ES2334536B1 - Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. - Google Patents
Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. Download PDFInfo
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Abstract
Procedimiento para la obtención selectiva de
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)
utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.
La obtención de
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:
3,6-dianhidro-D-glucitol) se realiza por esterificación selectiva del ácido ricinoleico (12-hidroxi-9-cis-octadecenoico) y (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) empleando como catalizador lipasas inmovilizadas en resinas de intercambio aniónico o acrílicas porosas u otras que confieran al catalizador obtenido un diámetro de poro entre 50 y 400 \ring{A}, y una superficie específica entre 10 y 150 m^{2}/gr. Las lipasas empleadas provienen de las especies fúngicas Mucor miehi y Candida antarctica. La reacción de esterificación se realiza a presiones comprendidas entre la atmosférica y 1 mm de Hg a una temperatura comprendida entre 20 y 90ºC. Es de destacar que mediante el procedimiento objeto de esta invención se obtiene mayoritariamente el monoester resultante de la esterificación de isosorbide en posición 2 y como el isómero cis.
3,6-dianhidro-D-glucitol) se realiza por esterificación selectiva del ácido ricinoleico (12-hidroxi-9-cis-octadecenoico) y (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) empleando como catalizador lipasas inmovilizadas en resinas de intercambio aniónico o acrílicas porosas u otras que confieran al catalizador obtenido un diámetro de poro entre 50 y 400 \ring{A}, y una superficie específica entre 10 y 150 m^{2}/gr. Las lipasas empleadas provienen de las especies fúngicas Mucor miehi y Candida antarctica. La reacción de esterificación se realiza a presiones comprendidas entre la atmosférica y 1 mm de Hg a una temperatura comprendida entre 20 y 90ºC. Es de destacar que mediante el procedimiento objeto de esta invención se obtiene mayoritariamente el monoester resultante de la esterificación de isosorbide en posición 2 y como el isómero cis.
Description
Procedimiento para la obtención selectiva de
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)
utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.
La presente invención se refiere a un
procedimiento de esterificación selectiva del ácido ricinoleico con
isosorbide empleando lipasas inmovilizadas como catalizador.
El Isosorbide
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)
(Fórmula I) es un tipo de dioles cuya estructura es una heterociclo
bicíclico derivado de azucares, el cuál en estos últimos años ha
recibido un interés muy considerable, particularmente por su gran
actividad biológica.
\vskip1.000000\baselineskip
La síntesis de los esteres del isosorbide y
ácidos grasos no se encuentran abundantemente reflejados en la
literatura científica.
Seemayer et al en 1991 ("Enzymatic
Preparation of Isomerically Pure
1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol
Monoacetates precursors for Isoglucitol 2 and 5 mononitrates",
Tetrahedron: Asymmetry, vol. 3, no. 9 (1991), pg.
1123-1126) y en la patente US 5,538,891 describen
la síntesis del 2-monoacetato de isosorbide en dos
etapas. En la primera se obtiene el derivado diacetilato del
isosorbide usando anhidro acético y piridina seguido de una
hidrólisis enzimática utilizando pseudomonas florecientes como
catalizadores.
Stoss et al en 1987 ("Regioselective
acylation of
1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol"
Synthesis vol. 2 (1987), pg. 174-176) y en
la patente europea EP 0 057 847 obtienen el monoacetato de
isosorbide mediante la reacción acilación con anhidro acetilo,
seguido de una destilación sobre base, carbonatos hidróxidos o
alcóxidos alcalinos obteniendo un rendimiento del 70%. El proceso
no es económicamente rentable por los altos costes energéticos de
la operación de destilación.
Cetovic et al in 1989 ("Selective
Esterification of
1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol"
Synthesis vol. 8 (1989), pg. 610-611),
describen un método selectivo para esterificación de isosorbide con
derivados de ácidos carboxílicos en presencia
4-demetilamino piridina (DMAP). Los rendimientos del
2-esterdiol fueron entre el 68% y 85%.
Otra aproximación a la síntesis del monoéster la
describen Abenhaim et al in ("Selective Alkylations of
1,4:3,6-Dianhydro-D-glucitol
(isosorbide)" Carbohydrate Reseach, vol. 261, no. 2
(1994), pg. 255-266) utilizando agentes protectores
como grupos alilo, propilo o benzoilo.
Mukesh et al en 1993 ("Lipase catalysed
esterification of isosorbide and sorbitol". Biotechnology
Letters vol. 15, no. 12 (1993), pg. 1243-1246),
describen la reacción de esterification de ácido oleico e
isosorbide utilizando como catalizador la enzima comercial
inmovilizada lipozime IM-20 y gel de sílice. El mono
ester oleato de isosorbide se obtiene como único producto de
reacción en un reactor tubular. La conversión máxima fue del 95%
con un tiempo de operación de 13 horas.
En 1992, Ghoshray et al. ("Enzymatic
prepanohydric alcohols and properties of the esters". J. Am.
Oil Chem. Soc., vol. 69, no. 1 (1992), pg.
85-88) describen la reacción de obtención de
ésteres del ácido ricinoleico mediante la reacción de
transesterificación del aceite de ricino con monoalcoholes como
decanol, dodecanol, tetradecanol, hexadecanol y octadecanol
utilizando una lipasa soluble de Mucor miehi a 60ºC de
temperatura.
La patente EP 0 320 132 describe una enzima
inmovilizada que comprende un portador macroporoso insoluble y una
enzima lipolitica adsorbida en él que se obtiene por tratamiento
del portador con un ácido graso. Esta enzima tiene aplicación en
procesos de esterificación y transestirificación donde la
inmovilización en presencia de un ácido graso conduce un mayor
rendimiento de la enzima, obteniéndose conversiones próximas al 90%
en la esterificación de ácido graso con un monoalcohol o un poliol.
Esta patente se refiere al uso de la enzima en procesos de
esterificación en general, no estando orientada a la obtención de
un producto concreto, como es el caso de la presente invención.
\newpage
El procedimiento de la presente invención se
caracteriza por utilizar como catalizadores lipasas inmovilizadas
sobre resinas sin tratamiento previo con un ácido graso, en la
reacción de esterificación entre isosorbide (poliol) y ácido
ricinoleico (ácido
12-hidroxi-9-cis-octadecenoico),
consiguiendo conversiones superiores al 95% y selectividad al
monoéster deseado próximas al 90% en tan sólo dos horas de
reacción.
La eficacia del presente procedimiento radica en
que, primero no existe referencia bibliográfica alguna para la
obtención selectiva del monoéster (isosorbide monoricinoleato) del
ácido ricinoleico por esterificación directa en rendimientos casi
cuantitativos, segundo con este procedimiento se obtiene
específicamente el isómero cis del monoéster final sin existir
isomerización cis-trans y tercero este procedimiento
permite filtrar el catalizador enzimático cuando la reacción ha
concluido, reutilizarlo y aislar el monoéster en un solo paso de
purificación.
En la presente invención se describe un
procedimiento de esterificación del ácido ricinoleico,
12-hidroxi-9-cis-octadecenoico
con
1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol,
en el que se utilizan como catalizadores lipasas de diferentes
especies fúngicas y actividad catalítica inmovilizadas en resinas
de intercambio aniónico o acrílicas macroporosas, con diferentes
diámetros de poro y superficies especificas, obteniéndose altos
rendimientos y selectividades de los correspondientes
monoésteres.
La presente invención se refiere a la
utilización de enzimas, de determinadas características, para
dirigir la esterificación entre el ácido ricinoleico con el
isosorbide para conseguir obtener una proporción superior al 90% de
monoéster. La reacción de esterificación tiene lugar según
procedimientos convencionales en un reactor continuo o discontinuo,
de tipo tanque agitado o en un reactor cesta o en reactores
continuos tipo lecho fijo o de lecho fluidizado, en el que se
encuentra el catalizador enzimático. La reacción se lleva a cabo en
el rango de temperaturas de 60ºC y 80ºC.
La reacción es conveniente realizarla a presión
atmosférica o a vacío (1 mm Hg) cuando interesa eliminar por
evaporación el agua formada. En el caso de que el equilibrio se
desplace por eliminación de uno de los productos de reacción, por
ejemplo el agua, se alcanzan conversiones superiores al 85%, siendo
el tiempo necesario para alcanzar esta conversión de 10 a 120
minutos, aunque normalmente este tiempo esta comprendido entre 10 y
60 minutos.
Los sistemas catalíticos a los que se refiere la
presente invención son preparados enzimáticos constituidos por
lipasas, triacilglicerol hidrolasas (EC 3.1.1.3), producidas por la
especie fúngica Mucor miehi o la especie fúngica Candida
antarctica, e inmovilizadas sobre resinas de intercambio
aniónico o acrílicas macroporosas, con diferentes propiedades para
cada una de ellas, y a diferentes Las dos especies enzimáticas
pueden ejercer con elevada efectividad la acción de lipasa o la
acción de carboxilesterasa y, también en ambos casos, la
especificidad de dichas enzimas puede ser posicional o no
dependiendo del tipo de sustrato que se desee modificar con ellas.
Los sistemas catalíticos tienen un diámetro de poro medio que se
encuentra en el rango de 50 y 400 \ring{A}, preferentemente entre
120 y 300 \ring{A}. Siendo el rango en el que se encuentra la
superficie específica de 10 y 150 m^{2}/g, preferentemente entre
25 y 100 m^{2}/g.
Los sistemas catalíticos producidos a partir de
la especie fúngica Mucor miehi tienen una actividad que se
encuentra en el rango de 20 a 80 BIUS (número de \mumoles de
ácido palmítico transformados con trioleina por minuto utilizando la
enzima inmovilizada a una temperatura de 40ºC).
Los sistemas catalíticos producidos a partir de
la especie fúngica Candida antarctica tienen una actividad
que se encuentra en el rango de 5000 a 12000 PLUS/g (número de
\mumoles de laurato de n-propilo obtenidos
partiendo de ácido laúrico y 1-propano1 durante un
tiempo de reacción de 15 minutos, a una temperatura de 60ºC).
El objetivo de la presente invención es la
obtención selectiva de
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de isosorbide. La identificación cualitativa y cuantitativa se ha
llevado a cabo mediante una combinación de técnicas tales como IR
(infrarrojo), ^{1}H-RMN (Resonancia magnética
nuclear de ^{1}H), ^{1}C-RMN (Resonancia
magnética nuclear de ^{13}C), espectrometría de masas y
cromatografía de gases.
La presente invención se ilustra adicionalmente
mediante los siguientes ejemplos:
En este ejemplo se muestra la influencia de la
actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la
especie fúngica Mucor miehi, inmovilizada en una resina de
intercambio aniónico, con un diámetro medio de poro de 176
\ring{A}. Una superficie específica 60 m^{2}/g. y una actividad
de 60 BIU.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de
mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de
destilación a vacío. Se introduce en él ácido ricinoleico y
isosorbide en una relación molar 1:1, con una concentración inicial
de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de
reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg y la
velocidad de agitación fue de 600 r.p.m.
\global\parskip0.950000\baselineskip
Después de 2 horas de reacción, la conversión de
ácido fue del 45%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la
especie fúngica Candida antarctica, inmovilizada en una
resina acrílica macroporosa, con un diámetro medio de poro
de
180 \ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g.
180 \ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de
mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de
destilación a vacío. Se introduce en él ácido ricinoleico y
isosorbide en una relación molar 1:1, con una concentración inicial
de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de
reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg, y
la velocidad de agitación en 600 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 97%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 91% el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la
especie fúngica Candida antarctica inmovilizada en una resina
acrílica macroporosa con un diámetro medio de poro de
210 \ring{A}, una superficie específica 67 m^{2}/g. y una actividad de 7800 PLUS/g.
210 \ring{A}, una superficie específica 67 m^{2}/g. y una actividad de 7800 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de
mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de
destilación a vacío. Se introducen él ácido ricinoleico y
isosorbide en una relación molar 1:1, siendo concentración inicial
de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de
reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg, y
la velocidad de agitación en 800 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 49%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 94%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
temperatura de reacción. Se repitió el ejemplo 2 con el mismo
catalizador y condiciones de operación, salvo la temperatura de
reacción, que se mantuvo a 80ºC.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 100%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 87%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
concentración inicial de catalizador. Se repitió el ejemplo 2, con
el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la
concentración inicial de catalizador, que se fijó en 7.8% en
peso.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 93%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 91%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
presión de trabajo. Se repitió el ejemplo 5, con el mismo
catalizador y condiciones de operación, salvo la presión de trabajo,
que se mantuvo en 380 mm Hg.
Después de 2 horas de reacción, la conversión de
ácido fue del 71%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
relación molar alcohol:ácido. Se repitió el ejemplo 5, con el mismo
catalizador y condiciones de operación, salvo la relación molar
alcohol:ácido, que se fijó en 3.
Después de 2 horas de reacción, la conversión de
ácido fue del 96%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 91%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
\global\parskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
velocidad de agitación. Se repitió el ejemplo 2, con el mismo
catalizador y condiciones de operación, salvo la velocidad de
reacción que se fijo en 100 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 45%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la
especie fúngica Candida antarctica, inmovilizada en una
resina acrílica macroporosa, con un diámetro medio de poro de 180
\ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una
actividad de 7000 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor tipo
cesta de 250 ml de capacidad y una luz de malla de 300 \mum,
provisto de un sistema de destilación a vacío. Se introduce en él
ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1, y la
concentración inicial de catalizador enzimático del 5% en peso. La
temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo
en 55 mm Hg, y la velocidad de agitación en 700 r.p.m. Después de
dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 85%, con una
selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está
formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En este ejemplo se muestra la influencia de la
luz de malla. Se repitió el ejemplo 9, con el mismo catalizador y
condiciones de operación, salvo la luz de malla que se fijó en 400
\mum.
Después de dos horas de reacción, la conversión
de ácido fue del 94%, con una selectividad en la formación de
monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
En un lecho fijo de capacidad extensible, con un
diámetro de 1.6 cm. y una altura de 6 cm., provisto de una camisa
para termostatizar la operación, se introducen 4.5 g. de enzima
inmovilizada. A través del mismo se hace, circular una mezcla de
ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1 a un
caudal de 1 ml/min. El catalizador enzimático empleado es el
obtenido a partir de la especie fúngica Candida antarctica,
inmovilizada en una resina acrílica macroporosa, con un diámetro
medio de poro de 180 \ring{A}, una superficie específica 95
m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g. La temperatura de
reacción se mantuvo en 70ºC y la presión de trabajo en 760 mm
Hg.
El tiempo de residencia medio fue de 1.3 horas y
la conversión de ácido fue del 16%, con una selectividad en la
formación de monoéster del 93%, el resto está formado por
diéster.
Claims (11)
1. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)
que comprende la esterificación selectiva de ácido ricinoleico con
isosorbide empleando como catalizador lipasas inmovilizadas en
resinas.
2. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicación 1, donde las lipasas provienen de las especies
fúngicas Mucor miehi y Candida antarctica.
3. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones 1 y 2, donde el catalizador obtenido tiene un
diámetro de poro entre 50 y 400 \ring{A}.
4. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de (1,4:3,6-dianhidro-D-
glucitol)r, según reivindicación 1, donde las resinas son de
intercambio aniónico o acrílicas porosas.
5. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones anteriores, donde la reacción de
esterificación se realiza a una temperatura entre 20 y 90ºC.
6. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones anteriores, donde la reacción de
esterificación se realiza a una presión entre 1 y 760 mmHg.
7. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)r,
según reivindicaciones anteriores, donde el tiempo de reacción varía
entre 10 y 120 minutos para alcanzar una conversión del 85%.
8. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones anteriores, donde la esterificación tiene
lugar en un reactor de tipo tanque agitado, continuo o
discontinuo.
9. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones 1 a 7, donde la esterificación tiene lugar en
un reactor cesta, continuo o discontinuo.
10. Método para producir
12-hidroxi-9-cis-octadecenoato
de
(1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol),
según reivindicaciones 1 a 7, donde la esterificación tiene lugar en
un reactor tipo lecho fijo o fluidizado.
11. Monoéster de isosorbide del ácido
ricinoleico obtenible por el procedimiento reivindicado.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ES200801042A ES2334536B1 (es) | 2008-04-11 | 2008-04-11 | Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ES200801042A ES2334536B1 (es) | 2008-04-11 | 2008-04-11 | Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2334536A1 ES2334536A1 (es) | 2010-03-11 |
| ES2334536B1 true ES2334536B1 (es) | 2011-01-24 |
Family
ID=41716697
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES200801042A Active ES2334536B1 (es) | 2008-04-11 | 2008-04-11 | Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| ES (1) | ES2334536B1 (es) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5538891A (en) * | 1991-09-02 | 1996-07-23 | Boehringer Mannheim Gmbh | Process for enzymatic production of isomerically pure isosorbide-2 and 5-monoesters and their conversion to isosorbide-2 and -5 nitrate |
| GB2358859A (en) * | 2000-02-01 | 2001-08-08 | Archimica Ltd | Synthesis of isosorbide compounds |
| WO2007147899A2 (en) * | 2006-06-23 | 2007-12-27 | Pierre Fabre Medicament | Dha esters and use thereof in treatment and prevention of cardiovascular disease |
-
2008
- 2008-04-11 ES ES200801042A patent/ES2334536B1/es active Active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5538891A (en) * | 1991-09-02 | 1996-07-23 | Boehringer Mannheim Gmbh | Process for enzymatic production of isomerically pure isosorbide-2 and 5-monoesters and their conversion to isosorbide-2 and -5 nitrate |
| GB2358859A (en) * | 2000-02-01 | 2001-08-08 | Archimica Ltd | Synthesis of isosorbide compounds |
| WO2007147899A2 (en) * | 2006-06-23 | 2007-12-27 | Pierre Fabre Medicament | Dha esters and use thereof in treatment and prevention of cardiovascular disease |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| MUKESH, D. et al. "{}Lipase catalysed esterification of isosorbide and sorbitol"{}. Biotechnology Letters, 1993, Volumen 15, N$^{o}$ 12, páginas 1243-1246. Ver página 1243, resumen; página 1244, Materiales y Métodos; página 1245, Figura 1. * |
| ROY, A. & CHAWLA, H.P.S. "{}Biocatalysis in organic solvents: a process for multigram synthesis of 1,4:3,6-dianhydro-D- glucitol 2-acetate and its isomeric 5-acetate using immobilized lipase Pseudomonas sp."{} Enzyme and Microbial Technology, 2001, Volumen 29, páginas 490-493. Ver página 490, resumen; página 491, Figura 1, Apartado 2.4. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ES2334536A1 (es) | 2010-03-11 |
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