ES2231188T3 - Material alveolar lleno de una sustancia. - Google Patents
Material alveolar lleno de una sustancia.Info
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Abstract
Una matriz que comprende a) una matriz base, preferiblemente polimérica, que comprende macroporos (sistema de poro 1) y b) un material interno retenido en los macroporos, caracterizada porque el material interno se ha contraído en los macroporos para dejar un volumen libre en el material interno y la paredes del poro de los macroporos.
Description
Material alveolar lleno de una sustancia.
La presente invención se refiere a un nuevo tipo
de matrices de soporte y al uso de las matrices de soporte en
métodos de separación, cultivos celulares, síntesis en fase sólida
de moléculas orgánicas, y reacciones catalíticas (tales como
reacciones enzimáticas) y otros usos en los que se usan matrices de
soporte porosas.
En cromatografía se permite pasar un flujo de
líquido que contiene componentes a retirar del líquido a través de
un medio de separación. Los componentes típicamente difieren en sus
interacciones con el medio de separación lo que da como resultado
una retención diferencial. Los componentes llegarán a separase al
menos parcialmente entre sí. La eficacia de un medio de separación
dependerá, entre otros, del área superficial disponible para el
soluto.
Hay un deseo general de incrementar el área
superficial disponible en contacto directo con el flujo líquido a su
través. En el caso de que el líquido sea acuoso y el medio de
separación esté basado en un material hidrófobo, se ha proporcionado
un recubrimiento hidrófilo, por ejemplo. Se han sugerido diversos
espesores para capas monomoleculares y más gruesas que permiten el
flujo a su través en el centro de los poros (documentos EP 221.046 y
WO 9719347, respectivamente) hasta llenar completamente los poros
que atraviesa el flujo (documento EP 288.310).
Mediante el término "flujo líquido a su
través" se quiere decir que el líquido proporciona transporte
convectivo de masa. Las superficies accesibles por el flujo líquido
a su través se llaman, por lo tanto, "superficies convectivas".
De manera análoga, los sistemas de poros/poro accesibles por el
flujo líquido a su través se llaman "sistemas de poro
convectivos" (por ejemplo, el sistema de poro 1 descrito
posteriormente). Los tamaños de poro de los sistemas de poro
convectivos son típicamente \geq 0,1 \mum, tales como \geq 0,5
\mum, mediante el cual se quiere decir que una esfera \geq 0,1
\mum respectivamente \geq0,5 \mum en diámetro es capaz de
pasar a su través. En el caso de que el medio esté en forma de
perlas empaquetadas en un lecho, la proporción entre los tamaños de
poro convectivo y el diámetro de las perlas típicamente está en el
intervalo 0,01-0,3, con preferencia por
0,05-0,2.
Los poros que tienen tamaños \geq 0,1 \mum,
tales como \geq 0,5 \mum, a menudo se denominan macroporos.
Los medios de separación también pueden tener
sistemas de poros que son sólo accesibles por difusión del líquido
y/o de los componentes presentes en el líquido (transporte difusivo
de masa) ("sistema de poro difusivo", por ejemplo, el sistema
de poro 2 como se describe posteriormente cuando son microporosos).
Los sistemas de poro difusivos se caracterizan porque tienen
aberturas en el sistema de poro convectivo, que no son
suficientemente grandes para que el flujo de líquido pase a su
través. Estas aberturas del sistema de poro 2 son típicamente de tal
manera que sólo esferas con diámetros \leq 0,5 \mum, tales como
\leq 0,1 \mum, pueden pasar a su través. Los poros que tienen
tamaños \leq 0,5 \mum, tales como \leq 0,1 \mum, a menudo se
denominan microporos.
Los datos para los tamaños de poro dadas en el
contexto de la presente invención se refieren a valores obtenidos
por SEM o ESEM (microscopía electrónica de exploración y microscopía
electrónica de exploración ambiental, respectivamente) y/o por SEC
(cromatografía de exclusión por tamaño) utilizando, por ejemplo,
poliestirenos y dextranos. Véase Hagel, "Pore Size
Distribution" en "Aequeous Size-Exclusion
Cromatography" Elsevier Science Publisher B.V., Ámsterdam,
Holanda (1988) 119-155.
- \bullet
- Un primer objeto es aumentar la capacidad total de las matrices macroporosas.
- \bullet
- Un segundo objeto es aumentar la capacidad de penetración de las matrices que comprenden macroporos llenados con medio de separación.
La capacidad total y la capacidad de penetración
se refieren a la capacidad de las matrices de interaccionar con una
sustancia presente en un flujo líquido a través de las matrices. La
interacción puede referirse a la afinidad de unión entre la
sustancia y una estructura de ligando que tiene afinidad por la
sustancia y que está presente en la matriz de soporte. La
interacción puede también ser una permeación restringida
estéricamente debido al tamaño y forma de la sustancia.
Se ha reconocido ahora que estos objetos pueden
satisfacerse en el caso de los macroporos de una matriz base que
comprenden un material interno que deja un volumen libre continuo
entre el material interno y las paredes internas de los
macroporos.
Un primer aspecto de la invención es una matriz
de soporte que comprende a) una matriz base, preferiblemente
polimérica, con macroporos (sistema de poro 1) y b) un material
interno, posiblemente poroso (sistema de poro 2), retenido en los
macroporos. El rasgo característico de la matriz es un volumen libre
continuo entre el material interno y las paredes internas del poro.
Las matrices de soporte pueden estar en un formato de lecho
empaquetado o fluidizado o en forma de un lecho corto monolítico. En
las variantes preferidas el volumen libre continuo permite al
líquido fluir a través de la matriz, preferiblemente entre dos
extremos opuestos de la matriz. Las dimensiones del volumen libre
continuo se selecciona típicamente tal como al menos el 1%, tal como
al menos el 4%, del líquido que pasará a través de la matriz en el
volumen libre continuo. Para una matriz en forma de un lecho corto
monolítico esto significa que el 100% del flujo líquido pasa a
través de la matriz.
Los tamaños de los macroporos de la matriz base
vacía, sin material interno, típicamente están en el intervalo
0,1-1000 \mum, tal como 0,5-1000
\mum, con preferencia por 1-100 \mum (sistema de
poro 1). La matriz base puede también contener un lote de menos
poros (sistema de poro 3) que tiene poros en el intervalo de 10
\ring{A}-0,5 \mum, tal como de 10
\ring{A}-0,1 \mum.
El límite superior de tamaños de poro (sistema de
poro 2) depende de los tamaños de poro del sistema de poro 1. En el
caso de que los poros del sistema de poro 1 sean suficientemente
grandes, el sistema de poro 2 puede contener un material interno que
puede o puede no ser macroporoso (sistema de poro 4). El sistema de
poro 2 está en las variantes preferidas de microporos, es decir, sus
tamaños de poro son \leq 0,5 \mum, tales como \leq 0,1 \mum.
En el caso de que los sistemas de poro 2 y 4 sean macroporosos,
pueden considerarse como una parte del sistema de poro 1.
Este volumen libre presente en las matrices de la
invención incrementará el área superficial convectiva. Esto
significará un transporte de masa más rápido y una capacidad de
penetración incrementada para las interacciones con solutos en un
flujo líquido a su través. El área superficial convectiva de una
matriz de acuerdo con la invención será, típicamente, al menos del
25%, tal como al menos del 50% o al menos del 75%, mayor que la
superficie convectiva de la matriz base sin material interno.
Los sistemas de poro preferidos consisten en una
red tridimensional de poros, cuya red comprende varios poros,
ramificaciones porosas, bifurcaciones porosas, etc., y en las
variantes preferidas también cavidades que comunican entre sí por
medio de los poros. Esto se aplica a los sistemas de macroporos, que
incluyen los sistemas de poro convectivos, así como los sistemas de
microporos.
En las matrices base preferidas, el sistema de
macroporos está constituido por cavidades en forma de esferas con
poros de conexión entre las esferas. Los diámetros de las esferas
pueden estar entre 1 \mum-100 \mum, tales como 1
\mum-25 \mum. Los diámetros de los poros de
conexión son normalmente aproximadamente 1/10-1/3 de
los diámetros de las esferas, por ejemplo, entre 0,1
\mum-10 \mum, tales como 0,5
\mum-10 \mum. En el caso de que las matrices
estén en forma de perlas/partículas, las cavidades típicamente
tienen diámetros de < 1/9 del diámetro de las partículas.
En algunas variantes preferidas, el material
interno tiene un tamaño y/o forma que les impide salir de la matriz
base, es decir, llamado también "material interno
atrapado".
Las matrices base que tienen sistemas de poro
constituidas por cavidades esféricas con poros de conexión entre las
cavidades, están fácilmente disponibles en la técnica anterior.
Véanse, por ejemplo, los documentos US 5.833.861 (PerSeptive
Biosystems), EP 288.310 (Unilever), EP 68310 (Unilever), WO 9719347
(Amersham Pharmacia Biotech AB), US 5.334.310 (Cornell Research
Foundation), WO 9319115 (Amersham Pharmacia Biotech AB), etc.
Las matrices base pueden, en principio, estar
basadas en materiales que son conocidos per se en el campo de
la fabricación de absorbentes cromatográficos en forma de lechos
cortos monolíticos o partículas. De este modo, el constituyente
principal en la matriz base puede basarse en polímeros orgánicos,
tales como polímeros nativos (denominados también biopolímeros) y
polímeros sintéticos, y material inorgánico. El material interno
está basado principalmente en polímeros orgánicos que pueden ser
nativos o sintéticos.
Los ejemplos ilustrativos de biopolímeros son
polisacáridos tales como dextrano, agarosa, celulosa, carragenano,
alginato, pululano, y almidón, incluyendo también formas
químicamente modificadas. Las formas macroporosas de polisacáridos
se obtienen mejor de acuerdo con el método descrito en el documento
WO 9319115 (Amersham Pharmacia Biotech AB), es decir, se prepara
inicialmente una solución acuosa que contiene el material
polisacárido que después se suspende en un líquido orgánico
inmiscible con agua para formar una emulsión que tras el
enfriamiento da un bloque de macroporos. El método puede modificarse
para dar perlas macroporosas. Las matrices polisacáridas
macroporosas normalmente contendrán tanto un sistema de macroporos
(sistema de poro 1) como un sistema de microporos (sistema de poro
3). Los tamaños de poro de los sistemas de poro pueden controlarse
variando la cantidad relativa del líquido orgánico y por selección
apropiada del emulsionante durante la fabricación de la matriz base.
Los tamaños de poro del sistema de microporos pueden controlarse
variando la concentración del polisacárido en la solución acuosa de
partido. Las matrices pueden estabilizarse por reticulación, por
ejemplo, usando reactivos que reaccionan bifuncionalmente con grupos
hidroxi. Los bisepóxidos, las epihalohidrinas, etc. son agentes de
reticulación típicos.
Los polímeros sintéticos están mejor ilustrados
por los denominados también polímeros de vinilo, es decir, polímeros
que se obtienen por polimerización de compuestos que muestran uno o
más grupos alqueno polimerizables, tales como vinilbenceno,
derivados del ácido acrílico/metacrílico (ésteres de ácidos, amidas,
nitrilos etc.). La creación de la matriz base en forma de partículas
puede tener lugar en emulsiones-o/w o suspensiones,
por ejemplo, por polimerización con los monómeros que están
inicialmente presentes en la fase oleosa. Se pueden obtener las
matrices de lecho corto monolítico utilizando polimerización a
granel. Se conseguirán matrices base que tienen diversos tipos de
estructuras de poro incluyendo un líquido orgánico (porógeno) en el
que los monómeros pueden disolverse pero no el polímero.
La matriz base también puede estar compuesta por
otros polímeros sintéticos, por ejemplo, polímeros de condensación
en los que los monómeros se seleccionan entre compuestos que
muestran dos o más grupos seleccionados entre grupos amino, hidroxi,
carboxi, etc. Los monómeros particularmente resaltados son monómeros
de poliamino, monómeros de policarboxi (incluyendo haluros, ésteres
y anhidros análogos reactivos), monómeros de polihidroxi, monómeros
de amino-carboxi, monómeros de
amino-hidroxi y monómeros de
hidroxi-carboxi, en los que poli significa 2, 3 o
más grupos funcionales a los que se hace referencia. Los compuestos
que contienen un grupo funcional que es doblemente reactivo, por
ejemplo, ácido carbónico o formaldehído, se incluyen en los
compuestos polifuncionales. Los polímeros contemplados típicamente
son policarbonatos, poliamidas, poliaminas, poliéteres, etc.
Los ejemplos de materiales inorgánicos que pueden
ser útiles en formas macroporosas en las matrices base son sílice,
óxido de circonio, grafito, óxido de tántalo, etc.
Las matrices preferidas carecen de grupos que son
inestables frente a hidrólisis, tales como grupos silano, éster,
amida y grupos presentes en sílice como tales.
El tipo preferido de matriz base se obtiene por
polimerización de monómeros de vinilo del tipo mencionado
anteriormente en una emulsión de fase interna alta (HIPE) dando una
estructura macroporosa que comprende cavidades esféricas
interconectadas abiertas del tipo descrito anteriormente. Véanse,
por ejemplo, los documentos EP 288.310 (Unilever), EP 68.310
(Unilever), WO 9719347 (Ambersham Pharmacia Biotech AB) y US
5.200.433. Este método se ha extendido previamente a emulsiones
w/o/w en las que las emulsiones-w/o internas están
en forma de gotas que contienen una HIPE. Véase, por ejemplo, el
documento WO 9531485 que describe formas en perla de este tipo de
matrices. Se formará, además del sistema de macroporos que comprende
las cavidades esféricas, un sistema de microporos (sistema de poro
3) incluyendo un porógeno líquido. Véase el apartado "Sistemas de
poro".
En algunas variantes, la matriz base puede
consistir en varias partículas minoritarias que se pegan juntas de
manera irreversible para formar aglomerados. Los intersticios entre
las partículas minoritarias definen los sistemas de poro. Estas
variantes pueden estar en forma de partículas grandes (por ejemplo,
perlas) o lechos cortos monolíticos.
Las superficies de la matriz base (por ejemplo,
del sistema de poro 1), que median el contacto directo con un
líquido que pasa a su través, pueden ser hidrófobas o hidrófilas. Se
contempla que, mediante una superficie hidrófila, la superficie
muestra una pluralidad de grupos polares que contienen un oxígeno o
un nitrógeno (grupos hidrófilos). Los grupos polares apropiados son
hidroxi (alcohol y fenol), carboxi (-CCOH/-COO^{-}), éster, amida,
éter (tal como en polioxietileno), etc. Mediante el término
hidrófobo quiere decirse que hay sólo unos pocos o ninguno de los
grupos hidrófilos mencionados anteriormente. En el contexto de la
presente invención las superficies fuertemente hidrófilas tienen un
ángulo de contacto con el agua < 30º.
Una matriz base que tiene superficies hidrófobas
puede volverse fácilmente hidrófila de acuerdo con las técnicas
conocidas per se. De manera análoga las superficies
hidrófilas pueden volverse hidrófobas. Las superficies altamente
hidrófobas tienen un ángulo de contacto con el agua > 50º.
El material interno típicamente es un material
polimérico que preferiblemente es poroso (sistema de poro 2).
El material interno se localiza principalmente en
los macroporos de la matriz base en la que los macroporos tienen
tamaños suficientes para proporcionar un volumen libre continuo como
se definió anteriormente. Una porción del material interno puede
localizarse en microporos más grandes o en macroporos que no tienen
suficiente tamaño para proporcionar un volumen libre continuo.
El material interno puede, en principio, basarse
en el mismo tipo de materiales que la matriz base. Véase lo
anterior.
La distribución del tamaño de poro del sistema de
poro 2 puede controlarse durante la formación del material de
acuerdo con las mismas reglas que se utilizan para las matrices
cromatográficas.
El material interno preferido está basado en
polisacáridos.
El material interno se forma típicamente en los
macroporos de la matriz base. Un método para conseguirlo comprende
las etapas de:
i) llenado de los macroporos con una forma
soluble del material interno,
ii) transformación de la forma soluble en los
macroporos a una forma insoluble,
iii) contracción de la forma insoluble y
iv) estabilización irreversible del material en
su forma contraída.
Este método está mejor ilustrado con polímeros de
polihidroxi, tales como polisacáridos. Las soluciones acuosas pueden
prepararse a partir de la mayoría de los polisacáridos, tanto en su
forma nativa como en una forma apropiadamente derivatizada. Las
soluciones acuosas de polímeros de polihidroxi a menudo se
transforman fácilmente a geles como se conoce en la técnica, tanto
por disminución de la temperatura como por derivatización química,
por ejemplo, reticulación. La agarosa, por ejemplo, se sabe que se
disuelve en agua templada pero sus soluciones gelifican cuando la
temperatura se disminuye. De modo similar, el dextrano es altamente
soluble en agua pero cuando se reticula forma un gel. La formación
de geles, como se describió anteriormente en un sistema de
macroporos, ayudará a la retención del polisacárido en el sistema de
poro. Se sabe que este tipo de geles se puede forzar para
contraerse. La contracción de un gel localizado en un sistema de
macroporos formará, por lo tanto, un volumen libre continuo del tipo
definido anteriormente. La agarosa en forma de gel sustituida
apropiadamente, por ejemplo, se contraerá después de la reticulación
bajo las condiciones apropiadas. Al mismo tiempo, la reticulación
conduce a una forma geométrica estabilizada de manera irreversible.
Véase, por ejemplo, el documento WO 9738018 (página 7, final del
3^{er} párrafo). De modo similar, un gel de dextrano reticulado
hinchado con agua se contraerá en el caso de que el agua se
reemplace por un líquido menos polar, tal como metanol. Después de
la reticulación, por ejemplo, con bisepóxido o epihalohidrina, la
forma contraída del gel de dextrano llegará a estabilizarse de
manera irreversible.
El principio general resumido en el párrafo
anterior es válido para formas solubles de otros polímeros a
condición de que las formas solubles puedan transformarse
(contraerse) en una forma insoluble que ocupe un volumen menor y que
la forma contraída pueda estabilizarse a este volumen de manera
irreversible. El espacio entre el material interno y las paredes
internas de los macroporos será aquél que deje un volumen libre
continuo, preferiblemente que permita al líquido fluir a través de
la matriz. En el caso de una forma soluble del polímero, pueden
usarse agua u otros líquidos. Las formas solubles a las que se hace
mención también incluyen monómeros que son capaces de polimerizarse
a un material interno.
Una primera alternativa para las etapas (ii)-(iv)
anteriores comprende realizar estas etapas esencialmente de manera
simultánea. Una segunda alternativa para las etapas (ii)-(iv)
comprende la etapa (ii) seguida de la realización de las etapas
(iii) y (iv) esencialmente de manera simultánea. Una tercera
alternativa para las etapas (ii)-(iv) comprende ejecutar la
secuencia etapa a etapa. La elección de la alternativa dependerá de
la forma soluble de partida y puede determinarse como se resume en
la parte experimental.
Los métodos típicos para transformar una forma
soluble a una forma insoluble (etapa (ii)) comprenden disminución de
la temperatura, derivatización química, por ejemplo reticulación, o
intercambio disolvente/líquido. Los métodos típicos de contracción
(etapa (iv)) comprenden reticulación, cambio de la fuerza iónica, o
intercambio de líquidos. A los polímeros que contienen una
pluralidad de grupos polares, a menudo les causa contracción el
hecho de ir de un líquido más polar a un líquido menos polar. Para
los polímeros que tienen una fuerte hidrofobicidad, por ejemplo,
estando esencialmente libres de grupos polares, la contracción a
menudo les requiere intercambiar un líquido menos polar con un
líquido más polar. Los métodos típicos para la estabilización (etapa
(v)) comprenden reticulación.
Una variante útil particular es utilizar un
polisacárido alilado apropiadamente, tal como agarosa, y llevar a
cabo la etapa (ii) de acuerdo con la segunda alternativa. La
variante resumida anteriormente que utiliza polímeros solubles en
agua, tales como dextrano, concuerda con la tercera alternativa.
Las superficies porosas (o los microporos y/o
macroporos) pueden mostrar una pluralidad de ligandos de afinidad,
es decir, estructuras con afinidad por un equivalente. Un ligando de
afinidad es un miembro individual de un par de afinidad. Los
ligandos de afinidad se usan habitualmente para unión de afinidad
(adsorción de afinidad) con el otro miembro del par de la matriz de
soporte. Los pares de afinidad bien conocidos son grupos positivos o
negativos (intercambio iónico), anticuerpos y antígenos/haptenos,
lectinas y estructuras de carbohidratos, proteínas de unión con IgG
e IgG, grupos quelato y compuestos quelantes, ácidos nucleicos
complementarios, grupos hidrófobos en el ligando o en el
equivalente, etc. Este tipo de grupos puede introducirse en la
matriz de soporte mediante técnicas bien conocidas en este campo.
Los grupos de afinidad son de particular interés cuando se utilizan
las matrices de soporte nuevas de la presente invención en métodos
de separación basados en la afinidad por una sustancia que se quiere
purificar o extraer de un líquido que contiene la sustancia. También
puede ser de interés para matrices que se usan como soporte en
cultivos celulares y en síntesis en fase sólida y como soporte para
catalizadores, tales como
enzimas.
enzimas.
En el caso de que las matrices de soporte como se
definieron anteriormente se usen para adsorción de afinidad, la
matriz de soporte muestra un miembro de un par de afinidad como se
definió anteriormente. El uso comprende llevar la matriz de soporte
y un líquido polar, típicamente un líquido acuoso, o un líquido
"no" polar que contiene el otro miembro del par de afinidad en
contacto entre sí. Las condiciones se seleccionan para promover la
unión de afinidad y en principio se consideran conocidas per
se en este campo. Posteriormente la matriz de soporte se separa
del líquido, y, si se desea, el miembro adsorbido por afinidad puede
liberarse y procesarse posteriormente.
La invención se ilustrará ahora mediante
ejemplos. La invención se define adicionalmente en las
reivindicaciones de patente que forman parte de la memoria
descriptiva.
Ejemplo
1A
Preparación de la solución de agarosa. Se
preparó una solución de agarosa en un reactor discontinuo añadiendo
20 g de agarosa a 300 ml de agua destilada con agitación durante 2 h
a 95ºC. La solución se enfrió a 70ºC. Se añadieron 1,5 ml de NaOH al
50%, 0,04 g de NaBH_{4} y 4,0 ml de alil glicidil éter a la
solución de agarosa. Se dejó que continuara la reacción durante 2 h
con agitación a 70ºC. Después la solución se neutralizó con ácido
acético al 60% y HCl a pH = 7-8.
Preparación del medio de emulsión. Se hizo
en un reactor de emulsión añadiendo 35 g de de etilcelulosa
(emulsionante N-50) (etilcelulosa, Hercules, U.S.A.)
a 450 ml de tolueno con agitación a 60ºC (disolver
N-50 en tolueno tarda aproximadamente 2 h).
Emulsión. La solución de agarosa se
transfirió al medio de emulsión. La agitación se reguló a 120 rpm.
De ese modo se formaron partículas de gel.
El tamaño de partícula máximo deseado de las
perlas de agarosa fue 160 \mum. Si las partículas de gel de
agarosa eran demasiado grandes la velocidad de rotación se
incrementaba hasta 220 rpm y se añadía N-50 extra.
El tamaño de partícula máximo se comprobó tomando muestras, que se
analizaron en un microscopio con una graduación de tamaño
controlado. Una vez logrado el tamaño de 160 \mum, la suspensión
se enfrió. Se enfrió la suspensión de 60ºC a < 25ºC en
aproximadamente 30 min. El gel se lavó con etanol al 99,5% y agua
destilada.
Reticulación con epiclorhidrina (etapa de
contracción). Se añadieron 53 g de Na_{2}SO_{4} a un reactor
que contenía una mezcla de 300 ml de gel (escurrido) y 130 ml de
agua destilada con agitación. La temperatura de reacción se
incrementó a 50ºC y después de 1 h, se añadieron 7 g de NaOH al 50%
y 0,5 g de NaBH_{4} a la suspensión así como 47 g de NaOH al 50% y
34 ml de epiclorhidrina, que se añadieron durante un periodo de
6-8 h. Se dejó continuar la reacción durante una
noche (aprox. 16 h). El gel se lavó con agua destilada y ácido
acético al 60% a pH = 5-7. Contracción
(cálculos). Se midió el volumen del gel antes (V_{0}) y
después (V_{ret}) de la reticulación y se calculó la contracción
en porcentaje de acuerdo con la fórmula:
Contracción =
(1 - (V_{ret}/V_{0})) x
100
Se repitió dos veces el estudio de contracción de
acuerdo con el Ejemplo 1a con diferentes cantidades de alil glicidil
éter. Los resultados se describen en la tabla 1 a continuación.
| Alil glicidil éter MI | Contracción % |
| 4,0 | 41 |
| 2,7 | 31 |
| 2,0 | 24 |
Ejemplo
1B
Preparación de la suspensión de Sephadex
G-200. Se añadieron 3 g de Sephadex
G-200 (gel de dextrano reticulado con
epiclorhidrina, Amersham Pharmacia Biotech AB, Suecia) a 400 ml de
agua destilada. Se dejó que el gel se hinchara durante 24 h con
agitación a 20-25ºC. El volumen del gel (escurrido)
después de hincharse era de 100 ml.
Contracción y reticulación con diglicidil éter
de 1,4-butanediol. Se añadieron 5,5 ml de gel de
dextrano escurrido y 0,5 ml de agua destilada a un reactor que
contenía 6,0 ml de metanol. Después de 1 h, se añadieron 3 ml
diglicidil éter de 1,4-butanediol y 0,13 ml de NaOH
al 50% a la suspensión. La temperatura de reacción se incrementó a
50ºC. Se dejó continuar la reacción durante una noche. El gel se
lavó con agua destilada.
Contracción (cálculos). Véase Ejemplo
1A.
Se repitió dos veces el estudio de contracción de
acuerdo con el Ejemplo 1A con diferentes cantidades de metanol. Los
resultados se describen en la tabla 2 a continuación.
| Metanol MI | Contracción % |
| 6,0 | 46 |
| 5,0 | 27 |
| 4,0 | 9 |
Matriz base macroporosa. Se preparó una
matriz base macroporosa (perlas, diámetro de 40-500
\mum, sistema de poro en forma de cavidades esféricas internas
conectadas) de acuerdo con el Ejemplo 1 en el documento WO 9719347
(Amersham Pharmacia Biotech AB) a partir de 10,8 g de estireno, 10,8
g de divinil benceno (calidad del 63%), 1,8 g de Span® 80
(monooleato de sorbitán, Fluka, Alemania), 0,8 g de Hypermer® (ICI,
Inglaterra), 139 g de agua destilada (primera etapa) y 324 g de agua
destilada (segunda etapa). Las partículas que eran mayores de 500
\mum y menores de 40 \mum se retiraron por cribado.
Modificación de la superficie por adsorción
del polímero polihidroxi. Se añadieron 20 g de fenildextrano
(grado de sustitución del 0,20 por unidad monosacárido) a un reactor
que contenía una mezcla de 1500 ml de matriz macroporosa escurrida y
500 ml de agua destilada con agitación. Se dejó avanzar la reacción
durante 2 h con agitación a 20-25ºC. El gel se lavó
con agua destilada.
Reticulación del fenildextrano adsorbido.
Se añadieron 180 g de Na_{2}SO_{4} a un reactor que contenía una
mezcla de 1000 ml de una matriz macroporosa escurrida a la que se
había adsorbido el fenildextrano y 300 ml de agua destilada con
agitación. La temperatura de reacción se incrementó a 50ºC y,
después de 1 h, se añadieron 40 g de NaOH al 50% y 32 ml de
diglicidil éter de 1,4-butanediol a la suspensión.
Se dejó continuar la reacción durante una noche (aprox. 16 h). El
gel se lavó con agua destilada y ácido acético al 60% a pH =
5-7.
Ejemplo
3A
Se preparó una solución de agarosa en un reactor
discontinuo añadiendo 120 g de agarosa a 900 ml de agua destilada
con agitación durante 2 h a 95ºC. Después la solución se enfrió a
70ºC.
Ejemplo
3B
Preparación de matriz macroporosa llenada con
gel de agarosa alilado. Se añadieron 150 g de matriz macroporosa
escurrida del Ejemplo 2, 1,5 ml de NaOH al 50% y 3 ml de alil
glicidil éter a 170 g de solución de agarosa del Ejemplo 3A. Se dejó
continuar la reacción durante 2 h con agitación a 70ºC. Entonces se
neutralizó la solución con ácido acético al 60% y HCl a pH =
7-8.
Preparación del medio de emulsión. Éste se
preparó en un reactor de emulsión añadiendo 55 g de etilcelulosa
(emulsionante N-50) a 450 ml de tolueno con
agitación a 60ºC (disolver N-50 en tolueno tarda
aproximadamente 2 h).
Retirada del exceso de gel de agarosa. Se
transfirió la suspensión de agarosa/matriz escurrida al medio de
emulsión. Se reguló la agitación a 180 rpm. De ese modo se formaron
partículas del gel de agarosa y sus tamaños podían controlarse
variando la velocidad de rotación en el agitador y la adición de
N-50 extra.
El tamaño de partícula máximo deseado de los
lechos de agarosa fue de 20 \mum. Si las partículas del gel de
agarosa eran demasiado grandes, se podía incrementar la velocidad de
rotación hasta 220 rpm y se podía añadir N-50 extra.
El tamaño de partícula (de agarosa) máximo se controló tomando
muestras que se analizaron en un microscopio con una graduación de
tamaño controlado. Una vez que se alcanzó el tamaño de diámetro de
20 \mum, se enfrió la suspensión de 60ºC a < 25ºC en
aproximadamente 30 min. El gel se lavó con etanol al 99,5% y agua
destilada. Las partículas menores de 40 \mum (perlas de agarosa)
se retiraron por cribado.
Reticulación con epiclorhidrina
(contracción). Se añadieron 57 g de Na_{2}SO_{4} a un
reactor que contenía una mezcla de 120 ml de material macroporoso
(del Ejemplo 3b, escurrido) llenado con agarosa y 50 ml de agua
destilada con agitación. La temperatura de reacción se incrementó a
50ºC y, después de 1 h, se añadieron 3 g de NaOH al 50% y 0,2 g de
NaBH_{4} a la suspensión así como 18 g de NaOH al 50% y 17 ml de
epiclorhidrina, que se añadieron durante un periodo de
6-8 h. Se dejó continuar la reacción durante una
noche (aprox. 16h). El gel se lavó con agua destilada y ácido
acético al 60% a pH = 5-7.
Bromación: se añadieron 50 g de NaAc x
3H_{2}O (acetato sódico) a un reactor que contenía una solución de
120 ml de gel reticulado con epiclorhidrina (escurrido) y 350 ml de
agua destilada con agitación. Después de 5 min, se añadió
bromo-agua (Br_{2}/H_{2}O) a la solución hasta
que se obtuvo un color amarillo oscuro y se mantuvo durante más de 1
min. Se dejó continuar la reacción durante aproximadamente 15 min. A
partir de ello, se añadió formiato sódico, dando al gel un color
blanco.
Se añadieron 10 g de Na_{2}SO_{4}a un reactor
que contenía el gel bromado. Después de 1 h, se añadieron 30 g de
NaOH al 50% y 0,04 g de NaBH_{4} a la solución. La temperatura de
reacción se incrementó a 40ºC y se dejó avanzar la reacción durante
16 h. El gel se lavó con agua destilada hasta pH = 7. Las partículas
que eran mayores de 250 \mum y menores de 40 \mum se retiraron
por cribado.
Preparación de solución de dextrano. Se
añadieron 17 g de dextrano (T40 Pm 40.000 Amersham Pharmacia Biotech
AB) a 14 ml de agua destilada con agitación a 20ºC (disolver
dextrano en agua tarda aproximadamente 4 h).
Activación con epóxido de la matriz
macroporosa llenada con agarosa. Se añadieron 6,4 g de NaOH
(50%) a un reactor que contenía una solución de 40 ml de la matriz
(escurrida) y 16 ml de agua destilada mientras se agitaba. Se enfrió
la mezcla a 20ºC. Se añadieron 7,2 ml de epiclorhidrina. Se dejó
continuar la reacción durante 2 h a 20ºC. Entonces se neutralizó la
mezcla con ácido acético a pH = 6-7 y se lavó la
matriz activada con agua destilada. El análisis mostró 13 \mumol
de grupos epóxido/ml de gel.
Acoplamiento de dextrano. Se añadió el gel
activado con epóxido al reactor que contiene la solución de
dextrano. Se agitó la mezcla durante 1 h. Después se añadieron 3,2 g
de NaOH (50%) y 0,02 g de NaBH y se permitió continuar la reacción
durante una noche (aprox. 18 h). Entonces la mezcla se neutralizó
con ácido acético a pH = 6-7 y se lavó la matriz con
agua destilada. El contenido en dextrano de la matriz después de la
reacción fue de 13 mg/ml de gel.
Introducción de grupos aminoetilo cuaternarios
(grupos-Q) (intercambiador aniónico). Se
añadieron 35 ml de cloruro de glicidiltrimetilamonio (70%) con
agitación a una solución que contiene 20 ml de la matriz de la etapa
anterior y 1,2 ml de NaOH (50%). Se incrementó la temperatura de la
reacción a 30ºC y se permitió continuar la reacción durante 19 h.
Después se neutralizó la mezcla con ácido acético a pH =
6-7 y se lavó la matriz resultante con agua
destilada, NaCl 2 M y con agua destilada una vez más. La capacidad
del ión cloruro del producto fue de 0,18 mmol/ml de gel.
Ejemplo
3c
Preparación de la matriz macroporosa llenada
con gel de agarosa. Se añadieron 150 g de matriz macroporosa
(escurrida) del Ejemplo 2 a 170 g de solución de agarosa del Ejemplo
3A. Se mantuvo la suspensión en agitación durante 2 h a 70ºC.
Preparación del medio de emulsión. Análogo
al Ejemplo 3b. 70 g de etilcelulosa (emulsionante
N-50), 450 ml de tolueno.
Retirada del exceso de gel de agarosa.
Análogo al Ejemplo 3b. El mismo tipo de perlas de matriz.
Reticulación con epiclorhidrina. Análogo
al Ejemplo 3b. 22 g de Na_{2}SO_{4}, 123 ml de perlas de matriz
llenadas con agarosa, 57 ml de agua destilada, 2 g de NaOH al 50%,
0,2 g de NaBH_{4}, 19 g de NaOH al 50% y 18 ml de epiclorhidrina.
Las partículas que eran mayores de 250 \mum y menores de 40 \mum
se retiraron por cribado.
Preparación de la solución de dextrano.
Análogo al Ejemplo 3b. 14,8 g de dextrano y 14 ml de agua
destilada.
Activación con epóxido de la matriz
macroporosa llenada con agarosa. Análogo al Ejemplo 3b. 6,4 g de
NaOH (50%), 40 ml de la matriz y 16 ml de agua destilada, 7,2 ml de
epiclorhidrina. El análisis mostró 29 \mumol de grupos epóxido/ml
de gel.
Acoplamiento de dextrano. Análogo al
Ejemplo 3b. 3,2 g de NaOH (50%) y 0,02 g de NaBH. El contenido en
dextrano después de la reacción fue 17 mg/ml de gel.
Introducción de grupos aminoetilo cuaternarios
(grupos-Q) (intercambiador aniónico). Análogo al
Ejemplo 3b. 35 ml de cloruro de glicidiltrimetilamonio, 20 ml de la
matriz y 1,2 ml de NaOH (50%). La capacidad de ión cloruro del
producto fue de 0,29 mmol/ml de gel.
Los contenidos en epóxido se determinaron
en un Radiometer VIT 90 con HCl 0,1 M, punto final a pH fijo a un pH
de 7.
Los contenidos en dextrano se determinaron
calculando la diferencia entre el peso en seco del dextrano acoplado
y el gel activado con epóxido. El peso en seco se determinó después
de un secado de 18 h en un horno a 105ºC y se expresa como mg de
dextrano por ml de gel.
La capacidad del ión cloruro se determinó
en un Mettler DL40Gp Memo Tritator con AgNO_{3} 0,1 M.
La capacidad de penetración Q_{B} (C/C_{0}
= 0,1) para BSA (albúmina de suero bovina) a 300 cm/h y 1200
cm/h.
| Equipo: | |
| Columna | HR10/10 (Amersham Pharmacia Biotech AB, Suecia) |
| Tampón-A; Tampón de carga | Tris 50 mM, pH 8,0 |
| Tampón-B; Tampón de elución | NaCl 1,0 M en Tris 50 mM, pH 8,0 |
| Proteína | Albúmina de suero bovina, (Sigma, A-7030, St Louis, MO EEUU) |
La capacidad de penetración Q_{B} se determinó
en una columna HR 10/10 (altura del lecho de 7,5 cm de gel). Se
disolvió la proteína en tampón A, aproximadamente 2 mg/ml
(determinado espectrofotométricamente a 280 nm). Inicialmente se
evitó la columna y el flujo se liberaba directamente al monitor de
UV, en el que se midió un valor de absorbancia a 280 nm de la
solución de muestra no adsorbida (C_{0}), después de ello, se dejó
pasar la solución de muestra adsorbida a través de la columna.
Cuando la absorbancia del flujo a través de la columna fue del 10%
de la absorbancia de C_{0}, se interrumpió el ensayo, El gel se
lavó y se eluyó la BSA unida al gel con tampón B. Se recogió el
eluido y se determinó su contenido en BSA, que a su vez dio una
cantidad de BSA adsorbida por ml de gel (= la capacidad de abrirse
paso (Q_{B}) para C/C_{0} = 0,1).
Los resultados de los Ejemplo 3A y 3B se
presentan en la tabla 3.
| Nº de ejemplo | Concordancia con la invención | Q_{B} mg BSA por ml gel | Q_{B} mg BSA/ml gel |
| Flujo: 300 cm/h | Flujo: 1200 cm/h | ||
| Ejemplo 3b | Sí | 124 | 88 |
| Ejemplo 3c | No | 63 | 36 |
Los resultados muestran una capacidad de
penetración incrementada para la matriz preparada en el Ejemplo
3b.
Se atravesaron las perlas parcialmente antes de
estudiarlas. Las fotos mostraron perlas rotas con cavidades y perlas
más pequeñas del material interno. Las perlas más pequeñas se habían
caído de las cavidades.
Claims (16)
1. Una matriz que comprende a) una matriz base,
preferiblemente polimérica, que comprende macroporos (sistema de
poro 1) y b) un material interno retenido en los macroporos,
caracterizada porque el material interno se ha contraído en
los macroporos para dejar un volumen libre en el material interno y
la paredes del poro de los macroporos.
2. La matriz de la reivindicación 1,
caracterizada porque el material interno es poroso (sistema
de poro 2).
3. La matriz de la reivindicación 1 ó 2,
caracterizada porque el volumen libre continuo permite al
líquido fluir a través de la matriz, preferiblemente entre dos
extremos opuestos de la matriz, cuando se aplica un flujo líquido a
una forma monolítica de la matriz o a un lecho empaquetado de la
matriz en forma de partículas; al menos el 1%, tal como el menos el
4% del líquido que pasa a través de la matriz en el volumen libre
continuo.
4. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-3, caracterizada
porque
- a)
- las paredes en el poro en el sistema de poro 1 y/o en el sistema de poro 2 y/o la superficie externa del material interno son hidrófilas, o
- b)
- las paredes del poro en el sistema de poro 1 y/o en el sistema de poro 2 y/o la superficie externa del material interno son hidrófobas.
5. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-4, caracterizada porque la
matriz está en forma de lecho corto monolítico y porque el 100% del
flujo líquido pasa a través de la matriz.
6. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-5, caracterizada porque la
matriz está en forma de partículas, tales como fibras y perlas, y
porque, cuando las partículas están en forma de lecho empaquetado,
al menos el 1%, preferiblemente como máximo el 50%, tal como el
4-50%, del flujo líquido pasa a través de las
partículas.
7. La matriz de cualquiera de la reivindicaciones
1-6, caracterizada porque el diámetro de poro
de los macroporos (sistema de poro 1) está en el intervalo de
0,1-1000 \mum, con preferencia por
1-100 \mum.
8. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-4 y 6-7
caracterizada porque está en forma de partículas (perlas) que
tienen un tamaño medio en el intervalo 5-1000
\mum, tal como 50-1000 \mum o
100-500 \mum, y porque la proporción entre el
diámetro de poro del sistema de poro 1 y el diámetro de partícula
está en el intervalo 0,01-0,3, con preferencia por
0,05-0,2.
9. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-8, caracterizada porque
hay un tercer sistema de poro (sistema de poro 3) en la matriz base,
uno o ambos de dichos sistemas 2 y 3 tienen aberturas en el volumen
libre que sólo permiten el transporte difusivo de masa.
10. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-9, caracterizada porque
los macroporos (sistema de poro 1) sin material interno comprende
cavidades esféricas vacías y poros vacíos que son más pequeños que
las cavidades y que conectan cavidades individuales mediante
aberturas en las superficies de las cavidades.
11. La matriz de la reivindicación 10,
caracterizada porque el material interno está localizado
principalmente en las cavidades con el volumen libre continuo que se
extiende entre el material interno y las paredes internas de los
macroporos.
12. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-11, caracterizada porque
la matriz base y/o el material interno son/es de origen inorgánico u
orgánico, por ejemplo, si es orgánico, se basa en un polímero
hidrófilo o hidrófobo seleccionado entre copolimerizados de
monómeros de divinilo o monovinilo, tales como divinil y monovinil
bencenos, y polihidroxipolímeros tales como polisacáridos.
13. La matriz de una cualquiera de las
reivindicaciones 1-12, caracterizada porque
el material interno y/o las paredes de los macroporos y/o, si está
presente, las paredes de los poros en el sistema de poro 3 muestran
estructuras de afinidad.
14. El uso de la matriz de las reivindicaciones
1-13 para propósitos de separación permitiendo que
un líquido que contiene sustancias que se quieren retirar del
líquido, fluya a través de la matriz.
15. Un método para fabricar una matriz que
comprende una matriz base que tiene macroporos en los que se sitúa
un material interno, caracterizado porque comprende las
etapas de:
(i) proporcionar una matriz base que tiene
macroporos;
(ii) llenar los macroporos con una forma soluble
del material interno;
(iii) transformar la forma soluble a una forma
insoluble;
(iv) contraer la forma insoluble; y
(v) estabilizar el material de manera
irreversible en su forma contraída.
16. El método de la reivindicación 15,
caracterizado porque dicho material interno comprende un
polihidroxipolímero, por ejemplo, un polisacárido, que ha sido
modificado químicamente, si es necesario, para mostrar la propiedad
de contracción a utilizar.
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