[go: up one dir, main page]

ES2334536B1 - Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. - Google Patents

Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. Download PDF

Info

Publication number
ES2334536B1
ES2334536B1 ES200801042A ES200801042A ES2334536B1 ES 2334536 B1 ES2334536 B1 ES 2334536B1 ES 200801042 A ES200801042 A ES 200801042A ES 200801042 A ES200801042 A ES 200801042A ES 2334536 B1 ES2334536 B1 ES 2334536B1
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
cis
dianhydro
glucitol
octadecenoate
hydroxy
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
ES200801042A
Other languages
English (en)
Other versions
ES2334536A1 (es
Inventor
Mercedes Martinez Rodriguez
Noureddin El Boulifi
Jose Aracil Mira
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Universidad Complutense de Madrid
Original Assignee
Universidad Complutense de Madrid
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Universidad Complutense de Madrid filed Critical Universidad Complutense de Madrid
Priority to ES200801042A priority Critical patent/ES2334536B1/es
Publication of ES2334536A1 publication Critical patent/ES2334536A1/es
Application granted granted Critical
Publication of ES2334536B1 publication Critical patent/ES2334536B1/es
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D493/00Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system
    • C07D493/02Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system in which the condensed system contains two hetero rings
    • C07D493/04Ortho-condensed systems
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/62Carboxylic acid esters

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)

Abstract

Procedimiento para la obtención selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.
La obtención de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:
3,6-dianhidro-D-glucitol) se realiza por esterificación selectiva del ácido ricinoleico (12-hidroxi-9-cis-octadecenoico) y (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) empleando como catalizador lipasas inmovilizadas en resinas de intercambio aniónico o acrílicas porosas u otras que confieran al catalizador obtenido un diámetro de poro entre 50 y 400 \ring{A}, y una superficie específica entre 10 y 150 m^{2}/gr. Las lipasas empleadas provienen de las especies fúngicas Mucor miehi y Candida antarctica. La reacción de esterificación se realiza a presiones comprendidas entre la atmosférica y 1 mm de Hg a una temperatura comprendida entre 20 y 90ºC. Es de destacar que mediante el procedimiento objeto de esta invención se obtiene mayoritariamente el monoester resultante de la esterificación de isosorbide en posición 2 y como el isómero cis.

Description

Procedimiento para la obtención selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.
La presente invención se refiere a un procedimiento de esterificación selectiva del ácido ricinoleico con isosorbide empleando lipasas inmovilizadas como catalizador.
El Isosorbide (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) (Fórmula I) es un tipo de dioles cuya estructura es una heterociclo bicíclico derivado de azucares, el cuál en estos últimos años ha recibido un interés muy considerable, particularmente por su gran actividad biológica.
1
\vskip1.000000\baselineskip
Estado de la técnica
La síntesis de los esteres del isosorbide y ácidos grasos no se encuentran abundantemente reflejados en la literatura científica.
Seemayer et al en 1991 ("Enzymatic Preparation of Isomerically Pure 1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol Monoacetates precursors for Isoglucitol 2 and 5 mononitrates", Tetrahedron: Asymmetry, vol. 3, no. 9 (1991), pg. 1123-1126) y en la patente US 5,538,891 describen la síntesis del 2-monoacetato de isosorbide en dos etapas. En la primera se obtiene el derivado diacetilato del isosorbide usando anhidro acético y piridina seguido de una hidrólisis enzimática utilizando pseudomonas florecientes como catalizadores.
Stoss et al en 1987 ("Regioselective acylation of 1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol" Synthesis vol. 2 (1987), pg. 174-176) y en la patente europea EP 0 057 847 obtienen el monoacetato de isosorbide mediante la reacción acilación con anhidro acetilo, seguido de una destilación sobre base, carbonatos hidróxidos o alcóxidos alcalinos obteniendo un rendimiento del 70%. El proceso no es económicamente rentable por los altos costes energéticos de la operación de destilación.
Cetovic et al in 1989 ("Selective Esterification of 1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol" Synthesis vol. 8 (1989), pg. 610-611), describen un método selectivo para esterificación de isosorbide con derivados de ácidos carboxílicos en presencia 4-demetilamino piridina (DMAP). Los rendimientos del 2-esterdiol fueron entre el 68% y 85%.
Otra aproximación a la síntesis del monoéster la describen Abenhaim et al in ("Selective Alkylations of 1,4:3,6-Dianhydro-D-glucitol (isosorbide)" Carbohydrate Reseach, vol. 261, no. 2 (1994), pg. 255-266) utilizando agentes protectores como grupos alilo, propilo o benzoilo.
Mukesh et al en 1993 ("Lipase catalysed esterification of isosorbide and sorbitol". Biotechnology Letters vol. 15, no. 12 (1993), pg. 1243-1246), describen la reacción de esterification de ácido oleico e isosorbide utilizando como catalizador la enzima comercial inmovilizada lipozime IM-20 y gel de sílice. El mono ester oleato de isosorbide se obtiene como único producto de reacción en un reactor tubular. La conversión máxima fue del 95% con un tiempo de operación de 13 horas.
En 1992, Ghoshray et al. ("Enzymatic prepanohydric alcohols and properties of the esters". J. Am. Oil Chem. Soc., vol. 69, no. 1 (1992), pg. 85-88) describen la reacción de obtención de ésteres del ácido ricinoleico mediante la reacción de transesterificación del aceite de ricino con monoalcoholes como decanol, dodecanol, tetradecanol, hexadecanol y octadecanol utilizando una lipasa soluble de Mucor miehi a 60ºC de temperatura.
La patente EP 0 320 132 describe una enzima inmovilizada que comprende un portador macroporoso insoluble y una enzima lipolitica adsorbida en él que se obtiene por tratamiento del portador con un ácido graso. Esta enzima tiene aplicación en procesos de esterificación y transestirificación donde la inmovilización en presencia de un ácido graso conduce un mayor rendimiento de la enzima, obteniéndose conversiones próximas al 90% en la esterificación de ácido graso con un monoalcohol o un poliol. Esta patente se refiere al uso de la enzima en procesos de esterificación en general, no estando orientada a la obtención de un producto concreto, como es el caso de la presente invención.
\newpage
El procedimiento de la presente invención se caracteriza por utilizar como catalizadores lipasas inmovilizadas sobre resinas sin tratamiento previo con un ácido graso, en la reacción de esterificación entre isosorbide (poliol) y ácido ricinoleico (ácido 12-hidroxi-9-cis-octadecenoico), consiguiendo conversiones superiores al 95% y selectividad al monoéster deseado próximas al 90% en tan sólo dos horas de reacción.
La eficacia del presente procedimiento radica en que, primero no existe referencia bibliográfica alguna para la obtención selectiva del monoéster (isosorbide monoricinoleato) del ácido ricinoleico por esterificación directa en rendimientos casi cuantitativos, segundo con este procedimiento se obtiene específicamente el isómero cis del monoéster final sin existir isomerización cis-trans y tercero este procedimiento permite filtrar el catalizador enzimático cuando la reacción ha concluido, reutilizarlo y aislar el monoéster en un solo paso de purificación.
Descripción de la invención
En la presente invención se describe un procedimiento de esterificación del ácido ricinoleico, 12-hidroxi-9-cis-octadecenoico con 1,4:3,6-Dianhydro-D-Glucitol, en el que se utilizan como catalizadores lipasas de diferentes especies fúngicas y actividad catalítica inmovilizadas en resinas de intercambio aniónico o acrílicas macroporosas, con diferentes diámetros de poro y superficies especificas, obteniéndose altos rendimientos y selectividades de los correspondientes monoésteres.
La presente invención se refiere a la utilización de enzimas, de determinadas características, para dirigir la esterificación entre el ácido ricinoleico con el isosorbide para conseguir obtener una proporción superior al 90% de monoéster. La reacción de esterificación tiene lugar según procedimientos convencionales en un reactor continuo o discontinuo, de tipo tanque agitado o en un reactor cesta o en reactores continuos tipo lecho fijo o de lecho fluidizado, en el que se encuentra el catalizador enzimático. La reacción se lleva a cabo en el rango de temperaturas de 60ºC y 80ºC.
La reacción es conveniente realizarla a presión atmosférica o a vacío (1 mm Hg) cuando interesa eliminar por evaporación el agua formada. En el caso de que el equilibrio se desplace por eliminación de uno de los productos de reacción, por ejemplo el agua, se alcanzan conversiones superiores al 85%, siendo el tiempo necesario para alcanzar esta conversión de 10 a 120 minutos, aunque normalmente este tiempo esta comprendido entre 10 y 60 minutos.
Los sistemas catalíticos a los que se refiere la presente invención son preparados enzimáticos constituidos por lipasas, triacilglicerol hidrolasas (EC 3.1.1.3), producidas por la especie fúngica Mucor miehi o la especie fúngica Candida antarctica, e inmovilizadas sobre resinas de intercambio aniónico o acrílicas macroporosas, con diferentes propiedades para cada una de ellas, y a diferentes Las dos especies enzimáticas pueden ejercer con elevada efectividad la acción de lipasa o la acción de carboxilesterasa y, también en ambos casos, la especificidad de dichas enzimas puede ser posicional o no dependiendo del tipo de sustrato que se desee modificar con ellas. Los sistemas catalíticos tienen un diámetro de poro medio que se encuentra en el rango de 50 y 400 \ring{A}, preferentemente entre 120 y 300 \ring{A}. Siendo el rango en el que se encuentra la superficie específica de 10 y 150 m^{2}/g, preferentemente entre 25 y 100 m^{2}/g.
Los sistemas catalíticos producidos a partir de la especie fúngica Mucor miehi tienen una actividad que se encuentra en el rango de 20 a 80 BIUS (número de \mumoles de ácido palmítico transformados con trioleina por minuto utilizando la enzima inmovilizada a una temperatura de 40ºC).
Los sistemas catalíticos producidos a partir de la especie fúngica Candida antarctica tienen una actividad que se encuentra en el rango de 5000 a 12000 PLUS/g (número de \mumoles de laurato de n-propilo obtenidos partiendo de ácido laúrico y 1-propano1 durante un tiempo de reacción de 15 minutos, a una temperatura de 60ºC).
El objetivo de la presente invención es la obtención selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de isosorbide. La identificación cualitativa y cuantitativa se ha llevado a cabo mediante una combinación de técnicas tales como IR (infrarrojo), ^{1}H-RMN (Resonancia magnética nuclear de ^{1}H), ^{1}C-RMN (Resonancia magnética nuclear de ^{13}C), espectrometría de masas y cromatografía de gases.
Modo de realización de la invención
La presente invención se ilustra adicionalmente mediante los siguientes ejemplos:
Ejemplo 1
En este ejemplo se muestra la influencia de la actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la especie fúngica Mucor miehi, inmovilizada en una resina de intercambio aniónico, con un diámetro medio de poro de 176 \ring{A}. Una superficie específica 60 m^{2}/g. y una actividad de 60 BIU.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de destilación a vacío. Se introduce en él ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1, con una concentración inicial de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg y la velocidad de agitación fue de 600 r.p.m.
\global\parskip0.950000\baselineskip
Después de 2 horas de reacción, la conversión de ácido fue del 45%, con una selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 2
En este ejemplo se muestra la influencia de la actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la especie fúngica Candida antarctica, inmovilizada en una resina acrílica macroporosa, con un diámetro medio de poro de
180 \ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de destilación a vacío. Se introduce en él ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1, con una concentración inicial de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg, y la velocidad de agitación en 600 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 97%, con una selectividad en la formación de monoéster del 91% el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 3
En este ejemplo se muestra la influencia de la actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la especie fúngica Candida antarctica inmovilizada en una resina acrílica macroporosa con un diámetro medio de poro de
210 \ring{A}, una superficie específica 67 m^{2}/g. y una actividad de 7800 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor de mezcla completa de 250 ml de capacidad, provisto de un sistema de destilación a vacío. Se introducen él ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1, siendo concentración inicial de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg, y la velocidad de agitación en 800 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 49%, con una selectividad en la formación de monoéster del 94%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4
En este ejemplo se muestra la influencia de la temperatura de reacción. Se repitió el ejemplo 2 con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la temperatura de reacción, que se mantuvo a 80ºC.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 100%, con una selectividad en la formación de monoéster del 87%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 5
En este ejemplo se muestra la influencia de la concentración inicial de catalizador. Se repitió el ejemplo 2, con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la concentración inicial de catalizador, que se fijó en 7.8% en peso.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 93%, con una selectividad en la formación de monoéster del 91%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 6
En este ejemplo se muestra la influencia de la presión de trabajo. Se repitió el ejemplo 5, con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la presión de trabajo, que se mantuvo en 380 mm Hg.
Después de 2 horas de reacción, la conversión de ácido fue del 71%, con una selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 7
En este ejemplo se muestra la influencia de la relación molar alcohol:ácido. Se repitió el ejemplo 5, con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la relación molar alcohol:ácido, que se fijó en 3.
Después de 2 horas de reacción, la conversión de ácido fue del 96%, con una selectividad en la formación de monoéster del 91%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
\global\parskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 8
En este ejemplo se muestra la influencia de la velocidad de agitación. Se repitió el ejemplo 2, con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la velocidad de reacción que se fijo en 100 r.p.m.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 45%, con una selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 9
En este ejemplo se muestra la influencia de la actividad de un catalizador enzimático obtenido a partir de la especie fúngica Candida antarctica, inmovilizada en una resina acrílica macroporosa, con un diámetro medio de poro de 180 \ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g.
La reacción se lleva a cabo en un reactor tipo cesta de 250 ml de capacidad y una luz de malla de 300 \mum, provisto de un sistema de destilación a vacío. Se introduce en él ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1, y la concentración inicial de catalizador enzimático del 5% en peso. La temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC, la presión de trabajo en 55 mm Hg, y la velocidad de agitación en 700 r.p.m. Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 85%, con una selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 10
En este ejemplo se muestra la influencia de la luz de malla. Se repitió el ejemplo 9, con el mismo catalizador y condiciones de operación, salvo la luz de malla que se fijó en 400 \mum.
Después de dos horas de reacción, la conversión de ácido fue del 94%, con una selectividad en la formación de monoéster del 92%, el resto está formado por diéster.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 11
En un lecho fijo de capacidad extensible, con un diámetro de 1.6 cm. y una altura de 6 cm., provisto de una camisa para termostatizar la operación, se introducen 4.5 g. de enzima inmovilizada. A través del mismo se hace, circular una mezcla de ácido ricinoleico y isosorbide en una relación molar 1:1 a un caudal de 1 ml/min. El catalizador enzimático empleado es el obtenido a partir de la especie fúngica Candida antarctica, inmovilizada en una resina acrílica macroporosa, con un diámetro medio de poro de 180 \ring{A}, una superficie específica 95 m^{2}/g. y una actividad de 7000 PLUS/g. La temperatura de reacción se mantuvo en 70ºC y la presión de trabajo en 760 mm Hg.
El tiempo de residencia medio fue de 1.3 horas y la conversión de ácido fue del 16%, con una selectividad en la formación de monoéster del 93%, el resto está formado por diéster.

Claims (11)

1. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol) que comprende la esterificación selectiva de ácido ricinoleico con isosorbide empleando como catalizador lipasas inmovilizadas en resinas.
2. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicación 1, donde las lipasas provienen de las especies fúngicas Mucor miehi y Candida antarctica.
3. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones 1 y 2, donde el catalizador obtenido tiene un diámetro de poro entre 50 y 400 \ring{A}.
4. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D- glucitol)r, según reivindicación 1, donde las resinas son de intercambio aniónico o acrílicas porosas.
5. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones anteriores, donde la reacción de esterificación se realiza a una temperatura entre 20 y 90ºC.
6. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones anteriores, donde la reacción de esterificación se realiza a una presión entre 1 y 760 mmHg.
7. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol)r, según reivindicaciones anteriores, donde el tiempo de reacción varía entre 10 y 120 minutos para alcanzar una conversión del 85%.
8. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones anteriores, donde la esterificación tiene lugar en un reactor de tipo tanque agitado, continuo o discontinuo.
9. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones 1 a 7, donde la esterificación tiene lugar en un reactor cesta, continuo o discontinuo.
10. Método para producir 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-D-glucitol), según reivindicaciones 1 a 7, donde la esterificación tiene lugar en un reactor tipo lecho fijo o fluidizado.
11. Monoéster de isosorbide del ácido ricinoleico obtenible por el procedimiento reivindicado.
ES200801042A 2008-04-11 2008-04-11 Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador. Active ES2334536B1 (es)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES200801042A ES2334536B1 (es) 2008-04-11 2008-04-11 Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES200801042A ES2334536B1 (es) 2008-04-11 2008-04-11 Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
ES2334536A1 ES2334536A1 (es) 2010-03-11
ES2334536B1 true ES2334536B1 (es) 2011-01-24

Family

ID=41716697

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES200801042A Active ES2334536B1 (es) 2008-04-11 2008-04-11 Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.

Country Status (1)

Country Link
ES (1) ES2334536B1 (es)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5538891A (en) * 1991-09-02 1996-07-23 Boehringer Mannheim Gmbh Process for enzymatic production of isomerically pure isosorbide-2 and 5-monoesters and their conversion to isosorbide-2 and -5 nitrate
GB2358859A (en) * 2000-02-01 2001-08-08 Archimica Ltd Synthesis of isosorbide compounds
WO2007147899A2 (en) * 2006-06-23 2007-12-27 Pierre Fabre Medicament Dha esters and use thereof in treatment and prevention of cardiovascular disease

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5538891A (en) * 1991-09-02 1996-07-23 Boehringer Mannheim Gmbh Process for enzymatic production of isomerically pure isosorbide-2 and 5-monoesters and their conversion to isosorbide-2 and -5 nitrate
GB2358859A (en) * 2000-02-01 2001-08-08 Archimica Ltd Synthesis of isosorbide compounds
WO2007147899A2 (en) * 2006-06-23 2007-12-27 Pierre Fabre Medicament Dha esters and use thereof in treatment and prevention of cardiovascular disease

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MUKESH, D. et al. "{}Lipase catalysed esterification of isosorbide and sorbitol"{}. Biotechnology Letters, 1993, Volumen 15, N$^{o}$ 12, páginas 1243-1246. Ver página 1243, resumen; página 1244, Materiales y Métodos; página 1245, Figura 1. *
ROY, A. & CHAWLA, H.P.S. "{}Biocatalysis in organic solvents: a process for multigram synthesis of 1,4:3,6-dianhydro-D- glucitol 2-acetate and its isomeric 5-acetate using immobilized lipase Pseudomonas sp."{} Enzyme and Microbial Technology, 2001, Volumen 29, páginas 490-493. Ver página 490, resumen; página 491, Figura 1, Apartado 2.4. *

Also Published As

Publication number Publication date
ES2334536A1 (es) 2010-03-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yadav et al. Synthesis of reusable lipases by immobilization on hexagonal mesoporous silica and encapsulation in calcium alginate: transesterification in non-aqueous medium
Otera et al. Esterification: methods, reactions, and applications
Okahata et al. Enzyme-Lipid Complex. 5. Preparation of a Lipid-Coated Lipase and Catalysis of Glyceride Ester Syntheses in Homogeneous Organic Solvents.
EP0560408B1 (en) Enantio- and regioselective syntheses of organic compounds using enol esters as irreversible transacylation reagents
WO1995022606A1 (en) Method for production of an immobilized enzyme preparation and use of the immobilized enzyme preparation
US20020120159A1 (en) Process for the preparation of a monoglyceride
JP2004532857A (ja) リン脂質の製造方法
ES2334536B1 (es) Procedimiento para la obtencion selectiva de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de (1,4:3,6-dianhidro-d-glucitol) utilizando lipasas inmovilizadas como catalizador.
US5508182A (en) Esterification of hydrophilic polyols by adsorption onto a solid support and employing a substrate-immiscible solvent
EP0413307A1 (en) Process for producing saccharide fatty acid monoesters
EP0571421B1 (en) Enzymatic reverse hydrolysis of hydrophilic substrates - preparation of amphiphilic compounds
Rufino et al. Screening of lipases for the synthesis of xylitol monoesters by chemoenzymatic esterification and the potential of microwave and ultrasound irradiations to enhance the reaction rate
Parmar et al. Regioselective esterification of diols and triols with lipases in organic solvents
EP0906445B1 (en) Enzymatic esterification process
US20100003730A1 (en) Enzymatic Synthesis of Acetoacetate Esters and Derivatives
ES2336012T3 (es) Polvo de lipasa, procedimiento para su produccion y su uso.
EP0514694B1 (en) Process for producing ascorbic or erythorbic acid esters
Esmaeilpour et al. Dodecylbenzenesulfonic acid as an efficient, chemoselective and reusable catalyst in the acetylation and formylation of alcohols and phenols under solvent-free conditions at room temperature
Macfarlane et al. Some interesterification reactions involving Mucor miehei lipase
ES2735636B2 (es) Procedimiento de síntesis enzimática de monoésteres de compuestos polihidroxilados
JP2002253296A (ja) L−メントールの製造方法
ES2426155B2 (es) Procedimiento enzimático para la obtención de 12-hidroxi-9-cis-octadecenoato de 5-hidroxi-2-(hidroximetil)-4-pirona con actividad antioxidante
JPH0528114B2 (es)
ES2300197B1 (es) Procedimiento de obtencion de polirricinoleato de poliglicerol.
WO2001066679B1 (es) Procedimiento para la obtención selectiva de productos de alto valor añadido a partir de aceites de fritura usados

Legal Events

Date Code Title Description
EC2A Search report published

Date of ref document: 20100311

Kind code of ref document: A1

FG2A Definitive protection

Ref document number: 2334536

Country of ref document: ES

Kind code of ref document: B1

Effective date: 20110112