ES2282111T3 - Procesos para la creacion de microparticulas. - Google Patents
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Abstract
Método para la fabricación de micropartículas, el método comprende (a) preparación de una primera fase comprendiendo una solución de un excipiente disuelto en un primer solvente; (b) preparación de una segunda fase comprendiendo una segundo solvente el cual es al menos parcialmente soluble en el primer solvente; (c) preparación de una fase de extracción comprendiendo un tercer solvente el cual es un no-solvente para el excipiente, un solvente para la segunda fase, y un solvente para el primer solvente, en donde el primer solvente tiene una solubilidad en la fase de extracción entre cerca de 0, 1% y 25% en peso; (d) mezcla de una porción de la fase de extracción en la emulsión en una cantidad suficiente para iniciar el endurecimiento de las microgotas, de este modo formando micropartículas; y (e) evaporación a partir de las micropartículas de sustancialmente todo el solvente remanente en las micropartículas seguido del paso (e).
Description
Procesos para la creación de
micropartículas.
La presente invención en general se relaciona
con métodos de fabricación de micropartículas, y más
particularmente, con métodos de preparación de micropartículas
encapsulando agentes activos biológicamente, como los agentes
terapéuticos.
Varios métodos de fabricación de micropartículas
son bien conocidos en la técnica. Ejemplos de estos procesos
incluyen una emulsión de solvente orgánico simple y doble,
secamiento por rociado, extracción de solvente, evaporación de
solvente, separación de fase, acumulación simple y compleja, y
polimerización de interfase. Los métodos desarrollados para la
fabricación de micropartículas para la liberación de fármacos son
descritas en la literatura, por ejemplo, en Doubrow, ed.,
"Microcápsulas y Nanopartículas en la Medicina y la Farmacia"
(CRC Press, Boca Raton 1992) y Benita, ed., "Microencapsulación:
Métodos y Aplicaciones Industriales" (Marcel Dekker, Inc., New
York 1996).
Los procesos basados en la emulsión generalmente
comienzan con la preparación de dos fases separadas: una primera
fase, la cual generalmente consiste de una dispersión o solución de
un agente activo en una solución de polímero disuelta en un primer
solvente, y una segunda fase, la cual generalmente consiste de una
solución de surfactant y un segundo solvente que es al menos
parcialmente inmiscible con el primer solvente de la fase
dispersada. Después de que la primera y segunda fases son
preparadas, ellas son combinadas usando un mezclador dinámico o
estático para formar una emulsión, en la cual las microgotas de la
primera fase son dispersadas en la segunda fase o continua. Las
microgotas entonces son solidificadas para formar microgotas
poliméricas que contienen el agente activo. El paso de
endurecimiento es llevado a cabo mediante la remoción del primer
solvente de las microgotas, generalmente mediante procesos de
extracción o evaporación.
Varias patentes de los EE.UU. describen la
remoción del solvente por extracción. Por ejemplo, la patente de
los EE.UU. Nº 5.643.605 de Cleland et al. revela un proceso
de encapsulación en la cual la emulsión es transferida a un baño de
endurecimiento (i.e. medio de extracción) y gentilmente mezclado por
alrededor de 1 a 24 horas para extraer el polímero de solvente. El
largo período de tiempo requerido para la extracción no es deseado,
particularmente si el proceso va a ser operado continuamente. Otros
han publicado procesos que compensan la termodinámica no favorable
(extracción incompleta y lenta) mediante el uso de un amplio exceso
de un medio de extracción. Por ejemplo, la patente de los EE.UU.
Nº 5.407.609 de Tice et al. enseña la transferencia de
emulsión a un volumen de medio de extracción, que es preferiblemente
10 o más veces el volumen requerido para disolver todo el solvente
en las microgotas, de esta forma más del 20-30% del
solvente es inmediatamente removido. La patente de los EE.UU. Nº
5.654.008 de Herbert et al. revela similarmente un proceso en
el cual el volumen de un líquido agotado, o el medio de extracción
deben estar en el orden de diez veces el volumen saturado. El uso
de un amplio exceso de medio de extracción rápidamente extrae una
porción del solvente de cada micro gota, creando un gradiente de
concentración dentro de cada gota y formando un polímero de piel
sobre la superficie que ventajosamente atrapa al agente activo, pero
desventajosamente disminuye la extracción del solvente remanente a
partir de la porción central de la micro gota. Grandes volúmenes de
medio de extracción también pueden incrementar los procesos de
costos de equipamiento y operación, así como los costos asociados
con el reciclaje o disposición del medio de extracción usado.
La evaporación es otro acercamiento conocido en
la técnica para la remoción de solvente. Por ejemplo, la patente de
los EE.UU. Nº 3.391.570 de Fukushima et al. y la Nº 4.384.975
de Fong enseñan la remoción de solvente por evaporación de un
solvente orgánico de una emulsión, preferiblemente bajo presión
reducida o vacío. Los procesos de evaporación de solvente
generalmente ocurren lo suficientemente lento como para que la
composición solvente/polímero permanezca uniforme a lo largo de
cada microgota durante el paso de evaporación, de esta forma un
polímero de piel no es creado. Por esta misma razón, sin embargo,
el proceso de evaporación no es favorecido para el uso con muchos
agentes activos que se dividen dentro de la fase continua,
resultando en una pérdida significativa del agente activo dentro de
la fase continua y/o el medio de extracción, y consecuentemente una
escasa carga del agente activo en la micropartícula. La
evaporación, sin embargo, pudiera ser altamente deseable si cada
partición fuera sustancialmente evitada, ya que no es requerida
ninguna fase de extracción de solvente ni almacenamiento y
calentamiento como en el proceso de extracción.
Un esfuerzo combinando la evaporación y la
extracción es revelado en la patente de los EE.UU. Nº 4.389.330 de
Tice et al. ("Tice'330"). Tice '330 describe un método
basado en la emulsión para la fabricación de microesferas
poliméricas cargadas con el fármaco que usa procesos de remoción de
solvente en dos pasos: evaporación seguida por extracción. El paso
de evaporación es revelado por ser conducido mediante la aplicación
de calor, presión reducida, o una combinación de ambos, y es
implicado en remover entre 10 y 90% del solvente. Tice '330 también
revela que el medio de extracción con el solvente disuelto puede ser
removido y reemplazado con medio de extracción fresco,
preferiblemente sobre un base continua. Consecuentemente, el proceso
requiere tanto grandes volúmenes de medio de extracción como un
aislamiento intermedio de las microesferas combinadas con un cambio
en la composición del medio de extracción.
Li et al., J. Controlled Release
37:188-214 (1995) ("Li et al.")
describe un modelo de un proceso de remoción de solvente en el cual
una emulsión de la fase dispersada es formada en una fase continua
carente de una fase dispersada del solvente, extrayendo una porción
de la fase dispersada del solvente en un volumen original por un
breve período de tiempo, y después un extracción posterior de la
fase dispersada del solvente mediante la dilución de la emulsión
por adición continua de una fase continua de solvente. La
evaporación de la fase dispersada del solvente a partir de la fase
continua/interfase de aire es permitida que ocurra simultáneamente
con el proceso de extracción, para mantener una fuerza de empuje
para la extracción de la fase dispersada del solvente dispersada en
una fase continua de la fase dispersada de gotas. La evaporación no
controlada del solvente a partir del uso de extracción abierto
dentro de la atmósfera no es práctica o seguro para la producción
de cantidades mayores que la escala de laboratorio, especialmente en
un proceso continuo. En un vaso cerrado, la evaporación rápidamente
podría cesar como el solvente en solución equilibrado con el vapor
de solvente en el espacio superior por encima de la superficie del
líquido. El modelo de Li et al. también demuestra que
volúmenes grandes de extracción son necesitados para operar el
proceso de extracción en un período de tiempo relativamente corto,
como es descrito por la patente de los EE.UU. Nº 5.407.609 de Tice
et al., aunque el modelo predice que la formación de la piel
y el límite cristalino puede ser alcanzado usando la extracción
total de
volúmenes de solventes que es menor que la cantidad necesitada para disolver todo el solvente de la fase dispersada.
volúmenes de solventes que es menor que la cantidad necesitada para disolver todo el solvente de la fase dispersada.
Es por esta razón un objeto de esta invención el
proveer métodos para la fabricación de micropartículas
eficientemente encapsulando el agente activo.
Es otro objeto de esta invención el proporcionar
métodos para la fabricación de micropartículas usando un proceso
que usa una combinación de evaporación y extracción controlada, para
minimizar la cantidad de medio de extracción requerido en el
proceso.
Es un objeto de esta invención el suministrar
métodos basados en la emulsión para la fabricación de
micropartículas en un número eficiente o proceso continuo.
Los procesos para la composición de
micropartículas poliméricas, preferiblemente incluyen uno o más
agentes activos, han sido desarrollados, en una realización
preferida, el proceso involucra la preparación (1) de una fase
dispersada conteniendo un agente en una solución de polímero y un
primer solvente; una fase continua (2) conteniendo un surfactant,
un segundo solvente que es totalmente o parcialmente inmiscible con
el primer solvente, y es suficiente el primer solvente para saturar
la fase continua; y una fase de extracción (3) que es un
no-solvente del polímero, un solvente para los
componentes de la fase continua, y un solvente para el primer
solvente, en donde el primer solvente (o el primer componente del
solvente de la mayor proporción si una mezcla de solventes son
usados para el primer solvente) tiene una solubilidad en la fase d
extracción entre aproximadamente 0,1% y 25% en peso. Esta
solubilidad limitada del primer solvente es importante para
mantener la estabilidad de la emulsión mientras es diluido. Una
emulsión de la fase dispersada en la fase continua es preparada
bajo condiciones de mezcla apropiada, y la emulsión es entonces
brevemente mezclada con una cantidad conveniente de la fase de
extracción para concentrar la fase dispersada para inducir la
formación de piel en la interfase de las fases dispersada y
continua. El solvente remanente es removido mediante un paso del
proceso de evaporación. Los pasos de emulsificación y remoción del
solvente son preferiblemente conducidos en un proceso continuo. El
breve paso de extracción antes de la evaporación minimiza la pérdida
del agente activo de las micropartículas, y reduce el volumen
requerido de la fase de extracción como es comparado con otros
procesos basados en extracción.
Procesos de remoción del solvente alternativos
están también proporcionados. Algunos de estos procesos pueden ser
utilizados en combinación con la realización preferida descrita
arriba. Así, en otra realización preferida, el solvente es removido
usando extracción en incremento, o en cascada, la cual involucra la
introducción de la fase de extracción en la emulsión a través de
una serie de corrientes de alimentación en vez de una corriente de
alimentación única, con el fin de enlentecer y controlar finamente
la extracción de solvente. En una realización ulterior, el solvente
es removido por una membrana de separación, mejor que la mezcla
directa con la fase de extracción. Otras realizaciones usan
extracción criogénica, y extracción de solvente en dos fases, en la
cual una única fase es utilizada como la fase continua y el medio de
extracción.
Medios alternativos y procesos para la formación
de emulsión también son proporcionados. Por ejemplo, un tubo
posterior de emulsión, el cual es un tubo de diámetro pequeño de un
número de Reynolds suficientemente alto, es usado para inducir el
mezclado en una realización del proceso para la fabricación de las
micropartículas, mejor que el uso de los mezcladores estáticos
convencionales o agitadores.
La Figura 1 es un diagrama de flujo del proceso
de otra realización del método para la fabricación de
micropartículas usando un tanque de contacto con recirculación, en
un proceso continuo.
La Figura 2 es un diagrama de flujo del proceso
de otro método para la fabricación de micropartículas usando un
proceso continuo de dos fases.
La Figura 3 es un diagrama de flujo del proceso
de una realización del método para la fabricación de microesferas
cargadas con progesterona usando una inyección directa de la fase de
extracción en un tubo posterior de la emulsión, en un proceso
continuo.
La Figura 4 es un gráfico que muestra a
distribución de tamaño de micropartícula para las micropartículas
usando una realización del método descrito aquí dentro.
La Figura 5 es un diagrama de flujo del proceso
de una realización preferida para la fabricación de micropartículas
usando una extracción en incremento.
Los procesos basados en la emulsión para la
fabricación de micropartículas son proporcionados. Una
micropartícula, como es definido aquí, comprende una partícula
teniendo un diámetro aproximadamente menor que un milímetro. Una
micropartícula puede tener una forma esférica, no esférica, o
irregular. La forma de la micropartícula preferida es esférica,
teniendo un diámetro entre aproximadamente 0,1 y 1000 \mum. Los
términos "micropartícula" y "microesfera" como son usados
aquí son intercambiables a menos que sea inducido de esta
manera.
Los procesos revelados aquí dentro pueden ser
usados para formar micropartículas a partir de una variedad de
materiales, preferiblemente polímeros biocompatibles y
biodegradables. Biodegradable, como es definido aquí dentro,
significa que el polímero se degradará o corroerá in vivo
para formar especies químicas más pequeñas, en donde la degradación
puede resultar, por ejemplo, de procesos enzimáticos, químicos y
físicos. El término "biocompatible" es usado aquí dentro para
referirse a un polímero y a cualquier producto de degradación del
polímero que no es tóxico para un recipiente y presenta un efecto no
significativo, ni destructivo, ni desfavorable sobre e cuerpo del
recipiente. Ejemplos de polímeros biocompatibles, biodegradables
convenientes incluyen polihidroxiácidos, como el poli
(láctido)s, poli (glicólido)s,
poli(láctido-co-glicólido)s,
poli (ácido láctico)s, poli (ácido glicólico)s, y
poli (ácido láctico-co-ácido glicólico)s,
polianhidridos, poliortoésteres, polieterésteres, policaprolactona,
poliesteramidas, polifosfazinas, policarbonatos, poliamidas, y
copolímeros y mezclas de éstos. Polímeros biocompatibles, no
biodegradables convenientes para uso en los procesos descritos aquí
dentro incluyen poliacrilatos, etileno-copolímeros
de vinil acetato, celulosas modificadas como las éteres celulosas y
ésteres celulosas, poliuretanos no degradables, poliestirenos,
polivinil cloruro, polivinil fluoruro, poli (vinil alcohol), poli
(vinil imidazol), clorosulfonato poliolefinas, óxido de polietileno,
y copolímeros y mezclas de éstos.
Materiales excipientes naturales representativos
incluyen polisacáridos y proteínas.
Los poli (láctido)s, poli
(glicólido)s, poli
(láctido-coglicólido)s, poli (ácido
láctico)s, poli (ácido glicólico)s, y poli (ácido
láctico-co-ácido glicólico)s, polianhidridos,
poliortoésteres, polieterésteres, policaprolactona,
poliesteramidas, éteres celulosas, y acrílicos son polímeros
preferidos. El poli
(DL-láctido-co-glicólido)
("PLG") es especialmente preferido.
La selección de la fase dispersada del solvente
usado en el proceso generalmente depende en el polímero y el agente
activo escogidos, así como el significado particular de la remoción
del solvente a ser empleado. Los solventes orgánicos, como la
acetona, metil-etil-acetona, y el
etil-acetato/mezclas de alcohol, son preferidos
para el uso con Plus, éteres celulosa, ésteres celulosa, y
acrílicos. Para otros polímeros, como el polietilenglicol, poli
(vinil alcohol), y carboximetil-celulosa, el agua
puede ser preferida.
La cantidad de solvente de la fase dispersada
usada en el proceso debe ser seleccionado para proporcionar una
fase dispersa viscosa conveniente para la formación de una emulsión
usando medios de mezclaje seleccionados descritos abajo. La
viscosidad generalmente debe ser menor que 1000 cP, y
preferiblemente menor que 100 cP, más preferiblemente menor que 10
cP.
Generalmente, el solvente para la fase continua
es acuoso cuando la fase dispersada es orgánica, y la fase continua
es no acuosa cuando la fase dispersada es acuosa. La fase continua,
o segunda, preferiblemente es acuosa y contiene al menos un agente
surfactant o emulsificante. El polivinil alcohol es un surfactant
preferido cuando el agua es usada como la fase continua del
solvente. Otros emulsificadores o surfactantes los cuales pueden
ser usados incluyendo la mayoría de los emulsificadores
biológicamente aceptables, por ejemplo lecitina de huevo o lecitina
de leguminosa, o lecitinas sintéticas como las lecitinas sintéticas
saturadas, por ejemplo, el dimiristol fosfatidil colina, dipalmitol
fosfatidil colina o el disterol fosfatidil colina o lecitinas
sintéticas insaturadas, como el dioleil fosfatidil colina o el
dilinoleil fosfatidil colina. Los emulsificadores también incluyen
surfactantes como los ácidos grasos libres; ésteres o ácidos grasos
con compuestos polioxialcalinos; éteres de alcoholes grasos con
polioxialquilenos glicoles; ésteres de ácidos grasos con sorbitan
polioxialquilado; jabones;
glicerol-polialquilenoesterato;
glicerol-polioxietileno ricinoleato; homopolímeros y
copolímeros de polialquilenglicoles; aceite de soya polietoxilado y
aceite de castor como derivados hidrogenados; éteres y ésteres de
sacarosa u otros carbohidratos con ácidos grasos, alcoholes grasos,
éstos siendo opcionalmente polioxialquilados; monoglicéridos,
diglicéridos y triglicéridos de ácido grasos saturados o
insaturados, glicéridos o aceite de soya y sacarosa. Otros
emulsificadores incluyen formas naturales y sintéticas de sales
biliares o ácidos biliares, conjugados tanto con aminoácidos y no
conjugados como el taurodeoxicolato, y ácido cólico.
El surfactant debe estar presente en una
concentración suficiente para formar una emulsión estable con la
fase dispersada usando los medios de mezclaje seleccionados. Por
ejemplo, si el proceso cuenta con una emulsificación de baja
intensidad, como la turbulencia de la emulsión del tubo posterior
(descrito abajo), entonces el suficiente surfactant debe estar
presente para disminuir la tensión superficial de la fase continua.
Preferiblemente, el surfactant debe constituir entre cerca de 0,1 y
20% en peso de la fase continua.
La fase continua también incluye preferiblemente
la fase dispersada del solvente, el cual reduce o elimina la
partición del solvente a partir de la fase dispersada en la fase
continua durante la emulsificación. La cantidad de la fase
dispersada del solvente añadida a la fase continua puede variar en
dependencia de la combinación específica del excipiente/agente
activo usados. Generalmente la cantidad de la fase dispersada del
solvente está aproximadamente entre 10% y 100% de la cantidad
necesitada para saturar la fase continua.
La fase de extracción, también llamada medio de
extracción, es escogida para ser un solvente de los componentes de
la fase continua, un solvente limitado para la fase dispersada del
solvente, u un no-solvente del excipiente. El
primer solvente (o el primer componente del solvente de la mayor
proporción si una mezcla de solventes es usada para el primer
solvente) debe tener una solubilidad en la fase de extracción entre
aproximadamente 0,1% y 25% en peso. Cuando excipientes insolubles
en agua son usados, la fase de extracción preferiblemente es el
agua desionizada. La fase de extracción puede contener tampones para
limitar la solubilidad del agente activo en la fase de
extracción.
Cualquiera de los tampones comunes, como el
fosfato, acetato, o tris, son convenientes, proporcionando que
ellos sean compatibles con el sistema surfactant seleccionado.
Cuando se fabrica las micropartículas para aplicaciones
farmacéuticas o biomédicas, el tampón también debe ser
farmacéuticamente aceptable. El sistema de tamponamiento debes ser
seleccionado para proporcionar un pH en la fase de extracción el
cual provee una solubilidad mínima del agente activo.
Otras fases de extracción convenientes pueden
ser usadas dependiendo en el sistema específico de
excipiente/fármaco/surfactant que es usado. Por ejemplo, los
solventes orgánicos solubles en agua que son
no-solventes para el excipiente pueden ser usados
como un componente de la fase de extracción para incrementar la
capacidad de la fase de extracción para incrementar la capacidad de
la fase de extracción para extraer la fase dispersada del solvente.
Ejemplos que son útiles para los PLGs incluyen alcoholes,
particularmente poli (alcoholes hídricos) como el glicerol. Cuando
el agua es usada como la fase dispersada del solvente, la fase de
extracción de los solventes como el etil-acetato,
alcoholes de cadena larga y cetinas
(C_{5}-C_{10}) pueden ser usadas solas o en
combinación como en la fase de extracción. Cuando se usa el proceso
de extracción criogénico descrito abajo, la fase de extracción
preferiblemente es el glicerol.
Esencialmente cualquier sustancia, o agente,
puede ser encapsulado usando los procesos descritos aquí dentro. La
sustancia preferiblemente es un agente activo. Como es usado aquí,
el término "agente activo" se refiere a un agente el cual
posee propiedades terapéuticas, profilácticas, o diagnósticas in
vivo, por ejemplo cuando es administrado a un animal,
incluyendo mamíferos, como el humano. El término "agente
activo" también incluye otras sustancias
(no-activas) a ser encapsuladas, a menos que sea
indicado de otra manera. Ejemplos de agentes activos profilácticos
y/o terapéuticos convenientes incluyen proteínas, como las hormonas,
antígenos, y factores de crecimiento; ácidos nucleicos, como las
moléculas anti-sentido; y moléculas pequeñas, como
los antibióticos, esteroides, descongestionantes, agentes
neuroactivos, anestésicos, y sedantes. Ejemplos de agentes activos
terapéuticos y/o diagnósticos convenientes incluyen isótopos
radioactivos y agentes radio opaco.
El agente activo puede incluir moléculas
orgánicas como un fármaco, péptido, proteína, carbohidrato
(incluyendo monosacáridos, oligosacáridos, y polisacáridos);
nucleoproteína, mucoproteína, lipoproteína, polipéptido o proteína
sintética, o una molécula pequeña unida a una proteína,
glicoproteína, esteroide, ácido nucleico (cualquier forma de ADN,
incluyendo ADNc, o ARN, o un fragmento de éstos), nucleótido,
nucleósido, oligonucleótidos (incluyendo oligonucleótidos
anti-sentido), gen, lípido, hormona, vitamina,
incluyendo la vitamina C y la vitamina E, o combinación de
éstos.
Agentes activos terapéuticos representativos
incluyen inmunosupresores, anti-oxidantes,
anestésicos, agentes quimioterapéuticos, esteroides (incluyendo
retinoides), hormonas, antibióticos, antivirales, antifúngicos,
antiproliferativos, antihistamínicos, anticoagulantes, agentes
anti-envejecimiento por la luz, péptidos
melanotrópicos, compuestos no esteroideos y esteroides
anti-inflamatorios, antipsicóticos, y absorbentes de
radiación, incluyendo los absorbentes de luz ultravioleta. Otros
ejemplos no limitantes de agentes activos incluyen
anti-infectivos como la nitrofurazona, propianato
de sodio, antibióticos, incluyendo penicilina, tetraciclina,
oxitetraciclina, clorotetraciclina, bacitracina, nistatina,
estreptomicina, neomicina, polimixina, gramicidina, cloramfenicol,
eritromicina, y azitromicina; sulfonamidas, incluyendo
sulfacetamida, sulfametizol, sulfametazina, sulfadizina,
sulfamerezina, y sulfisoxazol, y antivirales incluyendo idoxuridina;
antialérgicos como la antazolina, metapireteno, clorofeniramina,
pirilamina profenpiridamina, hidrocortisona, cortisona, acetato de
hidrocortisona, dexametasona, dexametasona
21-fosfato, fluocinolona, triamcinolona, medrisona,
prednisona, prednisona 21-succinato de sodio, y
acetato de prednisolona; agentes desensibilizantes como antígenos de
polen de las herbáceas, antígenos de polen de la fiebre del heno;
antígeno de polvo y antígeno de la leche; descongestionantes como la
fenileprina, nafazolina, y tetrahidrozolina; mióticos y
anticolinesterasas como la pilocarpina, esperina salicítica,
carbacol, di-isopropil fluorofosfato, fosfolina
yodada, y bromuro de demecario; parasimpatolíticos como el sulfato
de atropina, ciclopentolato, homatropina, escopolamina,
tropicamida, eucatropina, e hidroxianfetamina; simapatomiméticos
como la epinefrina; sedantes e hipnóticos como el pentobarbital de
sodio, secobarbital de sodio, codeína,
(a-bromoisovaleril) urea, carbromal; energizantes
físicos como el 3-(2-aminopropil) indol acetato y
3-(2-aminobutil) indol acetato; tranquilizantes
como la reserpina, clorpromelina, y tiopropazato; esteroides
androgénicos como la metil-testosterona y la
flurimesterona; estrógenos como la estrona,
17-\beta-estradiol, etinil
estradiol, y el dietil estilbesterol; agentes progestacionales como
la progesterona, megestrol, melengestrol, clormadinona, elisterona,
noretinodrol, 19-norprogesterona, noretindrona,
medroxiprogesterona y
17-\beta-hidroxi-progesterona;
agentes humorales como las prostaglandina, por ejemplo PGE,
PGE_{2}, y PGF_{2}; antipiréticos como la aspirina, salicilato
de sodio, y salicilamida; antipasmódicos como la atropina,
metantelina, papaverina, y bromuro de metacopolamina; antimaláricos
como la 4-aminoquinolinas,
8-aminoquinolinas, cloroquina, y la pirimetamina;
antihistamínicos como la difenihidramina, dimenidrinato,
tripelenamina, perfenazina, y clorfenazina; agentes cardioactivos
como la tiazida de dibenzidrofluma, flumetiazida, clorotiazida, y el
aminotrato; agentes nutricionales como las vitaminas, péptidos y
proteínas bioactivas naturales y sintéticos, incluyendo factores de
crecimiento, factores de adhesión celular, citoquinas, y
modificadores de respuestas biológicas.
En otra realización, el material encapsulado es
una vacuna y la sustancia a ser liberada es un antígeno, como las
vacunas de la viruela, fiebre amarilla, destemplanza, cólera
porcino, viruela de pollos, antivenenos, fiebre escarlatina,
toxoide diftérico, toxoide tetánico, viruela de palomas, tos ferina,
influenza, rabia, parotiditis, sarampión, enfermedad poliomielítica
y de Newcastle. El antígeno puede ser derivado a partir de una
célula, bacteria, o partícula viral, o porción de éstos. Como es
definido aquí dentro, el antígeno puede ser una proteína, péptido,
polisacárido, glicoproteína, glicolípido, ácido nucleico, o
combinación de éstos, los cuales inducen una respuesta inmunogénica
en una animal, por ejemplo, un mamífero, ave, o pez. La respuesta
inmunogénica puede ser humoral o mediada por células. En el evento
el material al cual la respuesta inmunogénica es dirigida es
escasamente antigénico, el puede ser conjugado a un portador, como
la albúmina, o a un hapteno, usando técnicas de unión covalentes
estándares, por ejemplo, con uno de varios de los equipos de
reactivos disponibles comercialmente. Ejemplos de antígenos incluyen
proteínas virales como las proteínas de influenza, proteínas del
virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), y hepatitis A, B o C, y
proteínas bacterianas, lipopolisacáridos como las pared celular de
las bacterias gram-negativas y proteínas de
Neisseria gonorrheae y parvovirus.
Agentes como los insecticidas, pesticidas,
fungicidas, rodenticidas, nutrientes de plantas y factores de
crecimiento también pueden ser encapsulados.
En una realización preferida, el agente activo
es una proteína hormona o esteroide, como la progesteronas y el
estradiol. Otras proteínas convenientes incluyen nucleasas,
eritropoyetina, hormona de crecimiento humano, interferones,
interleuquinas, factor de necrosis tumoral, hormona
adrenocorticotrópica, factores de crecimientos, factores
estimuladores de colonia, y la insulina.
La cantidad de agente activo a ser encapsulado y
la cantidad usada en el proceso variarán en el proceso dependiendo
sobre el agente activo particular, el efecto deseado del agente
activo a los niveles de liberación planeados, y el tiempo que
alcanza sobre el cual el agente debe ser liberado.
El agente activo puede ser disuelto o suspendido
directamente en la solución de polímero de la fase dispersada, o
puede ser dispersado como gotas de una solución o emulsión en la
solución del polímero. El proceso puede ser usado para encapsular
más de un agente activo. El agente activo también puede ser mezclado
con uno o más excipientes, como los agentes estabilizantes,
conocidos en la técnica.
Los procesos de microencapsulación descritos
aquí dentro incluyen (1) la formación de una emulsión teniendo (I)
una fase dispersada, preferiblemente conteniendo un agente activo,
en una solución de polímero y un solvente para el polímero, y (II)
una fase continua de una solución de surfactant en una fase continua
del solvente que es inmiscible o parcialmente miscible con la fase
dispersada; y (2) remoción del solvente a partir de las microgotas
de la fase dispersada, produciendo micropartículas.
En una realización preferida, el proceso de
microencapsulación incluye los pasos de la emulsión siguientes:
(1) Preparación de una fase
dispersada para la disolución de un excipiente (e.g., un polímero)
en un solvente o mezcla de solvente;
(2) Adición de al menos un agente
activo a la fase dispersada para formar una solución, suspensión, o
emulsión de activo/excipiente/solvente;
(3) Preparación de una fase
continua mediante la disolución de un surfactant conveniente,
coloide protectivo, o ambos, en un solvente que es inmiscible con
el solvente en una fase dispersada, y saturando la fase continua
con el solvente de la fase dispersada;
(4) Combinación de la fase
dispersada con la fase continua bajo condiciones de mezclaje para
formar una emulsión, por ejemplo, mediante el flujo de dos fases
continuamente a través de un mezclador estático.
La formación de la emulsión puede ser hecha
continuamente, en forma de hornada, o una combinación de éstos.
La fase dispersada (primera) y la fase continua
(segunda) esencialmente pueden ser mezcladas usando cualquier medio
capaz de formar una emulsión teniendo el tamaño de la gota de la
fase dispersada deseada. Medios convenientes incluyen el uso de
mezcladores estáticos (Maa, et al. J. Microencapsulation
13(4):419-33(1986)), así como medios
de mezclaje dinámicos como los agitadores, homogenizadores,
sonicadores, y otros equipamientos del proceso conocido en la
técnica.
Medios alternativos para el mezclaje son
proporcionados aquí dentro. En una realización, el mezclaje es
realizado por bombardeo juntamente a las fases a ser mezcladas a
través de una longitud de conductos o tubos a condiciones
suficientes para crear un mezclaje adecuado, i.e. una turbulencia
suficiente para inducir o aumentar la formación de emulsión.
Típicamente, el número de Reynolds necesario para este tipo de
mezclaje está por encima del rango de transición. Este generalmente
se refiere al número de Reynolds por encima de 4000 basado en el
diámetro del tubo.
Otros dispositivos estáticos, como los platos en
restricción (constrictores de flujo) y filtros, también pueden ser
usados para crear la turbulencia requerida. En una realización
preferida, mezcladores no estáticos son usados como medios de
mezclaje. Como es usado aquí dentro, el término "mezcladores no
estáticos" se refiere a un dispositivo teniendo elementos que se
mueven libremente dentro de una corriente de flujo de los fluidos a
ser mezclados. Ejemplos de mezcladores no estáticos incluyen
turbinas no motorizadas y ciertos indicadores de flujo, como un
balón indicador. Es otro ejemplo un flujo aunque la cabeza del
mezclador esté disponible en el homogenizador de Silverson.
El proceso utiliza un lazo de recirculación para
proporcionar un medio párale control del tiempo de residencia de la
emulsión en un proceso continuo para alcanzar una emulsificación
completa de las fases dispersada y continua, con eso suministrando
para más microesferas reproducibles. El método puede proporcionar un
método definitivo de tiempo de residencia de las gotas de la fase
dispersada antes de la extracción. Adicionalmente, ya que el único
proceso crítico del radio de la bomba es el radio de la bomba de
recirculación, mejor que tanto como el radio de la bomba de la fase
orgánica y acuosa, el número de las variables críticas que deben
ser estrictamente controladas es reducido.
En una realización preferida, el proceso utiliza
una emulsificación de baja intensidad, usando surfactant en una
cantidad efectiva para disminuir la tensión superficial de los
fluidos para permitir la formación de una emulsión sin un equipo de
procesamiento de alta energía, como los homogenizadores. Un ejemplo
de un proceso de microencapsulación continua usando un tanque de
contacto con recirculación es descrito abajo con referencia a la
Figura 1:
(A) Preparación en el Tanque de Alimentación de
la Fase Orgánica de una fase dispersada típica conteniendo
excipiente (e.g., polímero) y un agente activo a ser encapsulado.
La composición de la fase orgánica debe ser ajustada para dar una
solución, o suspensión, teniendo una baja viscosidad suficiente para
la emulsificación de baja intensidad, preferiblemente menor que 100
cP, más preferiblemente menor que 10 cP. La viscosidad es
dependiente del tipo de concentración y concentración relativa del
polímero, solvente, surfactant, y agente activo seleccionado.
(B) Preparación en el Tanque de Alimentación de
la Fase Acuosa de una fase continua típica conteniendo el
surfactant y el solvente en concentraciones como son necesitadas
para formar una emulsión estable con la fase orgánica. Suficiente
surfactant debe ser usado para permitir la emulsificación de baja
intensidad. Típicamente, la concentración del surfactant debe estar
por encima de su concentración de micela crítica.
(C) Preparación de una fase de extracción
típica, por ejemplo, agua conteniendo tampones para limitar la
solubilidad del agente activo.
(D) Establecimiento de un radio de flujo de la
fase de extracción a través de la línea de Alimentación de la Fase
de Extracción.
(E) Establecimiento de un radio de flujo de la
fase acuosa en el proceso con la válvula de recirculación cerrada.
Después de ser alimentado un suficiente volumen de la fase acuosa al
tanque de contacto, la bomba de recirculación comienza.
(F) Establecimiento de un radio de flujo de la
fase orgánica al tanque de contacto. La emulsificación ocurre en el
lazo de recirculación. Las condiciones exactas del proceso
necesitadas para la emulsificación necesitarán ser establecidas
para cada tipo de la fase orgánica y de la fase acuosa. Las
condiciones del flujo turbulento en el lazo de recirculación
probablemente serán requeridas para producir una emulsión teniendo
gotas pequeñas suficientes de la fase dispersada. La agitación en
el tanque de contacto puede también ser usada para emulsificar las
fases orgánica y acuosa. Las contribuciones relativas a la
emulsificación de cada operación, agitación y el lazo de
recirculación, pueden ser optimizados por aquellos expertos en la
técnica.
(G) La apertura de la válvula de recirculación
después de poner volúmenes de la fase orgánica y acuosa ha sido
alimentada al tanque de contacto, permitiendo la emulsión para
proceder corriente abajo al puerto de inyección de la emulsión
dentro de la fase de extracción. El radio de flujo de la emulsión
debe ser ajustadas para captar los radios de alimentación
combinados de las fases orgánica y acuosa, con eso alcanzando una
condición de estado constante en el tanque de contacto. El radio de
bombeo de la bomba de recirculación del radio de recirculación
pueden ser ajustados para producir las condiciones del proceso
desead, como una emulsificación satisfactoria, medio adecuado de
reciclaje, y radios de separación de la emulsión equivalentes a los
radios de alimentación orgánico/acuoso.
(H) Continuación de la operación del estado
constante hasta que la fase orgánica sea usada en ascenso. Mantener
el flujo de la fase acuosa para llenar de agua la fase orgánica a
partir del tanque de contacto. Apagar, colectar, lavar, secar, y el
empaquetamiento de las micropartículas formadas como es necesitado
usando técnicas estándares.
El proceso de emulsificación continua usando un
tanque en contacto con recirculación puede ser adaptado para el uso
con otras técnicas de remoción de solvente, como aquellas descritas
debajo.
Después de la formación de la emulsión, la fase
dispersada es removida usando uno o más de los procesos siguientes.
Un proceso de microencapsulación incluye estos proceso de remoción
del solvente puede proporcionar procesos de control mejorados y una
calidad de producto sobre métodos revelados en la técnica anterior,
especialmente en procesos continuos para la fabricación de
micropartículas.
Este proceso combina técnicas de remoción del
solvente de extracción y evaporación. Primero una porción del
solvente es removido por extracción, y entonces la evaporación es
usada para remover sustancialmente todo el solvente remanente de
las micropartículas.
En una realización preferida, el proceso de
remoción del solvente incluye pasos (5) y (6) descritos debajo, los
cuales siguen a los pasos (1)-(4) descritos arriba;
La adición de la emulsión del paso (4) a una
cantidad conveniente de la fase de extracción para concentrar la
fase dispersada o para inducir la formación de piel en la interfase
entre la fase dispersada y la fase continua para formar
microesferas, preferiblemente mediante la inyección de la emulsión
dentro de una corriente de flujo de la fase de extracción, en donde
la fase de extracción es
(I) un no-solvente para el
excipiente;
(II) un solvente para los componentes de la fase
continua; y
(III) un solvente limitado para los componentes
de la fase dispersada, en la cual el solvente de la fase
dispersada tiene una solubilidad de 0,1% a 25% de peso en la fase de
excipiente; y
Ulterior remoción del solvente de la fase
dispersada de las microesferas usando un proceso evaporativo,
preferiblemente mientras que las microesferas permanecen en la fase
de extracción.
Las microesferas entonces pueden ser colectadas,
lavadas, secadas, y empaquetadas usando técnicas conocidas en la
técnica mediante la clasificación de micropartículas por tamaño.
El propósito de la realización de la extracción
y evaporación secuencialmente es doble. Primero, el proceso puede
controlar el radio de remoción del solvente de las gotas de la fase
dispersada en una manera tal que la superficie y la estructura
interna de las microesferas resultantes proporcionan las propiedades
de liberación deseadas. Segundo, el proceso puede suministrar las
propiedades de las microesferas deseadas mientras se minimiza la
cantidad de la fase de extracción necesitada y con eso el costo del
proceso total. En ambas etapas la remoción del solvente, la
extracción y evaporación, el solvente debe dividirse de la gota de
la fase dispersada dentro de medio que lo rodea. El radio de
partición es proporcional al gradiente de concentración del solvente
de la fase dispersada por medio de la interfase que existe entre la
fase dispersada y el solvente de la fase de extracción, o puede con
ello ser controlado mediante el control de la concentración del
solvente de la fase dispersada en la fase de extracción a lo largo
del proceso. Esto puede ser controlado mediante el ajuste del
volumen total de la fase de extracción, tanto inicialmente como se
describe en la patente de los EE.UU. Nº 5.407.609 de Tice et
al. o por una adición ulterior de la fase de extracción como
describe, por ejemplo, por Li et al.
\newpage
El control del radio de remoción del solvente
puede también ser alcanzado por evaporación del solvente a partir
de la fase de extracción a un radio que es igualado al radio de la
remoción del solvente durante la última etapa del proceso de
encapsulación. En general, un radio lento de remoción del solvente
producirá microesferas teniendo una estructura interna densa,
mientras que un radio rápido de remoción del solvente producirá
microesferas teniendo una estructura interna porosa. La relación
entre la estructura interna y el radio de remoción del solvente
depende de factores tales como las propiedades
físico-químicas del agente activo, el excipiente
(composición y peso molecular), solvente o solventes de la fase
dispersada, la concentración del agente activo y el excipiente en
la fase dispersada.
El objeto del paso de extracción es el de
efectuar una reducción rápida inicial del solvente en la fase
dispersada para establecer la piel deseada y la estructura interna.
Una vez que la extensión deseada y el radio de extracción
necesitado para una formación particular han sido determinados, la
cantidad mínima de la fase de extracción necesitado para alcanzar
la extensión deseada y bajo una serie de condiciones dadas puede ser
determinado empíricamente o calculado usando modelos matemáticos,
como aquellos descritos por Li et al. El objeto del paso de
evaporación es mantener una fuerza de empuje relativamente alta para
dividir el solvente de la fase dispersada, con eso minimizando el
tiempo del proceso entero. El radio de evaporación necesitado para
completar este objetivo puede ser determinado por métodos empíricos
o a través del uso de modelos matemáticos.
Preferiblemente entre aproximadamente 10% y
cerca del 90%, y más preferiblemente entre aproximadamente entre el
20% y 70%, del solvente es removido por extracción.
Los pasos de emulsificación y de remoción del
solvente preferiblemente son conducidos en un proceso continuo. Sin
embargo, el proceso de remoción del solvente puede ser practicado en
forma de hornada, continuamente, o por un híbrido de los dos, tales
como donde el paso de extracción es continuo y el paso de
evaporación es en forma de hornada.
El paso de evaporación puede ser ejecutado
usando técnicas conocidas en la técnica, como está descrita en la
patente de los EE.UU. Nº 4.384.978 de Fong. La evaporación puede ser
realizada bajo atmósfera o condiciones de presión reducida, y a
temperatura ambiente, o temperaturas más altas que no dañen al
agente activo o reduzca su efectividad biológica. Un ejemplo de un
proceso de evaporación continua es uno en el cual la corriente del
proceso excite el paso de extracción que es pasado a través del uso
de una evaporación cóncava o de lámina frotada.
El proceso de remoción del solvente incluye la
extracción en incremento, el cual involucra la introducción de la
fase de extracción dentro de la emulsión a través de múltiples
corrientes de alimentación única. La fase de extracción es con ello
combinada con la emulsión a dos o más localizaciones a lo largo del
tubo posterior de extracción mejor que en una localización,
preferiblemente en un proceso continuo. Un ejemplo de este proceso
es ilustrado en la Figura 5. La adición en incremento de la fase de
extracción debe endentecer el proceso de extracción, extendiendo la
cantidad de tiempo proporcionado para permitir que la micropartícula
se endurezca. Para efectuar este fin, la cantidad de la fase de
extracción (EP, del inglés) introducida inicialmente (e.g., en la
primera entrada de la EP) preferiblemente es menor que 1,5 veces la
cantidad necesitada para inducir la formación de piel en la gota de
la fase dispersada, la cual puede ser empíricamente determinada o
usando modelos matemáticos disponibles.
Cada adición en incremento de la fase de
extracción puede ser igual en su capacidad para contener el solvente
de la fase dispersada, o los incrementos pueden diferir. Además la
posición a lo largo del tubo posterior de extracción a la cual las
adiciones en incremento son producidas pueden ser controladas así el
perfil de extracción puede ser programado cuidadosamente. Con un
número suficiente de entradas de la fase de extracción, el proceso
de extracción efectivamente se convierte en un proceso continuo en
el cual el radio de extracción es determinado por el radio de
adición de la fase de extracción, i.e. dilución de la emulsión.
Los beneficios de este proceso son duplicados.
Primero, cuando la extracción es enlentecida relativo a los
procesos de extracción "todo a una vez" de la técnica anterior,
una micropartícula más homogénea y densa es producida. Segundo,
mediante el enlentecimiento del paso de extracción inicial, la piel
puede ser minimizada, con esto disminuyendo la resistencia de la
remoción del solvente y la producción de la remoción del solvente
más completa. El proceso también proporciona un fino control sobre
el proceso de extracción, permitiendo a un experto en la técnica
crear un proceso de microencapsulación teniendo un perfil de
extracción preciso, el cual, por ejemplo, puede ser controlado por
computadora y ajustado durante operación continua.
La extracción en incremento puede ser usada para
remover todo el solvente a ser removido de la micropartícula, o un
proceso de extracción parcial puede ser seguido por un paso de
evaporación para remover el solvente remanente después de la
extracción en incremento. La extensión deseada de la extracción
dentro del marco de tiempo de extracción deseado para una serie de
condiciones dadas puede ser determinada empíricamente o calculada
usando modelos matemáticos, como aquellos descritos por Li et
al.
La presente invención será entendida además con
referencia a los ejemplos siguientes no limitantes.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Las microesferas cargadas con fluoresceína
fueron preparadas usando poli (DL-láctido)
("DL-PL"), teniendo una viscosidad inherente
de 2,39 dL/g en CHCl_{3} a 30ºC como el excipiente. La fase
dispersada (DP, del inglés) consistió de una solución conteniendo
10,03 g de DL-PL y 0,1020 g de fluoresceína disuelta
en 166,67 g de diclorometano ("DCM"). La fase continua (CP,
del inglés) fue preparada mediante la disolución de 5,26 g de
diclorometano en una solución al 6% en peso de poli (vinil alcohol)
("PVOH"), el cual fue preparado mediante la disolución de 21 g
de AIRVOL™ 205 en 309 d de agua desionizada. La fase de extracción
(EP, del inglés), la cual consistió de agua desionizada, fue
calculada para proporcionar un 90% de extracción de diclorometano
de las microesferas, como está descrito abajo.
- Total de DCM
- = 166,67 g (DP) + 5,26 g (CP)
- \quad
- = 171,93 g
- Agua requerida para el 90% de la Extracción
- \\[2.1mm]{}\hskip4mm = (171,93 g)(0,9) /(0,016 g DCM/g H_{2}O)
- \quad
- = 9.671,06 g
Fase de extracción requerida
- \quad
- = agua requerida - agua en el CP
- \quad
- = 9.671,06 g - 329 g
- \quad
- = 9342,9 g
Los 9342.9 g de agua desionizada de la fase de
extracción requerida (90%), fueron transferidos a un frasco de
reacción esférico de 12 L con una tapa, un adaptador al vacío
conectado a un aspirador de agua, y un agitador encima ajustado a
un impulsor TEFLON™ de cuchilla de hoja 6. El agitador en la EP fue
puesto a aproximadamente 510 rpm.
La CP transferida a un frasco de reacción
cilíndrica de 1L ajustado con una tapa y un agitador por encima
ajustado con un impulsor de hoja de cuchilla 6 TEFLON™. El agitador
en la CP fue puesto a aproximadamente 650 rpm.
La DP fue adicionada a la CP con agitación para
formar la emulsión primaria. Después de cinco minutos, la emulsión
fue transferida a un frasco de reacción de 12 L conteniendo la EP
para iniciar la extracción del DCM, con ello formando las
microesferas. Después de aproximadamente 10 minutos, el frasco fue
cerrado y evacuada la vía del aspirador de agua. La presión
gradualmente fue reducida desde aproximadamente 35 mm de Hg por
debajo de la atmósfera hasta cerca de 584 mm de Hg por debajo de la
atmósfera durante las seis horas siguientes.
Después de alrededor de 24 horas, las
microesferas fueron colectadas en un embudo de vidrio fundido,
lavado con agua desionizada, y secada al vacío para rendir un polvo
libre de flujo consistiendo de microesferas, la mayoría de las
cuales tienen un diámetro entre cerca de 10 y 150 \mum.
Las microesferas cargadas con
Coumarina-6 fueron preparadas usando poli
(DL-láctido) ("DL-PL") teniendo
una viscosidad inherente de 2,39 dL/g en CHCl_{3} a 30ºC como el
excipiente. La fase dispersada (DP) consistió de una solución
conteniendo 10,5 g de DL-PL y 0,1173 g de
Coumarina-6 se disolvió en 168,0 g de diclorometano
("DCM"). La fase continua (CP) fue preparada por disolución de
5,49 g de diclorometano en una solución al 2% en peso de poli
(vinil alcohol) ("PVOH") la cual fue preparada por disolución
de 7 g de AIRVOL™ 205 en 343 g de agua desionizada. La fase de
extracción (EP), la cual consistió de 9758.8 g de agua desionizada,
fue calculada para proporcionar un 90% de extracción de
diclorometano a partir de las microesferas, como se describió en el
Ejemplo 1.
Los 9758.8 g de agua desionizada fueron
transferidos a un frasco de reacción esférico de 12 L ajustado con
una tapa, un adaptador de vacío conectado a un aspirador de agua, y
un agitador encima ajustado con un impulsor de hoja de cuchilla 6
TEFLON™. El agitador en la EP fue puesto a aproximadamente 510
rpm.
La CP fue transferida a un frasco de reacción
cilíndrico de 1 L ajustado con una tapa y un agitador encima
ajustado con un impulsor con hoja de cuchilla 6 TEFLON™. El agitador
en la CP fue puesto a aproximadamente 130 rpm.
La DP fue añadida a la CP con agitación para
formar la emulsión primaria. Después de cuatro minutos, la emulsión
fue transferida a un frasco de reacción de 12 L conteniendo la EP
para iniciar la extracción del DCM, con esto formando las
microesferas. Después de cerca de diez minutos, el frasco fue
cerrado y evacuada la vía del aspirador de agua. La presión fue
gradualmente reducida desde cerca de 25 mm de Hg por debajo de la
presión atmosférica hasta cerca de 570 mm de Hg por debajo de la
presión atmosférica durante las 22 horas siguientes. Después de
alrededor de 28 horas, las microesferas fueron colectadas en un
embudo de vidrio fundido, lavado con agua desionizada, y secado al
vacío para rendir un polvo de flujo libre consistiendo de
microesferas, las cuales fueron tamizadas para rendir las
distribuciones de tamaño mostradas en la Tabla 1.
| Tamaño (\mum) | Rendimiento (%peso) |
| >500 | 3,9 |
| 425-500 | 10,0 |
| 355-425 | 29,0 |
| 300-355 | 20,7 |
| 250-300 | 18,2 |
| 212-250 | 10,1 |
| 150-212 | 8,1 |
Cincuenta por ciento en peso de microesferas
cargadas con progesterona fueron producidas usando la configuración
del proceso mostrado en la Figura 3. El tubo posterior de emulsión
fue construido de 12 pies (366 cm) de 1/8'' (3,175 mm) de
politetrafluoroetileno (TEFLON™) teniendo un engrosamiento de la
pared de 0,030'' (0,762mm). La tubería fue seleccionada para
proporcionar un flujo de turbulencia correspondiente a un número de
Reynolds de aproximadamente 4100 a u radio de flujo de emulsión de
1240 cm/s. El procedimiento fue como sigue.
1. Una fase orgánica (dispersada) fue preparada
por disolución de cerca de 100 g de progesterona y 100 g de 85:35
poli
(di-láctido-co-glicólido),
I.V. = 0,65 dL/g en 1600 g de cloruro de metileno. La viscosidad de
la fase orgánica fue aproximadamente de 6 cP.
2. Una fase acuosa (continua) consistiendo de
una solución de 0,7% en peso de
poli-vinil-alcohol conteniendo 1,4%
en peso de cloruro de metileno fue preparado por disolución de 70 g
de poli-vinil-alcohol,
85-89% hidrolizado y 32-36 cP de
una solución acuosa al 4%, en 10 kg de agua desionizada usando
técnica estándares. 140 g de cloruro de metileno fue entonces
adicionado a la solución y la tensión superficial permitida para
equilibrar, produciendo una fase acuosa con una viscosidad de cerca
de 2 cP.
3. Una fase de extracción, consistiendo de agua
desionizada, fue preparada.
4. Una fase acuosa con radio de flujo de 3 L/min
fue establecido.
5. Una fase acuosa con radio de flujo de
aproximadamente entre 240 y 900 mL/min, fue establecida con una
válvula de recirculación cerrada. Este radio de flujo fue variado
para fijar el efecto del radio de flujo en la emulsificación.
6. Un radio de flujo de la fase orgánica de 70
mL/min fue establecida con una válvula de recirculación cerrada.
7. Al inicio de la corrida de producción, la
válvula de recirculación de la fase acuosa fue girada a la posición
de apertura (corrida), y la fase acuosa permitida para llenar el
tubo posterior de emulsión. Entonces, la válvula de recirculación
de la fase orgánica fue girada a la posición de apertura (corrida),
mezclando las fases y formando la emulsión en el tubo posterior de
emulsión.
8. Cerca de la salida del tubo posterior de
emulsión, la fase de extracción, fue introducida. La extracción fue
completada en una manera continua en el tubo posterior del proceso y
en el tanque del proceso.
9. Las microesferas fueron producidas,
colectadas, lavadas, y secadas. La Figura 4 muestra un gráfico de
la distribución del tamaño de partículas de las microesferas,
cargadas con progesterona resultantes.
Claims (12)
1. Método para la
fabricación de micropartículas, el método comprende
(a) preparación de una
primera fase comprendiendo una solución de un excipiente disuelto
en un primer solvente;
(b) preparación de una
segunda fase comprendiendo una segundo solvente el cual es al menos
parcialmente soluble en el primer solvente;
(c) preparación de una
fase de extracción comprendiendo un tercer solvente el cual es un
no-solvente para el excipiente, un solvente para la
segunda fase, y un solvente para el primer solvente, en donde el
primer solvente tiene una solubilidad en la fase de extracción entre
cerca de 0,1% y 25% en peso;
(d) mezcla de una porción
de la fase de extracción en la emulsión en una cantidad suficiente
para iniciar el endurecimiento de las microgotas, de este modo
formando micropartículas; y
(e) evaporación a partir de
las micropartículas de sustancialmente todo el solvente remanente
en las micropartículas seguido del paso (e).
2. Método de la
reivindicación 1 en la cual la segunda fase del paso (b) comprende
además un aditivo seleccionado del grupo consistente de
surfactantes, coloides protectivos, y combinaciones de éstos.
3. Método de la
reivindicación 1 en el que el paso
\euroes conducido usando una técnica seleccionada a partir del grupo que consiste de extracción criogénica y extracción en incremento.
4. Método de cualquiera de
las reivindicaciones 1-3 donde el excipiente es un
polímero.
5. Método de la
reivindicación 4 en donde el polímero es seleccionado del grupo de
polihidroxiácidos, polianhidridos, poliortoésteres,
polieterésteres, policaprolactona, poliesteramidas, cloruro ésteres
de polivinil, fluoruro de polivinil, poli (vinil imidazol),
poliolefinas de clorosulfonato, óxido de polietileno, copolímeros
de éstos, y mezclas de éstos.
6. Método de la
reivindicación 4 en la cual el polímero es seleccionado a partir del
grupo que consiste de poli (láctido)s, poli
(glicólido)s, poli
(láctido-co-glicólido)s, poli
(ácido láctico)s, poli (ácido glicólico)s, poli(ácido
láctico-co-ácido glicólico)s, polianhidridos,
poliortoésteres, polieterésteres, policaprolactona,
poliesteramidas, éteres celulosa, ésteres celulosa, acrílicos, y
mezclas de éstos.
7. Método de cualquiera de
las reivindicaciones 1-6 comprendiendo además la
disolución o dispersión de un agente activo en la primera fase del
paso (a).
8. Método de la
reivindicación 7 en que el agente activo es seleccionado del grupo
que consiste de péptidos y proteínas, azúcares y polisacáridos,
moléculas de ácido nucleico, fármacos, y agentes
imagenológicos.
9. Método de la
reivindicación 8 en donde el agente activo es una proteína
seleccionada a partir del grupo que consiste de nucleasas,
eritropoyetina, interferones, interleuquinas, factor de necrosis
tumoral, hormona adrenocorticotrópica, factores de crecimiento,
factores de estimulación de colonias, e insulina.
10. Método de la
reivindicación 8 en el que el agente activo es seleccionado del
grupo que consiste de antibióticos, esteroides, descongestionantes,
agentes neuroactivos y sedantes.
11. Método de la
reivindicación 8 en la cual el agente activo es un antígeno en una
cantidad suficiente para uso como vacuna.
12. Método de cualquiera de
las reivindicaciones 1-4 y 7 en donde el primer
solvente es seleccionado del grupo que consiste de etil acetato,
diclorometano, etil formato, agua, cetona, cloroformo, metanol,
etanol y mezclas miscibles de éstos.
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