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ES2209391T3 - Anticuerpo monoclonal que reconoce el oligosacarido acido sialico n-glicolilado-galactosa-glucosa en los tumores malignos y su composicion. - Google Patents

Anticuerpo monoclonal que reconoce el oligosacarido acido sialico n-glicolilado-galactosa-glucosa en los tumores malignos y su composicion.

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ES2209391T3
ES2209391T3 ES99903581T ES99903581T ES2209391T3 ES 2209391 T3 ES2209391 T3 ES 2209391T3 ES 99903581 T ES99903581 T ES 99903581T ES 99903581 T ES99903581 T ES 99903581T ES 2209391 T3 ES2209391 T3 ES 2209391T3
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ES
Spain
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monoclonal antibody
antibody
monoclonal
glucose
cells
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Expired - Lifetime
Application number
ES99903581T
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English (en)
Inventor
Adriana Carr Perez
Zaima Mazorra Herrera
Luis Enrique Fernandez Molina
Ana Maria Vazquez Lopez
Ailette Mulet Sierra
Rolando Perez Rodriguez
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Centro de Immunologia Molecular
Original Assignee
Centro de Immunologia Molecular
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    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/30Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants from tumour cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

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Abstract

La presente invención se refiere a la rama de la inmunología y de la medicina humana, en particular a la generación y selección de un anticuerpo monoclonal que recopnoce el oligosacarido ácido sialico N - glicolilo - galactosa - glucosa (N - GcNeu - Gal - Glu) present en tumores malignos. Uno de los objetos de esta invención es obtener un anticuerpo monoclonal de tipo igG1 que tiene la característica de reconocer con una gran especificidad la secuencia de oligosacárido ácido sialico N - glicolilo - galactosa - glucosa presente en tejidos de mamarios maligno así como en melanomas y tumores del hígado, el estómago, el colón, el recto y el riñón. También tiene la capacidad de provocar la histolisis directa en células tumorales que llevan dichas secuencias de oligosacárido y como consecuencia, puede utilizarse para el diagnóstico y el tratamiento de ciertas enfermedades neoplásicas. Otro objeto de la presente invención es conseguir el hibridoma que produce dicho monoclonal, así como la composición farmacéutica que lo contiene, para el tratamiento de enfermedades neoplásicas.

Description

Anticuerpo monoclonal que reconoce el oligosacárido ácido siálico N-glicolilado-galactosa-glucosa en los tumores malignos y su composición.
Sector técnico
La presente invención está relacionada con el campo de la inmunología y la medicina humana, en concreto, con la generación y selección de un anticuerpo monoclonal (Mab) frente a la secuencia del oligosacárido ácido siálico N-glicolilado-galactosa-glucosa que puede utilizarse para el diagnóstico y tratamiento de ciertas enfermedades neoplásicas.
Técnica anterior
Las estructuras de los oligosacáridos pueden hallarse formando parte de glicoproteínas y glicolípidos. Ambos están presentes en tejidos normales y patológicos.
La glicosilación aberrante ha sido descrita en aproximadamente el 100% del neoplasma maligno. Cambios frecuentes en la glicosilación aberrante son: la expresión de neoantígenos, variaciones en la composición de las secuencias de oligosacáridos, incremento o descenso de las moléculas de ácido siálico en los oligosacáridos e incremento en la densidad de las moléculas de la superficie de las células, entre otros (Hakomori S. H. et al. Curr. Opin. in Inmmunol. 1991,(3) 646-653). Además de los cambios que pueden hallarse en el mecanismo de las sialiltransferasas, también hay variaciones en las hidroxilasas dependientes N-acetiladas de ácido siálico.
Los gangliósidos son glicoesfingolípidos que contienen ácido siálico en su estructura y se caracterizan por estar presentes en la mayoría de las células de los vertebrados. Estas moléculas se encuentran en el tejido normal y puede tener una mayor expresión en los tumores, con una organización y conformación diferentes en la superficie de las células malignas (Hakomori, SH. 1985, Cancer Res. 45: 2405-2414; Miraldi, F., 1989, Seminars in Nuclear Medicine, XIX, 282-294).
La respuesta inmune humoral contra antígenos de carbohidratos es generalmente del isotipo IgM. Las secuencias de oligosacáridos ligadas a lípidos son generalmente menos inmunogénicas que las glicoproteínas. Por ello, el uso de glicolípidos como inmunogen requiere su enlace con proteínas transportadoras o su incorporación a liposomas o a bacterias como la Micobaterium tuberculosis o R595 de Salmonella minnesota.
La respuesta generada con los Gangliósidos es independiente del timo. De esto han informado repetidamente Livingston, et. al. (Livinston, P.O. et al., 1982, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 2911-2915; Livingston, P.O. et al. 1989, Cancer Res. 49: 7045-7050). Las características principales de los anticuerpos generados contra los Gangliósidos cuando son estudiados en el suero de diferentes especies son su baja afinidad, considerable inter reactividad y corta vida (Livingston, P.O. 1991, inmunology and Allergyc Clinics of North America, 11: 401-423; Portoukalian, J. et al., 1991, Int. J Cancer, 49: 893-899).
La expresión de la forma N-glicolilado en los oligosacáridos es común en tejidos normales y patológicos de todas las especies de vertebrados, excepto en pollos y humanos en los que sólo se encuentra en tejido fetal y tumoral. Los tejidos normales de estas dos últimas especies poseen sólo la variante N-acetilada (Nishimakit et al. 1979, J. Immunology, 122: 2314; Higashi H. et al, 1985, Cancer Res., 45: 3796).
El estudio de la composición de los oligosacáridos en algunos tumores de humanos demuestra la presencia de la forma N-glicolilada tanto en glicolípidos como en glicoproteínas de células tumorales de melanoma (Hirabayashi, Y, et al. 1987, J. Cancer Res., 78, 614 614-620; Saida T. et al. 1991 Arch. Dermatol. Res. 282(3): 179-182; Kawashima I. et al. 1993, J. Biochem (Tokio) (2) 186-193; Kawachi S. et al., 1992, J. Dermatol (11): 827-830), así como en tumores de colon, especialmente en glicolípidos (Miyoshi, I., et al, 1986, Mol. lmmunol. 23 (6): 631; Higashi H., et al, 1985, Cancer Research, 45: 3796-3802). Además, se han realizado estudios para demostrar la presencia de la forma N-glicolilada de los Gangliósidos en muestras tumorales del hígado, teratoma, linfoma, etc. (Kawai T. et al. 1991 Cancer. Res. (51) 1242-1246). Aunque en los primeros casos, la concentración de la variante N-glicolilada de los glicolípidos era inferior al 0,05% del ácido siálico total, Marquina y sus colaboradores hallaron en tumores de mama valores aproximados al 10%de ácido siálico ligado al lípido (Marquina, G. et al, 1996, Cancer Res. 56: 5165-).
La generación de anticuerpos monoclonales contra la variante N-glicolilada de los gangliósidos ha proporcionado hasta la fecha anticuerpos del isotipo IgM que generalmente reconocen más de una molécula de gangliósidos, por ejemplo, los anticuerpos monoclonales humanos 2-39M y 32-27M (Furukawa K., et at. 1988, J. Biological Chemistry, 263: 18507) y los anticuerpos murinos GMR8 and GMR3 (Ozawa H. et al, 1992, Biochem. Biophys., 2(294):427). Otros autores han informado sobre la generación de una especie específica de anticuerpos antigangliósidos N-glicolilados, siempre del isotipo IgM, entre los que se encuentran los anticuerpos monoclonales Y-2-HD1, contra NGcGM_{2} (Samai Y. et al., 1988, Bioch Biophys. Act., 958, 368) y MK2-34 contra la misma molécula (Miyake, M. et al, 1990, Cancer Res. 48, 6154).
No obstante, Watarai (Watarai, S. et al. 1995. J. Biochem. 117, 1062) generó el anticuerpo monoclonal SHS-1 contra los gangliósidos N-glocolilados i-activos y Nakumara obtuvo el anticuerpo monoclonal YK-3 contra
(NGc-NGc) GD1c (Nakumara et al, 1995, J. of Biolog. Chemist., 8 (270):3876). Recientemente Vázquez, et al., (Vázquez, A. M. et al, 1995, Hybridoma, 14, 6, 551) informó de la generación del anticuerpo monoclonal P3, que reconoce la mayoría de las moléculas Gangliósidas que contienen la forma N-glicolilada del ácido siálico, así como los glicolípidos sulfatados.
Nagai et al. han generado el anticuerpo monoclonal HMA1 contra Gangliósidos (Nagai Y. et al. Patente US 4.965.198). Obtuvieron un anticuerpo monoclonal específico contra el Gangliósido NGcGM2 a partir de ratones portadores de una enfermedad autoinmune. Si bien informaron de varios de estos anticuerpos que además reconocían otros Gangliósidos N-glicolilados designados como PyK, YH02, YH03, YH04, YH05, YH06 y YH07.
Además, Yamasaki, M. et al., en su Patente US 4.942.131, informan de la generación de Mabs YH08, YH09, YH10 e YHH11 contra el Gangliósido NGcGM3 4-O-Acetil, también en ratones con enfermedad autoinmune.
También se han obtenido anticuerpos monoclonales contra Gangliósidos empleando estas moléculas como lactones o a partir de líneas de células que contenían Glangliósidos (Patentes US 5.308.614, 5.240.833, 5.389.530 y 5.500.215).
Igualmente, se han obtenido diferentes anticuerpos monoclonales, tanto murinos como humanos, contra gangliósidos GD3, GD2 y GM2, todos de la forma Nacetilada y la mayoría de ellos de las subclases IgM e IgG3 (Pukel, C.S. et al. 1982, J. Exp. Med., 115: 1133-1147; Hirabayashi, Y. et al. 1985, J. Biol. Chem., 260: 13328-13333; Solicitud de patente WO 86/00909; Miyake, M. et al. 1988, Cancer Res., 48: 6154-6160; Kawashima, I. et al. 1992, Molecular Immunology, 29, 625-632; Kotani,. M. et al. 1992, Biochimica et Biophysica Acta, 1117: 97-103).
La inmunoterapia pasiva con anticuerpos monoclonales contra gangliósidos ha sido utilizada en ensayos clínicos para el tratamiento de algunos tumores como los melanomas y neuroblastomas. El tratamiento de melanomas ha sido intra-lesión o sistémico y, aunque los resultados parecen alentadores, sólo un reducido número de paciente mostró remisiones totales o parciales (Houghton, A.N. et al., 1985, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82: 1242; Dippold, W.G. et al, 1988, JCancer Clin. Oncol, 24: 865; Vadhan-Raj, S. et al. 1988, J. Clin. Oncol., 6: 1636; Saleh M.N. et al. 1992, Cancer Res., 52: 4332-4347).
Estos anticuerpos surtieron efecto en estudios de citotoxicidad mediados por complementos o células (Ravindramath M.H. et al. 1991, Inter. Rev. Immunol., 7, 303).
Hasta la fecha, todos los anticuerpos monoclonales obtenidos contra gangliósidos N-glicolilados son del isotipo IgM y la toxicidad que provocan es mediada por complemento.
Los IgM generalmente presentan una baja afinidad con los antígenos y es difícil utilizarlos para el diagnóstico o tratamiento de Mabs radio etiquetados. Aunque fijan bien el complemento y garantizan una buena citotoxicidad, la posibilidad de purificación a gran escala es mucho más complicada que con el isotipo IgG.
Además, se ha dicho muy poco sobre los anticuerpos monoclonales contra las glicoproteínas N-glicoliladas y la mayoría de ellos ha sido con fines de diagnóstico.
Devine et al. describieron el anticuerpo monoclonal 3E1.2 que reconoce una mucina N-glicolilada (glicoprotéica) expresada en el 90%de los tumores de mama estudiados por la inmunohistoquímica (Devine, P.L. et al. 1991, Cancer Res. 51(21): 5826-36).
También se ha publicado un anticuerpo monoclonal designado JAM3 que reconoce las formas N-acetiladas y N-glicoliladas de una proteína 250 kD presente en la superficie de los quistes producidos por el ataque de la Entamoeba (Avron, B. et al. 1987, Mol Biochem Parasitol. (3): 257-266).
Revelación de la invención
La novedad de la presente invención consiste en haber obtenido un anticuerpo monoclonal altamente específico para la secuencia del oligosacárido ácido siálico N-glicolilado-galactosa-glucosa, presente tanto en gangliósidos como en glicoproteínas. Además, la característica de ser una inmunoglobulina del isotipo IgG lo hace más específico y, por tanto, de mayor afinidad para las moléculas que reconoce, favoreciendo su actividad biológica. De manera inesperada, este anticuerpo demostró su capacidad para provocar la muerte celular directamente en las células portadoras de dicha secuencia de oligosacáridos.
Descripción detallada de la invención Obtención del gangliósido NGcGM3
Para obtener el glangliósido NGcGM3, se empleó una modificación de la técnica de Hakomori. (Hakomori, S. et al. 1974, Methods in Enzymology, 32:, Parte B, 350), utilizando fuentes naturales como eritrocitos de caballo. El rendimiento de la extracción del Gangliósido NGcGM3 fue entre 180 y 300 mg por litro de eritrocitos de caballo con una pureza superior al 90% corroborado por la cromatografía de líquidos de alta eficacia de acuerdo con el método de Gazzotti (Gazzotti, G. et al. 1985, J. of Chromatography, 348: 371-378).
Obtención del inmunogen
Para obtener el inmunogen, el Gangliósido NGcGM3 es ligado hidrofóbicamente a las lipoproteínas humana de muy baja densidad (VLDL) obtenidas de acuerdo con Dumontet et al., (Dumontet, C. et al.1994.Cancer lmmunol Immunother. 38:311-318).
Esquema de inmunización
Para obtener Mabs IgG anti-gangliósidos, se empleó el siguiente método de inmunización. Se inmunizaron ratones u otras especies mamíferas con preparaciones de vacunas que contenían entre 0,03 y 0,5 mg del Gangliósido NGcGM3 ligado a VLDL por dosis y un adyuvante seleccionado de entre los siguientes: albúmina, adyuvante de Freund completo o incompleto o Montanide ISA 51.
Antes y después del período de inmunización, se extrajeron muestras de sangre de los animales para obtener suero con el fin de monitorizar los anticuerpos generados en los animales contra el Gangliósido empleado como antígeno. Con este fin se emplea cualquiera de los métodos de inmunoensayos conocidos para detectar la reacción antígeno-anticuerpo (Ag-Ab).
Los animales son inmunizados con varias dosis, entre 2 y 8 en intervalos de tiempo que varían entre 7 y 14 días. La administración se realiza por vía subcutánea o intramuscular con volúmenes comprendidos entre 0,1 y 0,2 mL. Otras vías posibles de inmunización son la intravenosa y la intraperitoneal. Los animales que recibieron esta gama de dosis muestran una respuesta específica frente al Gangliósido utilizado como inmunogen. Entre el 70 y el 100% de los animales inmunizados tuvo una respuesta IgG específica al gangliósido NGcGM3.
Obtención de los anticuerpos monoclonales
Para la producción de Mabs específicos contra el gangliósido NGcGM3, los ratones con títulos de anticuerpos en suero contra este gangliósido recibieron una nueva inmunización con la preparación de la vacuna 3 días antes de obtener las células productoras de anticuerpos. Las células del bazo deberían ser preferentes, sí bien pueden utilizarse otras células.
Estas células se fusionan con células de mieloma, que proporcionan las células híbridas o hibridomas con la capacidad de expandirse indefinidamente "in vivo" e "in vitro". Para ello, puede emplearse cualquiera de los métodos de fusión de células conocidos. Para determinar los anticuerpos producidos por los hibridomas, se emplea preferentemente un ensayo inmunoenzimático. También pueden emplearse otros métodos de inmunoensayos. El procedimiento de este ensayo es el reconocimiento de los gangliósidos por supernatantes de hibridoma y la reacción antígeno-anticuerpo puede visualizarse empleando un segundo anticuerpo marcado con una enzima que se une al anticuerpo producido por el hibridoma en condiciones adecuadas y que es, al mismo tiempo, detectado.
El hibridoma, una vez seleccionado, es clonado al menos 2 veces (por ejemplo, limitando la dilución). El Mab obtenido puede producirse "in vitro" en un medio de cultivo adecuado, como cualquiera de los descritos en el estado de la técnica, y después purificado de dicho supernatante del cultivo de tejido. En este caso, entre el 1 y el 8%de los clones secretores eran específicos con el Gangliósido GM3 N-glicolil.
Otro método de producción de anticuerpos consiste en la inyección del hibridoma en animales (por ejemplo, animales singénicos). El hibridoma provoca la formación de tumores no sólidos que proporcionan una gran concentración del anticuerpo deseado en el riego sanguíneo y en el exudado peritoneal del huésped animal.
Purificación del anticuerpo monoclonal
La purificación de los anticuerpos monoclonales se realiza a partir del fluido ascítico obtenido por la inoculación de 0,2 x 10^{6} células del anticuerpo monoclonal que produce hibridoma en la cavidad peritoneal de los ratones Balb/C, tratado previamente con adyuvante de Freund como agente ascitogénico.
El fluido ascítico es diluido hasta la mitad en una solución tampón de glicina 1,5 M, NaCL, 3M, pH 8,9 y es aplicado a una matriz de proteína A-Sefarosa a un caudal de flujo de 60 mL/h. La elución de Mab se efectúa empleando una solución tampón de citrato 0,14 M, pH 6.
La concentración de Mabs purificados se calcula por el método de Lowry (Lowry, G.H., 1951, J. Biol. Chem.,
193: 256) y utilizando el coeficiente de absorción de la murina IgG1 a 280 nm. La especificidad es confirmada con ELISA.
Se obtuvieron entre 2 y 5 mg de anticuerpo por mL de ascitis; con un porcentaje de pureza superior al 95%. Esto fue corroborado mediante cromatografía de líquidos de baja presión.
Estudios de especificidad
Para determinar la especificidad de los anticuerpos monoclonales obtenidos, se realizan estudios inmunoenzimáticos de los Mabs producidos en placas ELISA y en cromatografía en capa fina empleando Gangliósidos N-acetilados (GM1, GM2, GM3, GM1, GD1a, GD1b, GD3 y GT1b) y N-glicolilados (GM3, GM2, GM1a, GM1b, GD1c y GD3).
Para realizar la cromatografía en capa fina de alta resolución de los glicolípidos, se emplea el sistema disolvente (Cloroformo:Metanol:KCI 0,25% y 2,5 M HN_{3}) (5:4:1) (v:V). El revelado químico con Orcinol realiza la visualización de las bandas.
Las placas van revestidas de plástico con una solución de poliisobutilmetacrilato y se secan al aire a temperatura ambiente durante la noche. El bloqueo se realiza durante aproximadamente 30 minutos con una solución de albúmina de suero bovino del 1% disuelta en una solución tampón de fosfato salino (PBS), pH 74. Posteriormente, los anticuerpos monoclonales se incuban en la solución bloqueadora.
Seguidamente, las placas se lavan con PBS y se añade la inmunoglobulina anti-ratón conjugada con peroxidasa durante una hora. Las placas vuelven a lavarse y se añade la solución del substrato de enzimas hasta que se visualizan las bandas. Finalmente se comparan los revelados químico e inmunológico. Como resultado, el IgG reconoció sólo el gangliósido NGcGM3.
Determinación de la citotoxicidad
Para determinar sí los anticuerpos generados producen la muerte de células directamente o por algunas de las demás formas citotóxicas, se incuban 10^{7} cél/mL del mieloma de murina P3X63 que contiene MGcGM3 a 4ºC y 37ºC respectivamente con el anticuerpo monoclonal entre 0,01 y 1 mg/mL durante 30 minutos. Luego se emplea en método azul Tripan para realizar los estudios de viabilidad. El número de células muertas como consecuencia del efecto de los anticuerpos puede contarse utilizando ioduro de propidio o cualquier otro marcador de viabilidad.
Para estudiar la citotoxicidad mediada por complemento, se emplearon 10^{7} células por mL; se añaden anticuerpos monoclonales en concentraciones comprendidas entre 0,01 y 0,5 mg/mL. Se añade suero de conejo, que tiene elevadas concentraciones de proteínas de complemento, a diluciones de 1/20 a 1/2 y se incuban durante 1 hora a 37ºC. La citotoxidad mediada por complemento se determinó mediante recuentos de viabilidad tal como se ha descrito antes o empleando el método de liberación Cr^{51} en el que las células de mieloma radio etiquetadas P3X63 liberan al supernatante del cultivo el isótopo cuando mueren.
La citotoxicidad directa se midió empleando diferentes métodos que revelaron valores comprendidos entre el 50 y 85%de células muertas respecto del número total de células estudiadas.
Determinación de la distribución de anticuerpos monoclonales
Los Mabs generados pueden utilizarse tanto para diagnóstico como para tratamiento, marcados con un radio isótopo como el 99mTc, Re 186 y Re 188. Schwarz y Steinstrasser (Schwarz A. y Steinstrasser, A. 1987, J. Nucl. Med.
28: 721) han descrito el método para marcar anticuerpos monoclonales con radio isótopos que fue modificado por Mather y Ellison (Mather S.J. y Ellison D., 1990, J. Nucl. Med. 31: 692-697). El control de calidad del marcaje se realiza mediante cromatografía en papel Whatman 3MM. El porcentaje de marcaje obtenido fue de 98 y 100%.
Para determinar el posible uso del Mab, se inocularon 10 ratones con el tumor P3X63 y se emplearon otros 10 ratones como controles normales (no se inoculó ningún tumor). Se esperó el tiempo necesario para que creciera el tumor y luego el Mab 14F7 marcado 99mTC fue inyectado por vía intravenosa a los 20 ratones.
La monitorización de la biodistribución de la secuencia de anti-oligosacáridos se realiza en grupos de 5 animales (5 sanos y 5 con tumor) 4 y 24 horas después de la inyección. Los animales son sacrificados y se pesan los principales órganos y tumores y se cuantifica la emisión gamma por separado al final del estudio.
Los anticuerpos monoclonales se distribuyeron en los animales sanos principalmente en la sangre, hígado y riñón, mientras que en los animales con el tumor, el Mab se localizó en los primeros órganos y, preferentemente, en el tumor a las 24 horas.
Reconocimiento de Mab en tejidos normales y fetales
Los Mabs radioetiquetados, como se han descrito en el estado de la técnica, pueden utilizarse para detectar tumores donde se exprese la secuencia de oligosacáridos.
La radiactividad de todo el cuerpo puede estudiarse con una Cámara Gamma. La adquisición de imágenes se realiza a los 5 minutos y 1, 3, 5, 24 y 48 horas después de la inyección de Mab. El Mab es localizado sólo en el tumor y en los órganos excretores.
Los Mabs también pueden unirse directa o indirectamente a otros agentes terapéuticos como fármacos, radio isótopos, inmunomoduladores, lectinas y toxinas. Entre los modificadores de respuesta biológica (inmunomoduladores) que, de algún modo, pueden incrementar la destrucción del tumor por parte del Mab de la presente invención se incluyen linfocinas como: Factor de Necrosis Tumoral, Factor Activador de Macrófagos, Factor Estimulador de Colonias, Interferonas, etc.
Se realizaron estudios inmunohistoquímicos con fines de diagnóstico. Las secciones de tejido se fijaron en una solución de formalina tamponada del 10% y deshidratada, clarificada y embebida en parafina. La histopatología fue estudiada en secciones de tejido teñidas con Hematoxilina-Eosina.
Las secciones serie de los bloques de parafina empleados para el estudio histopatológico se inmunotiñeron empleando el método de complejo biotina-estreptavidina-peroxidasa, descrito anteriormente (Hsu, S. M. y Raine, L., 1981, J. Histochem Cytochem. 29: 1349-1353).
Las secciones desparafinadas y deshidratadas se trataron con una solución de metanol de peróxido de hidrógeno del 3% durante 30 minutos para eliminar la actividad de la peroxidasa endógena. Las secciones de tejido se incubaron con los Mabs purificados. Seguido por anticuerpos anti-ratón biotinilados y complejo estreptavidín-peroxidasa (Dakopans) a temperatura ambiente.
Entre las incubaciones, las secciones se lavaron con una solución tampón salina Tris-HCI. La reacción de la peroxidasa se reveló con 30% H_{2}O_{2} y 3-3 diaminobencidina.
Los portaobjetos se lavaron con agua del grifo, se tiñeron con Hematoxilina de Mayer, se montaron con bálsamo y se cubrieron con cubre objetos. La reacción con la enzima produce un color marrón rojizo.
Se estudiaron tejidos humanos de mama, pulmón, piel y del sistema nervioso así como tejidos fetales y adultos normales.
Se obtuvieron biopsias limpias de tejidos patológicos durante la primera hora después de la intervención quirúrgica. Los fragmentos de las biopsias fueron congelados, posteriormente se seccionaron y los porta objetos se almacenaron congelados hasta que se realizó el estudio.
La utilización de tejidos fetales para el estudio se debe al hecho de que en repetidas ocasiones se ha informado de la asociación de los Gangliósidos con antígenos oncofetales, así como la similitud de estas moléculas en humanos fetales y tumorales (Cahan, L. et al. 1982 Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 79: 7629-7633).
Las secciones de tejido fetal se obtuvieron de fetos de entre 12 y 18 semanas.
Los fragmentos de tejido adulto normal se obtuvieron de sujetos fallecidos en accidentes y/o de muerte encefálica durante la primera hora después del exitus letalis.
Entre los tumores estudiados, los tumores de pulmón y del sistema nervioso central de diferente etiología resultaron negativos, así como las secciones de tejidos humanos normales. Mientras que las secciones de tejido de melanomas y tumores de mama resultaron todas positivas, así como las secciones de tejido fetal del sistema digestivo (hígado, estómago, intestino delgado y grueso) y el sistema renal.
Efecto antitumoral
Para demostrar el efecto antitumoral de los anticuerpos monoclonales contra los Gangliósidos NGcGM3, los animales inoculados con el tumor portador del Gangliósido objetivo (mieloma P3X63) fueron tratados con los anticuerpos obtenidos. La dosis puede variar de 0,01 mg/kg de peso a 200 mg/kg de peso en administraciones de una o más diarias durante uno o varios días. Los anticuerpos pueden administrarse por inyección parenteral (intravenosa, intraperitoneal, intramuscular, subcutánea, intracavitaria o transdérmica).
En un experimento típico, los ratones tratados con el anticuerpo tienen un índice de supervivencia comprendido entre el 30 y el 80% comparado con los ratones de grupo de control, corroborado por el test Log Ram (Cox y Oakes (1984) Analysis of survival Data edits. Chapman Hall). Se hallaron diferencias significativas (< 0,05%) entre el grupo tratado con el Mab y el grupo de control.
Ejemplos Ejemplo 1 Respuesta específica de IgG a NGcGM3, de los ratones inmunizados con la preparación de la vacuna Complejo NGcGM3/VLDL/Adyuvante Freund, medido mediante una técnica inmunoenzimática
Se inyectó vía intramuscular a ratones Balb/C hembras de 6-8 semanas 0,2 mg de la preparación de vacuna humana NGcGM3/VLDL, con el adyuvante de Freund completo en la primera dosis y el adyuvante de Freund incompleto en las siguientes dosis (producido por SIGMA) mezclado en volúmenes iguales. Cada animal recibió 6 dosis. Las primeras 4 dosis semanalmente y las 2 dosis restantes cada 14 días. Las extracciones de sangre se realizaron antes de la primera dosis y cada 2 semanas.
Los niveles de anticuerpo se midieron en el suero de los animales empleando un ELISA indirecto en placas Polysorp (marca comercial Nunc), donde se inmovilizaron los Gangliósidos siguiendo el método descrito a continuación:
Los Gangliósidos NAcGM3 y NGcGM3 se disolvieron por separado en metanol (4 \mug/ml) y se añadieron
50 \mug/pocillo. La placa se colocó a 37ºC durante una hora y media para evaporar el metanol. Después, se añadieron 100 ml/pocillo de TRIS-HCI 0,05M, solución tampón pH 7,8, que contenía un 2% de albúmina de suero bovino (BSA) y se dejó incubar durante una hora a temperatura ambiente. Luego, se diluyeron 50 \mul del suero en la misma solución tampón y se dejó incubar toda la noche a temperatura ambiente.
Los pocillos se lavaron 4 veces con 200 \mul de una solución tampón salina de fosfato (PBS) y se añadieron 50 \mul de un antisuero de inmunoglobulinas anti-ratón conjugado con biotina en una dilución adecuada durante una hora y media a 37ºC.
Tras un nuevo lavado con PBS, se añadieron 50 \mul de una dilución adecuada de estreptavidin de fosfatasa alcalina. Finalmente, se realizó el último lavado y se disolvieron 100 \mul de substrato de p-nitrofenilfosfato en solución tampón de dietanolamina, pH 9.8 (1 mg/ml). La absorbancia se midió en un lector ELISA a 405 nm.
La Figura 1 muestra los resultados de O.D. a 405 nm del suero de cada animal diluido 1/80 en el día 56 del experimento. La respuesta contra el NGcGM3 y GM3 fue determinada por ELISA empleando un conjugado anti IgG de ratón biotinilado y estreptavidin de fosfatasa alcalina de Jackson.
Más del 70% de los animales inmunizados con la preparación de la vacuna tenían valores a O.D. 405 nm por encima de 0,5 contra el NGcGM3. Todos los animales inmunizados mostraron respuesta IgG contra el NGcGM3, sin ninguna respuesta observada al NAcGM3, a pesar de la mínima diferencia entre estas dos moléculas.
La Figura 2 muestra la respuesta específica sostenida de los anticuerpos (isotipo IgG) contra el Gangliósido NGcGM3, tres meses después de recibir la última dosis de inmunización, sin respuesta mostrada contra el NAcGM3.
Ejemplo 2 Obtención de anticuerpos monoclonales contra el NGcGM3
Los anticuerpos fueron generados inmunizando ratones Balb/C empleando el procedimiento descrito en el Ejemplo 1.
Tres días antes de la fusión, los animales volvieron a inmunizarse con el inmunogen NGcGM/VLDL, utilizando el adyuvante completo de Freund. Posteriormente, se obtuvieron los bazos de los ratones y una suspensión celular preparada pasando el tejido por un tamiz de acero inoxidable o por perfusión del bazo. La fusión celular se realizó como describen Köhler y Milstein (Nature, 1975, Nº 256, 495-497) con algunas modificaciones.
Las células del mieloma de murina Ag8 6.5.3. P3/X63 no secretor se fusionaron con los esplenocitos de murina en una proporción de 1:10, en 0,5 mL de medios de fusión que contenían un 42% de polietilenglicol (3000-3600 Sigma) en medios RPMI 1640.
Las células se cultivaron en medios selectivos HAT (hipoxantina/aminopterina/timidina) a 37ºC con una atmósfera húmeda del 5% de CO_{2}, después de la fusión celular.
Entre 10 y 15 días después de realizar la fusión celular, se inició el ensayo para detectar la presencia de anticuerpos en el supernatante de los cultivos de células del hibridoma empleando la técnica ELISA del ejemplo 1.
Las células del hibridoma del cultivo que reaccionaron con el gangliósido motivo de estudio fueron seleccionadas y clonadas dos veces por el método de dilución limitadora en presencia de células condicionantes.
La especificidad de los anticuerpos producidos por los hibridomas seleccionados fue determinada empleando la técnica ELISA indirecta con una batería de glicolípidos.
El número de clones específicos contra el Gangliósido NGcGM3 fue de 5,5%. Uno de los clones obtenidos fue denominado 14F7.
Ejemplo 3 Determinación de la subclase del anticuerpo monoclonal 14f7
Para determinar la subclase de inmunoglobulina del anticuerpo monoclonal de la presente invención, se empleó un ELISA indirecto en placas cubiertas de NGcGM3 como se describió en el ejemplo 1, pero sustituyendo el suero por diluciones del supernatante del hibridoma o del Mab purificado.
Se añadieron Mabs murinos Anti IgG1, IgG2a, IgG2b e IgG3 conjugados con biotin producidos en ratas (Pharmigen) diluidos en solución tampón de incubación. Tras una hora de incubación a 37ºC, las placas se lavaron y se añadió estreptavidin conjugado con fosfatasa alcalina diluido en la solución tampón de incubación. Como controles de cada subclase, se emplearon Mabs murinos previamente caracterizados.
Finalmente, se añadió la solución de substrato. Se efectuó la lectura de absorbancia como se ha descrito anteriormente. La Figura 3 muestra que el Mab 14F7 pertenece ala subclase IgG1.
Ejemplo 4 Estudio de la especificidad del anticuerpo monoclonal 14f7 empleando inmunotinción en cromatografía en capa fina de alta resolución
Se empleó la cromatografía en capa fina de alta resolución para separar los glicolípidos. El sistema disolvente empleado fue Cloroformno: Metanol: KCL 0,25% y 2,5 M de NH3 (5:4:1) v: v. Las bandas se visualizaron mediante el revelado químico con Orcinol (Svennerholm L., 1964, J. Lipid. Res., 5, 145). Mientras que para la inmunotinción se empleó el método de Kawashima Y. Y col. 1993 (J. Biochem, 114, 186).
Las placas donde se realizaron previamente las cromatografías en capa fina eran de plástico recubiertas por inmersión durante 75 segundos en una solución de 0,1% de poliisobutilmetacrilato (PIBM) en N-hexano. Las placas luego se secaron a temperatura ambiente durante 30 minutos. Luego se aplicó una solución PIBM del 1% en los bordes de las placas manteniéndolas toda la noche a temperatura ambiente.
El bloqueo de interacciones no específicas se realizó aplicando durante 30 minutos una solución de albúmina de suero bovino del 1% disuelta en PBS pH entre 7,2 y 7,4. Inmediatamente después de que las placas fueran incubadas con el Mab 14F7 a una concentración de entre 0,01 y 0,02 mg/ml en la solución bloqueadora.
Las placas se lavaron con PBS y se incubaron con antisuero de inmunoglobulinas anti-ratón conejo conjugado con peroxidasa de rábano diluido en la solución tampón bloqueadora.
Tras una hora de incubación removiendo a temperatura ambiente, las placas se lavaron nuevamente y se añadió la solución de substrato consistente en 0,4 mg/mL de ortofenilendiamina (C6H8N2) Sigma en una solución tampón de citrato-fosfato 80 mM pH 5 con 0,12% de Peróxido de Hidrógeno (H2O2) (Riedel de Haen). La reacción se detuvo con lavados repetidos con solución tampón de fosfato.
La reacción mostró especificidad sólo para los Gangliósidos NGcGM3 y no se observó reacción alguna para el resto de gangliósidos N-glicolilados evaluados como GM1a, GM1b, GM2 y N-Acetilado (Figuras 4 y 5).
Ejemplo 5 Reconocimiento de tejidos tumorales y fetales por el anticuerpo monoclonal 14F7
Las secciones de tejido se fijaron en una solución de formalina tamponada del 10%y deshidratada, clarificada y embebida en parafina. La histopatología fue estudiada en secciones de tejido teñidas con Hematoxilina-Eosina.
Las secciones serie de los bloques de parafina empleados para el estudio histopatológico se inmunotiñeron empleando el método de complejo biotina-estreptavidina-peroxidasa, descrito anteriormente (Hsu, S. M. y Raine, L., 1981, J. Histochem Cytochem. 29: 1349-1353).
Las secciones desparafinadas y deshidratadas se trataron con una solución de metanol de peróxido de hidrógeno del 3% durante 30 minutos para eliminar la actividad de la peroxidasa endógena. Las secciones se incubaron con el Mab 14F7 purificado durante una hora a temperatura ambiente. Seguido por anticuerpos anti-ratón biotinilados y complejo estreptavidín-peroxidasa (Dakopans) a temperatura ambiente.
Entre las incubaciones, la secciones se lavaron con una solución tamponada salina de Tris-HCl. La reacción de peroxidasa se reveló con 5 mL de una solución tamponada de Tris, 0,005 mL de 30% H_{2}O_{2} y 3mg de 3-3 diaminobencidina.
Los portaobjetos se lavaron con agua del grifo, se tiñeron con Hematoxilina de Mayer, se montaron con bálsamo y se cubrieron con cubre objetos. La reacción con la enzima produce un color marrón rojizo.
Los fragmentos de tejido adulto normal se obtuvieron de sujetos fallecidos en accidentes y/o de muerte encefálica durante la primera hora después del exitus letalis. Se obtuvieron biopsias limpias de tejidos patológicos durante la primera hora después de la intervención quirúrgica. Las secciones de tejido fetal se obtuvieron de fetos de entre 12 y 18 semanas durante la primera hora después del aborto inducido. Todos los fragmentos de biopsia se lavaron en solución salina y se congelaron inmediatamente en nitrógeno líquido y se almacenaron a -80ºC.
Se obtuvieron secciones serie de 5 \mum de los fragmentos congelados en un criostato Leica a -25ºC. Las secciones se secaron con aire y se utilizaron inmediatamente o se almacenaron a -20ºC envueltas en papel de aluminio. En un caso, los porta objetos se fijaron en el momento de ser usados en paraformaldehído al 4% durante 20 minutos.
La Figura 6 muestra es estudio inmunohistoquímico del Mab 14F7 en tejidos humanos normales. No se observa reactividad del Mab en la membrana ni en la región citoplásmica de los tejidos.
La Figura 7 muestra el mismo estudio para tejidos patológicos. Todos los tejidos de mama (33/33) y de melanoma (20/20) estudiados resultaron positivos. Mientras que 70 tumores de pulmón de diferente etiología resultaron negativos, así como 33 tumores diferentes del sistema nervioso central.
La Figura 8 muestra el reconocimiento del Mab 14F7 de los tejidos fetales del sistema digestivo y renal.
Ejemplo 6 Reconocimiento del gangliósido NGcGM3 por el Mab 14F7 en líneas de células estudiadas por citometría de flujo
Las líneas de células estudiadas fueron el mieloma murino P3X63 que expresa GM3 y NGcGM3 descrito por J. Muthing et al. (Muthing, J. et al., 1994, J. Biochem 116: 64-73) y el mieloma B16 que expresa GM3. Las células se cultivaron en medios RPMI con suero fetal bovino al 8%. Las células se ajustaron a una concentración de 10^{7} células/mL de una solución de fosfato salino pH 7.4 que contenía 0,02%de azida de sodio y 1% de albúmina de suero bovino. En cada tubo se añadió 0,1 mL de la suspensión de células seguido de 0,05 mL de la solución de Mab 14F7 disuelta en una solución tampón de fosfato salino para obtener una concentración final de 0,1 mg/mL y se incubó durante 30 minutos a 4ºC. Las células luego se lavaron con la solución que fueron disueltas.
Luego los cultivos celulares se centrifugaron durante 5 minutos a poca velocidad para precipitar las células. Seguidamente se añadió y se lavó el conjugado (Jackson) de biotín anti-ratón (IgG+IgM) después de 30 minutos de incubación a 4ºC. Finalmente se añadieron 0,002 mg de estreptavidin fluresceína (FITC) (Jackson) y se incubó en las misma condiciones que antes. Se efectuó entonces el último lavado, esta vez con la solución tampón de fosfato salino.
Se eliminó el supernatante después del último centrifugado y las células se resuspendieron en 0,6 mL de la última solución de lavado.
Un 80% de las células de la célula de mieloma P3X63 se tiñeron positivas con el anticuerpo monoclonal 14F7 (Figura 9).
Ejemplo 7 Estudio de citotoxicidad directa del anticuerpo monoclonal 14F7
La línea de células de mieloma murino P3X63 fue incubada con el Mab 14F7 como se ha descrito en el Ejemplo 6. Tras el lavado, se añadió a las células 0,01 mL de una solución de ioduro de propidio en una solución tampón de fosfato salino para determinar la viabilidad celular empleando la citometría de flujo.
Los resultados revelaron que el 78% de las células murieron (Figura 10).
Ejemplo 8 Estudio de la biodistribución del anticuerpo monoclonal 14F7 marcado 99mTc en ratones Balb/C, sanos y portadores de tumores de mieloma P3x63
Veinte ratones Balb/C hembras con un peso entre 20 y 22 g (10 sanos y 10 con el tumor de Mieloma P3X63 inoculado vía intraperitoneal) recibieron una inyección intravenosa del Mab 14F7 marcado 99mTc.
La relación de concentración de marcaje fue de 0,03 mg del Mab14F7/60 \muCi de 99mTc.
Los resultados de la cuantificación de radiactividad en los diferentes órganos se realizaron en 5 animales de cada grupo, a las 4 y 24 horas después de la inyección. Se sacrificó a los animales y se midió el peso de cada órgano en una balanza Sartorius. La radiactividad de todos los tubos se determinó inmediatamente aproximadamente 25 horas después de comenzar el experimento, en un contador gamma WALLAC (modelo WIZARD 1470).
El método de marcaje fue descrito previamente por Schwarz y Steinstrasser (1987) y modificado por Muther y Ellison en 1990.
El Mab marcado 14F7 fue eliminado en los ratones sanos a través del riñón y el hígado (Figura 11).
En los ratones portadores del tumor de Mieloma P3X63 se reveló la unión del Mab 14F7 a las 4 horas (12% de radiactividad total inyectada por gramo de tejido) a y las 24 horas (35% de radiactividad total inyectada por gramo de tejido). La eliminación del Mab fue principalmente a través de los riñones (Figura 12).
Ejemplo 9 Efecto antitumoral del anticuerpo monoclonal 14F7 en ratones Balb/C portadores de mieloma ascítico P3x63
Ratones hembra Balb/C con un peso de 20-22 g fueron inyectados vía intravenosa con 6 dosis de anticuerpo monoclonal 14F7 (un grupo con 0,1 y un segundo grupo con 0,2 mg) cada 2 días, en una solución tampón de fosfato salino. Tres días antes del experimento, la cavidad peritoneal fue irritada con adyuvante de Freund incompleto para favorecer el momento en el que el tumor se hace mensurable. La cantidad de 10.000 células de Mieloma murino P3X63 fue inoculada el día 0 del experimento vía intraperitonal, al mismo tiempo que comenzaba la terapia pasiva con anticuerpo monoclonal 14F7, aunque fue inoculado vía intravenosa. Si bien el control de buena prognosis (mejor tratamiento) empleado por comparación fue un tercer grupo tratado vía intravenosa con Ciclofosfamida (Shangai Hua Lian Pharmaceutical Corp.) a una dosis de 20 mg/kg de peso corporal, consistente en una dosis semanal durante todo el experimento. Se empleó el tratamiento intravenoso con solución tamponada de fosfato salino, pH 7,4 como control del experimento.
La Figura 13 muestra los resultados de supervivencia en los 4 grupos descritos anteriormente. En los grupos tratados con 14F7 (0,1 y 0,2 mg) y con 20 mg/kg de peso de Ciclofosfamida no se apreció ningún tumor mesurable en algunos animales.
Los resultados de supervivencia favorecieron a los grupos tratados con Mab 14F7. El día 30 del experimento, aunque no vivía ninguno de los animales del grupo de control, 6 animales seguían aún con vida, tanto del primer grupo (0,1 mg del Mab) como del grupo tratado con Ciclofosfamida y 7 animales del segundo grupo (0,2 mg del Mab). A los 60 días de tratamiento, 2 animales del primer grupo y 2 animales del grupo tratado con Ciclofosfamida aún vivían, mientras que del segundo grupo 5 animales aún seguían con vida.
Ejemplo 10 Inhibición del crecimiento tumoral del mieloma P3x63 sólido en ratones atímicos
Diez ratones atímicos hembra, de los NMRI nacidos, con un peso entre 20 y 22 gramos fueron inoculados vía subcutánea con 10^{6} células de la línea tumoral del Mieloma murino P3X63 el día 0 del experimento. Los animales se dividieron en dos grupos de 5.
Un grupo comenzó el tratamiento vía intraperitoneal con el Mab 14F7 purificado, 0,15 mg por dosis (6 dosis) cada 2 días. Mientras que el otro grupo actuó como control y recibió por la misma vía y el mismo número y frecuencia de dosis de igual volumen de solución tampón de fosfato salino.
La Figura 14 muestra la inhibición del crecimiento de los tumores en los ratones tratados con el Mab 14F7 con respecto al grupo de control. Se observaron diferencias significativas entre los dos grupos.
Breve descripción de las ilustraciones
Figura 1: Muestra los niveles de anticuerpos de suero obtenidos contra el NGcGM3 y no contra el GM3 en día 56 del experimento, en ratones inmunizados con la preparación de la vacuna de adyuvante de Freund completo NGcGM3/VLDL.
Figura 2: Determinación mediante ELISA del isotipo de la respuesta de anticuerpos contra el Gangliósido NGcGM3 en el suero de los ratones 3 meses después de recibir la cuarta dosis de 0,2 mg de NGcGM3/VLDL/Freund Completo.
Figura 3: Determinación mediante ELISA de la subclase (IgG) de inmunoglobulina de anticuerpos monoclonales 14F7.
Figura 4: Reconocimiento mediante inmunotinción empleando la cromatografía en capa fina de gangliósidos N-glicolilados y N-acetilados que se utilizaron durante el estudio de la especificidad del anticuerpo monoclonal 14F7.
Figura 5: Reconocimiento del Gangliósido NGcGM3 por el anticuerpo monoclonal 14F7 mediante inmunotinción sobre cromatografía en capa fina.
Figura 6: No reconocimiento de tejidos adultos normales por el anticuerpo monoclonal 14F7 en estudios inmunohistoquímicos.
Figura 7: Reconocimiento inmunohistoquímico de algunos tumores humanos malignos y benignos por el anticuerpo monoclonal 14F7.
Figura 8: Reconocimiento inmunohistoquímico de tejido fetal humano normal por el anticuerpo monoclonal 14F7.
Figura 9: Reconocimiento de la línea de células del Mieloma P3X63 que expresa el Gangliósido MGcGM3 por el Mab 14F7 empleando la Citometría de Flujo.
Figura 10: Efecto citotóxico independiente del complemento del Mab 14F7 empleando la línea de células del Mieloma P3X63 mediante la técnica de ioduro de propidio con citometría de flujo.
Figura 11: Biodistribución del anticuerpo monoclonal 14F7 marcado 99mTc. Resultados de porcentaje de radiación gamma con respecto al peso en gramos del órgano estudiado en ratones Balb/c normales.
Figura 12: Biodistribución del anticuerpo monoclonal 14F7 marcado 99mTc. Resultados de porcentaje de radiación gamma con respecto al peso en gramos del órgano estudiado en ratones Balb/c portadores del tumor de Mieloma P3X63.
Figura 13: Efecto antitumoral de la terapia pasiva del anticuerpo monoclonal 14F7 en grupos de ratones Balb/c inoculados con el tumor de Mieloma ascítico murino P3X63, tratados con 0,1 y 0,2 mg de dicho anticuerpo, comparado con un grupo de control tratado con 20mg/kg de Ciclofosfamida y un grupo de control con PBS.
Figura 14: Inhibición del crecimiento tumoral "in vivo" del tumor de Mieloma sólido murino P3X63 en ratones atímicos de los NMRI nacidos.

Claims (11)

1. Anticuerpo monoclonal generado contra el gangliósido NGcGM3 que reconoce específicamente la secuencia de oligosacárido de ácido siálico N-glicolilado-galactosa-glucosa en gangliósidos y glicoproteínas, es de la subclase IgG1 y produce actividad citolítica de las células tumorales portadoras de dicha secuencia.
2. Anticuerpo monoclonal de acuerdo con la reivindicación 1 en el que dicha actividad citolítica de las células tumorales portadoras de la secuencia de oligosacárido de ácido siálico N-glicolilado-galactosa-glucosa puede ser dirigida o mediada por complemento.
3. Anticuerpo monoclonal de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 2 que es denominado 14F7, obtenido a partir del hibridoma del mismo nombre y depositado bajo el número de acceso provisional 98101901 en la Colección de Cultivos Celulares Europeos ECACC, Reino Unido el 19 de octubre de 1998.
4. Hibridoma que produce el anticuerpo monoclonal de la reivindicación 3 depositado bajo el número de acceso provisional 98101901 en la Colección de Cultivos Celulares Europeos ECACC, Reino Unido, el 19 de octubre de 1998.
5. Una composición farmacéutica que contiene una cantidad del anticuerpo monoclonal de las reivindicaciones 1 a 3 y que, además, contiene un diluente o un excipiente adecuado.
6. Una composición farmacéutica de acuerdo con la reivindicación 5 donde dicho anticuerpo puede unirse a agentes terapéuticos como fármacos, radio isótopos, inmunomoduladores, lectinas y toxinas.
7. Una composición farmacéutica de acuerdo con las reivindicaciones 5 y 6 destinada al tratamiento de neoplasmas malignos.
8. Una composición farmacéutica de acuerdo con la reivindicación 7 para el tratamiento del cáncer de mama, renal, del sistema digestivo y melanoma humano.
9. Un reactivo que contiene el anticuerpo monoclonal de las reivindicaciones 1 a 3 unido a marcadores como las enzimas, cromóforos, materiales quimioluminiscentes y radionucleótidos.
10. Un reactivo de acuerdo con la reivindicación 9 para la detección de células tumorales.
11. Un reactivo de acuerdo con la reivindicación 10 para la detección de células tumorales humanas de melanomas, mama, riñones y sistema digestivo como el hígado, colon, estómago y recto.
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Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002045740A1 (en) * 2000-12-08 2002-06-13 Children's Memorial Hospital Compositions containing gangliosides for use in the treatment of skin disorders
CU23007A1 (es) * 2001-04-06 2004-12-17 Ct De Inmunologia Molecular Ct De Inmunologia Mole Combinaciones inmunoterapéuticas para el tratamiencombinaciones inmunoterapéuticas para el tratamiento de tumores que sobre-expresan gangliósidos to de tumores que sobre-expresan gangliósidos
US20040115204A1 (en) * 2002-12-11 2004-06-17 Fanger Gary R. Antibodies to treat cancer
US20040147033A1 (en) * 2002-12-20 2004-07-29 Zachary Shriver Glycan markers for diagnosing and monitoring disease
CU23403A1 (es) * 2003-04-23 2009-08-04 Centro Inmunologia Molecular Anticuerpos recombinantes y fragmentos que reconocen el gangliósido n-glicolil gm3 y su uso para diagnóstico y tratamiento de tumores
CU23297A1 (es) * 2004-11-16 2008-07-24 Ct De Inmunologa A Molecular Formulaciones inmunoterapã0/00uticas para la inducciã"n de autoanticuerpos bloqueadores de la uniã"n de interleucina-2 a su receptor. su uso en el tratamiento del cã ncer
CN101835319B (zh) 2009-03-13 2014-05-07 奥斯兰姆有限公司 用于电子镇流器的外壳
HUE032519T2 (en) 2010-03-26 2017-09-28 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Antibodies to muc16 and methods of use thereof
US20120148559A1 (en) 2010-12-01 2012-06-14 Board Of Regents The University Of Texas System Compositions and method for deimmunization of proteins
US9433686B2 (en) 2011-01-31 2016-09-06 The Regents Of The University Of California Methods for treating castration resistant prostate cancer and metastasis by reducing B-cell number and/or function
CU24070B1 (es) 2011-12-27 2015-01-29 Ct De Inmunología Molecular Composiciones farmacéuticas para el tratamiento de tumores que expresan regf y gangliósidos n-glicolilados gm3 (neugcgm3)
CU24120B1 (es) 2012-03-01 2015-08-27 Ct De Inmunología Molecular Anticuerpos recombinantes con especificidad dual por los gangliósidos n-acetil gm3 y n-glicolil gm3
CN104651314B (zh) * 2015-02-14 2018-06-19 百泰生物药业有限公司 获得高产稳定表达细胞克隆的方法及由此获得的抗体分子
RU2758113C2 (ru) 2015-03-17 2021-10-26 Мемориал Слоан-Кеттеринг Кэнсер Сентер Антитела к muc16 и их применение
WO2016149485A1 (en) 2015-03-17 2016-09-22 The Regents Of The University Of California Novel chemoimmunotherapy for epithelial cancer
CN109721632B (zh) * 2017-10-27 2023-10-31 齐鲁制药有限公司 一种高纯度神经节苷脂gm1及其制备方法
PT110526B (pt) * 2018-01-26 2021-02-04 Univ Nova De Lisboa Anticorpo, fragmento funcional ou sonda do mesmo contra antigénios tumorais
CU24763B1 (es) 2021-12-21 2025-07-09 Ct Inmunologia Molecular Proteínas de fusión compuestas por un anticuerpo y una muteína agonista de interleucina 2

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4965198A (en) * 1985-12-24 1990-10-23 Konica Corporation Monoclonal antibody and method of manufacturing hybridoma producing the same
AU8212291A (en) * 1990-07-10 1992-02-04 Nkk Corporation Hybridoma which produces avian specific immunoglobulin g
EP0657471B1 (en) 1993-12-09 2001-10-24 Centro de Inmunologia Molecular Anti ganglioside monoclonal antibodies and their use in the specific active immunotherapy of malignant tumours

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