ES2305024T3 - Receptores para interleuquina-12 humana. - Google Patents
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Abstract
Un anticuerpo dirigido contra una proteína del receptor beta2 de interleuquina 12 (IL-12) con baja afinidad de unión, o sus fragmentos, cuya proteína del receptor es codificada por un ácido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos que se hibrida en condiciones rigurosas a la secuencia de nucleótidos representada en SEQ ID NO:1, (a) tiene una baja afinidad de unión para IL-12 desde aproximadamente 1 a aproximadamente 10 nM, y (b) cuando se compleja con una proteína del receptor beta1 de interleuquina-12 (receptor beta1 de IL-12) forma un complejo que tiene una alta afinidad de unión para IL-12 desde aproximadamente 5 a aproximadamente 100 pM, en el que el fragmento de una proteína del receptor beta2 de interleuquina-12 de baja afinidad de unión tiene la secuencia de aminoácidos de una parte de una proteína del receptor beta2 de interleuquina-12 y las propiedades (a) y (b) anteriores.
Description
Receptores para interleuquina-12
humana.
Esta solicitud se refiere de forma general a
receptores de interleuquina-12, especialmente a
receptores de interleuquina-12 humanos.
La interleuquina-12
(IL-12), formalmente conocida como el factor de
maduración de linfocitos citotóxicos o el factor estimulante de
células asesinas naturales, es una citoquina heterodimérica de
75-kDa compuesta de las subunidades de
40-kDa (p40) y 35-kDa (p35) unidas
por disulfuro que tiene múltiples actividades biológicas incluyendo
la estimulación de la proliferación de células T activadas y NK
(Gately, M. K., et al., 1991, J. Immunol.,
147:874) (Kobayashi, M., et al., 1989, J. Exp.
Med., 170:827), la potenciación de la actividad lítica
de células NK/LAK (Kobayashi, M., et al., 1989, J. Exp.
Med., 170:827; Stern, A. S., et al., 1990,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87:6808), la potenciación
de respuestas de células T citolíticas (Gately, M.K., et
al., 1992, Cell. Immunology, 143:127), la
inducción del interferón \gamma en reposo y células T y NK
activadas (Kobayashi, M. et al., 1989, J. Exp. Med.,
170:827; Chan, S. H., et al., 1991, J. Exp.
Med., 173:869) y la promoción de respuestas de linfocitos
T coadyuvantes del tipo T_{h}1 (Manetti, R., et al., 1993,
J. Exp. Med., 177:1199; Hsieh, C.-S., et al.,
1993, Science 260:547).
La actividad biológica de IL-12
es mediada por la unión de las moléculas IL-12 a los
receptores de la superficie de celular, o membrana celular, en
células T y NK activadas; sin embargo, las contribuciones de las
subunidades individuales, p35 y p40, a la unión del receptor y a la
transducción de la señal son todavía desconocidas. Los estudios con
IL-12 marcada han demostrado que esta unión ocurre
de una manera específica y saturable. La IL-12
proporciona una señal en las células diana a través de un receptor
que ha sido previamente caracterizado en células T CD4+ y CD8+
activadas con fitohemaglutinina (PHA) y en células NK CD56+
activadas con IL-2 (Chizzonite, R., et al.,
1992, J. Immunol., 148:3117; Desai, B., et al.,
1992, J. Immunol., 148:3125).
En un estudio de más de 20 líneas celulares
humanas que pertenecían a líneasT, B, NK y mielomonocíticos sólo se
identificó una línea de células T CD4+ humana dependiente de
IL-2 individual, (Kit 225/K6) que expresaba
constitutivamente al receptor de IL-12 y respondía a
IL-12 (Desai, B., et al., 1992, J.
Immunol., 148:3125; Desai, B., et al., 1993,
J. Immunol. 150:207A). Las células mononucleares de
sangre periférica activada con PHA recién preparadas (PBMC) y la
línea celular Kit 225/K6 representan así dos fuentes de células
convenientes para estudiar la bioquímica del receptor funcional de
IL-12; y pueden haber otras.
Con experimentos de unión en equilibrio con
IL-12 marcada con I^{125} se identificaron tres
sitios con afinidades de unión para IL-12 humana de
5-20 pM, 50-200 pM, y
2-6 nM en células T sensibles a
IL-12 (Chizzonite, R., et al., 1994,
Cytokine 6 (5):A82a).
Un cADN que codifica un receptor de
IL-12 de afinidad baja ya ha sido clonado (Chua, A.
et al., 1994, J. Immunology 153:128; solicitud
de patente europea Nº. 0.638.644). Basado en una nomenclatura
previamente sugerida (Stahl y Yancopoulos, 1993, Cell
74:587), a la cadena del receptor de IL-12
humano aislado se la llamó inicialmente la cadena de beta1.
La presente solicitud describe proteínas del
receptor de IL-12 que comprenden un complejo de la
proteína del receptor beta1 con la proteína del receptor de beta2,
cuyo complejo es capaz de unirse a la IL-12 humana
con alta afinidad. Cuando se expresa en células huésped, el ácido
nucleico da lugar a proteínas del receptor de IL-12
sustancialmente homogéneas. La invención se refiere a anticuerpos
capaces de unirse a células que expresan las moléculas del receptor
de IL-12.
Figura 1: Secuencia de ADN del cADN del receptor
beta2 de IL-12 humano. (codon de iniciación =
nucleótido 641; codon de terminación = nucleótido 3226.) (SEQ ID
NO:1).
Figura 2: Secuencia de aminoácidos de la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana. (restos
de aminoácidos con subrayado sencillo en la secuencia del extremo
N-terminal = péptido señal; números de aminoácidos
623-646 = zona de transmembrana, marcada por doble
subrayado; los 9 sitios potenciales de glicosilación
N-unidos en la parte extracelular están marcados
por las letras cursivas y también están subrayados; los motivos caja
1 y 2 conservada en el dominio citoplásmico están en sombra
[números de restos de aminoácidos 667-669,
699-704, 786-798]) (SEQ ID
NO:2).
Figura 3: Secuencia de ADN del cADN del receptor
beta1 de IL-12 humano (codon de iniciación =
nucleótido 65; codon de terminación = nucleótido 2050) (SEQ ID
NO:3).
Figura 4: Secuencia de aminoácidos de la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana. (restos
de aminoácido subrayados de la secuencia N-terminal
= secuencia del péptido señal; restos de aminoácidos números de 541
a 571 = zona de transmembrana marcada por - - - - - -; 6
sitios potenciales de glicosilación N-unidos en la
parte extracelular marcada por - - - - - - -; los motivos de caja 1
y 2 conservados en el dominio citoplásmico se marcan por \upbar{-\
-\ -\ -\ -\ -\ -\ -} [restos de aminoácidos números de 577 a 584 y
de 618 a 629]) (SEQ ID NO:4).
Figura 5A: Análisis de Scatchard de la unión de
IL-12 recombinante humano a células COS
transfectadas que expresan a la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana.
Figura 5B: Análisis de Scatchard de la unión de
IL-12 recombinante humano a células COS
transfectadas que expresan a la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana.
Figura 5C: Análisis de Scatchard de la unión de
IL-12 recombinante humano a células COS
transfectadas que coexpresan la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana y la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana.
Figura 6: Análisis de proliferación, en
presencia de varias concentraciones de IL-12 humano,
de células Ba/F3 establemente transfectadas con cADN para la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana
(- - \blacklozenge - -), con cADN para la proteína
del receptor beta2 de IL-12 humana (- - \Box
- -), o con cADN tanto para la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana como para la proteína del receptor
beta2 de IL-12 humana
\hbox{(- -
\bullet - -), midiendo la incorporación de timidina
tritiada.}
La presente solicitud describe a una proteína
del receptor beta2 de interleuquina 12 (IL-12) con
baja afinidad de unión, o sus fragmentos, que tiene baja afinidad
de unión para IL-12, y que cuando se compleja con
una proteína del receptor beta1 de IL-12 forma un
complejo que tiene alta afinidad de unión con IL-12.
En una realización preferida de la presente invención la proteína
del receptor beta2 de IL-12 tiene una secuencia de
aminoácidos que es sustancialmente homóloga a SEQ ID NO:2 o que es
codificada por un ácido nucleico que es sustancialmente homólogo a
SEQ ID NO:1. En una realización más preferida, el ácido nucleico que
codifica a la proteína del receptor beta2 de IL-12
es codificado por una secuencia de ácidos nucleicos que se hibrida
en condiciones rigurosas a la secuencia de ácidos nucleicos SEQ ID
NO:1 o que comparte al menos el 80%, más preferiblemente al menos
aproximadamente el 90%, y lo más preferiblemente al menos una
homología de secuencia de aproximadamente el 95% con el polipéptido
que tiene la SEQ ID NO:1. Especialmente, la solicitud describe a la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana que
tiene, por ejemplo, la secuencia de aminoácidos de SEQ ID NO:2 o
formas alélicas o sus variantes.
Además, la solicitud de la invención proporciona
un complejo capaz de unirse a IL-12 con alta
afinidad, que comprende la proteína del receptor beta2 de
IL-12, o sus fragmentos, como se define
anteriormente complejada con la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana, o sus fragmentos, que tiene baja
afinidad de unión para IL-12, y cuando se compleja
con una proteína del receptor beta2 de IL-12
\hbox{forma un complejo que tiene alta afinidad de unión con
IL-12.}
El complejo anterior comprende una proteína del
receptor beta1 de IL-12 que tiene una secuencia de
aminoácidos que es sustancialmente homóloga a SEQ ID NO:4 o que es
codificada por un ácido nucleico que es sustancialmente homólogo a
SEQ ID NO:3. Además, el ácido nucleico que codifica a la proteína
del receptor beta1 de IL-12 es codificado por una
secuencia de ácidos nucleicos que se hibrida en condiciones
rigurosas a la secuencia de ácidos nucleicos SEQ ID NO:3 o que
comparte al menos el 80%, más preferiblemente al menos
aproximadamente el 90%, y lo más preferiblemente al menos una
homología de secuencia de aproximadamente el 95% con el polipéptido
que tiene la SEQ ID NO:3. Especialmente, la solicitud describe a la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana que
tiene, por ejemplo, la secuencia de aminoácidos de SEQ ID NO:4 o
formas alélicas o sus variantes.
La presente solicitud también describe las
proteínas anteriores o los complejos que son solubles.
Un aspecto de la presente solicitud es una
proteína o un complejo codificado por un ácido nucleico que
comprende dos subsecuencias, en el que una de dichas subsecuencias
codifica una proteína soluble como se define anteriormente, y la
otra de dichas subsecuencias codifica todos los dominios de la
región constante de la cadena pesada de Ig humana distintos que el
primer dominio de dicha región constante. La invención también
incluye proteínas codificadas por un primero y un segundo ácido
nucleico, en el que el primer ácido nucleico comprende dos
subsecuencias, en el que una de dichas subsecuencias codifica un
fragmento soluble de una proteína del receptor beta2 de
IL-12 mencionado anteriormente y la otra de dichas
subsecuencias codifica todos los dominios de la región constante de
la cadena pesada de Ig humana distintos que el primer dominio de
dicha región constante, y el segundo ácido nucleico comprende dos
subsecuencias en el que una de dichas subsecuencias codifica un
fragmento soluble de una proteína del receptor beta1 de
IL-12 y la otra de dichas subsecuencias codifica
todos los dominios de la región constante de la cadena pesada de Ig
humana distintos que el primer dominio de dicha región
constante.
La expresión "proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana" se refiere a (1) la proteína de SEQ
ID NO:2, o (2) cualquier proteína o polipéptido que tiene una
secuencia de aminoácidos que es sustancialmente homóloga a la
secuencia de aminoácidos SEQ ID NO:2 y que tiene las propiedades
siguientes:
- 1)
- La proteína o el polipéptido tiene baja afinidad de unión para IL-12 humano, y
- 2)
- La proteína o el polipéptido, cuando se complejan con la proteína del receptor beta1 humano forman un complejo que tiene alta afinidad de unión para IL-12 humano.
La expresión "proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana" se refiere a (1) la proteína de SEQ
ID NO:4, o (2) cualquier proteína o polipéptido que tiene una
secuencia de aminoácidos que es sustancialmente homóloga a la
secuencia de aminoácidos SEQ ID NO:4 y que tiene las propiedades
siguientes:
- 1)
- La proteína o el polipéptido tienen baja afinidad de unión para IL-12 humano, y
- 2)
- La proteína o el polipéptido, cuando se complejan con la proteína del receptor beta2 humano forman un complejo que tiene alta afinidad de unión para IL-12 humano.
Como se usa en este documento, las expresiones
"proteína del receptor beta2 de IL-12" y
"proteína del receptor beta1 de IL-12"
incluyen proteínas modificadas deliberadamente, como por ejemplo,
por mutagénesis dirigida o por mutaciones aleatorias. Las
expresiones también incluyen las variantes que pueden ser preparadas
a partir de los grupos funcionales que aparecen como cadenas
laterales sobre los restos o grupos del extremo N- o
C-terminal, por medios conocidos en la técnica, y
son incluidas en la invención siempre que permanezcan
farmacéuticamente aceptables, es decir, no destruyan la actividad
de la proteína y no confieran propiedades tóxicas en las
composiciones que las contienen. Estas variantes pueden incluir,
por ejemplo, cadenas laterales de polietilenglicol que pueden
enmascarar sitios antigénicos y ampliar el tiempo de residencia de
las proteínas en los fluidos corporales. Otras variantes incluyen
ésteres alifáticos de los grupos carboxilo, amidas de los grupos
carboxilo por reacción con amoníaco o con aminas primarias o
secundarias, derivados de N-acilo de grupos amino
libres de los restos de aminoácido formados con restos de acilo
(por ejemplo, grupos alcanoílo o aroílo carbocíclicos) o derivados
de O-acilo de grupos hidroxilo libres (por ejemplo,
los de restos serilo o treonilo) formados con restos de acilo.
"Sustancialmente homólogo", que puede
referirse tanto a secuencias de ácidos nucleicos como a aminoácidos,
significa que una secuencia objeto particular, por ejemplo, una
secuencia mutante, varía de la secuencia de referencia por una o
varias sustituciones, deleciones, o adiciones, cuyo efecto neto no
causa una desemejanza funcional adversa entre las secuencias de
referencia y objeto. Para los objetivos de la presente invención,
las secuencias que tienen más que una homología del 80%, más
preferible más que del 90% y todavía más preferiblemente más que
una homología del 95%, propiedades biológicas equivalentes, y
características de expresión equivalentes son consideradas
sustancialmente homólogas. Para los objetivos de determinar la
homología, el truncamiento de la secuencia madura debería
despreciarse. Las secuencias que tienen grados menores de homología,
una bioactividad comparable y características de expresión
equivalentes son consideradas sustancialmente equivalentes.
Generalmente, las secuencias de ADN homólogas pueden ser
identificadas por hibridación cruzada bajo condiciones de
hibridación de alta severidad.
"Un fragmento de la proteína del receptor
beta2 de IL-12" significa cualquier proteína o
polipéptido que tiene la secuencia de aminoácidos de una parte o
fragmento de una proteína del receptor beta2 de
IL-12, y que (a) tiene baja afinidad de unión para
IL-12, y (2) cuando se compleja con una proteína del
receptor beta1 de IL-12, forma un complejo que
tiene alta afinidad de unión para IL-12.
"Un fragmento de la proteína del receptor
beta1 de IL-12" significa cualquier proteína o
polipéptido que tiene la secuencia de aminoácidos de una parte o
fragmento de la proteína del receptor beta1 de
IL-12, y que cuando se compleja con una proteína
del receptor beta2 de IL-12, forma un complejo que
tiene alta afinidad de unión para IL-12.
Un "fragmento soluble" se refiere a un
fragmento de una proteína del receptor de IL-12 que
tiene una secuencia de aminoácidos correspondiente a todo o parte
de la región extracelular de la proteína y que conserva la actividad
de unión de IL-12 de la proteína del receptor de
IL-12 intacta. Por ejemplo, un fragmento soluble de
una proteína del receptor beta2 de IL-12 es un
fragmento de una proteína del receptor beta2 de
IL-12 que tiene una secuencia de aminoácidos
correspondiente a todo o parte de la región extracelular de una
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana.
Conforme a la invención, un "complejo" que
comprende a la proteína del receptor beta2 de IL-12,
o sus fragmentos, complejado con la proteína del receptor beta1 de
IL-12, o sus fragmentos, puede ser expresado sobre
la superficie celular de la célula huésped. Cuando se expresa sobre
la superficie celular de la célula huésped, el complejo tiene una
alta afinidad de unión para IL-12, mientras que la
proteína del receptor beta1 de IL-12 y la proteína
del receptor beta2 de IL-12 sola cada una tiene una
afinidad de unión baja para IL-12.
Conforme a esta invención, la proteína del
receptor beta2 de IL-12 puede ser expresada sobre la
superficie de una célula huésped.
Esta solicitud describe, no sólo a la proteína
del receptor beta2 de IL-12, sino que también a los
fragmentos de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 que (1) tiene baja afinidad de unión para
IL-12 y (2) que cuando se compleja con una proteína
del receptor beta1 de IL-12 forma un complejo que
tiene alta afinidad de unión. Los fragmentos de la proteína del
receptor beta2 de IL-12 pueden ser obtenidos por
medios convencionales, tales como (i) degradación proteolítica de
la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana, (ii)
síntesis química por métodos rutinarios de la técnica, o (iii)
métodos recombinantes estándar.
Para los objetivos de la presente invención, una
proteína del receptor de IL-12 humana que tiene una
alta afinidad de unión para IL-12 humano es una
proteína que se une a IL-12 humano con una afinidad
de unión de aproximadamente 5 a aproximadamente 100 pM. Para los
objetivos de la presente invención, una proteína del receptor de
IL-12 humana que tiene una afinidad de unión baja
para IL-12 humano es una proteína que se une a
IL-12 humano con una afinidad de unión de
aproximadamente 1 a aproximadamente 10 nM. La afinidad de unión de
una proteína para IL-12 puede ser determinada por
medios convencionales, como se describe en R. Chizzonite et
al., 1992, J. Immunol., 148:3117 y como se expone
en adelante en el Ejemplo 5.
Los fragmentos de la proteína del receptor beta2
de IL-12 también pueden ser medidos para detectar la
afinidad de unión de IL-12 por medios
convencionales, tal como se describe en R. Chizzonite et al.,
1992, J. Immunol., 148:3117 y como se expone en
adelante en el Ejemplo 5. Los fragmentos de la proteína del receptor
beta2 de IL-12 pueden ser medidos para detectar la
afinidad de unión de IL-12 solo o complejados con la
proteína del receptor beta1 de IL-12, o un
fragmento de la proteína del receptor beta1 de IL-12
que cuando se compleja con una proteína del receptor beta2 de
IL-12 forma un complejo que tiene una alta afinidad
de unión.
La presente solicitud también proporciona ácidos
nucleicos, por ejemplo, ADN, cADN, ARN, mARN, etc. que codifican
las proteínas anteriores, por ejemplo, un complejo capaz de unirse a
IL-12 humano con alta afinidad, comprendiendo el
complejo a la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana, o sus fragmentos, y la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana, o sus fragmentos. Preferiblemente
estos ácidos nucleicos codifican a la proteína del receptor beta2
de IL-12 humana tal como un ácido nucleico que tiene
la SEQ ID NO:1 y/o la proteína del receptor beta1 de
IL-12 tal como un ácido nucleico que tiene la SEQ ID
NO:3. La presente solicitud también describe a vectores
recombinantes que comprenden un ácido nucleico anterior, a vectores
de expresión, y especialmente a vectores de expresión en los que el
ácido nucleico anterior está operativamente unido para controlar las
secuencias reconocidas por una célula huésped. La solicitud
proporciona células huésped eucariotas y procariotas transformadas
con uno o varios de los vectores anteriores y especialmente a
células huésped en las que las proteínas o complejos son expresados
sobre la superficie de las células huésped y a células huésped en
las que estas células proliferan en presencia de
IL-12. Las células huésped anteriores pueden ser
transformadas con un primer vector que comprende un ácido nucleico
que codifica la proteína del receptor beta2 de IL-12
como se define anteriormente y un segundo vector que comprende un
ácido nucleico que codifica la proteína del receptor beta1 de
IL-12 como se define anteriormente o con un vector
individual que comprende un ácido nucleico que codifica una
proteína del receptor beta2 de IL-12 y un ácido
nucleico que codifica una proteína del receptor beta1 de
IL-12.
Como se usa en este documento, la expresión
"ácido nucleico" se refiere a un polímero de ácidos nucleicos,
en forma de un fragmento separado o como un componente de una
construcción de ácido nucleico más grande, que ha sido derivado a
partir de un ácido nucleico aislado al menos una vez en una forma
sustancialmente pura, es decir, sin materiales endógenos
contaminantes y en una cantidad o concentración que permita la
identificación, manipulación y recuperación de la secuencia y sus
secuencias de nucleótidos componentes por métodos bioquímicos
estándar, por ejemplo, usando un vector de clonación. Tales
secuencias son proporcionadas preferiblemente en la forma de un ADN
o un cADN con un marco de lectura abierto ininterrumpido por
secuencias internas no traducidas, o intrones, que están
típicamente presentes en genes eucariotas. Sin embargo, es evidente
que también podría ser usado ADN genómico que contiene las
secuencias relevantes. Las secuencias de ADN no traducidas pueden
estar presentes 5' ó 3' desde el marco de lectura abierto, donde el
mismo no interfiere con la manipulación o la expresión de las
regiones de codificación.
El "vector de expresión" es un elemento
genético capaz de replicación en su propio control, tal como un
plásmido, bacteriófago o cósmido, al cual otro segmento de ácido
nucleico puede ser unido para causar la replicación del segmento
unido. Esto comprende una unidad transcripcional que comprende una
ensamblaje de (1) un elemento genético o elementos que tienen un
papel regulador en la expresión génica, por ejemplo, promotores y
potenciadores, (2) una secuencia estructural o codificante que es
transcrita en mRNA y traducida en la proteína, y (3) la iniciación
de la transcripción apropiada y secuencias de terminación.
El "clon" es un grupo de moléculas de ADN
idénticas derivadas a partir de una longitud original de secuencia
de ADN y producida por una bacteria o virus usando técnicas de
ingeniería genética, implicando a menudo a plásmidos.
Además, la solicitud describe una proteína
purificada, recombinante, que comprende dos cadenas de polipéptidos
diferentes (una proteína heterodimérica) que puede ser preparada por
métodos conocidos. Las dos cadenas de polipéptidos diferentes son
cada una codificadas por un polinucleótido quimérico diferente que
tiene dos subsecuencias de ácidos nucleicos fusionadas en marco. La
primera subsecuencia de ácidos nucleicos del primer polinucleótido
quimérico, localizado en su extremo 5', es una secuencia de ácidos
nucleicos aislada que codifica un fragmento soluble de una proteína
del receptor beta2 de IL-12. La segunda subsecuencia
de ácidos nucleicos del primer polinucleótido quimérico, localizado
en su extremo 3', es una secuencia de ácidos nucleicos aislada que
codifica todos los dominios de una cadena pesada de Ig humana
(preferiblemente IgG) excepto el primer dominio de la región
constante. La primera subsecuencia de ácidos nucleicos del segundo
polinucleótido quimérico, localizada en su extremo 5', es una
secuencia de ácidos nucleicos aislada que codifica un fragmento
soluble de la proteína del receptor beta1 de IL-12.
La segunda subsecuencia de ácidos nucleicos del segundo
polinucleótido quimérico, localizada en su extremo 3', es una
secuencia de ácidos nucleicos aislada que codifica todos los
dominios de una cadena pesada de Ig humana (preferiblemente IgG)
excepto el primer dominio de la región constante.
Los materiales de partida para las proteínas
purificadas, recombinantes, de la solicitud pueden ser obtenidos
por métodos conocidos en la técnica. En particular, sobre la base de
la secuencia de ADN que codifica para la proteína del receptor
beta2 de IL-12 humana descrita en la Figura 1 y de
las secuencias de ácidos nucleicos ya conocidas para ciertos
receptores, aquellas secuencias de ácidos nucleicos parciales que
codifican para un fragmento soluble de la proteína del receptor
beta2 de IL-12 pueden ser determinadas y manipuladas
a partir de la secuencia de ADN que codifica para la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana descrita en la Figura
1 usando métodos conocidos, véase Sambrook et al.,
"Molecular Cloning", 2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory
Press (1989). Asimismo, sobre la base de la secuencia de ADN que
codifica para la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana descrita en la Figura 3 y de la
secuencia de ADN ya conocida para ciertos receptores, aquellas
secuencias de ADN parciales que codifican para un fragmento soluble
de la proteína del receptor beta1 de IL-12 humana
pueden ser determinadas y manipuladas a partir de la secuencia de
ADN que codifica para la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana descrita en la Figura 3 usando métodos
conocidos, véase Sambrook et al., "Molecular Cloning",
2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989). Se conocen
fuentes para secuencias de ADN que codifican aisladas para los
dominios constantes de inmunoglobulinas humanas en la técnica y son
descritas, por ejemplo, en Ellison et al., Nucl. Acid
Res. 10, 4071-4079 (1982) para IgG1 o
Huck et al., Nucl. Acid Res. 14,
1779-1789 (1986) para IgG3.
La secuencia de ADN aislada que codifica el
fragmento soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana puede ser fusionada en marco, por
métodos conocidos [Sambrook et al., "Molecular Cloning",
2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)], a la secuencia
de ADN aislada que codifica todos los dominios de una cadena pesada
de Ig humana (preferiblemente IgG) excepto el primer dominio de la
región constante. El polinucleótido quimérico resultante tiene
localizado en su extremo 5' la secuencia de ADN aislada que codifica
el fragmento soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana y en su extremo 3' la secuencia de ADN
aislada que codifica todos los dominios de la cadena pesada de Ig
humana excepto el primer dominio de la región constante.
Asimismo, la secuencia de ADN aislada que
codifica el fragmento soluble de la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana puede ser fusionada en marco, por
métodos conocidos [Sambrook et al., "Molecular Cloning",
2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)], a la secuencia
de ADN aislada que codifica todos los dominios de una cadena pesada
de Ig humana (preferiblemente IgG) excepto el primer dominio de la
región constante. El polinucleótido quimérico resultante tiene
localizado en su extremo 5' la secuencia de ADN aislada que codifica
el fragmento soluble de la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana y en su extremo 3' la secuencia de ADN
aislada que codifica todos los dominios de una cadena pesada de Ig
humana excepto el primer dominio de la región constante.
Los polinucleótidos quiméricos entonces pueden
ser integrados usando métodos conocidos [Sambrook et al.,
"Molecular Cloning", 2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory
Press (1989)] en vectores de expresión adecuados para la expresión
en una célula de mamífero no humana, tal como una célula CHO. Para
hacer la proteína homodimérica de la solicitud, el polinucleótido
quimérico que tiene localizado en su extremo 5' la secuencia de ADN
aislada que codifica el fragmento soluble de la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana se integra en un
vector de expresión adecuado. Para hacer la proteína heterodimérica
de la invención, el polinucleótido quimérico que tiene localizado
en su extremo 5' la secuencia de ADN aislada que codifica el
fragmento soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana y el polinucleótido quimérico que tiene
localizado en su extremo 5' la secuencia de ADN aislada que
codifica el fragmento soluble de la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana se integran en un vector de expresión
individual adecuado, o dos vectores de expresión separados
adecuados.
Preferiblemente, el(los)
polinucleótido(s) quimérico(s) se
co-transfecta(n) junto con un marcador
seleccionable, por ejemplo, neomicina, higromicina, dihidrofolato
reductasa (dhfr) o hipoxantina guanina fosforibosil transferasa
(hgpt) usando métodos que se conocen en la técnica. La secuencia de
ADN establemente incorporada en el cromosoma puede ser amplificada
posteriormente. Un marcador de selección adecuado para esto es, por
ejemplo, dhfr. Las células de mamífero, por ejemplo, células CHO,
que no contienen ningún gen intacto de dhfr, son así incubadas con
cantidades crecientes de metotrexato después de que la transfección
haya sido realizada. De esta manera, pueden ser obtenidas líneas
celulares que contienen un número más alto de la secuencia de ADN
deseada que las células no amplificadas.
El sistema de expresión de baculovirus también
puede ser usado para la expresión de proteínas recombinantes en
células de insecto. Las modificaciones postranslacionales realizadas
por células de insecto son muy similares a las que se dan en
células de mamífero. Para la producción de un baculovirus
recombinante que expresa la proteína deseada se usa un vector de
transferencia. Un vector de transferencia es un plásmido que
contiene el(los) polinucleótido(s)
quimérico(s) en el control de un promotor fuerte, por
ejemplo, él de un gen poliedro, rodeado a ambos lados por
secuencias virales. El vector de transferencia entonces es
transfectado en las células de insecto junto con la secuencia de
ADN del baculovirus de tipo silvestre. Los virus recombinantes que
causan las células por recombinación homóloga pueden ser
identificados entonces y aislados de acuerdo con métodos conocidos.
Usando el sistema de expresión de baculovirus, las secuencias de ADN
que codifican la parte de inmunoglobulina tienen que estar en forma
de cADN.
La proteína recombinante expresada puede ser
purificada, por ejemplo, por métodos conocidos. Por ejemplo, puede
usarse cromatografía de afinidad con proteína G para purificar la
proteína homodimérica de la invención. La cromatografía de columna,
o cualquier otro método que permita la diferenciación entre
proteínas homodiméricas y proteínas heterodiméricas, puede ser
usada para purificar la proteína heterodimérica de la invención.
Expresión de la proteína del receptor de
IL-12 humana que tiene alta afinidad de unión a
IL-12 humano:
El cADN de células de las que se sabe que se
encuentra el receptor de IL-12 se incorpora por
métodos convencionales en un huésped bacteriano para establecer una
genoteca de cADN. Células PBMC PHA-activadas y de la
línea celular Kit 225/K6 son ejemplos de fuentes de células para el
cADN. El ARN de las células es extraído, caracterizado y transcrito
en cADN monocatenario por métodos convencionales. El cADN
monocatenario es convertido en cADN bicatenario por métodos
convencionales. El cADN bicatenario se incorpora por técnicas
convencionales en un vector de expresión, tal como
pEF-BOS. El ADN del plásmido del vector de expresión
entonces se incorpora en un huésped bacteriano por métodos
convencionales para formar una genoteca de recombinantes.
La genoteca de cADN se rastrea mediante métodos
de rastreo de expresión convencionales, como se describe en Hara y
Mijayima, 1992, EMBO, 11:1875, para los cADN, que
cuando se expresan con el cADN para la proteína del receptor beta1
de IL-12 humana, da lugar a un receptor de
IL-12 humano de alta afinidad. Un pequeño número de
clones de la genoteca es cultivado en grupos. El ADN es extraído por
métodos convencionales a partir de los grupos de clones. El ADN
extraído a partir de un grupo de clones entonces es transfectado por
métodos convencionales, con una pequeña cantidad de ADN a partir de
un plásmido que contiene el cADN que codifica la proteína del
receptor beta1 de IL-12 humano, en células huésped
no humanas. Las células huésped no humanas son preferiblemente de
mamífero, tal como las células COS. La IL-12
recombinante humana marcada es añadida entonces a las células
huésped no humanas antes transfectadas como se describe
anteriormente y se determina la señal de unión del grupo. Este
procedimiento es repetido para cada grupo. Los grupos que muestran
una señal de unión positiva para IL-12 pueden
entonces ser divididos posteriormente en grupos más pequeños y
analizados de nuevo de la manera anterior hasta que un clon
individual sea seleccionado mostrando una señal de unión
positiva.
El ADN del plásmido del clon seleccionado se
secuencia en ambas cadenas usando métodos convencionales, tal como
un secuenciador de ADN automatizado de ABI junto con una ADN
polimerasa termoestable y didesoxinucleótidos marcados con tinte
como terminadores. Las alineaciones de la secuencia de aminoácidos
pueden ser llevadas a cabo como se describe en M. O. Dayhoffet
et al., Methods Enzymology 91:524 (1983) con la
matriz de datos de mutación, una falta de rotura de 6 y 100
corrimientos aleatorios.
El ADN del clon seleccionado entonces se
co-transfecta por métodos convencionales con el ADN
de un plásmido que contiene el cADN que codifica la proteína del
receptor beta1 de IL-12 humana en una célula huésped
no humana, preferiblemente una célula de mamífero no humana tal
como una célula COS o una célula Ba/F3.
De forma alternativa, por métodos recombinantes
convencionales, puede ser manipulado un plásmido que contenga
unidades de transcripción (promotor, cADN, y regiones polyA) tanto
para la proteína del receptor beta1 de IL-12 humana
como para la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana. El ADN del plásmido es transfectado por métodos
convencionales en una célula huésped no humana, preferiblemente una
célula de mamífero no humana tal como una célula COS o una célula
Ba/F3.
El ADN puede ser aislado, el cual codifica la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana, o sus
fragmentos, cuyo fragmento (1) tiene baja afinidad de unión para
IL-12 humano y (2) cuando se compleja con la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana, forma
un complejo que tiene alta afinidad de unión con
IL-12 humano.
Una secuencia de ácidos nucleicos aislada se
refiere a un polímero de ácido nucleico, en forma de un fragmento
separado o como un componente de un construcción de ácidos nucleicos
más grande, que ha sido derivado a partir del ácido nucleico
aislado al menos una vez en forma sustancialmente pura, es decir sin
materiales endógenos contaminantes y en una cantidad o
concentración que permita la identificación, manipulación y la
recuperación de la secuencia y sus secuencias de nucleótidos
componentes por métodos bioquímicos estándar, por ejemplo, usando
un vector de clonación. Tales secuencias, por ejemplo, el ADN,
preferiblemente se proporcionan en forma de un marco de lectura
abierto no interrumpido por secuencias no traducidas internas, o
intrones, que están típicamente presentes en genes eucariotas. El
ADN genómico que contiene las secuencias relevantes también podría
ser usado como una fuente de secuencias codificantes. Las secuencias
de ADN no traducidas pueden estar presentes en 5' o 3' desde el
marco de lectura abierto, donde las mismas no interfieren con la
manipulación o la expresión de las regiones de codificación.
Una célula de mamífero que tiene la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana o el complejo
expresado sobre su superficie y que prolifera en respuesta a la
IL-12 humana es útil para determinar la bioactividad
de IL-12. Por ejemplo, tales células son útiles
para determinar si un compuesto dado inhibe la actividad biológica
de la IL-12 humana o es un agonista de
IL-12.
Además, por la capacidad de expresarse de la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana sobre
una superficie celular de mamífero no humana, también se pueden
expresar los fragmentos de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana, y se puede determinar si estos
fragmentos, cuando se complejan con la subunidad beta1, o su
fragmento activo, tienen las mismas propiedades y una alta afinidad
de unión para IL-12 como el complejo intacto.
El ADN aislado que codifica a la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana puede ser usado para
preparar una proteína purificada, recombinante, que sea soluble, y
que se una a IL-12 con la misma afinidad que la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana. El ADN
aislado que codifica la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana también puede ser usado para preparar
una proteína purificada, recombinante, que sea soluble, y que se
una a IL-12 con la misma afinidad que el complejo
del receptor de IL-12 recombinante humano de la
proteína del receptor de beta1 con la proteína del receptor de beta2
[Véase, por ejemplo, Charnow, S. M. et al., Trends in
Biotechnology, Vol. 14, 52-60
(1996)].
Tales proteínas purificadas, recombinantes, que
se unen a IL-12 humano, son útiles para prevenir o
tratar condiciones patológicas causadas por la actividad en exceso
o inadecuada de células que poseen receptores de
IL-12, inhibiendo la unión de IL-12
a tales células. Las condiciones patológicas causadas por la
actividad en exceso de células que poseen receptores de
IL-12 incluyen disfunciones autoinmunes, tales como,
sin restricción, artritis reumatoide, enfermedad inflamatoria del
intestino y la esclerosis múltiple.
Una proteína purificada, recombinante, que es
soluble, y que se une a IL-12 con la misma afinidad
que la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana
es la fusión de un fragmento soluble de la proteína del receptor
beta2 de IL-12 humana y una cadena pesada de Ig
humana (tal como IgG, IgM o IgE, preferiblemente IgG) que tiene
todos los dominios excepto el primer dominio de la región constante.
Esta proteína recombinante, que es homodimérica, está codificada
por un polinucleótido quimérico que tiene 2 subsecuencias de ADN
fusionadas en marco. La primera subsecuencia de ADN, en el extremo
5' del polinucleótido quimérico, es una secuencia de ADN aislada que
codifica un fragmento soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana. La segunda subsecuencia de ADN,
localizada en el extremo 3' del polinucleótido quimérico, es una
secuencia de ADN aislada que codifica todos los dominios de una
cadena humana pesada de Ig (preferiblemente IgG) excepto el primer
dominio de la región constante. La proteína recombinante deseada
puede ser generada por transfección del polinucleótido quimérico en
una célula de mamífero no humana, tal como una célula de ovario de
hámster chino (CHO). La proteína recombinante expresada puede ser
purificada, por ejemplo, por cromatografía de afinidad de la
proteína G.
Una proteína purificada, recombinante, que es
soluble, y que se une a IL-12 con la misma afinidad
que el complejo del receptor de IL-12 recombinante
humano del receptor de beta1 con el receptor de beta2 se codifica
por dos polinucleótidos quiméricos, que cada uno tiene dos
subsecuencias de ADN fusionadas en marco. La primera subsecuencia
de ADN del primer polinucleótido quimérico, localizado en el extremo
5', es una secuencia de ADN aislada que codifica un fragmento
soluble de la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana. La segunda subsecuencia de ADN del primer polinucleótido
quimérico, localizado en el extremo 3', es una secuencia de ADN
aislada que codifica todos los dominios de una cadena pesada de Ig
humana (por ejemplo, IgG, IgM, IgE, preferiblemente IgG) excepto el
primer dominio de la región constante. La primera subsecuencia de
ADN del segundo polinucleótido quimérico, localizado en el extremo
5', es una secuencia de ADN aislada que codifica un fragmento
soluble de la proteína del receptor beta1 de IL-12
humana. La segunda subsecuencia de ADN del segundo polinucleótido
quimérico, localizado en el extremo 3', es una secuencia de ADN
aislada que codifica todos los dominios de una cadena pesada de Ig
humana (por ejemplo, IgG, IgM, IgE, preferiblemente IgG) excepto el
primer dominio de la región constante. La proteína recombinante
deseada puede ser generada por la cotransfección de los dos
polinucleótidos quiméricos en una célula de mamífero no humana, tal
como una célula CHO. La proteína expresada puede ser purificada,
por ejemplo, por cualquier método que permita la diferenciación de
proteínas homodiméricas a partir de proteínas heterodiméricas,
tales como, por ejemplo, la cromatografía de columna.
Además, la solicitud también proporciona un
procedimiento para la preparación de una proteína anteriormente
mencionada que comprende la expresión de un ácido nucleico
anteriormente mencionado en una célula huésped adecuada.
Además, también pueden ser producidos por
métodos conocidos anticuerpos monoclonales o policlonales dirigidos
contra la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana, o sus fragmentos, o el complejo, [Véase, por ejemplo,
Current Protocols in Immunology, ed. por Coligan, J.E. et
al., J. Wiley y Sons (1992)] y usado para impedir o tratar
condiciones patológicas causadas por una actividad en exceso de
células que poseen receptores de IL-12 inhibiendo
la unión de IL-12 en tales células.
Las proteínas recombinantes purificadas son
útiles para prevenir o tratar condiciones patológicas causadas por
la actividad en exceso o inadecuada de células que poseen receptores
de IL-12 inhibiendo la unión de
IL-12 en tales células.
El término "purificado", según se usa para
definir la pureza de una proteína recombinante codificada por las
secuencias de ADN combinadas descritas anteriormente, o sus
composiciones proteicas, significa que la proteína o la composición
proteica está sustancialmente sin otras proteínas de origen natural
o endógeno y contiene menos de aproximadamente el 1% en masa de
contaminantes de proteína residuales de procesos de producción.
Tales composiciones, sin embargo, pueden contener otras proteínas
añadidas tales como estabilizadores, cardas, excipientes o
sustancias co-terapéuticas. Una proteína es
purificada si es detectable, por ejemplo, como una banda de
proteína individual en un gel de poliacrilamida mediante tinción de
plata.
Pueden ser administradas proteínas recombinantes
purificadas como se describe anteriormente (así como anticuerpos
frente a proteínas del receptor beta2 de IL-12
humanas y sus fragmentos, y anticuerpos frente al complejo de esta
invención) en el tratamiento clínico de disfunciones autoinmunes,
tales como, sin restricción, artritis reumatoide, enfermedad
inflamatoria del intestino y la esclerosis múltiple.
Las proteínas recombinantes purificadas
descritas anteriormente (así como los anticuerpos frente a proteínas
del receptor beta2 de IL-12 humanas y sus
fragmentos, y los anticuerpos frente al complejo de esta invención)
pueden ser usadas en combinación con otros antagonistas de citoquina
tales como anticuerpos frente al receptor de IL-2,
el receptor de TNF soluble (factor de necrosis tumoral), el
antagonista de IL-1, y similares para tratar o
prevenir los trastornos o las condiciones anteriores.
Además, la solicitud describe composiciones
farmacéuticas que comprenden una proteína o un anticuerpo mencionado
anteriormente y un vehículo farmacéuticamente aceptable. Las
composiciones farmacéuticas pueden comprender una cantidad
terapéuticamente eficaz de uno o varios antagonistas de
citoquina.
Además, la solicitud proporciona el uso de una
proteína o un anticuerpo mencionado anteriormente para la
preparación de un medicamento. Estos compuestos son especialmente
útiles para el tratamiento de disfunciones auto-
inmunes.
inmunes.
Los intervalos de dosis para la administración
de las proteínas recombinantes purificadas descritas anteriormente
(así como anticuerpos frente a las proteínas del receptor beta2 de
IL-12 humanas y sus fragmentos, y los anticuerpos
frente al complejo de esta solicitud) pueden ser determinados por
los expertos ordinarios en la técnica sin una experimentación
excesiva. En general, las dosificaciones apropiadas son las que son
lo bastante grandes para producir el efecto deseado, por ejemplo,
bloqueando la unión de IL-12 endógeno frente a su
receptor natural. La dosificación no debería ser tan grande que
causara efectos secundarios adversos, tales como reacciones
inespecíficas no deseadas, reacciones anafilácticas, y otras por el
estilo. Generalmente, la dosificación variará con la edad, la
condición, el sexo y el grado de enfermedad en el paciente,
indicaciones contrarias, si existiera alguna, la tolerancia inmune
y otras tales variables, siendo ajustada por el médico individual.
Las proteínas recombinantes purificadas descritas anteriormente (así
como los anticuerpos frente a las proteínas del receptor beta2 de
IL-12 humanas y sus fragmentos, y los anticuerpos
frente al complejo de esta solicitud) pueden ser administrados
parenteralmente por inyección o por perfusión gradual con el tiempo.
Pueden ser administrados intravenosamente, intraperitonealmente,
intramuscularmente o subcutáneamente.
Los intervalos de dosis para la administración
de las proteínas del receptor de IL-12 y sus
fragmentos pueden ser determinados por los expertos ordinarios en
la técnica sin una experimentación excesiva. En general, las
dosificaciones apropiadas son las que son lo bastante grandes para
producir el efecto deseado, por ejemplo, bloqueando la unión de
IL-12 endógena frente a su receptor natural. La
dosificación no debería ser tan grande que causara efectos
secundarios adversos, tales como reacciones inespecíficas no
deseadas, reacciones anafilácticas, y otras por el estilo.
Generalmente, la dosificación variará con la edad, la condición, el
sexo y el grado de enfermedad en el paciente, indicaciones
contrarias, si existiera alguna, la tolerancia inmune y otras tales
variables, siendo ajustada por el médico individual. El intervalo de
dosis esperado es de aproximadamente 1 ng/kg/día a aproximadamente
10 mg/kg/día. Las proteínas del receptor de IL-12 y
sus fragmentos pueden ser administradas parenteralmente por
inyección o por perfusión gradual con el tiempo. Pueden ser
administrados intravenosamente, intraperitonealmente,
intramuscularmente o subcutáneamente.
Las preparaciones para la administración
parenteral incluyen soluciones acuosas o no acuosas estériles,
suspensiones y emulsiones. Los ejemplos de disolventes no acuosos
son propilenglicol, polietilenglicol, aceites vegetales tales como
aceite de oliva y ésteres orgánicos inyectables tales como oleato de
etilo. Los vehículos acuosos incluyen agua, soluciones de
alcohol/acuosas, emulsiones o suspensiones, incluyendo solución
salina y medio tamponado. Los vehículos parenterales incluyen
solución de cloruro de sodio, dextrosa de Ringer, dextrosa y
cloruro de sodio, Ringer lacteado o aceites fijos. Los vehículos
intravenosos incluyen rellenos de fluidos y sustancias nutritivas,
rellenos de electrólitos, tales como los basados en dextrosa de
Ringer, y otros por el estilo. También pueden estar presentes
conservantes y otros aditivos, tales como, por ejemplo, agentes
anti-microbianos, antioxidantes, quelantes, gases
inertes y otros por el estilo. Véase, generalmente, "Remington's
Pharmaceutical Science", 16ª Ed., Mack Eds., 1980.
Ensayos para determinar si un compuesto dado
bloquea la actividad de IL-12:
La solicitud describe el uso de la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana o del complejo de
esta invención como un agente de rastreo para productos
farmacéuticos. Conforme a esta solicitud, se puede determinar si un
compuesto dado bloquea la actividad de IL-12 humano
o actúa como un agonista de IL-12.
Una actividad biológica de IL-12
humano es la estimulación de la proliferación de células T y NK
activadas. La proliferación de células T activadas causa respuestas
inmunes inducidas por aloantígenos, tales como el rechazo
alo-injerto (tales como trasplantes de piel, riñón y
corazón) y reacción de
injerto-contra-huésped en pacientes
que han recibido trasplantes de médula ósea. Esta actividad
biológica de IL-12 humano es mediada por la unión
de las moléculas de IL-12 humano a receptores de la
superficie celular en células T activadas.
Un compuesto que bloquea la actividad de
IL-12 humano, por lo tanto, inhibiría la
proliferación de células T activadas y sería útil para tratar o
prevenir respuestas inmunes inducidas por aloantígenos.
Para determinar si un compuesto bloquea la
actividad de IL-12 humano, primero, se proporciona
una pluralidad de células que tienen expresada sobre su superficie
la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana o sus
fragmentos, o el complejo de la invención, cuyas células proliferan
en presencia de IL-12 humano. La proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana o sus fragmentos se
unen a IL-12 humano con una afinidad de unión baja,
pero cuando se complejan con la proteína del receptor de beta1
humana forma un complejo que tiene alta afinidad de unión para
IL-12 humano. El complejo de la invención se une a
IL-12 humano con alta afinidad de unión y comprende
un complejo de (1) la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana, o sus fragmentos, que cuando se
compleja con la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana forma un complejo que tiene alta
afinidad de unión frente a IL-12 humano, y (2) la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana, o sus
fragmentos, que cuando se compleja con una proteína del receptor
beta2 de IL-12 humana forma un complejo que tiene
alta afinidad de unión frente a IL-12 humano.
Segundo, se ponen en contacto las células con IL-12
humano y el compuesto dado. Tercero, se determina si la presencia
del compuesto dado inhibe la proliferación de las células.
Para determinar si un compuesto es un agonista
de IL-12 humano, primero, se proporciona una
pluralidad de células que tienen expresada sobre su superficie la
proteína del receptor beta2 de IL-12 o sus
fragmentos, o el complejo de la invención, y cuyas células
proliferan en presencia de IL-12 humano. La proteína
del receptor beta2 de IL-12 humana o sus fragmentos
se unen a IL-12 humano con una afinidad de unión
baja, pero cuando se compleja con la proteína del receptor beta1
humana forma un complejo que tiene alta afinidad de unión para
IL-12 humano. El complejo de la invención se une a
IL-12 humano con alta afinidad de unión y comprende
un complejo de (1) la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana, o sus fragmentos, que cuando se
compleja con una proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana forma un complejo que tiene alta
afinidad de unión frente a IL-12 humano, y (2) la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana, o sus
fragmentos, que cuando se compleja con una proteína del receptor
beta2 de IL-12 humana forma un complejo que tiene
alta afinidad de unión frente a IL-12 humano.
Segundo, se ponen en contacto las células con IL-12
humano o el compuesto dado. Tercero, se determina si la presencia
del compuesto dado estimula la proliferación de las células.
Los ejemplos de células capaces de expresar
sobre su superficie el complejo, cuyas células proliferan en
presencia de IL-12 humano incluyen, sin
restricción, PBMC activado con PHA, células Kit 225/K6 y células
Ba/F3 transfectadas con cADN tanto para la proteína del receptor
beta1 de IL-12 humana como para la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana. Los ejemplos de
células capaces de expresar sobre su superficie la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana, o sus fragmentos,
cuyas células proliferan en presencia de IL-12
humano incluyen, sin restricción, células Ba/F3 transfectadas con
cADN para la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana.
Para determinar si la presencia del compuesto
dado inhibe la proliferación de de las células, puede ser llevado a
cabo el procedimiento siguiente. Las células sensibles a
IL-12 humano, que han expresado sobre su superficie
la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana, o
sus fragmentos, o el complejo del receptor de IL-12
humano de la invención, se ponen en placas en los pocillos de una
placa de microtítulo. El IL-12 humano entonces es
añadido a algunos pocillos de la placa de microtítulo (pocillos
estándar) y se deja reaccionar con las células. El compuesto que se
analiza se añade antes o simultáneamente con IL-12
humano a los diferentes pocillos de la placa de microtítulo
(pocillos de la muestra) y se deja reaccionar con las células.
Cualquier disolvente usado debe ser no tóxico para la célula. La
proliferación de las células entonces es medida por métodos
conocidos, por ejemplo, marcando las células después del contacto
con IL-12 humano y el compuesto (tal como por la
incorporación de timidina tritiada en el ADN de replicación),
midiendo la acumulación de metabolitos celulares (tal como el ácido
láctico), y otros por el estilo. La proliferación de las células de
los pocillos estándar es comparada con la proliferación de las
células de los pocillos de la muestra. Si las células de los
pocillos de la muestra proliferan considerablemente menos que las
células de los pocillos estándar, el compuesto bloquea la actividad
de IL-12.
Para determinar si la presencia del compuesto
dado simula la proliferación de las células, puede ser llevada a
cabo el procedimiento siguiente. Las células sensibles a
IL-12 humano que han expresado sobre su superficie
la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana, o
sus fragmentos, o el complejo del receptor de IL-12
humano de la invención se ponen en placas en los pocillos de una
placa de microtítulo. La IL-12 humana entonces se
añade a algunos pocillos de la placa de microtítulo (pocillos
estándar) y se deja reaccionar con las células. El compuesto que se
analiza se añade a los pocillos diferentes de la placa de
microtítulo (pocillos de la muestra) y se deja reaccionar con las
células. Cualquier disolvente usado debe ser no tóxico para la
célula. La proliferación de las células entonces es medida por
métodos conocidos, por ejemplo, marcando las células después del
contacto con el compuesto (tal como por la incorporación de timidina
tritiada en el ADN de replicación), midiendo la acumulación de
metabolitos celulares (tal como el ácido láctico), y otros por el
estilo. La proliferación de las células de los pocillos estándar es
comparada con la proliferación de las células de los pocillos de la
muestra. Si las células de los pocillos de la muestra proliferan
considerablemente más que las células que no fueron expuestas a
IL-12 humano, el compuesto es un agonista de
IL-12 humano.
En consecuencia, la presente solicitud describe
un método para seleccionar compuestos útiles para la inhibición de
la actividad de IL-12 o compuestos útiles como los
agonistas de la actividad de IL-12, que comprende
poner en contacto un compuesto que se sospecha que inhibe la
actividad de IL-12 o que es un agonista de actividad
de IL-12, con una proteína mencionada
anteriormente, seguido de la detección del efecto biológico.
Los ejemplos siguientes son ofrecidos para su
ilustración, no para su limitación.
La IL-12 recombinante humana fue
obtenida como se describe en esta publicación (U. Gubler et
al., 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
88:4143).
La IL-2 recombinante humana fue
obtenida como se describe en esta publicación (H.W. Lahm et
al., 1985, J. Chromatog., 326:357).
El plásmido pEF-BOS está basado
en una estructura pUC 119 y contiene el promotor alfa del factor de
elongación 1 para dirigir la expresión de genes insertados en el
sitio BstXI (S. Mizushima y S. Nagata, Nucl. Acids Res.,
1990, 18:5322).
El cADN del receptor beta1 de
IL-12 humano en el plásmido pEF-BOS
fue obtenido como se describe en A. Chua et al., 1994, J.
Immunology 153:128 y en la publicación de solicitud de
patente europea Nº. 0638644.
La DH-10B de E. coli
electrocompetente (S. Grant et al., 1990, Proc. Natl.
Acad. Sci USA 87:4645) fue obtenida del laboratorio de
investigación Bethesda (Bethesda, Maryland).
Se marcó a IL-12 recombinante
humano con ^{125}I como sigue. El yodogen fue disuelto en
cloroformo. Alícuotas de 0,05 mg de yodogen fueron secadas en tubos
de vidrio de borosilicato de 12 x 150 mm. Para el radiomarcaje, fue
añadido Na^{125}I 1,0 mCi al tubo de vidrio de borosilicato
revestido con yodogen, que también contenía 0,05 ml de tampón de
yodación-Tris (Tris-HCl 25 mM, pH
7,5, NaCl 0,4 M y EDTA 1 mM) para formar una disolución de
^{125}I. La disolución de ^{125}I fue activada incubando durante
6 minutos a temperatura ambiente. La solución de ^{125}I activada
fue transferida a un tubo que contenía de 0,05 a 0,1 ml de
IL-12 recombinante humano (31,5 mg) en tampón de
yodación Tris. La mezcla resultante de la solución de ^{125}I
activada y la IL-12 recombinante humana fue
incubada durante 6 minutos a temperatura ambiente. Al final de la
incubación, fueron añadidos 0,05 ml de tampón de paro de yodogen
(tirosina del 10 mg/ml, glicerol del 10% en solución salina
tamponada de fosfato de Dulbecco (PBS), pH 7,40) y se hizo
reaccionar durante 3 minutos. La mezcla resultante entonces fue
diluida con 1,0 ml de tampón Tris-yodación que
contenía albúmina de suero bovina del 0,25% (BSA), y fue aplicada a
una columna de desalación P10DG de Bio-Gel para
realizar la cromatografía. La columna fue eluida con tampón
Tris-yodación que contenía 0,25% de BSA. Fracciones
de 1 ml que contenían las cantidades eluidas máximas de
IL-12 recombinante humano marcado fueron combinadas.
Las fracciones combinadas fueron diluidas a 1x10^{8} cpm/ml con
1% de BSA en tampón Tris-yodación. La incorporación
de ^{125}I en IL-12 recombinante humano fue
controlada por la precipitación con ácido tricloroacético (TCA). La
radiactividad del TCA precipitable (concentración final de 10% de
TCA) fue típicamente superior al 95% de la radiactividad total. La
actividad radioespecífica del IL-12 recombinante
humano marcado fue típicamente de 1000 a 2000 cpm/fmol.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Fueron aisladas células mononucleares de sangre
periférica humana (PBMC) a partir de la sangre recogida de donantes
sanos como se describe en Gately et al., J. Natl. Cancer
Inst. 69, 1245 (1982). La sangre fue recogida en
jeringuillas heparinizadas, fue diluida con un volumen igual de la
solución salina equilibrada de Hank y fue estratificada en medio de
separación de linfocitos (LSM® obtenido de la empresa Organon
Teknika, Durham, Carolina del Norte) en tubos. Se centrifugaron los
tubos a 2000 revoluciones por minuto durante 20 minutos a
temperatura ambiente. El PBMC en el interfaz de la solución de
sangre acuosa y el medio de separación de linfocitos fueron
recogidos. El PBMC recogido fue granulado a 1500 revoluciones por
minuto durante 10 minutos a través de un relleno de 15 ml de
sacarosa del 20% en solución salina equilibrada de Hank. El PBMC
granulado fue resuspendido en medio de cultivo de tejido (mezcla
1:1 de RPMI 1640 y medio Eagle modificado de Dulbecco, suplementado
con aminoácidos no esenciales 0,1 mM, 60 mg/ml de arginina HCl,
tampón Hepes 10 mM, L-glutamina 2 mM, 100 U/ml de
penicilina, 100 mg/ml de estreptomicina,
2-mercaptoetanol 0,05 mM, y 1 mg/ml de dextrosa)
(TCM) más suero humano del 5% y fue lavado dos veces en TCM.
El PBMC entonces fue activado para formar
linfoblastos. En particular, 0,5 - 1x10^{6} células/ml en TCM más
suero humano del 5% más 0,1% (v/v) de PHA-P (Difco,
Detroit, MI) fue cultivado durante 3 días a 37ºC en una atmósfera
de CO_{2} del 5%.
Después de tres días, los cultivos celulares
fueron divididos 1:1 en volumen en TCM más suero humano del 5% y 50
U/ml de IL-2 recombinante humano para proporcionar
> 95% de células T. Estas células fueron utilizadas para la
preparación de una genoteca de cADN.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
PBMC aislados como en el Ejemplo 1, activados
con PHA durante 2-3 días, fueron cultivados y el ARN
total fue extraído usando isotiocianato de guanidina/fenol como se
describe en P. Chomczynski y N. Sacchi, Anal. Biochem.,
162:156, 1987. Fue aislado el ARN de PolyA^{+} del ARN
total por una adsorción estacionaria a perlas de látex de oligo dT
como ha sido descrito (K. Kuribayashi et al., Serie del
Simposio de Nucl. Acids Res. 19:61, 1988). El
rendimiento en masas de esta purificación fue de aproximadamente el
4% de ARN de PolyA^{+}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
A partir del ARN de PolyA^{+} anterior, fue
establecida una genoteca de cADN en el vector de expresión
pEF-BOS de mamífero como sigue.
3 mg del ARN de PolyA^{+} fueron
retrotranscritos en cADNs monocatenarios usando RNasaH menos
transcriptasa inversa en presencia de un
^{32}P-dCTP. Los cADN monocatenarios resultantes
fueron convertidos en cADN bicatenarios de extremo romo como se
describe en U. Gubler y A. Chua, Volumen II de "Essential
Molecular Biology Volume", T.A. Brown, editor, pp.
39-56, IRL Press 1991. Los enlazantes BstXI (A.
Aruffo y B. Seed, Proc. Natl. Acad. Sci (USA) 84,
8573, 1987) fueron ligados a los cADN bicatenarios resultantes.
Las moléculas de cADN que tenían un tamaño mayor
que 800 pares de bases (bp) fueron rastreadas por cromatografía de
exclusión de tamaños como sigue. Una columna Sephacryl SF 500 (0,8 x
29 cm) fue empaquetada por gravedad en Tris-HCl 10
mM, pH 7,8 - EDTA 1 mM - NaAcetato 100 mM. El cADN radiactivo con
enlazantes BstXI añadidos fue aplicado a la columna y fueron
recogidas fracciones de 0,5 ml. La distribución de tamaños del cADN
radiactivo fue determinada realizando la electroforesis en una
pequeña alícuota de cada fracción en un gel de agarosa del 1%,
secando el gel, y visualizando el tamaño por la exposición del gel a
una película de rayos X. Las moléculas de cADN más grandes de 800
bp fueron rastreadas por tamaño de esta manera.
Las moléculas de cADN seleccionadas fueron
reunidas y concentradas por precipitación con etanol. Las moléculas
de cADN reunidas y concentradas seleccionadas fueron ligadas
posteriormente al plásmido pEF-BOS como sigue. El
plásmido había sido restringido con BstXI y purificado en dos geles
de agarosa del 1% consecutivos. 300 ng del ADN del plásmido
restringido y purificado fueron ligados a 30 ng de cADN seleccionado
por tamaños en 60 ml de tampón de ligadura
(Tris-HCl 50 mM, pH 7,8 - MgCl_{2} 10 mM - DTT 10
mM - rATP 1 mM - 25 mg/ml de BSA) a 15ºC de la noche a la
mañana.
Al día siguiente, el plásmido ligado con el cADN
seleccionado por tamaños fue extraído con fenol. Fueron añadidos 6
mg de glucógeno de mejillón al extracto resultante, y los ácidos
nucleicos fueron precipitados con etanol. El precipitado resultante
fue disuelto en agua y los ácidos nucleicos fueron reprecipitados
con etanol, seguido de un lavado con etanol del 80%. Un pelete fue
formado a partir de los ácidos nucleicos precipitados y lavados. El
pelete fue disuelto en 6 ml de agua. Alícuotas de 1 ml del pelete
disuelto posteriormente fueron electroporadas en cepas
DH-10B de E. Coli. Bajo la electroporación de
5 alícuotas paralelas, fue generada una genoteca de aproximadamente
10 millones de recombinantes.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
4
La genoteca fue rastreada de acuerdo con el
método de rastreo de expresión general descrito por Hara y Miyajima,
1992, EMBO, 11:1875.
Grupos de aproximadamente 100 clones de E.
coli de la genoteca anterior fueron cultivados y el ADN del
plásmido fue extraído a partir de los grupos por métodos
convencionales. 2 x 10^{5} células COS fueron puestas en placas
por cultivo de pocillos de 35 mm. Fueron transfectadas células COS
con un cóctel de transfección usando la técnica de DEAE dextrano
estándar descrita en "Molecular Cloning, a Laboratory Manual",
2ª ed., J. Sambrook et al., Cold Spring Harbor Laboratory
Press, 1989 ("Molecular Cloning"). El cóctel de transfección
contenía (1) 1 mg de ADN del plásmido extraído a partir de los
grupos del clon de E. Coli derivados a partir de la genoteca
anterior, y (2) 0,1 mg de ADN del plásmido pEF-BOS
que contenía el cADN del receptor beta1 de
IL-12
humano.
humano.
3 días después de la transfección, los pocillos
de células COS fueron incubados con IL-12
recombinante humano marcado 10 pM (actividad específica =
1000-2000 cpm/fmol) durante 90 minutos a temperatura
ambiente. El IL-12 recombinante humano marcado fue
retirado, y la monocapa de células COS fue lavada durante una hora
tres veces con tampón de unión (RPMI 1640, suero bovino fetal del
5% (FBS), HEPES 25 mM, pH 7) para después seleccionar las células
COS que expresaban sólo receptores de IL-12 de alta
afinidad (la unión del ligando de IL-12 frente a
los sitios de afinidad baja fue después reducida porque los sitios
de afinidad baja tienen una velocidad de disociación más alta).
Posteriormente, las monocapas de células fueron lisadas e incluidas
en un contador gamma. Después del rastreo de 440 grupos
(representando a aproximadamente 44.000 clones), un grupo mostró
coherentemente una señal de unión positiva (300 cpm en una línea de
fondo de 100 cpm). A partir de este grupo, un clon individual fue
aislado posteriormente por selección filial. Este clon individual
(B5-10) contenía un inserto de cADN de
aproximadamente 3 kilobytes que fue completamente secuenciado.
El inserto de cADN del clon
B5-10 era incompleto con respeto a la región que
codificaba a la proteína porque no contenía un codon de terminación
en marco. La genoteca de cADN del Ejemplo 3 fue rastreada de nuevo
mediante técnicas de hibridación de ADN convencionales con el
inserto de cADN a partir del clon B5-10, como se
describe en "Molecular Cloning" y en Grunstein y Hogness,
1975, Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 72:3961. Clones
adicionales fueron aislados de este modo y luego fueron
parcialmente secuenciados. La secuencia de nucleótidos de un clon
(Nº. 3) fue encontrada que (i) sobrelapaba con el extremo 3' de la
secuencia de nucleótidos del clon B5-10, (ii) se
extendía más allá de la secuencia de nucleótidos del clon
B5-10 y (iii) contenía un codon de terminación
en
marco.
marco.
\newpage
Esta secuencia de ADN compuesta se muestra en la
Figura 1 (SEQ ID NO:1). En la Figura 2 se muestra la secuencia de
aminoácidos deducida para la proteína del receptor codificada.
Basado en la nomenclatura antes sugerida de Stahl y Yancopolous,
1993, Cell 74:587, los inventores llaman a la cadena
del receptor de IL-12 humana recién aislada la
cadena beta2.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
5
Fueron transfectadas células COS
(4-5x10^{7}) por electroporación usando un Gene
Pulser de BioRad (250 mF, 250 voltios) con (1) 25 mg del ADN del
plásmido de B5-10 que expresaba la proteína del
receptor beta2 de IL-12 recombinante humana, (2) 25
mg del ADN del plásmido pEF-BOS que expresaba a la
proteína del receptor beta1 de IL-12 recombinante
humana, o (3) una mezcla de 12,5 mg del ADN del plásmido de
B5-10 que expresaba a la proteína del receptor
beta2 de IL-12 recombinante humana y 12,5 mg del ADN
del plásmido pEF-BOS que expresaba a la proteína
del receptor beta1 de IL-12 recombinante humana. Las
células electroporadas fueron puestas en placas en una placa de
cultivo de 600 cm^{2}, fueron recolectadas después de 72 horas
raspando, lavando y resuspendiéndolas en tampón de unión.
Las células fueron analizadas para determinar
las afinidades de los receptores de IL-12 expresados
para IL-12 humano. En particular, la unión en
equilibrio de IL-12 recombinante humano marcado con
las células fue realizada y analizada como se describe en R.
Chizzonite, et al., 1992, J. Immunol.,
148:3117. Las células electroporadas (8x10^{4}) fueron
incubadas con concentraciones crecientes de IL-12
recombinante I^{125}-marcado humano a temperatura
ambiente durante 2 horas. Las incubaciones fueron llevadas a cabo en
dos muestras o por triplicado.
La radiactividad unida a las células fue
separada a partir del IL-12 marcado con ^{125}I
libre por centrifugación de la mezcla de células electroporadas e
IL-12 humano recombinante marcado con ^{125}I a
través de 0,1 ml de una mezcla de aceite (mezcla 1:2 de Thomas
Silicone Fluid 6428-R15 {A.H. Thomas} y aceite de
silicona AR 200 {Gallard-Schlessinger}) a 4ºC
durante 90 segundos a 10.000 x g para formar un pelete de células en
un tubo. El pelete de células fue excindido desde la punta del tubo
en el cual fue formado, y la radiactividad de las células unidas
fue determinada en un contador gamma.
Fueron analizados los datos de unión del
receptor y las afinidades fueron calculadas de acuerdo con Scatchard
usando el método descrito por McPherson, J., 1985, Pharmacol.
Methods, 14:213.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
6
Células Ba/F3 tipo silvestre, una célula
pro-B de ratón dependiente de IL-3
(Palacios, R. et al., 1985, Cell 41:727) y
células Ba/F3 que expresan a la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana (Chua, A., et al., 1994, J.
Immunology 153:128) fue cotransfectada con (1) 80 mg de
ADN del plásmido pEF-BOS que expresa la proteína
del receptor beta2 de IL-12 recombinante humano y
(2) 8 mg del plásmido que expresa el gen de la resistencia a la
higromicina (Giordano, T.J., et al., 1990, Gene
88:285) por electroporación usando un Gene Pulser BioRad
(960 mF, 400
voltios).
voltios).
Todas las células fueron resuspendidas a una
densidad de 2 x 10^{5} células/ml viables en un medio de
crecimiento de RPMI 1640, 10% de FBS, glutamina (2 mM), penicilina
G (100 U/ml), estreptomicina (100 mg/ml), y medio del 10%
condicionado a partir de la línea celular WEHI-3
(Nº. ATCC TIB 68, Colección de Cultivos Tipo Americana, Rockville,
Maryland). La línea celular WEHI-3 es una fuente de
IL-3. Las células resuspendidas entonces fueron
incubadas a 37ºC bajo CO_{2} del 5% durante 120 horas.
Las células fueron seleccionadas por su
capacidad de crecer en (1) el medio de crecimiento anterior en
presencia de 1 mg/ml de higromicina o (2) un medio de crecimiento
de RPMI 1640 que contenía IL-12, 10% de FBS,
glutamina (2 mM), penicilina G (100 U/ml), estreptomicina (100
mg/ml), y varias concentraciones (10, 50 ó 250 ng/ml) de
IL-12 humano.
Células Ba/F3 que expresan a la proteína del
receptor beta1 de IL-12 humana transfectadas con el
ADN del plásmido pEF-BOS que expresaba la proteína
del receptor beta2 de IL-12 recombinante humana
cultivada en el medio de crecimiento que contenía
IL-12, demostrando que la coexpresión de la proteína
del receptor beta1 de IL-12 humana y la proteína
del receptor beta2 de IL-12 humana conferían
sensibilidad de IL-12 humano a las células
Ba/F3.
Además, las células Ba/F3 que expresaban a la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana crecían
en el medio de crecimiento que contenía IL-12,
demostrando que la expresión de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana confería sensibilidad de
IL-12 humano a las células Ba/F3.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
7
Células Ba/F3 (1) que expresaban la proteína del
receptor beta1 de IL-12 humana, (2) que expresaban
la proteína del receptor beta2 de IL-12 humana, o
(3) que coexpresaban la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana y la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana fueron cultivadas en medio
RPMI-1640 suplementado con FBS del 10%, 100 U/ml de
penicilina G, 100 mg/ml de estreptomicina, y
L-glutamina 2 mM a 2 x 10^{4} células/pocillo en
microplacas de fondo plano Costar 3596 durante 24 horas. Varias
diluciones de IL-12 humano, como se muestra en la
Figura 6, fueron añadidas entonces a las microplacas y las células
fueron incubadas durante 42 horas a 37ºC en una atmósfera
humedecida del 5% de CO_{2} en aire. 50 ml de
^{3}H-timidina, 10 mCi/ml en medio de cultivo,
fueron añadidos entonces a cada pocillo. Los cultivos fueron
incubados después durante 6 horas a 37ºC. Posteriormente, el
contenido del cultivo fue recolectado en filtros de fibra de vidrio
mediante una cultivadora de células. La incorporación de
^{3}H-timidina fue medida por el uso de un
contador de centelleo líquido. Todas las muestras fueron analizadas
por
cuadriplicado.
cuadriplicado.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
8
La proteína del receptor beta2 de
IL-12, compuesta de 862 aminoácidos y un peso
molecular calculado de 97231, tenía las propiedades siguientes:
péptido señal N-terminal, dominio extracelular,
dominio transmembrana y cola citoplásmica. Se predijo que el
péptido señal N-terminal hidrófobo clásico tenía 23
aminoácidos de longitud. La división del péptido señal ocurre sobre
todo después de los aminoácidos Ala, Ser, Gly, Cys, Thr, Gln (von
Heijne, G., 1986, Nucl. Acids Research, 14:4683). Para
el receptor de IL-12, la división podría ocurrir
así después de Ala23 en la secuencia mostrada en la Figura 2,
dejando una proteína madura de 839 aminoácidos basado en la
división en Ala23. El dominio extracelular del receptor se predijo
que abarcaba la región desde el extremo C-terminal
del péptido señal al aminoácido Nº. 622 en la secuencia mostrada en
la Figura 2. El análisis de hidrofobia muestra que el área desde el
aminoácido Nº. 623 al 646 es hidrófoba, como se esperaría para una
región de ancla transmembrana. Los restos de parada de transferencia
cargados pueden ser encontrados en el extremo
N-terminal así como en el extremo
C-terminal de esta zona de transmembrana predicha.
El dominio extracelular del receptor es así de 599 aminoácidos y
contiene los 9 sitios de glicosilación predichos unidos por N. La
parte citoplásmica tiene 215 aminoácidos (resto de aminoácidos
números de 647 a 862).
Otros análisis de la secuencia de aminoácidos
mostrada en la Figura 2 muestran que la proteína del receptor beta2
de IL-12 humana es un miembro de la superfamilia del
receptor de citoquina, en virtud de los elementos de secuencia
[Cys132- - -Cys143TW] y [W305SKWS]. Comparando la
secuencia mostrada en la Figura 2 con todos los miembros de la
superfamilia con el programa ALIGN se muestra que la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana tiene la homología
más alta con gp130 humano. La región citoplásmica de la cadena del
receptor beta2 de IL-12 contiene los motivos de
caja 1 y 2 encontrados en otros miembros de la superfamilia del
receptor de citoquina, así como tres restos de tirosina. La
fosforilación de tirosinas está asociada comúnmente a la
señalización del receptor de citoquina; la presencia de estos
restos de tirosina subraya la importancia de la cadena del receptor
beta2 de IL-12 en la formación de un receptor de
IL-12 funcional. La cadena del receptor beta1 de
IL-12 no contiene ningún resto de tirosina en su
cola citoplásmica.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
9
Los resultados de los ensayos de unión son
mostrados en la Figura 5.
Como se muestra en las Figuras 5A y 5B,
IL-12 humano se une al receptor beta1 o beta2 de
IL-12 recombinante solo con una afinidad aparente
de aproximadamente 2-5 nM. Los datos de unión fueron
descritos por un modelo de receptor de sitio solo, correspondiente
al componente de afinidad baja del receptor de IL-12
funcional encontrado en PBMC activado con PHA (R. Chizzonite et
al., 1992, J. Immunol., 148:3117; B. Desai et
al., 1992, J. Immunol., 148:3125).
En contraste con estos resultados, como se
muestra en la Figura 5C, fueron generados tanto sitios de unión de
IL-12 de afinidad alta como baja en la
cotransfección de células COS con plásmidos del receptor beta1 y
beta2 de IL-12. En este caso, los datos de unión
fueron descritos mediante un modelo de dos sitios de receptor, con
afinidades de 50 pM y 5 nM.
\newpage
Ejemplo
10
Se muestran los resultados del ensayo de
proliferación para el efecto de IL-12 humano en
células Ba/F3 (1) que expresaban la proteína del receptor beta1 de
IL-12 humana, (2) que expresaban la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana, y (3) que
coexpresaban la proteína del receptor beta1 de IL-12
humana y la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana en la Figura 6.
Las células que son transfectadas con cADN tanto
para la proteína del receptor beta1 de IL-12 humana
como para la proteína del receptor beta2 de IL-12
humana responden a la estimulación por IL-12 humano
proliferando en una manera dependiente de la dosis.
Además, las células que son transfectadas con
los cADN para la proteína del receptor beta2 de
IL-12 humana responden a la estimulación por
IL-12 humano proliferando en una manera dependiente
de la dosis.
Por consiguiente, el cADN aislado (clon Nº.
B5-10, SEQ.ID. NO:1) que codifica para una proteína
transmembrana tipo I representa un segundo componente del receptor
de IL-12 (IL-12R beta2) encontrado
en células T humanas normales. Las cadenas beta1 y beta2 cada una
se unen solo a IL-12 sólo con afinidad baja (K_{d}
= 2-5 nM). En la coexpresión de beta1 y beta2, son
observados dos sitios de afinidad, con valores de K_{d} de 50 pM
y 5 nM.
Células Ba/F3 que expresan a la proteína del
receptor beta2 de IL-12 humana o que coexpresan a la
proteína del receptor beta1 de IL-12 humana y la
proteína del receptor beta2 de IL-12 humana son
sensibles a IL-12 humano.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: HOFFMANN-LA ROCHE AG
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: Grenzacherstrasse 124
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: Basle
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO: BS
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: Switzerland
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL (ZIP): CH-4002
\vskip0.500000\baselineskip
- (G)
- TELÉFONO: 061-688 51 08
\vskip0.500000\baselineskip
- (H)
- TELEFAX: 061-688 13 95
\vskip0.500000\baselineskip
- (I)
- TELEX: 962292/965542 hlr ch
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Receptores para Interleuquina-12
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 4
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- TIPO DE LECTURA DE ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: Floppy disk
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: IBM PC compatible
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: Publicacion PatentIn #1.0, Version #1.30 (EPO)
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 4040 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: cDNA
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- ANTI-SENTIDO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: secuencia codificante
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 641..3226
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 862 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 2104 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: cDNA a ARNm
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- FUENTE ORIGINAL:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: Homo sapiens
\vskip0.500000\baselineskip
- (G)
- TIPO DE CÉLULA: células T humanas
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- BIBLIOTECA: biblioteca 3 días PHA/pEF-BOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: clon #5 del receptor de interleuquina-12 humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: SECUENCIA CODIFICANTE
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 65..2050
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 662 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= " Péptido señal N-terminal (1..20 o 23 o 24)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 541..570
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "región transmembrana"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 571..662
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= " región citoplásmica de la cola"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 52..64
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "motivo de secuencia de la superfamilia de receptores de citoquina Cys52..Cys62SW"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 222..226
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACION: /nota= "motivo de la superfamilia de receptor de citoquina (W222SKws)"
\newpage
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 121..123
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 329..331
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "Sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 346..348
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "Sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 352..354
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "Sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 442..444
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "Sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 456..458
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "Sitio de enlace N-glucosilación"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: Región
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 24..540
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- OTRA INFORMACIÓN: /nota= "región extracelular"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:4:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (17)
1. Un anticuerpo dirigido contra una proteína
del receptor beta2 de interleuquina 12 (IL-12) con
baja afinidad de unión, o sus fragmentos, cuya proteína del
receptor es codificada por un ácido nucleico que comprende una
secuencia de nucleótidos que se hibrida en condiciones rigurosas a
la secuencia de nucleótidos representada en SEQ ID
NO:1,
NO:1,
(a) tiene una baja afinidad de unión para
IL-12 desde aproximadamente 1 a aproximadamente 10
nM, y
(b) cuando se compleja con una proteína del
receptor beta1 de interleuquina-12 (receptor
\beta1 de IL-12) forma un complejo que tiene una
alta afinidad de unión para IL-12 desde
aproximadamente 5 a aproximadamente 100 pM,
en el que el fragmento de una
proteína del receptor beta2 de interleuquina-12 de
baja afinidad de unión tiene la secuencia de aminoácidos de una
parte de una proteína del receptor beta2 de
interleuquina-12 y las propiedades (a) y (b)
anteriores.
2. El anticuerpo de la reivindicación 1, en el
que la proteína del receptor beta2 de IL-12 comparte
al menos una homología de secuencia del 80% con un polipéptido que
consiste en la secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID
NO:2.
3. El anticuerpo de la reivindicación 2, en el
que el receptor beta2 de IL-12 comprende la
secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID NO:2, o su forma
alélica o variante.
4. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 1-3, en el que el receptor beta2 de
IL-12 es soluble y es codificado por un ácido
nucleico, cuyo ácido nucleico comprende una subsecuencia (a) y una
subsecuencia (b), en el que dicha subsecuencia (a) codifica una
forma soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 y la subsecuencia (b) codifica todos los
dominios de la región constante de la cadena pesada de Ig distintos
que el primer dominio de dicha región constante.
5. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 1-4, en el que el anticuerpo es un
anticuerpo monoclonal.
6. El anticuerpo de la reivindicación 1,
dirigido además contra un complejo que se une a
IL-12 con una alta afinidad de unión desde
aproximadamente 5 a 100 pM, cuyo complejo comprende:
- (i)
- una proteína del receptor beta2 de IL-12, o sus fragmentos, cuya proteína del receptor es codificada por un ácido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos que se hibrida en condiciones rigurosas a la secuencia de nucleótidos representada en SEQ ID NO:1,
- cuya proteína del receptor
- (a)
- tiene una afinidad de unión baja para IL-12 desde aproximadamente 1 a aproximadamente 10 nM, y
- (b)
- cuando se compleja con una proteína del receptor beta1 de interleuquina-12 (receptor \beta1 de IL-12) forma un complejo que tiene una alta afinidad de unión para IL-12 desde aproximadamente 5 a aproximadamente 100 pM,
- (ii)
- una proteína del receptor beta2 de IL-12, o sus fragmentos, cuya proteína del receptor es codificada por un ácido nucleico que comprende una secuencia de nucleótidos que se hibrida en condiciones rigurosas a la secuencia de nucleótido representada en SEQ ID NO:3,
- cuya proteína del receptor
- (a)
- tiene una afinidad de unión baja para IL-12 desde aproximadamente 1 a aproximadamente 10 nM, y
- (b)
- cuando se compleja con una proteína del receptor beta2 de interleuquina-12 (receptor \beta1 de IL-12) forma un complejo que tiene una alta afinidad de unión para IL-12 desde aproximadamente 5 a aproximadamente 100 pM,
en el que el fragmento de una
proteína del receptor beta2 de interleuquina 12 de baja afinidad de
unión tiene la secuencia de aminoácidos de una parte de una
proteína del receptor beta2 de IL-12 y las
propiedades (a) y (b) anteriores, y en el que el fragmento de una
proteína del receptor beta1 de IL-12 tiene la
secuencia de aminoácidos de una parte de la proteína del receptor
beta1 de IL-12 y las propiedades (a) y (b)
anteriores.
7. El anticuerpo de la reivindicación 6, en el
que la proteína del receptor beta2 de IL-12 comparte
al menos una homología de secuencia del 80% con un polipéptido que
consiste en la secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID
NO:2.
8. El anticuerpo de la reivindicación 7, en el
que la proteína del receptor beta2 de IL-12
comprende la secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID NO:2,
su forma alélica o variante.
9. El anticuerpo de la reivindicación 6, en el
que la proteína del receptor beta1 de IL-12 comparte
al menos una homología de secuencia del 80% con un polipéptido que
consiste en la secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID
NO:4.
10. El anticuerpo de la reivindicación 9, en el
que la proteína del receptor beta1 de IL-12
comprende la secuencia de aminoácidos representada en SEQ ID NO:4,
o su forma alélica o variante.
11. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 6-8, en el que la proteína del
receptor beta2 de IL-12 es codificada por un ácido
nucleico, cuyo ácido nucleico comprende una subsecuencia (a) y una
subsecuencia (b), en el que dicha subsecuencia (a) codifica una
forma soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 y la subsecuencia (b) codifica todos los
dominios de la región constante de la cadena pesada de Ig distintos
que el primer dominio de dicha región constante.
12. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 6 y 9-10, en el que la proteína del
receptor beta1 de IL-12 es codificada por un ácido
nucleico, cuyo ácido nucleico comprende una subsecuencia (a) y una
subsecuencia (b), en el que dicha subsecuencia (a) codifica una
forma soluble de la proteína del receptor beta2 de
IL-12 y dicha subsecuencia (b) codifica todos los
dominios de la región constante de la cadena pesada de Ig distintos
que el primer dominio de dicha región constante.
13. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 6-8, en el que la proteína del
receptor beta2 de IL-12 es soluble.
14. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 6 y 9-10, en el que la proteína del
receptor beta1 de IL-12 es soluble.
15. El anticuerpo de la reivindicación 6, en el
que el complejo es soluble.
16. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 6-15, en el que el anticuerpo es un
anticuerpo monoclonal.
17. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones 1-16, en el que el anticuerpo es
purificado.
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