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HINTERGRUND
DER ERFINDUNG
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Gebiet der Erfindung
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Die
vorliegende Erfindung betrifft die Bereitstellung von Verbindungen
mit Wirkstoff- und biologisch wirksamen Eigenschaften, pharmazeutische
Zusammensetzungen davon und Verfahren zu deren Verwendung. Insbesondere
betrifft die Erfindung Indoloxoacetylpiperazin-Derivate. Diese Verbindungen
besitzen einzigartige antivirale Aktivität. Speziell betrifft die vorliegende
Erfindung die Herstellung von Medikamenten zur Behandlung von HIV
und AIDS.
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Stand der
Technik
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Die
Infektion mit HIV-1 (Human-Immunschwäche-Virus-1) bleibt ein vordringliches
medizinisches Problem, mit geschätzten
33,4 Millionen infizierten Menschen weltweit. Derzeit verfügbare HIV-Wirkstoffe
umfassen sechs Nukleosid-Reverse-Transkriptase(RT)-Hemmer (Zidovudin,
Didanosin, Stavudin, Lamivudin, Zalcitabin und Abacavir), drei Nicht-Nukleosid-Reverse-Transkriptase-Hemmer
(Nevirapin, Delavirdin und Efavirenz) sowie fünf peptidomimetische Protease-Hemmer
(Saquinavir, Indinavir, Ritonavir, Nelfinavir und Amprenavir). Jeder
dieser Wirkstoffe kann bei alleiniger Anwendung die virale Replikation
lediglich vorübergehend unterdrücken. Bei
kombinierter Anwendung haben diese Wirkstoffe jedoch eine beachtliche
Wirkung auf den Fortschritt der Krankheit. Tatsächlich wurde kürzlich über signifikante
Verringerungen der Sterberaten unter AIDS-Patienten berichtet. Trotz
dieser Ergebnisse versagen kombinierte Wirkstofftherapien letztlich
bei 30 bis 50 % der Patienten. Unzureichende Wirksamkeit der Wirkstoffe,
Unverträglichkeiten,
beschränkte
Durchdringung der Gewebe und Wirkstoff-spezifische Beschränkungen
bei bestimmten Zellarten (z. B. können die meisten Nukleosid-Analoga
nicht in ruhenden Zellen phosphoryliert werden) können für die unvollständige Suppression
sensitiver Viren verantwortlich sein. Des Weiteren führt die
hohe Replikationsgeschwindigkeit und der schnelle Turnover von HIV-1
in Kombination mit dem häufigen
Einbau von Mutationen zum Auftreten Wirkstoff-resistenter Varianten und Misserfolgen
bei der Behandlung, wenn suboptimale Wirkstoff-Konzentrationen vorliegen (Larder und
Kemp, Gulick, Morris-Jones et al., Kuritzkes, Vacca und Condra,
Schinazi et al. und Flexner, Ref. 6–12). Daher werden neue Anti-HIV-Mittel
mit definierten Resistenzmustern und wünschenswerten pharmakokinetischen
Profilen sowie Sicherheitsprofilen benötigt, um weitere Behandlungsmöglichkeiten
zu eröffnen.
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Derzeit
vermarktete HIV-1-Wirkstoffe werden entweder von Nukleosid-Reverse-Transkriptase-Hemmern
oder peptidomimetischen Protease-Hemmern dominiert. Nicht-Nukleosid-Reverse-Transkriptase-Hemmer
(NNRTIs) haben in jüngster
Zeit eine zunehmend wichtige Bedeutung für die Therapie von HIV-Infektionen gewonnen.
Wenigstens 30 verschiedene Klassen NNRTIs wurden in der Literatur
veröffentlicht
(DeClercq, Ref. 13). Dipyridodiazepinon (Nevirapin), Benzoxazinon
(Efavirenz) und bis(Heteroaryl)piperazin-Derivate (Delavirdin) sind bereits für die klinische
Verwendung zugelassen. Weiterhin wurde über mehrere Indol-Derivate
einschließlich
Indol-3-sulfone, Piperazino-Indole, Pyrazino-Indole und 5H-Indol-[3,2b],[1,5]-benzothiazepin-Derivate
als HIV-1-Reverse-Transkriptase-Hemmer
berichtet (Greenlee et al., Ref. 1, Williams et al., Ref. 2, Romero
et al., Ref. 3, Font et al., Ref. 14, Romero et al., Ref. 15, Young
et al., Ref. 16, Genin et al., Ref. 17, und Silvestri et al., Ref.
18). Weitere Indol-Derivate mit antiviraler Aktivität, die für die Behandlung
von HIV brauchbar sind, werden in der PCT WO 00/76521, Ref. 102
beschrieben. Indol-Derivate werden auch in der PCT WO 00/71535,
Ref. 103 beschrieben. Indol-2-carboxamide sind auch als Hemmer der
Zelladhäsion
und HIV-Infektion beschrieben worden (Boschelli et al. in
US 5,424,329 , Ref. 4). Schließlich wurden
natürliche
3-substituierte Indol-Produkte
(Semicochliodinol A und B, Didemethylasterrichuinon und Isocochliodinol)
als Hemmer von HIV-1-Protease beschrieben (Fredenhagen et al., Ref.
19). In diesen Veröffentlichungen
kann jedoch nichts dahingehend ausgelegt werden, dass die neuen
Verbindungen dieser Erfindung und deren Verwendung zur Inhibierung
viraler Infektionen, einschließlich
HIV-Infektion, offenbart oder nahegelegt würden.
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Strukturell
verwandte Verbindungen wurden zuvor beschrieben (Brewster et al.,
Ref. 20, Archibald et al., Ref. 21, American Home Products in GB
1126245, Ref. 5). Die Strukturen unterscheiden sich von den hier beanspruchten
jedoch dahingehend, dass es sich um symmetrische bis(3-Indolylglyoxamide)
statt um unsymmetrische Aroyl-Indoloxoacetyl-Piperazin-Derivate handelt, und die
Verwendung zur Behandlung viraler Infektionen wird nicht erwähnt. Interessanterweise
ist die in den hier offenbarten Verbindungen vorhandene Indol-Einheit
das übliche
Merkmal vieler Nicht-Nukleosid-HIV-1-Reverse-Transkriptase-Hemmer einschließlich Delavirdin
von Upjohn (Dueweke et al. 1992, 1993, Ref. 22 und 23).
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Eine
PCT-Anmeldung aus neuerer Zeit, die WO 99/55696, beschreibt substituierte
Indole als Phosphodiester-4-Hemmer.
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Die
nach dem vorliegenden Prioritätsdatum
veröffentlichte
WO 00/76521 beschreibt substituierte Indol-Derivate zur Verwendung
als antivirale Mittel.
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ZITIERTE VERÖFFENTLICHUNGEN
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-
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(b) Walsh, D. A. et al., J. Med. Chen. 1984, 27, 1379. (c) Murakami,
Y. et al., Heterocycles, 1984, 22, 241. (d) Black, D. St. C. et
al., Aust. J. Chem. 1996, 49, 311.
- 106. Kondo, Y. et al., Heterocycles, 1996, 43, 2741.
- 107. Moyer, M. P. et al., J. Org. Chem. 1986, 51, 5106.
- 108. Kim, P. T. et al., J. Heterocyclic Chem. 1981, 18, 1373.
- 109. (a) Eloy, F. et al., Helv. Chim. Acta 1966, 49, 1430. (b)
Diana, G. D. et al., J. Med. Chem. 1994, 37, 2421. (c) Tilley, J.
W. et al., Helv. Chim. Acta 1980, 63, 832. (d) Yurugi, S. et al.,
Chem. Pharm. Bull. 1973, 21, 1641.
-
ZUSAMMENFASSUNG
DER ERFINDUNG
-
Die
vorliegende Erfindung umfasst Verbindungen der Formel I, deren pharmazeutische
Formulierungen und deren Verwendung zur Herstellung von Medikamenten
für Patienten,
die an einem Virus wie HIV leiden oder dafür anfällig sind. Die Verbindungen
der Formel I, die nicht-toxische pharmazeutisch akzeptable Salze
und/oder Hydrate davon umfassen, besitzen die unten angegebene Formel
und Bedeutung.
-
Eine
erste Ausführungsform
eines ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft Verbindungen der
Formel I, einschließlich
pharmazeutisch akzeptable Salze davon
worin:
A ausgewählt ist
unter C
1-6-Alkoxy, Aryl und Heteroaryl;
wobei Aryl für
Phenyl oder Naphthyl steht; Heteroaryl ausgewählt ist unter Pyridinyl, Pyrimidinyl,
Pyrazinyl, Triazinyl, Furanyl, Thienyl, Pyrrolyl, Imidazolyl, Thiazolyl, Isothiazolyl,
Oxazolyl, Isoxazolyl, Chinolinyl, Isochinolinyl, Benzofuranyl, Benzothienyl,
Benzoimidazolyl und Benzothiazolyl; und Aryl oder Heteroaryl gegebenenfalls
mit einem oder zwei gleichen oder verschiedenen Amino, Nitro, Cyano,
C
1-6-Alkoxy, -C(O)NH
2,
Halogen oder Trifluormethyl substituiert ist;
-W- für
steht;
-- eine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindung
bedeuten kann; (d.h. wenn -- eine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindung bedeutet, sind die
mit 1 und 2 bezeichneten Kohlenstoffatome durch eine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Doppelbindung
miteinander verknüpft;
wenn -- keine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Bindung bedeutet, sind die
mit 1 und 2 bezeichneten Kohlenstoffatome durch eine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Einfachbindung
miteinander verknüpft);
R
1 für
Wasserstoff steht;
R
2, R
3,
R
4 und R
5 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter den Gruppen (a)–(r):
- (a) Wasserstoff,
- (b) Halogen,
- (c) Cyano,
- (d) Nitro,
- (e) Amino,
- (f) C1-4-Alkylamino,
- (g) Di(C1-4-alkyl)amino,
- (h) Hydroxy,
- (i) C1-6-Alkyl, das gegebenenfalls mit
ein bis drei gleichen oder verschiedenen Halogen-, Hydroxy-, C1-6-Alkoxy, Amino-, C1-4-Alkylamino-,
Di-(C1-4-alkyl)amino-, Cyano- oder Nitrogruppen
substituiert ist,
- (j) C3-7-Cycloalkyl, das gegebenenfalls
mit ein bis drei gleichen oder verschiedenen Halogen-, Hydroxy-, C1-6-Alkoxy-, Amino-, C1-4-Alkylamino-,
Di-(C1-4-alkyl)amino-, Cyano- oder Nitrogruppen
substituiert ist,
- (k) C1-6-Alkoxy,
- (l) -C(O)OR7,
- (m) -C(O)R8,
- (n) -C(O)NR9R10,
- (o) -C(=NR12)(R11),
- (p) Aryl, wobei das Aryl für
Phenyl oder Napthyl steht, und gegebenenfalls mit ein bis zwei gleichen
oder verschiedenen Amino, C1-4-Alkylamino,
Di(C1-4-alkyl)amino, Cyano, C-Amido, N-Amido, C1-6-Alkoxy, C1-6-Thioalkoxy
oder Halogen substituiert ist,
- (q) Heteroaryl, wobei Heteroaryl ausgewählt ist unter Pyridinyl, Pyrazinyl,
Pyridazinyl, Pyrimidinyl, Furanyl, Thienyl, Benzothienyl, Thiazolyl,
Isothiazolyl, Oxazolyl, Benzooxazolyl, Isoxazolyl, Imidazolyl, Benzoimidazolyl,
1H-Imidazo[4,5-b]pyridin-2-yl, 1H-Imidazo[4,5-c]pyridin-2-yl, Oxadiazolyl,
Thiadiazolyl, Pyrazolyl, Tetrazolyl, Tetrazinyl, Triazniyl und Triazolyl,
und gegebenenfalls mit ein bis zwei gleichen oder verschiedenen Gruppen
substituiert ist, ausgewählt
unter (aa)–(pp):
(aa) Halogen, (bb) C1-6-Alkyl, das gegebenenfalls
mit ein bis drei gleichen oder verschiedenen Halogen, Hydroxy, Cyano,
Amino, C1-4-Alkylamino oder Di(C1-4-alkyl)amino substituiert ist, (cc) C3-6-Alkenyl, (dd) C1-6-Alkoxy, (ee) Phenyl,
gegebenenfalls substituiert mit ein oder zwei gleichen oder verschiedenen
Halogen, (ff) Heteroaryl, das ausgewählt ist unter Pyridinyl, Pyrimidinyl,
Furanyl, Thienyl, Oxazolyl, Isoxazolyl, Pyrazolyl, Triazolyl und
Tetrazolyl, und das gegebenenfalls mit ein oder zwei gleichen oder
verschiedenen C1-4-Alkyl, C1-4-Alkoxy,
Halogen, Amino, C1-4-Alkylamino und Di(C1-4-alkyl)amino substituiert ist, (gg) Heteroaryl-C1-6-alkyl,
wobei das Heteroaryl des Heteroaryl-C1-6-alkyl ausgewählt ist
unter Pyridinyl, Furanyl, Thienyl und Pyrazolyl, das Heteroaryl
des Heteroaryl-C1-6-alkyl gegebenenfalls
mit ein oder zwei gleichen oder verschiedenen C1-4-Alkyl,
Halogen oder Amino substituiert ist und wobei ein Kohlenstoff des
C1-6-Alkyls des Heteroaryl-C1-6-alkyls
gegebenenfalls durch ein Schwefel oder Sulfonyl ersetzt ist, (hh)
Amino, (ii) C1-4-Alkylamino, wobei das C1-4-Alkyl
des C1-4-Alkylaminos gegebenenfalls mit
Amino, C1-4-Alkylamino, Di(C1-4-Alkylamino,
Morpholinyl, Piperazinyl oder Piperidinyl substituiert ist, (jj)
Di(C1-4-alkyl)amino, (kk) C3-7-Cycloalkylamino,
(ll) -(CH2)q aC(O)R23, (mm) -CH2OC(O)C1-6-Alkyl, (nn)
-NH-(CH2)q bC(O)R24, (oo) -CO2CH2C(O)R25, (pp) Phenylmethyl, wobei das Phenyl des
Phenylmethyls gegebenenfalls mit -(CH2)q cC(O)R26 substituiert
ist; und
- (r) einem heteroalicyclischen Rest, der ausgewählt ist
unter Piperazinyl, Piperidinyl, Morpholinyl, 5-Oxo-4,5-dihydro-[1,2,4]oxadiazol-3-yl,
4,5-Dihydro-thiazol-2-yl, 5-Oxo-4,5-dihydro-[1,3,4]oxadiazol-2-yl und 4,5-Dihydro-1H-imidazol-2-yl,
und der heteroalicyclische Rest gegebenenfalls mit ein oder zwei
gleichen oder verschiedenen C1-4-Alkyl,
C1-4-Alkoxy, Hydroxy, Cyano oder Amino substituiert
ist;
R6 und R7 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter Wasserstoff oder C1-6-Alkyl;
R8 ausgewählt
ist unter C1-6-Alkyl, Phenyl und Heteroaryl,
wobei das Heteroaryl ausgewählt
ist unter Oxazolyl, Isoxazolyl, Imidazolyl, Pyrazolyl, Thiazolyl,
Isothiazolyl, Oxadiazolyl, Thiadiazolyl, Pyridinyl, und Pyrimidinyl und
das Heteroaryl gegebenenfalls substituiert ist mit ein bis zwei
gleichen oder verschiedenen C1-6-Alkyl-, Amino-,
CO2H- oder CO2C1-6-Alkyl-Gruppen;
R9 und R10 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter den Gruppen (a)–(l): - (a) Wasserstoff,
- (b) C1-6-Alkyl, wobei das C1-6-Alkyl
gegebenenfalls mit ein bis zwei gleichen oder verschiedenen Amino, Di(C1-6-Alkyl)amino oder C1-6-Alkoxy
substituiert ist,
- (c) C1-6-Alkoxy,
- (d) Heteroaryl, wobei das Heteroaryl ausgewählt ist unter Pyridinyl, Isoxazolyl,
Benzoimidazolyl, Tetrazolyl, Pyrazolyl, Thiazoyl, Oxadiazolyl, Thiadiazolyl,
Benzothiazolyl, Pyrimidinyl und Isochinolinyl und das Heteroaryl
gegebenenfalls mit ein bis zwei gleichen oder verschiedenen C1-6-Alkyl oder C1-6-Alkoxy
substituiert ist,
- (e) Heteroaryl-C1-6-Alkyl, wobei das
Heteroaryl ausgewählt
ist unter Indolyl, Imidazolyl, Benzoimidazolyl, Pyridinyl, Pyrimidinyl,
Thiazolyl, Triazolyl, Tetrazolyl, Furanyl und Thienyl,
- (f) einem heteroalicyclischen Rest, wobei der heteroalicyclische
Rest Morpholinyl, Piperazinyl oder Dihydrothiazolyl ist und gegebenenfalls
mit einem C1-6-Alkoxycarbonyl substituiert
ist,
- (g) Morpholin-4-ylethyl,
- (h) Phenylsulfonyl,
- (i) C1-4-Alkylsulfonyl,
- (j) Amino,
- (k) (C1-6-Alkoxy)-C(O)NH-, und
- (l) (C1-6-Alkyl)-NHC(O)NH; oder R9 und R10 zusammen
mit dem Stickstoff, an den sie gebunden sind, für 4-Benzylpiperazin-1-yl oder
4-Benzoylpiperazin-1-yl stehen;
R11 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, C1-6-Alkoxy und NR21R22;
R12 ausgewählt
ist unter Wasserstoff, Hydroxy, NHCO2C1-6-Alkyl und C1-6-Alkoxy,
wobei das C1-6-Alkoxy gegebenenfalls mit
einem CO2H oder CO2C1-6-Alkyl substituiert ist;
R13, R14, R15, R16, R17, R18, R19 und R20 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter Wasserstoff oder C1-6-Alkyl;
R21 und R22 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter Wasserstoff, Amino, C1-6-Alkyl,
C3-7-Cycloalkyl
und NHCO2C1-6-Alkyl;
R23, R24, R25 and R26 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter Hydroxy, C1-4-Alkyl, C1-4-Alkoxy,
gegebenenfalls substituiert mit Morpholin-4-yl oder Di(C1-4-alkyl)amino, Amino, Pyrrolidin-1-yl,
(C1-4-Alkyl)amino und Di(C1-4-Alkyl)amino;
q a, q b und q c jeweils
unabhängig
für 0 oder
1 stehen; und
vorausgesetzt wenigstens einer der Reste R2, R3, R4 und
R5 ist ausgewählt unter -C(O)R8,
-C(O)NR9R10, -C(=NR12)(R11), Aryl, Heteroaryl
und einem heteroalicyclischen Rest, wenn --- eine Kohlenstoff-Kohlenstoff-Doppelbindung
bedeutet.
-
Eine
zweite Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
ersten Ausführungsform
des ersten Aspekts, einschließlich
pharmazeutisch akzeptable Salze davon, worin:
A ausgewählt ist
unter C1-6-Alkoxy, Phenyl und Heteroaryl,
wobei das Heteroaryl ausgewählt
ist unter Pyridinyl, Furanyl und Thienyl und das Phenyl oder das
Heteroaryl gegebenenfalls substituiert ist mit einem bis zwei gleichen
oder verschiedenen Amino-, Nitro-, Cyano-, C1-6-Alkoxy-, -C(O)NH2-, Halogen- oder Trifluormethyl-Gruppen;
---
für eine
Kohlenstoff-Kohlenstoff-Doppelbindung steht;
R6 für Wasserstoff
steht;
R13, R14,
R16, R17 und R18 jeweils für Wasserstoff stehen; und
R15, R19 und R20 jeweils unabhängig für Wasserstoff oder C1-6-Alkyl stehen.
-
Eine
dritte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
zweiten Ausführungsform
des ersten Aspekts oder ein pharmazeutisch akzeptables Salz davon,
worin:
R2 ausgewählt ist unter Wasserstoff,
Halogen und C1-6-Alkoxy;
R3 und
R4 für
Wasserstoff stehen; und
R5 ausgewählt ist
unter -C(O)R8, -C(O)NR9R10, -C(=NR12)(R11), Aryl, Heteroaryl und einem heteroalicyclischen Rest.
-
Eine
vierte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts oder ein pharmazeutisch akzeptables Salz davon,
worin:
R2 für Halogen oder C1-6-Alkoxy
steht;
R5 für Phenyl steht, wobei das Phenyl
gegebenenfalls mit C1-4-Alkoxy, C1-4-Thioalkoxy oder Halogen substituiert ist;
R15 and R19 jeweils
für Wasserstoff
stehen;
R20 für Wasserstoff oder Methyl steht;
und
A für
Phenyl steht.
-
Eine
fünfte
Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
vierten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Fluor
oder Methoxy steht;
R5 für Phenyl
steht, wobei das Phenyl gegebenenfalls durch Methoxy, Thiomethoxy
oder Fluor substituiert ist; und
R20 für Wasserstoff
steht.
-
Eine
sechste Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts oder ein pharmazeutisch akzeptables Salz davon,
worin:
R2 für Halogen oder C1-6-Alkoxy;
R5 ausgewählt
ist unter -C(O)NR9R10,
-C(=NR12)(R11) und
Heteroaryl, wobei das Heteroaryl für Tetrazolyl oder Oxadiazolyl
steht und gegebenenfalls durch ein bis zwei C1-6-Alkyl,
Dihalogenmethyl, Trihalogenmethyl oder Halogen substituiert ist;
R15 und R19 jeweils
für Wasserstoff
stehen;
R20 für Wasserstoff oder C1-6Alkyl steht; und
A für Heteroaryl
steht, wobei das Heteroaryl ausgewählt ist unter Pyridinyl, Furanyl
und Thienyl und gegebenenfalls mit einem Halogen substituiert ist.
-
Eine
siebte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
sechsten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Fluor
steht;
R5 ausgewählt ist unter 2H-Tetrazolyl,
2-Dihalogenmethyl-2H-tetrazolyl, [1,2,4]-Oxadiazolyl, 5-Amino-[1,2,4]-oxadiazolyl,
5-Trihalogenmethyl-[1,2,4]-oxadiazolyl, -C(O)NH2 and
-C(=NOH)NH2;
R20 für Wasserstoff
oder Methyl steht; und
A für
Pyridinyl steht.
-
Eine
achte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
sechsten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Fluor
steht;
R5 für 2H-Tetrazolyl oder 2-Methyl-2H-tetrazolyl
steht;
R20 für Wasserstoff steht;
A
für Furanyl
oder Thienyl steht, wobei das Furanyl gegebenenfalls mit einem Chlor
oder Brom subsituiert ist.
-
Eine
neunte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, Fluor oder Methoxy;
R5 für -C(O)NR9R10 steht;
R15 und R19 jeweils
für Wasserstoff
stehen;
R20 für Wasserstoff oder Methyl steht;
und
A für
Phenyl steht.
-
Eine
zehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
neunten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Wasserstoff
steht; und
R9 und R10 jeweils
unabhängig
voneinander ausgewählt
sind unter Wasserstoff, C1-6-Alkyl, das
gegebenenfalls mit Di(C1-4-alkyl)amino,
Methylsulfonyl, Phenylsulfonyl, und Tetrazolyl substituiert ist,
oder R9 und R10 zusammen
mit dem Stickstoff, an den sie gebunden sind, für 4-Benzylpiperazin-1-yl stehen.
-
Eine
elfte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der neunten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Methoxy
steht;
R20 für Wasserstoff steht; und
R9 und R10 jeweils
unabhängig
voneinander für
Wasserstoff oder Methyl stehen.
-
Eine
zwölfte
Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung der
neunten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Fluor
steht;
R20 für Methyl steht; und
R9 und R10 jeweils
unabhängig
ausgewählt
sind unter Wasserstoff, C1-6-Alkyl und Morpholin-4-ylethyl.
-
Eine
dreizehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der neunten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Fluor
steht; und
R20 für Wasserstoff steht.
-
Eine
vierzehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Wasserstoff,
Methoxy oder Fluor steht;
R5 für -C(O)R8 steht;
R15 und
R19 jeweils für Wasserstoff stehen;
R20 für
Wasserstoff oder Methyl steht; und
A für Phenyl steht.
-
Eine
fünfzehnte
Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der vierzehnten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Methoxy
oder Fluor steht; und
R8 für C1-6-Alkyl steht.
-
Eine
sechzehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der fünfzehnten
Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 für Methoxy
steht;
R8 für Methyl steht; und
R20 für
Wasserstoff steht.
-
Eine
siebzehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, Methoxy und Halogen;
R5 für Heteroaryl
steht;
R15 und R19 jeweils
für Wasserstoff
stehen;
R20 für Wasserstoff oder Methyl steht;
und
A für
Phenyl steht, wobei das Phenyl gegebenenfalls mit ein oder zwei
gleichen oder verschiedenen Cyano, Fluor, Trifluormethyl, Amino,
Nitro und C(O)NH2 substituiert ist.
-
Eine
achtzehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der siebzehnten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R5 für Heteroaryl
steht, wobei das Heteroaryl ausgewählt ist unter Pyridinyl, Pyrimidinyl,
Furanyl, Thienyl, Benzothienyl, Thiazolyl, Oxazolyl, Benzooxazolyl,
Imidazolyl, Benzoimidazolyl, Oxadiazolyl, Pyrazolyl, Triazolyl, Tetrazolyl,
1H-Imidazo[4,5-b]pyridin-2-yl, und 1H-Imidazo[4,5-c]pyridin-2-yl.
-
Eine
neunzehnte Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, Methoxy und Fluor;
R5 für einen
heteroalicyclischer Rest steht, wobei der heteroalicyclische Rest
ausgewählt
ist unter 5-Oxo-4,5-dihydro-[1,2,4]oxadiazol-3-yl, 4,5-Dihydro-thiazol-2-yl,
5-Oxo-4,5-dihydro-[1,3,4]oxadiazol-2-yl
und 4,5-Dihydro-1H-imidazol-2-yl;
R15 and
R19 jeweils für Wasserstoff stehen;
R20 für
Wasserstoff oder Methyl steht; und
A für Phenyl steht.
-
Eine
zwanzigste Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung
der dritten Ausführungsform
des ersten Aspekts, worin:
R2 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, Methoxy und Fluor;
R5 für -C(=NR12)(R11) steht;
A
für Phenyl
oder C1-6-Alkoxy steht;
R11 ausgewählt ist
unter Wasserstoff, Hydroxy, NHCO2C(CH3)3 und OCH2CO2H; und
R12 ausgewählt
ist unter Wasserstoff, Ethoxy und NR21R22;
R15 und
R19 jeweils für Wasserstoff stehen;
R20 für
Wasserstoff oder Methyl stehen;
R21 und
R22 jeweils unabhängig voneinander ausgewählt sind
unter Wasserstoff, Amino, C1-6-Alkyl, Cyclopropyl und
NHCO2C(CH3)3.
-
Eine
einundzwanzigste Ausführungsform
des ersten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine Verbindung,
die ausgewählt
ist unter:
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-oxazol-5-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-[4-fluor-7-(2H-tetrazol-5-yl)-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
3-[2-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-4-fluor-1H-indol-7-carbonsäureamid;
3-[2-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-4-fluor-1H-indol-7-carbonsäurethiazol-2-ylamid;
3-[2-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-1H-indol-7-carbonsäure(1H-tetrazol-5-yl)-amid;
3-[2-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-1H-indol-7-carbonsäuremethylamid;
3-[2-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-1H-indol-7-carbonsäuredimethylamid;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[4-fluor-7-(5-methyl-2H-[1,2,4]triazol-3-yl)-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-[1,2,4]oxadiazol-3-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-(5-methyl-[1,2,4]oxadiazol-3-yl)-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[7-(5-cyclopropylamino-[1,2,4]oxadiazol-3-yl)-4-fluor-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[7-(5-amino-[1,2,4]oxadiazol-3-yl)-4-fluor-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[4-fluor-7-(3H-imidazol-4-yl)-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-[1,3,4]oxadiazol-2-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-[7-(5-Amino-[1,3,4]oxadiazol-2-yl)-4-fluor-1H-indol-3-yl)-2-(4-benzoylpiperazin-1-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[4-fluor-7-(1H-[1,2,4]triazol-3-yl)-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-[4-methoxy-7-(1H-[1,2,4]triazol-3-yl)-1H-indol-3-yl]-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-pyrazol-1-yl-1H-indol-3-yl)-ethane-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-imidazol-1-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(7-Acetyl-4-methoxy-1H-indol-3-yl)-2-(4-benzoyl-piperazin-1-yl)-ethan-1,2-dion;
3-[2-(4-Benzoyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-4-methoxy-1H-indol-7-carbonsäureamid;
1-(4-fluor-7-[1,2,4]oxadiazol-3-yl-1H-indol-3-yl)-2-[4-(3-nitro-benzoyl)-piperazin-1-yl]-ethan-1,2-dion;
1-[4-(3-Amino-benzoyl)-piperazin-1-yl]-2-(4-fluor-7-[1,2,4]oxadiazol-3-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-[7-(5-cyclobutylamino-[1,2,4)oxadiazol-3-yl)-4-fluor-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
1-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-(4-fluor-7-[1,2,4]oxadiazol-3-yl-1H-indol-3-yl)-ethan-1,2-dion;
3-[2-(4-Benzoyl-2-(R)-methyl-piperazin-1-yl)-2-oxo-acetyl]-4-fluor-1H-indol-7-carbonsäureamid;
1-[7-(5-Amino-[1,2,4]oxadiazol-3-yl)-4-fluor-1H-indol-3-yl]-2-[4-(pyridine-2-carbonyl)-piperazin-1-yl]-ethan-1,2-dion;
und
1-(4-fluor-7-[1,2,4]oxadiazol-3-yl-1H-indol-3-yl)-2-[4-(pyridine-2-carbonyl)-piperazin-1-yl]-ethan-1,2-dion.
-
Eine
erste Ausführungsform
eines zweiten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine pharmazeutische
Formulierung, welche eine antiviral wirksame Menge einer Verbindung
der Formel I, einschließlich der
pharmazeutisch akzeptablen Salze davon, und einen pharmazeutisch
akzeptablen Träger,
ein pharmazeutisch akzeptables Adjuvans oder Verdünnungsmittel
umfasst.
-
Eine
zweite Ausführungsform
des zweiten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft eine pharmazeutische
Formulierung einer Verbindung der Formel I, die zur Behandlung viraler Infektionen
wie HIV-Infektionen brauchbar ist, und zusätzlich eine antiviral wirksame
Menge eines AIDS-Behandlungsmittels umfasst, das ausgewählt ist
unter:
- (a) einem antiviralen AIDS-Mittel;
- (b) einem antiinfektiven Mittel;
- (c) einem Immunmodulator; und
- (d) HIV-Entry-Inhibitoren.
-
Eine
erste Ausführungsform
eines dritten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren
zur Herstellung von Medikamenten zur Behandlung von Säugern, die
mit einem Virus infiziert oder für
einen solchen empfänglich
sind, umfassend eine antiviral wirksame Menge einer Verbindung der
Formel 1, wie zuvor für
die erste bis einundzwanzigste Ausführungsform des ersten Aspekts
beschrieben, oder ein nicht-toxisches pharmazeutisch akzeptables
Salz, Solvat oder Hydrat davon zusammen mit einem herkömmlichen
Adjuvans, Träger
oder Verdünnungsmittel.
-
Eine
zweite Ausführungsform
des dritten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren
zur Herstellung von Medikamenten zur Behandlung von Säugern, die
mit einem Virus infiziert sind, umfassend eine antiviral wirksame
Menge einer Verbindung der Formel 1.
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Eine
dritte Ausführungsform
des dritten Aspekts der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren
zur Herstellung von Medikamenten zur Behandlung von Säugern, die
mit einem Virus wie HIV infiziert sind, umfassend eine antiviral
wirksame Menge einer Verbindung der Formel 1 in Kombination mit
einer antiviral wirksamen Menge eines AIDS-Behandlungsmittels, das ausgewählt ist
unter: (a) einem antiviralen AIDS-Mittel; (b) einem antiinfektiven
Mittel; (c) einem Immunmodulator; und (d) HIV-Entry-Inhibitoren.
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AUSFÜHRLICHE
BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
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Die
Beschreibung der Erfindung hierin ist entsprechend den Gesetzen
und Prinzipien chemischer Bindung auszulegen.
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DEFINITIONEN
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"Halogen" steht für Chlor,
Brom, Iod oder Fluor.
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Eine "Aryl"-Gruppe steht für eine vollständig aus
Kohlenstoffatomen bestehende monozyklische Gruppe oder polyzyklische
Gruppe mit kondensierten Ringen (d. h. Ringen, die gemeinsam benachbarte
Paare von Kohlenstoffatomen besitzen) mit einem vollständig konjugierten
pi-Elektronensystem. Nicht einschränkende Beispiele für Arylgruppen
sind Phenyl, Napthyl and Anthracenyl. Die Arylgruppe kann wie angegeben
substituiert oder unsubstituiert sein. Im Fall einer Substitution
ist(sind) die substituierte(n) Gruppe(n) vorzugsweise eine oder
mehrere Gruppe(n), ausgewählt
unter Alkyl, Cycloalkyl, Aryl, Heteroaryl, Heteroalicyclisch, Hydroxy, Alkoxy,
Aryloxy, Heteroaryloxy, Heteroalicycloxy, Thiohydroxy, Thioalkoxy,
Thioaryloxy, Thioheteroaryloxy, Thioheteroalicycloxy, Cyano, Halogen,
Nitro, Carbonyl, Thiocarbonyl, O-Carbamyl, N-Carbamyl, O-Thiocarbamyl, N-Thiocarbamyl,
C-Amido, C-Thioamido, N-Amido, C-Carboxy,
O-Carboxy, Sulfinyl, Sulfonyl, Sulfonamido, Trihalogenmethansulfonamido,
Trihalogenmethansulfonyl, Silyl, Guanyl, Guanidino, Ureido, Phosphonyl,
Amino und -NRxRy,
wobei Rx und Ry unabhängig ausgewählt sind
unter Wasserstoff, Alkyl, Cycloalkyl, Alkenyl, Alkinyl, Aryl, Carbonyl,
C-Carboxy, Sulfonyl, Trihalogenmethansulfonyl, Trihalogenmethancarbonyl
und, kombiniert, einem fünf-
oder sechsgliedrigen heteroalizyklischen Ring.
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Wie
hierin verwendet steht "Heteroaryl"-Gruppe für eine monozyklische
Gruppe oder eine Gruppe mit kondensierten Ringen (d. h. Ringen,
die gemeinsam ein benachbartes Paar von Atomen besitzen), die im(in den)
Ring(en) ein oder mehrere Atome aufweist, die ausgewählt sind
unter Stickstoff, Sauerstoff und Schwefel, und die außerdem ein
vollständig
konjugiertes pi-Elektronensystem besitzt. Nicht einschränkende Beispiele
für Heteroarylgruppen
sind Furyl, Thienyl, Benzothienyl, Thiazolyl, Imidazolyl, Oxazolyl,
Oxadiazolyl, Thiadiazolyl, Benzthiazolyl, Triazolyl, Tetrazolyl,
Isoxazolyl, Isothiazolyl, Pyrrolyl, Pyranyl, Tetrahydropyranyl,
Pyrazolyl, Pyridyl, Pyrimidinyl, Chinolinyl, Isochinolinyl, Purinyl,
Carbazolyl, Benzoxazolyl, Benzimidazolyl, Indolyl, Isoindolyl, Pyrazinyl.
Im Fall einer Substitution ist(sind) die substituierte(n) Gruppe(n)
vorzugsweise eine oder mehrere Gruppe(n), ausgewählt unter Alkyl, Cycloalkyl,
Aryl, Heteroaryl, Heteroalicyclisch, Hydroxy, Alkoxy, Aryloxy, Heteroaryloxy,
Heteroalicycloxy, Thiohydroxy, Thioalkoxy, Thioaryloxy, Thioheteroaryloxy,
Thioheteroalicycloxy, Cyano, Halogen, Nitro, Carbonyl, Thiocarbonyl,
O-Carbamyl, N-Carbamyl, O-Thiocarbamyl, N-Thiocarbamyl, C-Amido, C-Thioamido,
N-Amido, C-Carboxy, O-Carboxy, Sulfinyl, Sulfonyl, Sulfonamido,
Trihalogenmethansulfonamido, Trihalogenmethansulfonyl, Silyl, Guanyl,
Guanidino, Ureido, Phosphonyl, Amino und -NRxRy, wobei Rx und Ry wie oben definiert sind.
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Wie
hierin verwendet steht "heteroalizyklische" Gruppe für eine monozyklische
Gruppe oder eine Gruppe mit kondensierten Ringen, die im(in den)
Ring(en) ein oder mehrere Atome aufweist, die ausgewählt sind
unter Stickstoff, Sauerstoff und Schwefel. Die Ringe weisen gegebenenfalls
eine oder mehrere Doppelbindungen auf. Die Ringe besitzen jedoch
kein vollständig
konjugiertes pi-Elektronensystem. Nicht einschränkende Beispiele für heteroalizyklische
Gruppen sind Azetidinyl, Piperidyl, Piperazinyl, Imidazolinyl, Thiazolidinyl,
3-Pyrrolidin-1-yl, Morpholinyl, Thiomorpholinyl und Tetrahydropyranyl.
Im Fall einer Substitution ist sind) die substituierte(n) Gruppe(n)
vorzugsweise eine oder mehrere Gruppe(n), ausgewählt unter Alkyl, Cycloalkyl, Aryl,
Heteroaryl, Heteroalicyclisch, Hydroxy, Alkoxy, Aryloxy, Heteroaryloxy,
Heteroalicycloxy, Thiohydroxy, Thioalkoxy, Thioaryloxy, Thioheteroaryloxy,
Thioheteroalicycloxy, Cyano, Halogen, Nitro, Carbonyl, Thiocarbonyl,
O-Carbamyl, N-Carbamyl, O-Thiocarbamyl, N-Thiocarbamyl, C-Amido, C-Thioamido,
N-Amido, C-Carboxy, O-Carboxy, Sulfinyl, Sulfonyl, Sulfonamido,
Trihalogenmethansulfonamido, Trihalogenmethansulfonyl, Silyl, Guanyl,
Guanidino, Ureido, Phosphonyl, Amino und -NRxRy, wobei Rx und Ry wie oben definiert sind.
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Eine "Alkyl"-Gruppe steht für einen
gesättigten
aliphatischen Kohlenwasserstoff, umfassend geradkettige und verzweigte
Gruppen. Vorzugsweise weist die Alkylgruppe 1 bis 20 Kohlenstoffatome
auf (jedes Mal, wenn hierin ein Zahlenbereich, z. B. "1–20", angegeben wird, bedeutet dies, dass
die Gruppe, in diesem Fall die Alkylgruppe 1 Kohlenstoffatom, 2
Kohlenstoffatome, 3 Kohlenstoffatome, etc. bis zu einschließlich 20
Kohlenstoffatomen aufweisen kann). Zum Beispiel steht der Ausdruck "C1-6-Akyl", wie hierin und
in den Ansprüchen
verwendet (sofern nicht anders angegeben) für geradkettige oder verzweigte
Alkylgruppen wie Methyl, Ethyl, Propyl, Isopropyl, Butyl, Isobutyl,
t-Butyl, Amyl, Hexyl und dergleichen. Besonders bevorzugt handelt
es sich um eine Alkylgruppe mittlerer Größe mit 1 bis 10 Kohlenstoffatomen.
Die Alkylgruppe kann substituiert oder unsubstituiert sein. Im Fall
einer Substitution ist(sind) die Substituentengruppe(n) vorzugsweise
eine oder mehrere Gruppe(n), einzeln ausgewählt unter Trihalogenalkyl,
Alkyl, Cycloalkyl, Aryl, Heteroaryl, Heteroalicyclisch, Hydroxy,
Alkoxy, Aryloxy, Heteroaryloxy, Heteroalicycloxy, Thiohydroxy, Thioalkoxy,
Thioaryloxy, Thioheteroaryloxy, Thioheteroalicycloxy, Cyano, Halogen,
Nitro, Carbonyl, Thiocarbonyl, O-Carbamyl, N-Carbamyl, O-Thiocarbamyl,
N-Thiocarbamyl, C-Amido, C-Thioamido, N-Amido, C-Carboxy, O-Carboxy,
Sulfinyl, Sulfonyl, Sulfonamido, Trihalogenmethansulfonamido, Trihalogenmethansulfonyl,
und kombiniert, einem fünf- oder
sechsgliedrigen heteroalizyklischen Ring.
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Eine "Cycloalkyl"-Gruppe steht für eine vollständig aus
Kohlenstoffatomen bestehende monozyklische Gruppe oder Gruppe mit
kondensierten Ringen (d. h. Ringen, die gemeinsam ein benachbartes
Paar von Kohlenstoffatomen besitzen), wobei ein oder mehrere Ringe
kein vollständig
konjugiertes pi-Elektronensystem besitzen. Nicht einschränkende Beispiele
für Cycloalkylgruppen
sind Cyclopropan, Cyclobutan, Cyclopentan, Cyclopenten, Cyclohexan,
Cyclohexadien, Cycloheptan, Cycloheptatrien und Adamantan. Eine
Cycloalkylgruppe kann substituiert oder unsubstituiert sein. Im
Fall einer Substitution ist(sind) die substituierte(n) Gruppe(n)
vorzugsweise eine oder mehrere Gruppe(n), einzeln ausgewählt unter
Alkyl, Cycloalkyl, Aryl, Heteroaryl, Heteroalicyclisch, Hydroxy,
Alkoxy, Aryloxy, Heteroaryloxy, Heteroalicycloxy, Thiohydroxy, Thioalkoxy,
Thioaryloxy, Thioheteroaryloxy, Thioheteroalicycloxy, Cyano, Halogen,
Nitro, Carbonyl, Thiocarbonyl, O-Carbamyl, O-Carbamyl, O-Thiocarbamyl,
N-Thiocarbamyl, C-Amido, C-Thioamido,
N-Amido, C-Carboxy, O-Carboxy, Sulfinyl, Sulfonyl, Sulfonamido,
Trihalogenmethansulfonamido, Trihalogenmethansulfonyl, Silyl, Guanyl,
Guanidino, Ureido, Phosphonyl, Amino und -NRxRy, wobei Rx und Ry wie oben definiert sind.
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Eine "Alkenyl"-Gruppe steht für eine Alkylgruppe,
wie hierin definiert, bestehend aus wenigstens zwei Kohlenstoffatomen
und wenigstens einer Kohlenstoff-Kohlenstoff-Doppelbindung.
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Eine "Alkinyl"-Gruppe steht für eine Alkylgruppe,
wie hierin definiert, bestehend aus wenigstens zwei Kohlenstoffatomen
und wenigstens einer Kohlenstoff-Kohlenstoff-Dreifachbindung.
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Eine "Hydroxy"-Gruppe steht für eine Gruppe
-OH.
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Eine "Alkoxy"-Gruppe steht sowohl
für eine
-O-Alkyl- als auch für
eine -O-Cycloalkylgruppe,
wie hierin definiert.
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Eine "Aryloxy"-Gruppe steht sowohl
für eine
-O-Aryl- als auch für
eine -O-Heteroarylgruppe,
wie hierin definiert.
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Eine "Heteroaryloxy"-Gruppe steht für eine Heteroaryl-O-Gruppe,
wobei Heteroaryl wie hierin definiert ist.
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Eine "Heteroalicycloxy"-Gruppe steht für eine heteroalizyklische
-O-Gruppe, wobei heteroalizyklisch wie hierin definiert ist.
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Eine "Thiohydroxy"-Gruppe steht für eine Gruppe
-SH.
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Eine "Thioalkoxy"-Gruppe steht sowohl
für eine
S-Alkyl-Gruppe als auch für
eine Gruppe -S-Cycloalkyl, wie hierin definiert.
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Eine "Thioaryloxy"-Gruppe steht sowohl
für eine
-S-Arylgruppe als auch für
eine Gruppe -S-Heteroaryl, wie hierin definiert.
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Eine "Thioheteroaryloxy"-Gruppe steht für eine Heteroaryl-S-Gruppe,
wobei Heteroaryl wie hierin definiert ist.
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Eine "Thioheteroalicycloxy"-Gruppe steht für eine heteroalizyklische
S-Gruppe, wobei heteroalizyklisch wie hierin definiert ist.
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Eine "Carbonyl"-Gruppe steht für eine Gruppe
-C(=O)-R'', wobei R'' ausgewählt ist unter Wasserstoff, Alkyl,
Alkenyl, Alkinyl, ycloalkyl, Aryl, Heteroaryl (gebunden über einen
Ringkohlenstoff) und heteroalizyklisch (gebunden über einen
Ringkohlenstoff), wobei jeder Ausdruck jeweils wie hierin definiert
ist.
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Eine "Aldehyd"-Gruppe steht für eine Carbonyl-Gruppe,
wobei R'' für Wasserstoff
steht.
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Eine "Thiocarbonyl"-Gruppe steht für eine Gruppe
-C(=S)-R'', wobei R'' wie hierin definiert ist.
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Eine "Keto"-Gruppe steht für eine Gruppe
-CC(=O)C-, wobei der Kohlenstoff auf einer oder beiden Seiten der
Gruppe C=O Alkyl, Cycloalkyl, Aryl oder ein Kohlenstoff einer Heteroaryl-
oder heteroalizyklischen Gruppe sein kann.
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Eine "Trihalogenmethancarbonyl"-Gruppe steht für eine Gruppe
Z3CC(=O)-, wobei Z für ein Halogen steht.
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Eine "C-Carboxy"-Gruppe steht für eine Gruppe
-C(=O)O-R'', wobei R'' wie hierin definiert ist.
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Eine "O-Carboxy"-Gruppe steht für eine R''C(-O)O-Gruppe, wobei R'' wie hierin definiert ist.
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Eine "Carbonsäure"-Gruppe steht für eine C-Carboxy-Gruppe,
wobei R'' für Wasserstoff
steht.
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Eine "Trihalogenmethyl"-Gruppe steht für eine Gruppe
-CZ3, wobei Z für eine Halogen-Gruppe wie hierin
definiert steht.
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Eine "Trihalogenmethancarbonyl"-Gruppe steht für eine Z3CC(=O)-Gruppe, wobei X wie oben definiert ist.
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Eine "Trihalogenmethansulfonyl"-Gruppe steht für eine Z3CS(=O)2-Gruppe,
wobei Z wie oben definiert ist.
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Eine "Trihalogenmethansulfonamido"-Gruppe steht für eine Z3CS(=O)2NRx-Gruppe, wobei Z und Rx wie
hierin definiert sind.
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Eine "Sulfinyl"-Gruppe steht für eine Gruppe
-S(=O)-R'', wobei R'' wie hierin definiert ist und außerdem nur
für eine
Bindung stehen kann; d. h. -S(O)-.
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Eine "Sulfonyl"-Gruppe steht für eine -S(=O)2R''-Gruppe, wobei R'' wie hierin definiert ist und außerdem nur
für eine
Bindung stehen kann; d. h. -S(O)2-.
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Eine "S-Sulfonamido"-Gruppe steht für -S(=O)2NRxRy,
wobei Rx and Ry wie
hierin definiert sind.
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Eine "N-Sulfonamido"-Gruppe steht für a R''S(=O)2NRx-Gruppe, wobei Rx wie
hierin definiert ist.
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Eine "O-Carbamyl"-Gruppe steht für -OC(=O)NRxRy, wie hierin definiert.
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Eine "N-Carbamyl"-Gruppe steht für eine RxOC(=O)NRy-Gruppe,
wobei Rx and Ry wie
hierin definiert sind.
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Eine "O-Thiocarbamyl"-Gruppe steht für eine -OC(=S)NRxRy-Gruppe, wobei
Rx und Ry wie hierin
definiert sind.
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Eine "N-Thiocarbamyl"-Gruppe steht für eine RxOC(=S)NRy-Gruppe,
wobei Rx und Ry wie
hierin definiert sind.
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Eine "Amino"-Gruppe steht für eine Gruppe
-NH2.
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Eine "C-Amido"-Gruppe steht für eine -C(=O)NRxRy-Gruppe, wobei
Rx and Ry wie hierin
definiert sind.
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Eine "C-Thioamido"-Gruppe steht für eine -C(=S)NRxRy-Gruppe, wobei
Rx and Ry wie hierin
definiert sind.
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Eine "N-Amido"-Gruppe steht für eine RxC(=O)NRy-Gruppe,
wobei Rx and Ry wie
hierin definiert sind.
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Eine "Ureido"-Gruppe steht für eine -NRxC(=O)NRyRy-Gruppe, wobei Rx and
Ry wie hierin definiert sind und Ry2 so wie Rx und
Ry definiert ist.
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Eine "Guanidino"-Gruppe steht für eine -RxNC(=N)NRyRy2-Gruppe, wobei Rx,
Ry und Ry2 wie hierin
definiert sind.
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Eine "Guanyl"-Gruppe steht für eine RxRyNC(=N)-Gruppe,
wobei Rx and Ry wie
hierin definiert sind.
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Eine "Cyano"-Gruppe steht für eine Gruppe
-CN.
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Eine "Silyl"-Gruppe steht für -Si(R'')3, wobei R'' wie hierin definiert ist.
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Eine "Phosphonyl"-Gruppe steht für P(=O)(ORx)2, wobei Rx wie hierin definiert ist.
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Eine "Hydrazino"-Gruppe steht für eine -NRxNRyRy2-Gruppe,
wobei Rx, Ry und
Ry2 wie hierin definiert sind.
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Der
Ausdruck "Spiro", wie hierin verwendet,
steht für
Ringsysteme, bei denen ein Kohlenstoffatom zu zwei Ringen gehört. Beispiele
für "Spiro"-Ringsysteme umfassen,
ohne darauf beschränkt
zu sein, Spiropentan und Spirohexan, unten gezeigt.
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Der
Ausdruck "kondensiert", wie hierin verwendet,
bezeichnet Ringsysteme, bei denen zwei benachbarte Atome gemeinsam
zu zwei Ringen gehören.
Beispiele für "kondensierte" Ringsystem umfassen,
ohne darauf beschränkt
zu sein, Decalin und Indol, unten gezeigt.
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Der
Ausdruck "verbrückt", wie hierin verwendet,
bezeichnet Ringsysteme, bei denen zwei nicht benachbarte Atome gemeinsam
zu zwei oder mehr Ringen gehören.
Beispiele für "verbrückte" Ringsysteme umfassen,
ohne darauf beschränkt
zu sein, Chinuclidin und Norbornan, unten gezeigt.
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Jeweils
zwei benachbarte R-Gruppen können
in Kombination miteinander einen zusätzlichen Aryl-, Cycloalkyl-,
Heteroaryl- oder heteroalizyklischen Ring bilden, der an den Ring
ankondensiert ist, der diese R-Gruppen ursprünglich trug.
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Es
ist im Fachgebiet bekannt, dass Stickstoffatome in Heteroarylsystemen „an einer
Heteroarylring-Doppelbindung beteiligt" sein können, was sich auf die Art
von Doppelbindungen in den beiden tautomeren Strukturen, die Heteroarylgruppen
fünfgliedriger
Ringe umfassen, bezieht. Hiernach richtet es sich, ob Stickstoffatome
substituiert werden, wie dem chemischen Fachmann bekannt ist. Die
Beschreibung und die Ansprüche
der vorliegenden Erfindung basieren auf den bekannten allgemeinen
Prinzipien chemischer Bindung. Es versteht sich, dass die Ansprüche keine
Strukturen beinhalten, von denen aus der Literatur bekannt ist,
dass sie instabil sind oder nicht existieren.
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Physiologisch
akzeptable Salze hierin beschriebener Verbindungen werden von der
Erfindung umfasst. Der Ausdruck "pharmazeutisch
akzeptables Salz",
wie hierin und in den Ansprüchen
verwendet, soll nicht-toxische Base-Additionsalze einschließen. Geeignete
Salze umfassen die von organischen und anorganischen Säuren wie,
ohne Einschränkung,
Chlorwasserstoffsäure,
Bromwasserstoffsäure,
Phosphorsäure, Schwefelsäure, Methansulfonsäure, Essigsäure, Weinsäure, Milchsäure, Sulfinsäure, Zitronensäure, Maleinsäure, Fumarsäure, Sorbinsäure, Aconitsäure, Salicylsäure, Phthalsäure und
dergleichen. Der Ausdruck "pharmazeutisch
akzeptables Salz",
wie hierin verwendet, soll auch Salze von Säuregruppen, wie ein Carboxylat,
mit solchen Gegenionen wie Ammonium, Alkalimetallsalzen, insbesondere
Natrium oder Kalium, Erdalkalimetallsalze, insbesondere Calcium
oder Magnesium, sowie Salze mit geeigneten organischen Basen wie niederen
Alkylaminen (Methylamin, Ethylamin, Cyclohexylamin und dergleichen)
oder mit substituierten niederen Alkylaminen (z. B. Hydroxyl-substituierten
Alkylaminen wie Diethanolamin, Triethanolamin oder tris(Hydroxymethyl)-aminomethan),
oder mit Basen wie Piperidin oder Morpholin, umfassen.
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Im
Rahmen des erfindungsgemäßen Verfahrens
bedeutet der Ausdruck "antiviral
wirksame Menge" die
Gesamtmenge jeder aktiven Verbindung des Verfahrens, die ausreicht,
um einen bedeutenden Nutzen für den
Patienten hervorzubringen, d. h. Heilung akuter Zustände, gekennzeichnet
durch Inhibierung der HIV-Infektion. Angewandt auf einen einzelnen,
alleine verabreichten, aktiven Bestandteil, bezieht sich der Ausdruck auf
den Bestandteil allein. Angewandt auf eine Kombination, bezieht
sich der Ausdruck auf die kombinierten Mengen der aktiven Bestandteile,
die zur therapeutischen Wirkung beitragen, sei es durch kombinierte,
aufeinander folgende oder gleichzeitige Verabreichung. Die Ausdrücke „behandeln,
Behandlung", wie
hierin und in den Ansprüchen
verwendet, bedeuten die Verhütung
oder Verbesserung von mit HIV-Infektion zusammenhängenden
Krankheitszuständen.
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Die
vorliegende Erfindung betrifft auch Kombinationen der Verbindungen
mit einem oder mehreren zur Behandlung von AIDS brauchbaren Mitteln.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen
können
z. B. effektiv in Kombination mit wirksamen Mengen von antiviralen
Mitteln, Immunmodulatoren, Anti-Infektiva oder Vakzinen gegen AIDS,
wie denjenigen der folgenden Tabelle, verabreicht werden, sei es
in Zeiten vor und/oder nach dem Einwirken.
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Außerdem können die
erfindungsgemäßen Verbindungen
in Kombination mit einer weiteren Klasse von Mitteln zur Behandlung
von AIDS verwendet werden, die als HIV-Entry-Inhibitoren bezeichnet werden. Beispiele
solcher HIV-Entry-Inhibitoren werden in DRUGS OF THE FUTURE 1999,
24(12), S. 1355-1362; CELL, Bd. 99, S. 243-246, 29. Okt. 1999; und
DRUG DISCOVERY TODAY, Bd. 5, Nr. 5, Mai 2000, S. 183-194 diskutiert.
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Es
versteht sich, dass der Anwendungsbereich für Kombinationen der erfindungsgemäßen Verbindungen
mit antiviralen Mitteln, Immunmodulatoren, Anti-Infektiva, HIV-Entry-Inhibitoren oder
Vakzinen gegen AIDS nicht auf die Auflistung in der obigen Tabelle
beschränkt
ist, sondern im Prinzip jede Kombination mit einer pharmazeutischen
Zusammensetzung, die zur Behandlung von AIDS brauchbar ist, umfasst.
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Bevorzugte
Kombinationen sind gleichzeitige oder alternierende Behandlungen
mit einer erfindungsgemäßen Verbindung
und einem Hemmer von HIV-Protease und/oder einem Nicht-Nukleosid-Hemmer
von HIV-Reverser-Transkriptase. Eine optionale vierte Komponente
bei der Kombination ist ein Nukleosid-Hemmer von HIV-Reverser-Transkriptase
wie AZT, 3TC, ddC oder ddI. Ein bevorzugter Hemmer von HIV-Protease
ist Indinavir, wobei es sich um das Sulfatsalz von N-(2(R)-Hydroxy-1-(S)-indanyl)-2(R)-phenylmethyl-4(S)-hydroxy-5-(1-(4-(3-pyridyl-methyl)-2(S)-N'-t-butylcarboxamido)-piperazinyl))-pentanamidethanolat
handelt, das gemäß der
US 5,413,999 synthetisiert
wird. Indinavir wird im Allgemeinen in einer Dosis von 800 mg drei
mal pro Tag verabreicht. Weitere bevorzugte Protease-Hemmeren sind
Nelfinavir und Ritonavir. Ein weiterer bevorzugter Hemmer von HIV-Protease
ist Saquinavir, der in einer Dosis von 600 oder 1200 mg DTA (Duldbare
tägliche
Aufnahmemenge, „tid") verabreicht wird. Bevorzugte
Nicht-Nukleosid-Hemmer von HIV-Reverser-Transkriptase umfassen Efavirenz.
Die Herstellung von ddC, ddI und AZT ist auch in der
EP 0 484 071 beschrieben. Diese Kombinationen
können
unerwartete Wirksamkeit bei der Eindämmung der Ausbreitung und des
Grades der HIV-Infektion zeigen. Bevorzugte Kombinationen umfassen
die folgenden mit (1) Indinavir mit Efavirenz und optional AZT und/oder
3TC und/oder ddI und/oder ddC; (2) Indinavir und eines von AZT und/oder
ddI und/oder ddC und/oder 3TC, insbesondere Indinavir und AZT und
3TC; (3) Stavudin und 3TC und/oder Zidovudin; (4) Zidovudin und
Lamivudin und 141W94 und 1592U89; (5) Zidovudin und Lamivudin.
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Bei
solchen Kombinationen können
die erfindungsgemäßen Verbindungen
und anderen aktiven Mittel separat oder zusammen verabreicht werden.
Außerdem
kann die Verabreichung eines Bestandteils vor, gleichzeitig mit,
oder nach der Verabreichung eines anderen bzw. anderer Mittels)
erfolgen.
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ABKÜRZUNGEN
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Die
folgenden Abkürzungen,
von denen die meisten dem Fachmann als übliche Abkürzungen bekannt sind, werden
in der Beschreibung und den Beispielen durchgängig verwendet. Einige der
verwendeten Abkürzungen
lauten wie folgt:
- h
- = Stunde(n)
- RT
- = Raumtemperatur
- mol
- = Mol
- mmol
- = Millimol
- g
- = Gramm
- mg
- = Milligramm
- mL
- oder ml = Milliliter
- μl
- = Mikroliter
- TFA
- = Triflouoressigsäure
- DCE
- = 1,2-Dichlorethan
- CH2Cl2
- = Dichlormethan
- THF
- = Tetrahydrofuran
- DEPBT
- = 3-(Diethoxyphosphoryloxy)-1,2,3-benzotriazin-4(3H)-on
- P-EDC
- = Polymer-geträgertes 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimid
- EDC
- = 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimid
- DMF
- = N,N-Dimethylformamid
- DMAP
- = 4-Dimethylaminopyridin
- HOBT
- = 1-Hydroxybenzotriazol
- TOSMIC
- = Tosylmethylisocyanid
- Cbz
- = Carbobenzyloxy
- TPAP
- = Tetrapropylammoniumperruthenat
- NMO
- = 4-Methylmorpholin-N-oxid
- TMEDA
- = N,N,N',N'-Tetramethylethylendiamin
- NMM
- = 4-Methylmorpholin
- MeOH
- = Methanol
- EtOH
- = Ethanol
- EtOAc
- = Ethylacetat
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CHEMIE
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Die
Syntheseverfahren und Anti-HIV-1-Aktivitäten von Indoloxoacetylpiperazin-Analoga
sind unten zusammengefasst. Verfahren zur Herstellung von Intermediaten
und Verbindungen der Formel (I) sind in den Schemata 1–41 dargestellt.
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Zu
beachten ist, dass die Reaktionen in vielen Fällen nur für eine Position eines Intermediats,
wie z. B. die R5-Position, dargestellt sind.
Es versteht sich, dass solche Reaktionen für andere Positionen der verschiedenen
Intermediate, wie R2–R4,
angewendet werden können.
Die in den konkreten Beispielen angegebenen Reaktionsbedingungen
und Verfahren sind weitgehend auf Verbindungen mit anderen Substitutionsmustern
und andere Umformungen dieser Anmeldung anwendbar. Die Schemata
1 und 2 stellen allgemeine Reaktionsschemata dar, um geeignet substituierte
Indole in Verbindungen der Formel (I) zu überführen. Auch wenn diese Schemata
sehr allgemein sind, umfassen die erfindungsgemäßen Verfahren auch andere Verfahrensvarianten
wie die Verwendung eines oder mehrerer Precursor(en) der Substituenten
R2 bis R5 entsprechend
dem Reaktionsschema und dessen(deren) anschließende Überführung in Verbindungen der Formel
(I) im letzten Schritt. Nicht einschränkende Beispiele solcher Strategien
finden sich in nachfolgenden Schemata.
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Die
Indol-Intermediate der Formel 4 (Schema 1) als Ausgangskomponenten
sind bekannt oder werden ohne Weiteres gemäß Literaturverfahren hergestellt,
wie sie in Gribble, G. (Ref. 24 und 99), Bartoli et al. (Ref. 36),
Referenz 37, oder in dem Buch von Richard A. Sundberg in Referenz
40 beschrieben sind. Weitere Verfahren zur Herstellung von Indol-Intermediaten
umfassen. Die Leimgruber-Batcho-Indol-Synthese (Referenz 93); die
Fisher-Indol-Synthese (Referenzen 94 und 95); das von Gassman entwickelte
2,3-Umlagerungsprotokoll (Referenz 96); die Annelierung von Pyrrolen
(Referenz 97); Zinn-vermittelte Zyklisierungen (Referenz 98); und
die Larock-Palladium-vermittelte Zyklisierung von 2-Alkinylanilinen.
Viele weitere Verfahren zur Indol-Synthese sind bekannt und ein
durchschnittlicher Fachmann in Chemie kann ohne Weiteres Bedingungen
zur Herstellung von Indolen ermitteln, die zur Herstellung von Verbindungen
der Formel I angewendet werden können.
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Intermediate
der Formel 3 werden durch Verknüpfung
einer Oxalylester-Einheit an der 3-Position des Intermediats der Formel
4 wie in Schritt a1 von Schema 1 beschrieben hergestellt. Diese
Umformung kann durch aufeinander folgende Behandlung des Intermediats
der Formel 4 in einem aprotischen Lösungsmittel mit einem Alkyl-Grignard-Reagens, gefolgt
von einem Zink-Halogen und dann einem Oxalsäuremonoester durchgeführt werden.
Typische verwendete Grignard-Reagenzien umfassen Methylmagnesiumbromid
und Ethylmagnesiumbromid. Das Zinkhalogen ist unter Zinkbromid und
Zinkchlorid ausgewählt.
Oxalsäureester
wie Methyloxalat oder Ethyloxalat werden eingesetzt; aprotische
Lösungsmittel
wie CH2Cl2, Et2O, Benzol, Toluol, DCE, oder dergleichen
können
allein oder in Kombination für
diese Abfolge eingesetzt werden. Eine bevorzugte Abfolge besteht
darin, das Intermediat 4 mit 1) Methylmagnesiumbromid, 2) Zinkbromid,
3) Methyloxalat zu behandeln, um das Intermediat 3 zu erhalten.
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Ein
alternatives Verfahren zur Ausführung
von Schritt 1a besteht in der Acylierung des Intermediats der Formel
4 mit Ethyloxalylchlorid in Gegenwart von Aluminumchlorid in einem
inerten Lösungsmittel
wie Dichlormethan, um das Intermediat der Formel 3 zu erhalten.
Weitere Alkylmonoester der Oxalsäure
sind ebenfalls für
jedes der oben genannten Verfahren denkbar. Wie in Referenz 104
aufgelistet, können
auch andere Lewissäuren
als Aluminumchlorid und andere Lösungsmittel
als Dichlormethan für
die Umwandlung in Schritt a1 verwendet werden.
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Die
Hydrolyse des Esterintermediats der Formel 3 zur Bildung der 3-Indoloxoessigsäure der
Formel 2 ist in Schritt a2 des Schemas 1 dargestellt. Üblicherweise
verwendet man methanolisches oder ethanolisches Natriumhydroxid
und säuert
dann mit wässriger
Salzsäure
variierender Molarität
an, wobei 1 M HCl bevorzugt ist. Lithiumhydroxid oder Kaliumhydroxid
kann ebenfalls verwendet werden; variierende Mengen Wasser können den
Alkoholen zugegeben werden. Propanole oder Butanole können auch
als Lösungsmittel
eingesetzt werden. Erhöhte
Temperaturen bis zu den Siedepunkten der Lösungsmittel können angewendet
werden, wenn die Raumtemperatur nicht ausreicht. Alternativ kann
die Hydrolyse in einem polaren Lösungsmittel
wie CH2Cl2 oder
THF in Gegnwart von Triton B durchgeführt werden. Temperaturen von –70 °C bis zum
Siedepunkt der Lösungsmittel
können
verwendet werden, wobei –10 °C bevorzugt
ist. Weitere Bedingungen der Esterhydrolyse sind in Referenz 58
aufgeführt;
sowohl diese Referenz als auch viele der Bedingungen der Esterhydrolyse sind
dem durchschnittlichen Fachmann in Chemie gut bekannt. Wie in Schema
2, Schritt a4, dargestellt, kann Oxalylchlorid verwendet werden,
um die Oxoacetylchloridgruppe an der Indol-3-Position des Intermediats
4 zu positionieren, um das Intermediat der Formel 5 zu erhalten. Üblicherweise
werden inerte Lösungsmittel
wie CH2Cl2 oder
DCE als Lösungsmittel
eingesetzt, THF und Diethylether sind jedoch auch einsetzbar. Schritt
a4 kann auch in Gegenwart eines Katalysators ausgeführt werden.
Besonders bevorzugt als Katalysator ist Aluminumchlorid. Zinntetrachlorid
oder Titan(IV)chlorid sind für
einige Anwendungen ebenfalls verwendbar. Das Chloridintermediat
der Formel 5 kann an ein Amin H-W-C(O)A in einem inerten Lösungsmittel
(z. B. CH2Cl2) in Gegenwart
eines tertiären
Amins (z. B. N,N-Diisopropylethylamin) oder Pyridin gekoppelt werden,
so dass Verbindungen der Formel I erhalten werden (Schritt a5).
Das Chlorid kann auch direkt mit einem Alkohol von geringem Molekulargewicht
wie MeOH umgesetzt werden, so dass ein Ester erhalten wird (Intermediat
der Formel 3, wie in Schema 1 gezeigt). Die gesamte in Schema 2
gezeigte Reaktionsabfolge, einschließlich der Reaktion mit Oxalylchlorid
und Kopplung an einen Alkohol oder H-W-C(O)A kann im Fall einiger
Indolintermediate der Formel 4 in einem Lösungsmittel wie Pyridin durchgeführt werden.
Die Amidkopplung mit Amin H-W-C(O)A ist in Schema 1, Schritt a3,
gezeigt. Die hier genannte Gruppe W ist
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Ein
bevorzugtes Verfahren zur Ausführung
dieser Reaktion besteht in der Verwendung des Peptid-Kopplungsreagenzes
3-(Diethoxyphosphoryloxy)-1,2,3-benzotriazin-4(3H)-on (DEPBT) und
eines Amins H-W-C(O)A in DMF als Lösungsmittel, das ein tertiäres Amin
wie N,N-Diisopropylethylamin enthält. Üblicherweise angewendete Bedingungen
der Amidbindungskopplung, z. B. EDC mit HOBT oder DMAP, werden auch in
einigen Beispielen verwendet. Übliche
Stöchiometrien
werden in den speziellen Beispielen angegeben, diese Verhältnisse
können
jedoch modifiziert werden.
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Die
in Schritt a3 bzw. Schritt a5 der Schemata 1 und 2 dargestellten
Reaktionen zur Knüpfung
der Amidbindung können
unter Verwendung der hier beschriebenen speziellen Bedingungen durchgeführt werden oder
alternativ durch Anwendung der Bedingungen oder Kopplungsreagenzien
zur Bildung von Amidbindungen, die für die Schritte a16–a18 dieser
Anmeldung beschrieben werden. Es werden einige spezielle nicht-einschränkende Beispiele
in dieser Anmeldung angegeben.
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Weitere
Verfahren zur Synthese, Modifizierung und Verknüpfung von Gruppen: (C=O)m-WC(O)-A
sind in der PCT WO 00/76521 enthalten.
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Schema
3 gibt ein allgemeines Beispiel dafür an, wie ein Bromid, wie Intermediat
6, den in den Schemata 1 und 2 gezeigten Abfolgen unterzogen werden
kann, um ein wesentliches Bromintermediat, 10, zu erhalten. Intermediat
7 wurde hergestellt aus 6 (Schritt a6) unter Verwendung der in Referenz
36c enthaltenen Indolsynthese von Bartoli et.al. Das Intermediat
7 kann durch weitere Verfahren und aus weiteren Ausgangsmaterialien
hergestellt werden, wobei die Indolsynthese von Bartoli et.al. sich
als ein brauchbares Verfahren herausgestellt hat. Die Einführung der
Oxalateinheit zur Bereitstellung des Intermediats 8 (Schema 3, Schritt a1)
wird, wie oben beschrieben, bevorzugt mit Ethyloxalylchlorid in
Gegenwart von Aluminumchlorid durchgeführt. Die Verwendung von Oxalylchlorid,
wie in Schema 2, Schritt a4, dargestellt, und nachfolgende Veresterung,
können
für diese
Umwandlung ebenfalls verwendet werden, wobei das bevorzugte Verfahren
dargestellt ist. Die Esterhydrolyse wie in Schritt a2 mit nachfolgender
Amidkopplung wie in Schritt a3 gibt ein Beispiel für ein wesentliches
Bromintermediat an. In diesem Fall ist eine Carbodiimid-vermittelte
Amidkopplung unter Verwendung von EDC das bevorzugte Verfahren zur
Ausführung
von Schritt a3. Die Schemata 4 und 5 geben speziellere Beispiele
von Schema 3 an und werden zur Veranschaulichung angegeben.
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Schema
4 zeigt die Herstellung eines Indolintermediats 7a, Acylierung von
7a mit Ethyloxalylchlorid, um das Intermediat 8a zu erhalten, nachfolgende
Esterhydrolyse zur Bereitstellung des Intermediats 9a, und Amidbildung
zur Bereitstellung des Intermediats 10a.
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Alternativ
kann die Acylierung eines Indolintermediats wie 7a' auch direkt mit
Oxalylchlorid und nachfolgender Base-vermittelter Piperazinkopplung
durchgeführt
werden, so dass ein Intermediat der Formel 10a', wie in Schema 5 gezeigt, erhalten
wird.
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Schema
6 zeigt die Herstellung eines wesentlichen Aldehydintermediats,
14, unter Verwendung eines aus Referenz 90 übernommenen Verfahrens, wobei
es sich um die Verfaren von Gilmore et. al. handelt. Der Aldehydsubstituent
ist der Klarheit wegen nur in der R5-Position
gezeigt, was nicht als eine Limitierung des Verfahrens aufzufassen
ist, da die Aldehydfunktionalität
an jeder der Positionen R1–R5 eingeführt
werden kann. In Schema 6, Schritt a7, wird ein Bromidintermediat
7 durch Metall-Halogen-Austausch und anschließende Reaktion mit Dimethylformamid
in einem geeigneten aprotischen Lösungsmittel in ein Aldehydintermediat
11 umgewandelt. Üblicherweise
verwendete Basen umfassen, ohne darauf beschränkt zu sein, Alkyllithiumbasen wie
n-Butyllithium, sec-Butyllithium oder tert-Butyllithium oder ein Metall wie Lithium.
Ein bevorzugtes aprotisches Lösungsmittel
ist THF. Die Transmetallierung mit n-Butyllithium wird typischerweise
bei –78 °C initiiert. Während der
Reaktion ist eine Erwärmung
zulässig,
die für
eine vollständige
Transmetallierung erforderlich sein kann, abhängig von der Reaktivität des Bromidintermediats
7. Die Reaktionsmischung wird dann auf –78 °C gekühlt, eine Umsetzung mit N,N-Dimethylformamid
kann erfolgen (eine Erwärmung
der Reaktionsmischung kann erforderlich sein, um eine vollständige Reaktion
zu ermöglichen),
so dass das Intermediat 11 erhalten wird. Das Intermediat 11 wurde
dann entsprechend den in Schema 1 beschriebenen Verfahren weiter zu
den Intermediaten 12, 13 und 14 aufgearbeitet, wie in Schema 6 gezeigt
(Schritte a1, a2, a3). Bevorzugt wurde bei dem Amidkopplungsschritt
3-(Diethoxyphosphoryloxy)-1,2,3-benzotriazin-4(3H)-on
(DEPBT) eingesetzt.
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Weitere
Verfahren zur Einführung
einer Aldehydgruppe zur Bildung von Intermediaten der Formel 11 umfassen Übergangsmetall-katalysierte
Carbonylierungsreaktionen geeigneter Brom-, Trifluormethansulfonat(yl)-,
oder Stannan(yl)-Indole. Alternativ können die Aldehyde durch Umsetzung
von Indolylanionen oder Indolyl-Grignard-Reagenzien mit Formaldehyd
und anschließender
Oxidation mit MnO2 oder TPAP/NMO oder anderen
geeigneten Oxidantien eingeführt
werden, um das Intermediat 11 zu erhalten.
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Die
Referenzen 38 und 39 stellen Verfahren zur Herstellung von Indolen
mit Substituenten in der 7-Position (d. h. Position, mit der R5 verknüpft
ist) zur Verfügung.
Diese Referenzen beschreiben Verfahren zur Funktionalisierung der
C-7-Position von Indolen, entweder durch 1) Schützen des Indol-Stickstoffs
mit einer 2,2-Diethylpropanoylgruppe und anschließender Deprotonierung
der 7-Position mit sec/BuLi in TMEDA, so dass man ein Anion erhält. Dieses
Anion kann mit DMF, Formaldehyd oder Kohlendioxid gequencht werden, so
dass man den Aldehyd, Benzylalkohol bzw. die Carbonsäure erhält. Ähnliche
Umformungen können
durch Überführen von
Indolen in Indoline, Umsetzung mit Lithium an C-7 und anschließender Reoxidation
zum Indol erreicht werden. Die Oxidationsstufe jedes dieser Produkte
kann durch im Fachgebiet allgemein bekannte Verfahren eingestellt
werden, da die Interkonversion von Alkohol-, Aldehyd- und Säuregruppen
gut untersucht worden ist. Es versteht sich ebenfalls, dass eine
geschützte
Alkohol-, Aldehyd- oder Säuregruppe
in der Indol-Ausgangskomponente vorhanden sein kann und in einer
geschützten
Form durch die Syntheseschritte bis zu einer Verbindung der Formel
I mitgeführt
werden kann, bis sie in den gewünschten
Substituenten in der R1- bis R5-Position überführt werden
kann. Beispielsweise kann eine Hydroxymethylgruppe als Benzylether
oder Silylether oder andere Alkoholschutzgruppe geschützt werden;
ein Aldehyd kann als Acetal mitgeführt werden, und eine Säure kann
als ein Ester oder Orthoester geschützt werden, bis die Entschützung gewünscht und gemäß Literaturverfahren
ausgeführt
wird.
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Schema
7 beschreibt ein spezielleres Beispiel des Verfahrens von Gilmore
zur Herstellung eines wichtigen Aldehyd-Intermediats 14a. Das Brom-Indol-Intermediat
7a wird mit n-Butyllithium
und dann N,N-Dimethylformamid in THF bei –78 °C behandelt, um das Aldehyd-Intermediat 11a zu
erhalten. Das Intermediat 11a wird dann mit Ethyloxalylchlorid acyliert,
um das Intermediat 12a zu erhalten, welches hydrolysiert wird, um das
Intermediat 13a zu erhalten. Das Intermediat 13a wird wie gezeigt
einer Amidbildung unterzogen, um das Intermediat 14a zu erhalten.
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Schema
8 stellt ein allgemeines Verfahren zur Modifikation des Substituenten
A dar. Die Kopplung von H-W-C(O)OtBu unter Verwendung der zuvor
für W in
Schema 1 beschriebenen Bedingungen führt zum Boc-geschützten Intermediat
15. Das Intermediat 15 wird dann durch Behandlung mit einer Säure wie
TFA, Chlorwasserstoffsäure
oder Ameisensäure
unter Verwendung von Standardlösungsmitteln
wie CH2Cl2 oder
Dioxan und Temperaturen zwischen –78 °C und 100 °C entschützt. Weitere Säuren wie
wässrige
Salzsäure
oder Perchlorsäure
können
ebenso zum Entschützen
verwendet werden. Alternativ können
weitere Stickstoffschutzgruppen für W verwendet werden, wie Cbz
oder TROC, diese können
mittels Hydrierung bzw. Behandlung mit Zink entfernt werden.
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Eine
stabile Silyl-Schutzgruppe wie Phenyldimethylsilyl kann auch als
Stickstoffschutzgruppe für
W verwendet werden; sie kann mit Fluoridquellen wie Tetrabutylammoniumfluorid
entfernt werden. Die Gruppe A(C=O)- wird dann unter Verwendung der
entsprechenden Carbonsäure,
A(C=O)OH, des Säurechlorids, A(C=O)Cl,
oder anderer akivierter Säurederivate
verknüpft.
Kopplungsverfahren wie beschrieben zur Verknüpfung des Piperazins mit der
Oxalsäure
(oben), zur Bildung der monosubstituierten Piperazine (unten), oder
zur Bildung von Amiden bei R1–R5 (unten), können angewendet werden.
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Schema
9 beschreibt ein Verfahren zur Herstellung von Indol-Intermediaten,
die eine Carbonsäuregruppe
tragen, wie das Intermediat 20. Wie im Schema 9, Schritt a10, gezeigt,
besteht ein Verfahren zur Bildung des Nitril-Intermediats 16 im
Ersatz des Bromids in der C-7-Position
(der R5-Position) des betreffenden Indol-Intermediats
7 durch Cyanid. Das verwendete Cyanid-Reagens kann Natriumcyanid
oder bevorzugter Kupfer- oder Zinkcyanid sein. Die Reaktionen können in
einer Reihe von im Fachgebiet bekannten Lösungsmitteln durchgeführt werden.
Zum Beispiel wird DMF im Fall von Kupfercyanid verwendet. Die Umwandlung des
Cyano-Intermediats 16 in das Carbonsäure-Intermediat 17 ist in Schritt
a11 dargestellt. Viele Verfahren zur Umwandlung von Nitrilen zu
Säuren
sind im Fachgebiet bekannt und können
angewendet werden. Geeignete Bedingungen zur Umwandlung des Intermediats
16 zum Intermediat 17 umfassen Kaliumhydroxid, Wasser und einen
wässrigen
Alkohol wie Ethanol. Üblicherweise
muss man die Reaktion unter Rückflusstemperaturen eine
bis 100 h erhitzen. Das Säure-Intermediat
17 kann dann verestert werden, um das Intermediat 18 zu erhalten.
Das Intermediat 16 kann auch direkt durch Behandlung einer Lösung des
Intermediats 16 in einem mit Wasserstoffchlorid gesättigten
Alkohol (üblicherweise
Methanol) in das Intermediat 18 überführt werden. Üblicherweise
sind für
die Umwandlung Rückflusstemperaturen
erforderlich. Das Intermediat 18 kann dann in das Intermediat 19
entsprechend dem in Schema 2 beschriebenen Verfahren umgewandelt
werden. Das Intermediat 19 kann dann hydrolysiert werden, um das
Intermediat 20 zu erhalten.
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Wie
in Schema 10, Schritt a13, gezeigt, wird ein weiterer Herstellungsweg
der Indoloxoacetylpiperazin-7-Carbonsäuren 20 mittels Oxidation des
entsprechenden 7-Carboxaldehyds
14 durchgeführt.
Die Herstellung des Aldehyd-Intermediats 14 wurde zuvor in dieser
Anmeldung beschrieben. Zahlreiche Oxidantien sind für die Umwandlung
von Aldehyd zu Säure
geeignet und viele von diesen sind in Standardbüchern der organischen Chemie
beschrieben, wie: Larock, Richard C., Comprehensive organic transformations:
a guide to functional gruppe preparations, 2. Aufl., New York, Wiley-VCH,
1999. Ein bevorzugtes Verfahren ist die Verwendung von Silbernitrat
oder Silberoxid in einem Lösungsmittel
wie wässriges
oder wasserfreies MeOH bei einer Temperatur von –25 °C oder bei Rückflusstemperatur. Die Reaktion
wird üblicherweise
eine bis 48 h ausgeführt;
sie wird üblicherweise
durch TLC oder LC/MS verfolgt, bis eine vollständige Umwandlung von Ausgangsmaterial
zu Produkt erfolgt ist. Alternativ kann KMnO4 oder
CrO3/H2SO4 verwendet werden (siehe Ref. 91).
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Schema
11 gibt ein spezielles Beispiel der Oxidation eines Aldehyd-Intermediats
14a an, um das Carbonsäure-Intermediat
20a zu erhalten.
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Alternativ
kann das Intermediat 20 durch das in einer alternativen Reihenfolge
ausgeführte
Nitril-Syntheseverfahren hergestellt werden, wie in Schema 12 dargestellt.
Der Nitril-Hydrolyseschritt
kann hinausgezögert
werden und das Nitril durch die Synthese mitgeführt werden, wobei ein Nitril
22 erhalten wird, welches hydrolysiert werden kann, um die freie
Säure 20
wie oben zu erhalten. Wie für
die Überführung des
Intermediats 16 in das Intermediat 18 beschrieben, kann das Nitril
22 unter ähnlichen
Bedingungen auch in einen Ester der Säure 20 überführt werden.
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Es
ist im Fachgebiet bekannt, dass Heterozyklen aus einem Aldehyd,
einer Carbonsäure,
einem Carbonsäureester,
Carbonsäureamid,
Carbonsäurehalogenid
oder einer Cyano-Einheit
hergestellt werden können,
oder mit einem weiteren Kohlenstoffatom, das durch ein Bromid oder
eine andere Abgangsgruppe wie Triflat, Mesylat, Chlorid, Iodid oder
Phosponat substituiert ist, verknüpft werden können. Die
Verfahren zur Herstellung solcher Intermediate aus typischen Intermediaten
wie dem Carbonsäure-Intermediat
20, dem Brom-Intermediat 10 oder dem Aldehyd-Intermediat 14, wie
oben beschrieben, sind dem Fachmann in Chemie bekannt. Die Verfahren
oder Arten von Heterozyklen, die aufgebaut werden können, sind
in der chemischen Literatur beschrieben. Einige repräsentative
Referenzen zum Auffinden solcher Heterozyklen und deren Herstellung
sind umfassend in den Referenzen 77 bis 89 beschrieben, was jedoch
in keiner Weise als limitierend auszulegen ist. Aus diesen Referenzen
geht aber hervor, dass viele ergiebige Verfahren verfügbar sind,
um verschieden substituierte Heterozyklen zu synthetisieren; es
ist für
den Fachmann selbstverständlich,
dass diese zur Herstellung von Verbindungen der Formel I verwendet
werden können.
Fachleute auf dem Gebiet der Chemie können nun leicht, schnell und
routinemäßig zahlreiche
Umsetzungen zur Herstellung von Heterozyklen, Amiden, Oximen oder
anderen Substituenten aus den oben genannten Ausgangsmaterialien
auffinden, indem sie nach Reaktionen oder Zusammensetzungen unter
Verwendung einer herkömmlichen
elektronischen Datenbank wie Scifinder (American Chemical Society),
Crossfire (Beilstein), Theilheimer oder Reaccs (MDS) suchen. Die
durch eine solche Suche identifizierten Reaktionsbedingungen können dann
unter Verwendung der in dieser Anmeldung beschriebenen Substrate
benutzt werden, um alle durch diese Erfindung beschriebenen und
erfassten Verbindungen herzustellen. Im Fall von Amiden können kommerziell
verfügbare Amine
in der Synthese verwendet werden. Alternativ können die oben genannten Suchprogramme
verwendet werden, um Literaturherstellverfahren bekannter Amine
oder Verfahren zur Synthese neuer Amine aufzufinden. Diese Verfahren
werden dann in der im Fachgebiet bekannten üblichen Weise ausgeführt, um
die Verbindungen der Formel I zur Verwendung als antivirale Mittel
herzustellen.
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Wie
unten in Schema 13, Schritt a13, gezeigt, können geeignet substituierte
Indole, wie das Bromindol-Intermediat 10, Metall-vermittelte Kopplungen
mit Arylgruppen, Heterozyklen oder Vinylstannanen eingehen, so dass
Verbindungen der Formel I, in denen R5 zum
Beispiel Aryl, Heteroaryl oder heteroalizyklisch ist, erhalten werden.
Die Bromindol-Intermediate 10 (oder Indol-Triflate oder -Iodide)
können
Kopplungen mit Heteroarylstannanen vom Stille-Typ, wie in Schema 13, Schritt a14,
gezeigt, eingehen. Bedingungen für
diese Reaktion sind im Fachgebiet bekannt; die Referenzen 72–74 sowie
Referenz 91 beschreiben zahlreiche Bedingungen zusätzlich zu
den speziellen in Schema 14 und in den speziellen Ausführungsformen
gezeigten Beispielen. Es ist ohne Weiteres ersichtlich, dass ein
Indolstannan auch mit einem heterozyklischen Halogenid oder Arylhalogenid
oder -triflat koppeln kann, um Verbindungen der Formel I herzustellen.
Eine Suzuki-Kopplung (Referenz 71) zwischen dem Brom-Intermediat
10 und einem geeigneten Boronat kann auch angewendet werden; einige
spezielle Beispiele sind in dieser Anmeldung enthalten. Weitere
Suzuki-Bedingungen, -partner und Abgangsgruppen sind einsetzbar.
Suzuki-Kopplungen zwischen Chlor-Intermediaten sind ebenfalls anwendbar.
Falls Standardbedingungen versagen, können neue spezielle Katalysatoren
und Bedingungen verwendet werden. Verfahren, welche Katalysatoren
beschreiben, die zur Kopplung von Boronaten mit Aryl- und Heteroarylchloriden
brauchbar sind, sind im Fachgebiet (Referenz 100 a–g) bekannt.
Das Boronat kann auch am Indol gebildet und dann Suzuki-Kopplungsbedingungen
unterworfen werden.
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Wie
in Schema 15, Schritt a15, gezeigt, können Aldehyd-Intermediate 14
verwendet werden, um zahlreiche Verbindungen der Formel I zu generieren.
Die Aldehydgruppe kann ein Precursor für jeden der Substituenten R1 bis R5 sein, der
Einfachheit halber ist unten die Umformung für R5 dargestellt.
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Das
Aldehyd-Intermediat 14 kann umgesetzt werden, so dass es in einen
Ring eingebaut wird, wie in den Ansprüchen beschrieben, oder in eine
nichtzyklische Gruppe umgewandelt werden. Der Aldehyd 14 kann mit
einem Tosmic-basierten Reagens umgesetzt werden, um Oxazole zu generieren
(z. B. Referenzen 42 und 43). Der Aldehyd 14 kann mit einem Tosmic-Reagens
und dann mit einem Amin umgesetzt werden, so dass Imidazole wie
in Referenz 55 erhalten werden; oder das Aldehyd-Intermediat 14
kann mit Hydroxylamin umgesetzt werden, so dass ein Oxim erhalten
wird, welches eine Verbindung der Formel I wie unten beschrieben ist.
Beispiele der Imidazol-Synthese sind im experimentellen Teil enthalten.
Oxidation der Oxime mit NBS, t-Butylhypochlorit oder anderen bekannten
Reagenzien ergibt das N-Oxid, welches mit Alkinen oder 3-Alkoxyvinylestern
reagiert, so dass Isoxazole mit variierender Substitution erhalten
werden. Die Umsetzung des Aldehyd-Intermediats 14 mit dem bekannten unten
gezeigten Reagens 23 (Referenz 70) unter basischen Bedingungen ergibt
4-Aminotrityloxazole.
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Die
Entfernung der Tritylgruppe unter standardisierten sauren Bedingungen
(TFA, Anisol zum Beispiel) ergibt 4-Aminooxazole, die substituiert
werden können
durch Acylierung, reduktive Alkylierung oder Alkylierungsreaktionen
oder Heterozyklus-bildende Umsetzungen. Das Trityl kann gegebenenfalls
durch eine alternative Schutzgruppe wie Monomethoxy, Trityl, Cbz,
Benzyl oder eine geeignete Silylgruppe ersetzt werden. Referenz
76 zeigt die Herstellung von Oxazolen, enthaltend eine Triflouormethyl-Einheit,
auf; die darin beschriebenen Bedingungen zeigen die Synthese von
Oxazolen mit fluorierten Methylgruppen, welche mit diesen zusammenhängen, auf.
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Der
Aldehyd kann auch mit einem Metall oder Grignard (Alkyl, Aryl oder
Heteroaryl) umgesetzt werden, um sekundäre Alkohole zu erzeugen. Diese
sind effektiv oder können
zum Beispiel mit TPAP oder MnO2 oder PCC
zum Keton oxidiert werden, so dass Ketone der Formel I erhalten
werden, die zur Behandlung eingesetzt werden können oder mit Metallreagenzien
umgesetzt werden können,
so dass tertiäre
Alkohole erhalten werden; oder alternativ können sie durch Umsetzung mit
Hydroxylaminhydrochloriden in ethanolischer Lösung zu Oximen umgewandelt
werden. Alternativ kann der Aldehyd mittels reduktiver Aminierung
zu Benzylaminen umgesetzt werden. Ein Beispiel zur Oxazolbildung über ein
Tosmic-Reagens ist unten in Schema 16 gezeigt.
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Wie
aus Schema 17 in Schritt a16 ersichtlich, kann ein Cyano-Intermediat
wie 22 direkt zu Verbindungen der Formel I mittels Bildung eines
Heterozyklus oder Umsetzung mit einem organometallischen Reagenz umgewandelt
werden.
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Schema
18 zeigt die Acylierung eines Cyanoindol-Intermediats der Formel
16 mit Oxalylchlorid, so dass das Säurechlorid 21 erhalten wird,
welches mit dem geeigneten Benzoylpiperazin oder Pyridinylcarbonylpiperazin-Derivat
in Gegenwart einer Base umgesetzt wurde, so dass 25 erhalten wurde.
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Das
Nitril-Intermediat 25 wurde in das Tetrazol der Formel 26 überführt, welches
mit Trimethylsilyldiazomethan alkyliert wurde, so dass die Verbindung
der Formel 27 erhalten wurde (Schema 19).
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Die
Tetrazol-Alkylierung mit Alkylhalogeniden (R-X, Schema 20) erforderte
Alkylierung vor der Indol-Acylierung, wie gezeigt in Schema 20,
aber eine Indol-Acylierung vor der Alkylierung ist unter bestimmten anderen
Umständen
brauchbar. Das Intermediat 16 wurde in das Tetrazol 28 überführt, welches
alkyliert wurde, um 29 zu erhalten. Das Intermediat 29 wurde dann
acyliert und hydrolysiert, um 30 zu erhalten, das einer Amidbildung
unterworfen wurde, um 31 zu erhalten. Die mit dem Tetrazol zusammen
hängende
Gruppe kann sowohl hinsichtlich Größe als auch Struktur ziemlich
verschieden sein; es wurde gefunden, dass diese Substitution die
Eigenschaften von Verbindungen der Formel 6 moduliert.
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Schema
21, Gleichung 1, zeigt Theoxadiazolon 34a, hergestellt duch Zugabe
von Hydroxylamin zum Nitril 32 und anschließenden Ringschluss des Intermediats
33 mit Phosgen. Alkylierung des Oxadiazolons 34a mit Trimethylsilyldiazomethan
ergab die Verbindung der Formel 35a.
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Die
Zyklisierung des Intermediats 33 mit Orthoformiat (z. B. Trimethylorthoformiat
oder Triethylorthoformiat) ergibt ein Oxadiazol. Ein Beispiel solcher
Chemie ist in Beispiel 79 des experimentellen Teils angegeben. Zyklisierung
des Intermediats 33 zu 5-substituierten Oxadiazolen der Formel 34b
kann unter Verwendung von Säurechloriden
oder Anhydriden ausgeführt
werden (Gleichung 2). Diese Zyklisierungsreaktionen erfordern die
Anwendung erhöhter
Temperatur, mit oder ohne einer zugegebenen Base (tertiäre Alkylamine,
z. B. N,N-Diisopropylethylamin oder Pyridin). Wenn R = CCl3 in Formel 34b, kann das Trichlormethyloxadiazol-Intermediat
eine nukleophile Substitution (Referenz 109) in einem polaren Lösungsmittel
(z. B. DMF) eingehen. Primäre
und sekundäre
Amin-Nukleophile (R' und
R'' können für Wasserstoff,
C1-6-Alkyl, C3-7-Cycloalkyl
etc. stehen) sind für
diese Umsetzungen bevorzugt, um Aminooxadiazol der Formel 35b zu
erhalten (Gleichung 3).
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Das
7-Cyanoindol 32 kann auch effizient in den Imidatester unter herkömmlichen
Pinner-Bedingungen unter
Verwendung von 1,4-Dioxan als Lösungsmittel überführt werden.
-
Der
Imidatester kann mit Stickstoff-, Sauerstoff- und Schwefel-Nukleophilen
umgesetzt werden, um C7-substituierte Indole zu erhalten, zum Beispiel:
Imidazoline, Benzimidazole, Azabenzimidazole, Oxazoline, Oxadiazole,
Thiazoline, Triazole, Pyrimidine und Amidine etc. (Referenz 101).
Beispiele solcher zur Herstellung von Triazolen verwendeter Chemie
ist in Beispiel 78, Beispiel 111 und Beispielen 127 bis 131 des
experimentellen Teils angegeben. Schema 22 zeigt die Zuagbe entweder
von Hydroxylamin oder Hydroxylaminessigsäure zum Aldehyd-Intermediat
36, wobei Oxime der Formel 37 erhalten wurden.
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Eine
Säure kann
ein Precursor für
die Substituenten R1 bis R5 sein,
wenn sie die entsprechende Position einnimmt, wie R5 gezeigt
in Schema 23.
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Ein
Säure-Intermediat
wie 20 kann als ein ergiebiger Precursor verwendet werden, um zahlreiche
substituierte Verbindungen zu erhalten. Die Säure kann in Hydrazonylbromid
und dann in ein Pyrazol überführt werden,
gemäß Referenz
53. Verfahren zur Pyrazolsynthese sind im experimentellen Teil enthalten.
Ein Verfahren zur allgemeinen Heterozyklus-Synthese besteht darin, die Säure mittels
Umwandlung in das Säurechlorid
unter Verwendung von Standardverfahren, Umsetzung mit Diazomethan
und schließlich
Reaktion mit HBr in ein alpha-Bromketon zu überführen (Ref. 75). Das alpha-Bromketon
kann zur Herstellung vieler verschieder Verbindungen der Formel
I verwendet werden, da es in viele Heterozyklen oder andere Verbindungen
der Formel I überführt werden
kann. Alpha-Aminoketone
können
durch Entfernung des Bromids mit Aminen hergestellt werden. Alternativ
kann das alpha-Bromketon zur Herstellung von Heterozyklen verwendet
werden, die nicht direkt aus dem Aldehyd oder der Säure erhältlich sind.
Zum Beispiel erhält
man unter Anwendung der Bedingungen von Hulton in Referenz 41 zur
Umsetzung mit dem alpha-Bromketon Oxazole. Reaktion des alpha-Bromketons
mit Harnstoff mittels des Verfahrens von Referenz 44 ergibt 2-Aminooxazole.
Das alpha-Bromketon kann auch verwendet werden, um Furane unter
Verwendung von beta-Ketoestern (Ref. 45–47) oder anderer Verfahren,
Pyrrole (von beta-Dicarbonylen wie in Ref. 48 oder durch Hantsch-Verfahren (Ref. 49)),
Thiazole, Isoxazole und Imidazole (Ref. 56), zum Beispiel unter
Verwendung von Literaturverfahren, zu erhalten. Die Kopplung des
vorgenannten Säurechlorids
mit N-Methyl-O-methylhydroxylamin ergibt ein "Weinrebamid", welches zur Umsetzung mit Alkyllithium
oder Grignard-Reagens verwendet werden kann, um Ketone zu erzeugen.
Umsetzung des Weinrebamids mit einem Dianion eines Hydroxylamins
erzeugt Isoxazole (Ref. 51). Umsetzung mit einem acetylenischen
Lithium oder anderen Carbanion erzeugt Alkinylindolketone. Reaktion
dieses Alkinyl-Intermediats mit Diazomethan oder anderen Diazo-Verbindungen
ergibt Pyrazole (Ref. 54). Umsetzung mit einem Azid oder Hydroxylamin
führt nach
Eliminierung von Wasser zu Heterozyklen. Nitriloxide reagieren mit
dem Alkinylketon, so dass Isoxazole erhalten werden (Ref. 52). Reaktion
der ursprünglichen
Säure zur
Bereitstellung eines Säurechlorids
unter Verwendung von zum Beispiel Oxalylchlorid oder Thionylchlorid
oder Triphenylphosphin/Kohlenstofftetrachlorid ergibt ein brauchbares
Intermediat wie oben gezeigt. Die Umsetzung des Säurechlorids
mit einem alpha-Ester substituierten Isocyanid und Base ergibt 2-substituierte
Oxazole (Ref. 50). Diese können
in Amine, Alkohole oder Halogenide unter Standard-Reduktionen oder
Umlagerungen vom Hoffman/Curtius-Typ überführt werden.
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Die
Schritte a17, a18, und a19 umfassen Umsetzungen und Bedingungen
für die
Bildung von 1, 2 und 3 Amidbindungen, wie gezeigt in Schema 23 und
24, welche Verbindungen wie diejenigen der Formel 38 ergeben.
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Die
Reaktionsbedingungen für
die Bildung einer Amidbindung umfassen jedes Reagens, das ein reaktives
Intermediat zur Aktivierung der Carbonsäure zur Amidbildung ergibt,
zum Beispiel (ohne daruf beschränkt
zu sein) Acylhalogenid, aus Carbodiimid, Acyliminiumsalz, symmetrische
Anhydride, gemischte Anhydride (einschließlich phosphonischer/phosphinischer
gemischter Anhydride), aktive Ester (einschließlich Silylester, Methylester
und Thioester), Acylcarbonat, Acylazid, Acylsulfonat und Acyloxy-N-phosphoniumsalz. Die
Reaktion der Indol-Carbonsäuren
mit Aminen zur Bildung von Amiden kann durch im Fachgebiet beschriebene
Standardbedingungen zur Amidbindungsbildung erfolgen. Einige Beispiele
zur Amidbindungsbildung sind in den Referenzen 59–69 und
91 und 92 aufgelistet, diese Liste ist jedoch nicht limitierend.
Einige für
die Carbonsäure-zu-Amin-Kopplung einsetzbare
Reagenzien sind EDC, Diisopropylcarbodiimid oder weitere Carbodiimide,
PyBop (Benzotriazolyloxytris(dimethylamino)phosphoniumhexafluorphosphat),
2-(1H-Benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetramethyluroniumhexafluorphosphat
(HBTU). Einige Referenzen zur Amidbindungsbildung sind in den Referenzen
59–69
angegeben. Ein besonders brauchbares Verfahren für Indol-7-Carbonsäure-zu-Amid-Umsetzungen
besteht in der Verwendung von Carbonylimidazol als Kopplungsreagens,
wie in Referenz 92 beschrieben. Die Temperatur dieser Reaktion kann
geringer sein als in der angegebenen Referenz, von 80 °C (oder gegebenenfalls
weniger) bis 150 °C
oder mehr. Eine speziellere Anwendung ist in Schema 25 dargestellt.
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Die
folgenden vier allgemeinen Verfahren bieten eine ausführlichere
Beschreibung zur Herstellung von Indolcarbamiden; diese Verfahren
wurden zur Synthese von Verbindungen der Formel (I) angewendet.
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Verfahren 1:
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Zu
einer Mischung eines Säure-Intermediats
wie 20 (1 Äquiv.,
0,48 mmol), eines geeigneten Amins (4 Äquiv.) und DMAP (58 mg, 0,47
mmol) gelöst
in CH2Cl2 (1 mL)
wurde EDC (90 mg, 0,47 mmol) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde bei RT 12 h geschüttelt
und danach unter Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde in MeOH gelöst und einer
Reinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen.
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Verfahren 2:
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Zu
einer Mischung eines geeigneten Amins (4 Äquiv.) und HOBT (16 mg, 0,12
mmol) in THF (0,5 mL) wurde ein Säure-Intermediat wie 20 (25
mg, 0,06 mmol), NMM (50 μl,
0,45 mmol) und dann EDC (23 mg, 0,12 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde bei RT 12 h geschüttelt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden unter Vakuum abgedampft; der Rückstand
wurde in MeOH gelöst
und einer Reinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen.
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Verfahren 3:
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Zu
einer Mischung eines Säure-Intermediats
wie 20 (0,047 mmol), Amins (4 Äquiv.)
und DEPBT (hergestellt entsprechend Li, H.; Jiang, X. Ye, Y.; Fan,
C.; Todd, R.; Goodman, M., Organic Letters 1999, 1, 91; 21 mg, 0,071
mmol) in DMF (0,5 mL) wurde TEA (0.03 mL, 0,22 mmol) gegeben. Die
resultierende Mischung wurde bei RT 12 h geschüttelt; danach mit MeOH (2mL)
verdünnt
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt.
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Verfahren 4:
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Eine
Mischung aus einem Säure-Intermediat
wie 20 (0,047 mmol) und 8,5 mg (0,052 mmol) 1,1-Carbonyldiimidazol
in wasserfreiem THF (2 mL) wurde unter Stickstoff zum Rückfluss
erhitzt. Nach 2,5 h wurden 0,052 mmol Amin zugegeben, das Erhitzen
wurde fortgesetzt. Nach einem weiteren Zeitraum von 3–20 h am Rückfluss
wurde die Reaktionsmischung abgekühlt und unter Vakuum aufkonzentriert.
Der Rückstand
wurde mittels Chromatographie über
Silicagel gereinigt, wobei Verbindungen der Formel I oder Precursor
solcher Verbindungen erhalten wurden.
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Außerdem kann
die Carbonsäure
unter Verwendung von Reagenzien wie Thionylchlorid (rein oder in einem
inerten Lösungsmittel)
oder Oxalylchlorid in einem Lösungsmittel
wie Benzol, Toluol, THF, oder CH2Cl2 in ein Säurechlorid überführt werden. Die Amide können alternativ
durch Umsetzung des Säurechlorids
mit einem Überschuss
an Ammoniak, primärem
oder sekundärem
Amin in einem inerten Lösungsmittel
wie Benzol, Toluol, THF, oder CH2Cl2 oder mit stöchiometrischen Mengen von Aminen
in Gegenwart eines tertiären
Amins wie Triethylamin oder einer Base wie Pyridin oder 2,6-Lutidin
gebildet werden. Alternativ kann das Säurechlorid unter basischen
Bedingungen (in der Regel Natrium- oder Kaliumhydroxid) in Lösungsmittelgemischen,
enthaltend Wasser und gegebenenfalls ein mischbares Co-Lösungsmittel
wie Dioxan oder THF, mit einem Amin umgesetzt werden. Schema 25B
stellt eine typische Herstellung eines Säurechlorids und Derivatisierung
zu einem Amid der Formel I dar. Des Weiteren kann die Carbonsäure in einen
Ester, vorzugsweise einen Methyl- oder Ethylester, überführt und
dann mit einem Amin umgesetzt werden. Der Ester kann durch Umsetzung
mit Diazomethan oder alternativ Trimethylsilyldiazomethan unter
Standardbedingungen, die im Fachgebiet bekannt sind, gebildet werden.
Referenzen und Verfahren zur Anwendung dieser oder weiterer Esterbildender Umsetzungen
finden sich in Referenzen 58 und 91.
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Schema
25A stellt die Amidbildung entweder aus Sulfonamid-Derivaten oder
aus Aminen dar. Die Umformung wurde wie folgt ausgeführt: Zu
einer Suspension der oben gezeigten Säure (Referenz 102, 30 mg, 0,074
mmol) und Sulfonamid (wie Methylsulfonamid oder Phenylsulfonamid)
oder Amin (wie 3-Aminotetrazol) (0,296 mmol) in CH2Cl2 (1 mL) wurden DMAP (36 mg, 0,295 mmol)
und EDC (56 mg, 0,293 mmol) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde bei RT 16 h gerührt
und dann unter Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde in MeOH gelöst und einer
präparativen
Phasenumkehr-HPLC-Aufreinigung unterzogen.
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Das
allgemeine Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Formel
I, wie in Schema 25B dargestellt, läuft wie folgt ab:
Das
unaufbereitete Säurechlorid
wurde erhalten, indem man eine Mischung aus der abgebildeten Säure (Referenz
102) und überschüssigem SOCl2 (1,0 mL je 0,03 mmol Säure) in Benzol (15 mL) 3 h
am Rückfluss
hielt und anschließend
die flüchtigen
Bestandteile abdampfte. Eine Mischung des Säurechlorids (30,0 mg, 0,07 mol)
und überschüssigen Amins
(0,14 bis 0,22 mmol, zum Beispiel 1,0 mL einer 2 M Lösung von
Methylamin in MeOH) in CH3CN (7,0 mL) wurde
10 min bei RT gerührt.
Nach Zugabe eines Überschusses
Pyridin (1,0 mL, 12 mmol) wurde die Mischung über Nacht gerührt und
dann unter Vakuum abgedampft, wobei ein Rückstand erhalten wurde. Der
Rückstand
wurde in MeOH gelöst
und einer Aufreinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen.
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Die
obige Umsetzung kann auch ohne Lösungsmittel
durchgeführt
werden. Zum Beispiel wurde eine Mischung des Säurechlorids (ca. 0,03 mmol)
in reinem Ethylamin (0,5 mL, 7,6 mmol) 2 h bei RT gerührt. Überschüssiges Amin
wurde dann mittels Verdampfung unter Vakuum entfernt, wobei ein
Rückstand
erhalten wurde, der in MeOH gelöst
und einer Aufreinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen wurde.
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Schema
25C unten stellt ein Beispiel dar, wie ein einfaches Methylamid
hergestellt werden kann.
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Schema
25D zeigt ein Verfahren zur Verwendung der Säure der Formel 39 zur Herstellung
von Oxadiazolen der Formel 41 (Isomere der Formel 34b). Die Säure 39 wird
unter Verwendung von EDC als Aktivierungsmittel in einem inerten
Lösungsmittel
(z. B. CH2Cl2) an
Hydroxyamidin gekoppelt (R steht für einen geeigneten Heteroaryl-Substituenten).
Der intermediäre
Amidinoester wird dann in Gegenwart von Pyridin bei erhöhter Temperatur
zyklisiert, wobei Oxadiazole der Formel 41 erhalten werden.
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Außer der
Verwendung von "Weinreb-Amid" der Formel 38 zur
Erzeugung von Ketonen, wie oben beschrieben, können auch Aldehyde der Formel
14 zu diesem Zweck verwendet werden. Wie in Schema 26a gezeigt,
können
Aldehyde der Formel 14 mit organometallischen Reagenzien (z. B.
Grignard-Reagenzien wie R8MgBr oder Organolithium-Reagenzien
wie R6Li) in Schritt a20 umgesetzt werden,
so dass ein Alkohol der Formel 42 gebildet wird, der dann in Schritt
a21 oxidiert werden kann, wobei die Ketone der Formel 43 erhalten werden.
Zahlreiche Reaktionsbedingungen der organometallischen Addition
an Aldehyde und Oxidation sekundärer
Alkohole zu Ketonen sind im Fachgebiet bekannt und ebenfalls in
Referenz 91 angegeben.
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Ein
weiteres Verfahren zur Herstellung von Ketonen der Formel 43 ist
in Schema 26b dargestellt. Nitrile der Formel 22 können mit
organometallischen Reagenzien (z. B. Grignard-Reagenzien, Lithiumreagenzien) reagieren,
wobei nach hydrolytischer Aufarbeitung Ketone erhalten werden.
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Alternativ
können
Nitrile der Formel 16 zuerst mittels organometallischer Addition
und anschließender hydrolytischer
Aufarbeitung in Ketone überführt werden.
Schema 26c zeigt ein Beispiel für
die Synthese von Verbindungen der Formel 46, ausgehend von Nitrilen
der Formel 16.
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Weitere
Verfahren sind im Fachgebiet bekannt und können vom Fachmann zur Herstellung
von Ketonen der Formel 43 angewendet oder modifiziert werden. Diese
Verfahren umfassen, ohne darauf beschränkt zu sein, (1) Reaktionen
vom Friedel-Crafts-Typ eines Indolins oder Indols mit einem Nitril,
einem Säurechlorid oder
einem N,N-Dimethylamid (Referenz 105); (2) ortho-Metallierung von
N-Boc-geschütztem
Anilin und anschließendes
Quenchen mit einem geeigneten Elektrophil, z. B. Weinreb-Amid (Referenz
106); (3) Reaktion von organometallischen Indoyl-Reagenzien mit
einem geeigneten Elektrophil, z. B. Weinreb- Amid (Referenz 107); (4) die Verwendung
eines substituierten Phenons als Indol-Precursor (Referenz 108).
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Die übrigen Schemata
liefern zusätzlichen
Hintergrund, Beispiele und Bedingungen zur Ausführung dieser Erfindung. Spezielle
Verfahren zur Herstellung von W und zur Modifikation von A werden
dargestellt. Wie in Schema 27 gezeigt, werden die Indole 4 mit Oxalylchlorid
entweder in THF oder Ether behandelt, um die gewünschten Glyoxylchloride 5 entsprechend
Literaturverfahren zu erhalten (Lingens, F. et al., Ref. 25). Die
intermediären
Glyoxylchloride 5 werden dann mit Benzoylpiperazin (Desai, M. et
al., Ref. 26) unter basischen Bedingungen gekoppelt, um 47 zu erhalten.
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Die
Behandlung des Indol-3-glyoxylchlorids 5 (Schema 28) mit tert-Butyl-1-piperazincarboxylat
führt zu
dem Piperazin-gekoppelten Produkt 48. Der Fachmann erkennt, dass
die Verwendung eines alternativen Boc-geschützten Piperazins, welches wie
unten dargestellt synthetisiert wird, Verbindungen der Formel I
mit alternativen Gruppen der Formel W ergibt. Wie zuvor diskutiert,
können
gewünschtenfalls
weitere Amin-Schutzgruppen, die keine sauren Entschützungsbedingungen
erfordern, verwendet werden. Die Entschützung der Boc-Gruppe wird mit
20%TFA/CH2Cl2 ausgeführt, so
dass das freie Piperazin 49 erhalten wird. Dieses Produkt wird dann
mit Carbonsäure
in Gegenwart von Polymer-geträgertem 1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimid
(P-EDC) gekoppelt, um Produkte der Formel I zu erhalten. Diese Abfolge
stellt ein allgemeines Verfahren zur Synthese von Verbindungen mit
verschiedenen Gruppen A in Formel I dar.
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Ein
Beispiel zur Herstellung von Verbindungen der Formel I, die Substituenten
an A (oder weiteren Teilen des Moleküls) besitzen, welche die Standard-Umsetzungen
beeinflussen können,
ist in Schema 29 dargestellt. Das Piperazin 49 (Schema 29) wurde
mit Boc-geschützter Aminobenzoesäure in Gegenwart
von EDC behandelt, um 50 zu erhalten. Ein Teil des resultierenden
Produkts wurde entnommen und mit TFA behandelt, um die Boc-Gruppe zu entfernen,
so dass das Amino-Derivat 51 erhalten wurde.
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In
gleicher Weise können
Substituenten, die einen reaktiven Alkohol aufweisen, wie unten
dargestellt eingearbeitet werden. Das Piperazin 49 (Schema 30) wurde
mit Acetoxybenzoesäure
in Gegenwart von EDC behandelt, um 52 zu erhalten. Ein Teil des
resultierenden Produkts wurde entnommen und einer Hydrolyse mit LiOH
unterzogen, um die Acetatgruppe zu entfernen, wobei das Hydroxy-Derivat
53 erhalten wurde.
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Substituierte
Pperazine umfassende Beispielverbindungen werden unter Verwendung
der in den Schemata 31–38
skizzierten allgemeinen Verfahren hergestellt. Substituierte Piperazine
sind entweder kommerziell von Aldrich, Co. erhältlich oder werden entsprechend
Literaturverfahren (Behun et al., Ref. 31 (a), Schema 31, Gl. 1)
hergestellt. Die Hydrierung von Alkyl-substituierten Pyrazinen bei
einem Druck von 40 bis 50 psi in Ethanol ergab substituierte Piperazine.
Falls es sich bei dem Substituenten um einen Ester oder ein Amid
handelte, konnten die Pyrazin-Systeme teilweise zum Tetrahydropyrazin
reduziert werden (Rossen et al., Ref. 31 (b), Schema 31, Gl. 2).
Die Carbonyl-substituierten Piperazine können unter denselben Bedingungen, wie
oben beschrieben, unter Verwendung kommerziell erhältlicher
Dibenzylpiperazine erhalten werden (Schema 31, Gl. 3).
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2-Trifluormethylpiperazin
(Jenneskens et al., Ref. 31c) wurde über einen vier Schritte umfassenden Weg
hergestellt (Schema 32). Unter Verwendung der Lewis-Säure TiCl4 reagierte das N,N'-Dibenzylethylendiamin 54 mit Trifluorpyruvaten,
so dass das Hemiacetal 55 erhalten wurde, das bei Raumtemperatur
mittels Et3SiH in CF3COOH
zu dem Lactam 56 reduziert wurde. Durch die Behandlung mit LiAlH4 wurde das Lactam 56 dann zu dem 1,4-Dibenzyl-2-trifluormethylpiperazin
57 reduziert. Hydrierung der Verbindung 57 in HOAc ergab schließlich das
gewünschte
Produkt 2-Trifluormethylpiperazin 58.
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Die
Mono-Benzoylierung von symmetrischen substituierten Piperazinen
kann durch Verwendung eines der folgenden Verfahren erreicht werden
(Schema 33). (a) Behandlung einer Lösung von Piperazin in Essigsäure mit
Acetylchlorid ergab das gewünschte
mono-benzoylierte
Piperazin (Desai et al., Ref. 26, Schema 33, Gl. 4). (b) Symmetrische
Piperazine wurden mit 2 Äquivalenten
n-Butyllithium behandelt, anschließend wurde Benzoylchlorid bei
Raumtemperatur zugegeben (Wang et al., Ref. 32, Schema 33, Gl. 5).
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Die
Mono-Benzoylierung von unsymmetrisch substituierten Piperazinen
(A und B in Schema 33 stehen zum Beispiel für R14,
R16, R18 and R20, sobald sie in eine Verbindung der Formel
I eingebaut wurden) kann unter Verwendung eines der folgenden Verfahren
erreicht werden (Schema 33), wobei alle Verfahren durch Monoalkyl-substituierte
Piperazine beispielhaft dargestellt wurden. (a) Unsymmetrische Piperazine
wurden mit 2 Äquivalenten
n-Butyllithium behandelt und anschließend bei Raumtemperatur mit
Benzoylchlorid versetzt, wobei eine Mischung von zwei Regioisomeren
erhalten wurde, welche mittels Chromatographie aufgetrennt werden
können
(Wang et al., Ref. 32 und 33(b), Schema 34 Gl. 6); (b) Benzoesäure wurde
in ihren Pentafluorphenylester überführt und
dann weiter mit 2-Alkylpiperazin
umgesetzt, wobei die Monobenzoylpiperazine mit der Benzoylgruppe
am weniger gehinderten Stickstoff erhalten wurden (Adamczyk et a.,
Ref. 33(a), Schema 34, Gl. 7); (c) Eine Mischung von Piperazin und
Methylbenzoat wurde 2–4
Tage mit Dialkylaluminumchlorid in Methylenchlorid behandelt, um
das Mono-Benzoylpiperazin mit der Benzoylgruppe am weniger gehinderten Stickstoff
zu erhalten (Schema 34 Gl. 8); (d) Unsymmetrische Piperazine wurden
mit 2 Äquivalenten
n-Butyllithium behandelt, anschließend wurden dann Triethylsilylchlorid
und Benzoylchlorid in THF bei Raumtemperatur zugegeben, um Mono-Benzoylpiperazine
mit der Benzoylgruppe am stärker
gehinderten Stickstoff zu erhalten (Wang et al., Ref. 33(b), Schema
34, Gl. 9). Falls es sich bei dem Substituenten in der Position
2 um einen Ester oder ein Amid handelte, trat die Monobenzoylierung
mit Benzoylchlorid am weniger gehinderten Stickstoff des Piperazins
auf, mit Triethylamin als Base in THF (Schema 34, Gl. 10).
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Im
Fall von Tetrahydropyrazinen (Schema 35, Gl. 11) trat die Monobenzoylierung
am stärker
gehinderten Stickstoff unter denselben Bedingungen wie denjenigen
in Gleichung 10 von Schema 34 auf, und zwar in der zuvor beobachteten
Weise. (Rossen et al., Ref. 31(b)).
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Weiterhin
kann die Estergruppe selektiv durch NaBH4 in
Gegenwart des Benzamids reduziert werden (Masuzawa et al., Ref.
34), was in Schema 36 dargestellt ist.
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Die
Estergruppen entweder an den Piperazin-verknüpfenden Einheiten oder am Indolkern
können
unter basischen Bedingungen wie K2CO3 (Schema 37, Gl. 13) oder NaOMe (Schema
37, Gl. 14) als Basen in MeOH und Wasser zu der entsprechenden Säure hydrolysiert
werden.
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Die
Umsetzung des Glyoxylchlorids 5 mit substituierten Benzoylpiperazinen
oder Tetrahydropyrazinen in CH2Cl2 unter Verwendung von i-Pr2NEt
als Base ergab die gekoppelten Produkte 59.
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Im
Fall von Kopplungsreaktionen unter Verwendung von 3-Hydroxylmethybenzoylpiperazin
wurde die Hydroxylgruppe vorübergehend
in Form ihres TMS-Ethers mit BSTFA (N,O-Bistrimethylsilyl)fluoracetamid) geschützt (Furber
et al., Ref. 35). Das ungeschützte
Stickstoffatom wurde dann mit Glyoxylchloriden 5 umgesetzt, um die
gewünschten
Diamide zu bilden. Während
der Aufarbeitung wurde die maskierende TMS-Gruppe entfernt, so dass
freie Hydroxylmethylpiperazindiamide 60 erhalten wurden (Schema
39).
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Piperazin-Intermediate
wurden unter Anwendung standardmäßiger Chemie
hergestellt, wie in den Schemata 40 und 41 dargestellt.
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Im
Rahmen der Diskussion der Chemie wurden chemische Umformungen, die
im Fachgebiet bekannt sind, dargestellt. Der Durchschnittsfachmann
ist mit diesen Umformungen gut vertraut; eine umfassende Liste brauchbarer
Bedingungen für
fast alle dieser Umformungen steht organischen Chemikern zur Verfügung; diese
Liste ist in Referenz 91 des Autors Larock enthalten, auf sie wird
hinsichtlich der Synthese von Verbindungen der Formel I in vollem
Umfang Bezug genommen.
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BESCHREIBUNG
SPEZIELLER AUSFÜHRUNGSFORMEN
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Experimenteller Teil
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Sofern
nicht anders angegeben, wurden Lösungsmittel
und Reagenzien direkt so verwendet, wie sie von kommerziellen Quellen
bezogen wurden; Reaktionen wurden unter Stickstoffatmosphäre durchgeführt. Flash-Chromatographie
wurde über
Silicagel 60 (0,040–0,063
Partikelgröße; EM Science
supply) durchgeführt. 1H-NMR-Spektren wurden auf Buker DRX-500
bei 500 MHz aufgenommen (oder Buker DPX-300 Varian Gemini 300 bei
300 MHz wie angegeben). Die chemischen Verschiebungen wurden in
ppm auf der δ-Skala relativ
zu δTMS
= 0 angegeben. Die folgenden internen Referenzen wurden für die residualen
Protonen in den folgenden Lösungsmitteln
verwendet: CDCl3 (δH 7,26),
CD3OD (δH 3,30) und DMSO-d6 (δH 2,50).
Standard-Akronyme wurden zur Beschreibung der Multiplizitätsmuster
verwendet: s (Singulett), d (Doublett), t (Triplett), q (Quartett),
m (Multiplett), b (breit), app (sichtbar). Die Kopplungskonstante
(J) ist in Hertz angegeben. LC/MS wurde auf einem Shimadzu LC-10AS
Flüssigchromatographen
unter Verwendung eines SPD-10AV UV-Vis-Detektors durchgeführt, wobei die Massenspektrometriedaten
unter Verwendung einer Micromass-LC-Plattform im positiven Elektrospray-Modus
(ES+) bestimmt wurden. Das analytische Umkehrpasen-HPLC-Verfahren
entspricht den folgenden Angaben, sofern nicht anders angegeben:
Säule YMC
ODS-A C18 S7 (3,0 × 50
mm), Start %B = 0, Ende %B = 100, Gradientenzeit = 2 min, Fließgeschwindigkeit
5 ml/min. Wellenlänge
= 220 nm, Lösungsmittel
A = 10% MeOH – 90%
H2O – 0,1
% TFA, Lösungsmittel
B = 90% MeOH – 10%
H2O – 0,1
% TFA; und Rt in min. Präparative Umkehrphasen-HPLC
wurde auf einem automatisierten präparativen HPLC-Yystem Shimadzu
LC-8A mit Detektor (SPD-10AV UV-Vis),
Wellenlänge
und Lösungsmittelsystemen
(A und B) identisch wie oben ausgeführt.
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Für die Beispiele
195 bis 214 wurde die folgende Vorgehensweise angewendet, um die
LC-Retentionszeiten
und Massenspektroskopiedaten zu erhalten. Die Verfahren wurden auf
einem MUX HPLC-MS-GERÄT
(MS8) durchgeführt,
umfassend:
Waters 600E HPLC-Pumpe und Kontrollgerät, Gilson
Mehrfach-Flüssigproben-Einheit,
Gilso889 Injektionsmodul, Waters 2487 UV-Detektoren (x8), ausgestattet
mit Microflow-Zellen,
und ein Micromass LCT-Massenspektrometer mit MUX-8-Weg-Schnittstelle.
Die HPLC-Pumpe fördert
die mobile Phase mit 8 ml/min zu einem 8-Wege-Teiler, der den Fluss
auf acht Flusslinien verteilt. Der Fluss entlang jedes Weges ist
proportional zu dem Rückdruck
des jeweiligen Weges und beträgt
nominal 1 ml/min. Nach dem Teiler strömt der Fluss zu acht Rheodyne-Injektoren,
die in einer Einheit montiert sind, und dann zu acht identischen
HPLC-Säulen
und acht UV-Detektoren. Das HPLC-Eluens von jedem Detektor wird
geteilt und ungefähr
30–80 μL/min pro
Weg wird dem mit dem LCT-Massenspektrometer verbundenen MUX-Schnittstellengehäuse zugeführt. Die
HPLC-Pumpe, die Flüssigproben-Einheit, das Injektonsmodul
und Massenspektrometer werden unter Verwendung der MicroMass Mass-Lynx-Software
unter Windows NT gesteuert. Die acht UV-Detektoren werden manuell über ihre
vorderen Bedienfronten bedient, erhalten jedoch selbstregelnde Nullsignale
vom Injektionsmodul. Analoge Signale von den UV-Detektoren werden
sowohl der Mass-Lynx-Software, und zwar mittels Verbindungen am
Massenspektrometer, und auch dem Millenium-Chromatographie-Datensystem
zugeführt,
und zwar mittels Standard-SAT/IN- und
-LACE-Schnittstellen. Proben wurden hergestellt mit Konzentrationen
von 0,5 mg/mL in Acetonitril/Wasser. Die folgenden HPLC-Bedingungen
werden verwendet: Mobile Phase: wässrig, Wasser +0,1 % TFA; organisch,
Acetonitril + 0,1 % TFA. Säule:
Hypersil BDS C18, 50 mm × 2,1
mm id., 5 μm
gepackt. Gradient:

Laufzeit: 2,4 min. Fließgeschwindigkeit: 8,0 mL/min,
achtfach zu jeder Säule
aufgetrennt.
Injektionsvolumen: 30 μl in einen 5 μl Kreislauf,
gefüllter-Kreislauf-Verfahren
("filled loop method").
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I.
Herstellung von Intermediaten Intermediat
1 (Beispiel zu Schema 3)
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Eine
Lösung
von 2-Brom-5-fluornitrobenzol (4,4 g, 20 mmol) in trockenem THF
(200 mL) unter N2 wurde auf –65 °C gekühlt (Aceton/CO2). Eine Lösung von Vinylmagnesiumbromid
(60 mL, 1 M, 60 mmol) in THF wurde so schnell wie möglich zu
der Nitrobenzol-Lösung
gegeben, wobei die Reaktionsemperatur unterhalb –40 °C gehalten wurde. Nach Zugabe
des Grignard-Reagenzes, wurde das Kühlbad auf ein –40 °C Bad umgestellt
(CH3CN/CO2), die
Mischung wurde bei –40 °C 30 min
gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde mit gesättigter NH4Cl-Lösung (500
mL) gequencht und mit Ether (2 × 200
mL) extrahiert, dann getrocknet (NaCl, Na2SO4) und konzentriert unter Vakuum. Das resultierende
Material wurde mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie
gereinigt (5:95) EtOAc/Hexane, wobei 4-Fluor-7-bromindol als ein leicht braunes Öl erhalten
wurde (2,03 g, 9,5 mmol, 54%). 1H-NMR (CDCl3) δ 6,72
(m, 2H), 7,24 (m, 2H), 8,4 (br s, 1H). MS m/e 215 (MH+).
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Zu
einer Lösung
von Ethylchloroxoacetat (1,397 g, 10,25 mmol) und 4 Fluor-7-bromindol
(1,1 g, 5,14 mmol) in CH2Cl2 (10
mL) bei 0 °C
wurde Aluminumchlorid (1,367 g, 10,25mol) gegeben. Die Mischung
wurde 1 h bei 0 °C
gerührt
und dann mit 1 N HCl gequencht. Die Mischung wurde unter Vakuum
mit CH2Cl2 extrahiert; die
organischen Schichten wurden unter Vakuum konzentriert. Das Rohmaterial
wurde mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie
(Gradient 10–30%)
EtOAc/Hexane gereinigt, wobei der Ester, Intermediat 2, als ein
gelber Feststoff erhalten wurde (846 mg, 2,69 mmol, 52%). 1H-NMR (CDCl3) δ 1,43 (t,
J = 6,9 Hz, 3H), 4,42 (q, J = 6,9 Hz, 1H), 6,92 (m, 1H), 7,40 (m,
1H), 8,42 (d, J = 3 Hz, 1H), 9,04 (br s, 1H).
-
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Der
Ester, Intermediat 2, wurde direkt in MeOH (10 mL) mit 1N NaOH (5,4
mL, 5,4 mmol) unter Rückflusstemperatur
15 min hydrolysiert. Das Natriumsalz wurde mit 1N HCl (5,4 mL, 5,4
mmol) behandelt; die Lösungsmittel
wurden unter Vakuum entfernt, wobei die freie Säure, Intermediat 3, als ein
weißer
Feststoff erhalten wurde.
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Eine
Mischung der Säure,
Intermediat 3; (2,69 mmol), N-Benzoylpiperazin (563 mg, 2,96 mmol), EDC·HCl (622
mg, 3,24 mmol), N-Methylmorpholin (330 mg, 3,24 mmol) und Hydroxybenzotriazol
(405 mg, 2,96 mmol) in DMF (5 mL) wurde bei Raumtemperatur 2 h gerührt und
dann 30 min auf 90 °C
erwärmt.
Die Mischung wurde in Wasser gegeben und unter Vakuum in EtOAc extrahiert.
Die EtOAc-Schichten wurden getrocknet (NaCl, MgSO4)
und unter Vakuum konzentriert. Das resultierende Material wurde
mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie
(Gradient 40–100%)
EtOAc/Hexane gereinigt, wobei das Intermediat 4 als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (250 mg, 0,55 mmol, 20%). 1H-NMR
(CDCl3) δ 3,5
(m, 4H), 3,75 (m, 4H), 6,85 (m, 1H), 7,35 (m, 1H), 7,39 (m, 5H),
8,06 (d, J = 3,3 Hz, 1H). MS m/e 458, 460 (MH+).
-
-
4-Methoxy-7-bromindol
wurde in der gleichen Weise wie Fluor-7-bromindol (Intermediat 1)
in 38%iger Ausbeute hergestellt. 1H-NMR
(CDCl3) δ 3,95
(s, 3H), 6,44 (d, J = 4,8 Hz, 1H), 6,73 (s, 1H), 7,17 (s, 1H), 6,24 (d,
J = 4,8 Hz, 1H), 8,4 (br s, 1H). MS m/e 223,9; 225,9 (M-H–).
Anal. berechnet für
C9H9BrNO: C, 47,82;
H, 3,57; N, 6,20; Gefunden: C, 47,91; H, 3,56; N, 6,11.
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4-Methoxy-7-bromindol,
Intermediat 5, (1,06 g, 4,71 mmol) wurde in THF (10 mL) gelöst; es wurde Oxalylchlorid
(3 g, 23,6 mmol) zugegeben. Die Mischung wurde 5 h bei Raumtemperatur,
dann 30 min bei 50 °C
gerührt.
Die flüchtigen
Lösungsmittel
wurden unter Vakuum entfernt, wobei ein grüner Feststoff zurückblieb, welcher
direkt im nächsten
Schritt verwendet wurde. Das Säurechlorid
wurde in THF (20 mL) gelöst;
es wurde N-Benzoylpiperazin
(1070 mg, 5,65 mmol) und anschließend Diisopropylethylamin (1220
mg, 9,42 mmol) zugegeben. Die Mischung wurde 18 h bei Raumtemperatur
gerührt
und dann 30 min auf Rückflusstemperatur erhitzt.
Die Mischung wurde in Wasser gegeben und unter Vakuum in EtOAc extrahiert.
Die EtOAc-Schichten wurden getrocknet (NaCl, MgSO4)
und unter Vakuum konzentriert. Das resultierende Material wurde
mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie
(Gradient 50–80%)
EtOAc/Hexane gereinigt, wobei das Intermediat 6 als ein leicht gelber
Feststoff erhalten wurde (520 mg, 1,1 mmol, 23%). 1H-NMR
(CDCl3) δ 3,5
(m, 4H), 3,75 (m, 4H), 3,92 (s, 1H), 6,60 (d, J = 5 Hz, 1H), 7,33
(d, J = 5 Hz, 1H), 7,43 (m, 5H), 8,03 (s, 1H), 9,07 (br s, 1H).
MS m/e 470, 472 (MH+). HPLC Rt =
1,347.
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Zu
einer THF-Lösung
(15 mL) von 4-Fluor-7-bromindol, Intermediat 1 (1 g, 4,67 mmol)
bei –78 °C wurde über 15 min
tropfenweise n-Butyllithium (5,6 mL, 2,5 M, 14 mmol) gegeben. Die
Mischung wurde auf 5 °C erwärmt und
30 min gerührt,
bevor sie wieder auf –78 °C abgekühlt wurde.
DMF (1,8 mL, 23,2 mmol) wurde zugegeben und die Mischung wurde 15
min auf Raumtemperatur erwärmt.
Die Lösung
wurde in Wasser gegeben und unter Vakuum in EtOAc extrahiert. Die
EtOAc-Schichten wurden getrocknet (NaCl, MgSO4)
und unter Vakuum konzentriert. Das resultierende Material wurde
mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie
(1:4) EtOAc/Hexane gereinigt, wobei das Intermediat 7 als ein leicht
gelber Feststoff erhalten wurde (403 mg, 2,48 mmol, 53%). 1H-NMR (CDCl3) δ 6,71 (d,
J = 2 Hz, 1H), 6,92 (t, J = 4,9 Hz, 1H), 7,33 (t, J = 1,7 Hz, 1H),
7,63 (dd, J = 2,9; 4,9 Hz, 1H), 10,05 (s, 1H), 10,25 (br s, 1H).
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Das
Intermediat 7 (2,27 g, 13,92 mmol) und Ethylchloroxoacetat (3,2
mL, 27,85 mmol) wurden in CH2Cl2 (25mL)
gelöst.
Die Lösung
wurde auf 0 °C
gekühlt
und Aluminumchlorid wurde portionweise (3,71 g, 27,85 mmol) zugegeben,
anschließend
zusätzliche
15 mL CH2Cl2. Die
Mischung wurde 30 min bei 0 °C
gerührt,
dann 1 h auf Raumtemperatur erwärmt
und vor dem Quenchen mit 1 N HCl wieder auf 0 °C gekühlt. Die Lösung wurde in Wasser gegeben
und unter Vakuum in EtOAc extrahiert. Die EtOAc-Schichten wurden
getrocknet (NaCl, MgSO4) und unter Vakuum
konzentriert. Das resultierende Material wurde aus EtOAc/Hexan kristallisiert,
wobei das Intermediat 8 als ein leicht gelber Feststoff erhalten
wurde (2,72 g, 10,34 mmol, 74%).
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Wässriges
NaOH (2,07 mL, 10 N, 20,7 mmol) wurde zu einer EtOH-Lösung (10
mL) des Esters, Intermediat 8, (2,72 g, 10,34 mmol) gegeben und
die Mischung wurde bei Raumtemperatur 2 h gerührt. Wässrige 6 N HCl wurde zugegeben,
bis der pH ungefähr
2 betrug. Das EtOH wurde unter Vakuum entfernt; der verbleibende
Feststoff wurde filtriert und mit kaltem Wasser und anschließend mit
trockenem Ether gewaschen, wobei die Säure, Intermediat 9, erhalten
wurde (2,27 g, 9,66 mmol, 93%).
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- Hergestellt aus dem Intermediat 9, wie in Referenz 102 beschrieben.
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Zu
einer Lösung
von 4-Fluor-7-cyanoindol (Referenz 102, 350 mg, 2,18 mmol) in CH2Cl2 (14 ml) wurde Oxalylchlorid
(7,0 ml, 80,2 mmol) zugegeben. Die Mischung wurde 3 Tage zum Rückfluss
erhitzt und dann unter Vakuum konzentriert, wobei das Intermediat
11 als ein gelber Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(300 MHz, CD3OD) δ 8,51 (s, 1H), 7,74 (app dd,
J = 8,5; 4,2, 1H), 7,12 (app dd, J = 10,1; 8,5, 1H).
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Zu
einer Lösung
von Indol, Intermediat 11, in THF (15 mL) wurden das Intermediat
19 (596 mg, 2,63 mmol) und N,N-Diisopropylethylamin (3,8 mL, 21,8
mmol) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 16 h bei RT gerührt. Nach
dem Quenchen mit MeOH (15 mL) wurde die Reaktionsmischung unter
Vakuum konzentriert, wobei man ein bräunliches Öl erhielt, welches einer Flash-Chromatographie
unter Verwendung einer Gradientenelution (50% bis 90% EtOAc/Hexan)
unterzogen wurde, wobei das Intermediat 12 als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (550 mg, 62% zwei Schritte). 1H-NMR
(CDCl3) δ 10,39
(s, 1H), 8,18 (d, J = 3,3, 1H), 7,64 (app dd, J = 8,2; 4,4, 1H),
7,45 (b s, 5H), 7,08 (app t, J = 9,3; 1H), 4,00–3,45 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 405, HPLC Rt =
1,243.
-
-
Zu
einer Lösung
von 4-Fluor7-cyanoindol (300 mg, 1,87 mmol) in DMF (6 ml) wurden
Ammoniumchlorid (386 mg, 6,18 mmol) und Natriumazid (365mg, 5,62mmol)
gegeben. Nach 17 h Rühren
bei 100 °C
wurde die Reaktionsmischung auf RT gekühlt und vorsichtig mit einem Überschuss
Chlorwasserstoffsäure
(10 mL, 1 N aq.) gequencht. Die Mischung wurde dann mit Wasser (~50
mL) verdünnt,
um die Präzipitation
zu induzieren. Das leicht braune Präzipitat wurde filtriert, 3
mal mit einem Überschuss
Wasser gewaschen und im Hochvakuum getrocknet, wobei das Tetrazol,
Intermediat 13, erhalten wurde (338,5 mg, 89%). 1H-NMR
(CD3OD) δ 7,73
(dd, J = 8,2; 4,6, 1H), 7,45 (d, J = 3,3; 1H), 6,92 (dd, J = 10,0;
8,2, 1H), 6,66 (d, J = 3,3; 1H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
204, HPLC Rt = 1,223.
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-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Intermediat 12.
- 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,64
und 8,55 (app d, J = 4,4; 1H), 8,28 (app d, J = 4,4; 1H), 7,96 (m,
1H), 7,74 (m, 1H), 7,65 (m, 1H), 7,48 (m, 1H), 7,11 (m, 1H), 3,94–3,55 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 406, HPLC
Rt = 1,047.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Intermediat 12.
- 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,29
und 8,23 (app s, 1H), 7,72 (app b s, 1H), 7,46 (app b s, 5H), 7,11
(app b s, 1H), 5,00–3,00
(b m, 7H), 1,40–1,22
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 419,
HPLC Rt = 1,263.
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- Hergestellt in der gleichen Weise wie Intermediat 12.
- 1H-NMR (CD3OD) δ 8,64–8,52 (m,
1H), 8,31–8,24
(m, 1H), 8,00–7,91
(m, 1H), 7,74 (m, 1H), 7,66 (m, 1H), 7,55–7,45 (m, 1H), 7,12 (m, 1H),
4,95–3,10
(b m, 7H), 1,42–1,23
(m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 420, HPLC
Rt = 1,127.
-
-
Zu
einer Lösung
von tert-Butyl-1-piperazincarboxylat (10,0 g, 53,7 mmol) und Picolinsäure (6,01
g, 48,8 mmol) in CH2Cl2 (300
mL), wurden DMAP (6,564 g, 53,7 mmol) und EDC (10,261 g, 53,7 mmol)
gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 16 h bei RT gerührt und
dann mit Chlorwasserstoffsäure
(5 × 250
mL, 1 N aq.) und Wasser (350 mL) gewaschen. Die organische Schicht
wurde getrocknet (MgSO4) und unter Vakuum
abgedampft, wobei das N-Boc-Piperazin,
Intermediat 17, als weißer
Feststoff erhalten wurde (9,9 g, 70%). 1H-NMR
(300 MHz, CD3OD) δ 8,56 (app d, J = 5,5; 1H),
7,91 (app t, J = 6,8, 1H), 7,57 (d, J = 6,8; 1H), 7,45 (m, 1H),
3,70 (m, 2H), 3,50 (m, 2H), 3,43 (m, 4H), 1,41 (b s, 9H); LC/MS
(ES+) m/z (M+H)+ = 291, (2M+H)+ = 581,
HPLC Rt = 1,173.
-
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Zu
dem N-Boc-Piperazin-Derivat, Intermediat 17, (9,9 g, 34 mmol) wurde
eine Lösung
von HCl in Dioxan (40 mL, 4 M) gefüllt, die Mischung wurde 5 h
bei RT gerührt.
Die Entfernung des Überschusses
an Reagens unter Vakuum ergab das Hydrochloridsalz, Intermediat
18, als einen weißen
Feststoff (100% Konversion). 1H-NMR (300
MHz, CD3OD) δ 8,94 (m, 1H), 8,63 (m, 1H),
8,22 (app d, J = 7,9; 1H), 8,11 (m, 1H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 192, (2M+H)+ =
383, HPLC Rt = 0,113.
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- Hergestellt in der gleichen Weise wie Intermediat 18. Zu
einer Lösung
von tert-Butyl-1-piperazincarboxylat (15,0
g, 80,5 mmol) und Benzoesäure
(8,94 g, 73,2 mmol) in CH2Cl2 (500
mL), wurden DMAP (9,84 g, 80,5 mmol) und EDC (15,39 g, 80,5 mmol)
gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 17 h bei RT gerührt, dann
wurde mit einem Überschuss
Chlorwasserstoffsäure
(5 × 250
mL, 1 N aq.) und Wasser (350 mL) gewaschen. Die organische Schicht
wurde getrocknet (MgSO4) und unter Vakuum
abgedampft, wobei N- Benzoyl-N'-Boc-Piperazin als
ein cremefarbener Feststoff erhalten wurde (21 g, 99%). 1H-NMR
(300 MHz, CD3OD) δ 7,46 (m, 5H), 3,80–3,30 (b
m, 8H), 1,47 (s, 9H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
291, (2M+H)+ = 581, HPLC Rt =
1,430.
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Zu
dem N-Benzoyl-N'-Boc-Piperazin
wurde eine Lösung
von HCl in Dioxan (80 mL, 4 M) gefüllt, die Mischung wurde 5 h
bei Raumtemperatur gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde dann unter Vakuum konzentriert, wobei
das Hydrochloridsalz, Intermediat 19, als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (100% Konversion). 1H-NMR
(300 MHz, CD3OD) δ 7,5 (m, 5H), 4,0–3,7 (b,
4H), 3,7–3,6
(b m, 4H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 191, (2M+H)+ = 381, HPLC Rt =
0,210.
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Zu
einer Lösung
von Picolinsäure
(4,06 g, 32,9 mmol) und Pentafluorphenol (6,06 g, 32,9 mmol) in DMF
(50 mL) wurde EDC (6,30 g, 32,9 mmol) gegeben . Die Reaktionsmischung
wurde 4 h bei RT gerührt,
bis die Untersuchung mittels LC/MS die vollständige Bildung des intermediären Esters
aufzeigte. (R)-Methylpiperazin (3,0 g, 30 mmol) wurde dann zugegeben,
die resultierende Mischung wurde 16 h bei RT gerührt. Entfernung der Lösungsmittel
unter Vakuum ergab ein gelbes Öl,
welches einer Flash-Chromatographie unter Verwendung einer Gradientenelution
(50% EtOAc/Hexan, zu 5% zu 15% MeOH/EtOAc, zu 1/3/17 NH3 (gesättigt, aq.)/MeOH/EtOAc)
unterzogen wurde, wobei das Intermediat 20 als ein gelbes Öl erhalten
wurde (1,67 g, 27%). 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,60
(app d, J = 4,7; 1H), 7,98 (m, 1H), 7,60 (m, 1H), 7,5 (m, 1H), 4,53 (app
d, J = 12,6; 1H), 3,62 (m, 1H), 3,10–2,59 (b m, 5H), 1,19 und 1,00
(app d, J = 6,4; 5,4; 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
206, (2M+H)+ = 411, HPLC Rt =
0,153.
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- Hergestellt in der gleichen Weise wie Intermediat 20. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 7,47 (m,
5H), 4,50 (app d, J = 10,6; 1H), 3,59 (b s, 1H), 3,14–2,57 (b
m, 5H), 1,15–0,97
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 205, (2M+H)+ = 409, HPLC Rt =
0,310.
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Zu
einer Lösung
von Methyl-(4-fluor)-indol-7-carboxylat (1 Äq.) in trockenem THF wurde
tropfenweise Oxalylchlorid (1,2 Äq.)
bei 0 °C
gegeben. Nach 5 min. wurde die Reaktion auf RT erwärmt und
bei RT bis zur vollständigen
Umsetzung gerührt.
Die Mischung wurde dann unter reduziertem Druck konzentriert, wobei
rohes Glyoxylchlorid erhalten wurde. Zu einer Lösung des rohen 3-Glyoxylchlorids
von Methyl-(4-fluor)-indol-7-carboxylat (5,39 mmol) in THF (50 mL)
wurden das Intermediat 19 (1,23 g, 5,42 mmol) und Diisopropylethylamin
(5,6 ml, 32,2 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 14 h bei
RT gerührt,
dann wurde MeOH (5 mL) zugegeben und die Mischung wurde unter Vakuum
konzentriert. Der gelbe Rückstand
wurde mittels Flash-Chromatographie gereinigt (50% bis 100% EtOAc/Hexan),
wobei das Intermediat 22 als ein blassgelber Feststoff erhalten
wurde (1,25 g, 53%, basierend auf Methyl-(4-fluor)-indol-7-carboxylat). 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17 (s,
1H), 8,00 (dd, J = 8,0; 4,5; 1H), 7,44 (b, s, 5H), 7,05 (app t,
J = 9,0; 1H), 3,99 (s, 3H), 3,84–3,51 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 438, HPLC Rt =
1,283.
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Zu
einer Lösung
von Intermediat 22 (1,0 g, 2,3 mmol) in MeOH (5 mL) wurde NaOH (1
N, 5 mL, 1 N, aq.) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 6 h bei
RT gerührt.
Nach diesem Zeitraum wurden 10 Pipettentropfen NaOH (10 N, aq.)
zugegeben, die Mischung wurde weitere 4 h gerührt, bis die HPLC-Untersuchung den
Abschluss der Reaktion aufzeigte. Die Reaktionsmischung wurde dann
unter Verwendung von HCl (~5,5 N aq.) auf pH 1 angesäuert. Das
Präzipitat
wurde durch Filtration gesammelt, mit Wasser gewaschen und im Hochvakuum
getrocknet, wobei das Intermediat 23 als ein weißer Feststoff erhalten wurde
(837 mg, 86%). 1H-NMR (DMSO-d6) δ 13,45 (b,
1H), 12,34 (s, 1H), 8,08 (app d, J = 3,0; 1H), 7,93 (dd, J = 8,0;
4,0; 1H), 7,44 (b, s, 5H), 7,14 (app t, J = 9,2; 1H), 3,79–3,34 (b
m, 8 H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 424, HPLC
Rt = 1,297.
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Alternativ
kann die Säure,
Intermediat 23, durch Oxidation des Carboxaldehyds, Intermediat
10, wie folgt hergestellt werden.
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AgNO3 (166 mg, 0,98 mmol) wurde in Wasser (1
mL) gelöst.
NaOH (79 mg, 1,96 mmol) in MeOH/H2O (1:)
wurde zu dieser Lösung
gegeben, es bildete sich ein braunes Präzipitat. Der Aldehyd, Intermediat
10, (200 mg, 0,49mmol) wurde zu der vorgenannten Reaktionsmischung
in einer Portion zugegeben, die Reaktion wurde etwa 2–3 h bei
90–100 °C erhitzt.
Die Reaktionsmischung wurde dann auf RT gekühlt und durch Celite filtriert.
Der Filterkuchen wurde mit heißem
Wasser gewaschen (3x), das abgekühlte
Filtrat wurde unter Vakuum mit EtOAc konzentriert. Der wässrige Extrakt
wurde mit 2 N HCl auf einen pH-Wert von etwa 2 angesäuert. Der resultierende
leicht graue Feststoff wurde durch Filtration gewonnen, wobei die
Säure,
Intermediat 23, (109 mg) erhalten wurde.
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Eine
Mischung von 4-Fluor-7-formylindol, Intermediat 7, (100 mg, 0,613
mmol) und Benzylamin (0,1 ml, 0,915 mmol) in EtOH (1,5 ml) wurde
20 h bei Raumtemperatur gerührt.
Nach diesem Zeitraum wurden die flüchtigen Bestandteile unter
Vakuum abgedampft, wobei das Iminprodukt als ein leicht braunes Öl erhalten wurde. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,87 (b
s, 1H), 8,58 (s, 1H), 7,39–7,35
(überlappend
m, 4H), 7,31–7,25
(überlappend
m, 3H), 6,83 (dd, J = 8,0; 10,0; 1H), 6,65 (t, J = 2,7; 1H), 4,88
(2, 2H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 253, HPLC
Rt = 1,330.
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Eine
Mischung des Imins, Intermediat 24, (48,3 mg, 0,191 mmol) in DMF
(1,0 ml) wurde zu TOSMIC (47,3 mg, 0,297 mmol) und gepulvertem K2CO3 (54,7 mg, 0,396mmol)
gegeben, die Reaktionsmischung wurde 72 h bei Raumtemperatur gerührt. Die
Mischung wurde mit NaCl (50 ml) verdünnt, die resultierende weiße Suspension
wurde unter Vakuum mit EtOAc (50ml) extrahiert. Der organische Extrakt
wurde mit Natriumhydrogencarbonat (25 ml, gesättigt, aq.) und dann mit NaCl
(50 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und
unter Vakuum abgedampft. Das Rohmaterial wurde mittels präparativer
TLC (10% MeOH/CH2Cl2,
2 × 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt, wobei das Imidazolprodukt als ein leicht gelbes Öl erhalten
wurde (26,7 mg, 48%, 2 Schritte). 1H-NMR:
(CD3OD) δ 7,90
(s, 1H), 7,19 (d, J = 3,2; 1H), 7,15–7,13 (überlappend m, 3H), 7,10 (s,
1H), 6,87 (dd, J = 8,0; 10,2; 1H), 6,82–6,80 (überlappend m, 2H), 6,71 (dd,
J = 4,9; 8,0; 1H), 6,54 (d, J = 3,2; 1H), 5,08 (s, 2H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 292, HPLC Rt =
1,413.
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Zu
dem Imidazol-Intermediat 25 (26,7 mg, 0,092 mmol) wurde eine Lösung von
Oxalylchlorid in Dichlormethan (1,0 ml, 2,90 mmol, 2 M) gegeben.
Die Mischung wurde 5 Stunden bei Raumtemperatur gerührt, die
flüchtigen
Bestandteile wurden in einem Stickstoffstrom abgedampft, wobei ein
gelbes festes Produkt erhalten wurde, welches weiter im Hochvakuum
getrocknet wurde.
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In
einen ofentrockenen 250 ml Kolben wurde CH3MgBr
(16,7 ml, 50 mmol, 3 M in Et2O) bei RT unter N2 gegeben. Dieses wurde dann in einem NaCl/Eisbad
auf –18 °C herunter
gekühlt,
7-Cyano-4-fluorindol (2,0 g, 12,5 mmol) in trockenem THF (100ml)
wurde tropfenweise unter Verwendung eines Zugabetrichters über 45 min
zugegeben. Nach 10 min ließ man
die Reaktionsmischung sich auf RT erwärmen, es wurde 2 h gerührt. Die
Reaktion wurde langsam gequencht mit 5% Schwefelsäure, die
Mischung wurde 10 min gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde unter Vakuum konzentriert und der Rückstand
in CHCl3 (150ml) gegeben. Nach Neutralisation
mit wässrigem
NH3 (50 ml), wurde Wasser (100 ml) zugegeben,
und die zwei Schichten wurden unter Verwendung eines Trenntrichters
getrennt. Die wässrige
Schicht wurde unter Vakuum mit CHCl3 (2 × 100 ml)
zurück
extrahiert, und die vereinigten organischen Extrakte wurden mit
H2O (100 ml), NaCl (100 ml) gewaschen und
getrocknet (MgSO4). Nach Abdampfen unter
Vakuum wurde die resultierende Rohverbindung mittels Flash-Chromatographie
(20% EtOAc/Hexan) gereinigt, wobei 7-Acetyl-4-fluorindol (1,3 g, 59%) als
ein leicht grauer Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,
55 (b s, 1H), 7,76 (dd, J = 4,8; 8,3; 1H), 7,31 (app t, J = 2,7;
1H), 6,83 (dd, J = 8,4; 9,6; 1H), 6,67 (app t, J = 2,9, 1H), 2,68
(s, 3H); HPLC Rt = 1,343.
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Zu
dem 7-Acetyl-4-fluorindol (500 mg, 2,82 mmol) in trockenem THF (10
ml) wurde NaOEt (2,3 ml, 7,06 mmol, 21% Gew./Gew. in EtOH) tropfenweise über 10 min
bei 0 °C
gegeben, die resultierende Mischung wurde 1 h gerührt. Ethylchloroxoacetat
(424 mg, 3,10 mmol) in trockenem THF (1 ml) wurde dann tropfenweise über 5 min
zu der Reaktionsmischung gegeben. Nach weiteren 3 h Rühren bei
0 °C wurde
die Reaktion mit 1 N Chlorwasserstoffsäure auf pH ~4 gequencht, es
wurde CH2Cl2 (50
ml) zugegeben. Die organische Schicht wurde abgetrennt, mit H2O (30 ml) und NaCl (30 ml) gewaschen, getrocknet
(MgSO4) und unter Vakuum abgedampft. Der
Rückstand
wurde gereinigt mittels Flash-Chromatographie (30 bis 50% EtOAc/Hexan),
wobei der α,γ-Diketoester
(464 mg, 59%) als gelber Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(CDCl3, deutete auf eine Enolform hin) δ 10,50 (b
s, 1H), 7,84 (dd, J = 4,8; 8,5; 1H), 7,34 (app t, J = 2,7, 1H),
7,2 (s, 1H), 6,88 (dd, J = 8,5, 9,5; 1H), 6,70 (dd, J = 2,4; 3,2;
1H), 4,42 (q, J = 7,2; 2H), 1,43 (t, J = 7,2; 3H); HPLC Rt = 1,393.
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Ein
ofentrockener 15 ml Kolben wurde mit dem α,γ-Diketoester-Intermediat 28
(180 mg, 0,650 mmol) und HOAc (5 ml) und anschließend mit
wasserfreiem Hydrazin (61 μl,
1,95 mmol) bei RT befüllt.
Die Mischung wurde dann 3 h bei 140 °C unter N2 am
Rückfluss
erhitzt.
-
Nach
Abkühlen
auf RT wurden die flüchtigen
Bestandteile unter Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde in CH2Cl2 (50 ml) gelöst, die
resultierende Lösung
wurde mit H2O (2 × 30 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4). Nach Abdampfen unter Vakuum wurde der
gelbe feste Rückstand
mit Ether (2 × 0,5
ml) trituriert und im Hochvakuum getrocknet, wobei das Ethylpyrazol-3-carboxylat
(110 mg, 62%) als gelber Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(CDCl3) δ 10,33
(b s, 1H), 7,46 (dd, J = 4; 8,1; 1H), 7,31 (app t, J = 2,7; 1H),
6,84 (dd, J = 8,1; 9,9; 1H), 6,68 (dd, J = 2,4; 3,2; 1H), 4,45 (q,
J = 7,1; 2H), 1,44 (t, J = 7,2; 3H); LC/MS:(ES+) m/z (M+H)+ = 274, HPLC Rt =
1,717.
-
-
Ein
ofentrockener 50 ml Kolben wurde mit dem α,γ-Diketoester-Intermediat 28
(437 mg, 1,58 mmol) und absolutem Ethanol (20 ml) befüllt, wobei
eine Suspension erhalten wurde, zu welcher bei RT Hydroxylaminhydrochlorid
(387 mg, 5,52 mmol) gegeben wurde. Die Reaktionsmischung wurde 4
h bei 85 °C
am Rückfluss
erhitzt, dann auf RT abgekühlt
und unter Vakuum abgedampft. Die Lösung des Rückstands in CH2Cl2 (100 ml) wurde mit H2O
(2 × 20
ml) und NaCl (20 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4).
Nach Abdampfen unter Vakuum wurden die erhaltenen Feststoffe mit
trockenem Ether (2 × 1
ml) trituriert, wobei das Ethylisoxazol-3-carboxylat als ein leicht
gelber Feststoff erhalten wurde (384 mg, 89%). 1H-NMR (CDCl3), δ 9,47
(b s, 1H), 7,51 (dd, J = 4,8; 8,3; 1H), 7,36 (app t, J = 2,8, 1H),
6,97 (s, 1H), 6,90 (dd, J = 8,4; 9,5; 1H), 6,74 (dd, J = 2,3, 3,1;
1H), 4,5 (q, J = 7,1, 2H), 1,47 (t, J = 7,1; 3H); LC/MS: (ES+) m/z
(M+H)+ = 275, HPLC (0,2% H3PO4-Puffer, Gradientenzeit = 4 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 2 ml/min), Rt = 4,60.
-
-
Intermediat
31 wurde hergestellt durch 20-stündiges
Erhitzen auf 140 °C
einer Mischung von Intermediat 1 (1,0 g, 4,67 mmol), Pyrazol (636
mg, 9,34 mmol), Cs2CO3 (3,04
g, 9,33 mmol) und CuBr (134 mg, 0,934 mmol) in PhNO2 (2,0
ml) in einem wiederverwendbaren abgedichteten Rohr. Das Rohprodukt
wurde ohne weitere Aufreinigung verwendet. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,46
(b s, 1H), 8,06 (d, J = 2,6; 1H), 7,78 (d, J = 1,7, 1H), 7,30 (t,
J = 2,7; 1H), 7,18 (dd, J = 8,4, 3,9, 1H), 6,80 (app t, 1H), 6,68
(t, J = 2,7; 1H), 6,51 (t, J = 2,0; 1H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 202, HPLC Rt =
1,437.
-
-
Intermediat
32 wurde in der gleichen Weise wie Intermediat 31 hergestellt. Das
Rohprodukt wurde ohne weitere Aufreinigung verwendet. LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 202, HPLC Rt =
0,893.
-
-
Intermediat
33 wurde in der gleichen Weise wie Intermediat 31 hergestellt. Das
Rohprodukt wurde mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt. Die Position des Indolrings am Triazol N1 wurde
mittels NOE-Untersuchungen gestützt. 1H-NMR: (CD3OD) δ 9,07 (s,
1H), 8,28 (s, 1H), 7,43 (dd, J = 8,5; 4,0; 1H), 7,37 (d, J = 3,2;
1H), 6,84 (dd, J = 9,6; 8,5, 1H), 6,64 (d, J = 3,2, 1H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 203, HPLC Rt =
1,223.
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-
Die
Intermediate 34a, 34b und 34c wurden in der gleichen Weise wie Intermediat
26 hergestellt.
-
-
In
einen ofentrockenen 500 ml Rundkolben wurden bei RT 4-Methoxy-7-bromindol-Intermediat 5 (12,8 g,
56,6 mmol) und trockenes DMF (120ml) und anschließend CuCN
(25,3 g, 283 mmol) gefüllt.
Die Reaktionsmischung wurde 16 h bei 165 °C am Rückfluss erhitzt. Nach Abkühlen auf
RT wurde langsam Ammoniumhydroxid (100 ml) zu der Mischung gegeben,
10 min gerührt,
unter Vakuum to ~50 ml konzentriert und mit CHCl3 (250ml)
verdünnt.
Die organische Mischung wurde mit H2O (250
ml) gewaschen, die wässrige
Schicht wurde unter Vakuum mit CHCl3 (2 × 200 ml)
zurück
extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden durch ein Filterpapier
filtriert, um einige Feststoffe zu entfernen, und erneut mit H2O (100 ml) und NaCl (100 ml) gewaschen und
dann getrocknet (MgSO4). Nach Abdampfen
unter Vakuum wurde der Rückstand
mittels Flash-Säulenchromatographie
(10% EtOAc/Hexan (250 ml), dann 25% EtOAc/Hexane (1250ml)) gereinigt,
wobei das 4-Methoxy-7-cyanoindol-Intermediat 35 als gelber Feststoff
erhalten wurde (8,0 g, 82%). 1H-NMR: (CDCl3) δ 8,73
(b s, 1H), 7,50 (d, J = 8,3 Hz), 7,22 (app t, J = 2,8 Hz, 1H), 6,73
(dd, J = 2,3; 3,2 Hz, 1H), 6,58 (d, J = 8,3 Hz, 1H), 4,01 (s, 3H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 173, HPLC (YMC
C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 3 min) Rt = 1,700.
-
-
Intermediat
36 wurde in der gleichen Weise wie Intermediat 27 hergestellt. Das
Rohprodukt wurde ohne weitere Aufreinigung verwendet. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,48
(b s, 1H), 7,77 (d, J = 8,4, 1H), 7,22 (app t, 1H), 6,67 (dd, J
= 3,1; 2,4, 1H), 6,56 (d, J = 8,4, 1H), 4,04 (s, 3H), 2,65 (s, 3H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 190, HPLC Rt = 1,277.
-
-
Eine
Mischung von Intermediat 36 (153,3 mg, 0,81 mmol) und AlCl3 (864,0 mg, 6,48 mmol) in CH2Cl2 (3,0ml) wurde 2 h bei 0 °C gerührt, bevor
Methylchloroxoacetat (0,9 ml, 9,79 mmol) zugegeben wurde. Die Mischung
wurde 2 h bei 0 °C
gerührt,
15 h einem Gefrierschrank stehen gelassen und dann erneut 5 h bei
0 °C gerührt. Nach
diesem Zeitraum wurde der Mischung vorsichtig Wasser (~10 ml) zugegeben,
sie wurde unter Vakuum mit EtOAc (30 ml) extrahiert. Der organische
Extrakt wurde unter Vakuum abgedampft und mittels Flash-Chromatographie (2%
bis 5% MeOH/CH2Cl2)
gereinigt, wobei das Intermediat 37 erhalten wurde. 1H-NMR:
(CD3OD) δ 8,12
(s, 1H), 8,01 (d, J = 8,5; 1H), 6,86 (d, J = 8,5; 1H), 4,00 (s,
3H), 3,91 (s, 3H), 2,64 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
276, HPLC Rt = 1,140.
-
-
Intermediat
37 (30,0 mg, 0,109 mmol) wurde unter Verwendung von NaOH (1 N, aq.)
in MeOH hydrolysiert. Nach der Umsetzung wurde die Mischung konzentriert,
der erhaltene Rückstand
wurde in Wasser gelöst
und mit HCl (1 N, aq.) angesäuert.
Die wässrige
Mischung wurde filtriert und das Filtrat abgedampft, wobei das Intermediat
38 erhalten wurde, welches ohne weitere Aufreinigung verwendet wurde.
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 262, HPLC Rt = 0,833.
-
-
Intermediat
39 wurde analog zu Intermediat 12 mittels Kopplung des Intermediats
11 mit 1-tert-Butylpiperazincarboxylat
hergestellt und durch präparative
TLC (60% EtOAc/Hexan, 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt. 1H-NMR: (CDCl3) δ 9,68,
(b s, 1H), 8,19 (d, J = 3, 1H), 7,64 (dd, J = 8,4; 4,2; 1H), 7,08
(dd, J = 10,0; 8,4, 1H), 3,74 (app t, 2H), 3,57 (app t, 2H), 3,51
(b s, 4H), 1,48 (s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
401, HPLC Rt = 1,453.
-
-
In
einen ofentrockenen 250 ml Rundkolben wurden 7-Brom-4-methoxyindol-Intermediat
5 (5,0 g, 22,2 mmol) und trockenes THF (100 ml) bei RT gegeben.
Die Mischung wurde auf –78 °C gekühlt, es
wurde n-BuLi (26,7 ml, 66,7 mmol, 2,5 M in Hexanen) tropfenweise
mittels einer Spritze über
30 min zugegeben. Nach 10 min wurde die Mischung auf 0 °C erwärmt und
30 min gerührt.
Die Mischung wurde dann auf –78 °C gekühlt, es
wurde wasserfreies DMF (8,6 ml, 111 mmol) tropfenweise über 5 min
zugegeben. Nach 10 min wurde die Mischung allmählich auf RT erwärmt und
2 h gerührt.
Die Reaktion wurde dann durch Zugabe von H2O
(100 ml) gequencht, die Mischung wurde unter Vakuum mit Et2O (3 × 100
ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden mit
NaCl (100 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4).
Nach Abdampfen unter Vakuum wurde der Rückstand mittels Flash-Säulenchromatographie
(EtOAc/Hexan) gereinigt, wobei der Aldehyd 40 (3,7 g, 95%) als ein
weißer
Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR: (300 MHz,
CDCl3) δ 10,15
(b s, 1H), 9,96 (s, 1H), 7,62 (d, J = 7,8 Hz, 1H), 7,21–7,26 (m,
1H), 6,67–6,72
(m, 1H), 6,66 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 4,06 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z
(M+H)+ = 176, HPLC (YMC C18 S7 3 × 50 mm,
Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min), Rt = 1,196.
-
-
In
einen ofentrockenen 100 ml Rundkolben wurden der Aldehyd 40 (1,78
g, 10,2 mmol) und wasserfreies CH2Cl2 (60ml) gefüllt, wobei eine Lösung erhalten
wurde, welche auf 0 °C
gekühlt
wurde, es wurde portionweise AlCl3 (2,72
g, 20,3 mmol) zugegeben. Die Farbe der Reaktionsmischung schlug
sofort nach violett um, es wurde 3 h bei 0 °C gerührt. Ethylchloroxoacetat (2,77g,
2,27 ml, 20,3 mmol) wurden dann tropfenweise mittels einer Spritze
zu der Mischung gegeben. Nach 1 h Rühren wurde die Reaktionsmischung
auf RT erwärmt
und über
Nacht gerührt.
Die Reaktion wurde dann mit Chlorwasserstoffsäure (30 ml, 1 N), H2O (100 ml) gequencht, die resultierende
Mischung wurde unter Vakuum mit CHCl3 (3 × 100 ml)
extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden mit H2O (100 ml), NaCl (100ml) gewaschen und getrocknet
(MgSO4). Nach Abdampfen unter Vakuum wurde
der Rückstand
mittels Flash-Säule-Chromatographie
(30~50% EtOAc/Hexan) gereinigt, wobei das erwartete Intermediat
41 erhalten wurde (1,3 g, 46%). 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,76
(b s, 1H), 9,97 (s, 1H), 8,18 (d, J = 3 Hz, 1H), 7,71 (d, J = 8,3
Hz, 1H), 6,79 (d, J = 8,3 Hz, 1H), (4,40 (q, J = 7,2 Hz, 2H), 4,03
(s, 3H), 1,40 (t, J = 7,2 Hz, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 276, HPLC (YMC C18 S7 3 × 50 mm,
Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min), Rt = 1,200.
-
-
Zu
dem Ethylester-Intermediat 41 (1,3 g, 4,73 mmol) in MeOH (50 ml)
wurde bei RT wässriges
NaOH (2 ml, 10 mmol, 5 N) gegeben, die Mischung wurde über Nacht
gerührt.
Nach Entfernung eines Teils des Lösungsmittels unter Vakuum wurde
der Rückstand
mit konzentrierter Chlorwasserstoffsäure auf pH ~2 angesäuert, wobei
sich ein weißer
Feststoff bildete. Der Feststoff wurde filtriert, mit H2O
(2 ml) gewaschen und getrocknet, wobei 1,4 g der Säure erhalten
wurden, die direkt ohne weitere Aufreinigung in der Kopplungsreaktion
verwendet wurde. Zu der Säure
in DMF (50 ml) wurde Benzoylpiperazinhydrochlorid (1,18 g, 5,20
mmol), N,N-Diisopropylethylamin (3,06 g, 4,1 ml, 23,7mmol) und 3- (Diethoxyphosphoryloxy)-1,2,3-benzotriazo-4-(3H)-on (1,56
g, 5,20 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde bei RT über Nacht
gerührt.
Nach teilweiser Entfernung des Lösungsmittels
unter Vakuum wurde der Rückstand
in CH2Cl2 (200 ml)
gelöst,
mit NaHCO3 (100 ml, gesättigt, aq.), H2O
(100 ml), NaCl (100 ml) gewaschen und getrocknet (MgSO4).
Nach Abdampfen unter Vakuum wurde die Rohverbindung mittels Flash-Säulenchromatographie
gereinigt, wobei das gewünschte
Intermediat 42 erhalten wurde (1,64 g, 83% zwei Schritte). 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,8 (b
s, 1H), 9,98 (s, 1H), 8,09 (s, 1H), 7,73 (d, J = 8,0 Hz, 1H), 7,56–7,32 (b,
5H), 6,82 (d, J = 8,1 Hz, 1H), 4,06 (s, 3H), 3,32–4,2 (m,
8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 420, HPLC
(YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min), Rt = 1,213.
-
-
Eine
Mischung von 4-Methoxy-7-cyanoindol (Intermediat 35) in EtOH (20
ml) wurde bei RT zu einer Lösung
von KOH (2,45 g, 43,8 mmol) in H2O (2 ml)
gegeben, die Reaktionsmischung wurde über Nacht am Rückfluss
erhitzt. Nach Abkühlen
auf RT wurde das Lösungsmittel
teilweise unter Vakuum entfernt, der Rückstand wurde mit 10% Chlorwasserstoffsäure auf
pH ~2 angesäuert.
Das resultierende weiße
Präzipitat
wurde filtriert und mit CH2Cl2 (4 × 10 ml)
gewaschen. Die vereinigten organischen Waschphasen wurden mit H2O (10 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4) und unter Vakuum abgedampft, wobei 2,1
g der rohen Säure
erhalten wurden, welche ohne weitere Aufreinigung im nächsten Schritt
verwendet wurde. LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 192,
HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4ml/min, Gradientenzeit 2 min), Rt = 1,217.
-
-
Zu
einer Mischung des Säure-Intermediats
43 (179,3 mg, 0,94 mmol) in MeOH/PhH (6 ml, 50:50) wurde bei RT
tropfenweise TMSCHN2 (4 ml, ~2 M in Hexan)
gegeben, die Mischung wurde 1 h gerührt. Das Lösungsmittel und überschüssiges Reagens
wurden unter Vakuum entfernt, der Rückstand wurde in MeOH gelöst und dann
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei der Methylester (165,2 mg, 86%) erhalten wurde. 1H-NMR: (der Methylester CDCl3) δ 9,85 (b
s, 1H), 7,87 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 7,21 (t, J = 2,7 Hz, 1H), 6,68
(t, J = 2,8 Hz, 1H), 6,56 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 4,02 (s, 3H), 3,96
(s, 3H). Der Methylester wurde mit CH3NH2 (4 ml, 40% in H2O)
behandelt und bei RT über
Nacht gerührt.
Nach Entfernung des Überschusses
an Reagens unter Vakuum wurde der Rückstand mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei das Methylamid (134,8 mg, 82%)
erhalten wurde; LC/MS (das Methylamid): (ES+) m/z (M+H)+ =
205, HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,400.
-
-
Zu
einer Mischung des Methylamid-Intermediats 44 (80 mg, 0,392 mmol)
in CH2Cl2 (10 ml)
wurde bei 0 °C
AlCl3 (104,5 mg, 0,784 mmol) gegeben. Die
Reaktionsmischung wurde 3 h bei 0 °C gerührt, es wurde Ethylchloroxoacetat
(88 μl,
0,788 mmol) zugegeben und dann 1 weitere Stunde bei 0 °C gerührt, bevor
auf RT erwärmt
und über
Nacht gerührt
wurde. Die Mischung wurde dann mit 1 N Chlorwasserstoffsäure auf
pH < 7 angesäuert, anschließend wurde
in üblicher
Weise wässrig
aufgearbeitet (extrahiert mit CHCl3). Die
Farbe der vereinigten organischen Extrakte schlug während der
Entfernung des Lösungsmittels
unter Vakuum nach violett um. Der erhaltene violette Rückstand
wurde mittels Flash-Säulenchromatographie
(EtOAc/Hexan) gereinigt, wobei das erwartete Intermediat 45 (17
mg, 14%) als ein grauer Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,20
(b s, 1H), 11,19 (b s, 1H), 8,18 (d, J = 3,1 Hz, 1H), 7,40 (d, J
= 8,4 Hz, 1H), 6,65 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 4,40 (q, J = 7,2 Hz, 2H),
3,98 (s, 3H), 3,05 (d, J = 3,1 Hz, 3H), 1,39 (t, J = 7,2 Hz, 3H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 305, HPLC (YMC
C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 5ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,180.
-
-
In
einen ofentrockenen 100 ml Rundkolben wurden bei RT 4-Methoxy-7-cyanoindol
(0,902 g, 5,24 mmol) und 1,2-Dichlorethan (30 ml) gefüllt, wobei
eine Lösung
resultierte. Oxalylchlorid (2,3 ml, 26,2 mmol) wurde tropfenweise
zugegeben, die Reaktionsmischung wurde bei ~85 °C 3 h am Rückfluss erhitzt. Nach Abkühlen auf
RT wurden das Lösungsmittel
und der Überschuss
an Reagens unter Vakuum entfernt. Der Rückstand wurde in THF (30 ml)
gelöst,
der Mischung wurde Benzoylpiperazinhydrochloridsalz (1,43 g, 6,29
mmol) zugegeben, es wurde dann 10 min gerührt. Die Suspension wurde dann
auf 0 °C
gekühlt,
es wurde tropfenweise N,N-Diisopropylethylamin (3,39 g, 4,6 ml,
26,2 mmol) zugegeben und 5 min gerührt. Nach 1 h Rühren bei
RT wurde das Lösungsmittel
teilweise unter Vakuum entfernt, die resultierende Mischung wurde
in MeOH gelöst
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei das Intermediat 46 als ein leicht gelber Feststoff
erhalten wurde (1,26 g, 58% zwei Schritte). 1H-NMR:
(CD3OD) δ 8,17
(s, 1H), 7,66 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 7,47 (b s, 5H), 6,90 (d, J =
8,4 Hz, 1H), 4,00 (s, 3H), 3,44–3,97
(m, 5H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 417,
HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,220.
-
-
Eine
Lösung
von Methylpyrazincarboxylat (600 mg, 4,34 mmol) in Hydrazin (3 ml)
wurde 20 h über Nacht
gerührt,
dann 4 h bei 60 °C.
Entfernung von überschüssigem Hydrazin
im Hochvakuum ergab das Pyrazinhydrazid-Intermediat 47 als einen
gelben Feststoff (550 mg, 92%). 1H-NMR:
(CD3OD) δ 9,19
(d, J = 1,5; 1H), 8,76 (d, J = 2,4; 1H), 8,65 (app t, 1H); LC/MS:
(ES+) m/z (M+H)+ = 139, HPLC Rt =
0,087.
-
-
Zu
einer Mischung von Boc-Piperazin (3,678 g, 19,7 mmol) und 4-Nitrobenzoesäure (3,0
g, 18 mmol) in CH2Cl2 (50
ml) wurden DMAP (3,290 g, 26,9 mmol) und EDC (5,146 g, 26,9 mmol)
gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 16 h bei Raumtemperatur gerührt und
dann mit CH2Cl2 (50
ml) verdünnt.
Die organische Mischung wurde mit Chlorwasserstoffsäure (2 × 100 ml,
1 N, aq.) und Wasser (250 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4), filtriert und dann unter Vakuum abgedampft,
wobei das Amid-Intermediat als ein weißer Feststoff erhalten wurde
(5,80 g, 96%). Das Amid-Intermediat wurde anschließend mit
einer Lösung
von Wasserstoffchlorid in Dioxan (20 ml, 4 M) versetzt. Die Reaktionsmischung
wurde 4 h bei Raumtemperatur gerührt.
Entfernung des Überschusses
an Reagens unter Hochvakuum ergab das Intermediat 48 als einen weißen Feststoff
(4,67 g, 99%). 1H-NMR (CD3OD) δ 8,38 (m,
2H), 7,90 (m, 1H), 7,75 (m, 1H), 4,10–3,54 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 236, HPLC Rt =
0,193.
-
-
Zu
einer Mischung von 4-Fluor-7-cyanoindol (Referenz 102, 1,0 g, 6,24
mmol) in EtOH (50 ml) wurden Hydroxylaminwasserstoffchlorid (651
mg, 9,37 mmol) und Triethylamin (1,7 ml) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 16 h am Rückfluss
erhitzt. Nach Entfernung der flüchtigen
Bestandteile im Hochvakuum wurde zu dem Rückstand Wasser (10 ml) gegeben
und filtriert, wobei das rohe Hydroxylamidin-Intermediat erhalten wurde.
Zu diesem Intermediat wurde Triethylorthoformiat (10 ml) gegeben,
die Mischung wurde 16 h bei 110 °C
erhitzt. Nach weitgehender Entfernung überschüssigen Reagenzes wurde der
Rückstand
mittels Flash-Chromatographie mit (CH2Cl2) gereinigt, wobei das Intermediat 49 als
blassgelber Feststoff erhalten wurde (419 mg, 33%). 1H-NMR
(CDCl3) δ 9,90
(s, 1H), 8,80 (s, 1H), 8,01 (app dd, J = 8,3; 4,8; 1H), 7,34 (app t,
J = 2,8; 1H), 6,93 (app dd, J = 9,8; 8,3; 1H), 6/74 (app dd, J =
3,2; 2,3; 1H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
204, HPLC Rt = 1,910.
-
-
Zu
einer Lösung
von Intermediat 49 (200 mg, 0,984) in CH2Cl2 (10 ml) wurde Oxalylchlorid (1 ml) gegeben,
die Reaktionsmischung wurde 16 h unter mäßigem Rückfluss gerührt. Entfernung des Lösungsmittels unter
Vakuum und des Überschusses
an Reagens im Hochvakuum ergab das Intermediat 50 als einen gelben Feststoff,
welcher ohne weitere Aufarbeitung verwendet wurde.
-
II.
Herstellung von Verbindungen der Formel I Beispiel
1
-
Beispiel für das allgemeine
Verfahren zur Bromid/Aryl- oder Heteroaryl-Stannan-Kopplung, wie
in den Schemata 1 und 3 beschrieben:
-
Zu
dem 7-Bromindol, Intermediat 4, (100 mg, 0,218 mmol) in 3 mL wasserfreiem
1,4-Dioxan wurden 1,2 Äq.
Tri-n-butylphenylzinn (96 mg, 0,262 mmol) und Tetrakis(triphenylphosphin)palladium(0)
(10 mg, 0,009 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 48 h auf
120 °C erhitzt.
Die Reaktionsmischung wurde in EtOAc (10 mL) gelöst. dann wurde mit Wasser (2 × 10 mL)
gewaschen, getrocknet (NaCl, MgSO4) und
unter Vakuum konzentriert. Das resultierende Material wurde mittels
SiO2-Flash-Säulenchromatographie
(EtOAc, Rf = 0,2–0,6) unter Verwendung eines
Gradientensystems (1:1 bis 4:1) EtOAc/Hexan gereinigt, wobei ein
gelber Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,05 (dd, 1H), 7,25 (t, 1H), 7,35–7,45 (s, 5H), 7,5–7,6 (m,
4H), 7,65 (dd, 1H), 8,02 (d, 1H), 9,45 (s, 1H). MS m/e 456,07 (MH+).
-
-
Das
7-Bromindol, Intermediat 4, (100 mg, 0,218 mmol), (2-Methylthio)phenylboronsäure (44
mg, 0,262 mmol), Tetrakist(triphenylphosphin)palladium(0) (10 mg,
0,009 mmol) und pulverisiertes Kaliumcarbonat (60 mg, 0,436 mmol)
wurden in DMF/Wasser (3 mL, 2 : 1) gelöst und in ein abgedichtetes
Glass-Reaktionsrohr gegeben. Die Mischung wurde 48 h unter Stickstoff
auf 120 °C
erhitzt. Die Reaktionsmischung wurde in 10 mL EtOAc gelöst, dann
wurde sie mit 10 mL Wasser (x2) gewaschen, getrocknet (NaCl, MgSO4) und unter Vakuum konzentriert. Das resultierende
Material wurde mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie (EtOAc,
Rf = 0,2–0,6) unter Verwendung eines
Gradientensystems (1:1 bis 4:1) EtOAc/Hexane gereinigt, wobei ein
weißer Feststoff
erhalten wurde. 1H-NMR (CDCl3) δ 2,35 (s,
3H), 3,5–3,8
(m, 8H), 7,05 (t, 1H), 7,19 (m, 1H), 7,27 (d, 2H), 7,32 (d, 1H),
7,35–7,45
(m, 6H), 8,05 (s, 1H), 8,78 (s, 1H). MS m/e 502,04 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 2 unter Verwendung von Intermediat 6 und 4-Fluorphenylboronsäure. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5-3,8
(m, 8H), 3,96 (s, 3H), 6,77 (d, 1H), 7,19 (t, 2H), 7,35–7,45 (s,
5H), 7,47 (m, 2H), 7,66 (m, 1H), 7,98 (s, 1H), 9,11 (s, 1H), MS
m/e 486,11 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 aus dem
Intermediat 4 und 4-Methoxyphenylboronsäure. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 3,85 (s, 3H), 7,01 (d, 1H), 7,03 (d, 2H), 7,42 (d, 2H), 7,35–7,45 (s,
5H), 8,00 (s, 1H). MS m/e 486,11 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 aus Intermediat
4 und Tri-n-butyl-(2-pyridinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,05 (t, 1H), 7,30 (t, 1H), 7,35–7,45 (s, 5H), 7,6–8,0 (m,
3H), 7,65 (dd, 1H), 8,17 (s, 1H), 8,64 (s, 1H). MS m/e 457,15 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 aus Intermediat
4 und Tri-n-butyl-(3-pyridinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,08 (t, 1H), 7,22 (m, 1H), 7,35–7,45 (s, 6H), 8,05 (t, 1H),
8,16 (s, 1H), 8,54 (d, 1H), 8,80 (s, 1H), 9,24 (s, 1H). MS m/e 457,21
(MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und Tri-n-butyl-(2-pyridinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 4,00 (s, 3H), 6,78 (d, 1H), 7,21 (t, 1H), 7,42 (s, 5H), 7,78
(d, 1H), 7,82 (t, 1H), 7,95 (d, 1H), 8,11 (s, 1H), 8,56 (s, 1H).
MS m/e 469,19 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und Tri-n-butyl-(3-pyridinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 4,06 (s, 3H), 6,79 (d, 1H), 7,22 (d, 1H), 7,35–7,45 (s, 6H),
7,99 (d, 1H), 8,05 (s, 1H), 8,51 (d, 1H), 8,73 (s, 1H), 9,18 (s,
1H), MS m/e 469,25 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Intermediat 4 und Tri-n-butyl-(5-pyrimidinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,05 (t, 1H), 7,33 (dd, 1H), 7,35–7,45 (s, 5H), 8,15 (s, 1H),
9,39 (s, 1H), 9,54 (s, 2H), 9,59 (s, 1H). MS m/e 458,12 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und Tri-n-butyl-(5-pyrimidinyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,05 (t, 1H), 7,33 (dd, 1H), 7,35–7,45 (s, 5H), 8,15 (s, 1H),
9,39 (s, 1H), 9,54 (s, 2H), 9,59 (s, 1H), MS m/e 458,12 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und 2-Furanylboronsäure. MS m/e 458,06 (MH+), HPLC Rt = 1,427.
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-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Intermediat 4 und Tri-n-butyl-(2-thienyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8, (m,
8H), 7,0 (t, 1H), 7,15 (t, 1H), 7,25–7,35 (m, 3H), 7,35–7,45 (s,
5H), 8,05 (d, 1H). MS m/e 462,16 (MH+)
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 aus Intermediat
4 und 3-Thienylboronsäure. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,01 (t, 1H), 7,24–7,36
(m, 2H), 7,35–7,65
(m, 7H), 8,00 (s, 1H), 9,70 (s, 1H). MS m/e 462,04 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 aus Intermediat
4 und 2-Thiazolylboronsäure. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,0 (t, 1H), 7,25 (m, 2H), 7,35–7,45 (s, 5H), 8,05 (s, 1H),
8,15 (s, 1H), 9,25 (s, 1H). MS m/e 463 (MH+),
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und 2-Thiazolylboronsäure. 1H-NMR
(CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 3,94 (s, 3H), 6,68 (d, 1H), 7,23 (d, 1H), 7,35–7,45 (s,
6H), 8,08 (s, 1H), 8, 77 (s, 1H). MS m/e 475,15 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 2 aus Intermediat
4 und (5-Chlorthien-2-yl)boronsäure. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 7,0 (t, 1H), 7,05 (m, 1H), 7,28 (t, 1H), 7,35–7,45 (s,
5H), 7,53–7,77
(m, 1H), 8,06 (d, 1H), 9,68 (s, 1H). MS m/e 496/497 (MH+),
-
-
Der
Indolcarboxaldehyd, Intermediat 10, (90 mg, 0,22 mmol), TOSMIC (43
mg, 0,22 mmol) und pulverisiertes K2CO3 (31 mg, 0,22 mmol) wurden in MeOH (2 mL)
gelöst
und die Lösung 3
h bis zur Rückflusstemperatur
erhitzt. Das MeOH wurde unter Vakuum konzentriert, das Rohmaterial
wurde in EtOAc gelöst,
dann wurde mit Wasser (2 × 10
mL) gewaschen, getrocknet (NaCl, MgSO4)
und unter Vakuum konzentriert. Das resultierende Material wurde
mittels SiO2-Flash-Säulenchromatographie (95:5)
EtOAc/MeOH gereinigt, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (39 mg, 0,09 mmol, 40%). IR (KBr cm–1)
3435 (br), 1635, 1433, 1264, 1008, 710. 1H-NMR
(DMSO-d6) δ 3,5 (m, 4H), 3,7 (m, 4H), 7,15
(t, J = 5 Hz, 1H), 7,45 (m, 5H), 7,66 (m, 1H), 7,77 (s, 1H), 8,18
(s, 1H), 8,50 (s, 1H). MS m/e 447,15 (MH+),
Anal. berechnet: C24H19FN4O4·2,5 H2O: C, 58,65; H, 4,92; N, 11,40; Gefunden:
C, 58,85; H, 4,29; N, 11,29.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 aus Intermediat
4 und Tri-n-butyl-(2-benzoxazolyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 6,95 (t, 1H), 7,22 (m, 1H), 7,35–7,45 (m, 9H), 8,00 (s, 1H).
MS m/e 497 (MH+).
-
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- Hergestellt in der gleichen Weise wie Beispiel 1 unter Verwendung
von Bromid-Intermediat 6 und Tri-n-butyl-(2-thianapthenyl)zinn. 1H-NMR (CDCl3) δ 3,5–3,8 (m,
8H), 4,00 (s, 3H), 6,78 (d, 1H), 7,43 (m, 1H), 7,35–7,55 (m,
7H), 7,66 (m, 1H), 7,81 (d, 1H), 7,87 (d, 1H), 8,05 (s, 1H), 9,42
(s, 1H). MS m/e 524,01 (MH+).
-
-
Eine
Mischung von Intermediat 12 (95 mg, 0,23 mmol), NaN3 (47
mg, 0,72 mmol), und NH4Cl (38 mg, 0,71 mmol)
in DMF (2 mL) wurde 12 h bei 85 °C
gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde dann mit HCl (10 Tropfen, 1 N aq.) gequencht,
mit MeOH (2 mL) verdünnt
und einer Aufreinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen, wobei das Tetrazolprodukt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (61 mg, 59%). Trennverfahren: Start %B = 30, Ende
%B = 100, Gradientenzeit = 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 6,16–6,68
min. 1H-NMR (DMSO) δ 12,52 (s, 1H), 8,18 (s, 1H),
7,98 (app dd, J = 8,0; 4,0; 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,31 (app t, J
= 9,3; 1H), 4,35–3,20
(b, m, 8H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 448,
HPLC Rt = 1,223.
-
-
Zu
einer Suspension der Verbindung aus Beispiel 20 (15 mg, 0,034 mmol)
in einer Mischung von MeOH (0,2 mL)/Benzol (0,4 mL) wurde (Trimethylsilyl)diazomethan
(0,04 ml, 0,08 mmol, 2 M in Hexan) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 90 min bei RT gerührt,
dann mit einem Überschuss
Essigsäure
gequencht und unter Vakuum abgedampft. Die Aufreinigung wurde ausgeführt mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC unter Verwendung des Verfahrens: Start %B = 0,
Ende %B = 85, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30ml/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 9,05–9,42
min. Die Position der Methylgruppe am Tetrazol N2 wurde
mittels H-N-HMBC gestützt. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,88 (s,
1H), 8,08 (s, 1H), 7,94 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H), 7,30 (b s, 5H),
6,98 (app t, J = 9,4; 1H), 4,35 (s, 3H), 3,80–3,35 (b, m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 462, HPLC Rt =
1,340.
-
-
Beispiel
zu Schema 20. Zu einer Mischung des Tetrazols, Intermediat 13, (20
mg, 98,4 μmol)
in CH3CN (1 mL) wurde tropfenweise Methylbromacetat
(19 μL,
201 μmol)
und anschließend
K2CO3 (16,3 mg,
118 μmol) gegeben.
Die Mischung wurde 22 h bei RT gerührt und dann unter Vakuum abgedampft.
Der rohe Indolrückstand
wurde dann 21 h bei RT in einer Lösung von Oxalylchlorid in CH2Cl2 (2,5 mL, 2 M)
gerührt.
Nach dem Abdampfen wurde das rohe Indol-3-glyoxylchlarid in THF
(1,0 mL) gelöst,
es wurde ein Überschuss
Chlorwasserstoffsäure
(0,1 mL, 1 N aq. (oder Pyridin, 50 μl) zugegeben und 19 h bei RT
gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde dann mit Wasser (10 mL) verdünnt, unter
Vakuum extrahiert mit EtOAc (40 mL). Der organische Extrakt wurde
mit Wasser (10 mL) gewaschen, getrocknet (MgSO4)
und abgedampft, wobei die rohe Indol-3-glyoxylsäure erhalten wurde (36,6 mg).
Die Glyoxylsäure
wurde in DMF (1 mL) gelöst,
es wurde das Intermediat 19 (35,5 mg, 0,157 mmol), DMAP (21,1 mg,
0,173 mmol), EDC (33,3 mg, 0,174 mmol) und NMM (37 μl, 0,337 mmol)
hinzu gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 20 h bei RT gerührt und
dann mit Wasser verdünnt,
um die Präzipitation
zu induzieren. Das Präzipitat
wurde filtriert, mit Chlorwasserstoffsäure (2 × 2 mL, 1 N aq.), anschließend mit
Wasser gewaschen und eine kurze Zeit im Luftstrom getrocknet. Das
Rohmaterial wurde mittels präparativer
TLC (EtOAc, 2 × 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt, wobei das oben dargestellte Produkt als ein
farbloses Glass erhalten wurde (8,4 mg, 16% (4 Schritte aus Intermediat
13)). 1H-NMR (CDCl3) δ 10,95 (b
s, 1H), 8,22 (d, J = 2,8, 1H), 8,12 (dd, J = 8,3; 4,3; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,12 (app t, 1H), 5,55 (s, 2H), 4,05–3,40 (b m, 8H) 3,87 (s, 3H).
LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 520, HPLC Rt = 1,317.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 22. 1H-NMR (CDCl3) δ 11,04 (b
s, 1H), 8,22 (d, J = 3,1; 1H), 8,10 (dd, J = 8,4, 4,4, 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,12 (dd, J = 10,2; 8,4; 1H), 4,79 (q, J = 7,4; 2H), 4,05–3,40 (b
m, 8H), 1,75 (t, J = 7,4; 3H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
476, HPLC Rt = 1,407.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 22. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,52 (b
s, 1H), 8,05 (dd, J = 8,3; 4,6; 1H), 7,65 (d, J = 2,5, 1H), 7,45
(b s, 5H), 7,00 (dd, J = 10,2; 8,3; 1H), 4,69 (t, J = 7,1; 2H), 4,05–3,35 (b
m, 8H), 2,15 (qt, J = 7,4; 7,1; 2H), 1,04 (t, J = 7,4; 3H), LC/MS
(ES+) m/z (M+H)+ = 490, HPLC Rt =
1,530.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 22. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,97 (b
s, 1H), 8,20 (b s, 1H), 8,09 (b dd, 1H), 7,44–7,40 und (b m, 10H), 7,09
(app t, 1H), 5,87 (s, 2H), 4,00–3,35
(b m, 8H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 538,
HPLC Rt = 1,570.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 22. Die Position der Allylgruppe am Tetrazol-N2 wurde
mittels H-N-HMBC gestützt. 1H-NMR (CDCl3) δ 11,00 (b
s, 1H), 8,22 (d, J = 3,0; 1H), 8,11 (dd, J = 8,0; 4,5; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,12 (app t, 1H), 6,16 (ddt, J = 16,8; 10,5, 6,3; 1H),
5,48 (d, J = 10,5; 1H), 5,47 (d, J = 16,8; 1H), 5,34 (d, J = 6,3;
1H), 4,00–3,35
(b m, 8H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 488,
HPLC Rt = 1,443.
-
-
Zu
der Mischung von Intermediat 12 (498 mg, 1,23 mmol) und Hydroxylaminhydrochlorid (128
mg, 1,85 mmol) in EtOH (10 mL) wurde Triethylamin (0,3 mL, 2,09
mmol) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 36 h bei RT gerührt. Das
Präzipitat
wurde filtriert, mit einem Überschuss
EtOH gewaschen und im Hochvakuum getrocknet, wobei das oben dargestellte
Produkt als ein weißer
Feststoff erhalten wurde. Das Material wurde für weitere Umsetzungen ohne
weitere Aufreinigung verwendet. 1H-NMR (DMSO) δ 11,81 (s,
1H), 9,81 (s, 1H), 8,14 (app d, J = 3,5; 1H), 7,66 (app dd, J =
8,5; 4,0, 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,08 (app t, J = 9,5; 1H), 6,17 (s,
2H), 3,67–3,29
(b m, 8H), LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 438,
HPLC Rt = 0,923.
-
-
Eine
Mischung der Produktverbindung aus Beispiel 27 (45 mg, 0,103 mmol)
und Phosgen (2 mL, 1,04 mmol, 1,92 M in Toluol) in Toluol (3 mL)
wurde 16 h zum Rückfluss
erhitzt, dann mit einem Überschuss
MeOH (1 mL) gequencht und unter Vakuum konzentriert. Die Aufreinigung
wurde ausgeführt
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unter Verwendung des Verfahrens: Start %B = 30,
Ende %B = 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 35ml/min, Säule
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 7,78–8,30
min. 1H-NMR (DMSO) δ 13,23 (s, 1H), 12,26 (s, 1H),
8,13 (app d, J = 3,4; 1H), 7,77 (app dd, J = 8,3; 4,1, 1H), 7,44 (b
s, 5H), 7,30 (app t, J = 9,3; 1H), 3,80–3,30 (b m, 8H), LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 464, HPLC Rt =
1,220.
-
-
Zu
einer Suspension der Produktverbindung aus Beispiel 28 (23 mg, 0,05
mmol) in einer Mischung von MeOH (0,2 mL)/PhH (0,7 mL) wurde (Trimethylsilyl)diazomethan
(0,05 mL, 0,10 mmol, 2 M in Hexan) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 40 min bei RT gerührt,
mit einem Überschuss
Essigsäure
gequencht und unter Vakuum abgedampft. Die Aufreinigung wurde ausgeführt mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC unter Verwendung des Verfahrens: Start %B = 0,
Ende %B = 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 10,48–11,08
min. Die Struktur wurde durch 1H-13C-HMBC-NMR-Untersuchungen gestützt. 1H-NMR
(CDCl3) δ 10,38
(s, 1H), 8,08 (s, 1H), 7,92 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H), 7,33 (b
s, 5H), 7,00 (app dd, J = 9,9, 8,7, 1H), 4,24 (s, 3H), 3,85–3,39 (b
m, 8H). LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 478, HPLC
Rt = 1,433.
-
-
Der
Indolcarboxaldehyd, Intermediat 10, (100 mg, 0,25 mmol) und Hydroxylamin-HCl
(21 mg, 0,3 mmol) wurden in MeOH (2 mL) suspendiert, während tropfenweise
NaOMe (0,6 mL, 0,3 mmol, 0,5 M in MeOH) zugegeben wurde. Die Mischung
wurde bei Raumtemperatur 18 h gerührt, die flüchtigen Lösungsmittel wurden unter Vakuum
entfernt. Das resultierende Gummi wurde mit Wasser aufgeschwemmt
und unter Vakuum in EtOAc extrahiert. Die EtOAc-Schichten wurden
getrocknet (NaCl, MgSO4) und unter Vakuum
konzentriert, wobei ein Gummi erhalten wurde, der mit Ether aufgeschwemmt
wurde. Das resultierende Präzipitat
wurde filtriert und mit frischem Ether gewaschen, wobei das oben
dargestellte Produkt erhalten wurde, (50 mg, 0,12 mmol, 47%), IR
(KBr cm–1)
3354 (br), 1636, 1514, 1433, 1264, 981, 710. 1H-NMR
(DMSO-d6) δ 3,4 (m, 4H), 3,7 (m, 4H), 7,27
(t, J = 5 Hz, 1H), 7,45 (m, 5H), 7,50 (m, 1H), 8,20 (d, J = 1,8
Hz, 1H), 8,55 (s, 1H), 11,39 (s, 1H), 12,10 (br s, 1H). MS m/e 423,1
(MH+).
-
-
Der
Indolcarboxaldehyd, Intermediat 10, (100 mg, 0,25 mmol) und Carboxymethoxylamin-HCl (30 mg, 0,14
mmol, MW = 218,59) wurde in EtOH (2 mL) suspendiert. Die Mischung
wurde 2 h bei Raumtemperatur gerührt,
wobei die LC/MS zu diesem Zeitpunkt aufzeigte, dass die Reaktion
zu 95% abgschlossen war. Die Mischung wurde mit trockenem Ether
verdünnt,
das resultierende Präzipitat
wurde filtriert und mit frischem Ether gewaschen, wobei das Produkt
erhalten wurde (Verbindung der Formel 37, R5 =
CH2CO2H, R2 = F, R1,3,4,6 =
H, Schema 22) (80 mg, 0,17 mmol, 67%). Der Feststoff wurde mit 0,5
M NaOMe in MeOH behandelt, bis die Verbindung vollständig in
Lösung
war (pH ungefähr
8), die flüchtigen
Bestandteile wurden unter Vakuum entfernt, wobei das Produkt als
ein Natriumsalz, oben dargestellt, erhalten wurde. IR (KBr cm–1)
3336 (br), 1628, 1511, 1407, 1266, 927, 710. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 3,4
(m, 4H), 3,7 (m, 4H), 5,04 (s, 1H), 7,30 (t, J = 5 Hz, 1H), 7, 60
(m, 5H), 7,70 (m, 1H), 8,32 (s, 1H), 8,83 (s, 1H), 12,20 (s, 1H),
13,0 (br s, 1H). MS m/e 481 (MH+).
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 20. Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionsammlung: 5,27–6,74min. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,66 & 8,58 (app, s & s, 1H), 8,27
(app, d, J = 5,3; 1H), 7,98 (m, 2H), 7,69 (app, dd, J = 13,3, 8,3,
1H), 7,55 (b m, 1H), 7,19 (m, 1H), 3,98–3,57 (b m, 8 H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 449, HPLC Rt =
1,050.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 20. Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 8,37–8,89
min. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,28
und 8,23 (app s, 1H), 7,96 (b s, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,19 (app
t, J = 8,4, 1H), 4,95–3,05
(b m, 7H), 1,40–1,26
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 462,
HPLC Rt = 1,247.
-
-
- Hergestellt in der gleichen Weise wie die Verbindung aus
Beispiel 20. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 7,55–8,15
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,66–8,54 (m,
1H), 8,30–8,21
(m, 1H), 8,05–7,90
(m, 2H), 7,73–7,66
(m, 1H), 7,60–7,48
(m, 1H), 7,20–7,09
(m, 1H), 4,35–3,12
(b m, 7H), 1,43–1,23
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 463,
HPLC Rt = 1,123.
-
-
Beispiel für Verfahren
1:
-
Zu
einer Mischung aus der Säure,
Intermediat 23, (50 mg, 0,12 mmol), 3-Aminopyridin (45 mg, 0,48 mmol)
und DMAP (58 mg, 0,47 mmol), gelöst
in CH2Cl2 (1 mL),
wurde EDC (90 mg, 0,47 mmol) zugegeben. Die resultierende Mischung
wurde bei RT 12 h geschüttelt
und dann unter Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde in MeOH gelöst und einer
Aufreinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen. Trennverfahren: Start %B = 30, Ende
%B = 80, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 6,57–7,02
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 9,48 (s, 1H),
8,67 (d, J = 8,6; 1H), 8,55 (d, J = 4,8; 1H), 8,22 (s, 1H), 8,06
(dd, J = 8,3, 4,0; 1H), 7,95 (dd, J = 8,5, 5,4; 1H), 7,46 (b, s,
5H), 7,14 (app t, J = 9,2, 1H), 4,00–3,45 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 500, HPLC Rt =
1,130.
-
-
- Hergestellt mittels Verfahren 1 (wie in Beispiel 35) aus
der Säure,
Intermediat 23, (50 mg, 0,12 mmol), und 2-Amino-2-thiazolin (49mg,
0,48mmol). Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 6,99–7,59min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,14 (s,
1H), 8,08 (dd, J = 8,4; 4,5; 1H), 7,42 (b, s, 5H), 7,03 (app t,
J = 9,2; 1H), 3,89 (t, J = 8,0; 2H), 3,44 (t, J = 8,0, 2H), 4,00–3,45 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 508, HPLC
Rt = 1,210.
-
-
- Hergestellt mittels Verfahren 1 (wie in Beispiel 35) aus
dem Säure-Intermediat
23, (50 mg, 0,12 mmol) und 5-Amino-3-methylisoxazol (49 mg, 0,48
mmol). Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 80, Gradientenzeit =
15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30ml/min, Säule: YMC C18 S5 20 × 50 mm,
Fraktionsammlung: 9,00–9,99
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,20 (s,
1H), 7,99 (dd, J = 8,2, 3,9; 1H), 7,46 (b, s, J = 5H), 7,08 (app
t, J = 9,3; 1H), 6,46 (s, 1H), 4,00–3,45 (b m, 8H), 3,31 (s, 3H);
LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 504, HPLC Rt = 1,380.
-
-
- Hergestellt mittels Verfahren 1 (wie in Beispiel 35) aus
der Säure,
Intermediat 23, (50 mg, 0,12 mmol) und 2-Aminopyridin (45 mg, 0,48mmol).
Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 75, Gradientenzeit = 15
min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min, Säule: YMC C18 S5 20 × 50 mm,
Fraktionsammlung: 5,72–6,33
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,44 (d,
J = 3,9; 1H), 8,30–8,24
(m, 2H), 8,10 (app t, J = 3,9; 1H), 8,00 (d, J = 8,6, 1H), 7,53–7,46 (m,
6H), 7,17–7,12
(m, 1H), 4,00–3,45
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 500,
HPLC Rt = 1,143.
-
-
- Hergestellt mittels Verfahren 1 (wie in Beispiel 35) aus
der Säure,
Intermediat 23, (50 mg, 0,12 mmol) und 4-Aminopyridin (45 mg, 0,48
mmol). Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min, Säule: YMCC18
S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 5,65–6,22
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,68 (d,
J = 7,2; 2H), 8,43 (d, J = 7,2; 2H), 8,24 (s, 1H), 8,12 (dd, J =
8,3; 4,1; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,17 (app t, J = 9,2; 1H), 4,00–3,45 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 500, HPLC
Rt = 1,170.
-
-
- (TFA-Solvat) Hergestellt mittels Verfahren 1 (wie in Beispiel
35) aus der Säure,
Intermediat 23, (50 mg, 0,12 mmol) und Benzolsulfonamid (75 mg,
0,48 mmol). Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 90, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionsammlung: 5,95–6,55
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,14 (m,
3H), 7,91 (m, 1H), 7,68 (m, 1H), 7,60 (m, 2H), 7,45 (b m, 5H), 7,07 (app,
t, J = 9,4; 1H), 3,82–3,44
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 563,
HPLC Rt = 1,283.
-
-
Beispiel zu Verfahren
2:
-
Zu
einer Mischung von 2-Aminobenzimidazol (32 mg, 4 Äquivalente,
0,24 mmol) und HOBT (16 mg, 0,12 mmol) in THF (0,5 mL) wurden die
Säure,
Intermediat 23, (25 mg, 0,06 mmol) und NMM (50 μl, 0,45 mmol) und anschließend EDC
(23 mg, 0,12 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 12 h bei
RT geschüttelt. Die
flüchtigen
Bestandteile wurden unter Vakuum abgedampft; der Rückstand
wurde in MeOH gelöst
und einer Aufreinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen. Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 70, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit 30 mL/min, Säule: YMC C18 S5 20 × 50 mm,
Fraktionssammlung: 10,35–10,95
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,28 (s,
1H), 8,15 (m, 1H), 7,68 (dd, J = 6,0; 3,2; 2H), 7,49 (m, 7H), 7,17
(app t, J = 9,1; 1H), 4,00–3,45
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 539,
HPLC Rt = 1,323.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung eines Überschusses
eine Ammoniumchlorid als Ammoniakäquivalent. Trennverfahren:
Start %B = 0, Ende %B = 75, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,41–8,00
min, 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7,83 (dd, J = 8,1; 4,2; 1H), 7,46 (b, s, 5H), 7,04 (app t,
J = 9,1; 1H), 3,95–3,40 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 423, HPLC
Rt = 1,150.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von Dimethylamin als Aminokomponente. Trennverfahren:
Start %B = 0, Ende %B = 80, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,63–7,92
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17 (s, 1H),
7,45 (b, s, 5H), 7,34 (dd, J = 7,8; 4,2; 1H), 7,04 (app t, J = 9,2;
1H), 3,95–3,40
(b m, 8H), 3,16 (s, 3H), 3,08 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 451, HPLC Rt =
1,167.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von N,N-Dimethylethylendiamin
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 75,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 6,82–8,05
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7,78 (dd, J = 8,2; 4,1; 1H), 7,45 (b, s, 5H), 7,04 (app t,
J = 9,3; 1H), 3,95–3,40
(b m, 8H), 3,81 (t, J = 5,6; 2H), 3,42 (t, J = 5,6; 2H), 3,00 (s,
6H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 494, HPLC
Rt = 1,043.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von Benzylamin als Aminokomponente. Trennverfahren:
Start %B = 0, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 mL/min, Säule:
YMCC18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 10,95–12,18
min, 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17 (s, 1H),
7,80 (dd, J = 8,2; 4,1; 1H), 7,44 (b, s, 5H), 7,37 (d, J = 7,5;
2H), 7,33–7,30
(m, 2H), 7,24 (t, J = 7,3; 1H), 7,03 (app t, J = 9,3; 1H), 4,63
(s, 2H), 3,95–3,40
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 513,
HPLC Rt = 1,410.
-
-
Beispiel
zu Verfahren 2. Zu einer Lösung
der Säure,
Intermediat 23, (30,0 mg, 0,071 mmol) in DMF (1 mL) wurden Methoxylaminhydrochlorid
(11,8 mg, 0,14 mmol), HOBT (22,9 mg, 0,17 mmol), EDC (32,5 mg, 0,17
mmol) und anschließend
NMM (42 μl,
0,38 mmol) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 14 h bei RT
gerührt
und dann unter Vakuum abgedampft. Der Rückstand wurde mit Wasser (2
mL) behandelt, wobei ein Präzipitat
erhalten wurde, welches filtriert und mit HCl (2 × 3 mL,
~0,3 N aq.) gewaschen wurde. Das Präzipitat wurde des Weiteren
mit Wasser (2 × 2
mL) gewaschen und im Hochvakuum getrocknet, wobei das oben dargestellte
Produkt als ein schwach rosafarbener Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,19 (s,
1H), 7,64 (b dd, 1H), 7,47 (b, s, 5H), 7, 03 (b t, J = 9,2; 1H),
4,00–3,34
(b m, 8H), 3,85 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
453, HPLC Rt = 1,150.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von Methylamin als Aminokomponente. Trennverfahren:
Start %B = 0, Ende %B = 75, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,90–8,50
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17 (s, 1H),
7,71 (dd, J = 8,1; 4,0; 1H), 7,45 (b, s, 5H), 7,01 (app t, J = 9,2;
1H), 3,95–3,40
(b m, 8H), 2,96 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
437, HPLC Rt = 1,123.
-
Alternativ
kann die Verbindung dieses Beispiels hergestellt werden, wie unten
gezeigt und beschrieben.
-
-
Zu
dem Methylester-Intermediat 22 (60 mg, 0,137 mmol) wurde eine Lösung von
Methylamin in Wasser (1,5 ml, 18 mmol, 40% aq.) gegeben, die resultierende
Mischung wurde 52 h bei RT gerührt.
Verdampfung des Überschusses
an Reagens unter Vakuum ergab das Produkt als einen weißen Feststoff
(58 mg, 97%).
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 3-(2-Aminoethyl)indol
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 09 Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 8,84–9,44
min. 1H-NMR (300M, CD3OD) δ 8,20 (s,
1H), 7,72–7,63
(m, 2H), 7,48 (b, s, 5H), 7,40 (d, J = 7,1; 1H), 7,12–6,96 (m,
4H), 3,95–3,40 (b
m, 8H), 3,74 (t, J = 7,4; 2H), 3,12 (t, J = 7,4; 2H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 566, HPLC Rt =
1,453.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 4-(2-Aminoethyl)-imidazol
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 6,42–7,02
min. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,82 (s,
1H), 8,19 (s, 1H), 7,73 (dd, J = 8,4; 4,3; 1H), 7,48 (b, s, 5H),
7,39 (s, 1H), 7,04 (dd, J = 10,2; 8,5; 1H), 3,77 (t, J = 6,7; 2H),
3,09 (t, J = 6,7; 2H), 3,95–3,40
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 517,
HPLC Rt = 1,083,
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 2-(Aminomethyl)furan
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 90,
Gradientenzeit = 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,42–8,03
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17 (s,
1H), 7,77 (dd, J = 8,1; 4,1; 1H), 7,45 (b, s, 5H), 7,42 (s, 1H),
7,01 (app t, J = 9, 3; 1H), 6,35 (d, J = 3,1; 1H), 6,31 (d, J =
3,1; 1H), 4,60 (s, 2H), 3,95–3,40
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 503,
HPLC Rt = 1,283.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 2-(Aminomethyl)thiophen
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 90,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,21–8,43
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7,76 (dd, J = 7,8; 3,9; 1H), 7,45 (b, s, 5H), 7,27 (d, J =
4,7; 1H), 7,06–7,00
(m, 2H), 6,94 (dd, J = 5,0: 3,6; 1H), 4,78 (s, 2H), 3,95–3,40 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 519, HPLCRt = 1,347.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 4-(2-Aminoethyl)morpholin
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 75,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 6,39–6,99min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7, 78 (dd, J = 8,2; 4,0; 1H), 7,45 (b s, 5H), 7,04 (app t,
J = 9,2, 1H), 4,10–3,20
(b überlappend
m, 16H), 3,84 (t, J = 5,7; 2H), 3,45 (t, J = 5,7, 2H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 536, HPLC Rt =
1,030.
-
-
- Hergestellt entsprechend Verfahren 2 wie in Beispiel 41
unter Verwendung von 2-(Aminomethyl)benzimidazol als
Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B = 10, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionssammlung: 7,73–8,34
min. 1H-NMR (CD3OD) δ8 8,14 (s,
1H), 7,93 (dd, J = 8,2; 4,5; 1H), 7,75–7,71 (m, 2H), 7,58–7,54 (m,
2H) 7,43 (b, s, 5H), 7,08 (app t, J = 8,7; 1H), 5,08 (s, 2H), 3,95–3,40 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 523, HPLC
Rt = 1,153.
-
-
Beispiel zu Verfahren
3:
-
Zu
einer Mischung des Säure-Intermediats
(Verbindung aus Beispiel 23), (20 mg, 0,047 mmol), 5-Aminotetrazol
(4 Äquivalente)
und DEPBT (hergestellt entsprechend Li, H.; Jiang, X.Ye, Y.; Fan,
C.; Todd, R.; Goodman, M., Organic Letters 1999, 1,91; 21 mg, 0,071
mmol) in DMF (0,5 mL) wurde TEA (0,03 mL, 0,22 mmol) gegeben. Die
resultierende Mischung wurde 12 h bei RT geschüttelt, dann wurde sie mit MeOH
(2 mL) verdünnt
und mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC gereinigt. Trennverfahren: Start %B = 0, Ende
%B = 80, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30
mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 8,24–10,09
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,08 (s,
1H), 7,98 (dd, J = 8,2; 4,0; 1H), 7, 32 (b, 5H), 7,01 (app t, J
= 9,3; 1H), 3,95–3,40
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 491,
HPLC Rt = 1,197.
-
-
Beispiel
zu Verfahren 4. Die Verbindungen wurde wie folgt hergestellt: Eine
Mischung eines Säure-Intermediats
(oben dargestellt) (0,047 mmol) und 8,5 mg (0,052 mol) 1,1-Carbonyldiimidazol
in wasserfreiem THF (2 mL) wurde unter Stickstoff zum Rückfluss
erhitzt.
-
Nach
2,5 h wurden 0,052 mmol Amin zugegeben, das Erhitzen wurde fortgesetzt.
Nach einem zusätzlichen
Zeitraum von 3–20
h am Rückfluss
wurde die Reaktionsmischung abgekühlt und unter Vakuum konzentriert.
Der Rückstand
wurde mittels Chromatographie über
Silicagel gereinigt, wobei die in der Tabelle unten dargestellten
Verbindungen der Formel I erhalten wurden.
-
-
-
Zu
einer Mischung von A (Referenz 102, 50 mg, 0,279 mmol) und Methansulfonamid
(32 mg, 0,34 mmol) in CH2Cl2 (1
mL), wurden DMAP (47 mg, 0,385 mmol) und EDC (64 mg, 0,335 mmol)
gegeben. Die resultierende Mischung wurde 17 h bei RT gerührt. Nach
diesem Zeitraum wurde die Mischung mit CH2Cl2 (20 ml) verdünnt, mit Chlorwasserstoffsäure (3 × 20 ml,
1 N, aq.) und anschließend
mit Wasser (30 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4)
und unter Vakuum abgedampft, wobei das Intermediat B als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (66 mg, 92%). 1H-NMR (CD3OD) δ 7,76
(app, dd, J = 8,4; 4,8; 1H), 7,41 (m, 1H), 6,84 (app, dd, J = 9,9; 8,4;
1H), 6,64 (m, 1H), 3,44 (s, 3H).
-
Zu
einer Lösung
von Methylchloroxoacetat (0,04 ml, 0,435 mmol) in CH2Cl2 (2 ml) wurde AlCl3 (52
mg, 0,39 mmol) gegeben. Die resultierende Suspension wurde bei 4 °C 20 min
gerührt,
bevor das Intermediat B (60 mg, 0,234 mmol) zugegeben wurde. Nach
15 h Rühren
bei RT wurde die Reaktion mit Chlorwasserstoffsäure (15 ml, ~5 N, aq.) gequencht
und mit EtOAc (3 × 5
ml) extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden mit
Wasser (30 ml) gewaschen, getrocknet (MgSO4)
und unter Vakuum abgedampft, wobei das Intermediat C als ein bräunliches Öl erhalten
wurde. Das Material wurde ohne weitere Aufreinigung verwendet.
-
Zu
einer Lösung
des Intermediats C in MeOH (0,5 ml) wurde NaOH (0,6 ml, 0,6 mmol,
1 N, aq.) gegeben, die resultierende Mischung wurde 4,5 h bei Rt gerührt.
Die Mischung wurde dann mit Chlorwasserstoffsäure (1 N, aq.) auf pH 3 angesäuert, das
Präzipitat
wurde filtriert. Abdampfen des Filtrats im Hochvakuum ergab das
Intermediat D als einen cremefarbenen Feststoff. Das Material wurde
ohne weitere Aufreinigung verwendet.
-
Zu
einer Lösung
von Intermediat D und Intermediat 19 (47 mg, 0,21 mmol) in CH2Cl2 wurden DMAP (35
mg, 0,286 mmol) und EDC (38 mg, 0,319 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 27,5 h bei RT gerührt
und dann unter Vakuum abgedampft, wobei ein gelbes Öl erhalten
wurde, welches mittels präparativer Umkehrphasen-HPLC
gereinigt wurde unter Verwendung des Verfahrens: Start %B = 30,
Ende %B = 100, Gradientenzeit = 8 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 40 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 4,52–4,98
min, wobei das oben dargestellte Produkt erhalten wurde. 1H-NMR
(300 MHz, CD3OD) δ 8,23 (m, 1H), 7,93 (app, dd,
J = 8,8; 4,4; 1H), 7,48 (b s, 5H), 7,11 (app t, J = 9,7; 1H), 3,90–3,40 (b
m, 8H), 3,44 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
501, HPLC Rt = 1,143.
-
-
Zu
einer Suspension der Säure
(Referenz 102, 30 mg, 0,074 mmol) und Methylsulfonamid (0,296 mmol)
in CH2Cl2 (1 ml)
wurden DMAP (36 mg, 0,295 mmol) und EDC (56 mg, 0,293 mmol) gegeben.
Die resultierende Mischung wurde 16 h bei RT gerührt und dann unter Vakuum abgedampft.
Der Rückstand
wurde in MeOH gelöst
und einer Aufreinigung mittels präparativer Umkehrphasen-HPLC
unterzogen, um das Produkt zu erhalten. Trennverfahren: Start %B
= 0, Ende %B = 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 7,83–9,15
min. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,50 (m,
1H), 8,10 (s, 1H), 7,84 (app, d, J = 6,8, 1H), 7,40 (b m, 6H), 3,90–3,40 (b
m, 8H), 3,38 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
483, HPLC Rt = 1,197.
-
-
Beispiel
zu Schema 25A. Hergestellt wie oben in Beispiel 61 unter Verwendung
von Benzolsulfonamid als Sulfonamidkomponente. Die Aufreinigung
wurde mittels Flash-Chromatographie
unter Verwendung einer Gradientenelution (100% EtOAc, zu 2% bis
10% MeOH/EtOAc), wobei das Produkt als ein weißer Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,30 (m,
1H), 8,06–7,84
(b m, H), 7,53–7,18
(b m, 9H), 3,93–3,33 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 545, HPLC
Rt = 1,387.
-
-
Beispiel
zu Schema 25A. Hergestellt wie oben in Beispiel 61 unter Verwendung
von 3-Aminotetrazol als
Aminkomponente. Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 6,22–6,89
min. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,50 (m,
1H), 8,16 (s, 1H), 8,06 (m, 1H), 7,57–7,27 (b m, 6H), 3,90–3,40 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 473, HPLC
Rt = 1,263.
-
-
Das
rohe Säurechlorid
wurde erhalten, indem man eine Mischung aus der dargestellten Säure und überschüssigem SOCl2 (1,0 mL je 0,03 mmol der Säure) in
Benzol (15 mL) 3 h zum Rückfluss
erhitzte und anschließend
die flüchtigen
Bestandteile abdampfte. Eine Mischung aus dem Säurechlorid (30,0 mg, 0,07 mmol)
und einem Überschuss
an Amin (1,0 mL einer 2 M Lösung
von Methylamin in MeOH) in CH3CN (7,0mL) wurde
10 min bei RT gerührt.
Nach Zugabe eines Überschusses
Pyridin (1,0 mL, 12 mmol) wurde die Mischung über Nacht gerührt und
dann unter Vakuum abgedampft, wobei ein Rückstand erhalten wurde. Der
Rückstand wurde
in MeOH gelöst
und einer Aufreinigung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unterzogen. Trennverfahren: Start %B = 30, Final %B = 80, Gradientenzeit
= 8 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,39
(app b s, 1H), 8,12 und 8,08 (s, 1H), 7,70 (app b s, 1H), 7,44 (b
s, 5H), 7,34 (app b s, 1H), 5,00–3,00 (b m, 7H), 2,97 (s, 3H),
1,38–1,25 (b
m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 433, HPLC
Rt = 1,240.
-
-
- Hergestellt wie oben unter Beispiel 64 beschrieben unter
Verwendung von Dimethylamin als Aminokomponente. Trennverfahren:
Start %B = 40, Ende %B = 100, Gradientenzeit – 8 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,31
(app b s, 1H), 8,12 und 8,07 (s, 1H), 7,60–7,10 (b überlappend m, 7H), 5,10–3,00 (b
m, 7H), 3,30 (s, 3H), 3,00 (s, 3H), 1,36–1,24 (b m, 3H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 447, HPLC Rt =
1,260.
-
-
- Hergestellt wie oben unter Beispiel 64 beschrieben unter
Verwendung von N,N-Diethylethylendiamin
als Aminokomponente. Trennverfahren: Start %B – 30, Ende %B – 80, Gradientenzeit
= 8 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, 300MHz, CD3OD) δ 8,47–8,45 (app
b m, 1– H),
8,15 und 8,12 (s, 1H), 7,82–7,79
(app b d, 1H), 7,47–7,37
(b überlappend m,
6H), 5,00–3,00
(b überlappend
m, 7H), 3,84 (t, J = 9,9; 2H), 3,45 (t, J = 9,9; 2H), 3,33 (q, J
= 12,1; 4H), 1,39 (t, J = 12,1; 6H), 1,10–1,45 (b m überlappend mit t, 3H); LC/MS
(ES+) m/z (M+H)+ = 518, HPLC Rt =
1,147.
-
-
Eine
Mischung des Säurechlorids
(wie in Beispiel 64 gezeigt) (ca. 0,03 mmol) in reinem Ethylamin
(0,5 ml, 7,6 mmol) wurde 2 h bei RT gerührt. Der Überschuss an Amin wurde dann
durch Abdampfen unter Vakuum entfernt, wobei ein Rückstand
erhalten wurde, welcher in MeOH gelöst wurde und einer Aufreinigung
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC
unterzogen wurde. Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 9 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CDCl3) δ 11,10
(b s, 1H), 8,50 (app b s, 1H), 8,052, 8,046 und 8,037 (s, 1H), 7,49–7,34 (b überlappend
m, 6H), 6,49 (b s, 1H), 5,10–2,90
(b m, 7H), 3,59–3,53
(überlappend
q, 2H), 1,50–1,10
(b m überlappend
mit t, 3H), 1,31 (t, J = 7,3; 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 447, HPLC Rt =
1,330.
-
-
- Hergestellt wie oben unter Beispiel 64 beschrieben unter
Verwendung von Monobenzylpiperazin als Aminokomponente. Das Produkt
präzipitierte
aus einer MeOH-Lösung, es
wurde filtriert und mit MeOH gewaschen, wobei eine analytisch reine
Probe erhalten wurde; 1H-NMR (Mischung von
Konformeren, CDCl3) δ 11,7 (b s, 1H), 8,38, (app
b s, 1H), 7,76–7,16
(überlappend
m, 13H), 4,93–2,88
(überlappend
m, 15H), 2,47 (s, 2H), 1,25 (b s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 578, HPLC Rt =
1,210.
-
-
Das
oben dargestellte Produkt wurde als ein unerwartetes Produkt aus
der obigen Reaktion gewonnen. Trennverfahren: Start %B = 30, Ende
%B = 100, Gradientenzeit – 12
min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 mL/min, Säule: YMC C18 S5 20 × 50 mm,
Fraktionssammlung: 4,89–5,42
min. 1H-NMR (300 MHz, CD3OD) δ 8,21 (s,
1H), 7,48 (b s, 10H), 7,39 (app, dd, J = 7,8; 4,3; 1H), 7,06 (app,
t, J = 9,3; 1H), 4,10–3,36
(b m, 16H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 596,
HPLC Rt = 1,330.
-
-
Zu
einer Mischung des Methylesters (Verbindung aus Beispiel 22), (100,0
mg, 0,193 mmol) in MeOH (1,5 mL) wurde NaOH (0,4 mL, 0,4 mmol, 1
N, aq.) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 4 h bei RT gerührt und
dann in einem Stickstoffstrom konzentriert. Der Rückstand
wurde mit einem Überschuss
H2O (~6 mL) verdünnt und mit HCl (1 N, aq.)
auf pH ~1 angesäuert,
um die Präzipitation
zu induzieren. Das Präzipitat wurde
filtriert, mit H2O (3 × 1 mL) gewaschen und im Hochvakuum
getrocknet, wobei das Produkt als ein cremefarbener Feststoff erhalten
wurde (85,7 mg, 88%). 1H-NMR (CD3OD) δ 8,24
(s, 1H), 8,16 (b dd, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,16 (app t, 1H), 5,69
(s, 2H), 4,00–3,45
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 506,
HPLC Rt = 1,320.
-
-
Zu
einer Mischung der Säure
(Verbindung aus Beispiel 70), (19,8 mg, 39,2 mol) in DMF (1,0 mL)
wurden Methylaminhydrochlorid (17,0 mg, 0,252 mmol), HOBT (19,2
mg, 0,142 mmol), EDC (27,2 mg, 0,142 mmol) und NMM (35 μL, 0, 318
mmol) gegeben, die resultierende Mischung wurde 24 h bei RT gerührt. Die flüchtigen
Bestandteile wurden dann im Hochvakuum abgedampft, wobei ein Rückstand,
welcher mit H2O (~5 mL) verdünnt und
mit HCl (1 N, aq.) auf pH ~1 angesäuert wurde. Das Präzipitat
wurde filtriert, mit H2O (1 mL) und dann
HCl (1 mL, 1 N, aq.) gewaschen. Das Rohprodukt wurde mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2, 500
cm × 20
cm × 20
cm Platte) gereinigt, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde. 1H-NMR (CDCl3) δ 11,34 (s,
1H), 8,18 (d, J = 2,4; 1H), 8,09 (dd, J = 8,3; 4,3; 1H), 7,41 (b
s, 5H), 7,09 (app t, 1H), 5,40 (s, 2H), 4,00–3,40 (b m, 8H) 2,85 (s, 3H);
LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 519, HPLC Rt = 1,203.
-
-
Zu
einer Suspension der Säure,
Intermediat 23, (250 mg, 0,590 mmol) in CH2Cl2 (5 mL), wurden DMAP (116 mg, 0,949 mmol),
Aminoacetaldehyddimethylacetal (80 μl, 0,734 mmol) und EDC (136
mg, 1,142 mmol) gegeben, die resultierende Mischung wurde 16 h bei
RT gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde dann mit CH2Cl2 (40 mL) verdünnt, mit HCl (3 × 20 mL,
1 N aq.) und dann mit Wasser (40 mL) gewaschen. Die organische Schicht
wurde getrocknet (MgSO4) und unter Vakuum
abgedampft, wobei das Produkt als blassgelber Feststoff erhalten
wurde (226 mg, Reinheit: 90% HPLC), welcher im nächsten Schritt ohne weitere
Aufreinigung verwendet wurde. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,17
(s, 1H), 7,77 (app t, J = 9,2; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,02 (app dd, J
= 20,4, 11,6; 1H), 4,60 (t, J = 5,3; 1H), 3,97–3,44 (b m, 10H, überlappend
mit Singuletten), 3,55 (s, 3H), 3,54 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 511, HPLC Rt =
1,210.
-
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 72 (75 mg, 0,147 mmol) wurde Eaton-Reagens
(0,5 mL, frisch hergestellt durch 3 h Erhitzen einer Suspension
von Phosphorpentoxid (100 mg, 0,705 mmol) in Methansulfonsäure (1 mL,
0,015 mmol) bei 90 °C)
gegeben. Die resultierende Mischung wurde 10,5 h bei 130 °C gerührt. Nach Abkühlen auf
RT wurde der Reaktionsmischung unter heftigem Rühren Eiswasser (ca. 10 mL)
zugegeben. Der feste Rückstand
wurde filtriert, in einer Mischung von DMF/MeOH gelöst und einer
Aufreinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,03–11,59
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,24 (s,
1H), 8,03 (app s, 1H), 7,95 (app dd, J = 7,6; 4,1; 1H), 7,46 (b
s, 5H), 7,42 (app s, 1H), 7,13 (app t, J = 8,8; 1H), 3,96–3,44 (b
m, 8H); LC/MS(ES+) m/z (M+H)+ = 447, HPLC
Rt = 1,367.
-
-
Intermediat
12, (100 mg, 0,247 mmol) wurde in ein wiederverwendbares abgedichtetes
Rohr gegeben und in einer Lösung
von HCl in Dioxan (3 mL, 4M) gelöst.
Zu der Lösung
wurde EtOH (0,6 mL, 10,4 mmol, rein ("200 proof"), wasserfrei, 99,5+% von Aldrich) gegeben.
Die Reaktionsmischung wurde auf –5 °C gekühlt und unter Rühren 1 h
mit trockenem Chlorwasserstoffgas durchsprudelt. Der Reaktionsbehälter wurde
dann verschlossen und die Reaktionsmischung 17 h bei RT gerührt. Verdampfen
der flüchtigen
Bestandteile unter Vakuum ergab das Produkt als ein gelbes Öl, welches
ohne weitere Aufreinigung verwendet wurde. LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 451, HPLC Rt =
1,093, Reinheit: 91%.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 74 (ca, 0,06 mmol) in EtOH (0,5 mL)
wurde Cyclopropylamin (14 μl,
0,20 mmol) gegeben. Nach 16 h bei RT Rühren wurde die Reaktionsmischung
mit MeOH (2mL) verdünnt
und einer Aufreinigung mittels präparativer HPLC unterzogen unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,44–8,17
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,27 (s,
1H), 7,56 (app dd, J = 8,3; 4,2; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,15 (app
t, J = 9,2; 1H), 3,96–3,35
(b m, 8H), 2,86 (m, 1H), 1,08 (m, 2H), 0,92 (m, 2H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 462, HPLC Rt =
0,983.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 74 (ca. 0,083 mmol) in EtOH (0,5 mL)
wurden 1,2-Phenylendiamin (26,0 mg, 0,24 mmol) und N,N-Diisopropylethylamin
(0,1 mL, 0,574 mmol) gegeben. Nach 16 h Rühren bei 90 °C wurde die
Reaktionsmischung auf RT gekühlt,
mit MeOH (2 mL) vedünnt
und dann einer Aufreinigung mittels präparativer HPLC unterzogen unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,33–11,05
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,33 (s,
1H), 7,90 (app, t, J = 3,8; 1H), 7,76 (app dd, J = 6,0; 3,1; 2H),
7,46 (b s, 7H), 7,23 (app d, J = 9,2; 1H), 3,90–3,44 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 496, HPLC Rt =
1,277.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 74 (ca. 0,166 mmol) in EtOH (0,5 ml)
wurden Hydrazin (20 μl,
0,631 mmol, wasserfrei) und N,N-Diisopropylethylamin (0,1 mL, 0,574
mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 16 h bei RT gerührt. Entfernung
des Lösungsmittels
unter Vakuum ergab das Produkt als ein braunes Öl, welches im nächsten Schritt
ohne weitere Aufreinigung verwendet wurde. LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 437, HPLC Rt =
0,913, Reinheit: 50%.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 77 (ca. 0,083 mmol) in Pyridin (0,5mL)
wurde Acetylchlorid (12 μl,
0,17 mmol) gegeben. Nach 16 h Rühren
bei 110 °C
wurde die Reaktionsmischung auf RT gekühlt, mit MeOH (2 mL) verdünnt und
dann einer Aufreinigung mittels präparativer Umkehrphasen-HPLC
unterzogen unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B
= 80, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 mL/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionsammlung: 8,57–9,17
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,21 (s,
1H), 7,96 (app d, J = 7,9; 1H), 7 46 (b s, 5H), 7,09 (app t, J =
9,0; 1H), 3,98–3,44
(b m, 8H), 2,57 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
461, HPLC Rt = 1,270.
-
-
Eine
Suspension der Verbindung aus Beispiel 27 (32 mg, 0,073 mmol) in
Triethylorthoformiat (0,5 mL, 3,0 mmol) wurde 16 h bei 105 °C gerührt. Nach
Abkühlen
auf RT wurde die Reaktionsmischung zu MeOH (2 mL) gegeben und dann
einer Aufreinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 10, Ende %B = 80, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit =
25 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,49–12,29
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 9,41 (s,
1H), 8, 23 (s, 1H), 8,15 (app t, J = 6,3; 1H), 7, 46 (b s, 5H),
7,17 (app t, J = 9,3; 1H), 3,91–3,44
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 448,
HPLC Rt = 1,387.
-
-
Zu
einer Mischung der Verbindung aus Beispiel 27 (24 mg, 0,055 mmol)
in Pyridin (0,5 mL) wurde Acetylchlorid (9pl, 0,121 mmol) gegeben,
die resultierende Mischung wurde 16 h bei 115 °C gerührt. Nach Abkühlen auf
RT wurde die Reaktionsmischung zu MeOH (2 mL) gegeben und dann einer
Aufreinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 10, Ende %B = 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25mL/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,28–11,08
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,22 (s,
1H), 8,06 (app d, J = 5,0; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,15 (app t, J =
8,6; 1H), 3,87–3,34
(b m, 8H), 2,72 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
462, HPLC Rt = 1,453.
-
-
Eine
Suspension der Verbindung aus Beispiel 27 (100 mg, 0,229 mmol) in
Trichloressigsäureanhydrid (1
mL, 5,48 mmol) wurde 16 h bei 80 °C
gerührt.
Nach Abkühlen
auf RT wurde die Reaktionsmischung in MeOH (20 mL) gegeben und 1
h stehen gelassen. Das Präzipitat
wurde filtriert, mit MeOH (3 × 3
mL) gewaschen und im Hochvakuum getrocknet, wobei das Produkt als
ein weißer
Feststoff erhalten wurde (74 mg, 57%). Alternativ wurde die Reaktionsmischung,
nach Abkühlen
auf RT, vorsichtig in Wasser gegeben und unter Vakuum mit EtOAc
(x3) extrahiert. Die vereinigten organischen Extrakte wurden getrocknet
(MgSO4) und unter Vakuum abgedampft, wobei
ein gelber Rückstand
erhalten wurde, welcher mittels Flash-Chromatographie (Hexan dann
EtOAc/Hexan (50% zu 60% zu 70%)) gereinigt wurde. 1H-NMR
(CDCl3) δ 10,41
(s, 1H), 8,25 (d, J = 3,1; 1H), 8,18 (app dd, J = 8,4; 4,4; 1H),
7,47 (b s, 5H), 7,16 (app t, J = 9,3; 1H), 3,87–3,34 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 565, HPLC Rt =
1,843.
-
-
Zu
einer Mischung der Verbindung aus Beispiel 81 (20 mg, 0,035 mmol)
in DMF (0,5 mL) wurde Cyclopropylamin (0,1 mL, 1,426 mmol) gegeben,
die resultierende Mischung wurde 16 h bei RT gerührt. Chlorwasserstoffsäure (1 N,
aq.) wurde dann langsam zu der Reaktionsmischung gegeben, bis sich
ein Präzipitat
bildete (pH etwa 6). Das Präzipitat
wurde filtriert, drei mal mit Wasser gewaschen und im Hochvakuum
getrocknet, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff erhalten wurde
(11 mg, 62%). 1H-NMR (CDCl3) δ 10,71 (s,
1H), 8,16 (d, J = 3,0; 1H), 7,99 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H), 7,47
(b s, 5H), 7,08 (app t, J = 9,4; 1H), 5,73 (s, 1H), 3,83–3,49 (b
m, 8H), 2,90 (b m, 1H), 0,94 (b m, 2H), 0,77 (b m, 2H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 50,3 HPLC Rt =
1, 513.
-
-
Zu
einer Mischung der Verbindung aus Beispiel 81 (25 mg, 0,044 mmol)
in DMF (0,3 mL) wurde eine gesättigte
Lösung
von Ammoniak in MeOH (0,2 mL) gegeben, die resultierende Mischung
wurde 16 h bei RT gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde zu MeOH (2 mL) gegeben und dann einer
Aufreinigung mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC unterzogen unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 40mL/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,68–8,08
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,61 (s,
1H), 8,17 (d, J = 3,0; 1H), 7,93 (app dd, J = 8,4; 4,4; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,09 (app t, J = 9,7; 1H), 5,52 (s, 2H), 3,97–3,52 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 463, HPLC
Rt = 1,303.
-
-
Zu
einer Mischung aus dem Säurechlorid-Intermediat
26 und Benzoylpiperazinhydrochlorid (24,9 mg, 0,110 mmol) in THF
(2,0 ml) wurde tropfenweise Diisopropylethylamin (0,1 ml, 0,574
mmol) gegeben. Nach 5 Stunden Rühren
wurde die Reaktionsmischung, welche überwiegend die Säure des
Intermediats 26 umfasste, mit EDC (21,1 mg, 0,110 mmol), DMAP (22,4
mg, 0,183 mmol) und DMF (1 ml) versetzt, dann wurde weitere 91 Stunden
gerührt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden in einem Stickstoffstrom abgedampft, dem Rückstand wurde
ein Überschuss
Wasser (etwa 10 ml) zugegeben, um die Präzipitation zu induzieren. Der
cremefarbene Feststoff wurde filtriert, mit Wasser (3 × 3 ml)
gewaschen und im Luftstrom getrocknet. Der rohe Feststoff wurde
mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
1 × 500
m × 20
cm × 20
cm Platte) gereinigt. Das Silicagel der Produktbande wurde von der
Platte entfernt, auf einen Filtriertrichter übertragen und mit 10% MeOH/CH2Cl2, (3 × 5 ml)
gewaschen. Die kombinierten Waschphasen wurden unter Vakuum abgedampft,
wobei das Produkt als ein cremefarbener Feststoff erhalten wurde
(22,7 mg, 46% 2 Schritte), 1H-NMR (CDCl3) δ 13,24
(b s, 1H), 8, 13 (d, J = 2,5; 1H), 7,43 (b s, 5H), 7,25–7,20 (überlappend
m, 4H), 7,03–6,97
(überlappend
m, 2H), 6,90 (s, 1H), 6,81 (d, J = 7,4; 2H), 4,84 (s, 2H), 3,83–3,49 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 536, HPLC
Rt = 1,197.
-
-
Zu
einer Mischung der in Beispiel 84 hergestellten Verbindung (12,0
mg, 22,4, mol) in MeOH (2,0ml) wurde 10% Pd/C (25 mg) gegeben. Nach
24 Stunden Rühren
bei Raumtemperatur wurde die zu 50% umgesetzte (basierend auf LC/MS-Untersuchung)
Reaktionsmischung durch einen Whatman-PDVF-Scheibenfilter (0,45 μm) filtriert.
Der nach Abdampfen des Filtrats erhaltene Rückstand wurde mittels präparativer
TLC (10% MeOH/CH2Cl2,
2 × 500
m × 20
cm × 20
cm Platten) gereinigt. Das Silicagel der Produktbande wurde von
der Platte entfernt, auf einen Filtriertrichter übertragen und mit 10% MeOH/CH2Cl2 (3 × 5 ml)
gewaschen. Die kombinierten Waschphasen wurden unter Vakuum abgedampft,
wobei das Produkt als ein weißer
Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR (CD3OD/CDCl3) δ 8,02 (s,
1H), 7,76 (s, 1H), 7,45–7,30
(überlappend
m, 7H), 6,85 (b s, 1H), 3,90–3,40
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 446,
HPLC Rt = 0,960.
-
-
Ein
ofentrockener 50 ml Kolben wurde mit der Ethylpyrazol-3-carboxylat-Verbindung
Intermediat 29 (149 mg, 0,513 mmol) und 1,2-Dichlorethan befüllt, wobei
eine Lösung
erhalten wurde, zu welcher bei RT tropfenweise reines Oxalylchlorid
(228 μl,
2,56 mmol) mittels einer Spritze gegeben wurde. Die Reaktionsmischung
wurde 2 h bei etwa 85 °C
zum Rückfluss
erhitzt und auf RT gekühlt,
die flüchtigen
Bestandteile wurden unter Vakuum abgedampft, wobei das rohe Indolglyoxylchlorid
erhalten wurde. Zu einer Mischung des Indolglyoxylchlorids in trockenem
THF (10ml) wurde bei RT Benzoylpiperazinhydrochlorid (107 mg, 0,472
mmol) gegeben und dann 10 min gerührt. N,N-Diisopropylethylamin
(447 μl,
2,56 mmol) wurde dann tropfenweise zu der in einem Eis-Wasser-Bad
auf 0 °C
gekühlten
Mischung gegeben, die resultierende Reaktionsmischung wurde 10 min
gerührt
. Die Reaktionsmischung wurde auf RT erwärmt und 1 weitere Stunde gerührt. Nach
Abdampfen unter Vakuum zur teilweisen Entfernung des Lösungsmittels
wurde die rohe Mischung mit MeOH (3ml) versetzt und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei 102 mg leichter Feststoffe erhalten
wurden. Umkristallisation der Feststoffe aus heißem MeOH ergab nach Trocknung
das Produkt als (50 mg, 19%) weißen Feststoff. 1H-NMR
(CD3OD) δ 8,21
(s, 1H), 7,68–7,74
(m, 1H), 7,41–7,54
(b s, 5H), 7,36 (s, 1h), 7,06 (m, 1H), 4,42 (q, J = 7,1; 2H), 3,45–4,0 (b
m, 8H) 1,42 (t, J = 7,2; 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
518, HPLC (0,2% H3PO4-Puffer,
Gradientenzeit = 8 min, Durchflussgeschwindigkeit = 2,5 ml/min)
Rt = 6,20.
-
-
Ein
ofentrockener 20 ml Kolben wurde mit der Ethylisoxazol-3-carboxylat-Verbindung
Intermediat 30 (56 mg, 0,204 mmol) und wasserfreiem 1,2-Dichlorethan
(3 ml) befüllt.
Die Mischung wurde 5 min bei RT gerührt, mit Oxalylchlorid (89 μl, 1,02 mmol)
versetzt und dann bei etwa 85 °C
3 h zum Rückfluss
erhitzt. Nach Abkühlen
auf RT wurden die flüchtigen
Bestandteile unter Vakuum abgedampft, wobei das rohe Indolglyoxylchlorid
erhalten wurde. Zu einer Mischung des Indolglyoxylchlorids (40,8
mg, 0,112 mmol) in trockenem THF (4 ml) wurde bei RT Benzoylpiperazinhydrochlorid
(23,4 mg, 0,103 mmol) gegeben und dann 5 min gerührt. N,N-Diisopropylethylamin
(98 ml, 0,56 mmol) wurde dann tropfenweise zu der in einem Eis-Wasser-Bad
auf 0 °C
gekühlten
Mischung gegeben, die resultierende Reaktionsmischung wurde 5 min
gerührt.
Die Reaktionsmischung wurde auf RT erwärmt und eine weitere Stunde
gerührt.
Nach Abdampfen unter Vakuum zur teilweisen Entfernung des Lösungsmittels
wurde die rohe Mischung mit MeOH (3 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei 28 mg eines leicht gelben Feststoffs erhalten wurde.
Umkristallisation des Feststoffs aus heißem MeOH ergab das Produkt
(17 mg, 16%) als einen weißen
Feststoff. 1H-NMR (DMF-d7, δ = 8,22 ppm)
13,08 (s, 1H), 8,65 (d, J = 3,5; 1H), 8,3 (verdeckt s, 1H), 7,82
(s, 1H), 7,68 (b s, 5H), 7,48 (t, J = 9,5; 1H), 4,67 (q, J = 7,2;
2H), 3,31–4,17
(b s, 8H), 1,59 (t, J = 7,5; 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 519, HPLC (0,2% H3PO4-Puffer, Gradientenzeit = 4 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 2 ml/min) Rt = 4,147.
-
-
Zu
einer Mischung der in Beispiel 86 hergestellten Verbindung (75 mg,
0,145 mmol) in EtOH (5 ml) wurde bei RT NaOH (0,145 ml, 1,45 mmol,
10 N, aq) gegeben und die Reaktionsmischung 7 h bei RT gerührt. Die
Reaktionsmischung wurde dann mit 10 N Chlorwasserstoffsäure neutralisiert,
das Rohprodukt wurde mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei das Produkt (35,3 mg, 50%) als
hellgelber Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(CD3OD) δ 8,14
(s, 1H), 7,59–7,7,66
(m, 1H), 7,32–7,48
(b s, 5H), 7,26 (s, 1H), 7,00 (app t, J = 9,5; 1H), 3,35–3,95 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 490, HPLC
(0,2% H3PO4-Puffer,
Gradientenzeit = 4 min, Durchflussgeschwindigkeit = 2 ml/min) Rt = 3,987.
-
Diese
Hydrolyse wurde auch in MeOH unter Verwendung von 5 Äquivalenten
NaOH (1 N, aq.) ausgeführt.
-
-
In
ein 2 ml Fläschchen
wurde die in Beispiel 86 hergestellte Verbindung (10 mg, 0,0193
mmol) und ein Überschuss
MeNH2 (2 ml, 40% in H2O)
gegeben, die Reaktionsmischung wurde 2 h bei RT gerührt. Das
Rohprodukt wurde dann mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei das Produkt erhalten wurde (5,2 mg, 54%). 1H-NMR (CD3OD) δ 8,14 (s,
1H), 7,54 (dd, J = 4,2; 8,1; 1H), 7,31–7,48 (b s, 5H), 7,12 (s, 1H), 6,90
(überlappend
dd, J = 8,5; 10,2; 1H), 3,20–3,95
(b m, 8H), 2,88 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
503, HPLC (0,2% H3PO4-Puffer,
Gradientenzeit = 4 min, Durchflussgeschwindigkeit = 2 ml/min) Rt = 3,837.
-
-
Zu
einer Mischung der in Beispiel 87 hergestellten Verbindung (45 mg,
0,087 mmol) in EtOH (3 ml) wurde bei RT NaOH (0,09 ml, 0,87 mmol,
10 N, aq.) gegeben, die Reaktionsmischung wurde 7 h gerührt. Die Reaktionsmischung
wurde dann mit 10 N Chlorwasserstoffsäure neutralisiert, das Rohprodukt
wurde mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei das Produkt (28,5 mg, 67%) als
ein leicht grauer Feststoff erhalten wurde. 1H-NMR
(CD3OD) δ 8,23
(s, 1H), 7,84 (dd, J = 4,1; 8,5; 1H), 7,38–7,57 (b s, 5H), 7,29 (s, 1H), 7,15
(app t, J = 9,3; 1H), 3,45–3,98
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 491,
HPLC (0,2% H3PO4-Puffer, Gradientenzeit
= 4 min, Durchflussgeschwindigkeit = 2 ml/min) Rt =
4,013.
-
-
Beispiel 91
-
Zu
dem Carbonsäure-Intermediat
23 (300 mg, 0,71 mmol) in CH2Cl2 (10
ml) wurden tert-Butylcarbazat (140
mg, 1,06 mmol), DMAP (130 mg, 1,06 mmol) und EDC (203 mg, 1,06 mmol)
gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur
gerührt.
Nach Verdünnung
mit CH2Cl2 (40ml)
wurde die organische Mischung mit Chlorwasserstoffsäure (60
ml, 1 N) und Wasser (40 ml) gewaschen. Abdampfen unter Vakuum ergab
einen gelben Feststoff, welcher mittels Flash-Chromatographie unter
Verwendung einer Gradientenelution (Hexan zu 50% EtOAc/Hexan zu
EtOAc) gereinigt wurde, wobei das gewünschte Produkt als ein blassgelber
Feststoff erhalten wurde (300 mg, 79%). 1H-NMR
(CD3OD) δ 8,18
(s, H), 7,80 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,04 (app t, J = 8,9; 1H),
3,85–3,51
(b m, 8H), 1,51 (s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
538, HPLC Rt = 1,343 min.
-
Beispiel 92
-
Zu
der in Beispiel 91 hergestellten Verbindung (300 mg, 0,558 mmol)
wurde eine Lösung
von HCl in Dioxan (3 ml, 12,0 mmol, 4 M) gegeben, die Mischung wurde
4 Stunden bei Raumtemperatur gerührt.
Entfernung des Überschusses
an Reagens unter Vakuum ergab das Hydrochloridsalz aus Beispiel
92 als einen gelben Feststoff (100% Umwandlung). 1H-NMR:
(CD3OD) δ 8,21
(s, 1H), 7,81 (app, dd, J = 8,4; 4,0; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,12
(app, t, J = 9,2; 1H), 3,95–3,49
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 438,
HPLC Rt = 1,023 min.
-
Beispiel 93
-
Zu
der in Beispiel 92 hergestellten Verbindung (18 mg) wurde Triethylorthoformiat
(0,5 ml, 3,01 mmol) gegeben, die resultierende Suspension wurde
16 Stunden bei 105 °C
gerührt.
Nach Abkühlen
auf Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung mit MeOH (5 ml) versetzt
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 30, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 20 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 11,00–11,60
min. 1H-NMR: (DMSO) δ 12,56 (s, 1H), 9,48 (s, 1H),
8,18 (app d, J = 3,0; 1H), 7,97 (app dd, J = 8,3; 4,3; 1H), 7,44 (b
s, 5H), 7,29 (app t, J = 9,3; 1H), 3,69–3,20 (b, m, überlappend
mit dem Lösungsmittel-Peak,
8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 448, HPLC
Rt = 1,317 min.
-
Beispiel 94
-
Zu
der in Beispiel 92 hergestellten Verbindung (15 mg) in Dioxan (0,5
ml) wurde eine Lösung
von Cyanbromid in Acetonitril (0,1 ml, 0,5 mmol, 5,0 M) und eine
gesättigte
wässrige
Lösung
von NaHCO3 (0,1 ml) gegeben. Die resultierende
Reaktionsmischung wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Die
Reaktionsmischung wurde dann mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 18 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 30 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,42–12,03
min, 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,65 (s,
1H), 8,22 (s, 1H), 7,67 (app dd, J = 8,0; 4,1; 1H), 7,47 (b s, 5H),
7,10 (app t, J = 9,3; 1H), 6,83 (b s, 2H), 3,98–3,47 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 463, HPLC Rt =
1,273 min.
-
Beispiel 95
-
Eins
Lösung
der Verbindung aus Beispiel 92 (100 mg, 0,211 mmol) in EtOAc (50
ml) wurde mit gesättigter
wässriger
NaHCO3-Lösung
(2 × 25
ml) und Wasser (1 × 50
ml) gewaschen. Nach Trocknung über MgSO4, Filtration, Abdampfen unter Vakuum und
weiterem Trocknen im Hochvakuum, wurde zu dem resultierenden gelben
Feststoff eine Lösung
von Phosgen in Toluol (5 ml, 1,92 M) gegeben. Die Mischung wurde
16 Stunden bei 110 °C
gerührt,
dann auf Raumtemperatur gekühlt
und vorsichtig mit MeOH (5 ml) versetzt. Nach Entfernung des Lösungsmittels
unter Vakuum wurde der Rückstand
in MeOH (10 ml) gelöst
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 35, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 6,66–7,23
min. 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,85 (s,
1H), 12,17 (s, 1H), 8,14 (app d, J = 3,4; 1H), 7,73 (app dd, J =
8,3; 4,1; 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,22 (app t, J = 9,4; 1H), 3,80–3,30 (b
m, überlappend
mit Lösungsmittel-Peak,
8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 464, HPLC
Rt = 1,380 min.
-
-
Zu
einer Suspension der in Beispiel 83 hergestellten Verbindung (50
mg, 0,108 mmol) in Toluol (1,0 ml) wurde Essigsäureanhydrid (0,5 ml, 5,30 mmol)
gegeben. Die resultierende Suspension wurde 20 Stunden bei 110 °C gerührt. Nach
Abkühlen
auf Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung filtriert, der erhaltene feste
Rückstand
wurde mit MeOH (30 ml) gewaschen, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (27 mg, 50%). 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,36
(s, 1H), 12,16 (s, 1H), 8, 16 (app d, J = 3,0; 1H), 7,95 (app dd, J
= 8,3; 4,7; 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,26 (app t, J = 9,3; 1H), 3,69–3,20 (b
m, 8H), 2,24 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
505, HPLC Rt = 1,347 min.
-
-
Zu
der in Beispiel 27 hergestellten Verbindung (15 mg, 80% rein, 0,027
mmol) wurde Chloracetylchlorid (0,5 ml, 6,28 mmol) gegeben. Die
resultierende Mischung wurde 16 Stunden bei 50 °C gerührt. Nach Abkühlen auf
Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung mit MeOH (4 ml) versetzt
und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 25, Ende %B
= 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,82–12,34
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,56 (s,
1H), 8,22 (app d, J = 3,0; 1H), 8,11 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H),
7,47 (b s, 5H), 7,13 (app t, J = 9,3; 1H), 4,8 (s, 2H), 3,98–3,50 (b,
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 496, HPLC
Rt = 1,507 min.
-
-
Beispiel 98
-
Zu
einer Lösung
der in Beispiel 27 hergestellten Verbindung (100 mg, etwa 80% rein,
0,18 mmol) in Pyridin (1 ml) wurde Methylmalonylchlorid (0,5 ml,
4,66 mmol) gegeben. Die resultierende Reaktionsmischung wurde 16
Stunden bei 50 °C
gerührt,
dann bei 80 °C
weitere 16 Stunden zur vollständigen
Umsetzung. Nach Abkühlen
auf Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung mit MeOH (4 ml) versetzt
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 18 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 35 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 13,67–14,18
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,61 (s,
1H), 8,21 (app d, J = 3,0; 1H), 8,10 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H),
7,43 (b s, 5H), 7,12 (app t, J = 9,4; 1H), 4,14 (s, 2H), 3,83 (s,
3H, überlappend
mit b m), 3,98–3,52
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 520,
HPLC Rt = 1,407 min.
-
Beispiel 99
-
Zu
der in Beispiel 98 hergestellten Verbindung (10 mg, 0,019 mmol)
wurde eine Lösung
Mthylamin in Wasser (0,5 ml, 40%) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Die Reaktionsmischung
wurde mit MeOH (2 ml) verdünnt
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 25, Ende %B = 90, Gradientenzeit = 20 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 35 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 3 × 100
mm, Fraktionsammlung: 11,74–12,24
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,5 (s,
1H), 8,21 (s, 1H), 8,08 (app dd, J = 8,2; 4,4; 1H), 7,43 (b s, 5H),
7,13 (app t, J = 9,3; 1H), 6,69 (b s, 1H), 4,03 (s, 2H), 3,94–3,61 (b
m, 8H), 2,94 (J = 4,8; 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
519, HPLC Rt = 1,283 min.
-
Beispiel 100
-
Zu
einer Lösung
der in Beispiel 98 hergestellten Verbindung (20 mg, 0 038 mmol)
in MeOH (0,5 ml) wurde eine wässrige
Lösung
von NaOH (0,5 ml, 1 N) gegeben. Die resultierende Mischung wurde
3 Stunden bei Raumtemperatur gerührt.
Nach Ansäuern
auf pH etwa 2 unter Verwendung von Chlorwasserstoffsäure wurde
die Reaktionsmischungwur mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Ende %B = Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 35 ml/min, Säule:
YMC C130 × 100
mm, Fraktionsammlung: 12,45–12,95
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,23 (s,
1H), 8,11 (app dd, J = 7,7; 4,3; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,16 (app
t, J = 8,6; 1H), 4,22 (s, 2H), 3,87–3,44 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 506, HPLC Rt =
1,340 min.
-
-
Beispiel 101
-
Zu
einer Lösung
der in Beispiel 27 hergestellten Verbindung (500 mg, etwa 80% rein,
0,91 mmol) in Pyridin (8 ml), wurde Methylchloroxoacetat (2,0 ml,
21,7 mmol) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 16 Stunden
bei Raumtemperatur gerührt.
Zugabe von MeOH (5 ml) und Abdampfen unter Vakuum ergab ein bräunliches Öl, welches
mittels Flash-Chromatographie
unter Verwendung einer Gradientelution (Hexan zu 20% zu 50% zu 80%
EtOAc/Hexan zu EtOAc) gereinigt, wobei das gewünschte Produkt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde (188 mg, 41%). 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,54
(s, 1H), 8,23 (app d, J = 3,0; 1H), 8,20 (app dd, J = 8,4; 4,4;
1H), 7,43 (b s, 5H), 7,15 (app t, J = 9,3; 1H), 4,16 (s, 3H), 3,88–3,49 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 506, HPLC
Rt = 1,507 min.
-
Beispiel 102
-
Zu
der in Beispiel 101 hergestellten Verbindung (15 mg, 0,030 mmol)
wurde eine Lösung
von Methylamin in Wasser (1,0 ml, 40%) gegeben. Die resultierende
Mischung wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Konzentration unter
Vakuum wurde der Rückstand
mittels Flash-Chromatographie unter Verwendung einer Gradientenelution
(Hexan zu 10% zu 50% zu 80% EtOAc/Hexan zu EtOAc) gereinigt, wobei ein
gelber Feststoff erhalten wurde. Der Feststoff wurde mit MeOH (3
ml) gewaschen, wobei das gewünschte Produkt
als ein weißer
Feststoff erhalten wurde (4,1 mg, 27%). 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,51
(s, 1H), 8,22 (app d, J = 3,0; 1H), 8,09 (app dd, J = 8,3; 4,4;
1H), 7,43 (b s, 5H), 7,23 (m, 1H, überlappend mit dem Lösungsmittel-Peak),
7,14 (app t, J = 9,2; 1H), 3,88–3,49
(b m, 8H), 3,13 (d, J = 5,1; 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 505, HPLC Rt =
1,423 min.
-
-
Eine
Mischung der in Beispiel 101 hergestellten Verbindung (25,0 mg,
49,5 mol) in THF (2,0 ml) wurde in einem wiederverwendbaren abgedichteten
Rohr auf 0 °C
gekühlt
und etwa 5 min mit Ammoniumgas durchsprudelt. Das abgedichtete Rohr
wurde fest verschlossen, die Reaktionsmischung wurde 3,5 Stunden
bei Raumtemperatur gerührt.
Nach diesem Zeitraum wurden die flüchtigen Bestandteile in einem
Stickstoffstrom abgedampft, es wurde Wasser zu dem Rückstand
gegeben. Der gebildete weiße
Feststoff wurde filtriert, mit Wasser (1 ml) und MeOH (2 × 0,5 ml)
gewaschen, und getrocknet, wobei ein weißer Feststoff erhalten wurde (20,4
mg, 84%). 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,4 (s,
1H), 8,96 (s, 1H), 8,56 (s, 1H), 8,24 (d, J = 3,0; 1H), 8,09 (dd, J
= 4,5; 8,5; 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,30 (app t, 1H), 3,85–3,30 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 491, HPLC Rt = 1,363.
-
-
Zu
einer Mischung der Säure,
bei welcher es sich um das Produkt aus Beispiel 70 handelt, (130,1
mg, 0,257 mmol) in DMF (2,5 ml) wurden Ammoniumchlorid (57,2 mg,
1,07 mmol), HOBT (169,7 mg, 1,26 mmol), EDC (241,0 mg, 1,26 mmol)
und NMM (0,3 ml, 2,73 mmol) gegeben, die resultierende Mischung
wurde 24 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Die flüchtigen Bestandteile wurden
dann im Hochvakuum abgedampft, wobei ein Rückstand erhalten wurde, welcher
mit H2O (~5 ml) verdünnt und mit HCl (1 N, aq.)
auf pH ~1 angesäuert
wurde. Die wässrige
Lösung
wurde dekantiert, der Rückstand
wurde mit HCl (3 × 2
ml, 1 N, aq.) gewaschen und im Hochvakuum getrocknet. Der getrocknete
Rückstand
wurde dann mit einer minimalen Menge MeOH (1,5 ml) versetzt, um
die Präzipitation
zu induzieren. Das Präzipitat
wurde filtriert und aufeinander folgend mit MeOH (0,5ml), H2O (2 × 1
ml), HCl (2 × 1
ml, 1 N, aq.) und MeOH (3 × 0,5
ml) gewaschen, wobei das Produkt als ein leicht beiger Feststoff
erhalten wurde (54,2 mg, 42%). 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25
(s, 1H), 8,15 (dd, J = 4,4; 8,0; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,16 (app
t, 1H), 5,59 (s, 2H), 3,89–3,54
(b m, 8H); LC/MS:(ES+) m/z (M+H)+ = 505,
HPLC Rt = 1,113.
-
-
Die
Produkte aus den Beispielen 105A, 106A, und 107A, und deren ortho-
und para-Isomere wurden analog zu denjenigen aus den Beispielen
22, 70 bzw. 104 hergestellt. Das entsprechende Benzylbromid wurde durch
Bromierung von Methyltoluat unter Verwendung von NBS/Benzoylperoxid
in CCl4 hergestellt.
-
Beispiel 105A
-
- 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,95 (b
s, 1H), 8,21 (d, J = 2,9; 1H), 8,17 (s, 1H), 8,11–8,07 (überlappend
m, 2H), 7,64 (d, J = 7,8; 1H), 7,51 (t, J = 7,7; 1H), 7,43 (b s,
5H), 7,11 (app t, 1H), 5,92 (s, 2H), 4,00–3,45 (b m, 8H), 3,94 (s, 3H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 596, HPLC Rt = 1,703.
-
Beispiel 106A
-
- 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,24 (s,
1H), 8,14 (s, 1H), 8,12 (m, 1H), 8,03 (d, J = 7,7; 1H), 7,71 (d,
J = 7,9; 1H), 7,53 (t, J = 7,7; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,14 (app t,
1H), 6,07 (s, 2H), 4,00–3,45
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 582,
HPLC Rt = 1,627.
-
Beispiel 107a
-
- 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,24 (s,
1H), 8,11 (m, 1H), 8,01 (s, 1H), 7,88 (d, J = 7,7; 1H), 7,67 (d,
J = 7,6; 1H), 7,52 (t, J = 7,8, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,14 (app t,
1H), 6,06 (s, 2H), 3,95–3,45
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 581,
HPLC Rt = 1,463.
-
-
Beispiel 105B
-
- 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,95 (b
s, 1H), 8, 21 (d, J = 3,1; 1H), 8,11–8,10 (überlappend m, 2H), 7,58–7,45 (m,
2H), 7,43 (b s, 5H), 7,10 (überlappend
m, 2H), 6,38 (s, 2H), 3,96–3,50
(b m, 8H), 3,97 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
596, HPLC Rt = 1,707.
-
Beispiel 106B
-
- 1H-NMR : (CD3OD) δ 8,13 (s,
1H), 8,08–8,04
(überlappend
m, 2H), 7,50–7,30
(m überlappend
mit b s, 7H), 7,08 (d, J = 7,7; 1H), 7,04 (app t, 1H), 6,34 (s,
2H), 4,00–3,40
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 582,
HPLC Rt = 1,627.
-
Beispiel 107B
-
- 1H-NMR: (CD3OD/CDCl3) δ 8,17
(s, 1H), 8,07 (dd, J = 8,3; 4,4; 1H), 7,60 (d, J = 7,2; 1H), 7,48–7,38 (m überlappend
mit b s, 7H), 7,30 (d, J = 7,2; 1H), 7,05 (b dd, 1H), 6,20 (s, 2H),
3,95–3,40
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 581,
HPLC Rt = 1,470.
-
-
Beispiel 105C
-
- 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,95 (b
s, 1H), 8,21 (d, J = 3,0; 1H), 8,10–8,07 (m überlappend d; 1H), 8,08 (d,
J = 8,3; 2H), 7,49 (d, J = 8,3; 2H), 7,43 (b s, 5H), 7,10 (app t,
1H), 5,93 (s, 2H), 4,00–3,45
(b m, 8H), 3,92 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
596, HPLC Rt = 1,643.
-
Beispiel 106C
-
- 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 13,09 (b
s, 1H), 12,35 (b s, 1H), 8,18 (d, J = 3,2; 1H), 8,05 (b m, 1H),
7,98 (d, J = 8,1; 2H), 7,55 (d, J = 8,1; 2H), 7,44 (b m, 5H), 7,25
(app t, 1H), 6,20 (s, 2H), 3,80–3,25
(b m, 8H); LC/MS:(ES+) m/z (M+H)+ = 582,
HPLC Rt 1,530.
-
Beispiel 107C
-
- 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,23 (s,
1H), 8,09 (dd, J = 8,0; 4,3; 1H), 7,90 (d, J = 8,3; 2H), 7,55 (d,
J = 8,3; 2H), 7,46 (b m, 5H), 7,12 (app t, 1H), 6,06 (s, 2H), 4,00–3,45 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 581, HPLC
Rt = 1,380.
-
-
Die
Produkte aus Beispiel 108 und Beispiel 109 wurden analog zu dem
Produkt aus Beispiel 22 hergestellt.
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Beispiel 108
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- 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,89 (b
s, 1H), 8,24 (d, J = 3,1; 1H), 8,17 (dd, J = 4,4; 8,3; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,14 (app t, 1H), 6,59 (s, 2H), 4,00–3,45 (b m, 8H), 2,21 (s, 3H);
LC/MS:(ES+) m/z (M+H)+ = 520, HPLC Rt = 1,497.
-
Beispiel 109
-
- 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,90 (b
s, 1H), 8,24 (d, J = 3,1; 1H), 8,17 (dd, J – 4,3; 8,3; 1H), 7,43 (b s,
5H), 7,14 (app t; 1H), 6,59 (s, 2H), 4,00–3,45 (b m, 8H), 1,24 (s, 9H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 562, HPLC Rt = 1,683.
-
-
Beispiel 110A
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Zu
der Verbindung aus Beispiel 74 (roh, 0,495 mmol) in EtOH (2 ml,
rein ("200 proof"), wasserfrei, 99,5+%
von Aldrich) wurde tert-Butylcarbazat (196 mg, 1,485 mmol) gegeben.
Die resultierende Mischung wurde 3 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Die
Reaktionsmischung wurde dann mit MeOH (4 ml) versetzt und mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 25, Ende %B
= 90, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100 mm, Fraktionssammlung:
6,61–7,34
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,33 (s,
1H), 7,65 (app dd, J = 7,8; 3,9; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,21 (app
t, J = 9,3; 1H), 3,97–3,40
(b m, 8H), 1,56 (s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
537, HPLC Rt= 1,170 min, Fraktionssammlung
von 11,62–12,43
min ergab die Verbindung aus Beispiel 110B. LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 652, HPLC Rt =
1,417.
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-
Beispiel 111
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 110A (16 mg, 0,030 mmol) wurde Triethylorthoformiat
(1 ml) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 16 Stunden auf
110 °C erhitzt.
Nach Abkühlung
auf Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung in MeOH (2 ml) gelöst und mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 15, Ende %B = 75, Gradientenzeit = 16 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,72–11,52
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,16 (b
s, 1H), 8,39 (s, 1H), 8,12 (s, 1H), 7,87 (app dd, J = 8,0; 4,1;
1H), 7,44 (b s, 5H), 7,01 (app t, J = 9,4; 1H), 3,98–3,51 (b,
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 447, HPLC
Rt = 1,257 min.
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Alternativ
wurde die Verbindung aus Beispiel 111 direkt aus der Verbindung
aus Beispiel 74 mittels des folgenden Verfahrens hergestellt: Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 74 (100 mg, 0,205 mmol) in EtOH (2 ml)
wurde N,N-Diisopropylethylamin (0,1 ml, 0,57 mmol) und Ameisensäurehydrazid
(57 mg, 0,95 mmol) gegeben. Die resultierende Mischung wurde 16
Stunden auf 60 °C
erhitzt. Nach Abkühlung
auf Raumtemperatur wurde die Reaktionsmischung in MeOH (4 ml) gelöst und mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC unter Verwendung des gleichen Verfahrens wie oben
gereinigt.
-
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Die
Verbindung aus Beispiel 112 wurde durch Reduktion der Verbindung
aus Beispiel 22 unter Verwendung von NaBH4 in
EtOH/THF (1:2) bei RT hergestellt. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,30
9b s, 1H), 8,01 (b m, 1H), 7,47–7,32
(b m, 6H), 6,97 (b m, 1H), 5,84 (b s, 1H), 4,88 (t, J = 5,0; 2H),
4,29 (t, J = 5,0; 2H), 4,00–3,00
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 492,
HPLC Rt = 1,250.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 113 wurde analog zu der Verbindung aus Beispiel
22 hergestellt. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,96 (b
s, 1H), 8,21 (d, J = 3,2; 1H), 7,97 (dd, J = 8,4; 4,4; 1H), 7,85–7,80 (überlappend
m, 2H), 7,76–7,72
(überlappend
m, 2H), 7,43 (b s, 5H), 7,06 (dd, J = 10,2; 8,4; 1H), 5,08 (t, J
= 5,6, 2H), 4,40 (t, J = 5,6; 2H), 4,05–3,40 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 621, HPLC Rt =
1,557.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 114 wurde analog zu der Verbindung aus Beispiel
22 hergestellt. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 (s,
1H), 8,13 (b dd, 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,16 (b app t, 1H), 4,87 (verdeckt
t, 2H), 4,00–3,45
(b m, 8H), 3,20 (t, J = 6,4; 2H), 2,62 (q, J = 7,1; 4H), 1,00 (t,
J = 7,1; 6H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
547, HPLC Rt = 1,143.
-
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Die
Verbindung aus Beispiel 115 wurde analog zu der Verbindung aus Beispiel
22 hergestellt. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,98 (b
s, 1H), 8,22 (d, J = 3,0; 1H), 8,09 (dd, J = 8,3; 4,4; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,13 (app t, 1H), 4,92 (t, J = 6,4; 2H), 4,00–3,40 (b
m, 8H), 2,59–2,48
(überlappend
m, 4H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 515, HPLC Rt = 1,350.
-
-
Zu
einer Mischung des Intermediats 34a (ca. 0,149 mmol) und des Hydrochloridsalzes
des Intermediats 19 (52,0 mg, 0,229 mmol) in THF (1,0 ml) wurde
NMM (0,1 ml, 0,910 mmol) gegeben, die resultierende Mischung wurde
22 h bei RT gerührt.
Der Mischung wurde dann Intermediat 19 (43,0 mg, 0,190 mmol), DMAP (30,4
mg, 0,249 mmol), EDC (48,0 mg, 0, 250 mmol), NMM (0,1 ml, 0,910
mmol) und DMF (1,5 ml) zugegeben, es wurde weitere 24 Stunden zur
vollständigen
Umsetzung gerührt.
Die flüchtigen
Bestandteile wurden dann abgedampft, wobei ein Rückstand erhalten wurde, welcher
mit einem Überschuss
H2O verdünnt
wurde und mit HCl (1 N, aq.) auf pH ~1 angesäuert wurde. Das Präzipitat
wurde filtriert und mit H2O (2ml) gewaschen,
und getrocknet. Der rohe Feststoff wurde mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
zwei 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt, wobei das Produkt aus Beispiel 116 erhalten
wurde. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,47 (b
s, 1H), 8,15 (d, J = 3,1; 1H), 8,09 (d, J = 2,5; 1H), 7,80 (d, J
= 1,8; 1H), 7,43 (b s, 5H), 7,33 (dd, J = 8,6; 3,5; 1H), 7,01 (app
t; 1H), 6,55 (t, J = 2,2; 1H), 4,10–3,40 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 446, HPLC Rt =
1,363.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 117 wurde analog zu der Verbindung aus Beispiel
116 hergestellt, wobei nur DMF als Lösungsmittel verwendet wurde,
das rohe Material wurde mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt. 1H-NMR: (CD3OD) δ 9,45 (s,
1H), 8,28 (s, 1H), 7,98 (s, 1H), 7,86 (s, 1H), 7,54 (dd, J = 8,4;
3,4; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,18 (app t, 1H), 4,00–3,45 (b m, 8H) ; LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 446, HPLC Rt =
0,967.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 118 wurde analog zu der Verbindung aus Beispiel
116 hergestellt, wobei nur DMF als Lösungsmittel verwendet wurde. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,95 (b
s, 1H), 8,76 (s, 1H), 8,24 (s, 1H), 8,19 (d, J = 3,1; 1H), 7,49–7,43 (dd überlappend
mit b s, 6H), 7,08 (app t, 1H), 4,00–3,40 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 447, HPLC Rt =
1,187.
-
-
Zu
einer Mischung des Intermediats 38 (ca. 0,109 mmol) und des Hydrochloridsalzes
des Intermediats 19 (38,0 mg, 0,168 mmol) in DMF (2,0 ml) wurden
DMAP (25,0 mg, 0,205 mmol), EDC (38,3 mg, 0,2 mmol) und NMM (55 μl, 0,5 mmol)
gegeben, die resultierende Mischung wurde 22 h bei RT gerührt. Der
Mischung wurde dann eine weitere Menge des Amins (38,0 mg, 0,168
mmol) und anschließend
DMF (1,5 ml) zugegeben, es wurde 24 h gerührt. Nach diesem Zeitraum wurden
wieder DMAP (25,0 mg, 0,205 mmol), EDC (38,3 mg, 0,2 mmol) und NMM
(55 μl,
0,5 mmol) zu der Reaktionsmischung gegeben, welche dann weitere
24 h zur vollständigen
Umsetzung gerührt
wurde. Die flüchtigen
Bestandteile wurden dann im Hochvakuum abgedampft, wobei ein Rückstand
erhalten wurde, welcher mit H2O (~15 ml)
verdünnt
und mit HCl (1 N, aq.) auf pH ~1 angesäuert wurde. Die resultierende
Mischung wurde unter Vakuum mit EtOAc (40 ml) extrahiert und der
organische Extrakt wurde mit HCl (25 ml, 1 N, aq.) gewaschen, es
wurde abgedampft, wobei ein Rohprodukt erhalten wurde. Das Rohmaterial
wurde mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt, wobei das Produkt als ein gelbes Glass erhalten
wurde, welches dann mit MeOH (2 × 0,5 ml) behandelt wurde,
die methanolische Schicht wurde mittels Pipette entfernt, wobei
der Feststoff aus Beispiel 119 erhalten wurde. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 8,07
(s, 1H), 7,86 (d, J = 8,4; 1H), 7,43 (b s, 5H), 6,73 (d, J = 8,4;
1H), 4,04 (s, 3H), 4,00–3,40
(b s, 8H), 2,67 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
456, HPLC Rt = 1,227.
-
-
Zu
einer Mischung der in Beispiel 88 hergestellten Verbindung (13,7
mg, 0,028 mmol) und 2-Chlor-N,N-diethylacetamid
(5,0 mg, 0,033 mmol) in DMF (1,0 ml) wurde Triethylamin (10 μl, 0,036
mmol) gegeben, die resultierende Mischung wurde 24 h bei RT gerührt. Nal
(eine Pipettenspitze), 2-Chlor-N,N-diethylacetamid (5,0 mg, 0,033
mmol) und Triethylamin (10 μl,
0,036 mmol) wurden dann nacheinander zu der Reaktionsmischung gegeben.
Nach weiteren 21 h Rühren
bei RT wurden die drei Reagenzien erneut in der gleichen Reihenfolge
zu der Reaktionsmischung gegeben. Die resultierende Mischung wurde
weitere 20 h zur vollständigen
Umsetzung gerührt,
dann wurde im Hochvakuum abgedampft, wobei ein Rückstand erhalten wurde, welcher
mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
1 × 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platte) gereinigt wurde, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff
erhalten wurde. 1H-NMR: (CDCl3) δ 12,35 (b
s, 1H), 11,26, (b s, 1H), 8,14 (s, 1H), 7,43 (b s, 6H), 6,97 (app
t, 1H), 5,02 (s, 2H), 4,00–3,40
(b m, 8H), 3,46 (q, J = 7,1; 2H), 3,33 (q, J = 7,1; 2H), 1,29 (t,
J = 7,1; 3H), 1,18 (t, J = 7,1; 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 603, HPLC Rt =
1,530.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 121 wurde aus Intermediat 39 analog zu Beispiel
27 hergestellt und mittels präparativer
TLC (10% MeOH/CH2Cl, 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,12 (s,
1H), 7,59 (dd, J = 8,4; 4,3; 1H), 7,02 (dd, J = 10,5; 8,4; 1H),
3,72 (b m, 2H), 3,57 (b s, 2H), 3,46 (b s, 4H), 1,46 (s, 9H); LC/MS:
(ES+) m/z (M+H)+ = 434, HPLC Rt =
1,137.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 122 wurde aus der Verbindung aus Beispiel
121 analog zu Beispiel 79 hergestellt und mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
500 μm × 20 cm × 20 cm
Platte) gereinigt. 1H-NMR: (CDCl3) δ 8,87
(s, 1H), 8,20 (d, J = 3,1; 1H), 8,15 (dd, J = 8,4; 4,5; 1H), 7,15
(dd, J = 10,2; 8,4; 1H), 3,74 (app t, 2H), 3,57 (app t, 2H), 3,51
(m, 4H), 1,48 (s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+Na)+ =
466, HPLC Rt = 1,537.
-
-
Zu
einer Mischung des Intermediats 50 (100 mg, 0,493 mmol) in DMF (2,0
ml) wurden 2-Methylpiperazin
(54,3 mg, 0,542 mmol) und NMM (60 μl, 0,546 mmol) gegeben, die
resultierende Mischung wurde 20 h bei RT gerührt. Nach diesem Zeitraum zeigte
die LC/MS Untersuchung die Bildung eines Monoamids und des hydrolysierten
Nebenprodukts des Intermediats 50 (Ketosäure) auf. Der Reaktionsmischung
wurden dann 2-Methylpiperazin (54,3 mg, 0,542 mmol), EDC (104 mg,
0,542 mmol), DMAP (66,3 mg, 0,543 mmol) und NMM (120 μl, 1,09 mmol)
zugegeben, es wurde 21 h zur vollständigen Bildung des Monoamids
gerührt.
Benzoesäure
(66,0 mg, 0,540 mmol) und anschließend EDC (104 mg, 0,542 mmol),
DMAP (66,3 mg, 0,543 mmol) und NMM (120 μl, 1,09 mmol) wurden zu der
Reaktionsmischung gegeben, welche weitere 27 h gerührt wurde. Die
Mischung wurde mit Wasser (etwa 10 ml) verdünnt und mit HCl (1 N, aq.)
angesäuert,
um die Präzipitation zu
induzieren. Das Präzipitat
wurde filtriert, mit HCl (3 × 2
ml, 1 N, aq.) gewaschen, und getrocknet. Das Rohmaterial wurde mittels
präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
500 μm × 20 cm × 20 cm
Platte) gereinigt, wobei das Produkt als ein weißer Feststoff erhalten wurde.
Die Position der Piperazinmethylgruppe wurde mittels H-H-NOESY-Untersuchungen
gestützt. 1H-NMR: (eine ~1:1-Mischung von 2 Konformationsisomeren)
(CDCl3) δ 10,60
(b s, 1H), 8,86 (s, 1H), 8,21 (app t, 1H), 8,15 (m, 1H), 7,42 (b
m, 5H), 7,14 (m, 1H), 4,65, 4,47, 3,95 und 3,76 (app b d, 4H), 3,50–2,90 (überlappend
b m, 3H), 1,37 und 1,32 (d, J = 6,7; 3 H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 462, HPLC Rt =
1,407.
-
-
Zu
dem Aldehyd-Intermediat 42 (20 mg, 0,048 mmol) in EtOH (2 ml) wurde
bei RT Hydroxylamin (0,5 ml, 50% in H2O)
gegeben, die Mischung wurde über
Nacht gerührt.
Die rohe Mischung wurde dann mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei die Verbindung aus Beispiel 124 (15,9 mg, 77%)
erhalten wurde. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 (s,
1H), 8,11 (s, 1H), 7,38–7,57
(b s, 5H), 7,27 (d, J = 8,2 Hz, 1H), 6,79 (d, J = 8,2 Hz, 1H), 3,93
(s, 3H), 3,38–3,95
(m, 8H); LC/MS:(ES+) m/z (M+H)+ = 435, HPLC
(YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,263.
-
-
Zu
dem Ester-Intermediat 45 (17 mg, 0,056 mmol) in EtOH (5 ml) wurde
10 N NaOH (0,028 ml, 0,28 mmol) gegeben, die Reaktionsmischung wurde
28 h bei RT gerührt.
Das Lösungsmittel
wurde unter Vakuum entfernt und der Rückstand über Nacht im Hochvakuum getrocknet.
Das rohe Natriumsalz in DMF (5 ml) bei RT wurde, nach Zugabe von
N,N-Diisopropylethylamin (36,2 mg, 0,049 ml, 0,28 mmol) und 3-(Diethoxyphosphoryloxy)-1,2,3-benzotriazo-4(3H)-on
(18,4 mg, 0062 mmol), mit dem Benzoylpiperazinhydrochloridsalz (16,5
mg, 0,073 mmol) behandelt. Die Reaktionsmischung wurde dann bei
RT 48 h gerührt,
bevor das Lösungsmittel
unter Vakuum teilweise entfernt wurde. Die rohe Mischung wurde in MeOH
gelöst
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei die Verbindung aus Beispiel 125
(10 mg, 40% zwei Schritte) erhalten wurde. 1H-NMR:
(300 MHz, CD3OD) δ 8,13 (s, 1H), 7,69 (d, J =
8,4 Hz, 1H), 7,46 (b s, 5H), 6,81 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 3,78 (s,
3H), 3,20–3,98
(m, 8H), 2,94 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
449, HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,180.
-
-
Das
Intermediat 46 (120 mg, 0,288 mmol) wurde in heißem EtOH (6 ml) gelöst. Nach
Abkühlen
auf RT wurde die Mischung tropfenweise mit NH2OH
(0,5 ml, 50% in H2O) versetzt und dann 3
h bei RT gerührt.
Das Rohmaterial wurde mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt, wobei eine 4:1-Mischung (72 mg) des gewünschten
Hydroxylaminidins (I) und dessen Oximnebenprodukt (II) erhalten
wurde, welche der Zyklisierungsreaktion ohne weitere Aufreinigung
zugeführt
wurde. LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 450 (I)
und 465 (II), HPLC (YMC C18 S7 3 × 50 mm, Durchflussgeschwindigkeit
4 ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 0,890
(I und II).
-
Zu
der obigen 4:1-Mischung (72 mg) von I und II in einem 10 ml-Kolben
wurde wasserfreies Triethylorthoformiat (4 ml) gegeben, die resultierende
Mischung wurde 3 h bei 110 °C
gerührt.
Nach Abkühlen
auf RT wurde die rohe Mischung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei die Verbindung aus Beispiel 126 (15 mg) erhalten
wurde. Die Mischung wurde weiter mittels präparativer TLC (5% MeOH/CH2Cl2, eine 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platte) gereinigt, um das Nebenprodukt zu entfernen. 1H-NMR:
(CD3OD) δ 9,32
(s, 1H), 8,17 (s, 1H), 8,08 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 7,47 (b s, 5H),
6,95 (d, J = 8,4 Hz, 1H), 4,07–3,42
(m, 8H), 4,00 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
460, HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 3 min) Rt = 1,770.
-
-
Beispiel 127
-
Die
Verbindung aus Beispiel 127 wurde in der gleichen Weise wie beim
alternativen Verfahren aus Beispiel 111 hergestellt. Die Aufreinigung
wurde mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 90, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,16–7,62
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,84 (überlappende
Doubletts, 4H), 8,31 (b s, 1H), 7,96 (b s, 1H), 7,47 (bs, 5H), 7,17
(app t, J = 9,2; 1H), 3,97–3,38 (b,
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 524, HPLC
Rt = 1,717.
-
Beispiel 128
-
Die
Verbindung aus Beispiel 128 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 127 hergestellt. 1H-NMR:
(CD3OD) δ 9,54
(b m, 1H), 9,08 (b m, 1H), 8,81 (b s, 1H), 8,30 (s, 1H), 7,98 (b
m, 2H), 7,47 (b s, 5H), 7,17 (app t, J = 8,7; 1H), 3,98–3,44 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 524, HPLC
Rt = 1,763.
-
Beispiel 129
-
Die
Verbindung aus Beispiel 129 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 127 hergestellt. Die Aufreinigung wurde
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 90, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 7,58–8,03
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 (s, 1H),
7,92 (b s, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,12 (app t, J = 8,5; 1H), 4,20
(s, 2H), 3,97–3,44
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 524,
HPLC Rt = 1,753.
-
Beispiel 130
-
Die
Verbindung aus Beispiel 130 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 127 hergestellt, wobei die Reaktionstemperatur
100 °C betrug.
Die Aufreinigung wurde mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 90, Gradientenzeit =
15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMCC18 S5 30 × 100 mm,
Fraktionssammlung: 7,63–8,08
min. 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,50 (s,
1H), 8,67 (s, 1H), 8,20 (d, J = 3,0; 1H), 8,03 (app dd, J = 8,0; 4,3;
1H), 7,44 (b s, 5H), 7,21 (app t, J = 9,1; 1H), 3,91–3,31 (überlappend
mit breitem Wasserpeak, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
490, HPLC Rt = 1,777.
-
Beispiel 131
-
Die
Verbindung aus Beispiel 131 wurde (unter Verwendung des Hydrazid-Intermediats
47) in der gleichen Weise wie die Verbindung aus Beispiel 127 hergestellt,
wobei die Reaktionstemperatur 78 °C
betrug. 1H-NMR: (CD3OD) δ 9,59 (s,
1H), 8,74 (überlappende
Doubletts, 2H), 8,29 (s, 1H), 8,07 (b s, 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,14
(app t, J = 8,4; 1H), 3,99–3,44
(b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 525,
HPLC Rt = 1,447.
-
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 110B (roh, 20 mg, 0,031 mmol) wurde
Triethylorthoformiat (1 ml) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 16 Stunden auf 110 °C
erhitzt. Nach Abkühlung
auf Raumtemperatur wurde die Mischung in MeOH (2 ml) gelöst und mittels
präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 30, Ende %B = 80, Gradientenzeit = 16 min, Durchflussgeschwindigkeit =
25cumin, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,50–11,08
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,81 (s,
1H), 8,19 (s, 1H), 7,77 (b, s, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,15 (app t,
J = 8,9; 1H), 3,88–3,44
(b m, 8H), 1,37 (b s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
562, HPLC Rt = 1,370.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 92 (100 mg, 0,211 mmol) in EtOH (2 ml),
wurden N,N-Diisopropylethylamin (0,1 ml) und tert-Butylisocyanat
(50 μl,
0,438 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 16 Stunden bei
Raumtemperatur gerührt
und dann filtriert. Das Filtrat wurde gereinigt mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,79–8,24
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,19 (s,
1H), 7,82 (app dd, J = 8,1; 4,2; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,03 (app
t, J = 9,0; 1H), 3,99–3,43
(b m, 8H), 1,35 (b, s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
537, HPLC Rt = 1,790.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 134 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 133 hergestellt. Die Aufreinigung wurde
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 6,74–7,07
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,13 (s,
1H), 7,76 (b m, 1H), 7,43 (b s, 5H), 6,99 (app t, J = 8,8; 1H),
3,88 (app, dd, überlappend
mit b m, J = 13,0; 6,5; 1H) 3,95–3,49 (b m, 8H), 1,13 (d, J
= 6,5; 6H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 523,
HPLC Rt = 1,607.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 135 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 133 hergestellt. Die Aufreinigung wurde
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 95, Gradientenzeit
= 16 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 6,57–7,50
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7,86 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,04 (app, t, J = 9,2; 1H),
3,97–3,38
(b m, 8H), 3,14 (app dd, J = 13,1; 5,5; 2H), 1,53 (m, 2H), 0,92
(t, J = 7,4; 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
523, HPLC Rt = 1,593.
-
-
Beispiel 136
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 97 (13 mg, 0,026 mmol) in THF (2 ml)
in einem wiederverwendbaren abgedichteten Rohr wurde bei –78 °C eine Stunde
Ammoniak durchgesprudelt. Das Rohr wurde fest abgedichtet, die Reaktionsmischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach weitgehender Entfernung
des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Umkehrphasen-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B
= 80, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 12,98–13,48
min. 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,33 (s,
1H), 8,85 (s, 2H), 8,22 (d, J = 3,2; 1H), 8,05 (app dd, J = 8,2;
4,4; 1H), 7,44 (b s, 5H), 7,31 (app t, J = 9,2; 1H), 4,69 (s, 2H),
3,87–3,30
(b, m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 476,
HPLC R, = 1,117.
-
Beispiel 137
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 97 (30 mg, 0,060 mmol) wurde eine wässrige Lösung von
Methylamin (1 ml, 40 Gew.-%) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde
16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach weitgehender Entfernung
des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (4 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100 mm,
Fraktionssammlung: 9,67–10,18
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 (s,
1H), 8,15 (app dd, J = 8,2; 4,3; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,18 (app
t, J = 9,0; 1H), 4,80 (s, 2H), 3,99–3,43 (b, m, 8H), 2,98 (s,
3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 491, HPLC
Rt = 1,120.
-
Beispiel 138
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 97 (10 mg, 0,020 mmol) wurde eine wässrige Lösung von
Dimethylamin (0,5 ml, 40 Gew.-%) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach weitgehender Entfernung
des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (4 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,37–7,83
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,24 (s,
1H), 8,16 (app dd, J = 8,1; 4,4; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,19 (app
t, J = 9,2; 1H), 4,96 (s, 2H), 3,85–3,43 (b, m, 8H), 3,16 (s,
6H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 505, HPLC
Rt = 1,110.
-
Beispiel 139
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 97 (10 mg, 0,020 mmol) in MeOH (0,5
ml) wurde eine wässrige
Lösung
von NaOH (0,2 ml, 1 N) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 4 Stunden
bei Raumtemperatur gerührt.
Nach weitgehender Entfernung des Lösungsmittels wurde der resultierende
Rückstand
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B
= 100, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,26–10,76
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,20 (s,
1H), 8,09 (app dd, J = 8,0; 4,4; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,03 (app
t, J = 9,0; 1H), 4,83 (s, 2H), 3,99–3,45 (b m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z
(M+H)+ = 478, HPLC Rt =
1,983.
-
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 81 (30 mg, 0,053 mmol) in THF (1 ml)
wurde Glycinmethylesterhydrochlorid (33 mg, 0,265 mmol) und Hunig's Base (0,3 ml) gegeben.
Die Reaktionsmischung wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach
weitgehender Entfernung des Lösungsmittels
wurde der Rückstand
mit MeOH (4 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B
= 90, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,45–11,02
min. 1H-NMR: (CDCl3,
zwei Isomere) δ 10,60
(b s, 1H), 8,20 & 8,15
(d, J = 2,8; 1H), 8,09 & 7,92
(app dd, J = 8,2; 4,3; 1H), 7,43 (b s, 5H), 7,12 & 7,06 (app t,
J = 9,2; 1H), 7,84 & 6,25
(b s, 1H), 4,31 (überlappende
Doubletts, J = 4,6; 2H), 3,98–3,49
(b m, 8H), 3,86 (s, überlappend
mit b m, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
535 HPLC Rt = 1,397.
-
-
Beispiel 141
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 140 (16 mg, 0,03 mmol) in MeOH (0,5
ml) wurde eine wässrige
Lösung
von NaOH (0,1 ml, 0,1 mmol, 1 N) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 4 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Einstellen des pH
auf etwa 2 mittels Chlorwasserstoffsäure (1 N) wurde die Reaktionsmischung
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B
= 90, Gradientenzeit = 20 min, Durchflussgeschwindigkeit – 35 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 13,00–13,52
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,18 (s,
1H), 7,95 (app dd, J = 8,1; 4,4; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,08 (app
t, J = 9,2; 1H), 4,23 (s, 2H), 3,98–3,45 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 521, HPLC Rt =
1,330.
-
Beispiel 142
-
Zu
einer Lösung
der Verbindung aus Beispiel 140 (15 mg, 0,028mmol) in THF (1 ml)
in einem wiederverwendbaren abgedichteten Rohr bei –78 °C wurde eine
Stunde Ammoniak gesprudelt. Das Rohr wurde fest abgedichtet, die
Reaktionsmischung wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach
weitgehender Entfernung des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Umkehrphasen-HPLC gereinigt, wobei
das Produkt als ein TFA-Salz erhalten wurde. HPLC-Verfahren: Start
%B = 25, Ende %B = 80, Gradientenzeit = 20 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 35 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,77–12,29
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,19 (s,
1H), 7,97 (app dd, J = 8,0; 4,0; 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,10 (app
t, J = 9,2; 1H), 4,15 (s, 2H), 3,98–3,44 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 520, HPLC Rt =
1,217.
-
Beispiel 143
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 140 (20 mg, 0,037 mmol) wurde eine wässrige Lösung von
Methylamin (0,5 ml, 40 Gew.-%) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach weitgehender Entfernung
des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 85, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min, Säule: YMC
C18 S530 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,62–11,14
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,19 (s,
1H), 7,96 (app dd, J = 8,0; 4,3, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,10 (app
t, J = 9,2; 1H), 4,13 (s, 2H), 3,86–3,45 (b m, 8H), 2,78 (s, 3H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 478, HPLC Rt = 1,983.
-
-
Zu
einer Mischung der Verbindung aus Beispiel 111 (100 mg, 0,224 mmol)
in THF (2 ml) wurden Cs2CO3 (80
mg, 0,246 mol) und Methylbromacetat (25 μl, 0,23 mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt, dann wurden zusätzliche
Portionen von Cs2CO3 (200
mg, 0,614 mmol) und Ethylbromacetat (0,1 ml, 0,90 mmol) zugegeben.
Die Reaktionsmischung wurde weitere 16 Stunden gerührt, es
wurde MeOH (4 ml) zugegeben, anschließend wurde filtriert. Das Filtrat
wurde mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 20, Final %B = 80, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 40 ml/min, Säule:
Xterra MS C-18 5 μm
30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 8,71–9,16
min. Die Position der Methylacetatgruppe am Triazol-N1 wurde
mittels H-C-HMBC und H-H-NOESY gestützt. 1H-NMR:
(DMSO-d6) δ 12,12 (s, 1H), 8,80 (s, 1H),
8,15 (d, J = 3,3; 1H), 7,98 (app dd, J = 8,2; 4,3; 1H), 7,44 (b
s, 5H), 7,16 (app t, J = 9,2; 1H), 5,36 (s, 2H), 3,80–3,30 (b
m, 8H), 3,75 (s, überlappend
mit b m, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
519, HPLC Rt = 1,283.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 145 wurde in der gleichen Weise wie dei
Verbindung aus Beispiel 143 hergestellt. Die Aufreinigung wurde
mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: Xterra
MS C-18 5 μm
30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,70–9,15
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,52 (s,
1H), 8,12 (s, 1H), 7,95 (app, dd, J = 7,8; 4,4; 1H), 7,36 (b s,
5H), 7,01 (app, t, J = 8,9; 1H), 4,93 (s, 2H), 3,85–3,34 (b
m, 8H), 2,77 (s, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
518, HPLC Rt = 1,207.
-
-
Beispiel 146
-
Zu
der Lösung
der Verbindung aus Beispiel 27 (roh, ca. 0,549 mmol) in MeOH (3ml)
in einem wiederverwendbaren abgedichteten Rohr wurden Methylpropiolat
(0,3 ml, 3,37 mmol) und Triethylamin (0,2 ml) gegeben. Das Rohr
wurde fest abgedichtet, die Reaktionsmischung wurde 2 Stunden auf
75 °C erhitzt.
Nach Abkühlen
auf Raumtemperatur wurde das Rohmaterial mittels präparativer
TLC (4:1 EtOAc/Hexan, 2 × 500 μm × 20 cm × 20 cm
Platten) gereinigt, wobei Intermediat III als ein cremefarbener
Feststoff erhalten wurde, welcher ohne weitere Aufreinigung direkt
in der nachfolgenden Reaktion verwendet wurde. Eine Mischung des
Intermediats III (47 mg, 0,09 mmol) und Phenylether (210 mg, 1,23
mmol) wurde 10 min unter Aufrechterhaltung eines mäßigen Rückflusses
erhitzt. Der resultierende schwarze Rückstand wurde mit MeOH (4 ml)
versetzt und filtriert. Das Filtrat wurde mittels Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B
= 100, Gradientenzeit = 16 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,50–9,00
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 (s,
1H), 7,96 (s, 1H), 7,75 (app dd, J = 8,3; 3,9; 1H), 7,46 (b s, 5H),
7,09 (app t, J = 9,6; 1H), 3,94 (s, überlappend mit b m, 3H), 3,97–3,46 (b, m,
8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 504, HPLC
Rt = 1,350.
-
Beispiel 147
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 146 (15 mg, 0,030 mmol) wurde eine wässrige Lösung von
Methylamin (0,5ml, 40 Gew.-%) gegeben. Die resultierende Mischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach weitgehender Entfernung
des Lösungsmittels
wurde der resultierende Rückstand
mit MeOH (2 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 85, Gradientenzeit
= 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMCC18
S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,16–7,67
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,22 (s,
1H), 7,75 (s, überlappend
mit b m, 1H), 7,77 (b, m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,09 (app t, J =
9,3; 1H), 3,97–3,45
(b m, 8H), 2,99 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
503, HPLC Rt = 1,223.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 148 wurde als ein untergeodnetes Produkt
der folgenden Umsetzung zur Herstellung von Hydroxyamidin isoliert:
In ein ofentrockenes Druckrohr wurde Intermediat 46 (130 mg, 0,313 mmol),
Hydroxylaminhydrochlorid (65,3 mg, 0939 mmol), EtOH (5 ml) und Triethylamin
(142,5 mg, 0,196 ml, 1,41 mmol) gegeben, die resultierende Mischung
wurde 4 h bei 110 °C
gerührt.
Nach Abkühlen
auf RT wurde die Mischung mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt, wobei das Amid aus Beispiel 148 (10,5 mg, 8%) als ein
Nebenprodukt isoliert wurde, welches mit 15% (basierend auf 1H-NMR)
seines Oxim-Derivats kontaminiert war. 1N-NMR:
(CD3OD) δ 8,13
(s, 1H), 7,80 (d, J = 8,4 Hz; 1H), 7,47 (b s, 5H), 6,83 (d, J =
8,3 Hz, 1H), 3,98 (s, 3H), 3,45–4,07
(m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 435,
HPLC (YMC C18 S7 3 × 50
mm, Durchflussgeschwindigkeit 4 ml/min, Gradientenzeit 2 min) Rt = 1,057.
-
-
Zu
einer Mischung von 18-Krone-6 (12 mg, 0,045 mmol), KF (3,7 mg, 0,064
mmol) und dem Tetrazol aus Beispiel 32 (26 mg, 0,058 mmol) in 2-Methoxyethylether
(0,5 ml) wurde Methyl-2-chlor-2,2-difluoracetat (6,1 μl, 0,058
mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung wurde 5 Stunden auf 85 °C erhitzt,
es wurden weitere Portionen von KF (7 mg, 0,12 mmol) und Methyl-2-chlor-2,2-difluoracetat
(6 μl, 0,057
mmol) zugegeben und 8 weitere Stunden erhitzt.
-
Die
Reaktionsmischung wurde dann mit MeOH (2 ml) versetzt, filtriert
und mittels präparativer
Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start
%B = 40, Ende %B = 75, Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit
= 25 ml/min, Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,03–8,75
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,64 und
8,56 (s, 1H), 8,42–8,20
(b m, 3H), 8,00 und 7,95 (t, J = 7,5; 1H), 7,67 (m, 1H), 7,55 und
7,49 (t, J = 5,9; 1H), 7,20 (dd, J = 20,2; 10,2; 1H), 3,94–3,58 (b
m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 499, HPLC
Rt = 1,327.
-
-
Zu
einer Lösung
des Intermediats 50 (ca. 0,644 mmol) in THF (6 ml) wurde N,N-Diisopropylethylamin (0,5
ml) und Intermediat 48 (210 mg, 0,77mmol) gegeben. Die Reaktionsmischung
wurde 16 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Konzentration unter
Vakuum wurde der Rückstand
mit MeOH (6 ml) versetzt und mittels präparativer Phasenumkehr-HPLC
gereinigt unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B
= 90, Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100 mm,
Fraktionssammlung: 8,44–8,89
min. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,31 (s,
1H), 9,88 (s, 1H), 8,30 (b m, 2H), 8,11 (app d, J = 3,0; 1H), 8,09
(b m, 1H), 7,89 (b m, 1H), 7,77 (b m, 1H), 7,27 (b m, 1H), 3,77–3,40 (b
m, überlappend mit
breitem Wasserpeak, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
493, HPLC Rt = 1,340.
-
-
Zu
der Verbindung aus Beispiel 150 (50 mg, 0,102 mmol) in MeOH (3ml)
wurde Palladium auf aktiviertem Kohlenstoff (36 mg, 10%) gegeben.
Die Reaktionsmischung wurde bei Raumtemperatur unter einer Wasserstoffatmosphere
16 Stunden gerührt.
Nach Durchlaufen eines kurzen Celite®545
Pads wurde das Filtrat mittels Phasenumkehr-HPLC gereinigt unter
Anwendung des Verfahrens: Start %B = 15, Ende %B = 85, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: XTerra
MS C-18 5 μm
30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 6,65–7,10
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 9,27 (s,
1H), 8,21 (s, 1H), 8,12 (b m, 1H), 7,35 (b m, 1H), 7,14–7,06 (b
m, 4H), 3,87–3,51
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 463,
HPLC Rt = 1,033
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 152 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 64 hergestellt, wobei THF als Lösungsmittel
für die
Kopplung des Säurechlorids
des Intermediats 23 an überschüssiges 2-Methoxyethylamin
in Abwesenheit von Pyridin verwendet wurde. Der nach Verdampfen
der flüchtigen Bestandteile
erhaltene rohe Rückstand
wurde mittels präparativer
TLC (5% MeOH/CH2Cl2,
50 m × 20
cm × 20 cm
Platte) gereinigt. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,17 (s,
1H), 7,77 (dd, J = 8,1; 4,0; 1H), 7,46 (b m, 5H), 7,03 (app t, 1H),
4,00–3,45
(b m, 8H), 3,62–3,60
(m überlappend
mit b m, 4H), 3,39 (s, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 481,
HPLC Rt = 1,253.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 153 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 152 hergestellt. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 11,40
(b s, 1H), 8,13 (d, J = 3,0; 1H), 7,86 (b s, 1H), 7,59 (dd, J =
8,0; 3,5; 1H), 7,43 (b m, 5H), 6,99 (app t, 1H), 5,04 (b s, 1H),
4,00–3,25
(b überlappend
m, 12H), 1,44 (s, 9H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
566, HPLC Rt = 1,340.
-
-
Das
Hydrochloridsalz aus Beispiel 154 wurde durch Behandlung der Verbindung
aus Beispiel 153 mit einem Überschuss
einer Lösung
von HCl in Dioxan (4 M) hergestellt. 1H-NMR: (300 MHz, CD3OD) δ 8,21
(s, 1H), 7,84 (b dd, 1H), 7,48 (b m, 5H), 7,08 (b app t, 1H), 4,00–3,45 (b überlappend
m, 12H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 466,
HPLC Rt = 0,920.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 155 wurde in der gleichen Weise wie die
Verbindung aus Beispiel 83 hergestellt. Die Aufreinigung wurde mittels
präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 8,04–8,49
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,58 (s,
1H), 8,14 (s, 1H), 7,87 (b m, 1H), 7,43 (b m, 5H), 7,08 (app t,
J = 9,2; 1H), 5,92 (s, 2H), 5,05–3,07 (b m, 7H), 1,39–1,15 (b
m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 477, HPLC
Rt = 1,356.
-
Die
Verbindungen aus den Beispielen 156 bis 162 wurden analog zu der
Verbindung aus Beispiel 82 hergestellt.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMCC18
S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,52–11,24
min. 1H-NMR: (CDCl3) ö 10,72 (s,
1H), 8,16 (s, 1H), 7,99 (app dd, J = 8,2; 4,3; 1H), 7,43 (b s, 5H),
7,07 (app t, J = 9,3; 1H), 3,85–3,40
(b m, 8H), 3,26 (s, 6H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
491, HPLC Rt = 1,503.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 9,47–9,82
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,66 (s,
1H), 8,17 (d, J = 2,7; 1H), 7,97 (app dd, J = 8,2; 4,2; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,09 (app t, J = 9,3; 1H), 5,59 (b s, 1H), 3,85–3,50 (b
m, 8H), 3,20 (d, J = 5,0; 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
477, HPLC Rt = 1,360.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC unter Anwendung des gleichen Verfahrens wie bei
der Verbindung aus Beispiel 157 ausgeführt. 1H-NMR:
(300 MHz, CDCl3) δ 10,70 (s, 1H), 8,18 (s, 1H),
8,01 (app dd, J = 8,3; 4,6; 1H), 7,45 (b s, 5H), 7,09 (app t J =
9,4; 1H), 5,24 (d, J = 7,4; 1H), 4,09 (app, dd, J = 13,3; 6,7; 1H),
3,81–3,51
(b m, 8H), 1,39 (d, J = 6,5; 6H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
505, HPLC Rt = 1,587.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 90, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,71–9,17
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 10,81 (d,
J = 11,5; 1H), 8,10 (d, J = 6,2; 1H), 7,77 (b m, 1H), 7,42 (b s,
5H), 6,95 (app t, J = 8,3; 1H), 5,00–2,47 (breit überlappend m,
20H), 1,40–1,22
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 590,
HPLC Rt = 1,226.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC unter Anwendung eines ähnlichen Verfahrens wie bei
der Verbindung aus Beispiel 159 ausgeführt. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,69
(s, 1H), 8,12 (app dd, J = 4,7; 3,3; 1H), 7,98 (app dd, J = 7,5;
4,5; 1H), 7,43 (b s, 5H), 7,07 (app t, J = 10,5; 1H), 5,12 (d, J
= 9,0; 1H), 3,88 (m, überlappend
mit b m, 1H), 5,00–2,96
(b m, 7H), 1,69 (m, 2H), 1,36 (überlappend
b m, 6H), 1,00 (m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
533, HPLC Rt = 1,689.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC unter Anwendung eines ähnlichen Verfahrens wie bei
der Verbindung aus Beispiel 159 ausgeführt. 1H-NMR:
(CDCl3) δ 10,69
(s, 1H), 8,12 (app dd, J = 5,2; 3,3; 1H), 7,96 (app dd, J = 8,0;
4,0; 1H), 7,42 (b s, 5H), 7,05 (app t, J = 8,5; 1H), 5,55 (dd, J
= 7,3; 3,8; 1H), 4,35 (app, dd, überlappend
mit b m, J = 16,2; 7,8; 1H), 5,10–2,88 (b m, 7H), 2,34 (m, 2H),
2,07 (m, 2H), 1,82 (m, 2H), 1,39–1,20 (b m, 3H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 531, HPLC Rt =
1,676.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC unter Anwendung eines ähnlichen Verfahrens wie bei
der Verbindung aus Beispiel 159 ausgeführt. 1H-NMR:
(CODCl3) δ 10,71
(s, 1H), 8,12 (b m, 1H), 7,97 (app dd, J = 7,8; 4,3; 1H), 7,42 (b
s, 5H), 7,07 (app t, J = 8,5; 1H), 5,31 (d, J = 6,5; 1H), 4,81–2,88 (breit überlappend
m, 8H), 2,18–1,26
(breit überlappend
m, 11H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 545, HPLC
Rt = 1,729.
-
Die
Verbindungen aus den Beispielen 163 bis 165 wurden analog zu der
Verbindung aus Beispiel 76 hergestellt.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start B = 0, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,79–9,18
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,31 (s,
1H), 7,70 (app dd, J = 8,2; 4,1; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,20 (app
t, J = 9,4; 1H), 4,17 (s, 4H), 3,79–3,34 (b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z
(M+H)+ = 448, HPLC Rt =
0,983.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,79–9,42
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 9,29 (b
s, 1H), 8,57 (d, J = 6,5; 1H), 8,34 (s, 1H), 8,16 (b m, 2H), 7,47
(b s, 5H), 7,27 (app t, J = 9,3; 1H), 3,98–3,44 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 497, HPLC Rt =
1,200.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,89–12,34
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,51 (d,
J = 4,9; 1H), 8,34 (b s, 2H), 8,08 (b m, 1H), 7,55 (app, dd, J =
13,5; 8,3; 1H), 7,47 (b s, 5H), 7,22 (app, t, J = 8,5; 1H), 3,81–3,44 (b
m, 8H) ; LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 497, HPLC
Rt = 1,227.
-
-
Die
Verbindung aus Beispiel 166 wurde als ein Nebenprodukt bei der Herstellung
der Verbindung aus Beispiel 165 isoliert. Die Aufreinigung wurde
mittels präparativer
Umkehrphasen-HPLC ausgeführt
unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 80, Gradientenzeit
= 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,88–8,16
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,20 (s,
1H), 7,89 (b m, 1H), 7,73 (b m, 2H), 7,47 (b s, 5H), 7,15 (b m,
1H), 6,95 (b m, 1H), 3,89–3,44
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 514,
HPLC Rt = 0,913.
-
Verfahren
zur Herstellung der Verbindungen aus den Beispielen 167 bis 193
können
den oben beschriebenen analogen Beispielen entnommen werden.
-
-
- Trennverfahren: Start %B = 10, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 6,93–8,06
min. 1H-NMR: (DMSO-d6) δ 12,52 (s, 1H),
8,41 (app d, J = 3,3; 1H), 7,99 (app dd, J = 8,3; 4,2; 1H), 7,86
(app s, 1H), 7,33 (app dd, J = 10,3; 8,4; 1H), 7,04 (app d, J =
3,2; 1H), 6,64 (app s, 1H), 3,81–3,47 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 438, (2M+H)+ = 875,
HPLC Rt = 1,123.
-
Beispiel 168
-
- Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 85, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 7,01–7,62
min. 1H-NMR: (DMSO) δ 12,53 (s, 1H), 8,20 (s, 1H),
7,98 (app dd, J = 8,1; 3,9; 1H), 7,32 (app dd, J = 10,3; 8,4; 1H),
7,13 (d, J = 3,4; 1H), 6,70 (d, J = 3,4; 1H), 3,73–3,47 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 472, HPLC
Rt = 1,267.
-
Beispiel 69
-
- Trennverfahren: Start %B = 0, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 6,90–7,15
min. 1H-NMR: (DMSO) δ 12,53 (s, 1H), 8,20 (s, 1H),
7,98 (app dd, J = 8,0; 4,0; 1H), 7,32 (app dd, J = 10,2; 8,2; 1H),
7,08 (d, J = 3,5; 1H), 6,78 (d, J = 3,5; 1H), 3,79–3,42 (b
m, 8H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 517, HPLC
Rt = 1,293.
-
Beispiel 170
-
- Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 75, Gradientenzeit
= 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 20 × 50
mm, Fraktionsammlung: 6,85–8,07
min. 1H-NMR: (DMSO) δ 12,53 (s, 1H), 8,20 (app d,
J = 3,2; 1H), 7,98 (app dd, J = 8,4; 4,2; 1H), 7,79 (app dd, J =
5,0; 0,90; 1H), 7,46 (d, J = 3,2; 1H), 7,32 (app dd, J = 10,3; 8,4;
1H), 7,14 (app t, J = 4,2; 1H), 3,80–3,66 (b m, 8H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 454, HPLC Rt =
1,170.
-
-
- Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 8,30–8,82
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,03 (s, 1H),
8,24 (app d, J = 3,1; 1H), 8,09 (app dd, J = 8,4; 4,4; 1H), 7,53
(app s, 1H), 7,13 (m, 2H), 6,53 (app dd, J = 3,3; 1,6; 1H), 4,49
(s, 3H), 4,00–3,87
(b m, 6H), 3,68 (m, 2H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
452, HPLC Rt = 1,240.
-
Beispiel 172
-
- Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 7,17–7,34
min. 1H-NMR: (TFA-Solvat, CDCl3) δ 11,01 (s,
1H), 8,24 (appd, J = 3,1; 1H), 8,09 (app dd, J = 8,3; 4,4; 1H),
7,13 (app dd, J = 10,4; 8,3; 1H), 7,08 (d, J = 3,6; 1H), 6,31 (d,
J = 3,6; 1H), 4,49 (s, 3H), 3,95–3,86 (b m, 6H), 3,66 (m, 2H);
LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 486, HPLC Rt = 1,383.
-
Beispiel 173
-
- Trennverfahren: Start %B = 20, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 9,76–10,24
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,01 (s, 1H),
8,23 (app d, J = 3,1; 1H), 8,10 (app dd, J = 8,4; 4,4; 1H), 7,13
(app dd, J = 10,4; 8,3; 1H), 7,05 (d, J = 3,5; 1H), 6,45 (d, J =
3,5; 1H), 4,49 (s, 3H), 3,88–3,86
(b m, 6H), 3,66 (m, 2H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ =
531, HPLC Rt = 1,397.
-
Beispiel 174
-
- Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 35 ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionsammlung: 7,92–8,45
min. 1H-NMR: (CDCl3) δ 11,02 (s, 1H),
8,23 (app d, J = 3,1; 1 H), 8,10 (app dd, J = 8,4; 4,4; 1H), 7,50
(app dd, J = 5,0; 1,0; 1H), 7,34 (app dd, J = 3,6; 0,95, 1H), 7,12
(app dd, J = 10,4; 8,4; 1H), 7,08 (app dd, J = 5,0; 3,7; 1H), 4,49
(s, 3H), 3,93 (m, 2H), 3,85 (m, 4H), 3,64 (m, 2H); LC/MS: (ES+)
m/z (M+H)+ = 468, HPLC Rt =
1,287.
-
-
- Trennverfahren: Start %B = 30, Ende %B = 100, Gradientenzeit
= 8 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25ml/min, Säule: YMC C18 S5 20 × 50 mm,
Fraktionsammlung: 4,71–5,41
min. 1H-NMR: (CD3OD) δ 8,25 und 8,21
(s, 1H), 8,13 (b s, 1H), 7, 46 (b m, 5H), 7,15 (b s, 1H), 4,49 (2,
3H), 3,0–4,80
(sehr b m, 7H), 1,5–1,45
(b m, 3H); LC/MS: (ES+) m/z (M+H)+ = 476,
HPLC Rt = 1,353.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 6,73–8,20
min. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,26 und
8,17 (s, 1H), 7,66 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,16 (b m, 1H), 4,73–2,99 (b
m, 7H), 1,46–1,24
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 478,
HPLC Rt = 1,237.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,17–7,90
min. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,19 und
8,15 (s, 1H), 7,80 (b m, 1H), 7,48 (b s, 5H), 7,07 (app t, J = 8,1;
1H), 3,84 (t, überlappend
mit b m, J = 5,6; 2H), 3,45 (t, überlappend
mit b m, J = 5,6; 2H), 4,84–3,09
(b überlappend
m, 15H), 1,37–1,25
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 550,
HPLC Rt = 1,040.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 90,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,55–12,27
min, 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,22 und
8,18 (s, 1H), 8,07 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,15 (b m, 1H), 4,82–3,10 (b
m, 7H), 2,72 (s, 3H), 1,39–1,25 (b
m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 476, HPLC
Rt = 1,403.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,05–11,77
min. 1H-NMR (Mischung von Konformeren, CD3OD) δ 8,21 und
8,17 (s, 1H), 8,04 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,13 (b m, 1H), 4,80–3,11 (b
m, 7H), 2,40 (m, 1H), 1,38–1,25 (überlappend
b m, 7H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 502,
HPLC Rt = 1,520.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 14 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 12,05–12,77
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,36 (s,
1H), 8, 22 (d, J = 4,2; 1H), 8,17 (app, dd, J = 7,8; 4,1; 1H), 7,43
(b s, 5H), 7,17 (app t, J = 9,3; 1H), 4,90–3,00 (b m, 7H), 1,40–1,29 (b
m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 530, HPLC
Rt = 1,613.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 6,32–6,93
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 9,41 (s,
1H), 8,23 und 8,20 (s, 1H), 8,15 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,18
(b m, 1H), 4,79–3,07
(b m, 7H), 1,39–1,18
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 462,
HPLC Rt = 1,350.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 13,60–14,04
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,56 (s,
1H), 8,21 (überlappend m,
2H), 7,26 (b m, 5H), 7,15 (app t, J = 9,3; 1H), 4,16 (s, überlappend
mit b m, 3H), 5,10–3,00
(b m, 7H), 1,50–1,20
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 520,
HPLC Rt = 1,500.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 0, Ende %B = 75,
Gradientenzeit = 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 4,34–5,06
min. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 13,97 (d,
J = 15,0; 1H), 10,47 (b, s, 2H), 9,17 (b s, 1H), 8, 64 und 8,54
(d, J = 4,5; 1H), 8,39 (t, J = 3,3; 1H), 7,96 (m, 1H), 7,65–7,46 (b
m, 3H), 7,22 (b m, 1H), 3,83 (app d, J = 5,5; 1H), 3,75 (app d,
J = 5,3; 1H), 3,66 (app d, J = 3,4; 2H), 3,61 (app t, J = 2,6; 1H),
3,48 (app t, J = 4,8; 1H), 3,44 (app t, J = 2,8; 1H), 3,90 (app
d, J = 5,2; 1H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 439,
HPLC Rt = 0,740.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 0, Ende %B = 75,
Gradientenzeit = 10 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min.
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 6,43–7,15
min. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,39 (d,
J = 12,0; 1H), 8,63 und 8,54 (d, J = 4,5; 1H), 8,24 (b s, 1H), 8,08
(d, J = 2,9; 1H), 7,99–7,87
(b m, 2H), 7,63 (m, 2H), 7,52 und 7,46 (app dd, J = 7,0; 5,2; 1H),
7,10 (b m, 1H), 3,79 (app t, J = 2,8; 1H), 3,74 (app d, J = 5,5;
1H), 3,65 (app d, J = 2,7; 2H), 3,57 (app d, J = 5,4; 1H), 3,48
(app d, J = 4,9; 1H), 3,42 (app d, J = 5,7; 1H), 3,39 (app d, J
= 5,4; 1H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 424,
HPLC Rt = 0,903.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 5,82–7,28min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,26 und
8,21 (s, 1H), 7,56 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,15 (b m, 1H), 4,83–3,11 (b
m, 7H), 1,37–1,16
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 452, HPLC
Rt = 0,937.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 0, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 5,80–5,06
min. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,71 (b
s, 1H), 11,10 (b, s, 1H), 8,64 und 8,54 (app dd, J = 9,6; 4,7; 1H),
8,36–8,26
(b m, 1H), 7,99–7,95
(b m, 1H), 7,67–7,46
(b m, 3H), 7,23–7,17
(b m, 1H), 6,10 (b s, 2H), 4,81–2,91
(b m, 7H), 1,29–1,11
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 453, HPLC
Rt = 0,793.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 25 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 20 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,10–8,83
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,18 und
8,14 (s, 1H), 7,83 (b m, 1H), 7,46 (b s, 5H), 7,04 (b m, 1H), 4,83–3,11 (b
m, 7H), 1,38–1,25
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 437, HPLC
Rt = 1,113.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 0, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 7,94–8,39
min. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,37 (b
m, 1H), 8,64 und 8,54 (app dd, J = 10,6; 4,7; 1H), 8,23 (app d,
J = 6,4; 1H), 8,08–7,88
(b m, 3H), 7,66–7,46
(b m, 3H), 7,15–7,08
(b m, 1H), 4,98–2,89
(b m, 7H), 1,27–1,10
(b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 438,
HPLC Rt = 0,960.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 16 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 14,81–15,37
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,43 (d,
J = 8,0; 1H), 8,71–8,58 (b
m, 1H), 8,21–8,16
(b m, 2H), 7,95–7,86
(b m, 1H), 7,73 (b s, 1H), 7,49–7,43
(b m, 1H), 7,18–7,12
(b m, 1H), 5,05–3,08
(b m, 7H), 1,45 und 1,29 (b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 580, HPLC Rt =
1,773.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 12 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 12,77–13,37
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,47 (b
s, 1H), 8,77 und 8,69 (b s, 1H), 8,25 (app d, J = 2,8; 1H), 8,18
(b s, 1H), 8,04 (b m, 1H), 7,74 (b s, 1H), 7,62–7,57 (b m, 1H), 7,15 (app dd,
J = 17,9; 8,6; 1H), 3,98–3,59
(b m, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 566,
HPLC Rt = 1,750.
-
-
Die
Aufreinigung wurde mittels präparativer
HPLC unter Anwendung eines ähnlichen
Verfahrens wie dem bei der Verbindung aus Beispiel 190 ausgeführt. 1H-NMR (DMSO-d6) δ 12,00 (d,
J = 12,0; 1H), 8,64 und 8, 54 (app d, J = 5,0; 1H), 8, 13 (b s,
3H), 7,98–7,85
(b m, 2H), 7,62 (app dd, J = 14,0; 8,0; 1H), 7,52 und 7,46 (b m,
1H), 7,19 (b m, 1H), 3,80 (app d, J = 6,0; 1H), 3,75 (app d, J =
6,0; 1H), 3,65 (app d, J = 3,0; 2H), 3,58 (app d, J = 5,5; 1H),
3,49 (app d, J = 5,0; 1H), 3,42 (app d, J = 7,5; 2H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 464, HPLC Rt =
1,123.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 30 ml/min,
Säule:
YMCC18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 8,96–8,98
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 8,65–8,52 (b
m; 1H), 8,24 (m, 1H), 7,99–7,91
(b m, 2H), 7,67 (m, 1H), 7,56–7,47
(b m, 1H), 7,10 (b m, 1H), 4,69–3,06
(b m, 7H), 1,40 und 1,26 (b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 478, HPLC Rt =
1,173.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 90,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMCC18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 9,79–10,25
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,66 (b
s, 1H), 8,87 (s, 1H), 8,70 und 8,53 (b s, 1H), 8,22 (app d, J =
3,1; 1H), 8,15 (b m, 1H), 7,94 (b m, 1H), 7,73 (b s, 1H), 7,48 (b
m, 1H), 7,13 (app dd, J = 18,8; 9,9; 1H), 3,98–3,50 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 449, HPLCR, = 1,220.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 10, Ende %B = 90,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Säule:
YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 10,26–10,71
min. 1H-NMR (CD3OD) δ 9,40 (d,
J = 3,5; 1H), 8,67–8,56 (b,
m, 1H), 8,25–8,53
(b m, 1H), 8,25–8,18
(b m, 1H), 8,12 (b m, 1H), 8,03 (b m, 1H), 7,72 (b m, 1H), 7,60
(b m, 1H), 4,87–3,15
(b m, 7H), 1,42 und 1,27 (b m, 3H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ = 463, HPLC Rt =
1,263.
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Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 30, Ende %B = 100,
Gradientenzeit = 18 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40ml/min, Säule: YMC
C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 15,58–16,18
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 10,92 (s,
1H), 8,29 (d, J = 3,0; 1H), 7,99 (app dd, J = 8,0; 4,0; 1H), 7,44
(b s, 5H), 7,18 (app t, J = 9,0; 1H), 3,98–3,52 (b m, 8H); LC/MS (ES+)
m/z (M+H)+ = 565, HPLC Rt =
1,750.
-
-
Die
Aufreinigung wurde ausgeführt
mittels präparativer
HPLC unter Anwendung des Verfahrens: Start %B = 20, Ende %B = 80,
Gradientenzeit = 15 min, Durchflussgeschwindigkeit = 40 ml/min,
Kolonne: YMC C18 S5 30 × 100
mm, Fraktionssammlung: 11,57–11,87
min. 1H-NMR (CDCl3) δ 11,17 (s,
1H), 8, 03 (s, 1H), 7,67 (app dd, J = 7,6; 3,9; 1H), 7,44 (b s,
5H), 6,88 (app t, J = 9,3; 1H), 4,77 (s, 2H), 3,87–3,45 (b
m, überlappend mit
breitem Wasserpeak, 8H); LC/MS (ES+) m/z (M+H)+ =
495, HPLC Rt = 1,380.
-
Beispiele 195–214
-
Die
Verbindungen aus den Beispielen 195 bis 214 wurden entsprechend
dem in Schema 25D beschriebenen Verfahren hergestellt und werden
durch die nachstehende allgemeine Formel repräsentiert.
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-
Beispiel
215 Spezielle
Verfahren:
-
- Herstellung von 1-(Benzoyl)-3-(R)-methyl-4-[(7-hydroxycarbonyl-indolin-3-yl)-2-oxoacetyl]piperazin:
1-(Benzoyl)-3-(R)-methyl-4-[(7-(methoxycarbonyl)indol-3-yl)-2-oxoacetyl]piperazin
(50 mg) wurde in einer Lösung von
Triethylsilan (Et3SiH, 0,5 mL) in TFA (5
mL) gelöst.
Die Reaktion wurde 10 Stunden gerührt. Die Lösungsmittel wurden unter Vakuum
entfernt, der Rückstand
wurde unter Verwendung eines automatisierten präparativen HPLC-Systems von
Shimadzu gereinigt, wobei 1-Benzoyl-3-(R)-methyl-4-[(7-carboxyindolin-3-yl)-2-oxoacetyl]piperazin
(5,5 mg) erhalten wurde.
-
Ein
weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft die Verbindungen
P-216 bis P-280 in Tabelle P-1 der folgenden allgemeinen Formel,
welche mittels der hierin beschriebenen Verfahren hergestellt werden können.
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Experimentelle Verfahren
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Biologie
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In
Tabelle I und nachfolgend kommen die folgenden Definitionen zur
Anwendung.
- • "μM" bedeutet mikromolar;
- • "ml" bedeutet Milliliter;
- • "μl" bedeutet Mikroliter;
- • "mg" bedeutet Milligramm;
-
Die
Materialien und experimentellen Verfahren, die zur Erzielung der
in Tabelle I dargestellten Ergebnisse verwendet wurden, werden unten
beschrieben.
-
Zellen:
-
- * Virus-Produktion – Humane
embryonale Nieren-Zell-Linie, 293, fortgepflanzt in "Dulbecco's Modified Eagle Medium" (Life Technologies,
Gaithersburg, MD), enthaltend 10% fötales Rinderserum (FBS, Sigma,
St. Louis, MO).
- * Virus-Infektion – Humane
Epithel-Zell-Linie, HeLa, exprimierend die HIV-1-Rezeptoren CD4
und CCR5, wurde fortgepflanzt in "Dulbecco's Modified Eagle Medium" (Life Technologies,
Gaithersburg, MD), enthaltend 10% fötales Rinderserum (FBS, Sigma,
St. Louis, MO) und versetzt mit 0,2 mg/ml Geneticin (Life Technologies, Gaithersburg,
MD) und 0,4 mg/ml Zeocin (Invitrogen, Carlsbad, CA).
- Virus-Infektiöses
Einzelzyklus-Reporter Virus ("Single-round
infectious reporter Virus")
wurde von co-transfektierenden humanen embryonalen Nieren-293-Zellen
mit einem HIV-1-Envelope-DNA-Expressionsvektor
und einer proviralen cDNA, die eine Envelope-Deletionsmutation und das anstelle von
HIV-1-nef-Sequenzen insertierte Luciferase-Reportergen enthält (Chen et al., Ref. 30b),
produziert. Transfektionen wurden unter Verwendung von lipofectAMINE
PLUS-Reagens, wie vom Hersteller beschrieben, ausgeführt (Life
Technologies, Gaithersburg, MD).
-
Experiment
-
- 1. Die Verbindung wurde zu in 96-Well-Platten
ausplattierten HeLa-CD4-CCR5-Zellen mit einer Zelldichte von 5 × 104 Zellen pro Well in 100 μl "Dulbecco's Modified Eagle Medium", enthaltend 10 %
fötales
Rinderserum, bei einer Konzentration von < 20 μM
gegeben.
- 2. 100 μl "Infektiöses Einzelzyklus-Reporter
Virus" in "Dulbecco's Modified Eagle
Medium" wurden dann
zu den ausplattierten Zellen sowie Verbindung bei einer ungefähren Infektionsmultiplizität (MOI)
von 0,01 gegeben, was zu einem Endvolumen von 200 μl pro Well
und einer Endkonzentration der Verbindung von < 10 μM
führte.
- 3. Proben wurden 72 Stunden nach Infektion geerntet.
- 4. Virale Infektion wurde durch Messung der Luciferase-Expression
aus viraler DNA in den infizierten Zellen unter Verwendung eines
Luciferase-Reportergen-Assay-Kits (Roche Molecular Biochemicals,
Indianapolis, IN) kontrolliert. Überstände infizierter
Zellen wurden entfernt und 50 μl "Dulbecco's Modified Eagle
Medium" (ohne Phenolrot)
und 50 μl
Luciferase-Assay-Reagens, rekonstitutiert wie vom Hersteller beschrieben
(Roche Molecular Biochemicals, Indianapolis, IN), wurde pro Well
zugegeben. Die Luciferase-Aktivität wurde dann
durch Messung der Lumineszenz unter Verwendung eines "Wallac microbeta"-Szintillationszählers quantifiziert.
- 5. Die prozentuale Inhibierung wurde für jede Verbindung berechnet,
indem der Grad der Luciferase-Expression in infizierten Zellen in
Gegenwart jeder Verbindung als prozentualer Anteil desjenigen Expressionsgrads
quantifiziert wurde, der bei in Abwesenheit der Verbindung infizierten
Zellen beobachtet wurde, und ein solchermaßen bestimmter Wert von 100
subtrahiert wurde.
- 6. Ein EC50 stellt ein Verfahren bereit,
um die antivirale Wirksamkeit der erfindungsgemäßen Verbindungen zu vergleichen.
Die wirksame Konzentration für
eine 50%ige Inhibierung (EC50) wurde mit
der Microsoft-Excel-XLfit-Kurvenanpassung-Software berechnet. Für jede Verbindung
wurden aus der prozentualen Inhibierung, berechnet bei 10 verschiedenen
Konzentrationen unter Verwendung eines logistischen Vier-Paramenter-Modells ("four parameter logistic
model") (Modell
205), Kurven erzeugt. Die EC50-Daten der
Verbindungen sind in Tabelle 2 dargestellt. Tabelle 1 stellt den
Schlüssel
für die
Daten in Tabelle 2 dar.
-
Ergebnisse Tabelle
1. Biologischer Datenschlüssel
für EC
50-Werte
-
- *Einige dieser Verbindungen wurden gegebenfalls bei einer
Konzentration, die geringer als ihr EC50-Wert
war, getestet, zeigten jedoch eine gewisse Befähigung, eine Inhibierung zu
verursachen, und sollten daher bei einer höheren Konzentration geprüft werden,
um den exakten EC50-Wert zu bestimmen.
-
In
Tabelle 2 indizieren X1, X2,
X4, etc. den Verknüpfungspunkt.
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Es
wurde gefunden, dass die Verbindungen der Tabelle 3 unten in dem
oben beschriebenen Assay alle sehr wirksam sind, wobei der Prozentsatz
der Inhibierung als ein Kriterium gilt. In Tabelle 3 indizieren
X2, X4, etc. den
Verknüpfungspunkt.
Der ganz überwiegende
Teil der Verbindungen wies mehr als 98% Inhibierung bei einer Konzentration
von 10 μM
auf. Die Daten bei 10 μM
wurden auf die folgende Weise berechnet:
-
Verfahren zur Extrapolation
des Prozentsatzes der Inhibierung bei 10 μM
-
Die
Daten in Tabelle 3 wurden unter Verwendung der allgemeinen Verfahren
oben und nach den folgenden Verfahren gewonnen. Daten werden nicht
für alle
Verbindungen angegeben, da Daten für alle Verbindungen gemäß dem alternativen
Verfahren in Tabelle 2 dargestellt sind. Die prozentuale Inhibierung
für jede Verbindung
wurde berechnet, indem der Grad der Luciferase-Expression in infizierten
Zellen in Gegenwart der Verbindung als ein Prozentsatz des Grads
quantifiziert wurde, der für
Zellen beobachtet wurde, die in Abwesenheit der Verbindung beobachtet
wurde, und ein solchermaßen
bestimmter Wert von 100 subtrahiert wurde. Für Verbindungen, die bei Konzentrationen
von weniger als 10 μM
getestet wurden, wurde die prozentuale Inhibierung bei 10 μM durch Extrapolation
unter Verwendung der XLfit-Kurvenanpassung der Microsoft-Excel-Tabellenkalkulations-Software
bestimmt. Kurven wurden aus 10 Datenpunkten erhalten (% Inhibierung,
bestimmt bei 10 Konzentrationen der Verbindung), indem ein logistisches
Vier-Parameter-Modell (XLfit-Model 205: y = A + ((B – A)/(1
+ ((C/x)D))), worin A = Minimum y, B = Maximum
y, C = logEC50, D = Steigung(sfaktor); x
und y sind als Datenwerte bekannt. Extrapolationen wurden mit den
ungesperrten A- und B-Parametern durchgeführt.
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Somit
handelt es sich, basierend auf diesem Assay, bei allen erfindungsgemäßen Verbindungen
um wirksame antivirale Inhibitoren.
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Die
erfindungsgemäßen Verbindungen
können
oral, parenteral (einschließlich
subkutaner Injektionen, intravenöser,
intramuskulärer,
intrasternaler Injektions- oder Infusionsverfahren), durch Inhalationsspray
oder rektal in Einnahme-Einheit-Formulierungen, die herkömmliche
nicht-toxische pharmazeutisch akzeptable Träger, Adjuvantien und Vehikel
enthalten, verabreicht werden.
-
Erfindungsgemäß wird somit
des Weiteren eine pharmazeutische Zusammensetzung zur Behandlung viraler
Infektionen wie HIV-Infektion und AIDS bereitgestellt. Die pharmazeutische
Zusammensetzung umfasst einen pharmazeutischen Träger und
eine therapeutisch wirksame Menge einer erfindungsgemäßen Verbindung.
-
Die
pharmazeutische Zusammensetzung kann in Form oral verabreichbarer
Suspensionen oder Tabletten; Nasensprays, steriler injizierbarer
Zubereitungen, zum Beispiel als sterile injizierbare wässrige oder
oleagene Suspensionen oder Suppositorien, vorliegen.
-
Im
Fall der oralen Verabreichung als Suspension werden diese Zusammensetzungen
entsprechend den im Fachgebiet der pharmazeutischen Formulierung
bekannten Verfahren hergestellt und können mikrokristalline Zellulose
zur Verleihung von Volumen, Alginsäure oder Natriumalginat als
Suspendiermittel, Methylzellulose als Viskositätsverstärker, und im Fachgebiet bekannte
Süßungsmittel/Geschmacksstoffe
enthalten. Als Tabletten zur sofortigen Freisetzung können diese
Zusammensetzungen mikrokristalline Zellulose, Dicalciumphosphat,
Stärke,
Magnesiumstearat und Lactose und/oder weitere im Fachgebiet bekannte
Exzipienten, Bindemittel, Streckmittel, Sprengmittel, Verdünnungsmittel
und Schmiermittel enthalten.
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Die
injizierbaren Lösungen
oder Suspensionen können
in bekannter Weise unter Verwendung geeigneter nicht-toxischer,
parenteral akzeptabler Verdünnungsmittel
oder Lösungsmittel
wie Mannitol, 1,3-Butandiol, Wasser, Ringer's Lösung
oder isotonische Natriumchloridlösung,
oder geeigneter Dispergier- oder Netz- und Suspendiermittel, wie
sterile, geschmacksneutrale, fette Öle, einschließlich synthetischer
Mono-und Diglyceride und Fettsäuren
einschließlich Ölsäure, formuliert
werden.
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Die
erfindungsgemäßen Verbindungen
können
Menschen oral in einem Dosisbereich von 1 bis 100 mg/kg Körpergewicht
in verteilten Dosen verabreicht werden. Ein bevorzugter Dosisbereich
ist 1 bis 10 mg/kg Körpergewicht
oral in verteilten Dosen. Ein weiterer bevorzugter Dosisbereich
ist 1 bis 20 mg/kg Körpergewicht oral
in verteilten Dosen. Es versteht sich jedoch, dass der spezielle
Dosierungsgrad und die Häufigkeit
einer Dosis für
einen bestimmten Patienten variiert werden kann und von einer Reihe
von Faktoren abhängt,
einschließlich
der Aktivität
der spezifisch verwendeten Verbindung, der metabolischen Stabilität und Wirkungsdauer
der Verbindung, des Alters, Körpergewichts,
allgemeinen Gesundheitszustands, Geschlechts, der Ernährung, des
Modus und der Zeit der Verabreichung, der Geschwindigkeit der Ausscheidung,
der Wirkstoffkombination, des Schweregrades des jeweiligen Krankheitszustandes,
und des die Therapie unternehmenden Wirtes.