 N PHE L 54 -7,493 -23,069 13,942 1,00 0,00 N
ÁTOMO
387 CA PHE L 54 -6,624 -22,780 15,082 1,00 0,00 C
ÁTOMO
388 C PHE L 54 -5,283 -23,500 14,934 1,00 0,00 C
ÁTOMO
389 O PHE L 54 -4,238 -22,899 15,149 1,00 0,00 O
ÁTOMO
390 CB PHE L 54 -7,258 -23,112 16,446 1,00 0,00 C
ÁTOMO
391 CG PHE L 54 -8,520 -22,346 16,780 1,00 0,00 C
ÁTOMO
392 CD1 PHE L 54 -8,627 -20,946 16,577 1,00 0,00 C
ÁTOMO
393 CD2 PHE L 54 -9,626 -23,027 17,347 1,00 0,00 C
ÁTOMO
394 CE1 PHE L 54 -9,810 -20,260 16,905 1,00 0,00 C
ÁTOMO
395 CE2 PHE L 54 -10,796 -22,330 17,701 1,00 0,00 C
ÁTOMO
396 CZ PHE L 54 -10,892 -20,948 17,473 1,00 0,00 C
ÁTOMO
397 N ILE L 55 -5,352 -24,850 14,595 1,00 0,00 N
ÁTOMO
398 CA ILE L 55 -4,139 -25,666 14,492 1,00 0,00 C
ÁTOMO
399 C ILE L 55 -3,201 -25,129 13,402 1,00 0,00 C
ÁTOMO
400 O ILE L 55 -2,003 -25,002 13,627 1,00 0,00 O
ÁTOMO
401 CB ILE L 55 -4,402 -27,198 14,419 1,00 0,00 C
ÁTOMO
402 CG1 ILE L 55 -3,088 -27,977 14,635 0,00 C
ÁTOMO
403 CG2 ILE L 55 -5,106 -27,651 13,136 1,00 0,00 C
ÁTOMO
404 CD1 ILE L 55 -3,303 -29,446 14,966 1,00 0,00 C
34
imagen24
Tabla 4 (continuación)
ÁTOMO
450 O ALA L 62 8,733 -21,152 11,454 1,00 0,00 O
ÁTOMO
451 CB ALA L 62 6,351 -22,844 12,734 1,00 0,00 C
ÁTOMO
452 N ALA L 63 7,235 -21,777 9,810 1,00 0,00 N
ÁTOMO
453 CA ALA L 63 8,205 -21,820 8,714 1,00 0,00 C
ÁTOMO
454 C ALA L 63 9,043 -20,543 8,636 1,00 0,00 C
ÁTOMO
455 O ALA L 63 10,257 -20,607 8,499 1,00 0,00 O
ÁTOMO
456 CB ALA L 63 7,547 -22,083 7,362 1,00 0,00 C
ÁTOMO
457 N TYR L 64 8,333 -19,349 8,701 1,00 0,00 N
ÁTOMO
458 CA TYR L 64 9,006 -18,049 8,621 1,00 0,00 C
ÁTOMO
459 C TYR L 64 10,000 -17,881 9,768 1,00 0,00 C
ÁTOMO
460 O TYR L 64 11,097 -17,379 9,562 1,00 0,00 O
ÁTOMO
461 CB TYR L 64 8,042 -16,849 8,590 1,00 0,00 C
ÁTOMO
462 CG TYR L 64 7,194 -16,820 7,341 1,00 0,00 C
ÁTOMO
463 CD1 TYR L 64 7,770 -16,499 6,085 1,00 0,00 C
ÁTOMO
464 CD2 TYR L 64 5,811 -17,118 7,404 1,00 0,00 C
ÁTOMO
465 CE1 TYR L 64 6,990 -16,502 4,914 1,00 0,00 C
ÁTOMO
466 CE2 TYR L 64 5,024 -17,125 6,238 1,00 0,00 C
ÁTOMO
467 CZ TYR L 64 5,615 -16,821 4,997 1,00 0,00 C
ÁTOMO
468 OH TYR L 64 4,807 -16,847 3,870 1,00 0,00 O
ÁTOMO
469 N PHE L 65 9,571 -18,285 11,026 1,00 0,00 N
ÁTOMO
470 CA PHE L 65 10,456 -18,198 12,188 1,00 0,00 C
ÁTOMO
471 C PHE L 65 11,751 -19,001 11,982 1,00 0,00 C
ÁTOMO
472 O PHE L 65 12,807 -18,572 12,428 1,00 0,00 O
ÁTOMO
473 CB PHE L 65 9,751 -18,584 13,503 1,00 0,00 C
ÁTOMO
474 CG PHE L 65 10,605 -18,264 14,707 1,00 0,00 C
ÁTOMO
475 CD1 PHE L 65 10,790 -16,921 15,123 1,00 0,00 C
ÁTOMO
476 CE1 PHE L 65 11,649 -16,616 16,194 1,00 0,00 C
ÁTOMO
477 CZ PHE L 65 12,328 -17,647 16,867 1,00 0,00 C
ÁTOMO
478 CE2 PHE L 65 12,135 -18,985 16,481 1,00 0,00 C
ÁTOMO
479 CD2 PHE L 65 11,277 -19,295 15,410 1,00 0,00 C
ÁTOMO
480 ILE L 66 11,648 -20,219 11,314 1,00 0,00 N
ÁTOMO
481 CA ILE L 66 12,834 -21,039 11,020 1,00 0,00 C
ÁTOMO
482 C ILE L 66 13,831 -20,203 10,207 1,00 0,00 C
ÁTOMO
483 O ILE L 66 -20,185 10,527 1,00 0,00 O
ÁTOMO
484 CB ILE L 66 12,536 -22,402 10,326 1,00 0,00 C
ÁTOMO
485 CG1 ILE L 66 11,537 -23,293 11,099 1,00 0,00 C
ÁTOMO
486 CG2 ILE L 66 13,824 -23,190 10,054 1,00 0,00 C
ÁTOMO
487 CD1 ILE L 66 11,915 -23,605 12,541 1,00 0,00 C
ÁTOMO
488 N ASN L 67 13,319 -19,523 9,103 1,00 0,00 N
ÁTOMO
489 CA ASN L 67 14,170 -18,671 8,257 1,00 0,00 C
ÁTOMO
490 C ASN L 67 14,893 -17,621 9,100 1,00 0,00 C
ÁTOMO
491 O ASN L 67 16,086 -17,414 8,918 1,00 0,00 O
ÁTOMO
492 CB ASN L 67 13,433 -17,956 7,109 1,00 0,00 C
ÁTOMO
493 CG ASN L 67 12,966 -18,928 6,045 1,00 0,00 C
ÁTOMO
494 OD1 ASN L 67 11,854 -19,433 6,070 1,00 0,00 O
36
imagen25
imagen26
Tabla 4 (continuación)
ÁTOMO
585 C LEU M 211 8,744 -21,017 22,457 1,00 0,00 C
ÁTOMO
586 O LEU M 211 9,830 -20,675 22,903 1,00 0,00 O
ÁTOMO
587 CB LEU M 211 6,921 -19,556 23,477 1,00 0,00 C
ÁTOMO
588 CG LEU M 211 6,253 -20,691 24,283 1,00 0,00 C
ÁTOMO
589 CD1 LEU M 211 7,071 -21,031 25,529 1,00 0,00 C
ÁTOMO
590 CD2 LEU M 211 4,828 -20,304 24,668 1,00 0,00 C
ÁTOMO
591 N PHE M 212 8,395 -22,335 22,194 1,00 0,00 N
ÁTOMO
592 CA PHE M 212 9,343 -23,437 22,323 1,00 0,00 C
ÁTOMO
593 C PHE M 212 10,537 -23,177 21,400 1,00 0,00 C
ÁTOMO
594 O PHE M 212 11,684 -23,308 21,810 1,00 0,00 O
ÁTOMO
595 CB PHE M 212 8,657 -24,790 22,053 1,00 0,00 C
ÁTOMO
596 CG PHE M 212 9,531 -26,001 22,266 1,00 0,00 C
ÁTOMO
597 CD1 PHE M 212 9,585 -27,015 21,279 1,00 0,00 C
ÁTOMO
598 CD2 PHE M 212 10,273 -26,176 23,463 1,00 0,00 C
ÁTOMO
599 CE1 PHE M 212 10,360 -28,171 21,483 1,00 0,00 C
ÁTOMO
600 CE2 PHE M 212 11,054 -27,328 23,659 1,00 0,00 C
ÁTOMO
601 CZ PHE M 212 11,095 -28,324 22,671 1,00 0,00 C
ÁTOMO
602 N GLY M 213 10,213 -22,782 20,106 1,00 0,00 N
ÁTOMO
603 CA GLY M 213 11,222 -22,358 19,149 1,00 0,00 C
ÁTOMO
604 C GLY M 213 12,077 -21,244 19,726 1,00 0,00 C
ÁTOMO
605 O GLY M 213 13,296 -21,353 19,773 1,00 0,00 O
ÁTOMO
606 N ASN M 214 11,360 -20,130 20,149 1,00 0,00 N
ÁTOMO
607 CA ASN M 214 12,007 -18,898 20,604 1,00 0,00 C
ÁTOMO
608 C ASN M 214 13,063 -19,144 21,674 1,00 0,00 C
ÁTOMO
609 O ASN M 214 14,176 -18,654 21,546 1,00 0,00 O
ÁTOMO
610 CB ASN M 214 11,001 -17,841 21,083 1,00 0,00 C
ÁTOMO
611 CG ASN M 214 11,704 -16,606 21,615 1,00 0,00 C
ÁTOMO
612 OD1 ASN M 214 11,859 -16,419 22,813 1,00 0,00 O
ÁTOMO
613 ND2 ASN M 214 12,177 -15,754 20,643 1,00 0,00 N
ÁTOMO
614 N GLN M 252 6,092 -15,258 27,574 1,00 0,00 N
ÁTOMO
615 CA GLN M 252 5,399 -15,988 26,508 1,00 0,00 C
ÁTOMO
616 C GLN M 252 4,487 -17,062 27,109 1,00 0,00 C
ÁTOMO
617 O GLN M 252 3,343 -17,209 26,701 1,00 0,00 O
ÁTOMO
618 CB GLN M 252 6,348 -16,641 25,488 1,00 0,00 C
ÁTOMO
619 CG GLN M 252 7,165 -15,662 24,639 1,00 0,00 C
ÁTOMO
620 CD GLN M 252 6,294 -14,812 23,745 1,00 0,00 C
ÁTOMO
621 OE1 GLN M 252 5,949 -13,685 24,069 1,00 0,00 O
ÁTOMO
622 NE2 GLN M 252 5,911 -15,431 22,578 1,00 0,00 N
ÁTOMO
623 N ILE M 255 1,315 -15,654 28,673 1,00 0,00 N
ÁTOMO
624 CA ILE M 255 0,314 -15,323 27,648 1,00 0,00 C
ÁTOMO
625 C ILE M 255 -0,456 -16,594 27,270 1,00 0,00 C
ÁTOMO
626 O ILE M 255 -1,677 -16,562 27,206 1,00 0,00 O
ÁTOMO
627 CB ILE M 255 0,899 -14,600 26,397 1,00 0,00 C
ÁTOMO
628 CG1 ILE M 255 1,511 -13,217 26,721 1,00 0,00 C
ÁTOMO
629 CG2 ILE M 255 -0,132 -14,462 25,269 1,00 0,00 C
39
imagen27
Tabla 5
ÁTOMO
1 N ALA A 21 5,881 -12,842 -1,403 1,00 0,00 N
ÁTOMO
2 CA ALA A 21 5,032 -12,962 -0,219 1,00 0,00 C
ÁTOMO
3 C ALA A 21 3,724 -12,190 -0,393 1,00 0,00 C
ÁTOMO
4 O ALA A 21 2,644 -12,753 -0,261 1,00 0,00 O
ÁTOMO
5 CB ALA A 21 5,743 -12,524 1,061 1,00 0,00 C
ÁTOMO
6 N ILE A 22 3,865 -10,830 -0,654 1,00 0,00 N
ÁTOMO
7 CA ILE A 22 2,696 -9,942 -0,707 1,00 0,00 C
ÁTOMO
8 C ILE A 22 1,780 -10,304 -1,877 1,00 0,00 C
ÁTOMO
9 O ILE A 22 0,564 -10,249 -1,742 1,00 0,00 O
ÁTOMO
10 CB ILE A 22 3,012 -8,420 -0,634 1,00 0,00 C
ÁTOMO
11 CG1 ILE A 22 3,808 -7,845 -1,829 1,00 0,00 C
ÁTOMO
12 CG2 ILE A 22 3,732 -8,094 0,679 1,00 0,00 C
ÁTOMO
13 CD1 ILE A 22 2,917 -7,216 -2,890 1,00 0,00 C
ÁTOMO
14 N ALA A 24 1,317 -13,263 -3,458 1,00 0,00 N
ÁTOMO
15 CA ALA A 24 0,563 -14,470 -3,134 1,00 0,00 C
ÁTOMO
16 C ALA A 24 -0,656 -14,135 -2,280 1,00 0,00 C
ÁTOMO
17 O ALA A 24 -1,754 -14,581 -2,580 1,00 0,00 O
ÁTOMO
18 CB ALA A 24 1,423 -15,525 -2,443 1,00 0,00 C
ÁTOMO
19 N GLY A 25 -0,414 -13,331 -1,171 1,00 0,00 N
ÁTOMO
20 CA GLY A 25 -1,450 -12,972 -0,212 1,00 0,00 C
ÁTOMO
21 C GLY A 25 -2,689 -12,390 -0,872 1,00 0,00 C
ÁTOMO
22 O GLY A 25 -3,799 -12,857 -0,647 1,00 0,00 O
ÁTOMO
23 N LEU A 59 -1,069 -19,335 -3,710 1,00 0,00 N
ÁTOMO
24 CA LEU A 59 -0,138 -19,537 -2,599 1,00 0,00 C
ÁTOMO
25 C LEU A 59 1,257 -19,890 -3,118 1,00 0,00 C
ÁTOMO
26 O LEU A 59 2,236 -19,287 -2,700 1,00 0,00 O
ÁTOMO
27 CB LEU A 59 -0,654 -20,593 -1,599 1,00 0,00 C
ÁTOMO
28 CG LEU A 59 0,253 -20,834 -0,375 1,00 0,00 C
ÁTOMO
29 CD1 LEU A 59 0,412 -19,583 0,489 1,00 0,00 C
ÁTOMO
30 CD2 LEU A 59 -0,317 -21,972 0,469 1,00 0,00 C
ÁTOMO
31 N ILE K 16 10,647 -2,985 11,484 1,00 0,00 N
ÁTOMO
32 CA ILE K 16 9,949 -4,131 12,078 1,00 0,00 C
ÁTOMO
33 C ILE K 16 8,633 -3,639 12,688 1,00 0,00 C
ÁTOMO
34 O ILE K 16 7,578 -4,192 12,405 1,00 0,00 O
ÁTOMO
35 CB ILE K 16 10,839 -4,911 13,092 1,00 0,00 C
ÁTOMO
36 CG1 ILE K 16 11,982 -5,650 12,360 1,00 0,00 C
ÁTOMO
37 CG2 ILE K 16 10,028 -5,918 13,915 1,00 0,00 C
ÁTOMO
38 CD1 ILE K 16 13,158 -5,961 13,274 1,00 0,00 C
ÁTOMO
39 N GLY K 19 5,970 -2,022 10,048 1,00 0,00 N
ÁTOMO
40 CA GLY K 19 5,412 -3,072 9,210 1,00 0,00 C
ÁTOMO
41 C GLY K 19 4,400 -3,910 9,967 1,00 0,00 C
ÁTOMO
42 O GLY K 19 3,291 -4,135 9,498 1,00 0,00 O
ÁTOMO
43 N GLY K 20 4,855 -4,394 11,185 1,00 0,00 N
ÁTOMO
44 CA GLY K 20 4,029 -5,189 12,076 1,00 0,00 C
ÁTOMO
45 C GLY K 20 2,705 -4,513 12,381 1,00 0,00 C
41
imagen28
imagen29
Tabla 5 (continuación)
ÁTOMO
135 CA GLY K 58 -4,665 -10,040 14,902 1,00 0,00 C
ÁTOMO
136 C GLY K 58 -3,915 -8,999 15,716 1,00 0,00 C
ÁTOMO
137 O GLY K 58 -2,837 -8,566 15,338 1,00 0,00 O
ÁTOMO
138 N LEU K 59 -4,569 -8,588 16,866 1,00 0,00 N
ÁTOMO
139 CA LEU K 59 -4,102 -7,488 17,709 1,00 0,00 C
ÁTOMO
140 C LEU K 59 -2,696 -7,785 18,219 1,00 0,00 C
ÁTOMO
141 O LEU K 59 -1,786 -6,994 18,011 1,00 0,00 O
ÁTOMO
142 CB LEU K 59 -5,084 -7,200 18,866 1,00 0,00 C
ÁTOMO
143 CG LEU K 59 -4,667 -6,055 19,810 1,00 0,00 C
ÁTOMO
144 CD1 LEU K 59 -4,617 -4,705 19,094 1,00 0,00 C
ÁTOMO
145 CD2 LEU K 59 -5,640 -5,983 20,985 1,00 0,00 C
ÁTOMO
146 N VAL K 60 -2,575 -8,958 18,956 1,00 0,00 N
ÁTOMO
147 CA VAL K 60 -1,376 -9,313 19,723 1,00 0,00 C
ÁTOMO
148 C VAL K 60 -0,172 -9,621 18,808 1,00 0,00 C
ÁTOMO
149 O VAL K 60 0,965 -9,587 19,262 1,00 0,00 O
ÁTOMO
150 CB VAL K 60 -1,666 -10,425 20,774 1,00 0,00 C
ÁTOMO
151 CG1 VAL K 60 -0,436 -10,797 21,603 1,00 0,00 C
ÁTOMO
152 CG2 VAL K 60 -2,756 -9,980 21,761 1,00 0,00 C
ÁTOMO
153 N GLU K 61 -0,439 -9,875 17,464 1,00 0,00 N
ÁTOMO
154 CA GLU K 61 0,617 -9,928 16,448 1,00 0,00 C
ÁTOMO
155 C GLU K 61 1,600 -8,765 16,629 1,00 0,00 C
ÁTOMO
156 O GLU K 61 2,806 -8,976 16,643 1,00 0,00 O
ÁTOMO
157 CB GLU K 61 0,048 -9,957 15,018 1,00 0,00 C
ÁTOMO
158 CG GLU K 61 1,116 -10,204 13,955 1,00 0,00 C
ÁTOMO
159 CD GLU K 61 0,480 -10,239 12,589 1,00 0,00 C
ÁTOMO
160 OE1 GLU K 61 0,270 -9,258 11,891 1,00 0,00 O
ÁTOMO
161 OE2 GLU K 61 0,106 -11,500 12,255 1,00 0,00 O
ÁTOMO
162 N ALA K 62 1,026 -7,499 16,735 1,00 0,00 N
ÁTOMO
163 CA ALA K 62 1,838 -6,288 16,832 1,00 0,00 C
ÁTOMO
164 C ALA K 62 2,817 -6,381 18,011 1,00 0,00 C
ÁTOMO
165 O ALA K 62 4,014 -6,325 17,766 1,00 0,00 O
ÁTOMO
166 CB ALA K 62 1,026 -4,994 16,802 1,00 0,00 C
ÁTOMO
167 N TYR K 64 4,143 -8,947 19,533 1,00 0,00 N
ÁTOMO
168 CA TYR K 64 5,238 -9,901 19,299 1,00 0,00 C
ÁTOMO
169 C TYR K 64 6,411 -9,187 18,617 1,00 0,00 C
ÁTOMO
170 O TYR K 64 7,549 -9,293 19,057 1,00 0,00 O
ÁTOMO
171 CB TYR K 64 4,859 -11,158 18,485 1,00 0,00 C
ÁTOMO
172 CG TYR K 64 3,743 -12,009 19,045 1,00 0,00 C
ÁTOMO
173 CD1 TYR K 64 3,591 -12,248 20,436 1,00 0,00 C
ÁTOMO
174 CD2 TYR K 64 2,826 -12,617 18,151 1,00 0,00 C
ÁTOMO
175 CE1 TYR K 64 2,524 -13,026 20,919 1,00 0,00 C
ÁTOMO
176 CE2 TYR K 64 1,754 -13,394 18,625 1,00 0,00 C
ÁTOMO
177 CZ TYR K 64 1,603 -13,582 20,014 1,00 0,00 C
ÁTOMO
178 OH TYR K 64 0,533 -14,296 20,528 1,00 0,00 O
ÁTOMO
179 N PHE K 65 6,092 -8,473 17,468 1,00 0,00 N
44
imagen30
Tabla 5 (continuación)
ÁTOMO
225 CD1 ILE L 16 11,458 -13,971 4,775 1,00 0,00 C
ÁTOMO
226 N MET L 17 11,163 -10,818 8,193 1,00 0,00 N
ÁTOMO
227 CA MET L 17 10,196 -10,952 9,281 1,00 0,00 C
ÁTOMO
228 C MET L 17 8,956 -10,129 8,951 1,00 0,00 C
ÁTOMO
229 O MET L 17 7,865 -10,675 8,862 1,00 0,00 O
ÁTOMO
230 CB MET L 17 10,759 -10,564 10,663 1,00 0,00 C
ÁTOMO
231 CG MET L 17 11,766 -11,566 11,230 1,00 0,00 C
ÁTOMO
232 SD MET L 17 10,949 -13,111 11,753 1,00 0,00 S
ÁTOMO
233 CE MET L 17 11,549 -14,216 10,448 1,00 0,00 C
ÁTOMO
234 N ALA L 18 9,158 -8,765 8,795 1,00 0,00 N
ÁTOMO
235 CA ALA L 18 8,046 -7,822 8,702 1,00 0,00 C
ÁTOMO
236 C ALA L 18 7,152 -8,180 7,521 1,00 0,00 C
ÁTOMO
237 O ALA L 18 5,979 -8,477 7,692 1,00 0,00 O
ÁTOMO
238 CB ALA L 18 8,510 -6,370 8,625 1,00 0,00 C
ÁTOMO
239 N GLY L 19 7,766 -8,127 6,279 1,00 0,00 N
ÁTOMO
240 CA GLY L 19 7,039 -8,324 5,037 1,00 0,00 C
ÁTOMO
241 C GLY L 19 6,426 -9,707 4,980 1,00 0,00 C
ÁTOMO
242 O GLY L 19 5,227 -9,857 4,788 1,00 0,00 O
ÁTOMO
243 N GLY L 20 7,342 -10,737 5,121 1,00 0,00 N
ÁTOMO
244 CA GLY L 20 7,000 -12,131 4,906 1,00 0,00 C
ÁTOMO
245 C GLY L 20 5,877 -12,608 5,802 1,00 0,00 C
ÁTOMO
246 O GLY L 20 4,881 -13,136 5,327 1,00 0,00 O
ÁTOMO
247 N ALA L 21 6,105 -12,439 7,161 1,00 0,00 N
ÁTOMO
248 CA ALA L 21 5,177 -12,957 8,167 1,00 0,00 C
ÁTOMO
249 C ALA L 21 3,795 -12,317 8,072 1,00 0,00 C
ÁTOMO
250 O ALA L 21 2,795 -12,996 8,255 1,00 0,00 O
ÁTOMO
251 CB ALA L 21 5,700 -12,806 9,589 1,00 0,00 C
ÁTOMO
252 N ILE L 22 3,756 -10,947 7,836 1,00 0,00 N
ÁTOMO
253 CA ILE L 22 2,476 -10,243 7,663 1,00 0,00 C
ÁTOMO
254 C ILE L 22 1,766 -10,786 6,419 1,00 0,00 C
ÁTOMO
255 O ILE L 22 0,554 -10,946 6,440 1,00 0,00 O
ÁTOMO
256 CB ILE L 22 2,626 -8,694 7,709 1,00 0,00 C
ÁTOMO
257 CG1 ILE L 22 2,574 -8,158 9,161 1,00 0,00 C
ÁTOMO
258 CG2 ILE L 22 1,550 -7,959 6,902 1,00 0,00 C
ÁTOMO
259 CD1 ILE L 22 3,547 -8,791 10,144 1,00 0,00 C
ÁTOMO
260 N GLY L 23 2,556 -11,065 5,313 1,00 0,00 N
ÁTOMO
261 CA GLY L 23 2,039 -11,727 4,122 1,00 0,00 C
ÁTOMO
262 C GLY L 23 1,274 -12,998 4,463 1,00 0,00 C
ÁTOMO
263 O GLY L 23 0,151 -13,189 4,016 1,00 0,00 O
ÁTOMO
264 N ALA L 24 1,957 -13,889 5,281 1,00 0,00 N
ÁTOMO
265 CA ALA L 24 1,364 -15,139 5,762 1,00 0,00 C
ÁTOMO
266 C ALA L 24 0,049 -14,890 6,499 1,00 0,00 C
ÁTOMO
267 O ALA L 24 -0,925 -15,594 6,275 1,00 0,00 O
ÁTOMO
268 CB ALA L 24 2,317 -15,935 6,650 1,00 0,00 C
ÁTOMO
269 N GLY L 25 0,070 -13,864 7,434 1,00 0,00 N
46
imagen31
imagen32
imagen33
imagen34
imagen35
imagen36
imagen37
imagen38
imagen39
imagen40
imagen41
imagen42
imagen43
imagen44
imagen45
imagen46
imagen47
imagen48
imagen49
imagen50
imagen51
imagen52
imagen53
imagen54
imagen55
imagen56
imagen57
imagen58
imagen59
imagen60
imagen61

Claims (1)

  1. imagen1
    imagen2
ES05794520.6T 2004-09-28 2005-09-28 Un dominio de unión de ATP sintasa bacteriana Active ES2636980T3 (es)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP04104720 2004-09-28
EP04104720 2004-09-28
US62050004P 2004-10-20 2004-10-20
US620500P 2004-10-20
PCT/EP2005/054893 WO2006035051A1 (en) 2004-09-28 2005-09-28 A bacterial atp synthase binding domain

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2636980T3 true ES2636980T3 (es) 2017-10-10

Family

ID=38965678

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES05794520.6T Active ES2636980T3 (es) 2004-09-28 2005-09-28 Un dominio de unión de ATP sintasa bacteriana

Country Status (24)

Country Link
US (2) US8088891B2 (es)
EP (1) EP1797115B1 (es)
JP (2) JP2008515395A (es)
KR (1) KR101539021B1 (es)
CN (1) CN101065397B (es)
AU (2) AU2005288848A1 (es)
CA (1) CA2579971C (es)
CY (1) CY1119568T1 (es)
DK (1) DK1797115T3 (es)
ES (1) ES2636980T3 (es)
HR (1) HRP20171388T1 (es)
HU (1) HUE033609T2 (es)
IL (1) IL182185A (es)
LT (1) LT1797115T (es)
ME (1) ME02935B (es)
NO (1) NO342699B1 (es)
NZ (1) NZ553693A (es)
PL (1) PL1797115T3 (es)
PT (1) PT1797115T (es)
RS (1) RS56357B1 (es)
RU (1) RU2418001C2 (es)
SI (1) SI1797115T1 (es)
WO (1) WO2006035051A1 (es)
ZA (1) ZA200702540B (es)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2440736A (en) * 2006-08-10 2008-02-13 Medical Res Council Crystals of mutant p53 polypeptidtes
JO2970B1 (en) 2006-12-06 2016-03-15 جانسين فارماسوتيكا ان. في Quinoline antibacterial derivatives
JO3271B1 (ar) 2006-12-06 2018-09-16 Janssen Pharmaceutica Nv مشتقات الكوينولين المضادة للجراثيم
JO2685B1 (en) 2006-12-06 2013-03-03 جانسين فارماسوتيكا ان في Quinoline antibacterial derivatives
CN104254527B (zh) 2012-04-27 2017-05-31 詹森药业有限公司 抗菌的喹啉衍生物
AU2013254670B2 (en) 2012-04-27 2017-03-30 Janssen Pharmaceutica Nv Antibacterial quinoline derivatives
US8454434B1 (en) * 2012-06-15 2013-06-04 Igt Gaming system and method for providing an offer and acceptance game with progressive awards associated with a quantity of progressive tokens
JP5580383B2 (ja) 2012-10-05 2014-08-27 株式会社 資生堂 美容機器及び通電方法及び記録媒体
KR101522087B1 (ko) * 2013-06-19 2015-05-28 삼성에스디에스 주식회사 미스매치를 고려한 염기 서열 정렬 시스템 및 방법
CN110373399B (zh) * 2019-07-09 2021-05-28 湖南省植物保护研究所 一种沼泽红假单胞菌Atps2蛋白及其制备方法和应用

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2119556C (en) 1991-11-01 2004-07-06 Michael Robert Barbachyn Substituted aryl- and heteroaryl-phenyloxazolidinones
US6583266B1 (en) * 1993-08-19 2003-06-24 Genome Therapeutics Corporation Nucleic acid and amino acid sequences relating to mycobacterium tuberculosis and leprae for diagnostics and therapeutics
RU2245719C2 (ru) * 2000-03-28 2005-02-10 Каунсил Оф Сайентифик Энд Индастриал Рисерч Тимолсодержащая композиция, полезная для лечения устойчивых к лекарственным средствам бактериальных инфекций
US20040096894A1 (en) * 2000-05-19 2004-05-20 Somers William Stuart Crystal structures of P- selectin, P- and E-selectin complexes, and uses thereof
JP4122216B2 (ja) * 2000-09-19 2008-07-23 ノバルティス バクシンズ アンド ダイアグノスティックス,インコーポレーテッド GSK−3βタンパク質の特徴づけおよびその使用方法
WO2002077183A2 (en) * 2001-03-21 2002-10-03 Elitra Pharmaceuticals, Inc. Identification of essential genes in microorganisms
IL161692A0 (en) * 2001-11-13 2004-09-27 Dimensional Pharm Inc 14-benzodiazepine derivatives and pharmaceutical compositions containing the same
DK2301544T3 (da) * 2002-07-25 2013-01-02 Janssen Pharmaceutica Nv Quinolinderivater som mellemprodukter til mykobakterielle inhibitorer
AU2002951853A0 (en) * 2002-10-04 2002-10-24 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Crystal structure of erbb2 and uses thereof

Also Published As

Publication number Publication date
JP2012210210A (ja) 2012-11-01
NO20072237L (no) 2007-06-25
JP2008515395A (ja) 2008-05-15
DK1797115T3 (en) 2017-10-02
IL182185A (en) 2017-12-31
RU2007116144A (ru) 2008-11-10
AU2005288848A1 (en) 2006-04-06
US20120219964A1 (en) 2012-08-30
EP1797115A1 (en) 2007-06-20
US20090298874A1 (en) 2009-12-03
ME02935B (me) 2018-04-20
PL1797115T3 (pl) 2017-12-29
NZ553693A (en) 2012-05-25
CN101065397A (zh) 2007-10-31
KR20070073823A (ko) 2007-07-10
US8378085B2 (en) 2013-02-19
CN101065397B (zh) 2015-10-21
RU2418001C2 (ru) 2011-05-10
PT1797115T (pt) 2017-08-29
LT1797115T (lt) 2017-10-10
RS56357B1 (sr) 2017-12-29
CA2579971C (en) 2018-02-13
SI1797115T1 (sl) 2017-10-30
KR101539021B1 (ko) 2015-07-23
CA2579971A1 (en) 2006-04-06
US8088891B2 (en) 2012-01-03
HK1114619A1 (zh) 2008-11-07
AU2012216368A1 (en) 2012-09-13
IL182185A0 (en) 2007-07-24
HUE033609T2 (en) 2017-12-28
HRP20171388T1 (hr) 2017-11-03
NO342699B1 (no) 2018-07-09
ZA200702540B (en) 2008-08-27
JP5837852B2 (ja) 2015-12-24
AU2012216368B2 (en) 2017-04-13
WO2006035051A1 (en) 2006-04-06
CY1119568T1 (el) 2018-03-07
EP1797115B1 (en) 2017-06-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ni et al. Structural insights into plasticity and discovery of remdesivir metabolite GS-441524 binding in SARS-CoV-2 macrodomain
JP5837852B2 (ja) 細菌のatp合成酵素の結合ドメイン
Stogios et al. Structure-guided optimization of protein kinase inhibitors reverses aminoglycoside antibiotic resistance
Wang et al. Differences in the electrostatic surfaces of the type III secretion needle proteins PrgI, BsaL, and MxiH
KR20040012663A (ko) GSK-3β 단백질의 특성확인 및 그것의 이용 방법
JP2011520428A (ja) モノアシルグリセロールリパーゼ(mgll)の結晶構造
US20090291878A1 (en) Modulators of protein phosphatase 2a holoenyme
Singh et al. Integron mediated antimicrobial resistance in diarrheagenic Escherichia coli in children: In vitro and in silico analysis
Sivaraman et al. Crystal structure of Methanobacterium thermoautotrophicum phosphoribosyl-AMP cyclohydrolase HisI
Wahab et al. Elucidating isoniazid resistance using molecular modeling
Nguyen et al. 19F-NMR Unveils the Ligand-Induced Conformation of a Catalytically Inactive Twisted Homodimer of tRNA–Guanine Transglycosylase
Bhowmik et al. Screening of zinc database against streptococcal cysteine protease enzyme for identification of novel Group A streptococcus inhibitors
Shakil et al. High throughput virtual screening and molecular dynamics simulation for identifying a putative inhibitor of bacterial CTX-M-15. Antibiotics 2021, 10 (5), 474
Suresh et al. Targeted Drug Designing for Treating Masticatory Myofascial Pain Dysfunction Syndrome: An In Silico Simulation Study
Thomas et al. Structure-guided fragment-based drug discovery at the synchrotron
Rajesh et al. Cheminformatic designing of de novo inhibitors to 3-methyl adenine DNA glycosylase I (LiTagA) from Leptospira interrogans serovar lai strain 56601
Hesler Reevaluating the Activation Model of PKR
Machireddy Computational study targeting anti-fungal Tavaborole analogs and anti-cancer BRACO19
HK1114619B (en) A bacterial atp synthase binding domain
RadhaMahendran et al. Virtual screening of medicinal plant compounds against DevR (A0R2V2) of Mycobacterium tuberculosis using molecular docking studies
Carnevale et al. Multi-scale modeling of HIV-1 proteins
Jiang Structural basis for RNA recognition and activation by human innate immune receptor RIG-1
Cho Structural studies of ATP phosphoribosyltransferase from Mycobacterium tuberculosis and virtual screening for its novel inhibitors
Sammatur et al. Isochorismate Synthase (MenF)-3D Prediction in Mycobacterium Tuberculosis: A Potential Drug Target
Bachhar et al. STUDY OF MAO-B INHIBITOR ANALOUGES FOR PARKINSON’S DISEASE THROUGH CADD APPROACHES