ES2239057T3 - Agentes de liberacion de hidroxido utilizados como potenciadores de la permeacion cutanea. - Google Patents
Agentes de liberacion de hidroxido utilizados como potenciadores de la permeacion cutanea.Info
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Abstract
Utilización de (a) un fármaco seleccionado de entre el grupo constituido por aminoácidos, agentes analgésicos, agentes anestésicos, agentes anti-acné, agentes antiartríticos, agentes antiarrítmicos, agentes antiasmásticos, agentes antibióticos, agentes anticancerosos, agentes anticolinérgicos, agentes anticonvulsivantes, agentes antidepresivos, agentes antidiabéticos, agentes antidiarreicos, agentes antifúngicos, agentes antiglaucomatosos, agentes antihelmínticos, agentes antihistamínicos, agentes antihiperlipidémicos, agentes antihipertensivos, preparaciones antimigrañosas, agentes antieméticos, agentes antineoplásicos, fármacos antiparkinsonianos, agentes antipruríticos, agentes antipsoriásicos, agentes antipsicóticos, agentes antipiréticos, agentes antiespasmódicos, agentes antituberculosos, agentes antiulcerosos, agentes antivíricos, agentes ansiolíticos, supresores del apetito, fármacos para el trastorno por déficit de atención (ADD) y el trastorno por déficitde atención e hiperactividad (ADHD), betabloqueantes, fármacos bloqueantes de los canales del calcio, estimulantes del sistema nervioso central, descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos, materiales genéticos, remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes hipnóticos, agentes hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores, inhibidores de los leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes musculares, antagonistas narcóticos, nicotina, agentes parasimpaticolíticos, fármacos peptídicos, psicoestimulantes, sedantes, esteroides, simpaticomiméticos, tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y combinaciones de los mismos.
Description
Agentes de liberación de hidróxido utilizados
como potenciadores de la permeación cutánea.
La presente invención se refiere generalmente a
la administración tópica y transdérmica de principios
farmacológicamente activos y más particularmente, se refiere a
procedimientos y composiciones para potenciar la permeabilidad del
tejido cutáneo o mucoso frente a principios farmacológicamente
activos aplicados por vía tópica.
La administración de fármacos a través de la piel
proporciona muchas ventajas; principalmente, tales medios de
administración son una manera cómoda, práctica y no invasiva de
administrar fármacos. Se evitan las velocidades de absorción y de
metabolismo variables encontradas en el tratamiento oral y también
se eliminan otros inconvenientes inherentes, por ejemplo,
irritación gastrointestinal y similares. La administración
transdérmica de fármacos también posibilita un mayor grado de
control de las concentraciones sanguíneas de cualquier fármaco
particular.
La piel es una membrana estructuralmente
compleja, relativamente gruesa. Las moléculas que se desplazan
desde el entorno hasta el interior y a través de la piel intacta
deben penetrar en primer lugar el estrato córneo y cualquier
material sobre su superficie. Después, deben penetrar la epidermis
viable, la dermis papilar y las paredes capilares hacia la
corriente sanguínea o los conductos linfáticos. Para absorberse de
esta manera, las moléculas deben vencer una resistencia diferente a
la penetración en cada tipo de tejido. El transporte a través de la
membrana de la piel es por tanto un fenómeno complejo. Sin embargo,
son las células del estrato córneo las que presentan la principal
barrera frente a la absorción de composiciones tópicas o fármacos
administrados por vía transdérmica. El estrato córneo es una capa
delgada de células densas, altamente queratinizadas de entre
aproximadamente 10 y 15 micras de espesor sobre la mayor parte del
cuerpo. Se cree que es el alto grado de queratinización dentro de
estas células, así como su densa compactación, lo que crea en la
mayoría de los casos una barrera sustancialmente impermeable frente
a la penetración del fármaco. Con muchos fármacos, la tasa de
permeación a través de la piel es extremadamente baja sin la
utilización de algunos medios para potenciar la permeabilidad de la
piel.
Con el fin de aumentar la proporción con la que
un fármaco penetra a través de la piel, se han seguido entonces
varios enfoques, cada uno de los cuales implica la utilización de
un potenciador químico de la penetración o un potenciador físico de
la penetración. La potenciación física de la permeación de la piel
incluye, por ejemplo, técnicas electroforéticas tales como la
iontoforesis. También se ha investigado la utilización de
ultrasonidos (o "fonoforesis") como potenciador de la
penetración física. Los potenciadores químicos son compuestos que
se administran junto con el fármaco (o en algunos casos, la piel
puede tratarse previamente con un potenciador químico) con el fin de
aumentar la permeabilidad del estrato córneo y con ello
proporcionar una penetración mejorada del fármaco a través de la
piel. En el caso ideal, tales potenciadores químicos de la
penetración (o "potenciadores de la permeación", tal como se
denominan los compuestos en la presente memoria) son compuestos que
son inocuos y que sirven meramente para facilitar la difusión del
fármaco a través del estrato córneo.
Se conocen varios compuestos para potenciar la
permeabilidad de la piel en la técnica y se describen en los textos
y la bibliografía pertinentes. Los compuestos que se han utilizado
para potenciar la permeabilidad de la piel incluyen: sulfóxidos
tales como dimetilsulfóxido (DMSO) y decilmetilsulfóxido
(C_{10}MSO); éteres tales como monoetil éter de dietilenglicol
(disponible comercialmente como Transcutol®) y monometil éter de
dietilenglicol; tensioactivos tales como laurato de sodio,
laurilsulfato de sodio, bromuro de cetiltrimetilamonio, cloruro de
benzalconio, poloxámero (231, 182, 184), Tween® (20, 40, 60, 80) y
lecitina (patente US nº 4.783.450); las
azacicloheptan-2-onas sustituidas
en 1, particularmente
1-n-dodecilciclazacichoheptan-2-ona
(disponible con la marca registrada Azone® de Nelson Research &
Development Co., Irvine, Calif.; véase las patentes US nº
3.989.816, 4.316.893, 4.405.616 y 4.557.934); alcoholes tales como
etanol, propanol, octanol, alcohol benzílico y similares; ácidos
grasos tales como ácido láurico, ácido oleico y ácido valérico;
ésteres de ácidos grasos tales como miristato de isopropilo,
palmitato de isopropilo, propionato de metilo y oleato de etilo;
polioles y ésteres de los mismos tales como propilenglicol,
etilenglicol, glicerol, butanodiol, polietilenglicol y monolaurato
de polietilenglicol (PEGML; véase, por ejemplo, la patente US nº
4.568.343); amidas y otros compuestos nitrogenados tales como urea,
dimetilacetamida (DMA), dimetilformamida (DMF),
2-pirrolidona,
1-metil-2-pirrolidona,
etanolamina, dietanolamina y trietanolamina; terpenos; alcanonas; y
ácidos orgánicos, particularmente ácido salicílico y salicilatos,
ácido cítrico y ácido succínico. Percutaneous Penetration
Enhancers, eds. Smith et al. (CRC Press, 1995)
proporciona una visión general excelente del campo y de los
antecedentes adicionales sobre varios potenciadores químicos y
físicos. Aunque se conocen muchos potenciadores químicos de la
permeación, existe una necesidad creciente de potenciadores que
sean altamente eficaces aumentando la proporción con la que un
fármaco penetra la piel, que no produzcan lesión, irritación,
sensibilización cutáneas o similares y que puedan utilizarse para
realizar la administración transdérmica de incluso fármacos con
elevado peso molecular tales como péptidos, proteínas y ácidos
nucleicos. Se ha descubierto ahora que los agentes de liberación de
hidróxidos son potenciadores de la permeación altamente eficaces,
incluso cuando se utilizan sin copotenciadores y proporcionar todas
las ventajas anteriormente mencionadas en relación con los
potenciadores de la permeación conocidos. Además, a diferencia de
los potenciadores convencionales, la administración transdérmica de
fármacos con agentes de liberación de hidróxidos como potenciadores
de la permeación, empleada en los niveles apropiados, no da como
resultado una toxicidad sistémica.
Por tanto, es un objetivo primario de la
invención tratar la necesidad anteriormente descrita en la técnica
proporcionando un procedimiento nuevo para potenciar la tasa con la
que un principio activo administrado en la superficie corporal de un
paciente penetra en el interior y/o a través de la superficie
corporal.
Otro objetivo de la invención consiste en
proporcionar un procedimiento tal en el que un agente de liberación
de hidróxido se emplea como un potenciador de la permeación para
aumentar el flujo de un principio activo a través del tejido cutáneo
o mucoso de un paciente.
Todavía otro objetivo de la invención consiste en
proporcionar un procedimiento tal en el que la cantidad de agente
de liberación de hidróxido empleada se optimiza para potenciar la
permeación a la vez que se minimiza o elimina la posibilidad de
lesión, irritación o sensibilización cutáneas.
Todavía otro objetivo de la invención consiste en
proporcionar un procedimiento tal en el que el principio activo es
un principio farmacológicamente activo seleccionado de ácidos
grasos, bases libres, sales de adición de base, sales de adición de
ácido de bases libres, fármacos no ionizables, péptidos y
proteínas.
Un objetivo adicional de la invención consiste en
proporcionar un procedimiento tal en el que el principio activo es
un principio cosméticamente eficaz.
Todavía un objetivo adicional de la invención
consiste en proporcionar un procedimiento tal en el que el principio
activo está dirigido para la administración local y la
administración farmacológica es tópica.
Todavía un objetivo adicional de la invención
consiste en proporcionar un procedimiento tal en el que el principio
activo está dirigido para la administración sistémica y la
administración farmacológica es transdérmica.
Un objetivo adicional de la invención consiste en
proporcionar formulaciones y sistemas de administración de fármacos
para llevar a cabo los procedimientos anteriormente
mencionados.
Objetivos adicionales, ventajas y características
nuevas de la invención se expondrán en parte en la siguiente
descripción y en parte resultarán evidentes para aquellos expertos
en la materia tras el examen de lo siguiente o podrán aprenderse
mediante la práctica de la invención.
A continuación, en un aspecto de la invención, se
prevé un procedimiento para aumentar la tasa con la que un
principio activo penetra a través de la superficie corporal de un
paciente. Generalmente, el procedimiento implica administrar el
principio en un área predeterminada de la superficie corporal del
paciente en combinación con un agente de liberación de hidróxido en
una cantidad predeterminada eficaz para potenciar el flujo del
principio a través de la superficie corporal sin producir lesión de
la misma.
Con más detalle, según un aspecto de la presente
invención, se prevé la utilización de (a) un fármaco seleccionado
de entre el grupo constituido por aminoácidos, agentes analgésicos,
agentes anestésicos, agentes anti-acné, agentes
antiartríticos, agentes antiarrítmicos, agentes antiasmásticos,
agentes antibióticos, agentes anticancerosos, agentes
anticolinérgicos, agentes anticonvulsivantes, agentes
antidepresivos, agentes antidiabéticos, agentes antidiarreicos,
agentes antifúngicos, agentes antiglaucomatosos, agentes
antihelmínticos, agentes antihistamínicos, agentes
antihiperlipidémicos, agentes antihipertentensivos, agentes
antimigrañosos, agentes antieméticos, agentes antineoplásicos,
fármacos antiparkinsonianos, agentes antipruríticos, agentes
antipsoriásicos, agentes antipsicóticos, agentes antipiréticos,
agentes antiespasmódicos, agentes antituberculosos, agentes
antiulcerosos, agentes antivíricos, agentes ansiolíticos,
supresores del apetito, fármacos para el trastorno por déficit de
atención (ADD) y el trastorno por déficit de atención e
hiperactividad (ADHD), betabloqueantes, fármacos bloqueantes de los
canales del calcio, estimulantes del sistema nervioso central,
descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos, materiales genéticos,
remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes hipnóticos, agentes
hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores, inhibidores de los
leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes musculares,
antagonistas narcóticos, nicotina, agentes parasimpaticolíticos,
fármacos peptídicos, psicoestimulantes, sedantes, esteroides,
simpaticomiméticos, tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y
combinaciones de los mismos, en el que el fármaco es
(i) un fármaco básico en forma de una base
libre,
(ii) un fármaco ácido en forma de un ácido
libre,
(iii) un fármaco ácido en forma de una sal de
adición básica o
(iv) un compuesto no ionizable; y
(b) una cantidad de un hidróxido inorgánico
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la
superficie corporal sin producir lesión de la misma, en el que el
hidróxido inorgánico se selecciona del grupo que consiste en
hidróxidos metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes
e hidróxido de amonio, en el que la cantidad de hidróxido
inorgánico en la formulación aplicada sobre la superficie corporal
es el total de (a) la cantidad requerida para neutralizar cualquier
especie ácida en la formulación más (b) una cantidad igual entre
0,5% en peso y 4,0% en peso de la formulación; para la preparación
de una formulación farmacéutica adecuada para la administración
tópica o transdérmica del fármaco para administrar el fármaco en
una región localizada de la superficie corporal de un paciente
humano para potenciar el flujo de un fármaco a través de una
superficie corporal,
y en el que tras la aplicación sobre la
superficie corporal, la formulación proporciona un pH en el punto
de contacto entre la superficie corporal y la formulación en el
intervalo comprendido entre 8,5 y 13.
La cantidad predeterminada del potenciador que
libera hidróxidos es preferentemente una cantidad eficaz para
proporcionar un pH en la superficie corporal, es decir, durante la
administración del fármaco, en el intervalo comprendido entre
aproximadamente 8,5 y 13, preferentemente de aproximadamente 8,5 a
11,5. Si se utiliza un parche dérmico, este es el pH preferido en
el punto de contacto entre la superficie basal del parche (es
decir, la superficie del parche de contacto con la piel o la de
contacto con la mucosa) y la superficie corporal. La cantidad óptima
(o concentración) de cualquiera de los agentes de liberación de
hidróxidos dependerá, sin embargo, del agente de liberación de
hidróxido específico, es decir, de la dureza o debilidad de la base,
su peso molecular y otros factores como podrán apreciarlo aquellos
expertos en la materia de la administración transdérmica de
fármacos. Esta cantidad óptima puede determinarse utilizando
experimentos de rutina para garantizar que el pH en la superficie
corporal esté dentro de los intervalos anteriormente mencionados,
es decir, en el intervalo de aproximadamente 8,5 a 13,
preferentemente de aproximadamente 8,5 a 11,5. Puede utilizarse un
dispositivo de administración transdérmica de fármacos o
"parche" para administrar el principio activo, en cuyo caso el
fármaco y el agente de liberación de hidróxido están generalmente
presentes en un depósito o depósitos de fármaco. Sin embargo, el
fármaco y el agente de liberación de hidróxido también pueden
administrarse a la superficie corporal utilizando una formulación
líquida o semisólida. Alternativa o adicionalmente, la superficie
corporal puede tratarse previamente con el potenciador, por ejemplo
tratarse con una disolución diluida del agente de liberación de
hidróxido antes de la administración transdérmica del fármaco. Tal
disolución estará generalmente constituida por un disolvente
prótico (por ejemplo, agua o alcohol) y tendrá un pH en el intervalo
de aproximadamente 8,5 a 13, preferentemente de 8,5 a 11,5.
En un aspecto relacionado de la invención, se
proporciona una composición para administrar un fármaco a través de
una superficie corporal utilizando un agente de liberación de
hidróxido como un potenciador de la permeación. Generalmente, la
formulación comprende (a) una cantidad terapéuticamente eficaz de un
fármaco, (b) un agente de liberación de hidróxido en una cantidad
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la
superficie corporal sin producir lesión de la misma y (c) un
excipiente farmacéuticamente aceptable adecuado para la
administración tópica o transdérmica del fármaco.
Por tanto, en otro aspecto de la presente
invención, se proporciona una composición para la administración de
un fármaco a través de la superficie corporal, que comprende una
formulación acuosa de:
(a) una cantidad terapéuticamente eficaz de un
fármaco seleccionado de entre el grupo constituido por aminoácidos,
agentes analgésicos, agentes anestésicos, agentes
anti-acné, agentes antiartríticos, agentes
antiarrítmicos, agentes antiasmásticos, agentes antibióticos,
agentes anticancerosos, agentes anticolinérgicos, agentes
anticonvulsivantes, agentes antidepresivos, agentes antidiabéticos,
agentes antidiarreicos, agentes antifúngicos, agentes
antiglaucomatosos, agentes antihelmínticos, agentes
antihistamínicos, agentes antihiperlipidémicos, agentes
antihipertentensivos, agentes antimigrañosos, agentes antieméticos,
agentes antineoplásicos, fármacos antiparkinsonianos, agentes
antipruríticos, agentes antipsoriásicos, agentes antipsicóticos,
agentes antipiréticos, agentes antiespasmódicos, agentes
antituberculosos, agentes antiulcerosos, agentes antivíricos,
agentes ansiolíticos, supresores del apetito, fármacos para el
trastorno por déficit de atención (ADD) y el trastorno por déficit
de atención e hiperactividad (ADHD), betabloqueantes, fármacos
bloqueantes de los canales del calcio, estimulantes del sistema
nervioso central, descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos,
materiales genéticos, remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes
hipnóticos, agentes hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores,
inhibidores de los leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes
musculares, antagonistas narcóticos, nicotina, agentes
parasimpaticolíticos, fármacos peptídicos, psicoestimulantes,
sedantes, esteroides, simpaticomiméticos, tranquilizantes,
vasodilatadores, vitaminas y combinaciones de los mismos, en el que
el fármaco es
(i) un fármaco básico en forma de una base
libre,
(ii) un fármaco ácido en forma de un ácido
libre,
(iii) un fármaco ácido en forma de una sal de
adición de base o
(iv) un compuesto no ionizable; y
(b) un hidróxido inorgánico en una cantidad de
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la
superficie corporal sin producir lesión de la misma, en el que el
hidróxido inorgánico se selecciona del grupo que consiste en
hidróxidos metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes
e hidróxido de amonio, en el que la cantidad de hidróxido
inorgánico en la formulación aplicada sobre la superficie corporal
es el total de (a) la cantidad requerida para neutralizar cualquier
especie ácida en la formulación más (b) una cantidad igual a del
0,5% en peso al 4,0% en peso de la formulación;
(c) un excipiente farmacéuticamente aceptable
adecuado para la administración tópica o transdérmica de
fármacos,
y además en el que
(d) tras la aplicación sobre la superficie
corporal, proporciona un pH en el punto de contacto entre la
superficie corporal y la formulación en el intervalo comprendido
entre 8,5 y 13.
La composición puede estar en cualquier forma
adecuada para la aplicación sobre la superficie corporal y puede
comprender, por ejemplo, un crema, loción, solución, gel, ungüento,
pasta o similares, y/o puede prepararse de manera que contenga
liposomas, micelas y/o microesferas. La composición puede aplicarse
directamente sobre la superficie corporal o puede implicar la
utilización de un sistema de administración del fármaco. En ambos
casos, se prefiere, aunque no es esencial, que haya agua con el fin
de que el agente de liberación de hidróxido genere iones hidróxido
y por tanto potencie el flujo del principio activo a través de la
superficie corporal del paciente. Por tanto, una formulación o
depósito de fármaco puede ser acuosa, es decir, contener agua, o
puede no ser acuosa y utilizarse en combinación con un
recubrimiento oclusivo de manera que la humedad que se evapora de
la superficie corporal se mantiene en el interior de la formulación
o sistema transdérmico durante la administración del fármaco.
En otro aspecto de la invención, se proporciona
un sistema de administración de fármacos para la administración
tópica o transdérmica de un fármaco utilizando un agente de
liberación de hidróxido como un potenciador de la permeación. El
sistema comprenderá generalmente: al menos un depósito de fármaco
que contiene el fármaco y el agente de liberación de hidróxido en
una cantidad eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de
la superficie corporal sin producir lesión de la misma; medios para
mantener el sistema en una relación que transmita fármaco y
potenciador en la superficie corporal; y una capa de refuerzo que
sirva como la superficie exterior del dispositivo durante la
utilización.
Por tanto, en un aspecto adicional de la presente
invención, se proporciona un sistema para la administración tópica
y transdérmica de un fármaco a través de una superficie corporal,
que comprende:
(a) por lo menos un depósito de fármaco que
contiene
(i) un fármaco seleccionado de entre el grupo
constituido por aminoácidos, agentes analgésicos, agentes
anestésicos, agentes anti-acné, agentes
antiartríticos, agentes antiarrítmicos, agentes antiasmásticos,
agentes antibióticos, agentes anticancerosos, agentes
anticolinérgicos, agentes anticonvulsivantes, agentes
antidepresivos, agentes antidiabéticos, agentes antidiarreicos,
agentes antifúngicos, agentes antiglaucomatosos, agentes
antihelmínticos, agentes antihistamínicos, agentes
antihiperlipidémicos, agentes antihipertentensivos, agentes
antimigrañosos, agentes antieméticos, agentes antineoplásicos,
fármacos antiparkinsonianos, agentes antipruríticos, agentes
antipsoriásicos, agentes antipsicóticos, agentes antipiréticos,
agentes antiespasmódicos, agentes antituberculosos, agentes
antiulcerosos, agentes antivíricos, agentes ansiolíticos,
supresores del apetito, fármacos para el trastorno por déficit de
atención (ADD) y el trastorno por déficit de atención e
hiperactividad (ADHD), betabloqueantes, fármacos bloqueantes de los
canales del calcio, estimulantes del sistema nervioso central,
descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos, materiales genéticos,
remedios con hierbas, hormonolíticos, hipnóticos, hipoglucemiantes,
inmunosupresores, inhibidores de los leucotrienos, inhibidores
mitóticos, relajantes musculares, antagonistas narcóticos,
nicotina, parasimpaticolíticos, fármacos peptídicos,
psicoestimulantes, sedantes, esteroides, simpaticomiméticos,
tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y combinaciones de los
mismos, en el que el fármaco es
- (A)
- un fármaco básico en forma de una base libre,
- (B)
- un fármaco ácido en forma de un ácido libre,
- (C)
- un fármaco ácido en forma de una sal de adición de base o
- (D)
- un compuesto no ionizable; y
(ii) un hidróxido inorgánico en una cantidad de
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la
superficie corporal sin producir lesión de la misma, en el que el
hidróxido inorgánico se selecciona del grupo que consiste en
hidróxidos metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes
e hidróxido de amonio, en el que la cantidad de hidróxido
inorgánico en la formulación aplicada sobre la superficie corporal
es el total de (a) la cantidad requerida para neutralizar cualquier
especie ácida en la formulación más (b) una cantidad igual a del
0,5% en peso al 4,0% en peso de la formulación;
(b) unos medios para mantener el sistema en una
relación que transmite fármaco y potenciador a la superficie
corporal; y
(c) una capa de refuerzo que sirve como la
superficie externa del dispositivo durante la utilización.
La capa de refuerzo puede ser oclusiva o no
oclusiva, aunque es preferentemente oclusiva. El depósito de
fármaco puede comprender un adhesivo polimérico, que puede servir
como la superficie basal del sistema durante la utilización y por
tanto funcionar como los medios para mantener el sistema en una
relación que transmite fármaco y potenciador a la superficie
corporal. El depósito de fármaco también puede comprender un
hidrogel o puede ser una bolsa sellada dentro de una estructura tipo
"parche" en la que el fármaco y el agente de liberación de
hidróxido están presentes en la bolsa como formulación líquida o
semisólida.
La figura 1 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de estradiol a partir de un parche matriz tal como se
describe en el ejemplo 1.
La figura 2 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de ketoprofeno a partir de un parche matriz tal como se
describe en el ejemplo 2.
La figura 3 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de fenilpropanolamina a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 3.
La figura 4 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de ibuprofeno a partir de un gel tal como se describe en
el ejemplo 5.
La figura 5 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de fenilpropanolamina a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 6.
La figura 6 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de fenilpropanolamina a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 7.
La figura 7 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de fenilpropanolamina a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 8.
La figura 8 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de estradiol a partir de un parche matriz tal como se
describe en el ejemplo 9.
La figura 9 es un gráfico que ilustra la cantidad
acumulada de estradiol a partir de un parche matriz tal como se
describe en el ejemplo 10.
La figura 10 es un gráfico que ilustra la
cantidad acumulada de estradiol a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 11.
La figura 11 es un gráfico que ilustra la
cantidad acumulada de fenilpropanolamina a partir de un parche
matriz tal como se describe en el ejemplo 12.
La figura 12 es un gráfico que ilustra la
cantidad acumulada de diclofenaco a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 16.
La figura 13 es un gráfico que ilustra la
cantidad acumulada de diclofenaco a partir de un gel tal como se
describe en el ejemplo 17.
La figura 14 es un gráfico que ilustra la
cantidad acumulada de testosterona a partir de un parche matriz tal
como se describe en el ejemplo 18.
Antes de describir la presente invención en
detalle, debe entenderse que esta invención no se limita a fármacos
o sistemas de administración de fármacos particulares, y como tal
puede variar. También debe entenderse que la terminología utilizada
en la presente memoria tiene la finalidad de describir realizaciones
particulares sólo, y no pretende ser limitante.
Debe observarse que, tal como se utiliza en esta
memoria descriptiva y en las reivindicaciones adjuntas, las formas
en singular "un", "una", "el", "la" incluyen
los referentes plurales a menos que el contexto establezca
claramente lo contrario. Por tanto, por ejemplo, la referencia de
"un principio farmacológicamente activo" incluye una mezcla de
dos o más de tales compuestos, la referencia de "un agente de
liberación de hidróxido" incluye mezclas de dos o más de agentes
de liberación de hidróxidos y así sucesivamente.
Para describir y reivindicar la presente
invención, se utilizará la siguiente terminología de acuerdo con
las definiciones expuestas a continuación.
Los términos "tratar" o "tratamiento",
tal como se utilizan en la presente memoria, se refieren a una
reducción de la gravedad y/o frecuencia de síntomas, eliminación de
síntomas y/o de la causa subyacente, la prevención de la aparición
de síntomas y/o su causa subyacente y la mejora o la curación de la
lesión. El presente método para "tratar" a un paciente, tal
como se utiliza el término en la presente memoria, engloba por
tanto la prevención de un trastorno en un individuo predispuesto y
el tratamiento del trastorno en un individuo clínicamente
sintomático.
El término "agente de liberación de
hidróxido", tal como se utiliza en la presente memoria, pretende
significar un agente que libera iones hidróxido libres en un
entorno acuoso. El agente puede contener iones hidróxido y por tanto
liberar los iones directamente (por ejemplo, un hidróxido de metal
alcalino) o el agente puede ser uno que actúa químicamente en un
entorno acuoso para generar iones hidróxido (por ejemplo, un
carbonato de metal).
Los términos "principio activo",
"fármaco" y "principio farmacológicamente activo" se
utilizan de manera intercambiable en la presente memoria para
referirse a un material o compuesto químico que induce un efecto
deseado e incluye principios que son terapéuticamente eficaces,
profilácticamente eficaces o cosméticamente eficaces. También se
incluyen derivados y análogos de estos compuestos o clases de
compuestos específicamente mencionadas que también inducen el efecto
deseado.
Por cantidad "terapéuticamente eficaz" se
entiende una cantidad no tóxica pero suficiente de un principio
activo para proporcionar el efecto terapéutico deseado.
Por administración "transdérmica" de fármaco
se entiende la administración de un fármaco sobre la superficie
cutánea de un individuo de manera que el fármaco pasa a través del
tejido cutáneo y al interior de la corriente sanguínea del
individuo, mediante lo que proporciona el efecto sistémico. El
término "transdérmica" pretende incluir administración
"transmucosa" de un fármaco, es decir, la administración de un
fármaco sobre la superficie mucosa (por ejemplo, sublingual, bucal,
vaginal, rectal) de un individuo de manera que el fármaco pasas a
través del tejido mucoso y al interior de la corriente sanguínea de
un individuo.
El término "administración tópica" se
utiliza en su sentido convencional para significar la
administración de un fármaco o principio farmacológicamente activo
por vía tópica sobre la piel o mucosa, como por ejemplo, en el
tratamiento de varios trastornos dermatológicos. La administración
tópica, a diferencia de la administración transdérmica, proporciona
un efecto local, más que sistémico. A menos que se afirme o
especifique lo contrario, los término "administración tópica de un
fármaco" y "administración transdérmica de un fármaco" se
utilizan de manera intercambiable.
El término "superficie corporal" se utiliza
para referirse al tejido cutáneo o mucoso.
Por "área predeterminada" de piel o tejido
mucoso, que se refiere al área del tejido cutáneo o mucoso a través
de la cual se administra una formulación
fármaco-potenciador, se entiende un área definida de
tejido cutáneo o mucoso vivo, intacto, no dañado. Ese área estará
normalmente en el intervalo de aproximadamente 5 cm^{2} a
aproximadamente 200 cm^{2}, más a menudo en el intervalo de
aproximadamente 5 cm^{2} a aproximadamente 100 cm^{2},
preferentemente en el intervalo de aproximadamente 20 cm^{2} a
aproximadamente 60 cm^{2}. Sin embargo, aquellos expertos en la
materia de la administración de fármacos observarán que el área de
tejido cutáneo o mucoso a través de la cual se administra el
fármaco puede variar significativamente, en función de la
configuración del parche, la dosis y similares.
"Potenciación de la penetración" o
"potenciación de la permeación", tal como se utilizan en la
presente memoria, se refiere a un aumento en la permeabilidad del
tejido cutáneo o mucoso para el principio farmacológicamente activo
seleccionado, es decir, de manera que la tasa con la que el
principio penetra a través de ella (es decir, el "flujo" del
principio a través de la superficie corporal) aumenta de manera
relativa a la tasa que se obtendría en ausencia de potenciación de
la permeación. La permeación potenciada realizada mediante la
utilización de tales potenciadores puede observarse midiendo la
tasa de difusión del fármaco a través de la piel humana o animal
utilizando, por ejemplo, un aparato de difusión Franz, tal como se
conoce en la técnica y tal como se emplea en los ejemplos de la
presente memoria descriptiva.
Por una cantidad "eficaz" de un potenciador
de la permeación se entiende una cantidad no tóxica, no nociva pero
suficiente del potenciador para proporcionar el aumento deseado en
la permeabilidad de la piel y, en consecuencia la profundidad
deseada de penetración, tasa de administración y la cantidad de
fármaco administrado.
"Excipientes" o "vehículos", tal como
se utilizan en la presente memoria, se refieren a materiales
excipientes adecuados para la administración transdérmica de
fármaco. Los excipientes y vehículos útiles en la presente memoria
incluyen cualquier material conocida en la técnica que no sea
tóxico y que no interactúe con otros componentes de la composición
de una manera perjudicial.
El término "acuoso" se refiere a una
formulación o sistema de administración de fármacos que contiene
agua o que se transforma en uno que contiene agua tras la
aplicación sobre el tejido cutáneo o mucoso.
Un "fármaco peptídico", tal como se utiliza
en la presente memoria, es un principio activo, fármaco o principio
farmacológicamente activo que comprende un péptido, polipéptido o
proteína. También se incluyen derivados y fragmentos
farmacológicamente activos de fármacos peptídicos. Para facilitar la
discusión, un "fármaco peptídico" también incluirá un
aminoácido único y derivados del mismo.
Un "péptido" se refiere a un polímero en el
que los monómeros son aminoácidos unidos entre sí mediante enlaces
amida. Los "péptidos" son generalmente más pequeños que las
proteínas, es decir, aproximadamente de dos a aproximadamente diez
aminoácidos de longitud. El término "péptido" incluye
"dipéptidos" constituidos por dos aminoácidos y
"tripéptidos" constituidos por tres aminoácidos
consecutivamente unidos y así sucesivamente.
Un "polipéptido" se refiere a un polímero de
aminoácidos generalmente constituido por aproximadamente de diez a
aproximadamente cincuenta aminoácidos.
Una "proteína", tal como se utiliza en la
presente memoria, se refiere a un polímero de aminoácidos
convencionalmente constituido por más de cincuenta aminoácidos. Las
proteínas que pueden utilizarse como fármacos peptídicos en la
presente invención pueden ser proteínas de origen natural,
proteínas de origen natural modificadas o proteínas químicamente
sintetizadas que pueden ser o no idénticas a proteínas de origen
natural.
Por tanto, la invención está relacionada con un
procedimiento, composición y sistema de administración de fármacos
para aumentar la tasa con la que un principio activo penetra a
través de la superficie corporal de un paciente, en el que el
procedimiento implica la administración del principio en un área
predeterminada de la superficie corporal del paciente en
combinación con un agente de liberación de hidróxido en una cantidad
eficaz para potenciar el flujo del principio a través de la
superficie corporal sin producir lesión de la misma.
El "agente de liberación de hidróxido" es un
compuesto químico que libera iones hidróxido libres en presencia de
un fluido acuoso. El fluido acuoso puede ser humedad natural sobre
la superficie cutánea, o un parche o una composición que se utiliza
puede contener agua añadida y/o utilizarse en conexión con un
refuerzo oclusivo. De manera similar, cualquier formulación líquida
o semisólida que se utiliza es preferentemente acuosa o se utiliza
en conjunto con un recubrimiento de un material oclusivo.
Cualquier agente de liberación de hidróxido puede
utilizarse con tal de que el compuesto libere iones hidróxido
libres en presencia de un fluido acuoso. Ejemplos de agentes de
liberación de hidróxidos adecuados incluyen, pero no se limitan a
ellos, hidróxidos inorgánicos, óxidos inorgánicos, y sales de
metales alcalinos o metales alcalinotérreos de ácidos débiles.
Hidróxidos inorgánicos incluyen, por ejemplo, hidróxido de amonio,
hidróxido de metal alcalino e hidróxidos de metal alcalinotérreo,
tales como hidróxido de sodio, hidróxido de calcio, hidróxido de
potasio, hidróxido de magnesio y similares. Los óxidos inorgánicos
incluyen, por ejemplo, óxido de magnesio, óxido de calcio y
similares. Las sales de metales de ácidos débiles incluyen, por
ejemplo, acetato de sodio, borato de sodio, metaborato de sodio,
carbonato de sodio, bicarbonato de sodio, fosfato de sodio
(tribásico), fosfato de sodio (dibásico), carbonato de potasio,
bicarbonato de potasio, citrato de potasio, acetato de potasio,
fosfato de potasio (dibásico), fosfato de potasio (tribásico),
fosfato de amonio (dibásico) y similares. Los agentes de liberación
de hidróxidos preferidos son hidróxidos de metales tales como
hidróxido de sodio e hidróxido de potasio.
Es importante que la cantidad de agente que
libera hidróxido en cualquier parche o formulación se optimice, de
manera que se aumente el flujo del fármaco a través de la
superficie corporal, a la vez que se minimiza cualquier posibilidad
de lesión cutánea. En general, esto significa que el pH en la
superficie corporal en contacto con una formulación o sistema de
administración de fármaco de la invención (es decir, la superficie
entre la superficie corporal y la formulación o el sistema de
administración) debería estar en el intervalo comprendido entre
aproximadamente 8,5 y 13, preferentemente aproximadamente entre 8,5
y 11,5. Esto significará normalmente, aunque no necesariamente, que
el pH de la formulación o de la composición farmacéutica contenida
dentro de un sistema de administración estará en el intervalo
comprendido entre aproximadamente 8,5 y 13, preferentemente entre
aproximadamente 8,5 y 11,5.
Para los hidróxidos inorgánicos, la cantidad de
agente de liberación de hidróxido representará aproximadamente
entre 0,5% en peso y 4,0% en peso, preferentemente aproximadamente
entre 0,5% en peso y 3,0% en peso, más preferentemente
aproximadamente entre 0,75% en peso y 2,0% en peso y óptimamente
aproximadamente el 1,0% en peso de una formulación aplicada por vía
tópica o de un depósito de fármaco de un sistema de administración
de fármaco o "parche". La cantidad anteriormente mencionada se
aplica a formulaciones y parches en los que el principio activo es
(1) una molécula no cargada, es decir, la fenilpropanolamina está en
forma de base libre, no ionizada y (2) no hay especies adicionales
en la formulación o parche que podrían reaccionar con o
neutralizarse mediante los hidróxidos inorgánicos. Para
formulaciones y parches en los que la fenilpropanolamina está en
forma de una sal de adición de ácido y/o en los que hay especies
adicionales en las formulaciones o sistemas que puede neutralizarse
mediante o reaccionar con el agente de liberación de hidróxido (es
decir, componentes inactivos ácidos), la cantidad de hidróxido
inorgánico será el total de (1) la cantidad necesaria para
neutralizar la sal de adición de ácido y/u otras especies que
pueden neutralizarse con bases, más (2) aproximadamente entre 0,5%
en peso y 4,0 en peso, preferentemente aproximadamente entre 0,5%
en peso y 3,0% en peso, más preferentemente aproximadamente entre
0,75% en peso y 2,0% en peso y óptimamente aproximadamente el 1,0%
en peso de la formulación o depósito de fármaco. Por tanto, para
una sal de adición de ácido de fenilpropanolamina, el hidróxido
inorgánico debe estar presente en una cantidad sólo suficiente para
neutralizar la sal, más una cantidad adicional (es decir,
aproximadamente entre 0,5% en peso y 4,0% en peso, preferentemente
aproximadamente entre 0,5% en peso y 3,0% en peso, más
preferentemente aproximadamente entre 0,75% en peso y 2,0% en peso y
óptimamente aproximadamente el 1,0% en peso) para potenciar el flujo
del fármaco a través del tejido cutáneo o mucoso. Para parches, los
porcentajes anteriormente mencionados se dan en relación con el
peso seco total de los componentes de la formulación y el depósito
adhesivo, líquido o en gel.
Para otros agentes de liberación de hidróxidos,
tales como óxidos inorgánicos y sales de metales de ácidos débiles,
la cantidad del agente de liberación de hidróxido en la formulación
o el sistema de administración de fármaco puede ser sustancialmente
superior, tan elevada como el 20% en peso, en algunos casos tan
elevada como el 25% en peso o superior, pero generalmente estará en
el intervalo de aproximadamente el 2% en peso al 20% en peso.
Pueden utilizarse cantidades todavía mayores de
agente de liberación de hidróxido controlando la tasa y/o cantidad
de liberación del agente de liberación de hidróxido,
preferentemente durante el propio periodo de administración del
fármaco.
Sin embargo, para todos los agentes de liberación
de hidróxidos de la presente memoria descriptiva, la cantidad
óptima de cualquier agente particular dependerá de la dureza o
debilidad de la base, el peso molecular de la base y otros factores
tales como el número de lugares ionizables en el fármaco
administrado y cualquier otra especie ácida en la formulación o
parche. Un experto en la materia determinará fácilmente la cantidad
óptima para cualquier agente particular.
El principio activo administrado puede ser
cualquier compuesto que es adecuado para la administración tópica,
transdérmica o transmucosa e induce un efecto local o sistémico
deseado. Dichas sustancias incluyen las amplias clases de compuestos
normalmente administrados a través de las superficies y membranas
corporales, incluyendo la piel. En general, incluye: agentes
analgésicos; agentes anestésicos; agentes antiartríticos; fármacos
del aparato respiratorio, incluyendo agentes antiasmáticos; fármacos
anticancerosos, incluyendo fármacos antineoplásicos;
anticolinérgicos; anticonvulsivantes; antidepresivos; agentes
antidiabéticos; antidiarreicos; antihelmínticos; antihistamínicos;
antihiperlipidémicos; agentes antihipertentensivos; antiinfecciosos,
tales como antibióticos y agentes antivíricos; agentes
antiinflamatorios; preparaciones antimigrañosas; antieméticos;
agentes antineoplásicos; fármacos antiparkinsonianos;
antipruríticos; antipsicóticos; antipiréticos; antiespasmódicos;
antituberculosos; agentes antiulcerosos; agentes antivíricos;
ansiolíticos; supresores del apetito; fármacos para el trastorno
por déficit de atención (ADD) y el trastorno por déficit de atención
e hiperactividad (ADHD); preparaciones cardiovasculares, incluyendo
bloqueantes de los canales del calcio; fármacos del SNC (sistema
nervioso central); betabloqueantes y antiarrítmicos; estimulantes
del sistema nervioso central; preparaciones para la tos y el
resfriado, incluyendo descongestionantes; diuréticos; materiales
genéticos; remedios con hierbas; hormonolíticos; hipnóticos;
hipoglucemiantes; inmunosupresores; inhibidores de los leucotrienos;
inhibidores mitóticos; relajantes musculares; antagonistas
narcóticos; nicotina; productos nutricionales, tales como
vitaminas, aminoácidos esenciales y ácidos grasos; fármacos
oftálmicos, tales como antiglaucomatosos; parasimpaticolíticos;
fármacos peptídicos; psicoestimulantes; sedantes; esteroides;
simpaticomiméticos; tranquilizantes; y vasodilatadores, incluyendo
coronarios, periféricos y cerebrales generales.
La cantidad del principio activo administrado
dependerá de varios factores y variará de un sujeto a otro y
dependerá del fármaco particular administrado, el trastorno o
enfermedad particular que va a tratarse, la gravedad de los
síntomas, la edad, el peso y el estado general del sujeto, y la
opinión del médico prescriptor. Otros factores, específicos de la
administración transdérmica de fármacos, incluyen la solubilidad y
la permeabilidad del vehículo y la capa adhesiva en un dispositivo
de administración de fármaco, si se utiliza, y el periodo de tiempo
durante el cual tal dispositivo estará fijo sobre la piel u otra
superficie corporal. La cantidad mínima de fármaco está determinada
por el requisito de que cantidades suficientes de fármaco deben
estar presentes en un dispositivo o una composición para mantener
la tasa deseada de liberación durante el periodo dado de
aplicación. La cantidad máxima con fines de seguridad está
determinada por el requisito de que la cantidad de fármaco presente
no puede exceder una tasa de liberación que alcance niveles
tóxicos. Generalmente, la concentración máxima está determinada por
la cantidad de principio que puede alojar el vehículo sin producir
efectos histológicos adversos, tales como irritación, una cantidad
inicial inaceptablemente elevada de principio en el organismo o
efectos adversos en las características del dispositivo de
administración, tales como pérdida de la adhesión, viscosidad o
deterioro de otras propiedades.
Las clases preferidas de principios activos se
describen en las siguientes secciones.
El principio activo puede ser una base que
contiene nitrógeno farmacológicamente activa, por ejemplo, una
amina primaria, una amina secundaria o una amina terciaria o puede
ser un heterociclo que contiene nitrógeno aromático o no aromático,
un compuesto azo, una imina o una combinación de cualquiera de los
anteriores.
Ejemplos de aminas primarias específicas
incluyen, pero no se limitan a, anfetamina, norepinefrina,
fenilpropanolamina (incluyendo cualquiera de los cuatro isómeros,
individualmente o en combinación, por ejemplo,
(+)-norefedrina, (-)-norefedrina,
(+)-norseudoefedrina y
(-)-norseudoefedrina) y piritiamina.
Ejemplos de aminas secundarias y terciarias
incluyen, pero no se limitan a, amiodarona, amitriptilina,
azitromicina, benzfetamina, bromofeniramina, clorambucilo,
cloroprocaína, cloroquina, clorfeniramina, cloroteno, clorpromazina,
cinarizina, claritromicina, clomifeno, ciclobenzaprina,
ciclopentolato, ciclofosfamida, dacarbazina, demeclociclina,
dibucaína, diciclomina, dietilpropiona, diltiazem, dimenhidrinato,
difenhidramina, difenilpiralina, disopiramida, doxepina,
doxiciclina, doxilamina, dipiridamol, efedrina, epinefrina, ácido
etilendiaminotetraacético (EDTA), eritromicina, flurazepam, violeta
de genciana, hidroxicloroquina, imipramina, isoprotenerol,
isotipendilo, levometadilo, lidocaína, loxarina, mecloretamina,
melfalan, metadona, metafurileno, metafenilina, metapirileno,
metdilazina, metotimeperazina, metotrexato, metoclopramida,
minociclina, naftifina, nicardipina, nicotina, nizatidina,
orfenadrina, oxibutinina, oxitetraciclina, fenindamina, feniramina,
fenoxibenzamina, fentolamina, fenilefrina, feniltoloxamina,
procainamida, procaína, promazina, prometazina, proparacaína,
propoxicaína, propoxifeno, pirilamina, ranitidina, escopolamina,
tamoxifeno, terbinafina, tetracaína, tetraciclina, tonzilamina,
tranadol, triflupromazina, trimeprazina, trimetilbenzamida,
trimipramina, tripelenamina, troleandomicina, mostaza de uracilo,
verapamilo y vonedrina.
Ejemplos de aminas heterocíclicas no aromáticas
incluyen, pero no se limitan a, alprazolam, amoxapina, arecolina,
astemizol, atropina, azitromicina, benzaprilo, benztropina,
beperideno, bupracaína, buprenorfina, buspirona, butorfanol,
cafeína, capriomicina, ceftriaxona, clorazepato, clorciclizina,
clordiazepóxido, clorpromacina, clortiazida, ciprofloxacino,
cladarabina, clemastina, clemizol, clindamicina, clofazamina,
clonazepam, clonidina, clozapina, cocaína, codeína, ciclizina,
ciproheptidina, dacarbazina, dactinomicina, desipramina, diazóxido,
dihidroergotamina, difenidol, difenoxilato, dipiridamil, doxapram,
ergotamina, estazolam, famciclovir, fentanilo, flavoxato,
fludarabina, flufenazina, flurazepam, fluvastatina, ácido fólico,
ganciclovir, granisetrón, guanetidina, halazepam, haloperidol,
homatropina, hidrocodona, hidromorfona, hidroxizina, hiosciamina,
imipramina, itraconazol, keterolac, ketoconazol, levocarbustina,
levorfona, lincomicina, lomefloxacino, loperamida, lorazepam,
losartán, loxapina, mazindol, meclizina, meperidina, mepivacaína,
mesoridazina, metdilazina, metenamina, metimazol,
metotrimeperazina, metisergida, metronidazol, midazolam, minoxidil,
mitomicina c, molindona, morfina, nafzodona, nalbufina, ácido
nalidíxico, nalmefeno, naloxona, naltrexna, nafazolina,
nedocromilo, nicotina, norfloxacino, ofloxacino, ondansetrón,
oxazepam, oxicodona, oximetazolina, oximorfona, pemolina,
pentazocina, pentostatina, pentoxifilina, perfenazina, fentolamina,
fisostigmina, pilocarpina, pimozida, pramoxina, prazosín,
proclorperazina, promazina, prometazina, pirrobutamina, quazepam,
quinidina, quinina, alcaloides rauwolfia, riboflavina, rifabutina,
risperidona, rocuronio, escopolamina, sufentanilo, tacrina,
temazepam, terazosina, terconazol, terfenadina, tetrahidrazolina,
tiordazina, tiotixeno, ticlopidina, timolol, tolazolina,
tolazamida, tolemtina, trazodona, triazolam, trietilperazina,
trifluorpromazina, trihexilfenidilo, trimeprazina, trimipramina,
tubocurarina, vecuronio, vidarabina, vinblastina, vincristina,
vinorelbina y xilometazolina.
Ejemplos de aminas heterocíclicas aromáticas
incluyen, pero no se limitan a, acetazolamida, aciclovir, adenosín
fosfato, alopurinol, alprazolam, amoxapina, amrinona,
apraclonidina, azatadina, aztreonam, bisacodilo, bleomicina,
bromfeniramina, buspirona, butoconazol, carbinoxamina, cefamandol,
cefazol, cefixima, cefmetazol, cefonicida, cefoperazona,
cefotaxima, cefotetán, cefpodoxima, ceftriaxona, cefapirina,
cloroquina, clorfeniramina, cimetidina, cladarabina, clotrimazol,
cloxacilina, didanosina, dipiridamol, doxazosina, doxilamina,
econazol, enoxacina, estazolam, etionamida, famciclovir, famotidina,
fluconazol, fludarabina, ácido fólico, ganciclovir,
hidroxicloroquina, iodoquinol, isoniazida, isotipendilo,
itraconazol, ketoconazol, lamotrigina, lansoprazol, lorcetadina,
losartán, mebendazol, mercaptopurina, metafurileno, metapirilina,
metotrexato, metronidazol, miconazol, midazolam, minoxidil,
nafzodona, ácido nalidíxico, niacina, nicotina, nifedipino,
nizatidina, omeprazol, oxaprozina, oxiconazol, papaverina,
pentostatina, fenazopiridina, feniramina, pilocarpina, piroxicam,
prazosín, primaquina, pirazinamida, pirilamina, pirimetamina,
piritiamina, piroxidina, quinidina, quinina, ribaverina,
rifampicina, sulfadiazina, sulfametizol, sulfametoxazol,
sulfasalazina, sulfasoxazol, terazosín, tiabendazol, tiamina,
tioguanina, tonzilamina, timolol, trazodona, triamtereno,
triazolam, trimetadiona, trimetoprim, trimetrexato, trimplenamina,
tropicamida y vidarabina.
Ejemplos de compuestos azo son fenazopiridina y
sulfasalazina, mientras que ejemplos de iminas incluyen cefixima,
cimetidina, clofazimina, clonidina, dantroleno, famotidina,
furazolidona, nitrfurantoína, nitrofurazona y oxiconazol.
También pueden administrarse utilizando la
metodología de la presente invención, combinaciones de los fármacos
anteriormente mencionados y/o combinaciones de uno o más de los
fármacos anteriormente mencionados con diferentes tipos de
principios activos.
Ejemplos de fármacos que contienen nitrógeno
particularmente preferidos que pueden administrarse utilizando los
procedimientos, las composiciones y los sistemas de la invención
son fenilpropanolamina y oxibutinina.
La fenilpropanolamina o
2-amino-1-fenil-1-propanol
se da a conocer, por ejemplo, Kanfer et al. en Analytical
Profiles of Drug Substances, vol. 12, K. Florey, Ed. (Nueva
York: Academic Press, 1983). La fenilpropanolamina es un
simpaticomimético que se ha utilizado como anorexígeno,
descongestionante, ansiolítico y como fármaco para disminuir la
fatiga y la confusión. Véanse, por ejemplo, las patentes US nº
5.019.594 de Wurtman et al., 5,260.073 de Phipps y 5.096.712
de Wurtman. La fenilpropanolamina presenta dos centros quirales y
por tanto, existe como cuatro isómeros diferentes, generalmente
denominados (+)-norefedrina,
(-)-norefedrina,
(+)-norseudoefedrina y
(-)-norseudoefedrina, respectivamente. Generalmente,
(-)-norefedrina y
(+)-norseudoefedrina se reconocen como los isómeros
más activos para la mayoría de las utilizaciones fisiológicas. La
fenilpropanolamina puede administrarse como un racemato, es decir,
como una mezcla de cualquiera de dos o más de los cuatro isómeros
de fenilpropanolamina, generalmente una mezcla racémica de
(-)-norefedrina y (+)-norefedrina, o
cualquiera de los cuatros isómeros puede administrarse
individualmente. La fenilpropanolamina se administrará normalmente
como un anorexígeno (es decir, para suprimir el apetito) o puede
emplearse como descongestionante, como ansiolítico o para disminuir
la fatiga y la confusión. Lo más común es que el fármaco se utilice
como anorexígeno o como descongestionante. Generalmente, una dosis
diaria de fenilpropanolamina racémica utilizando la formulación y
los sistemas de administración presentes estará en el intervalo de
aproximadamente 10 mg/día a aproximadamente 250 mg/día,
preferentemente aproximadamente 25 mg/día a aproximadamente 200
mg/día.
La oxibutinina se clasifica como fármaco
anticolinérgico antiespasmódico y se utiliza comúnmente para tratar
a individuos que padecen de vejiga hiperactiva, por ejemplo, vejiga
neurogénica. Véase por ejemplo la patente US nº 5.674.895 de
Guittard et al. La oxibutinina contiene un centro quiral y
por tanto, puede administrarse como racemato o como isómero único.
Existe algo de discrepancia sobre si la actividad del racemato
reside en el enantiómero S o en el enantiómero R; parece que la
actividad reside predominantemente en el enantiómero R. Véase
Noronha-Blob (1990) J. Pharmacol. Exp. Ther.
256(2):562-567 y Goldenberg (1999) Clin
Ther. 21(4):634-642. La patente UK nº
940.540 describe la preparación de oxibutinina racémica. También se
conoce la síntesis de (S)-oxibutinina. Por ejemplo,
el enantiómero S puede obtenerse mediante resolución del ácido
mandélico intermedio seguido de esterificación. Véase Kachur et
al. (1988) J. Pharmacol. Exp. Ther.
247(3):867-72. El enantiómero R puede
obtenerse preparando en primer lugar cloruro de
4-dietilamino-2-butinilo
a partir de diclorobutino, seguido de hacer reaccionar el
enantiómero R único de ácido ciclohexilfenilglicólico con el
cloruro de
4-dietilamino-2-butinilo
preparado para dar el enantiómero R de fenilciclohexilglicolato de
4-dietilamino-2-butinilo,
es decir, (R)-oxibutinina. Véase la patente US nº
6.123.961 de Aberg. Alternativamente, los isómeros individuales
puede aislarse de una mezcla racémica de oxibutinina utilizando
tecnologías conocidas en la técnica tales como los procedimientos
basados en la cromatografía que utilizan sustrato quiral. La
administración transdérmica de oxibutinina es útil en una variedad
de contextos, como apreciarán fácilmente aquellos expertos en la
materia. Por ejemplo, la administración transdérmica de oxibutinina
es útil en el tratamiento de la urgencia miccional, frecuencia
miccional aumentada, pérdida de orina, incontinencia y micción
dolorosa o con dificultad. Generalmente, aunque no necesariamente,
estos trastornos están producidos por una vejiga neurogénica.
Además, las composiciones y los sistemas de administración de
fármacos presentes son útiles para administrar oxibutinina para
tratar otras enfermedades y trastornos que responden a la
administración transdérmica de oxibutinina. Por ejemplo, la
oxibutinina puede administrarse por vía transdérmica para tratar
individuos que padecen hiperreflexia del detrusor e inestabilidad
del detrusor. Generalmente, una dosis diaria de oxibutinina
racémica utilizando las formulaciones y los sistemas de
administración presentes estará en el intervalo de aproximadamente
1 a 20 mg durante un periodo de 24 horas. Preferentemente, la dosis
diaria de un enantiómero individual de oxibutinina, es decir,
(S)-oxibutinina o (R)-oxibutinina,
utilizando las formulaciones y los sistemas de administración
presentes es inferior a la dosis correspondiente de racemato.
Específicamente, se prefiere que la dosis de enantiómero esté en el
intervalo de aproximadamente 0,5 a 15 mg durante un periodo de 24
horas.
Como muchos fármacos de amina están disponibles
comercialmente sólo en la forma de sal, es decir, en forma de una
sal de adición de ácido, la utilización de un agente de liberación
de hidróxido como potenciador de la permeación, elimina la
necesidad de convertir el fármaco en la forma de base libre antes de
la fabricación del parche. Por tanto, el agente de liberación de
hidróxido puede incorporarse durante la fabricación del parche
junto con la sal de adición de ácido, por tanto neutralizando el
fármaco durante la fabricación más que después.
Antiinflamatorios no esteroideos adecuados que
puede utilizarse en las formulaciones de la presente invención
incluyen, pero no se limitan a: derivados del ácido propiónico,
tales como ketoprofeno, fluribiprofeno, ibuprofeno, naproxeno,
fenoprofeno, benoxaprofeno, indoprofeno, pirprofeno, carprofeno,
oxaprozina, parnoprofeno, suprofeno, alminoprofeno, butibufeno,
fenbufeno y ácido tiaprofénico; ácido acetilsalicílico; apazona;
diclofenaco; difenpiramida; diflunisal; etodolaco; ácido
flufenámico; indometacina; ketorolaco; meclofenamato; ácido
mefenámico; nabumetona; fenilbutazona; piroxicam; ácido salicílico;
sulindaco; tolmetina; y combinaciones de cualquiera de los
anteriores. Los AINE preferidos son ibuprofeno, diclofenaco sodio,
ketoprofeno, ketorolaco y piroxicam.
El o los AINE pueden coadministrarse con uno o
más principios activos adicionales, por ejemplo: antihistamínicos
tales como difenhidramina y clorfeniramina (particularmente
clorhidrato de difenhidramina y maleato de clorfeniramina);
corticosteroides, incluyendo corticosteroides de baja potencia
tales como hidrocortisona, 21-monoésteres de
hidrocortisona (por ejemplo, 21-acetato de
hidrocortisona, 21-butirato de hidrocortisona,
21-propionato de hidrocortisona,
21-valerato de hidrocortisona, etc.),
17,21-diésteres de hidrocortisona (por ejemplo,
17,21-diacetato de hidrocortisona,
17-acetato-21-butirato
de hidrocortisona, 17,21-dibutirato de
hidrocortisona, etc.), alclometasona, dexametasona, flumetasona,
prednisolona y metilprednisolona, así como corticosteroides de
potencia más alta, tales como propionato de clobetasol, benzoato de
betametasona, dipropionato de betametasona, diacetato de
diflorasona, fluocinonida, fuorato de mometasona, acetonida de
triamcinolona y similares; anestésicos locales tales como fenol,
benzocaína, lidocaína, prilocaína y dibucaína; analgésicos tópicos
tales como glicolsalicilato, salicilato de metilo,
1-mentol,
2-1-alcanfor y capsaicina; y
antibióticos. Principios adicionales preferidos son antibióticos,
que se tratan en la sección F, más adelante.
Los compuestos anteriormente mencionados pueden
administrarse por vía transdérmica utilizando el procedimiento, la
composición y sistema de la invención para tratar cualquier
paciente con una enfermedad o trastorno que responde a AINE.
Normalmente, se emplean los AINE como antiinflamatorios y/o
analgésicos y por lo tanto, pueden utilizarse para tratar
individuos que padecen de trastornos reumáticos o artríticos,
incluyendo, por ejemplo: artritis reumatoide (AR), enfermedad
articular degenerativa (también conocida como EAD y
"osteoartritis"); artritis reumatoide juvenil (ARJ); artritis
psoriásica; artritis gotosa; espondilitis anquilosante; y lupus
eritematoso, tal como lupus eritematoso sistémico y lupus
eritematoso discoide.
Otras posibles utilizaciones de los AINE
incluyen, pero no se limitan a, el tratamiento de la fiebre
(mediante la propiedad antipirética de los AINE) o el infarto de
miocardio (IM), accidentes transitorios isquémicos y tromboflebitis
superficial aguda (mediante la inhibición de la agregación
plaquetaria). Utilizaciones no limitantes adicionales de los AINE
incluyen el tratamiento único o adyuvante de la espondilitis
anquilosante, la bursitis, el dolor relacionado con el cáncer, la
dismenorrea, la gota, las cefaleas, el dolor muscular, la
tendinitis y el dolor asociado con procedimiento médicos tales como
procedimientos dentales, ginecológicos, orales, ortopédicos,
post-parto y urológicos.
La cantidad de principio activo administrado
dependerá de varios factores y variará de un sujeto a otro, tal
como se ha observado anteriormente. Sin embargo, generalmente y a
modo de ejemplo, una dosis diaria de ketorolaco utilizando las
formulaciones y sistemas presentes estará en el intervalo de
aproximadamente 10 mg a 40 mg, una dosis diaria de piroxicam
utilizando las formulaciones y sistemas presentes estará en el
intervalo de aproximadamente 10 mg a 40 mg y una dosis diaria de
ibuprofeno utilizando las formulaciones y sistemas presentes estará
en el intervalo de aproximadamente 200 mg/día a 1600 mg/día.
Los estrógenos adecuados que pueden administrarse
utilizando las composiciones y los sistemas de administración de
fármacos de la invención incluyen estrógenos sintéticos y
naturales, tales como: estradiol (es decir,
1,3,5-estratien-3,17\beta-diol
o "17\beta-estradiol") y sus ésteres,
incluyendo benzoato, valerato, cipionato, heptanoato, decanoato,
acetato y diacetato de estradiol;
17\alpha-estradiol; etinilestradiol (es decir,
17\alpha-etinilestradiol) y ésteres y éteres de
los mismos, incluyendo 3-acetato de etinilestradiol
y 3-benzoato de etinilestradiol; estriol y succinato
de estriol; fosfato de poliestriol; estrona y sus ésteres y
derivados, incluyendo acetato de estrona, sulfato de estrona y
sulfato de estrona piperazina; quinestrol; mestranol; y estrógenos
equinos conjugados. 17\beta-estradiol,
etinilestradiol y mestranol son agentes estrogénicos
particularmente preferidos para su utilización conjuntamente con la
presente invención.
Los progestágenos adecuados que pueden
administrarse utilizando las composiciones y los sistemas de
administración de fármacos de la invención incluyen, pero no se
limitan a, acetoxipregnenolona, alilestrenol, acetato de anagestona,
acetato de clormadinona, ciproterona, acetato de ciproterona,
desogestrel, dihidrogesterona, dimetisterona, etisterona
(17\alpha-etiniltestosterona), diacetato de
etinodiol, acetato de flurogestona, gestadeno, hidroxiprogesterona,
acetato de hidroxiprogesterona, caproato de hidroxiprogesterona,
hidroximetilprogesterona, acetato de hidroximetilprogesterona,
3-ketodesogestrel, levonorgestrel, linestrenol,
medrogestona, acetato de medroxiprogesterona, megestrol, acetato de
megestrol, acetato de melengestrol, noretindrona, acetato de
noretindrona, noretisterona, acetato de noretisterona, noretinodrel,
norgestimato, norgestrel, norgestrienona, normetisterona y
progesterona. Progestágenos particularmente preferidos son
progesterona, medroxiprogesterona, noretindrona, noretinodrel,
d,l-norgestrel y l-norgestrel.
Generalmente es deseable coadministrar un
progestágeno junto con un estrógeno en el THS (tratamiento hormonal
sustitutivo) en mujeres, de manera que el estrógeno no esté "sin
oposición". Tal como se conoce bien, se sabe que los tratamientos
basados en estrógenos aumentan el riesgo de hiperplasia y cáncer
endometriales, así como el riesgo de cáncer de mama, en individuos
tratados. Se ha descubierto que la coadministración de agentes
estrogénicos con un progestágeno disminuye los riesgos anteriormente
mencionados. Tales combinaciones preferidas incluyen, sin
limitación: 17\beta-estradiol y acetato de
medroxiprogesterona; 17\beta-estradiol y
noretindrona; 17\beta-estradiol y noretinodrel;
etinilestradiol y d,l-norgestrel; etinilestradiol y
l-norgestrel; y megestrol y acetato de
medroxiprogesterona.
Para el THS en mujeres, puede ser deseable
coadministrar una pequeña cantidad de un agente androgénico junto
con el progestágeno y el estrógeno, con el fin de reproducir el
perfil hormonal completo de la mujer premenopáusica, ya que en las
mujeres premenopáusicas están presentes niveles bajos de
determinados andrógenos. Agentes androgénicos adecuados se tratan
en la sección D, más adelante.
Cualquiera de los fármacos esteroideos
anteriormente mencionados puede ser esteroides naturales, esteroides
sintéticos o derivados de los mismos.
Tal como se hace referencia anteriormente, la
administración de una combinación de principios activos esteroideos
es útil en una variedad de contextos, como podrán apreciar
fácilmente aquellos expertos en la materia. Por ejemplo, la
administración transdérmica de un progestágeno con un estrógeno
puede utilizarse en el tratamiento hormonal sustitutivo en mujeres,
de manera que los síntomas o enfermedades que resultan de niveles
hormonales alterados se atenúan o se previenen sustancialmente.
Además, las composiciones y los sistemas de administración de
fármacos presentes son útiles para administrar progestágenos y
estrógenos para tratar otras enfermedades y trastornos que responden
a la administración transdérmica de la combinación de principios
activos. Por ejemplo, la combinación anteriormente mencionada es
útil para tratar los síntomas del estrés premenstrual y para la
contracepción femenina, tal como se ha observado anteriormente. Para
el tratamiento hormonal sustitutivo en mujeres, la mujer que se
somete a tratamiento estará generalmente en edad de concebir o será
mayor, en la que la producción ovárica de estrógenos, progesterona y
andrógenos se ha interrumpido debido a la menopausia natural, a
procedimientos quirúrgicos, a radiación, a ablación o extirpación
química de los ovarios o a insuficiencia ovárica prematura. Para el
tratamiento hormonal sustitutivo y para las otras indicaciones
descritas en la presente memoria, que incluye la contracepción
femenina, las composiciones o los sistemas de administración de
fármacos se utilizan preferentemente de manera consecutiva, de modo
que la administración de los principios activos sea sustancialmente
continua. La administración transdérmica de fármacos según la
invención proporciona un tratamiento hormonal sustitutivo altamente
eficaz. Por tanto, disminuyen la incidencia y gravedad de los
sofocos y las sudoraciones nocturnas, se minimiza la pérdida
posmenopáusica de calcio de los huesos y se reduce el riesgo de
muerte por enfermedad cardiaca isquémica. Generalmente, la
concentración máxima está determinada por la cantidad de principio
que puede alojar el vehículo sin producir efectos histológicos
adversos, tales como irritación, una cantidad inicial
inaceptablemente elevada de principio en el organismo o efectos
adversos en las características del dispositivo de administración,
tales como pérdida de la adhesión, viscosidad o deterioro de otras
propiedades. Sin embargo, las composiciones y sistemas
transdérmicos preferidos para el tratamiento hormonal sustitutivo
son capaces de administrar aproximadamente 0,5 a 10,0 mg de
progestágeno, por ejemplo, noretindrona, acetato de noretindrona o
similares y aproximadamente 10 a 200 \mug de estrógeno, por
ejemplo, 17\beta-estradiol, etinilestradiol,
mestranol o similares, durante un periodo de aproximadamente 24
horas. Sin embargo, aquellos expertos en la materia apreciarán que
la dosis deseada de cada principio activo individual dependerá del
principio activo específico, así como de otros factores; por
supuesto, se prefiere la dosis mínima eficaz de cada principio
activo.
Fármacos androgénicos adecuados que pueden
utilizarse en las formulaciones de la presente invención incluyen,
pero no se limitan a: andrógenos naturales y derivados de los
mismos, incluyendo androsterona, acetato de androsterona, propionato
de androsterona, benzoato de androsterona, androstendiol,
3-acetato de androstendiol,
17-acetato de androstendiol,
3,17-acetato de androstendiol,
17-benzoato de androstendiol,
3-acetato-17-benzoato
de androstendiol, androstendiona, dehidroepiandroterona (DHEA;
también denominada "prasterona"), dehidroepiandrosteronasulfato
de sodio, 4-dihidrotestosterona (DHT; también
denominada "estanolona"),
5\alpha-dihidrotestosterona, dromostanolona,
propionato de dromostanolona, etilestrenol, fenilpropionato de
nandrolona, decanoato de nandrolona, furilpropionato de nandrolona,
ciclohexanopropionato de nandrolona, benzoato de nandrolona,
ciclohexanocarboxilato de nandrolona, oxandrolona, estanozolol y
testosterona; ésteres farmacéuticamente aceptables de testosterona y
4-dihidrotestosterona, normalmente ésteres formados
a partir del grupo hidroxilo presente en la posición
C-17, incluyendo, pero no limitados a, los ésteres
enantato, propionato, cipionato, fenilacetato, acetato,
isobutirato, buciclato, heptanoato, decanoato, undecanoato, caprato
e isocaprato; y derivados farmacéuticamente aceptables de
testosterona, tales como metiltestosterona, testolactona,
oximetolona y fluoximesterona. La testosterona y los ésteres de
testosterona, tales como enantato de testosterona, propionato de
testosterona y cipionato de testosterona, son agentes androgénicos
particularmente preferidos para su utilización conjuntamente con la
presente invención. Los ésteres de testosterona anteriormente
mencionados están disponibles comercialmente o pueden prepararse
fácilmente utilizando las técnicas conocidas para aquellos expertos
en la materia o descritas en la bibliografía pertinente.
Los agentes androgénicos anteriormente
mencionados se seleccionan del grupo que consiste en andrógenos
naturales, andrógenos sintéticos y derivados de los mismos. Los
principios activos pueden incorporarse en las unidades de dosis
presentes y por tanto, administrarse en forma de un derivado,
análogo, éster, sal o amida farmacéuticamente aceptable o los
principios pueden modificarse agregando una o más funcionalidades
apropiadas para potenciar las propiedades biológicas seleccionadas,
tales como penetración a través del tejido mucoso. En general, con
respecto a los agentes androgénicos, se prefieren los ésteres a las
sales u otros derivados. La preparación de ésteres, tal como se
observa en la sección anterior, implica la funcionalización de
grupos hidroxilo y/o carboxilo que pueden estar presentes, tal como
apreciarán aquellos expertos en la materia. Por ejemplo, para
preparar ésteres de testosterona, el grupo
17-hidroxilo de la molécula de testosterona se hace
reaccionar generalmente con un ácido orgánico adecuado en
condiciones de esterificación, implicando tales condiciones
normalmente la utilización de un ácido fuerte tal como ácido
sulfúrico, ácido clorhídrico o similares y una temperatura
suficiente para permitir que la reacción se lleve a cabo a reflujo.
Los ésteres pueden reconvertirse en ácidos libres, si se desea,
utilizando procedimientos de hidrogenolisis o hidrólisis
convencionales.
Los fármacos androgénicos tales como la
testosterona
(17\beta-hidroxiandrost-4-en-3-ona)
son necesarios para la producción del esperma y para promover el
crecimiento general de los tejidos corporales. La principal
utilización clínica de los andrógenos es sustituir o aumentar la
secreción de andrógenos en los hombres con hipogonadismo. Los
andrógenos también pueden utilizarse para tratar determinados
trastornos ginecológicos, como para reducir la congestión de los
senos durante el periodo después del parto. Los andrógenos también
pueden utilizarse para reducir la pérdida de proteínas después de
traumatismos, cirugía o inmovilización prolongada o en el
tratamiento de la anemia y del angioedema hereditario.
Adicionalmente, los andrógenos pueden utilizarse en el tratamiento
de la osteoporosis masculina o como estimuladores del crecimiento
metabólico en chicos prepúberes.
La testosterona y sus derivados son compuestos
que son terapéuticamente eficaces a dosis relativamente bajas,
generalmente en el intervalo de aproximadamente 5 a 10 mg/día.
Los fármacos peptídicos que pueden administrarse
según la invención incluyen cualquier péptido, polipéptido o
proteína farmacológicamente activo. Una vez elegido, el fármaco
peptídico debe prepararse u obtenerse a partir de suministradores
comerciales para su incorporación en la composición o sistema de
administración. El fármaco peptídico puede prepararse utilizando
técnicas sintéticas estándar, tecnología recombinante o extracción
a partir de fuentes naturales.
La producción sintética de péptidos, polipéptidos
y proteínas emplea generalmente técnicas de síntesis estándar de
péptidos en fase sólida bien conocida en la técnica. En un
procedimiento de este tipo, la síntesis se lleva a cabo de manera
secuencial incorporando los residuos de aminoácidos deseados, cada
vez uno, en una cadena peptídica creciente según los principios
generales de síntesis en fase sólida tal como los describe, por
ejemplo, Merrifield (1963) J. Amer. Chem. Soc.
85:2149-2154. Es común a la síntesis química
de péptidos, polipéptidos y proteínas la protección de grupos de
cadena lateral reactivos de los diversos restos de aminoácidos con
grupos protectores adecuados que evitarán que tenga lugar una
reacción química en este lugar hasta que el grupo protector se
elimine posteriormente. También se conoce bien cómo proteger el
grupo \alpha-amino de un aminoácido mientras esta
entidad reacciona en el grupo carboxilo, seguido por la eliminación
selectiva del grupo protector de \alpha-amino para
permitir que tenga lugar una reacción subsiguiente en ese lugar.
Ejemplos de grupos protectores de \alpha-amino y
cadenas laterales se conocen bien en la técnica.
Alternativamente, puede prepararse el péptido,
polipéptido o la proteína empleando tecnología recombinante
mediante técnicas bien conocidas en la técnica. Por tanto, pueden
utilizarse técnicas recombinantes convencionales que, como
apreciarán aquellos expertos en la materia, implica la construcción
de ADN que codifica para la secuencia de aminoácidos deseada, la
clonación del ADN en un vector de expresión, la transformación de
una célula huésped, por ejemplo, una bacteria, levadura o célula
mamífera, y la expresión del ADN para producir el péptido,
polipéptido o la proteína deseada.
Adicionalmente, pueden obtenerse péptidos,
polipéptidos o proteínas a partir de fuentes naturales, tales como
un humano u otro animal y pueden extraerse a partir de un organismo
vivo o a partir de un cadáver. Se separa y purifica el material
antes de la incorporación en un sistema de administración de
fármacos o forma de dosificación. Las técnicas de separación y
purificación se conocen bien en la técnica e incluyen, por ejemplo,
la centrifugación.
Aunque puede incorporarse cualquier fármaco
peptídico a los sistemas de administración de la presente invención,
el fármaco se selecciona generalmente de factores de la
coagulación, citocinas, endorfinas, cininas, hormonas, análogos de
la LHRH (hormona liberadora de la hormona luteinizante) y otros
fármacos peptídicos que proporcionan una actividad farmacológica
deseada. Por supuesto, las categorías proporcionadas no pretenden
ser limitantes y sirven simplemente como medios para la
organización. Como se apreciará, un fármaco peptídico puede entrar
en más de una categoría.
Muchos moduladores de la coagulación son
proteínas endógenas que circulan en la sangre e interactúan con
otras proteínas endógenas para controlar la coagulación sanguínea.
Los moduladores de la coagulación preferidos incluyen
\alpha_{1}-antitripsina,
\alpha_{2}-macroglobulina, antitrombina III,
factor I (fibrinógeno), factor II (protrombina), factor III
(protrombina tisular), factor V (proacelerina), factor VII
(proconvertina), factor VIII (globulina antihemofílica o AHG),
factor IX (factor de Christmas, componente de la tromboplastina
plasmática o PTC), factor X (factor de
Stuart-Power), factor XI (precursor de la
tromboplastina plasmática o PTA), factor XII (factor de Hageman),
cofactor II de la heparina, calicreína, plasmina, plasminógeno,
precalicreína, proteína C, proteína S, trombomodulina y
combinaciones de los mismos. Cuando sea necesario, se incluyen
ambas versiones "activa" e "inactiva" de estas
proteínas.
Las citocinas son un grupo amplio y heterogéneo
de proteínas que desempeñan un papel en la función del sistema
inmunológico y en el control de la hematopoyesis, es decir, la
producción de sangre y células sanguíneas. Las citocinas preferidas
incluyen factor 4 estimulante de las colonias, factor neurotrófico
que se une a heparina (HBNF), interferón-\alpha,
interferón \alpha-2a, interferón
\alpha-2b, interferón
\alpha-n3, interferón \beta, interferón
\gamma, interleucina-1,
interleucina-2, interleucina-3,
interleucina-4, interleucina-5,
interleucina-6, interleucina-7,
interleucina-8, interleucina-9,
interleucina-10, interleucina-11,
interleucina-12, interleucina-13,
interleucina-14, interleucina-15,
interleucina-16, interleucina-17,
factor de necrosis tumoral, factor \alpha de necrosis tumoral,
factor estimulador de las colonias de granulocitos
(G-CSF), factor estimulador de las colonias de
granulocitos-macrófagos (GM-CSF),
factor estimulador de las colonias de macrófagos, midkina (MD),
timopoyetina y combinaciones de los mismos.
Generalmente, las endorfinas son péptidos o
péptidos de cadenas pequeñas que activan los receptores opiáceos.
También se incluyen los derivados agonistas y antagonistas de las
endorfinas naturales. Ejemplos representativos de endorfinas o
derivados farmacológicamente activos incluyen dermorfina, dinorfina,
\alpha-endorfina,
\beta-endorfina,
\gamma-endorfina,
\sigma-endorfina, [Leu^{5}]encefalina,
[Met^{5}]encefalina, sustancia P y combinaciones de las
mismas.
Las hormonas peptídicas pueden ser naturales o
ser derivados farmacológicamente activos de hormonas conocidas.
Además, las hormonas peptídicas pueden ser humanas o pueden
derivarse de otras fuentes animales. Ejemplos de hormonas peptídicas
que pueden administrarse utilizando el procedimiento, la
composición y el sistema de administración de la invención,
incluyen, pero no se limitan a, activina, amilina, angiotensiba,
péptido natriurético atrial (ANP), calcitonina (derivada de gallina,
anguila, humano, cerdo, rata, salmón, etc.), péptido relacionado
con el gen de la calcitonina, péptido que flanquea el extremo
N-terminal de la calcitonina, colecistocinina (CCK),
factor neurotrófico ciliar (CNTF), corticotropina (hormona
adrenocorticotropina, ACTH), factor de liberación de corticotropina
(CRF o CRH), factor de crecimiento epidérmico (EGF), hormona
estimulante del folículo (FSH), gastrina, péptido inhibidor de la
gastrina (GIP), péptido de liberación de la gastrina, grelina,
glucagón, factor de liberación de gonadotropinas (GnRF o GNRH),
factor de liberación de la hormona del crecimiento (GRF, GRH),
gonadotropina coriónica humana (hCH), inhibina A, inhibina B,
insulina (derivada de vaca, humano, cerdo, etc.), leptina,
lipotropina (LPH), hormona luteinizante (LH), hormona liberadora de
hormona luteinizante (LHRH), hormona estimulante de los melanocitos
\alpha, hormona estimulante de los melanocitos \beta, hormona
estimulante de los melanocitos \gamma, melatonina, motilina,
oxitocina (pitocina), polipéptido pancreático, hormona paratiroidea
(PTH), lactógeno placentario, prolactina (PRL), factor inhibidor de
la liberación de prolactina (PIF), factor de liberación de
prolactina (PRF), secretina, somatotropina (hormona del
crecimiento, GH), somatostatina (SIF, factor inhibidor de la
liberación de hormona del crecimiento, GIF), tirotropina (hormona
estimuladora del tiroides, TSH), factor de liberación de
tirotropina (TRH o TRF), tiroxina, triyodotironina, péptido
intestinal vasoactivo (VIP), vasopresina (hormona antidiurética,
ADH) y combinaciones de las mismas.
Análogos de LHRH particularmente preferidos
incluyen buserelina, deslorelina, fertirelina, goserelina,
histrelina, leuprolide (leuprorrelina), lutrelina, nafarelina,
triptorelina y combinaciones de los mismos.
Además, el fármaco peptídico puede ser una
cinina. Las cininas particularmente preferidas incluyen potenciador
B de la bradicinina, potenciador C de la bradicinina, calidina y
combinaciones de las mismas.
Pueden incorporarse todavía otros fármacos
peptídicos que proporcionan una actividad farmacológica deseada en
los sistemas de administración de la invención. Ejemplos incluyen
abarelix, adenosín desaminasa, anakinra, ancestim, alteplasa,
alglucerasa, asparaginasa, bivalirrudina, bleomicina, bombesina,
acetato de desmopresina,
des-Q14-grelina,
dornasa-\alpha, enterostatina, eritropoyetina,
exendina 4, factor 2 de crecimiento de fibroblastos, filgrastim,
\beta-glucocerebrosidasa, gonadorrelina,
hialuronidasa, insulinotropina, lepirudina, magainina I, magainina
II, factor de crecimiento nervioso, pentigetida, trombopoyetina,
timosina \alpha-1, timidín cinasa (TK), activador
del plasminógeno tisular, triptofán hidroxilasa, urocinasa,
urotensina II y combinaciones de los mismos.
Los principios activos por vía sistémica
particularmente preferidos que pueden administrarse por vía
transdérmica conjuntamente con la presente invención incluyen
oxitocina, insulina y análogos de la LHRH, tales como
leuprolide.
Los principios preferidos para la administración
local, tópica están dentro de las amplias clases de compuestos
conocidos por poder administrarse por vía tópica, que incluyen,
pero no se limitan a, antibióticos tópicos (por ejemplo, magainina I
y magainina II), antifúngicos, antipsoriásicos, antipruríticos,
antihistamínicos, antineoplásicos (por ejemplo, asparaginasa y
bleomicina), anestésicos locales, antiinflamatorios y
similares.
Los principios preferidos para la administración
local, tópica están dentro de las amplias clases de compuestos
conocidos por poder administrarse por vía tópica, que incluyen,
pero no se limitan a, antibióticos tópicos y otros agentes
anti-acné, antifúngicos, antipsoriásicos,
antipruríticos, antihistamínicos, antineoplásicos, anestésicos
locales, antiinflamatorios y similares. Antibióticos tópicos
adecuados incluyen, pero no se limitan a, antibióticos de la
familia de las lincomicinas (en relación con una clase de
antibióticos obtenidos originalmente a partir de Streptomyces
lincolnensis), antibióticos de la familia de las tetraciclinas
(en relación con una clase de antibióticos obtenidos originalmente
a partir de Streptomyces aureofaciens) y antibióticos basados
en azufre, es decir, sulfonamidas. Antibióticos ejemplo de la
familia de las lincomicinas incluyen la propia lincomicina
(6,8-didesoxi-6-[[(1-metil-4-propil-2-pirrolidinil)-carbonil]amino]-1-tio-L-treo-\alpha-D-galato-octopiranósido),
clindamicina, los derivados 7-desoxi,
7-cloro de lincomicina (es decir,
7-cloro-6,7,8-tridesoxi-6-[[(1-metil-4-propil-2-pirrolidinil)-carbonil]amino]-1-tio-L-treo-\alpha-D-galato-octopiranósido),
compuestos relacionados tal como se describen, por ejemplo, en las
patentes US nº 3.475.407, 3.509.127, 3.544.551 y 3.513.155 y sales
y ésteres farmacológicamente aceptables de los mismos. Antibióticos
ejemplo de la familia de las tetraciclinas incluyen la propia
tetraciclina
(4-(dimetilamino)-1,4,4\alpha,5,5\alpha,6,11,12\alpha-octahidro-3,6,12,12\alpha-pentahidroxi-6-metil-1,11-dioxo-2-naftaceno-carboxamida),
clorotetraciclina, oxitetraciclina, tetraciclina, demeclociclina,
rolitetraciclina, metaciclina y doxiciclina y sus sales y ésteres
farmacéuticamente aceptables, particularmente sales de adición de
ácido, tales como la sal clorhidrato. Antibióticos basados en
azufre ejemplo incluyen, pero no se limitan a, las sulfonamidas
sulfacetamida, sulfabenzamida, sulfadiazina, sulfadoxina,
sulfamerazina, sulfametazina, sulfametizol, sulfametoxazol y sales
y ésteres farmacéuticamente aceptables de los mismos, por ejemplo,
sulfacetamida de sodio. Agentes anti-acné tópicos
incluyen queratolíticos, tales como ácido salicílico, ácido
retinoico (Retin-A^{MR}) y peróxidos orgánicos,
mientras que antifúngicos tópicos incluyen anfotericina B, ácido
benzoico, butoconazol, ácido caprílico, econazol, fluconazol,
itraconazol, ketoconazol, miconazol, nistatina, ácido salicílico y
terconazol y antipsoriásicos tópicos incluyen antralina,
azatioprina, calcipotrieno, calcitriol, colchicina, ciclosporina,
retinoides y vitamina A. El principio activo también puede ser un
corticosteroide tópico y puede ser uno de los corticosteroides de
potencia inferior, tal como hidrocortisona,
21-monoésteres de hidrocortisona (por ejemplo,
21-acetato de hidrocortisona,
21-butirato de hidrocortisona,
21-propionato de hidrocortisona,
21-valerato de hidrocortisona, etc.),
17,21-diésteres de hidrocortisona (por ejemplo,
17,21-diacetato de hidrocortisona,
17-acetato-21-butirato
de hidrocortisona, 17,21-dibutirato de
hidrocortisona, etc.), alclometasona, dexametasona, flumetasona,
prednisolona o metilprednisolona, o puede ser un corticosteroide de
potencia superior, tal como propionato de clobetasol, benzoato de
betametasona, dipropionato de betametasona, diacetato de
diflorasona, fluocinonida, fuorato de mometasona, acetonida de
triamcinolona y similares.
Todavía otros ejemplos de principios activos por
vía sistémica para los cuales se prefiere las formulaciones y los
sistemas de administración de fármacos de la invención
transdérmicos incluyen, pero no se limitan a, los siguientes:
analgésicos y anestésicos (hidrocodona,
hidromorfona, levorfanol, oxicodona, oximorfona, codeína, morfina,
alfentanilo, fentanilo, meperidina, sulfentanilo, buprenorfina y
nicomorfina);
antidepresivos (inhibidores selectivos de la
recaptación de serotonina tales como sertralina, paroxetina,
fluoxetina, fluvoxamina, citalopram, venlafaxina y nefazodna;
antidepresivos tricíclicos, tales como amitriptilina, doxepina,
nortriptilina, imipramina, trimipramina, amoxapina, desipramina,
protriptilina, clomipramina, mirtazapina y maprotilina; otros
antidepresivos, tales como trazodona, buspirona y bupropion);
fármacos para el trastorno por déficit de
atención y el trastorno de por déficit de atención e hiperactividad
(metilfenidato y pemolina);
preparaciones cardiovasculares (inhibidores de la
enzima conversora de la angiotensina (ECA), tales como enalapril,
1-carboximetil-3,1-carboxi-3-fenil-
(1S)-propilamino-2,3,4,5-tetrahidro-1H-(3S)-1-benzacepin-2-ona,
ácido
3-(5-amino-1-carboxi-1S-pentil)amino-2,3,4,5-tetrahidro-2-oxo-3S-1H-1-benzacepin-1-acético
o monoclorhidrato de ácido
3-(1-etoxicarbonil-3-fenil-(1S)-propilamino)-2,3,4,5-tetrahidro-2-oxo-(3S)-benzacepin-1-acético;
diuréticos; reductores de la pre y post-carga;
glucósidos cardiacos tales como digoxina y digitoxina; inotropos,
tales como amrinona y milrinona; bloqueantes de los canales de
calcio, tales como verapamilo, nifedipino, nicardipeno, felodipino,
isradipino, nimodipino, bepridilo, amlodipino y diltiazem;
beta-bloqueantes, tales como metoprolol; pindolol,
propanofenona, propanolol, esmolol, sotalol y acebutolol;
antiarrítmicos, tales como moricizina, ilbutilida, procainamida,
quinidina, disopiramida, lidocaína, fenitoína, tocainida,
mexiletina, flecainida, encainida, bretilio y amiodarona; agentes
cardioprotectores, tales como dexrazoxano y leucovorina;
vasodilatadores, tales como nitroglicerina; colinérgicos, tales como
arecolina);
agentes del SNC (bromocriptina, monoclorhidrato
de \pm
trans-1,3,4,4\alpha,5,10\beta-hexahidro-4-propil-2H-1-benzopirano-3,4-bipiridin-9-ol);
relajantes musculares (baclofeno);
nicotina;
antagonistas narcóticos (naloxona,
particularmente clorhidrato de naloxona);
dilatadores vasculares periféricos (ciclandelato,
isoxsuprina y papaverina);
fármacos oftálmicos (sulfato de
fisostigmina);
fármacos del aparato respiratorio (tales como
albuterol, formoterol, niquetamida, teofilina, terbutalina,
oxitrifilina, aminofilina y otros derivados de las xantinas);
inhibidores de las topoisomerasas (topotecan e
irinotecan).
También puede administrarse material genético
utilizando los procedimientos, formulaciones y sistemas
transdérmicos de la invención, por ejemplo, un ácido nucleico, ARN,
ADN, ARN recombinante, ADN recombinante, ARN antisentido, ADN
antisentido, un ribooligonucleótido, un desoxirribooligonucleótido,
un ribooligonucleótido antisentido o un desoxirribooligonucleótido
antisentido.
Los principios activos particularmente preferidos
que pueden administrase por vía transdérmica conjuntamente con la
presente invención son los siguientes: buprenorfina, fentanilo,
sulfentanilo, terbutalina, formoterol, albuterol, teofilina,
estradiol, progesterona, escopolamina, enalapril,
1-carboximetil-3-1-carboxi-3-fenil-(1S)-propilamino-2,3,4,5-tetrahidro-1H-(3S)-1-benzapin-2-ona,
ácido
3-(5-amino-1-carboxi-1S-pentil)amino-2,3,4,5-tetrahidro-2-oxo-3S-1H-1-benzacepin-1-acético,
monoclorhidrato de ácido
3-(1-etoxicarbonil-3-fenil-(1S)-propilamino)-2,3,4,5-tetrahidro-2-oxo-(3S)-benzacepin-1-acético;
nitroglicerina, triprolidina, tripelenamina, difenhidramina,
fisostigmina, arecolina y nicotina. Se prefieren los principios
activos no cargados, no ionizables, ya que son sales de adición de
ácido de fármacos básicos. Del último grupo, la sal clorhidrato es
la más preferida.
Si se desea, el principio activo puede
administrase en forma de sal, éster, amida, profármaco, derivado o
similares, con la condición de que sal, éster, amida, profármaco o
derivado sean farmacológicamente adecuados. Sales, ésteres,
profármacos y otros derivados de los principios activos pueden
prepararse utilizando los procedimientos estándar conocidos para
aquellos expertos en la materia de la química orgánica sintética y
los describe, por ejemplo, J. March, Advanced Organic Chemistry:
Reactions, Mechanisms and Structure, 4ª ed. (Nueva York:
Wiley-Interscience, 1992).
Por ejemplo, las sales de adición de ácido se
preparan a partir de las bases libres, por ejemplo, un fármaco de
amina, utilizando la metodología convencional que implica una
reacción con un ácido adecuado. Generalmente, la forma básica del
fármaco se disuelve en un disolvente orgánico polar, tal como
metanol o etanol y se añade el ácido a lo anterior. La sal
resultante o bien precipita o bien puede sacarse de la disolución
mediante adición de un disolvente menos polar. Ácidos adecuados para
preparar sales de adición de ácidos incluyen tanto ácidos
orgánicos, por ejemplo, ácido acético, ácido propiónico, ácido
glicólico, ácido pirúvico, ácido oxálico, ácido málico, ácido
malónico, ácido succínico, ácido maleico, ácido fumárico, ácido
tartárico, ácido cítrico, ácido benzoico, ácido cinámico, ácido
mandélico, ácido metanosulfónico, ácido etanosulfónico, ácido
p-toluenosulfónico, ácido salicílico y similares,
así como ácidos inorgánicos, por ejemplo, ácido clorhídrico, ácido
bromhídrico, ácido sulfúrico, ácido nítrico, ácido fosfórico y
similares. Una sal de adición de ácido puede reconvertirse a la base
libre mediante tratamiento con una base adecuada. Las sales de
adición de ácido de principios activos particularmente preferidas
en la presente memoria son sales de haluro, tales como las que
pueden prepararse utilizando ácidos clorhídrico o bromhídrico.
A la inversa, la preparación de sales básicas de
restos ácidos que pueden estar presentes en una molécula de
inhibidor de la fosfodiesterasa se preparan de una forma similar
utilizando una base farmacéuticamente aceptable tal como hidróxido
de sodio, hidróxido de potasio, hidróxido de amonio, hidróxido de
calcio, trimetilamina o similares. Las sales básicas
particularmente preferidas en la presente memoria son sales de
metales alcalinos, por ejemplo, la sal de sodio y las sales de
cobre.
La preparación de ésteres implica la
funcionalización de grupos hidroxilo y/o carboxilo que pueden estar
presentes en el interior de la estructura molecular del fármaco.
Normalmente, los ésteres son derivados de los grupos de alcohol
libres sustituidos con acilo, es decir, restos que se derivan de
ácidos carboxílicos de la fórmula RCOOH en la que R es alquilo, y
preferentemente es alquilo inferior. Los ésteres pueden
reconvertirse en los ácidos libres, si se desea, utilizando
procedimientos de hidrogenolisis o hidrólisis convencionales. Las
amidas y los profármacos también pueden prepararse utilizando
técnicas conocidas para aquellos expertos en la materia o descritas
en la bibliografía pertinente. Por ejemplo, las amidas pueden
prepararse a partir de ésteres, utilizando reactivos de amina
adecuados o pueden prepararse a partir de un anhídrido o un cloruro
ácido mediante reacción con amoniaco o una amina de alquilo
inferior. Normalmente, los profármacos se preparan mediante enlace
covalente de un resto que da como resultado un compuesto que es
terapéuticamente inactivo hasta que se modifica mediante el sistema
metabólico de un individuo.
Para aquellos principios activos que son de
naturaleza quiral y que por tanto pueden estar en forma
enantioméricamente pura o en una mezcla racémica, el fármaco puede
incorporarse en las unidades de dosis presentes como el racemato o
en la forma enantioméricamente pura.
El principio activo administrado también puede
ser uno que es cosméticamente o "cosmecéuticamente" eficaz más
que farmacológicamente activo. Tales principios incluyen, por
ejemplo, compuestos que pueden reducir la aparición de los signos
del envejecimiento o de la piel dañada por la luz; por ejemplo,
alfa hidroxiácidos, alfa cetoácidos, hidroxiácidos poliméricos,
hidratantes, colágeno, extracto marino y antioxidantes, tales como
ácido ascórbico (vitamina C), \alpha-tocoferol
(vitamina E), \beta-tocoferol,
\gamma-tocoferol,
\delta-tocoferol,
\varepsilon-tocoferol,
\zeta_{1}-tocoferol,
\zeta_{2}-tocoferol,
\eta-tocoferol y retinol (vitamina A) y/o sales,
ésteres, amidas cosméticamente aceptables u otros derivados de los
mismos. Un compuesto de tocoferol preferido es
\alpha-tocoferol. Principios cosméticos
adicionales incluyen aquellos que pueden mejorar el aporte de
oxígeno al tejido cutáneo, tal como se describe por ejemplo en las
publicaciones de patente internacional nº WO 94/00098 y WO
94/00109. También pueden incluirse protectores solares.
El procedimiento de administración del principio
activo puede variar, pero implica necesariamente la aplicación de
una formulación o sistema de administración de fármacos que
contiene un agente de liberación de hidróxido en un área
predeterminada de la piel u otro tejido durante un periodo de
tiempo suficiente para proporcionar el efecto local o sistémico
deseado. El procedimiento puede implicar la aplicación directa de la
composición como un ungüento, gel, crema o similares o puede
implicar la utilización de un dispositivo de administración de
fármaco. En cualquier caso, el agua debe estar presente con el fin
de que el agente de liberación de hidróxido genere iones hidróxido y
por tanto, potencia el flujo del principio activo a través de la
superficie corporal del paciente. Por tanto, una formulación o
depósito de fármaco puede ser acuosa, es decir, contener agua o
puede no ser acuosa y utilizarse en combinación con un recubrimiento
oclusivo de manera que la humedad que se evapora de la superficie
corporal se mantiene en la formulación o sistema transdérmico
durante la administración del fármaco. Sin embargo, en algunos
casos, por ejemplo con un gel oclusivo, una formulación no acuosa
puede utilizarse con o sin una capa oclusiva.
Las formulaciones adecuadas incluyen ungüentos,
cremas, geles, lociones, pastas y similares. Los ungüentos, tal
como se conoce bien en la técnica de la formulación farmacéutica,
son preparaciones semisólidas que se basan normalmente en vaselina
u otros derivados del petróleo. Tal como apreciarán aquellos
expertos en la materia, la base de ungüento específico que debe
utilizarse es una que proporcionará una administración óptima del
fármaco y preferentemente, proporcionará también otras
características deseadas, por ejemplo, emoliencia o similares. Al
igual que otros excipientes o vehículos, una base de ungüento debe
ser inerte, estable, no irritante y no sensibilizante. Tal como se
explica en Remington: The Science and Practice of Pharmacy,
19ª ed. (Easton, PA: Mack Publishing Co., 1995), en las páginas
1399-1404, las bases de ungüento pueden agruparse
en cuatro clases: bases oleaginosas; bases emulsionables; bases de
emulsión; y bases solubles en agua. Las bases de ungüento
oleaginosas incluyen, por ejemplo, aceites vegetales, grasas
obtenidas de animales e hidrocarburos semisólidos obtenidos a
partir de petróleo. Las bases de ungüento emulsionables, también
conocidas como bases de ungüento absorbentes, contienen casi nada o
nada de agua e incluyen, por ejemplo, sulfato de hidroxiestearina,
lanolina anhidra y vaselina hidrófila. Las bases de ungüento de
emulsión son emulsiones agua en aceite (W/O) o emulsiones aceite en
agua (O/W) e incluyen, por ejemplo, alcohol cetílico, monoestearato
de glicerilo, lanolina y ácido esteárico. Las bases de ungüento
solubles en agua preferidas se preparan a partir de
polietilenglicoles de peso molecular variable; de nuevo, véase
Remington: The Science and Practice of Pharmacy para más
información.
Tal como se conoce bien en la técnica, las cremas
son líquidos viscosos o emulsiones semisólidas, aceite en agua o
agua en aceite. Las bases de crema pueden lavarse con agua y
contienen una fase oleosa, un emulsionante y una fase acuosa. La
fase oleosa, también llamada la fase "interna", está
normalmente constituida por vaselina y un alcohol graso, tal como
alcohol cetílico o estearílico. La fase acuosa suele superar a la
fase oleosa en volumen, aunque no necesariamente, y contiene
generalmente un humectante. El emulsionante en una formulación de
crema es generalmente un tensioactivo no iónico, aniónico,
catiónico o anfótero.
Tal como apreciarán aquellos que trabajan en el
campo de la formulación farmacéutica, los geles son sistemas de tipo
suspensión, semisólidos. Los geles de una sola fase contienen
macromoléculas orgánicas distribuidas sustancialmente de manera
uniforme por todo el líquido vehículo, que suele ser acuoso, pero
contiene también, preferentemente, un alcohol y opcionalmente un
aceite. Las "macromoléculas orgánicas" preferidas, es decir,
agentes de gelificación, son polímeros de ácido acrílico
reticulados, tal como la familia de polímeros "carbómero", por
ejemplo, carboxipolialquilenos que pueden obtenerse comercialmente
bajo la marca registrada Carbopol®. También se prefieren polímeros
hidrófilos tales como óxidos de polietileno, copolímeros de
polioxietileno - polioxipropileno y poli(alcohol vinílico);
polímeros de celulosa, tales como hidroxipropilcelulosa,
hidroxietilcelulosa, hidroxipropilmetilcelulosa, ftalato de
hidroxipropilmetilcelulosa y metilcelulosa; gomas, tales como goma
de tragacanto y xantano; alginato de sodio; y gelatina. Con el fin
de preparar un gel uniforme, pueden añadirse agentes de dispersión
tales como alcohol o glicerina, o el agente de gelificación puede
dispersarse mediante trituración, mezclado o agitación mecánica o
combinaciones de los mismos.
Las lociones que se prefieren para la
administración de principios cosméticos son preparaciones que deben
aplicarse sobre la superficie cutánea sin fricción y normalmente
son preparaciones líquidas o semilíquidas en las que están presentes
partículas sólidas, incluyendo el principio activo, en una base de
agua o alcohol. Las lociones suelen ser suspensiones de sólidos y
preferentemente, para la finalidad presente, comprenden una
emulsión oleosa líquida del tipo aceite en agua. En la presente
memoria, las lociones son las formulaciones preferidas para tratar
grandes superficies corporales, debido a la facilidad de aplicar
una composición más fluida. Generalmente es necesario que la
sustancia insoluble de una loción se separe con precisión.
Normalmente, las lociones contendrán agentes de suspensión para
producir dispersiones mejores, así como compuestos útiles para
localizar y mantener el principio activo en contacto con la piel,
por ejemplo, metilcelulosa, carboximetilcelulosa de sodio o
similares.
Las pastas son formas de dosificación semisólidas
en las que el principio activo está suspendido en una base
adecuada. En función de la naturaleza de la base, las pastas se
dividen entre pastas grasas o aquellas hechas a partir de geles de
una sola fase acuosa. La base de una pasta grasa es generalmente
vaselina o vaselina hidrófila o similares. Las pastas hechas a
partir de geles de una sola fase acuosa generalmente incorporan
carboximetilcelulosa o similares como base.
Las formulaciones también pueden prepararse con
liposomas, micelas y microesferas. Los liposomas son vesículas
microscópicas que tienen una pared lipídica que comprende una
bicapa lipídica y que pueden utilizarse como sistemas de
administración de fármacos en la presente memoria también.
Generalmente, se prefieren las formulaciones de liposomas para los
principios farmacéuticos poco solubles o insolubles. Las
preparaciones liposómicas para su utilización en la presente
invención incluyen preparaciones catiónicas (cargadas
positivamente), aniónicas (cargadas negativamente) y neutras. Los
liposomas catiónicos están fácilmente disponibles. Por ejemplo,
liposomas de
N[1-2,3-dioleiloxi]propil]-N,N,N-trietilamonio
(DOTMA) están disponibles bajo la marca Lipofectin® (Gibco BRL,
Grand Island, NY). De manera similar, los liposomas aniónicos y
neutros están disponibles fácilmente también, por ejemplo, de Avanti
Polar Lipids (Birmingham, AL) o pueden prepararse fácilmente
utilizando materiales fácilmente disponibles. Tales materiales
incluyen fosfatidil-colina, colesterol,
fosfatidil-etanolamina,
dioleoilfosfatidil-colina (DOPC),
dioleoilfosfatidil-glicerol (DOPG),
dioleoilfosfatidil-etanolamina (DOPE), entre otros.
Estos materiales pueden también mezclarse con DOTMA en razones
apropiadas. Los procedimientos para hacer liposomas utilizando estos
materiales se conocen bien en la técnica.
Las micelas se conocen en la técnica por estar
constituidas por moléculas de tensioactivos dispuestas de tal
manera que sus grupos de cabeza polares forman una estructura
esférica externa, mientras que las cadenas de hidrocarburos,
hidrófobas, están orientadas hacia el centro de la esfera, formando
un núcleo. Las micelas se forman en una disolución acuosa que
contiene tensioactivo en una concentración suficientemente elevada
de manera que las micelas se producen de manera natural. Los
tensioactivos útiles para formar micelas incluyen, pero no se
limitan a, laurato de potasio, octanosulfonato de sodio,
decanosulfonato de sodio, dodecanosulfonato de sodio, laurilsulfato
de sodio, docusato de sódico, bromuro de deciltrimetilamonio,
bromuro de dodeciltrimetilamonio, bromuro de
tetradeciltrimetilamonio, cloruro de tetradeciltrimetilamonio,
cloruro de dodecilamonio, polioxil 8 dodecil éter, polioxil 12
dodecil éter, nonoxinol 10 y nonoxinol 30. Las formulaciones de
micelas pueden utilizarse conjuntamente con la presente invención
mediante incorporación en el depósito de un sistema de
administración tópica o transdérmica o en una formulación que debe
aplicarse a la superficie corporal.
De manera similar, las microesferas pueden
incorporarse en las formulaciones y sistemas de administración de
fármacos presentes. Al igual que los liposomas y las micelas, las
microesferas encapsulan esencialmente un fármaco o una formulación
que contiene un fármaco. Generalmente, se forman a partir de
lípidos, aunque no necesariamente, preferentemente lípidos cargados
tales como fosfolípidos. La preparación de microesferas lipídicas
se conoce bien en la técnica y se describe en los textos y la
bibliografía pertinentes.
En las formulaciones tópicas pueden incluirse
varios aditivos conocidos para aquellos expertos en la materia. Por
ejemplo, pueden utilizarse disolventes, incluyendo pequeñas
cantidades de alcohol, para solubilizar determinadas sustancias
farmacológicas. Otros aditivos opcionales incluyen opacificadores,
antioxidantes, fragancias, colorantes, agentes de gelificación,
espesantes, estabilizantes, tensioactivos y similares. También
pueden añadirse otros principios, tales como antimicrobianos, para
prevenir el deterioro con el almacenamiento, es decir, para inhibir
el crecimiento de microbios tales como levaduras y mohos. Los
agentes antimicrobianos adecuados se eligen normalmente del grupo
que consiste en ésteres metílicos y propílicos de ácido
p-hidroxibenzoico (es decir, metil y
propilparabeno), benzoato de sodio, ácido sórbico, imidurea y
combinaciones de los mismos.
Para aquellos fármacos que tienen una tasa
inusualmente baja de permeación a través del tejido cutáneo o
mucoso, puede ser deseable incluir un segundo potenciador de la
permeación en la formulación además del agente de liberación de
hidróxido, aunque en una realización preferida, el agente de
liberación de hidróxido se administra sin ningún otro potenciador
de la permeación. Al igual que el propio agente de liberación de
hidróxido, cualquier otro potenciador debe minimizar la posibilidad
de lesión, irritación cutáneas y de toxicidad sistémica. Ejemplos
de potenciadores secundarios (o "copotenciadores") incluyen,
pero no se limitan a, éteres tales como éter monoetílico de
dietilenglicol (disponible comercialmente como Transcutol®) y éter
monometílico de dietilenglicol; tensioactivos tales como laurato de
sodio, laurilsulfato de sodio, bromuro de cetiltrimetilamonio,
cloruro de benzalconio, Poloxámero (231, 182, 184), Tween® (20, 40,
60, 80) y lecitina (patente US nº 4.783.450; véase también);
alcoholes tales como etanol, propanol, octanol, alcohol bencílico y
similares; ácidos grasos tales como ácido láurico, ácido oleico y
ácido valérico; ésteres de ácidos grasos tales como miristato de
isopropilo, palmitato de isopropilo, metilpropionato y oleato de
etilo; polioles y ésteres de los mismos, tales como
polietilenglicol y monolaurato de polietilenglicol (PEGML; véase,
por ejemplo, la patente US nº 4.568.343); amidas y otros compuestos
nitrogenados tales como urea, dimetilacetamida (DMA),
dimetilformamida (DMF), 2-pirrolidona,
1-metil-2-pirrolidona,
etanolamina, dietanolamina y trietanolamina; terpenos; alcanonas; y
ácidos orgánicos, particularmente ácido cítrico y ácido succínico.
También pueden utilizarse Azone® y sulfóxidos tales como DMSO y
C_{10}MSO, pero se prefieren menos. Tal como se ha observado
anteriormente en la presente memoria, Percutaneous Penetration
Enhancers, eds. Smith et al. (CRC Press, 1995)
proporciona una visión general excelente del campo e información
adicional relacionada con posibles potenciadores secundarios para
su utilización conjuntamente con la presente
invención.
invención.
La formulación también puede contener aditivos
que mitigan la irritación para minimizar o eliminar la posibilidad
de irritación cutánea o lesión cutánea producida por el fármaco, el
potenciador u otros componentes de la formulación. Aditivos que
mitigan la irritación adecuados incluyen, por ejemplo:
\alpha-tocoferol, inhibidores de la
monoaminooxidasa, particularmente alcoholes fenílicos tales como
2-fenil-1-etanol;
glicerina; ácidos salicílicos y salicilatos; ácidos ascórbicos y
ascorbatos; ionóforos tales como monensina; aminas anfífilas;
cloruro de amonio; N-acetilcisteína;
ácido-cisurocánico; capsaicina; y cloroquina. Si
están presentes, los aditivos que mitigan la irritación pueden
incorporarse en las presentes formulaciones en una concentración
eficaz para mitigar la irritación o lesión cutánea, no
representando normalmente más de aproximadamente el 20% en peso,
más normalmente no más de aproximadamente el 5% en peso de las
formulaciones.
La concentración del principio activo en la
formulación puede variar mucho y dependerá de una variedad de
factores, incluyendo la enfermedad o patología que debe tratarse,
la naturaleza y actividad del principio activo, el efecto deseado,
las posibles reacciones adversas, la capacidad y velocidad del
principio activo para alcanzar su objetivo buscado y otros factores
dentro del conocimiento particular del paciente y el médico.
Normalmente, las formulaciones preferidas contendrán en el orden de
aproximadamente el 0,5% en peso al 50% en peso, de manera óptima
aproximadamente el 10% en peso al 30% en peso de principio
activo.
Un procedimiento alternativo y preferido implica
la utilización de un sistema de administración de fármaco, por
ejemplo, un "parche" tópico o transdérmico, en el que el
principio activo está contenido dentro de una estructura laminada
que debe fijarse a la piel. En tal estructura, la composición
farmacológica está contenida en una capa o "depósito",
subyacente a una capa superior de refuerzo. La estructura laminada
puede contener un solo depósito o puede contener múltiples
depósitos.
En una realización, el depósito comprende una
matriz polimérica de un material adhesivo farmacéuticamente
aceptable que sirve para fijar el sistema a la piel durante la
administración; normalmente, el material adhesivo es un adhesivo
sensible a la presión (PSA) que es adecuado para el contacto de
larga duración con la piel y que debe ser física y químicamente
compatible con el principio activo, el agente de liberación de
hidróxido y cualquier excipiente, vehículo u otro aditivo que esté
presente. Ejemplos de materiales adhesivos adecuados incluyen, pero
no se limitan a, los siguientes: polietilenos; polisiloxanos;
poliisobutilenos; poliacrilatos; poliacrilamidas; poliuretanos;
copolímeros de etileno plastificado - acetato de vinilo; y gomas
adhesivas tales como poliisobuteno, polibutadieno, copolímeros de
poliestireno - isopreno, copolímeros de poliestireno - butadieno y
neopreno (policloropreno). Los adhesivos preferidos son los
poliisobutilenos.
La capa de refuerzo funciona como el elemento
estructural primario del sistema transdérmico y dota al dispositivo
de flexibilidad y preferentemente, oclusividad. El material
utilizado para la capa de refuerzo debe ser inerte e incapaz de
absorber el fármaco, el agente de liberación de hidróxido o
componentes de la formulación contenidos en el interior del
dispositivo. Preferentemente, el refuerzo está constituido por un
material elastomérico flexible que sirve como un recubrimiento
protector para evitar la pérdida de fármaco y/o vehículo mediante
la transmisión a través de la superficie superior del parche y
preferentemente, conferirá un grado de oclusividad al sistema, de
manera que el área de la superficie corporal cubierta por el parche
se hidrata durante la utilización. El material utilizado para la
capa de refuerzo debe permitir que el dispositivo siga los
contornos de la piel y se adapte cómodamente a áreas de la piel
tales como articulaciones u otros puntos de flexión, que se someten
normalmente a esfuerzo mecánico con poca o ninguna probabilidad de
que el dispositivo se suelte de la piel debido a diferencias en la
flexibilidad o elasticidad de la piel y del dispositivo. Los
materiales utilizados como la capa de refuerzo son oclusivos o
permeables, tal como se ha observado anteriormente, aunque se
prefieren los refuerzos oclusivos y provienen generalmente de
polímeros sintéticos (por ejemplo, poliéster, polietileno,
polipropileno, poliuretano, poli(cloruro de vinilidino) y
polieteramida), polímeros naturales (por ejemplo, materiales de
celulosa) o materiales tejidos o no tejidos macroporosos.
Durante el almacenamiento y antes de la
utilización, la estructura laminada incluye un papel antiadherente.
Inmediatamente antes de la utilización, esta capa se retira del
dispositivo de manera que el sistema pueda fijarse a la piel. El
papel antiadherente debe hacerse de un material impermeable al
fármaco / vehículo y es un elemento desechable que sirve sólo para
proteger el dispositivo antes de la aplicación. Normalmente, el
papel antiadherente se forma a partir de un material impermeable al
principio farmacológicamente activo y al agente de liberación de
hidróxido y que se quita fácilmente del parche transdérmico antes
de la utilización.
En una realización alternativa, el depósito que
contiene el fármaco y el adhesivo de contacto con la piel están
presentes como capas separadas y distintas, con la adhesiva por
debajo del depósito. En tal caso, el depósito debe ser una matriz
polimérica tal como se describe anteriormente. Alternativamente, el
depósito puede estar constituido por una formulación líquida o
semisólida contenida en un compartimento cerrado o "bolsa" o
puede ser un depósito de hidrogel o puede adoptar cualquier otra
forma. En la presente memoria, se prefieren especialmente los
depósitos de hidrogel. Tal como apreciarán aquellos expertos en la
materia, los hidrogeles son redes macromoleculares que absorben agua
y por tanto se hinchan pero no se disuelven en agua. Por tanto, los
hidrogeles contienen grupos funcionales hidrófilos que aportan la
absorción de agua, pero los hidrogeles están constituidos por
polímeros reticulados que producen insolubilidad acuosa.
Generalmente, los hidrogeles están constituidos entonces por
polímeros hidrófilos reticulados tales como un poliuretano, un
poli(alcohol vinílico), un ácido poliacrílico, un
polioxietileno, una polivinilpirrolidona, un poli(metacrilato
de hidroxietilo) (poli(HEMA)) o un copolímero o mezcla de
los mismos. Los polímeros hidrófilos particularmente preferidos son
copolímeros de HEMA y polivinilpirrolidona.
En cualquiera de estos sistemas de administración
de fármacos, pueden también estar presentes capas adicionales, por
ejemplo, capas de tejido intermedias y/o membranas de control de la
velocidad. Las capas de tejido pueden utilizarse para facilitar la
fabricación del dispositivo, mientras que una membrana de control de
la velocidad puede utilizarse para controlar la velocidad con la
que un componente sale a través del dispositivo. El componente
puede ser un fármaco, un agente de liberación de hidróxido, un
potenciador adicional o cualquier otro componente contenido en el
sistema de administración de fármacos.
Si está presente, una membrana de control de la
velocidad estará incluida en el sistema en el lado de la piel de
uno o más de los depósitos de fármaco. Los materiales utilizados
para formar tal membrana se seleccionan para limitar el flujo de uno
o más componentes contenidos en la formulación de fármaco.
Materiales representativos útiles para formar las membranas de
control de la tasa incluyen poliolefinas, tales como polietileno y
polipropileno, poliamidas, poliésteres, copolímero de etileno -
etacrilato, copolímero de etileno - acetato de vinilo, copolímero de
etileno - metilacetato de vinilo, copolímero de etileno -
etilacetato de vinilo, copolímero de etileno - propilacetato de
vinilo, poliisopreno, poliacrilonitrilo, copolímero de etileno -
propileno y similares.
Generalmente, la capa subyacente del dispositivo
transdérmico, es decir, el área de contacto con la piel, tiene un
área en el intervalo de aproximadamente 5 cm^{2} a 200 cm^{2},
preferentemente de 5 cm^{2} a 100 cm^{2}, más preferentemente de
20 cm^{2} a 60 cm^{2}. Por supuesto, esta área variará con la
cantidad de fármaco que debe administrarse y el flujo del fármaco a
través de la superficie corporal. Serán necesarios parches más
grandes para disponer cantidades mayores de fármaco, mientras que
pueden utilizarse parches más pequeños para cantidades menores de
fármaco y/o fármacos que presenten una velocidad de permeación
relativamente elevada.
Tales sistemas de administración de fármacos
pueden fabricarse utilizando las técnicas convencionales de
recubrimiento y laminación conocidas en la técnica. Por ejemplo,
pueden prepararse sistemas de matriz adhesiva mediante moldeo por
colada de una mezcla fluida de adhesivo, fármaco y vehículo sobre la
capa de refuerzo, seguido de laminación del papel antiadherente. De
manera similar, la mezcla adhesiva puede moldearse por colada sobre
el papel antiadherente, seguido de laminación de la capa de
refuerzo. De manera alternativa, puede prepararse el depósito de
fármaco en ausencia de fármaco o excipiente y después cargarse
mediante "impregnación" en una mezcla de fármaco / vehículo. En
general, los sistemas transdérmicos de la invención se fabrican
mediante evaporación de disolvente, moldeo de película, extrusión de
masa fundida, laminación de película fina, corte en hilera o
similares. Generalmente, el agente de liberación de hidróxido se
incorporará en el dispositivo durante la fabricación del parche,
más que después de la preparación del dispositivo. Por tanto, para
las sales de adición de ácido de fármacos básicos (por ejemplo,
sales de clorhidrato de fármacos de amina, tales como clorhidrato
de fenilpropanolamina), el agente de liberación de hidróxido
neutralizará el fármaco durante la fabricación del sistema de
administración de fármacos, lo que da como resultado un sistema de
administración de fármacos final en el que el fármaco está presente
en una forma neutra, no ionizada junto con un exceso de agente de
liberación de hidróxido que sirve como potenciador de la permeación.
Para fármacos ácidos no ionizados, el agente de liberación de
hidróxido neutralizará tales fármacos convirtiéndolos en el fármaco
ionizado en forma de sal.
En un sistema de administración preferido, se
utilizan un recubrimiento adhesivo que también sirve como un
refuerzo para el sistema de administración para asegurar mejor el
parche a la superficie corporal. Este recubrimiento se ajusta en
tamaño de tal manera que se extiende más del depósito de fármaco
para que el adhesivo sobre el recubrimiento se ponga en contacto
con la superficie corporal. El recubrimiento es útil porque la capa
de adhesivo / depósito de fármaco puede perder su adhesión unas
horas después de la aplicación debido a la hidratación. Al
incorporar tal recubrimiento adhesivo, el sistema de administración
permanece en su lugar durante el periodo de tiempo requerido.
También pueden utilizarse otros tipos y
configuraciones de sistemas de administración transdérmica de
fármacos conjuntamente con el procedimiento de la presente
invención, es decir, la utilización de un agente de liberación de
hidróxido como un potenciador de la permeación, tal como apreciarán
aquellos expertos en la materia de la administración transdérmica
de fármacos. Véase, por ejemplo, Ghosh, Transdermal and Topical
Drug Delivery Systems (Interpharm Press, 1997), particularmente
los capítulos 2 y 8.
Al igual que con las formulaciones aplicadas por
vía tópica de la invención, la composición que contiene fármaco y
agente de liberación de hidróxido en el interior del (de los)
depósito(s) de fármaco de estos sistemas laminados puede
contener varios componentes. En algunos casos, el fármaco y el
agente de liberación de hidróxido pueden administrarse
"solos", es decir, en ausencia de líquido adicional. Sin
embargo, en la mayoría de los casos, el fármaco se disolverá,
dispersará o suspenderá en un vehículo adecuado farmacéuticamente
aceptable, normalmente un disolvente o gel. Otros componentes que
pueden estar presentes incluyen conservantes, estabilizantes,
tensioactivos y similares.
Por tanto, la invención proporciona medios nuevos
y altamente eficaces para aumentar el flujo de un principio activo
a través de la superficie corporal (tejido cutáneo o mucoso) de un
humano o animal. Los agentes de liberación de hidróxidos tratados
en la presente memoria, empleados en cantidades específicas en
relación con una formulación o depósito de fármaco, pueden
utilizarse como potenciadores de la permeación con una amplia
variedad de fármacos y tipos de fármacos, incluyendo ácidos libres,
bases libres, sales de adición de ácido de fármacos básicos, sales
de adición de base de fármacos ácidos, fármacos no ionizables,
péptidos y proteínas. Sorprendentemente, el aumento de la
permeación no se acompaña de cualquier lesión, irritación o
sensibilización del tejido que pueda apreciarse. Por tanto, la
invención representa un avance importante en el campo de la
administración de fármacos.
Debe entenderse que mientras la invención se ha
descrito conjuntamente con las realizaciones específicas,
preferidas de la misma, la anterior descripción pretende ilustrar y
no limitar el alcance de la invención. Otros aspectos, ventajas y
modificaciones resultarán evidentes para aquellos expertos en la
materia a la que hace referencia la invención. Además, la práctica
de la presente invención empleará, a menos que se indique lo
contrario, técnicas convencionales de formulación de fármacos,
particularmente formulación de fármacos tópicos y transdérmicos,
que entran en los conocimientos de la técnica. Tales técnicas se
explican detalladamente en la bibliografía. Véase Remington: The
Science and Practice of Pharmacy, citado anteriormente, así
como The Pharmacological Basis of Therapeutics de Goodman
& Gilman, 9ª ed. (Nueva York: McGraw-Hill,
1996).
Se presentan los siguientes ejemplos para
proporcionar a aquellos expertos en la materia una revelación y
descripción completas de cómo hacer y utilizar los compuestos de la
invención y no pretenden limitar el alcance de lo que los inventores
consideran como su invención. Se han hecho esfuerzos para
garantizar la precisión con respecto a los números (por ejemplo,
cantidades, temperatura, etc.), pero deben tenerse en cuenta
algunos errores y desviaciones. A menos que se indique lo contrario,
las partes son partes en peso, la temperatura es en ºC y la presión
es atmosférica o se aproxima a ella.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando tres sistemas transdérmicos de
estradiol. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 1 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio fue de 0 g, 0,0155 g y 0,025 g para la
formulación nº Est-P18, nº Est-P19 y
nº Est-P20, respectivamente. Se cubrió cada
formulación sobre un papel antiadherente y se secó en una estufa a
55ºC durante dos horas para eliminar agua y otros disolventes. Se
laminó la película fármaco en adhesivo / papel antiadherente seca
para dar una película de refuerzo. Entonces, se cortó el laminado
refuerzo / fármaco en adhesivo / papel antiadherente en discos con
un diámetro de 11/16 pulgadas. El peso porcentual teórico para cada
componente después del secado (calculado asumiendo que todos los
componentes volátiles se habían eliminado completamente durante el
secado) se expone en la Tabla 2.
Se realizó la permeación in vitro de
estradiol a través de la piel de un cadáver humano desde estos
discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño apropiado y
se colocó sobre una superficie plana con la cara del estrato córneo
hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente del laminado en
disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo se colocó y se
presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el estrato
córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó con pinzas
entre las cámaras donante y receptora de la celda de difusión con la
cara de la piel hacia la disolución receptora. Se utilizaron tres
celdas de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con una disolución 10% de
etanol / 90% de agua. Se apartó completamente la disolución
receptora y se sustituyó por una disolución fresca de etanol / agua
en cada punto de tiempo. Se analizaron las muestras tomadas con HPLC
para determinar la concentración de estradiol en la disolución
receptora. Se calculó la cantidad acumulada de estradiol que
penetró a través de la piel de cadáver humano utilizando las
concentraciones de estradiol medidas en las disoluciones receptoras,
que se trazaron frente al tiempo y se muestran en la figura 1.
Se midió el pH del parche utilizando los
siguientes procedimientos. Se perforó un parche circular de 2,5
cm^{2}. Se pipetearon diez ml de agua purificada en un vial de
vidrio y se añadió una barra de agitación; se retiró el papel del
parche y se colocó en el vial junto con el parche. Entonces se
colocó el vial sobre una placa de agitación y se agitó la mezcla
agua / parche / papel durante 5 minutos, momento en el que el papel
se retiró del vial y se desechó. Se colocó de nuevo el vial sobre
una placa de agitación y se continuó la agitación durante 18 horas
adicionales. Después de 18 horas, se retiró la barra de agitación
del vial y se determinó el pH de la disolución utilizando un pHmetro
calibrado.
Los pH medidos para los sistemas transdérmicos de
estradiol se enumeran en la Tabla 3.
| Est-P18 | Est-P19 | Est-P20 | |
| Estradiol | 0,0313 g (0,5%) | 0,0322 g (0,5%) | 0,0308 g (0,5%) |
| NaOH | 0 | 0,0155 g (0,3%) | 0,025 g (0,4%) |
| Agua DI | 0 | 0,4155 g (6,9%) | 0,425 g (7,0%) |
| PIB* adhesivo (30% sólido) | 4 g (66,3%) | 4 g (66,0%) | 4 g (65,8%) |
| Metilal | 1,8 g (29,8%) | 1,4 g (23,1%) | 1,4 g (23,0%) |
| Etanol | 0,2 g (3,3%) | 0,2 g (3,3%) | 0,2 g (3,3%) |
- PIB = poliisobutileno
| Est-P18 | Est-P19 | Est-P20 | |
| Estradiol | 0,0313 g (2,5%) | 0,0322 g (2,6%) | 0,0308 g (2,5%) |
| NaOH | 0 | 0,0155 g (1,2%) | 0,025 g (2,0%) |
| PIB* adhesivo (30% sólido) | 1,2 g (97,5%) | 1,2 g (96,2%) | 1,2 g (95,6%) |
| Est-P18 | Est-P19 | Est-P20 | |
| pH | 7,22 | 8,75 | 8,90 |
La cantidad acumulada de estradiol que penetró a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
0,22 \mug/cm^{2} hasta 7,01 \mug/cm^{2} cuando la
concentración de hidróxido de sodio calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0% hasta el 2%. La cantidad acumulada de
estradiol que penetró a través de la piel de cadáver humano a las
24 horas desde el sistema que contenía el 1,2% de NaOH
(Est-P19) fue de 4,55 \mug/cm^{2}, que era
aproximadamente 20 veces superior a la de la formulación sin NaOH
(0,22 \mug/cm^{2}, nº Est-P18).
El pH del parche de estradiol medido utilizando
los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde 7,11
hasta 8,90 cuando la concentración de hidróxido de sodio calculada
en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el 2%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
ketoprofeno. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 4 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio fue de 0 g, 0,19 g, 0,215 g y 0,225 g para la
formulación nº Keto-P3H16, -P3H17, -P3H18 y -P3H19,
respectivamente. Se cubrió cada formulación sobre un papel
antiadherente y se secó en una estufa a 55ºC durante dos horas para
eliminar agua y otros disolventes. Se laminó la película fármaco en
adhesivo / papel antiadherente seca para dar una película de
refuerzo. Entonces, se cortó el laminado refuerzo / fármaco en
adhesivo / papel antiadherente en discos con un diámetro de 11/16
pulgadas. El peso porcentual teórico para cada componente después
del secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles
se habían eliminado completamente durante el secado) se expone en la
Tabla 5.
Se realizó la permeación in vitro de
ketoprofeno a través de la piel de un cadáver humano desde estos
discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un
tamaño apropiado y se colocó sobre una superficie plana con la cara
del estrato córneo hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente
del laminado en disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo
se colocó y se presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el
estrato córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó
con pinzas entre las cámaras donante y receptora de la celda de
difusión con la cara de la piel hacia la disolución receptora. Se
utilizaron cinco celdas de difusión para cada formulación.
Se utilizó solución salina normal como la
disolución receptora. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se recogió toda la disolución receptora y se sustituyó por una
solución salina fresca en cada punto de tiempo. Se analizó la
disolución receptora recogida mediante HPLC para determinar la
concentración de ketoprofeno. Se calculó la cantidad acumulada de
ketoprofeno que penetró a través de la piel de cadáver humano
utilizando las concentraciones de ketoprofeno medidas en las
disoluciones receptoras, que se trazaron frente al tiempo y se
muestran en la figura 2.
Como el ketoprofeno es un ácido libre, reacciona
con NaOH. La concentración de NaOH en el sistema después de que se
complete la reacción depende de la cantidad de ketoprofeno añadido.
La concentración residual de NaOH después de que se complete la
reacción se define como "concentración de exceso de NaOH", que
se calcula mediante la siguiente ecuación.
[NaOH_{exceso}] =
[NaOH_{total}] - [NaOH_{necesaria\ para\ la\
neutralización}]
Se calcularon las concentraciones de exceso de
NaOH para los cuatro sistemas de ketoprofeno, nº
Keto-P3H16, -P3h17, -P3h18 y -P3H19 y se exponen en
la Tabla 6.
Se midió el pH del parche utilizando los
procedimientos del ejemplo 1. Los resultados se exponen en la Tabla
6.
| Keto-P3H16 | Keto-P3H17 | Keto-P3H18 | Keto-P3H19 | |
| Ketoprofeno | 1,2 g (16,7%) | 1,2 g (15,8%) | 1,2 g (15,7%) | 1,2 g (15,7%) |
| NaOH | 0 | 0,19 g (2,5%) | 0,215 (2,8%) | 0,225 g (2,9%) |
| Agua DI | 0 | 0,19 g (2,5%) | 0,215 (2,8%) | 0,225 g (2,9%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (55,6%) | 4 g (52,8%) | 4 g (52,4%) | 4 g (52,3%) |
| Metilal | 2 g (27,8%) | 2 g (26,4%) | 2 g (26,2%) | 2 g (26,1%) |
| Keto-P3H16 | Keto-P3H17 | Keto-P3H18 | Keto-P3H19 | |
| Ketoprofeno | 1,2 g (50%) | 1,2 g (45,9%) | 1,2 g (45,9%) | 1,2 g (45,7%) |
| NaOH | 0 | 0,19 g (7,3%) | 0,215 (8,2%) | 0,225 g (8,6%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (50%) | 1,2 g (46,3%) | 1,2 g (45,9%) | 1,2 g (45,7%) |
| Keto-P3H16 | Keto-P3H17 | Keto-P3H18 | Keto-P3H19 | |
| Concentración de exceso de NaOH | 0,05% | 1,00% | 1,38% | |
| pH | 3,68 | 8,60 | 10,10 | 10,57 |
Aunque el parche nº Keto-P3H17
contenía el 7,37% de NaOH (Tabla 5), la cantidad acumulada de
ketoprofeno que penetró a través de la piel de cadáver humano a las
24 horas (61,7 \mug/cm^{2}, figura 2) fue sólo ligeramente
superior a la de la formulación sin NaOH
(Keto-P3H16, 35,2 \mug/cm^{2}). Esto puede
deberse al consumo de NaOH por la reacción entre NaOH y
ketoprofeno, lo que redujo la concentración de NaOH hasta sólo el
0,05% como la concentración de exceso de NaOH (Tabla 6). Este
resultado indicó que la permeación de ketoprofeno podía potenciarse
con una concentración de exceso de NaOH tan baja como el 0,05%.
La cantidad acumulada de ketoprofeno que penetró
a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
6,17 \mug/cm^{2} hasta 402,7 \mug/cm^{2} cuando la
concentración de exceso de NaOH calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0,05% hasta el 1,38%. La cantidad acumulada de
ketoprofeno que penetró a través de la piel de cadáver humano a las
24 horas desde la formulación con una concentración de exceso de
NaOH del 1,00% (Keto-P3H18, 315,8 \mug/cm^{2})
es aproximadamente 5 veces superior a la de la formulación con una
concentración de exceso de NaOH del 0,05%
(Keto-P3H17, 61,7 \mug/cm^{2}).
El pH del parche de ketoprofeno determinado
utilizando el procedimiento del ejemplo 1 aumentó desde 8,60 hasta
10,57 cuando la concentración de exceso de NaOH calculada en el
parche seco se incrementó desde el 0,05% hasta el 1,38%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
clorhidrato de fenilpropanolamina (PPA-HCl). Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran en
la Tabla 7 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de hidróxido de sodio fue
de 0 g, 0,165 g, 0,195 g y 0,23 g para las formulaciones nº
PPA-N7, -N1, -N2 y -N5, respectivamente. Se cubrió
cada formulación sobre un papel antiadherente y se secó en una
estufa a 55ºC durante dos horas para eliminar agua y otros
disolventes. Se laminó la película fármaco en adhesivo / papel
antiadherente seca para dar una película de refuerzo. Entonces, se
cortó el laminado refuerzo / fármaco en adhesivo / papel
antiadherente en discos redondos con un diámetro de 11/16 pulgadas.
El peso porcentual teórico para cada componente después del secado
(calculado asumiendo que todos los componentes volátiles se habían
eliminado completamente durante el secado) se expone en la Tabla
8.
Se realizó la permeación in vitro de
PPA-HCl a través de la piel de un cadáver humano
desde estos discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con
un área de difusión de 1 cm^{2}. El volumen de la disolución
receptora fue de 8 ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta el
tamaño deseado y se colocó sobre una superficie plana con la cara
del estrato córneo hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente
del laminado en disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo
se colocó y se presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el
estrato córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó
con pinzas entre las cámaras donante y receptora de la celda de
difusión con la cara de la piel hacia la disolución receptora. Se
utilizaron tres celdas de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con agua DI. Se apartó
completamente la disolución receptora y se sustituyó por una agua
DI fresca en cada punto de tiempo. Se analizaron las muestras
tomadas mediante HPLC para determinar la concentración de
PPA-HCl en la disolución receptora. Se calculó la
cantidad acumulada de PPA-HCl que penetró a través
de la piel de cadáver humano utilizando las concentraciones de
PPA-HCl medidas en las disoluciones receptoras, que
se trazaron frente al tiempo y se muestran en la figura 3.
Como el PPA-HCl es una sal de
adición de ácido de una base libre, reacciona con NaOH. La
concentración de NaOH en el sistema después de que se complete la
reacción depende de la cantidad de PPA-HCl añadido.
La concentración residual de NaOH después de que se complete la
reacción se define como "concentración de exceso de NaOH", que
se calcula tal como se explicó en el ejemplo anterior. Se calcularon
las concentraciones de exceso de NaOH para los sistemas de
PPA-HCl, nº PPA-N7, -N1, -N2 y -N5 y
se exponen en la Tabla 9.
Se midió el pH de cada parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se exponen en la Tabla
9.
| PPA-N7 | PPA-N1 | PPA-N2 | PPA-N5 | |
| PPA-HCl | 0,75 g (8,5%) | 0,75 g (8,2%) | 0,75 g (8,1%) | 0,75 g (8,1%) |
| NaOH | 0 | 0,165 g (1,8%) | 0,195 g (2,1%) | 0,23 g (2,5%) |
| Agua DI | 1,1 g (12,4%) | 1,265 g (13,8%) | 1,295 g (14,0%) | 1,33 g (14,3%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (5,6%) | 0,5 g (5,4%) | 0,5 g (5,4%) | 0.5 g (5,4%) |
| Metilal | 1 g (11,3%) | 1 g (10,9%) | 1 g (10,8%) | 1 g (10,7%) |
| Heptano | 1,5 g (16,9%) | 1,5 g (16,3%) | 1,5 g (16,2%) | 1,5 g (16,1%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (45,2%) | 4 g (43,6%) | 4 g (43,3%) | 4 g (43,0%) |
| PPA-N7 | PPA-N1 | PPA-N2 | PPA-N5 | |
| PPA-HCl | 0,75 g (30,6%) | 0,75 g (28,7%) | 0,75 g (28,4%) | 0,75 g (28,0%) |
| NaOH | 0 | 0,165 g (6,3%) | 0,195 g (7,4%) | 0,23 g (8,6%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (49,0%) | 1,2 g (45,9%) | 1,2 g (45,4%) | 1,2 g (44,8%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (20,4%) | 0,5 g (19,1%) | 0,5 g (18,9%) | 0,5 g (18,7%) |
| PPA-N7 | PPA-N1 | PPA-N2 | PPA-N5 | |
| Concentración de exceso de NaOH | 0,20% | 1,33% | 2,62% | |
| pH | 7,33 | 10,08 | 10,16 | 10,88 |
Aunque el parche nº PPA-N1
contenía el 6,3% de NaOH (Tabla 8), la cantidad acumulada de
PPA-HCl que penetró a través de la piel de cadáver
humano a las 24 horas desde esta formulación (1,35 mg/cm^{2},
figura 3) fue sólo ligeramente superior a la de la formulación sin
NaOH (PPA-N7, 0,56 mg/cm^{2}). Esto puede deberse
al consumo de NaOH por la reacción entre NaOH y
PPA-HCl, lo que redujo la concentración de NaOH
hasta sólo el 0,20% como la concentración de exceso de NaOH mostrada
en la Tabla 9. Este resultado indicó que la permeación de
PPA-HCl podía potenciarse con una concentración de
exceso de NaOH tan baja como el 0,20%.
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
aumentó desde 1,35 mg/cm^{2} hasta 5,99 mg/cm^{2} cuando la
concentración de exceso de NaOH calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0,20% hasta el 2,62%. La cantidad acumulada de
PPA-HCl que penetró a través de la piel de cadáver
humano a las 24 horas desde la formulación con una concentración de
exceso de NaOH del 1,033% (PPA-N2, 5,2 mg/cm^{2})
es aproximadamente 5 veces superior a la de la formulación con una
concentración de exceso de NaOH del 0,20% (PPA-N1,
1,35 \mug/cm^{2}).
El pH del parche de PPA-HCl
aumentó desde 10,08 hasta 10,88 cuando la concentración de exceso de
NaOH calculada en el parche seco se incrementó desde el 0,20% hasta
el 2,62%. La irritación de la piel pudo relacionarse con el pH del
parche que depende de la concentración de exceso de NaOH.
Se realizó un estudio de irritación de la piel
humana utilizando siete sistemas transdérmicos que se enumeran a
continuación.
Parche nº Keto-IT1 (que no
contiene ketoprofeno, ni NaOH)
Parche nº Keto-IT2 (que contiene
ketoprofeno, no NaOH)
Parche nº Keto-IT7
Parche nº Keto-IT8
Parche nº Keto-IT9
Parche nº Keto-IT10
Parche que contiene vaselina
Como control se utilizó el parche que contiene
vaselina, que era una cámara oclusiva (Hilltop, Cincinnati, OH) que
contenía vaselina mantenida en su sitio con papel perforado. Se
utilizaron los siguientes procedimientos para preparar los sistemas
con la excepción del sistema que contenía la vaselina. Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran
en la Tabla 10 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de hidróxido de sodio fue
de 0,6 g, 0,65 g, 0,69 g y 0,73 g para las formulaciones nº
Keto-IT7, -IT8, -IT9 y BIT10, respectivamente. Se
cubrió cada formulación sobre un papel antiadherente y se secó en
una estufa a 55ºC durante dos horas para eliminar agua y otros
disolventes. Se laminó la película fármaco en adhesivo / papel
antiadherente seca para dar una película de refuerzo. Se cortó el
laminado refuerzo / fármaco en adhesivo / papel antiadherente en
discos redondos con un diámetro de 2 pulgadas. En la Tabla 11, se
enumera el peso porcentual teórico para cada componente después del
secado que se calculó asumiendo que todos los componentes volátiles
se habían eliminado completamente durante el secado.
Se incluyeron diez sujetos humanos sanos en el
estudio de irritación de la piel. Cada sujeto llevó siete parches
enumerados anteriormente sobre los brazos durante 24 horas. Se
aplicó sobre cada sistema sobre la piel, excepto el parche de
vaselina, una película adhesiva con un diámetro de 7/8 pulgadas
para asegurar el sistema y para hacer el sistema oclusivo durante
24 horas. Después de 24 horas, se retiraron los parches y se puntuó
la piel en una escala de 0 a 4. La escala de puntuación se enumera
a continuación. La piel se volvió a puntuar a las 48 horas.
0 = negativo
+ = reacción ambigua
1 = eritema
2 = eritema e induración
3 = eritema, induración y vesículas
4 = ampollas
Se realizó el estudio de permeación in
vitro a partir de las formulaciones nº
Keto-IT7, -IT8, -IT9 y BIT10. En este estudio se
utilizaron celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un
tamaño apropiado y se colocó sobre una superficie plana con la cara
del estrato córneo hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente
del laminado en disco redondo. La película refuerzo / fármaco en
adhesivo se colocó y se presionó sobre la piel con la cara adhesiva
hacia el estrato córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se
sujetó con pinzas entre las cámaras donante y receptora de la celda
de difusión con la cara de la piel hacia la disolución receptora.
Se utilizaron tres celdas de difusión para cada formulación.
Se utilizó solución salina normal como la
disolución receptora. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se recogió toda la disolución receptora a las 24 horas y se
analizó mediante HPLC para determinar la concentración de
ketoprofeno. Se calculó la cantidad de ketoprofeno que penetró a
través de la piel de cadáver humano utilizando las concentraciones
de ketoprofeno medidas en las disoluciones receptoras, que se
enumeran en la Tabla 12.
Se calcularon las concentraciones de exceso de
NaOH para los cuatro sistemas de ketoprofeno, nº
Keto-IT7, -IT8, -IT9 y BIT10 tal como se describe en
el ejemplo 2 y se enumeran en la Tabla 12.
Se midió el pH del parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los pH medidos para cada sistema
transdérmico de ketoprofeno también se enumera en la Tabla 12.
| Keto-IT7 | Keto-IT8 | Keto-IT9 | Keto-IT10 | |
| Ketoprofeno | 2,4 g (14,0%) | 2,4 g (14,0%) | 2,4 g (13,9%) | 2,4 g (13,8%) |
| NaOH | 0,6 g (3,5%) | 0,65 g (3,8%) | 0,69 g (4,0%) | 0,73 g (4,2%) |
| Agua DI | 0,6 g (3,5%) | 0,65 g (3,8%) | 0,69 g (4,0%) | 0,73 g (4,2%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 8 g (46,8%) | 8 g (46,5%) | 8 g (46,3%) | 8 g (46,1%) |
| Tetraglicol | 0,5 g (2,9%) | 0,5 g (2,9%) | 0,5 g (2,9%) | 0,5 g (2,9%) |
| Miristato de isopropilo | 0,4 g (2,3%) | 0,4 g (2,3%) | 0,4 g (2,3%) | 0,4 g (2,3%) |
| Salicilato de metilo | 0,6 g (3,5%) | 0,6 g (3,5%) | 0,6 g (3,5%) | 0,6 g (3,5%) |
| Metilal | 4 g (23,4%) | 4 g (23,3%) | 4 g (23,3%) | 4 g (23,0%) |
| Keto-IT7 | Keto-IT8 | Keto-IT9 | Keto-IT10 | |
| Ketoprofeno | 2,4 g (34,8%) | 2,4 g (34,5%) | 2,4 g (34,3%) | 2,4 g (34,1%) |
| NaOH | 0,6 g (8,7%) | 0,65 g (9,4%) | 0,69 g (9,9%) | 0,73 g (10,4%) |
| PIB adhesivo | 2,4 g (34,0%) | 2,4 g (34,5%) | 2,4 g (34,3%) | 2,4 g (34,1%) |
| Tetraglicol | 0,5 g (7,2%) | 0,5 g (7,2%) | 0,5 g (7,2%) | 0,5 g (7,1%) |
| Miristato de isopropilo | 0,4 (5,8%) | 0,4 (5,8%) | 0,4 (5,7%) | 0,4 (5,7%) |
| Salicilato de metilo | 0,6 g (8,7%) | 0,6 g (8,6%) | 0,6 g (8,6%) | 0,6 g (8,5%) |
| Keto-IT7 | Keto-IT8 | Keto-IT9 | Keto-IT10 | |
| pH | 10,06 | 10,81 | 11,04 | 11,18 |
| Concentración de exceso de NaOH | 3,22% | 3,92% | 4,47% | 5,01% |
| Cantidad acumulada a través de la piel a las 24 horas | 0,17 | 0,34 | 0,54 | 1,52 |
La cantidad acumulada de ketoprofeno que penetró
a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
0,17 mg/cm^{2} hasta 1,52 mg/cm^{2} cuando la concentración de
exceso de NaOH calculada en el parche seco se incrementó desde el
3,22% hasta el 5,01%. La concentración de exceso de NaOH y la
cantidad acumulada de ketoprofeno a través de la piel a las 24 horas
y el pH del parche para Keto-IT8 fueron de 0,34
mg/cm^{2} y 10,81, respectivamente, lo que fue casi lo mismo que
para Keto-P3H18 mostrado en el ejemplo 2 (0,32
mg/cm^{2}, pH = 10,10). Sin embargo, la concentración de exceso
de NaOH para Keto-IT8 (3,92%) fue superior a la de
Keto-P3H18 (1,00%), lo que puede deberse al consumo
de NaOH por las reacciones entre NaOH y componentes distintos de
ketoprofeno en la formulación Keto-IT8.
Las puntuaciones de irritación obtenidas indican
que la irritación de este parche fue insignificante.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro geles transdérmicos de
ibuprofeno. Las formulaciones utilizadas para preparar estos geles
se enumeran en la Tabla 13 que incluye el peso y el porcentaje en
peso de cada componente de las formulaciones. El peso de hidróxido
de sodio fue de 0 g, 0,115 g, 0,135 g y 0,15 g para las
formulaciones nº Ibu-GH81, -GH82, -GH83 y -GH84,
respectivamente.
Se realizó la permeación in vitro de
ibuprofeno a través de la piel de un cadáver humano desde estos
geles utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un
tamaño apropiado y se sujetó con pinzas entre las cámaras donante y
receptora de la celda de difusión con la cara del estrato córneo
hacia la disolución receptora. Se utilizaron tres celdas de
difusión para cada formulación.
Se utilizó solución salina normal como la
disolución receptora. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se recogió toda la disolución receptora y se sustituyó por una
solución salina fresca en cada punto de tiempo. Se analizó la
disolución receptora recogida mediante HPLC para determinar la
concentración de ibuprofeno. Se calculó la cantidad acumulada de
ibuprofeno que penetró a través de la piel de cadáver humano
utilizando las concentraciones de ibuprofeno medidas en las
disoluciones receptoras, que se trazaron frente al tiempo y se
muestran en la
figura 4.
figura 4.
Se calcularon las concentraciones de exceso de
NaOH para los geles de ibuprofeno, nº Ibu-GH81,
-GH82, -GH83 y -GH84 y se enumeran en la Tabla 14.
Se midió el pH de cada gel utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la Tabla
14.
\vskip1.000000\baselineskip
| Ibu-GH81 | Ibu-GH82 | Ibu-GH83 | Ibu-GH84 | |
| Ibuprofeno | 0,6 g (36,8%) | 0,6 g (32,3%) | 0,6 g (31,6%) | 0,6 g (31,1%) |
| NaOH | 0 | 0,115 g (6,2%) | 0,135 g (7,1%) | 0,15 g (7,8%) |
| Etanol | 0,4 g (24,5%) | 0,4 g (21,5%) | 0,4 g (21,1%) | 0,4 g (20,7%) |
| Agua DI | 0,6 g (36,8%) | 0,715 g (38,4%) | 0,735 g (38,7%) | 0,75 g (38,9%) |
| HPMCP* | 0,03 g (1,8%) | 0,03 g (1,6%) | 0,03 g (1,6%) | 0,03 g (1,6%) |
- *HPMCP = ftalato de hidroxipropilmetilcelulosa
\vskip1.000000\baselineskip
| Ibu-GH81 | Ibu-GH82 | Ibu-GH83 | Ibu-GH84 | |
| Concentración de exceso de NaOH | 0% | 0,98% | 1,74% | |
| pH | 4,57 | 6,58 | 11,83 | 12,22 |
La cantidad acumulada de ibuprofeno que penetró a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
0,33 mg/cm^{2} hasta 5,74 mg/cm^{2} (figura 4) cuando la
concentración de exceso de NaOH calculada en el gel se incrementó
desde el 0% hasta el 1,74%. La cantidad acumulada de ibuprofeno que
penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas desde
la formulación con una concentración de exceso de NaOH del 0,98%
(Ibu-GH83, 1,12 mg/cm^{2}) es aproximadamente 3
veces superior a la de la formulación con una concentración de
exceso de NaOH del 0% (Ibu-GH82, 0,33
mg/cm^{2}).
El pH del parche de ibuprofeno (determinado
utilizando los procedimientos de los ejemplos anteriores) aumentó
desde 6,58 hasta 12,22 cuando la concentración de exceso de NaOH
calculada en el gel se incrementó desde el 0% hasta el 1,74%. La
irritación de la piel podría relacionarse con el pH del gel que
depende de la concentración de exceso de NaOH.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
clorhidrato de fenilpropanolamina (PPA-HCl). Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran en
la Tabla 15 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de carbonato de sodio
(Na_{2}CO_{3}) fue de 0 g, 0,29 g, 0,44 g y 0,74 g para las
formulaciones nº PPA-PC1, -PC2, -PC3 y -PC4,
respectivamente. Los parches de matriz se prepararon y valoraron
utilizando los mismos procedimientos que se exponen en el ejemplo
3. El peso porcentual teórico para cada componente después del
secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles se
habían eliminado completamente durante el secado) se enumera en la
Tabla 16. Se calculó la cantidad acumulada de
PPA-HCl a través de la piel de cadáver humano
utilizando las concentraciones de PPA-HCl medidas en
las disoluciones receptoras, que se mostraron en la Tabla 17
y
figura 5.
figura 5.
Como el PPA-HCl es una sal de una
base libre, reacciona con Na_{2}CO_{3}. La concentración de
Na_{2}CO_{3} en el sistema después de que se complete la
reacción depende de la cantidad de PPA-HCl añadido.
La concentración residual de Na_{2}CO_{3} después de que se
complete la reacción se define como "concentración de exceso de
Na_{2}CO_{3}", que se calcula mediante la siguiente
ecuación.
[Na_{2}CO_{3\ exceso}] =
[Na_{2}CO_{3\ total}] - [Na_{2}CO_{3\ necesario\ para\ la\
neutralización}]
Se calcularon las concentraciones de exceso de
Na_{2}CO_{3} para los cuatro sistemas de
PPA-HCl, nº PPA-PC1, -PC2, -PC3 y
-PC4 y se enumeran en la Tabla 18.
Se midió el pH del parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la Tabla
18.
\vskip1.000000\baselineskip
| PPA-PC1 | PPA-PC2 | PPA-PC3 | PPA-PC4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (6,7%) | 0,5 g (5,7%) | 0,5 g (5,6%) | 0,5 g (5,5%) |
| Na_{2}CO_{3} | 0 | 0,29 g (3,3%) | 0,44 g (5,0%) | 0,74 g (8,1%) |
| Agua DI | 1,0 g (13,5%) | 2,0 g (23,0%) | 2,0 g (22,6%) | 2,0 g (21,9%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (6,7%) | 0,5 g (5,7%) | 0,5 g (5,6%) | 0,5 g (5,5%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (2,7%) | 0,2 g (2,3%) | 0,2 g (2,3%) | 0,2 g (2,2%) |
| HPMC | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) |
| Heptano | 1,2 g (16,2%) | 1,2 g (13,8%) | 1,2 g (13,6%) | 1,2 g (13,1%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (54,0%) | 4 g (46,0%) | 4 g (45,2%) | 4 g (45,2%) |
| PPA-PC1 | PPA-PC2 | PPA-PC3 | PPA-PC4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (26,2%) | 0,5 g (22,7%) | 0,5 g (21,3%) | 0,5 g (18,9%) |
| Na_{2}CO_{3} | 0 | 0,29 g (13,2%) | 0,44 g (18,7%) | 0,74 g (27,9%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (10,5%) | 0,2 g (9,1%) | 0,2 g (8,5%) | 0,2 g (7,5%) |
| HPMC | 0,01 g (0,5%) | 0,01 g (0,5%) | 0,01 g (0,4%) | 0,01 g (0,4%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (62,8%) | 1,2 g (54,5%) | 1,2 g (51,1%) | 1,2 g (45,3%) |
| PPA-PC1 | PPA-PC2 | PPA-PC3 | PPA-PC4 | |
| 5 horas | 152,8 | 68,0 | 81,1 | 144,8 |
| 15 horas | 359,5 | 222,7 | 400,8 | 631,2 |
| 19 horas | 442,7 | 295,7 | 551,5 | 864,3 |
| 24 horas | 545,1 | 410,4 | 705,6 | 1147,5 |
| PPA-PC1 | PPA-PC2 | PPA-PC3 | PPA-PC4 | |
| Concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} | - | 0,4% | 6,7% | 16,7% |
| pH | 6,54 | 9,81 | 9,86 | 10,17 |
Aunque el parche nº PPA-PC2
contenía el 13,2% de Na_{2}CO_{3} (Tabla 16), la cantidad
acumulada de PPA-HCl que penetró a través de la piel
de cadáver humano a las 24 horas (410,4 \mug/cm^{2}, Tabla 17)
fue inferior a la de la formulación sin Na_{2}CO_{3}
(PPA-PC1, 545,1 \mug/cm^{2}). Esto puede deberse
al consumo de Na_{2}CO_{3} por la reacción entre
Na_{2}CO_{3} y PPA-HCl, lo que redujo la
concentración de Na_{2}CO_{3} hasta sólo el 0,4% como la
concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} (Tabla 18).
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
aumentó desde 410,4 \mug/cm^{2}hasta 1147,5
\mug/cm^{2}cuando la concentración de exceso de Na_{2}CO_{3}
calculada en el parche seco se incrementó desde el 0,4% hasta el
16,7%. Este resultado indicó que la permeación de
PPA-HCl podía potenciarse mediante Na_{2}CO_{3},
aunque la concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} requerida es
superior a la de NaOH. Pueden ser necesarias cantidades mayores de
Na_{2}CO_{3} porque es una base más débil si se compara con NaOH
y el peso molecular de Na_{2}CO_{3} es superior al de NaOH.
El pH del parche de PPA-HCl
medido utilizando los procedimientos enumerados anteriormente
aumentó desde 9,81 hasta 10,17 cuando la concentración de exceso de
Na_{2}CO_{3} calculada en el parche seco se incrementó desde el
0,4% hasta el 16,7%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
clorhidrato de fenilpropanolamina (PPA-HCl). Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran en
la Tabla 19 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de fosfato de potasio
tribásico (K_{3}PO_{4}) fue de 0 g, 0,57 g, 0,6 g y 0,66 g para
las formulaciones nº PPA-PK1, -PK2, -PK3 y -PK4,
respectivamente. Los parches de matriz se prepararon y valoraron
utilizando los mismos procedimientos que se exponen en el ejemplo
3. El peso porcentual teórico para cada componente después del
secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles se
habían eliminado completamente durante el secado) se enumera en la
Tabla 20. Se calculó la cantidad acumulada de
PPA-HCl a través de la piel de cadáver humano
utilizando las concentraciones de PPA-HCl medidas en
las disoluciones receptoras, que se mostraron en la Tabla 21 y
figura 6.
Como el PPA-HCl es una sal de una
base libre, reacciona con K_{3}PO_{4}. La concentración de
K_{3}PO_{4} en el sistema después de que se complete la
reacción depende de la cantidad de PPA-HCl añadido.
La concentración residual de K_{3}PO_{4} después de que se
complete la reacción se define como "concentración de exceso de
K_{3}PO_{4}", que se calcula mediante la siguiente
ecuación.
[K_{3}PO_{4\ exceso}] =
[K_{3}PO_{4\ total}] - [K_{3}PO_{4\ necesario\ para\ la\
neutralización}]
Se calcularon las concentraciones de exceso de
K_{3}PO_{4} para los cuatro sistemas de
PPA-HCl, nº PPA-PK1, -PK2, -PK3 y
-PK4 y se enumeran en la Tabla 8.
Se midió el pH del parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la Tabla
22.
| PPA-PK1 | PPA-PK2 | PPA-PK3 | PPA-PK4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (6,6%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,57 g (7,0%) | 0,6 g (7,3%) | 0,66 g (8,0%) |
| Agua DI | 1,0 g (13,2%) | 1,0 g (12,2%) | 1,0 g (12,2%) | 1,0 g (12,1%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (6,6%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (6,6%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) | 0,5 g (6,1%) |
| PIB adhesivo(30% sólido) | 4 g (52,6%) | 4 g (49,0%) | 4 g (48,8%) | 4 g (48,4%) |
| HPMC | 0,1 g (1,3%) | 0,1 g (1,2%) | 0,1 g (1,2%) | 0,1 g (1,2%) |
| Heptano | 1 g (13,2%) | 1 g (12,2%) | 1 g (12,2%) | 1 g (12,1%) |
| PPA-PK1 | PPA-PK2 | PPA-PK3 | PPA-PK4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (21,7%) | 0,5 g (17,4 %) | 0,5 g (17,2%) | 0,5 g (16,9%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,57 g (19,9%) | 0,6 g (20,7%) | 0,66 g (22,3%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (21,7%) | 0,5 g (17,4%) | 0,5 g (17,2%) | 0,5 g (16,9%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (52,2%) | 1,2 g (41,8%) | 1,2 g (41,4%) | 1,2 g (40,5%) |
| HPMC | 0,1 g (4,3%) | 0,1 g (3,5%) | 0,1 g (3,4%) | 0,1 g (3,4%) |
| PPA-PK1 | PPA-PK2 | PPA-PK3 | PPA-PK4 | |
| 5 horas | 94,7 | 660,0 | 421,6 | 362,9 |
| 16 horas | 445,9 | 1701,3 | 1420,3 | 1607,5 |
| 20 horas | 576,8 | 1919,2 | 1633,1 | 1872,5 |
| 24 horas | 680,5 | 2055,2 | 1762,9 | 2021,1 |
| PPA-PK1 | PPA-PK2 | PPA-PK3 | PPA-PK4 | |
| Concentración de exceso de K_{3}PO_{4} | - | 0,2% | 1,2% | 3,2% |
| pH | 6,75 | 9,68 | 9,62 | 10,08 |
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
para PPA-PK2 (2055,2 \mug/cm^{2}, Tabla 21) con
una concentración de exceso de K_{3}PO_{4} calculada del 0,2%
fue tres veces superior a la de la formulación sin K_{3}PO_{4}
(PPA-PK1, 680,5 \mug/cm^{2}). Este resultado
indicó que la permeación de PPA-HCl podía
potenciarse con una concentración de exceso de K_{3}PO_{4} tan
baja como del 0,2%.
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
permaneció casi la misma cuando la concentración de exceso de
K_{3}PO_{4} en el parche seco se aumentó desde el 0,2% hasta el
3,2% (Tablas 21 y 22).
El pH del parche de PPA-HCl
medido utilizando los procedimientos enumerados anteriormente
aumentó desde 6,75 hasta 9,68 cuando la concentración de exceso de
K_{3}PO_{4} calculada en el parche seco se incrementó desde el
0% hasta el 19,9% (o concentración de exceso de K_{3}PO_{4} del
0,2%, Tablas 20 y 22). Sin embargo, el pH del parche de
PPA-HCl permaneció casi el mismo cuando la
concentración de exceso de K_{3}PO_{4} en el parche seco se
aumentó adicionalmente desde el 0,2% hasta el 3,2% (Tabla 22).
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
clorhidrato de fenilpropanolamina (PPA-HCl). Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran en
la Tabla 23 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de fosfato de potasio
tribásico (K_{3}PO_{4}) fue de 0 g, 0,57 g, 0,73 g y 1,05 g
para las formulaciones nº PPA-PK1R, -PK2R, -PK5 y
-PK6, respectivamente. Los parches de matriz se prepararon y
valoraron utilizando los mismos procedimientos que se exponen en el
ejemplo 3. El peso porcentual teórico para cada componente después
del secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles
se habían eliminado completamente durante el secado) se enumera en
la Tabla 24. Se calculó la cantidad acumulada de
PPA-HCl a través de la piel de cadáver humano
utilizando las concentraciones de PPA-HCl medidas en
las disoluciones receptoras, que se mostraron en la Tabla 25 y
figura 7.
Se calcularon las concentraciones de exceso de
K_{3}PO_{4} para los cuatro sistemas de
PPA-HCl, nº PPA-PK1R, -PK2R, -PK5 y
-PK6 utilizando el procedimiento del ejemplo 7 y los resultados se
enumeran en la Tabla 26.
Se midió el pH de cada parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la
Tabla 26.
| PPA-PK1R | PPA-PK2R | PPA-PK5 | PPA-PK6 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,4%) | 0,5 g (6,3%) | 0,5 g (6,1%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,57 g (7,3%) | 0,73 g (9,2%) | 1.05 g (12,7%) |
| Agua DI | 1,0 g (13,9%) | 1,0 g (12,9%) | 1,0 g (12,6%) | 1,0 g (12,1%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,4%) | 0,5 g (6,3%) | 0,5 g (6,1%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (2,8%) | 0,2 g (2,6%) | 0,2 g (2,5%) | 0,2 g (2,4%) |
| HPMC | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) | 0,01 g (0,1%) |
| Heptano | 1 g (13,9%) | 1 g (12,9%) | 1 g (12,6%) | 1 g (12,1%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (55,5%) | 4 g (51,4%) | 4 g (50,4%) | 4 g (48,4%) |
| PPA-PK1R | PPA-PK2R | PPA-PK5 | PPA-PK6 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (26,2%) | 0,5 g (20,2%) | 0,5 g (18,9%) | 0,5 g (16,5%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,57 g (23,6%) | 0,73 g (27,7%) | 1,05 g (35,5%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (10,5%) | 0,2 g (8,1%) | 0,2 g (7,6%) | 0,2 g (6,8%) |
| HPMC | 0,01 g (0,5%) | 0,01 g (0,4%) | 0,01 g (0,4%) | 0,01 g (0,3%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (62,8%) | 1,2 g (48,4%) | 1,2 g (45,5%) | 1,2 g (40,5%) |
| PPA-PK1R | PPA-PK2R | PPA-PK5 | PPA-PK6 | |
| 5 horas | 336,8 | 553,1 | 291,5 | 186,7 |
| 16 horas | 879,5 | 1702,4 | 1172,5 | 873,1 |
| 20 horas | 1091,2 | 2031,2 | 1711,5 | 1204,3 |
| 24 horas | 1324,0 | 2378,4 | 2222,7 | 1628,0 |
| PPA-PK1R | PPA-PK2R | PPA-PK5 | PPA-PK6 | |
| Concentración de exceso de K_{3}PO_{4} | 0,2% | 6,2% | 16,4% | |
| pH | 7 | 9,72 | 10,17 | 10,44 |
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
para PPA-PK2R (2378,4 \mug/cm^{2}, Tabla 25) con
una concentración de exceso de K_{3}PO_{4} calculada del 0,2%
fue aproximadamente dos veces superior a la de la formulación sin
K_{3}PO_{4} (PPA-PK1R, 1324,0 \mug/cm^{2}).
Este resultado indicó que la permeación de PPA-HCl
podía potenciarse con una concentración de exceso de K_{3}PO_{4}
tan baja como del
0,2%.
0,2%.
La cantidad acumulada de PPA-HCl
a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas permaneció
casi la misma cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4}
en el parche seco se aumentó desde el 0,2% hasta el 6,2% (Tablas 25
y 26). Cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4} en el
parche seco se aumentó adicionalmente desde el 6,2% hasta el 16,4%
(Tabla 26), la cantidad acumulada de PPA-HCl a
través de piel de cadáver humano a las 24 horas disminuyó desde
2222,7 hasta 1628,0 \mug/cm^{2}. Esta disminución en el flujo
puede deberse a que la alta concentración de K_{3}PO_{4} hizo
que la matriz adhesiva se volviera más hidrófoba y se redujo la
cantidad de K_{3}PO_{4} que podía disolverse mediante la
pequeña cantidad de agua en la parte superior de la piel.
El pH del parche de PPA-HCl
medido utilizando los procedimientos enumerados anteriormente
aumentó desde 7 hasta 9,72 cuando la concentración de exceso de
K_{3}PO_{4} calculada en el parche seco se incrementó desde el
0% hasta el 23% (o concentración de exceso de K_{3}PO_{4} del
0,2%, Tablas 24 y 26). El pH del parche de PPA-HCl
aumentó desde 9,72 hasta 10,44 cuando la concentración de exceso de
K_{3}PO_{4} en el parche seco se aumentó adicionalmente desde
el 0,2% hasta el 16,4% (Tabla 26).
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
estradiol. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 27 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de fosfato de potasio tribásico (K_{3}PO_{4}) fue de 0 g, 0,1
g, 0,3 g y 0,48 g para las formulaciones nº Est-PK1,
-PK2, -PK3 y -PK4, respectivamente. Los parches de matriz se
prepararon y valoraron utilizando los mismos procedimientos que se
exponen en el ejemplo 1. El peso porcentual teórico para cada
componente después del secado (calculado asumiendo que todos los
componentes volátiles se habían eliminado completamente durante el
secado) se expone en la Tabla 28. Se calculó la cantidad acumulada
de estradiol a través de la piel de cadáver humano utilizando las
concentraciones de estradiol medidas en las disoluciones
receptoras, que se muestran en la Tabla 29 y la figura 8.
Como no se espera que el estradiol reaccione con
K_{3}PO_{4}, la concentración de K_{3}PO_{4} enumerada en
la Tabla 28 es igual a la concentración de exceso de
K_{3}PO_{4}.
Se determinó el pH de cada parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la
Tabla 30.
| Est-PK1 | Est-PK2 | Est-PK3 | Est-PK4 | |
| Estradiol | 0,03 g (0,5%) | 0,03 g (0,5%) | 0,03 g (0,5%) | 0,03 g (0,4%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (8,0%) | 0,5 g (7,8%) | 0,5 g (7,6%) | 0,5 g (7,4%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,1 g (1,6%) | 0,3 g (4,6%) | 0,48 g (7,1%) |
| Agua DI | 0,5 g (8,0%) | 0,5 g (7,8%) | 0,5 g (7,6%) | 0,5 g (7,4%) |
TABLA 27
(continuación)
| Est-PK1 | Est-PK2 | Est-PK3 | Est-PK4 | |
| Propilenglicol | 0,25 g (4,0%) | 0,25 g (3,9%) | 0,25 g (3,8%) | 0,25 g (3,7%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (63,7%) | 4 g (62,7%) | 4 g (60,8%) | 4 g (59,2%) |
| Heptano | 1 g (15,9%) | 1 g (15,7%) | 1 g (15,2%) | 1 g (14,8%) |
| Est-PK1 | Est-PK2 | Est-PK3 | Est-PK4 | |
| Estradiol | 0,03 g (2,0%) | 0,03 g (1,9%) | 0,03 g (1,7%) | 0,03 g (1,5%) |
| K_{3}PO_{4} | 0 | 0,1 g (6,3%) | 0,3 g (16,9%) | 0,48 g (24,5%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (16,9%) | 0,25 g (15,8%) | 0,25 g (14,0%) | 0,25 g (12,8%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (81,1%) | 1,2 g (76,0%) | 1,2 g (67,4%) | 1,2 g (61,2%) |
| Est-PK1 | Est-PK2 | Est-PK3 | Est-PK4 | |
| 5 horas | 0,2 | 1,2 | 2,1 | 1,5 |
| 16,5 horas | 0,4 | 3,9 | 7,6 | 3,7 |
| 20 horas | 0,5 | 4,6 | 8,8 | 4,4 |
| 24 horas | 0,6 | 5,6 | 10,2 | 5,3 |
| Est-PK1 | Est-PK2 | Est-PK3 | Est-PK4 | |
| Concentración de exceso de K_{3}PO_{4} | 0% | 6,3% | 16,9% | 24,5% |
| pH | 6,4 | 8,89 | 10,83 | 9,87 |
La cantidad acumulada de estradiol que penetró a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas para
Est-PK2 (5,6 \mug/cm^{2}, Tabla 9) con una
concentración de exceso de K_{3}PO_{4} calculada del 6,3% fue
aproximadamente nueve veces superior a la de la formulación sin
K_{3}PO_{4} (Est-PK1, 0,6 \mug/cm^{2}). Este
resultado indicó que la permeación de estradiol se potencia
mediante K_{3}PO_{4}. La cantidad acumulada de estradiol a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde el
5,6 hasta 10,2 cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4}
en el parche seco se aumentó desde el 6,3% hasta el 16,9% (Tablas
29 y 30). Cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4} en
el parche seco se aumentó adicionalmente desde el 16,9% hasta el
24,5% (Tabla 30), la cantidad acumulada de estradiol a través de
piel de cadáver humano a las 24 horas disminuyó desde 10,2 hasta
5,3 \mug/cm^{2}. Esta disminución en el flujo puede deberse a
que la alta concentración de K_{3}PO_{4} hizo que la matriz
adhesiva se volviera más hidrófoba y se redujo la cantidad de
K_{3}PO_{4} que podía disolverse mediante la pequeña cantidad
de agua en la parte superior de la piel.
El pH del parche de estradiol medido utilizando
los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde 6,4 hasta
10,83 cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4} calculada
en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el 16,9%. Sin
embargo, el pH del parche de estradiol disminuyó desde 10,83 hasta
9,87 cuando la concentración de exceso de K_{3}PO_{4} en el
parche seco se aumentó adicionalmente desde el 16,9% hasta el
24,5%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
estradiol. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 31 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de carbonato de sodio (Na_{2}CO_{3}) fue de 0 g, 0,11 g, 0,3 g
y 0,45 g para las formulaciones nº Est-PC1, -PC2,
-PC3 y -PC4, respectivamente. Los parches de matriz se prepararon y
valoraron utilizando los mismos procedimientos que se exponen en el
ejemplo 1. El peso porcentual teórico para cada componente después
del secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles
se habían eliminado completamente durante el secado) se expone en la
Tabla 32. Se calculó la cantidad acumulada de estradiol a través de
la piel de cadáver humano utilizando las concentraciones de
estradiol medidas en las disoluciones receptoras, que se muestran
en la Tabla 33 y la figura 9.
Como no se espera que el estradiol reaccione con
Na_{2}CO_{3}, la concentración de Na_{2}CO_{3} enumerada en
la Tabla 32 es igual a la concentración de exceso de
Na_{2}CO_{3}.
Se determinó el pH de cada parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la
Tabla 34.
| Est-PC1 | Est-PC2 | Est-PC3 | Est-PC4 | |
| Estradiol | 0,03 g (0,5%) | 0,03 g (0,4%) | 0,03 g (0,4%) | 0,03 g (0,4%) |
| Na_{2}CO_{3} | 0 | 0,11 g (1,6%) | 0,3 g (4,1%) | 0,45 g (6,1%) |
| Agua DI | 0,5 g (8,0%) | 1,2 g (16,9%) | 1,2 g (16,5%) | 1,2 g (16,2%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (8,0%) | 0,5 g (7,1%) | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,7%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (63,7%) | 4 g (56,4%) | 4 g (55,0%) | 4 g (53,8%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (4,0%) | 0,25 g (3,5%) | 0,25 g (3,4%) | 0,25 g (3,4%) |
| Heptano | 1 g (15,9%) | 1 g (14,1%) | 1 g (13,7%) | 1 g (13,5%) |
| Est-PC1 | Est-PC2 | Est-PC3 | Est-PC4 | |
| Estradiol | 0,03 (2,0%) | 0,03 (1,9%) | 0,03 (1,7%) | 0,03 (1,6%) |
| Na_{2}CO_{3} | 0 | 0,11 g (6,9%) | 0,3 g (16,9%) | 0,45 g (23,3%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (81,1%) | 1,2 g (75,5%) | 1,2 g (67,4%) | 1,2 g (62,2%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (16,9%) | 0,25 g (15,7%) | 0,25 g (14,0%) | 0,25 g (13,0%) |
| Est-PC1 | Est-PC2 | Est-PC3 | Est-PC4 | |
| 5 horas | 0,1 | 0,4 | 0,1 | 0,1 |
| 16,5 horas | 0,2 | 0,9 | 0,4 | 0,6 |
| 20 horas | 0,3 | 1,1 | 0,6 | 1,0 |
| 24 horas | 0,3 | 1,4 | 1,0 | 1,4 |
| Est-PC1 | Est-PC2 | Est-PC3 | Est-PC4 | |
| Concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} | 0% | 6,9% | 16,9% | 23,3% |
| pH | 7,48 | 9,87 | 10,51 | 10,49 |
La cantidad acumulada de estradiol que penetró a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas para
Est-PC2 (1,4 \mug/cm^{2}, Tabla 33) con una
concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} calculada del 6,9% fue
aproximadamente cuatro veces superior a la de la formulación sin
Na_{2}CO_{3} (Est-PC1, 0,3 \mug/cm^{2}).
Este resultado indicó que Na_{2}CO_{3} podía potenciar la
permeación de estradiol.
La cantidad acumulada de estradiol a través de la
piel de cadáver humano a las 24 horas permaneció casi la misma
cuando la concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} en el parche
seco se aumentó desde el 6,9% hasta el 23,3% (Tablas 33 y 34). Este
comportamiento puede deberse a que la cantidad de Na_{2}CO_{3}
que podía disolverse mediante la pequeña cantidad de agua en la
parte superior de la piel permaneció casi la misma para
Est-PC1, Est-PC2,
Est-PC3 y
Est-PC4.
Est-PC4.
El pH del parche de estradiol medido utilizando
los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde 7,48
hasta 10,51 cuando la concentración de exceso de Na_{2}CO_{3}
calculada en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el
16,9%. Sin embargo, el pH del parche de estradiol permaneció casi el
mismo cuando la concentración de exceso de Na_{2}CO_{3} en el
parche seco se aumentó adicionalmente desde el 16,9% hasta el
23,3%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
estradiol. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 35 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de óxido de magnesio (MgO) fue de 0 g, 0,11 g, 0,3 g y 0,45 g para
las formulaciones nº Est-PM1, -PM2, -PM3 y -PM4,
respectivamente. Los parches de matriz se prepararon y valoraron
utilizando los mismos procedimientos que se exponen en el ejemplo
1. El peso porcentual teórico para cada componente después del
secado (calculado asumiendo que todos los componentes volátiles se
habían eliminado completamente durante el secado) se expone en la
Tabla 36. Se calculó la cantidad acumulada de estradiol a través de
la piel de cadáver humano utilizando las concentraciones de
estradiol medidas en las disoluciones receptoras, que se muestran
en la Tabla 37 y la figura 10.
Como no se espera que el estradiol reaccione con
MgO, la concentración de MgO enumerada en la Tabla 36 es igual a la
concentración de exceso de MgO.
Se determinó el pH de cada parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la
Tabla 38.
| Est-PM1 | Est-PM2 | Est-PM3 | Est-PM4 | |
| Estradiol | 0,03 g (0,5%) | 0,03 g (0,4%) | 0,03 g (0,4%) | 0,03 g (0,4%) |
| MgO | 0 | 0,11 g (1,6%) | 0,3 g (4,1%) | 0,45 g (6,1%) |
| Agua DI | 0,5 g (8,0%) | 1,2 g (16,9%) | 1,2 g (16,5%) | 1,2 g (16,2%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (8,0%) | 0,5 g (7,1%) | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,7%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (63,7%) | 4 g (56,4%) | 4 g (55,0%) | 4 g (53,8%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (4,0%) | 0,25 g (3,5%) | 0,25 g (3,4%) | 0,25 g (3,4%) |
| Heptano | 1 g (15,9%) | 1 g (14,1%) | 1 g (13,7%) | 1 g (13,5%) |
| Est-PM1 | Est-PM2 | Est-PM3 | Est-PM4 | |
| Estradiol | 0,03 g (2,0%) | 0,03 g (1,9%) | 0,03 g (1,7%) | 0,03 g (1,6%) |
| MgO | 0 | 0,11 g (6,9%) | 0,3 g (16,9%) | 0,45 g (23,3%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (81,1%) | 1,2 g (75,5%) | 1,2 g (67,4%) | 1,2 g (62,2%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (16,9%) | 0,25 g (15,7%) | 0,25 g (14,0%) | 0,25 g (13,0%) |
| Est-PM1 | Est-PM2 | Est-PM3 | Est-PM4 | |
| 4,75 horas | 0,08 | 0,09 | 0,05 | 0,02 |
| 15,75 horas | 0,21 | 0,31 | 0,19 | 0,13 |
| 19,75 horas | 0,26 | 0,41 | 0,26 | 0,19 |
| 23,75 horas | 0,32 | 0,53 | 0,36 | 0,27 |
| Est-PM1 | Est-PM2 | Est-PM3 | Est-PM4 | |
| Concentración de exceso de MgO | 0% | 6,9% | 16,9% | 23,3% |
| pH | 7,48 | 8,95 | 9,66 | 10,28 |
La cantidad acumulada de estradiol que penetró a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas para
Est-PM2 (0,53 \mug/cm^{2}, Tabla 37) con una
concentración de exceso de MgO calculada del 6,9% fue ligeramente
superior a la de la formulación sin K_{3}PO_{4}
(Est-PM1, 0,32 \mug/cm^{2}). Este resultado
indicó que MgO potencia la permeación de estradiol. La cantidad
acumulada de estradiol a través de la piel de cadáver humano a las
24 horas disminuyó desde 0,53 hasta 0,27 \mug/cm^{2}cuando la
concentración de exceso de MgO en el parche seco se aumentó desde el
6,9% hasta el 23,3% (Tablas 23 y 24). Este comportamiento puede
deberse a que la alta concentración de MgO hizo que la matriz
adhesiva se volviera más hidrófoba y se redujo la cantidad de MgO
que podía disolverse mediante la pequeña cantidad de agua en la
parte superior de la piel.
El pH del parche de estradiol medido utilizando
los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde 7,48
hasta 10,28 cuando la concentración de exceso de MgO calculada en
el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el 23,3%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
clorhidrato de fenilpropanolamina (PPA-HCl). Las
formulaciones utilizadas para preparar estos sistemas se enumeran en
la Tabla 39 que incluye el peso y el porcentaje en peso de cada
componente de las formulaciones. El peso de óxido de magnesio (MgO)
fue de 0 g, 0,11 g, 0,26 g y 0,50 g para las formulaciones nº
PPA-PM1, -PM2, -PM3 y -PM4, respectivamente. Los
parches de matriz se prepararon y valoraron utilizando los mismos
procedimientos que se exponen en el ejemplo 3. El peso porcentual
teórico para cada componente después del secado (calculado
asumiendo que todos los componentes volátiles se habían eliminado
completamente durante el secado) se enumera en la Tabla 40. Se
calculó la cantidad acumulada de PPA-HCl a través
de la piel de cadáver humano utilizando las concentraciones de
PPA-HCl medidas en las disoluciones receptoras, que
se mostraron en la Tabla 41 y figura 11.
Como el PPA-HCl es una sal de una
base libre, reacciona con MgO. La concentración de MgO en el sistema
después de que se complete la reacción depende de la cantidad de
PPA-HCl añadido. La concentración residual de MgO
después de que se complete la reacción se define como
"concentración de exceso de MgO", que se calcula mediante la
siguiente ecuación.
[MgO_{exceso}] =
[MgO_{total}] - [MgO_{necesario\ para\ la\
neutralización}]
Se calcularon las concentraciones de exceso de
MgO para los cuatro sistemas de PPA-HCl, nº
PPA-PM1, -PM2, -PM3 y -PM4 y se enumeran en la Tabla
42.
Se midió el pH del parche utilizando el
procedimiento del ejemplo 1 y los resultados se enumeran en la Tabla
42.
| PPA-PM1 | PPA-PM2 | PPA-PM3 | PPA-PM4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,0%) | 0,5 g (5,9%) | 0,5 g (5,7%) |
| MgO | 0 | 0,11 g (1,3%) | 0,26 g (3,1%) | 0,50 g (5,7%) |
| Agua DI | 1,0 g (13,9%) | 2,0 g (24,0%) | 2,0 g (23,6%) | 2,0 g (22,9%) |
| Alcohol metílico | 0,5 g (6,9%) | 0,5 g (6,0%) | 0,5 g (5,9%) | 0,5 g (5,7%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (2,8%) | 0,2 g (2,4%) | 0,2 g (2,4%) | 0,2 g (2,3%) |
| HPMC | 0,02 g (0,3%) | 0,02 g (0,2%) | 0,02 g (0,2%) | 0,02 g (0,2%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (55,4%) | 4 g (48,0%) | 4 g (47,2%) | 4 g (45,9%) |
| Heptano | 1,0 g (13,9%) | 1,0 g (12,0%) | 1,0 g (11,8%) | 1,0 g (11,5%) |
| PPA-PM1 | PPA-PM2 | PPA-PM3 | PPA-PM4 | |
| PPA-HCl | 0,5 g (26,0%) | 0,5 g (24,6%) | 0,5 g (22,9%) | 0,5 g (20,7%) |
| MgO | 0 | 0,11 g (5,4%) | 0,26 g (11,9%) | 0,50 g (20,7%) |
| Propilenglicol | 0,2 g (10,4%) | 0,2 g (9,9%) | 0,2 g (9,2%) | 0,2 g (8,3%) |
| HPMC | 0,02 g (1,0%) | 0,02 g (1,0%) | 0,02 g (0,9%) | 0,02 g (0,8%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (62,5%) | 1,2 g (59,1%) | 1,2 g (55,0%) | 1,2 g (49,6%) |
| PPA-PM1 | PPA-PM2 | PPA-PM3 | PPA-PM4 | |
| 5 horas | 18,7 | 296,8 | 222,1 | 489,4 |
| 15 horas | 77,8 | 621,5 | 1362,9 | 1255,2 |
| 19 horas | 102,7 | 711,4 | 1920,9 | 1524,9 |
| 24 horas | 129,8 | 801,9 | 2533,4 | 1831,3 |
| PPA-PM1 | PPA-PM2 | PPA-PM3 | PPA-PM4 | |
| Concentración de exceso de MgO | 0,1% | 7,0% | 16,2% | |
| pH | 7,89 | 9,60 | 10,09 | 10,10 |
La cantidad acumulada de PPA-HCl
que penetró a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas
para PPA-PM2 (801,0 \mug/cm^{2}, Tabla 41) con
una concentración de exceso de MgO calculada del 0,1% fue
aproximadamente seis veces superior a la de la formulación sin MgO
(PPA-PM1, 129,8 \mug/cm^{2)}). Este resultado
indicó que la permeación de PPA-HCl se potencia con
una concentración de exceso de MgO tan baja como del 0,1%.
La cantidad acumulada de PPA-HCl
a través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
801,9 hasta 2533,4 \mug/cm^{2} cuando la concentración de
exceso de MgO en el parche seco se aumentó desde el 0,1% hasta el
7,0% (Tablas 41 y 42). Cuando la concentración de exceso de MgO en
el parche seco se aumentó adicionalmente desde el 7,0% hasta el
16,2% (Tabla 42), la cantidad acumulada de PPA-HCl
a través de piel de cadáver humano a las 24 horas disminuyó desde
2533,4 hasta 1831,3 \mug/cm^{2}. Esta disminución en el flujo
puede deberse a que la alta concentración de MgO hizo que la matriz
adhesiva se volviera más hidrófoba y se redujo la cantidad de MgO
que podía disolverse mediante la pequeña cantidad de agua en la
parte superior de la piel.
El pH del parche de PPA-HCl
medido utilizando los procedimientos enumerados anteriormente
aumentó desde 7,89 hasta 9,60 cuando la concentración de exceso de
MgO calculada en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el
5,4% (o concentración de exceso de MgO del 0,1%, Tablas 40 y 42). El
pH de PPA-HCl permaneció casi el mismo cuando la
concentración de exceso de MgO en el parche seco se incrementó
adicionalmente desde el 0,1% hasta el 16,2% (Tabla 42).
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando tres sistemas transdérmicos de
leuprolide. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 43 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio fue de 0 g, 0,0125 g y 0,0275 g para las
formulaciones nº Leu-S1, nº Leu-S2 y
nº Leu-S3, respectivamente. Se agitó cada
formulación hasta que la disolución fue uniforme.
Se realizó la permeación in vitro de cada
disolución de leuprolide a través de la piel de un cadáver humano
utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño apropiado y
se colocó sobre una superficie plana con la cara del estrato córneo
hacia arriba. La piel se sujetó con pinzas entre las cámaras
donante y receptora de la celda de difusión y se dejó que el estrato
córneo se secara. Se aplicó la disolución de leuprolide al estrato
córneo utilizando una micropipeta. Cada formulación se aplicó con
una dosificación de 25 \mul y una dosificación de 50 \mul para
un total de 6 grupos de prueba. Se selló la cámara receptora para
aislarla de la atmósfera utilizando una envoltura de Parafilm de
manera que estaba a prueba de vertido y era hermética, Se
utilizaron tres celdas de difusión para cada grupo de prueba para
un total de 18 celdas.
Se llenaron las celdas con agua desionizada. Se
había desgasificado el agua DI para eliminar las burbujas de aire.
Se apartó completamente la disolución receptora y se sustituyó agua
DI fresca en cada punto de tiempo. Se tomaron muestras de la
disolución receptora y se analizaron mediante HPLC (cromatografía
líquida de alta presión) para determinar la concentración de
leuprolide. Se calculó la cantidad acumulada de leuprolide a través
de la piel de cadáver humano (Tabla 44) utilizando las
concentraciones de leuprolide medidas en las disoluciones
receptoras para cada punto de tiempo.
| Leu-S1 | Leu-S2* | Leu-S3* | |
| Leuprolide | 0,003 g (0,4%) | 6,4 x 10^{-4} g (0,18%) | 6,4 x 10^{-4} g (0,16%) |
| Agua DI | 0,45 g (64,0%) | 0,28 g (80,9%) | 0,33 g (80,3%) |
| NaOH | 0 g (0,0%) | 0,0125 g (3,6%) | 0,0275 g (6,7%) |
| Propilenglicol | 0,25 g (35,6%) | 0,053 g (15,3%) | 0,053 (13,0%) |
| * \begin{minipage}[t]{150mm} Las disoluciones Leu-S2 y Leu-S3 se prepararon utilizando 0,15 g de Leu-S1, añadiendo después la cantidad correcta de NaOH y agua DI. Puede que los porcentajes no den la suma del 100% debido al redondeo. \end{minipage} |
| Leu-S1 | Leu-S2 | Leu-S3 | Leu-S1 | Leu-S2 | Leu-S3 | |
| 25 \mul | 25 \mul | 25 \mul | 50 \mul | 50 \mul | 50 \mul | |
| 5 horas | 0,38 | 0,52 | 0,58 | 0,32 | 0,62 | 0,3 |
| 24 horas | 0,52 | 3,21 | 4,43 | 0,32 | 8,58 | 10,8 |
La cantidad acumulada de leuprolide a través de
la piel de cadáver humano para la dosificación de 25 \mul a las
24 horas aumentó desde 0,52 \mug/cm^{2} hasta 4,43
\mug/cm^{2} cuando la concentración de hidróxido de sodio
calculada en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el
6,7%. La cantidad acumulada de leuprolide a través de la piel de
cadáver humano para la dosificación de 50 \mul a las 24 horas
aumentó desde 0,32 \mug/cm^{2} hasta 10,8 \mug/cm^{2} cuando
la concentración de hidróxido de sodio calculada en el parche seco
se incrementó desde el 0% hasta el 6,7%. La cantidad acumulada de
leuprolide a través de piel de cadáver humano a las 24 horas desde
el grupo de dosificación de 50 \mul que contenía el 3,6% de NaOH
(Leu-S2) fue de 8,58 \mug/cm^{2} que era
aproximadamente 27 veces superior a la de la formulación sin NaOH
(0,32 \mug/cm^{2}, nº Leu-S1).
Se realizó la permeación in vitro de
oxitocina a través de la piel de cadáver humano utilizando celdas
de difusión de tipo Franz con un área de difusión de 1 cm^{2}. El
volumen de disolución receptora fue de 8 ml. Se cortó la piel de
cadáver humano hasta un tamaño apropiado y se colocó sobre una
superficie plana con la cara del estrato córneo hacia arriba. La
piel se sujetó con pinzas entre las cámaras donante y receptora de
la celda de difusión. Se utilizaron dieciocho celdas de difusión en
este estudio. Se introdujo una disolución acuosa (50 \mul) de
NaOH al 2% en las cámaras donantes de nueve celdas (celdas nº 1 a
9) y se introdujo una disolución acuosa (50 \mul) de NaOH al 4%
en las cámaras donantes de otras nueve celdas (celdas nº 10 a 18).
Una vez que se aplicó la disolución de NaOH, la cámara donante se
cubrió con Parafilm.
Después de 5 horas, la disolución de NaOH se lavó
de la piel para 3 celdas (celdas nº 1 a 3) que se trataron con
disolución de NaOH al 2% y 3 celdas (celdas nº 10 a 12) que se
trataron con disolución de NaOH al 4%. Después de 10 horas, la
disolución de NaOH se lavó de la piel para 3 celdas (celdas nº 4 a
6) que se trataron con disolución de NaOH al 2% y 3 celdas (celdas
nº 13 a 15) que se trataron con disolución de NaOH al 4%. Después de
24 horas, la disolución de NaOH se lavó de la piel para 3 celdas
(celdas nº 7 a 9) que se trataron con disolución de NaOH al 2% y 3
celdas (celdas nº 16 a 18) que se trataron con disolución de NaOH al
4%. Para lavar la disolución de NaOH, se eliminó el fluido receptor
y se sustituyó con agua DI fresca. Esto se realizó dos veces. Se
añadió agua Di a la cámara donante para diluir la disolución de
NaOH y después se eliminó la disolución donante. Esto se repitió
varias
veces.
veces.
Después de lavar la disolución de NaOH de la
piel, se eliminó completamente la disolución en la cámara donante y
se sustituyó por 50 \mul de disolución de oxitocina. La
formulación de la disolución de oxitocina se enumera en la Tabla 45.
Una vez que se aplicó la disolución de oxitocina, la cámara donante
se cubrió con Parafilm.
Se llenaron las celdas con agua DI como
disolución receptora. Se había desgasificado el agua DI para
eliminar las burbujas de aire. Se apartó completamente la
disolución receptora y se sustituyó agua DI fresca en cada punto de
tiempo. Se analizaron muestras tomadas mediante HPLC para determinar
la concentración de oxitocina en la disolución receptora. Se calculó
la cantidad acumulada de oxitocina a través de la piel de cadáver
humano utilizando las concentraciones de oxitocina medidas en las
disoluciones receptoras para cada punto de tiempo que se enumeran en
la Tabla 46.
| Oxitocina | 0,005 g |
| Agua DI | 0,6 g \; |
| Propilenglicol | 0,6 g \; |
| \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 4% durante 5 h \end{minipage} | \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 4% durante 15 h \end{minipage} | \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 4% durante 24 h \end{minipage} | |
| 5 horas | 118,95 | 202,28 | 193,82 |
| 15 horas | 200,66 | 222,45 | 232,72 |
| 24 horas | 225,52 | 231,58 | 236,80 |
Se realizó la permeación in vitro de
oxitocina a través de la piel de cadáver humano utilizando celdas de
difusión de tipo Franz con un área de difusión de 1 cm^{2}. El
volumen de disolución receptora fue de 8 ml. Se cortó la piel de
cadáver humano hasta un tamaño apropiado y se colocó sobre una
superficie plana con la cara del estrato córneo hacia arriba. La
piel se sujetó con pinzas entre las cámaras donante y receptora de
la celda de difusión. Se utilizaron dieciocho celdas de difusión en
este estudio. Se introdujo una disolución acuosa (50 \mul) de NaOH
al 0,25% en las cámaras donantes de nueve celdas (celdas nº 1 a 9) y
se introdujo una disolución acuosa (50 \mul) de NaOH al 1,0% en
las cámaras donantes de las otras nueve celdas (celdas nº 10 a 18).
Una vez que se aplicó la disolución de NaOH, la cámara donante se
cubrió con Parafilm.
Después de 5 horas, la disolución de NaOH se lavó
de la piel para 3 celdas (celdas nº 1 a 3) que se trataron con
disolución de NaOH al 0,5% y 3 celdas (celdas nº 10 a 12) que se
trataron con disolución de NaOH al 1,0%. Después de 11 horas, la
disolución de NaOH se lavó de la piel para 3 celdas (celdas nº 4 a
6) que se trataron con disolución de NaOH al 0,25% y 3 celdas
(celdas nº 13 a 15) que se trataron con disolución de NaOH al 1,0%.
Después de 24 horas, la disolución de NaOH se lavó de la piel para 3
celdas (celdas nº 7 a 9) que se trataron con disolución de NaOH al
0,25% y 3 celdas (celdas nº 16 a 18) que se trataron con disolución
de NaOH al 1,0%. Para lavar la disolución de NaOH, se eliminó el
fluido receptor y se sustituyó con agua DI fresca. Esto se realizó
dos veces. Se añadió agua DI a la cámara donante para diluir la
disolución de NaOH y después se eliminó la disolución donante. Esto
se repitió varias veces hasta que el pH de la disolución donante fue
inferior a 8.
Después de lavar la disolución de NaOH de la
piel, se eliminó completamente la disolución en la cámara donante y
se sustituyó por 50 \mul de disolución de oxitocina. La
formulación de la disolución de oxitocina se enumera en la Tabla 47.
Una vez que se aplicó la disolución de oxitocina, la cámara donante
se cubrió con Parafilm.
Se llenaron las celdas con agua DI como
disolución receptora. Se había desgasificado el agua DI para
eliminar las burbujas de aire. Se apartó completamente la disolución
receptora y se sustituyó agua DI fresca en cada punto de tiempo. Se
analizaron muestras tomadas mediante HPLC para determinar la
concentración de oxitocina en la disolución receptora. Se calculó la
cantidad acumulada de oxitocina a través de la piel de cadáver
humano utilizando las concentraciones de oxitocina medidas en las
disoluciones receptoras para cada punto de tiempo que se enumeran en
la Tabla 48.
| Oxitocina | 0,005 g |
| Agua DI | 0,6 g \; |
| Propilenglicol | 0,6 g \; |
| \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 1,0% durante 5 h \end{minipage} | \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 1,0% durante 11 h \end{minipage} | \begin{minipage}[t]{35mm} Piel tratada previamente mediante NaOH al 1,0% durante 24 h \end{minipage} | |
| 4,25 horas | 0,45 | 53,42 | 13,23 |
| 14,75 horas | 0,97 | 67,97 | 21,06 |
| 24 horas | 0,97 | 75,36 | 30,97 |
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
diclofenaco sódico. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 49 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio (NaOH) fue de 0 g, 0,035 g, 0,05 g y 0,1 g
para las formulaciones nº Diclo-P10, -P11, -P12 y
-P13, respectivamente. Se cubrió cada formulación sobre un papel
antiadherente y se secó en una estufa a 55ºC durante dos horas para
eliminar agua y otros disolventes. Se laminó la película fármaco en
adhesivo / papel antiadherente seca para dar una película de
refuerzo. Entonces, se cortó el laminado refuerzo / fármaco en
adhesivo / papel antiadherente en discos redondos con un diámetro de
11/16 pulgadas. El peso porcentual teórico para cada componente
después del secado (calculado asumiendo que todos los componentes
volátiles se habían eliminado completamente durante el secado) se
expone en la Tabla 50.
Se realizó la permeación in vitro de
diclofenaco sódico a través de la piel de un cadáver humano desde
estos discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un
área de difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora
fue de 8 ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño
deseado y se colocó sobre una superficie plana con la cara del
estrato córneo hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente del
laminado en disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo se
colocó y se presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el
estrato córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó con
pinzas entre las cámaras donante y receptora de la celda de difusión
con la cara de la piel hacia la disolución receptora. Se utilizaron
tres celdas de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con una disolución 10% de
etanol / 90% de agua. Se apartó completamente la disolución
receptora y se sustituyó por una disolución fresca de etanol / agua
en cada punto de tiempo. Se analizaron las muestras tomadas mediante
HPLC para determinar la concentración de diclofenaco sódico en la
disolución receptora. Se calculó la cantidad acumulada de
diclofenaco sódico a través de la piel de cadáver humano utilizando
las concentraciones de diclofenaco sódico medidas en las
disoluciones receptoras, que se muestran en la Tabla 51 y en la
figura 12.
Como no se espera que el diclofenaco sódico
reaccione con el NaOH, la concentración de NaOH enumerada en la
Tabla 50 es igual a la concentración de exceso de NaOH.
Se midió el pH del parche utilizando los
siguientes procedimientos. Se perforó un parche circular de 2,5
cm^{2}. Se pipetearon diez ml de agua purificada en un vial de
vidrio y se añadió una barra de agitación; se retiró el papel del
parche y se colocó en el vial junto con el parche. Entonces se
colocó el vial sobre una placa de agitación y se agitó la mezcla
agua / parche / papel durante 5 minutos, momento en el que el papel
se retiró del vial y se desechó. Se colocó de nuevo el vial sobre
una placa de agitación y se continuó la agitación durante 18 horas
adicionales. Después de 18 horas, se retiró la barra de agitación
del vial y se determinó el pH de la disolución utilizando un pHmetro
calibrado.
Los pH medidos para los sistemas transdérmicos de
diclofenaco sódico se enumeran en la Tabla 52.
| Diclo-P10 | Diclo-P11 | Diclo-P12 | Diclo-P13 | |
| Diclofenaco sódico | 0,6 g (9,2%) | 0,6 g (9,1%) | 0,6 g (9,0%) | 0,6 g (9,0%) |
| Propilenglicol | 0,9 g (13,9%) | 0,9 g (13,7%) | 0,9 g (13,6%) | 0,9 g (13,4%) |
| NaOH | 0 | 0,035 g (0,5%) | 0,05 g (0,8%) | 0,1 g (1,5%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (61,5%) | 4 g (60,9%) | 4 g (60,6%) | 4 g (59,7%) |
| Heptano | 1 g (15,4%) | 1 g (15,2%) | 1 g (15,2%) | 1 g (14,9%) |
| Agua Di | 0 | 0,035 g (0,5%) | 0,05 g (0,8%) | 0,1 g (1,5%) |
| Diclo-P10 | Diclo-P11 | Diclo-P12 | Diclo-P13 | |
| Diclofenaco sódico | 0,6 g (22,2%) | 0,6 g (21,9%) | 0,6 g (21,8%) | 0,6 g (21,4%) |
| Propilenglicol | 0,9 g (33,3%) | 0,9 g (32,9%) | 0,9 g (32,7%) | 0,9 g (32,1%) |
| NaOH | 0 | 0,035 g (1,3%) | 0,05 g (1,8%) | 0,1 g (3,6%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 1,2 g (44,4%) | 1,2 g (43,9%) | 1,2 g (43,6%) | 1,2 g (42,9%) |
| Diclo-P10 | Diclo-P11 | Diclo-P12 | Diclo-P13 | |
| 5 horas | 0,5 | 659,0 | 1437,8 | 2010,5 |
| 10,5 horas | 4,7 | 1587,6 | 2619,3 | 2992,9 |
| 20 horas | 18,8 | 2273,7 | 3263,0 | 3513,1 |
| 24 horas | 28,4 | 2439,6 | 3420,6 | 3647,3 |
| Diclo-P10 | Diclo-P11 | Diclo-P12 | Diclo-P13 | |
| Concentración de exceso de NaOH | 0 | 1,3 | 1,8 | 3,6 |
| pH | 7,17 | 10,59 | 10,72 | 11,28 |
La cantidad acumulada de diclofenaco sódico a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
28,4 \mug/cm^{2} hasta 3647,3 \mug/cm^{2} cuando la
concentración de hidróxido de sodio calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0% hasta el 3,6%. La cantidad acumulada de
diclofenaco sódico a través de la piel de cadáver humano a las 24
horas desde el sistema que contenía el 1,3% de NaOH
(Diclo-P11) fue de 2439,6 \mug/cm^{2}, que era
aproximadamente 85 veces superior a la de la formulación sin NaOH
(28,4 \mug/cm^{2}, nº Diclo-P10).
El pH del parche de diclofenaco sódico medido
utilizando los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde
7,17 hasta 11,28 cuando la concentración de hidróxido de sodio
calculada en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta el
3,6%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro geles transdérmicos de
diclofenaco sódico. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
geles se enumeran en la Tabla 53 que incluye el peso y el porcentaje
en peso de cada componente de las formulaciones. El peso de
hidróxido de sodio (NaOH) fue de 0 g, 0,02 g, 0,03 g y 0,05 g para
las formulaciones nº Diclo-DG25, -DG27, -DG28 y
-DG29, respectivamente.
Se realizó la permeación in vitro de
diclofenaco sódico a través de la piel de un cadáver humano desde
estos discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un
área de difusión de 1 cm^{2}. Se cortó la piel de cadáver humano
hasta un tamaño deseado y se sujetó con pinzas entre las cámaras
donante y receptora de la celda de difusión con la cara del estrato
córneo hacia la disolución donante. Se utilizaron tres celdas de
difusión para cada formulación.
Se utilizó una disolución 10% de etanol / 90% de
agua como la disolución receptora. El volumen de disolución
receptora fue de 8 ml. Se recogió la disolución receptora y se
sustituyó por una disolución fresca de etanol / agua en cada punto
de tiempo. Se analizó la disolución receptora recogida mediante HPLC
para determinar la concentración de diclofenaco sódico. Se calculó
la cantidad acumulada de diclofenaco sódico a través de la piel de
cadáver humano utilizando las concentraciones de diclofenaco sódico
medidas en las disoluciones receptoras, que se muestran en la Tabla
54 y en la figura 13.
Como no se espera que el diclofenaco sódico
reaccione con el NaOH, la concentración de NaOH enumerada en la
Tabla 53 es igual a la concentración de exceso de NaOH.
| Diclo-DG25 | Diclo-DG27 | Diclo-DG28 | Diclo-DG29 | |
| Diclofenaco sódico | 0,3 g (14,1%) | 0,3 g (13,8%) | 0,3 g (13,7%) | 0,3 g (13,50%) |
| Propilenglicol | 0,6 g (28,2%) | 0,6 g (27,6%) | 0,6 g (27,4%) | 0,6 g (26,9%) |
| Alcohol etílico | 1 g (46,9%) | 1 g (46,1%) | 1 g (45,7%) | 1 g (44,8%) |
| Agua DI | 0,2 g (9,4%) | 0,22 g (10,1%) | 0,23 g (10,5%) | 0,25 g (11,2%) |
| HPMC | 0,03 g (1,4%) | 0,03 g (1,4%) | 0,03 g (1,4%) | 0,03 g (1,3%) |
| NaOH | 0 | 0,02 g (0,9%) | 0,03 g (1,4%) | 0,05 g (2,2%) |
| Diclo-DG25 | Diclo-DG27 | Diclo-DG28 | Diclo-DG29 | |
| 5 horas | 16,8 | 50,6 | 175,9 | 585,2 |
| 10,5 horas | 29,8 | 147,5 | 503,5 | 1499,8 |
| 20 horas | 53,4 | 252,3 | 896,4 | 1988,1 |
| 24 horas | 65,3 | 270,4 | 1023,3 | 2036,8 |
| Diclo-DG25 | Diclo-DG27 | Diclo-DG28 | Diclo-DG29 | |
| Concentración de exceso de NaOH | 0 | 0,9 | 1,4 | 2,2 |
La cantidad acumulada de diclofenaco sódico a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
65,3 \mug/cm^{2} hasta 2036,8 \mug/cm^{2} cuando la
concentración de hidróxido de sodio calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0% hasta el 2,2% (Tabla 55). La cantidad
acumulada de diclofenaco sódico a través de la piel de cadáver
humano a las 24 horas desde el gel que contenía el 0% de NaOH
(Diclo-DG27) fue de 270,4 \mug/cm^{2}, que era
aproximadamente 4 veces superior a la de la formulación sin NaOH
(65,3 \mug/cm^{2}, nº Diclo-DG25).
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
testosterona. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 56 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio (NaOH) fue de 0 g, 0,02 g, 0,04 g y 0,075 g
para las formulaciones nº Test-P91, -P92, -P93 y
-P94, respectivamente. Se cubrió cada formulación sobre un papel
antiadherente y se secó en una estufa a 55ºC durante dos horas para
eliminar agua y otros disolventes. Se laminó la película fármaco en
adhesivo / papel antiadherente seca para dar una película de
refuerzo. Entonces, se cortó el laminado refuerzo / fármaco en
adhesivo / papel antiadherente en discos redondos con un diámetro de
11/16 pulgadas. El peso porcentual teórico para cada componente
después del secado (calculado asumiendo que todos los componentes
volátiles se habían eliminado completamente durante el secado) se
expone en la Tabla 57.
Se realizó la permeación in vitro de
testosterona a través de la piel de un cadáver humano desde estos
discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño deseado y se
colocó sobre una superficie plana con la cara del estrato córneo
hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente del laminado en
disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo se colocó y se
presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el estrato córneo.
El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó con pinzas entre
las cámaras donante y receptora de la celda de difusión con la cara
de la piel hacia la disolución receptora. Se utilizaron tres celdas
de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con una disolución 10% de
etanol / 90% de agua. Se apartó completamente la disolución
receptora y se sustituyó por una disolución fresca de etanol / agua
en cada punto de tiempo. Se analizaron las muestras tomadas mediante
HPLC para determinar la concentración de testosterona en la
disolución receptora. Se calculó la cantidad acumulada de
testosterona a través de la piel de cadáver humano utilizando las
concentraciones de testosterona medidas en las disoluciones
receptoras, que se muestran en la Tabla 58 y en la figura 14.
Como no se espera que la testosterona reaccione
con el NaOH, la concentración de NaOH enumerada en la Tabla 57 es
igual a la concentración de exceso de NaOH.
Se midió el pH del parche utilizando los
siguientes procedimientos. Se perforó un parche circular de 2,5
cm^{2}. Se pipetearon diez ml de agua purificada en un vial de
vidrio y se añadió una barra de agitación; se retiró el papel del
parche y se colocó en el vial junto con el parche. Entonces se
colocó el vial sobre una placa de agitación y se agitó la mezcla
agua / parche / papel durante 5 minutos, momento en el que el papel
se retiró del vial y se desechó. Se colocó de nuevo el vial sobre
una placa de agitación y se continuó la agitación durante 18 horas
adicionales.
Después de 18 horas, se retiró la barra de
agitación del vial y se determinó el pH de la disolución utilizando
un pHmetro calibrado. Los pH medidos para los sistemas transdérmicos
de testosterona se enumeran en la Tabla 59.
\vskip1.000000\baselineskip
| Test-P91 | Test-P92 | Test-P93 | Test-P94 | |
| Testosterona | 0,3 g (4,8%) | 0,3 g (4,7%) | 0,3 g (4,7%) | 0,3 g (4,7%) |
| Alcohol etílico | 0,5 g (7,9%) | 0,5 g (7,9%) | 0,5 g (7,8%) | 0,5 g (7,8%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (7,9%) | 0,5 g (7,9%) | 0,5 g (7,8%) | 0,5 g (7,8%) |
| NaOH | 0 | 0,02 g (0,3%) | 0,04 g (0,6%) | 0,075 g (1,2%) |
| Agua Di | 0 | 0,02 g (0,3%) | 0,04 g (0,6%) | 0,075 g (1,2%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (63,5%) | 4 g (63,1%) | 4 g (62,7%) | 4 g (62,0%) |
| Heptano | 1 g (15,9%) | 1 g (15,8%) | 1 g (15,7%) | 1 g (15,5%) |
\vskip1.000000\baselineskip
| Test-P91 | Test-P92 | Test-P93 | Test-P94 | |
| Testosterona | 0,3 g (15,0%) | 0,3 g (14,9%) | 0,3 g (14,7%) | 0,3 g (14,5%) |
| Propilenglicol | 0,5 g (25,0%) | 0,5 g (24,8%) | 0,5 g (24,5%) | 0,5 g (24,1%) |
| NaOH | 0 | 0,02 g (1,0%) | 0,04 g (2,0%) | 0,075 g (3,6%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (60,0%) | 1,2 g (59,4%) | 1,2 g (58,8%) | 1,2 g (57,8%) |
| Test-P91 | Test-P92 | Test-P93 | Test-P94 | |
| 5 horas | 1,9 | 7,3 | 36,1 | 76,1 |
| 16,25 horas | 4,3 | 28,5 | 78,0 | 147,8 |
| 20 horas | 5,3 | 36,6 | 89,5 | 168,8 |
| 25 horas | 7,4 | 49,9 | 108,0 | 199,4 |
| Test-P91 | Test-P92 | Test-P93 | Test-P94 | |
| Concentración de exceso de NaOH (% en peso) | 0 | 1,0 | 2,0 | 3,6 |
| pH | 7,14 | 9,17 | 10,04 | 10,32 |
La cantidad acumulada de testosterona a través de
la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde 7,4
\mug/cm^{2} hasta 199,4 \mug/cm^{2} cuando la concentración
de hidróxido de sodio calculada en el parche seco se incrementó
desde el 0% hasta el 3,6%. La cantidad acumulada de testosterona a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas desde el sistema
que contenía el 1,0% de NaOH (Test-P92) fue de 49,9
\mug/cm^{2}, que era aproximadamente seis veces superior a la de
la formulación sin NaOH (7,4 \mug/cm^{2}, nº
Test-P91). Este resultado indicó que la permeación
de testosterona podía potenciarse mediante una concentración de
exceso de NaOH tan baja como del 1,0%.
El pH del parche de testosterona medido
utilizando los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde
7,14 hasta 10,32 cuando la concentración de NaOH calculada en el
parche seco se incrementó desde el 0% hasta el 3,6%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando tres sistemas transdérmicos de HCl
de oxibutinina. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 60 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio (NaOH) fue de 0,15 g, 0,25 g y 0,35 g para las
formulaciones nº Oxy-P1, -P2 y -P3, respectivamente.
Se cubrió cada formulación sobre un papel antiadherente y se secó en
una estufa a 55ºC durante dos horas para eliminar agua y otros
disolventes. Se laminó la película fármaco en adhesivo / papel
antiadherente seca para dar una película de refuerzo. Entonces, se
cortó el laminado refuerzo / fármaco en adhesivo / papel
antiadherente en discos redondos con un diámetro de 11/16 pulgadas.
El peso porcentual teórico para cada componente después del secado
(calculado asumiendo que todos los componentes volátiles se habían
eliminado completamente durante el secado) se expone en la Tabla
61.
Se realizó la permeación in vitro de HCl
de oxibutinina a través de la piel de un cadáver humano desde estos
discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un área de
difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora fue de 8
ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño deseado y se
colocó sobre una superficie plana con la cara del estrato córneo
hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente del laminado en
disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo se colocó y se
presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el estrato córneo.
El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó con pinzas entre
las cámaras donante y receptora de la celda de difusión con la cara
de la piel hacia la disolución receptora. Se utilizaron tres celdas
de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con una disolución 10% de
etanol / 90% de agua. Se apartó completamente la disolución
receptora y se sustituyó por una disolución fresca de etanol / agua
en cada punto de tiempo. Se analizaron las muestras tomadas mediante
HPLC para determinar la concentración de HCl de oxibutinina en la
disolución receptora. Se calculó la cantidad acumulada de HCl de
oxibutinina a través de la piel de cadáver humano utilizando las
concentraciones de HCl de oxibutinina medidas en las disoluciones
receptoras, que se muestran en la Tabla 62.
| Oxy-P1 | Oxy-P2 | Oxy-P3 | |
| HCl de oxibutinina | 0,5 g (6,5%) | 0,5 g (6,3%) | 0,5 g (6,2%) |
| Agua DI | 0,65 g (8,4%) | 0,75 g (9,5%) | 0,85 g (10,5%) |
| NaOH | 0,15 g (1,9%) | 0,25 g (3,2%) | 0,35 g (4,3%) |
| Propilenglicol | 0,3 g (3,9%) | 0,3 g (3,8%) | 0,3 g (3,7%) |
| Triton X100 | 0,1 g (1,3%) | 0,1 g (1,3%) | 0,1 g (1,2%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (51,9%) | 4 g (50,6%) | 4 g (49,4%) |
| Metilal | 1 g (13,0%) | 1 g (12,7%) | 1 g (12,3%) |
| Heptano | 1 g (13,0%) | 1 g (12,7%) | 1 g (12,3%) |
| Oxy-P1 | Oxy-P2 | Oxy-P3 | |
| HCl de oxibutinina | 0,5 g (15,4%) | 0,5 g (14,9%) | 0,5 g (14,5%) |
| NaOH | 0,15 g (4,6%) | 0,25 g (7,5%) | 0,35 g (10,1%) |
| Propilenglicol | 0,3 g (9,2%) | 0,3 g (9,0%) | 0,3 g (8,7%) |
| Triton X100 | 0,1 g (3,1%) | 0,1 g (3,0%) | 0,1 g (2,9%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (36,9%) | 1,2 g (35,8%) | 1,2 g (34,8%) |
| Metilal | 1 g (30,8%) | 1 g (29,9%) | 1 g (29,0%) |
| Oxy-P1 | Oxy-P2 | Oxy-P3 | |
| 5 horas | 691,0 | 2108,7 | 1399,5 |
| 10,5 horas | 1259,4 | 2615,9 | 1865,9 |
| 25 horas | 1747,7 | 2853,5 | 2322,8 |
La cantidad acumulada de HCl de oxibutinina a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
1747,7 \mug/cm^{2} hasta 2322,8 \mug/cm^{2} cuando la
concentración de hidróxido de sodio calculada en el parche seco se
incrementó desde el 4,6% hasta el 10,1%.
Se llevó a cabo un estudio in vitro de la
permeación de la piel utilizando cuatro sistemas transdérmicos de
diclofenaco sódico. Las formulaciones utilizadas para preparar estos
sistemas se enumeran en la Tabla 63 que incluye el peso y el
porcentaje en peso de cada componente de las formulaciones. El peso
de hidróxido de sodio (NaOH) fue de 0 g, 0,01 g, 0,02 g y 0,05 g
para las formulaciones nº Diclo-P64, -P86, -P65 y
-P87, respectivamente. Se cubrió cada formulación sobre un papel
antiadherente y se secó en una estufa a 55ºC durante dos horas para
eliminar agua y otros disolventes. Se laminó la película fármaco en
adhesivo / papel antiadherente seca para dar una película de
refuerzo. Entonces, se cortó el laminado refuerzo / fármaco en
adhesivo / papel antiadherente en discos redondos con un diámetro de
11/16 pulgadas. El peso porcentual teórico para cada componente
después del secado (calculado asumiendo que todos los componentes
volátiles se habían eliminado completamente durante el secado) se
expone en la Tabla 64.
Se realizó la permeación in vitro de
diclofenaco sódico a través de la piel de un cadáver humano desde
estos discos utilizando celdas de difusión de tipo Franz, con un
área de difusión de 1 cm^{2}. El volumen de disolución receptora
fue de 8 ml. Se cortó la piel de cadáver humano hasta un tamaño
deseado y se colocó sobre una superficie plana con la cara del
estrato córneo hacia arriba. Se retiró el papel antiadherente del
laminado en disco. La película refuerzo / fármaco en adhesivo se
colocó y se presionó sobre la piel con la cara adhesiva hacia el
estrato córneo. El laminado piel / adhesivo / refuerzo se sujetó con
pinzas entre las cámaras donante y receptora de la celda de difusión
con la cara de la piel hacia la disolución receptora. Se utilizaron
doce celdas de difusión para cada formulación.
Se llenaron las celdas con una disolución 10% de
etanol / 90% de agua. En cada punto de tiempo, se midió el pH en el
punto de contacto entre la piel y el parche para tres celdas de
difusión eliminando el fluido receptor, eliminando la pinza y la
cámara donante, retirando suavemente el parche de la piel con
pinzas, dejando la piel sobre la cámara receptora, midiendo el pH de
la disolución sobre la piel colocando el microelectrodo directamente
sobre la superficie cutánea. Los pH medidos en el punto de contacto
piel / parche se enumeran en la Tabla 65. Para todas las otras
celdas, se apartó completamente el fluido receptor y se sustituyó
por una disolución fresca de etanol / agua. Se analizaron las
muestras tomadas mediante HPLC para determinar la concentración de
diclofenaco sódico en la disolución receptora. Se midió el pH de las
disoluciones receptoras tomadas mediante un pHmetro. Se calculó la
cantidad acumulada de diclofenaco sódico a través de la piel de
cadáver humano utilizando las concentraciones de diclofenaco sódico
medidas en las disoluciones receptoras, que se enumeran en la Tabla
67.
Como no se espera que el diclofenaco sódico
reaccione con el NaOH, la concentración de NaOH enumerada en la
Tabla 64 es igual a la concentración de exceso de NaOH.
Se midió el pH del parche utilizando los
siguientes procedimientos. Se perforó un parche circular de 2,5
cm^{2}. Se pipetearon diez ml de agua purificada en un vial de
vidrio y se añadió una barra de agitación; se retiró el papel del
parche y se colocó en el vial junto con el parche. Entonces se
colocó el vial sobre una placa de agitación y se agitó la mezcla
agua / parche / papel durante 5 minutos, momento en el que el papel
se retiró del vial y se desechó. Se colocó de nuevo el vial sobre
una placa de agitación y se continuó la agitación durante 18 horas
adicionales. Después de 18 horas, se retiró la barra de agitación
del vial y se determinó el pH de la disolución utilizando un pHmetro
calibrado. Los pH medidos para los sistemas transdérmicos de
diclofenaco sódico se enumeran en la Tabla 68.
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| Diclofenaco sódico | 0,6 g (9,2%) | 0,6 g (9,2%) | 0,6 g (9,2%) | 0,6 g (9,1%) |
| Propilenglicol | 0,9 g (13,8%) | 0,9 g (13,8%) | 0,9 g (13,8%) | 0,9 g (13,6%) |
| NaOH | 0 | 0,01 g (0,2%) | 0,02 g (0,3%) | 0,05 g (0,8%) |
| PIB adhesivo (30% sólido) | 4 g (61,5%) | 4 g (61,3%) | 4 g (61,2%) | 4 g (60,6%) |
| Heptano | 1 g (15,4%) | 1 g (15,3%) | 1 g (15,3%) | 1 g (15,2%) |
| Agua Di | 0 | 0,01 g (0,2%) | 0,02 g (0,3%) | 0,05 g (0,8%) |
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| Diclofenaco sódico | 0,6 g (22,2%) | 0,6 g (22,1%) | 0,6 g (22,1%) | 0,6 g (21,8%) |
| Propilenglicol | 0,9 g (33,3%) | 0,9 g (33,2%) | 0,9 g (33,1%) | 0,9 g (32,7%) |
| NaOH | 0 | 0,01 g (0,4%) | 0,02 g (0,7%) | 0,05 g (1,8%) |
| PIB adhesivo | 1,2 g (44,4%) | 1,2 g (44,3%) | 1,2 g (44,1%) | 1,2 g (43,6%) |
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| 3 horas | * | 11,0 | * | 10,3 |
| 6 horas | * | 11,0 | 11,2 | 9,8 |
| 10 horas | 8,5 | 10,9 | 10,7 | 10,2 |
| 24 horas | * | 9,7 | 10,1 | 9,4 |
- * No pueden medirse porque no hay suficiente disolución en el punto de contacto
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| 3 horas | 7,5 | 1,5 | 33,4 | 257,7 |
| 6 horas | 39,6 | 18,3 | 269,3 | 793,3 |
| 10 horas | 63,2 | 49,3 | 654,4 | 1652,2 |
| 24 horas | 34,6 | 227,7 | 1733,8 | 3257,7 |
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| 3 horas | 8,1 | 8,0 | 9,3 | 10,8 |
| 6 horas | 7,4 | 7,9 | 7,7 | 10,0 |
| 10 horas | 7,0 | 7,6 | 7,3 | 7,7 |
| 24 horas | 7,0 | 8,9 | 7,5 | 9,6 |
| Diclo-P64 | Diclo-P86 | Diclo-P65 | Diclo-P87 | |
| Concentración de exceso de NaOH (% en peso) | 0 | 0,4 | 0,7 | 1,8 |
| pH | 7,40 | 8,99 | 10,71 | 10,38 |
La cantidad acumulada de diclofenaco sódico a
través de la piel de cadáver humano a las 24 horas aumentó desde
34,6 \mug/cm^{2} hasta 3257,7 \mug/cm^{2} (Tabla 69) cuando
la concentración de exceso de NaOH calculada en el parche seco se
incrementó desde el 0% hasta el 1,8% (Tabla 64). La cantidad
acumulada de diclofenaco sódico a través de la piel de cadáver
humano a las 24 horas desde el sistema que contenía el 0,4% de NaOH
(Diclo-P86) fue de 227,7 \mug/cm^{2}, que era
aproximadamente seis veces superior a la de la formulación sin NaOH
(34,6 \mug/cm^{2}, nº Diclo-P64). Este resultado
indicó que la permeación de diclofenaco sódico a través de la piel
humana podía potenciarse mediante una concentración de NaOH tan baja
como del 0,4%.
Los pH del punto de contacto entre la piel y el
parche eran prácticamente iguales tal como se muestra en la Tabla
67, incluso cuando se aumentó la concentración de NaOH desde el 0,4%
hasta el 1,8%. Se observó que cuanto menor era la cantidad de
disolución en el punto de contacto, mayor era la concentración de
NaOH. Resultó difícil medir el pH en el punto de contacto entre la
piel y el parche para las formulaciones sin NaOH o con una
concentración baja de NaOH, porque no había suficiente disolución en
la parte superior de la piel.
Como la medición del pH para el punto de contacto
entre la piel y el parche puede resultar difícil para
concentraciones bajas de NaOH, se midieron los pH de las
disoluciones receptoras en varios puntos de tiempo. Los pH de las
disoluciones receptoras que se enumeran en la Tabla 67 indican que
los pH dependen del intervalo de tiempo entre las muestras, la
concentración de NaOH en el parche y el punto de tiempo. Los pH a
las 3 horas de punto de tiempo aumentaron desde 8,0 hasta 10,8
cuando la concentración de NaOH en el parche se incrementó desde el
0,4% hasta el 1,8%.
El pH del parche de diclofenaco sódico medido
utilizando los procedimientos enumerados anteriormente aumentó desde
7,40 hasta 10,38 cuando la concentración de exceso de NaOH calculada
en el parche seco se incrementó desde el 0% hasta 1,8% (Tabla
68).
Claims (30)
1. Utilización de (a) un fármaco seleccionado de
entre el grupo constituido por aminoácidos, agentes analgésicos,
agentes anestésicos, agentes anti-acné, agentes
antiartríticos, agentes antiarrítmicos, agentes antiasmásticos,
agentes antibióticos, agentes anticancerosos, agentes
anticolinérgicos, agentes anticonvulsivantes, agentes
antidepresivos, agentes antidiabéticos, agentes antidiarreicos,
agentes antifúngicos, agentes antiglaucomatosos, agentes
antihelmínticos, agentes antihistamínicos, agentes
antihiperlipidémicos, agentes antihipertensivos, preparaciones
antimigrañosas, agentes antieméticos, agentes antineoplásicos,
fármacos antiparkinsonianos, agentes antipruríticos, agentes
antipsoriásicos, agentes antipsicóticos, agentes antipiréticos,
agentes antiespasmódicos, agentes antituberculosos, agentes
antiulcerosos, agentes antivíricos, agentes ansiolíticos, supresores
del apetito, fármacos para el trastorno por déficit de atención
(ADD) y el trastorno por déficit de atención e hiperactividad
(ADHD), betabloqueantes, fármacos bloqueantes de los canales del
calcio, estimulantes del sistema nervioso central,
descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos, materiales genéticos,
remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes hipnóticos, agentes
hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores, inhibidores de los
leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes musculares,
antagonistas narcóticos, nicotina, agentes parasimpaticolíticos,
fármacos peptídicos, psicoestimulantes, sedantes, esteroides,
simpaticomiméticos, tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y
combinaciones de los mismos, en el que
\hbox{el fármaco
es} - (i)
- un fármaco básico en forma de una base libre,
- (ii)
- un fármaco ácido en forma de un ácido libre,
- (iii)
- un fármaco ácido en forma de una sal de adición básica o
- (iv)
- un compuesto no ionizable; y
(b) una cantidad de un hidróxido inorgánico
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la superficie
corporal sin producir lesión de la misma, en el que el hidróxido
inorgánico se selecciona de entre el grupo constituido por
hidróxidos metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes e
hidróxido de amonio, en el que la cantidad de hidróxido inorgánico
en la formulación aplicada en la superficie corporal es el total de
(a) la cantidad requerida para neutralizar cualquier especie ácida
en la formulación más (b) una cantidad igual a entre 0,5% en peso y
4,0% en peso de la formulación;
para la preparación de una formulación
farmacéutica adecuada para la administración tópica o transdérmica
del fármaco para administrar el fármaco en una región localizada de
la superficie corporal de un paciente humano para potenciar el flujo
de un fármaco a través de una superficie corporal,
y en la que tras la aplicación en la superficie
corporal, la formulación proporciona un pH en el punto de contacto
entre la superficie corporal y la formulación en el intervalo
comprendido entre 8,5 y 13.
2. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el PH está en el intervalo comprendido entre 8,5 y 11,5.
3. Utilización según la reivindicación 1, en la
que la superficie corporal es piel.
4. Utilización según la reivindicación 1, en la
que la superficie corporal es tejido mucoso.
5. Utilización según la reivindicación 1, en la
que la formulación es una formulación acuosa y se selecciona de
entre el grupo constituido por una crema, un gel, una loción y una
pasta.
6. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el hidróxido inorgánico se selecciona de entre el grupo
constituido por hidróxido de amonio, hidróxido de sodio, hidróxido
de calcio, hidróxido de potasio, hidróxido de magnesio y mezclas de
los mismos.
7. Utilización según la reivindicación 6, en la
que el hidróxido inorgánico es hidróxido de sodio.
8. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco es un fármaco ácido en la forma de un ácido libre y
la cantidad en (a) es la cantidad necesaria para neutralizar el
fármaco ácido y cualquier otra especie ácida en la formulación.
9. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco es un fármaco básico en la forma de una base
libre.
10. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco es una sal de adición de base de un compuesto
ácido.
11. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco y el hidróxido inorgánico se administran mediante
aplicación de un dispositivo de administración de fármacos en la
región localizada de la superficie corporal del paciente, formando
así un punto de contacto entre la superficie corporal y el
dispositivo de administración, comprendiendo el dispositivo el
fármaco y el hidróxido inorgánico y presentando una capa de refuerzo
externa que sirve como superficie externa del dispositivo durante la
utilización.
12. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco se administra en combinación con un potenciador
adicional de la permeación.
13. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el fármaco y el hidróxido inorgánico se administran sin ningún
potenciador adicional de la permeación.
14. Composición para la administración de un
fármaco a través de una superficie corporal, que comprende una
formulación acuosa siguiente:
(a) una cantidad terapéuticamente eficaz de un
fármaco seleccionado de entre el grupo constituido por aminoácidos,
agentes analgésicos, agentes anestésicos, agentes
anti-acné, agentes antiartríticos, agentes
antiarrítmicos, agentes antiasmásticos, agentes antibióticos,
agentes anticancerosos, agentes anticolinérgicos, agentes
anticonvulsivantes, agentes antidepresivos, agentes antidiabéticos,
agentes antidiarreicos, agentes antifúngicos, agentes
antiglaucomatosos, agentes antihelmínticos, agentes
antihistamínicos, agentes antihiperlipidémicos, agentes
antihipertensivos, preparaciones antimigrañosas, antieméticos,
agentes antineoplásicos, fármacos antiparkinsonianos, agentes
antipruríticos, agentes antipsoriásicos, agentes antipsicóticos,
agentes antipiréticos, agentes antiespasmódicos, agentes
antituberculosos, agentes antiulcerosos, agentes antivíricos,
agentes ansiolíticos, supresores del apetito, fármacos para el
trastorno por déficit de atención (ADD) y el trastorno por déficit
de atención e hiperactividad (ADHD), betabloqueantes, fármacos
bloqueantes de los canales del calcio, estimulantes del sistema
nervioso central, descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos,
materiales genéticos, remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes
hipnóticos, agentes hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores,
inhibidores de los leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes
musculares, antagonistas narcóticos, nicotina, parasimpaticolíticos,
fármacos peptídicos, psicoestimulantes, sedantes, esteroides,
simpaticomiméticos, tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y
combinaciones de los mismos, en la que
\hbox{el fármaco
es} - (i)
- un fármaco básico en forma de una base libre,
- (ii)
- un fármaco ácido en forma de un ácido libre,
- (iii)
- un fármaco ácido en forma de una sal de adición de base o
- (iv)
- un compuesto no ionizable; y
(b) un hidróxido inorgánico en una cantidad de
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la superficie
corporal sin producir lesión en la misma, en el que el hidróxido
inorgánico se selecciona del grupo que consiste en hidróxidos
metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes e hidróxido
de amonio, en el que la cantidad de hidróxido inorgánico en la
formulación aplicada en la superficie corporal es el total de (a) la
cantidad necesaria para neutralizar cualquier especie ácida en la
formulación más (b) una cantidad igual a entre 0,5% en peso y 4,0%
en peso de la formulación;
(c) un excipiente farmacéuticamente aceptable
adecuado para la administración tópica o transdérmica de
fármacos,
y además en la que
(d) tras la aplicación en la superficie corporal,
proporciona un pH en el punto de contacto entre la superficie
corporal y la formulación en el intervalo comprendido entre 8,5 y
13.
15. Composición según la reivindicación 14 que
presenta un pH en el intervalo comprendido entre 8,5 y 11,5.
16. Composición según la reivindicación 14 que
comprende una crema, un gel, una loción o una pasta.
17. Composición según la reivindicación 14, en la
que la composición está sustancialmente libre de potenciadores
adicionales de la permeación.
18. Composición según la reivindicación 14, en la
que la composición está sustancialmente libre de disolventes
orgánicos.
19. Composición según la reivindicación 14, en la
que el hidróxido inorgánico se selecciona de entre el grupo
constituido por hidróxido de amonio, hidróxido de sodio, hidróxido
de calcio, hidróxido de potasio, hidróxido de magnesio y mezclas de
los mismos.
20. Composición según la reivindicación 19, en la
que el hidróxido inorgánico es hidróxido de sodio.
21. Composición según la reivindicación 14, en la
que el fármaco es un fármaco ácido en la forma de un ácido libre y
la cantidad en (a) es la cantidad necesaria para neutralizar el
fármaco ácido y cualquier otra especie ácida en la formulación.
22. Composición según la reivindicación 14, en la
que el fármaco es un fármaco básico en la forma de una base
libre.
23. Composición según la reivindicación 14, en la
que el fármaco es una sal de adición de base de un compuesto
ácido.
24. Composición según la reivindicación 14, en la
que el fármaco es no ionizable.
25. Sistema para la administración tópica o
transdérmica de un fármaco a través de una superficie corporal, que
comprende:
(a) por lo menos un depósito de fármacos que
contiene
(i) un fármaco seleccionado de entre el grupo
constituido por aminoácidos, agentes analgésicos, agentes
anestésicos, agentes anti-acné, agentes
antiartríticos, agentes antiarrítmicos, agentes antiasmásticos,
agentes antibióticos, agentes anticancerosos, agentes
anticolinérgicos, agentes anticonvulsivantes, agentes
antidepresivos, agentes antidiabéticos, agentes antidiarreicos,
agentes antifúngicos, agentes antiglaucomatosos, agentes
antihelmínticos, agentes antihistamínicos, agentes
antihiperlipidémicos, agentes antihipertensivos, preparaciones
antimigrañosas, agentes antieméticos, agentes antineoplásicos,
fármacos antiparkinsonianos, agentes antipruríticos, agentes
antipsoriásicos, agentes antipsicóticos, agentes antipiréticos,
agentes antiespasmódicos, agentes antituberculosos, agentes
antiulcerosos, agentes antivíricos, agentes ansiolíticos, supresores
del apetito, fármacos para el trastorno por déficit de atención
(ADD) y el trastorno por déficit de atención e hiperactividad
(ADHD), betabloqueantes, fármacos bloqueantes de los canales del
calcio, estimulantes del sistema nervioso central,
descongestionantes, diuréticos, ácidos grasos, materiales genéticos,
remedios con hierbas, hormonolíticos, agentes hipnóticos, agentes
hipoglucemiantes, agentes inmunosupresores, inhibidores de los
leucotrienos, inhibidores mitóticos, relajantes musculares,
antagonistas narcóticos, nicotina, agentes parasimpaticolíticos,
fármacos peptídicos, psicoestimulantes, sedantes, esteroides,
simpaticomiméticos, tranquilizantes, vasodilatadores, vitaminas y
combinaciones de los mismos, en el que el fármaco es
- (A)
- un fármaco básico en forma de una base libre,
- (B)
- un fármaco ácido en forma de un ácido libre,
- (C)
- un fármaco ácido en forma de una sal de adición de base o
- (D)
- un compuesto no ionizable; y
(ii) un hidróxido inorgánico en una cantidad de
eficaz para potenciar el flujo del fármaco a través de la superficie
corporal sin producir lesión en la misma, en el que el hidróxido
inorgánico se selecciona de entre el grupo constituido por
hidróxidos metálicos monovalentes, hidróxidos metálicos divalentes e
hidróxido de amonio, en el que la cantidad de hidróxido inorgánico
en la formulación aplicada sobre la superficie corporal es el total
de (a) la cantidad requerida para neutralizar cualquier especie
ácida en la formulación más (b) una cantidad igual a entre 0,5% en
peso y 4,0% en peso de la formulación;
(b) unos medios para mantener el sistema en una
relación de transmisión de fármaco y potenciador a la superficie
corporal; y
(c) una capa de refuerzo que sirve de superficie
externa del dispositivo durante la utilización.
26. Sistema según la reivindicación 25, en el que
la capa de refuerzo es oclusiva.
27. Sistema según la reivindicación 25, en el que
el depósito de fármacos está constituido por un adhesivo
polimérico.
28. Sistema según la reivindicación 27, en el que
el adhesivo polimérico sirve como medio para mantener el sistema en
una relación de transmisión de fármaco y potenciador a la superficie
corporal.
29. Sistema según la reivindicación 25, en el que
el depósito de fármacos está constituido por un hidrogel.
30. Sistema según la reivindicación 25, en el que
el depósito de fármaco está constituido por una bolsa sellada que
contiene el fármaco y el hidróxido inorgánico en una formulación
líquida o semisólida.
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