DE2540544C2 - (1-47)-Urogastron und das entsprechende durch Reduktion der Disulfidbindungen erhältliche Polypeptid, Verfahren zu deren Herstellung und diese Polypeptide enthaltende pharmazeutische Zusammensetzungen - Google Patents

Description

I—»ne-Gly-Glu-Arg-Cys-Gln-Tyr-Aig-Asp-Leu-OH

und das entsprechende durch Reduktion der Disulfidbindungen erhältliche Polypeptid.

2. Verfahren zur Herstellung der Polypeptide gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man /?-Urogastron oder ;<-Urogastron in einem wäßrigen Medium in Gegenwart von aus reifen Fruchtkörpern des Pilzes Armillaria mellea erhältlicher AM-Protease bei einem pH-Wert von 3 bis 10 und bei einer Temperatur von 10 bis 50⁰C hydrolytisch spaltet, das (l-47)-Urogastron isoliert und gegebenenfalls mit einem in der Peptidchemie zur Reduktion von Dusilfidbindungen üblichen Reduktionsmittel reduziert

3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß man die hydrolytische Spaltung bei einer Urogastron-Konzentration von 1 mg/ml aufwärts, einem pH-Wert von 6 bis 9 einer Temperatur von 20 bis 40°C und einem Enzym/Substrat-Verhältnis von 1 Teil Enzym auf 8 Teile Substrat bis 1 Teil Enzym auf 100 Teile Substrat durchführt.

4. Pharmazeutische Zusammensetzungen, enthaltend eines der Polypeptide gemäß Anspruch 1 und übliche Verdünnungsmittel oder Trägermittel.

Die Erfindung betrifft die im Anspruch 1 bezeichneten Polypeptide, welche die Eigenschaft besitzen, die Sekretion von saurem Magensaft zu inhibieren.

Es ist seit vielen Jahren bekannt, daß Extrakte von menschlichem Urin eine Inhibierung der Sekretion von saurem Magensaft bei Warmblütlern verursachen können. Die Isolierung zweier der aktiven Komponenten in reiner Form ist in der DE-OS 23 59 564 beschrieben. Diese beiden reinen Komponenten sind als ^-Urogastron bzw. ^-Urogastron bekannt. Die Grundlage der vorliegenden Erfindung ist die Feststellung, daß der enzymatische Abbau von ß- oder;<-Urogastron zu einem neuen Polypepiid führen kann und daß dieses neue Polypeptid und sein Reduktionsprodukt kräftige Inhibitoren für die Sekretion von saurem Magensaft sind.

Bei dem erfindungsgemäßen (l-47)-Urogastron handelt es sich um ein weißes, wasserlösliches, saures Polypeptid, das aus einer einzigen Polypeptidkette mit drei inneren Disulfidbindungen besteht; am N-Ende nach Dansylierung Asparaginsäure und am C-Ende Leucin aufweist; ein Molekulargewicht von ungefähr 5500 besitzt; die folgenden physikalischen Eigenschaften zeigt:

Papierchromatografie in n-Butanol : Essigsäure : Pyridin : Wasser (30 :6 :24 :20) — einziger Fleck mit einer Mobilität von 0,90 relativ zu Phenylalanin;

Papierelektrophorese in Essigsäure/Ameisensäure mit pH-Wert 2,1 — ein »Komet« mit einer Frontmobilität von 1,58 relativ zu/r-DNP-Lysin;

Acrylamidgelelektrophorese in 0,1 m Tris/Salzsäure-Puffer mit pH-Wert 8,9 — ein einziger Fleck, der sich mit einer Mobilität von 0,81 relativ zu Bromphenolblau zur Anode bewegt;

so und eine biologische Wirkung, wie weiter unten definiert, im Bereich von 0,2 bis 1 ng/kg aufweist.

Die Erfindung betrifft weiterhin Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen gemäß den obigen Ansprüchen 2 und 3.

Der Fortschritt der Reaktion kann dadurch verfolgt werden, daß man Proben des Reaktionsmediums mittels Papierelektrophorese bei einem pH-Wert von 6,5 untersucht, oder dadurch, daß man die Proben der »Dansylierungstechnik« unterwirft, wobei l-Dimethylaminonaphthalin-5-sulfonyl-chlorid (Hartley, Biochem. ]. 1970,119, 805) verwendet wird, und die Menge des gebildeten N ',N'-Dansyl-L-Iysins bestimmt. Dadurch kann der Einfluß jeder Veränderung der Reaktionsbedingungen bestimmt werden.

Das Enzym AM-Protease kann so erhalten werden, wie es näher in der GB-PS 12 63 956 beschrieben ist. Die Disulfidbindungen können beispielsweise mit einem Thiol reduziert werden, wie z. B. Mercaptoäthanol oder

to Dithiothreitol. Bevorzugte Bedingungen zur Erzielung der gewünschten Spaltung des Urogastrons in einer verhältnismäßig kurzen Zeit, beispielsweise 12—24 st, sind eine Urogastronkonzentration von 1 mg/ml aufwärts, ein pH-Wert von b bis 9, eine Temperatur von 20 bis 40⁰C und ein Hn/yin/Substrai-Verhältnis von 1 Teil Enzym auf 8 Teile Substrat bis 1 Teil Enzym auf 100 Teile Substrat. Es ist auch zweckmäßig. Metallionen in das Inkubationsmedium einzubringen, wie z. B. Calcium- oder Magnesiumioncn in Form ihrer Chloride mit einer

tn Konzentration von 10" ■' bis 10 ⁴ molar.

Die Wirkung der ΛΜ-Protease auf das ft- odci^-lJrogasiron besteht natürlich darin, das ß- oder v-Urogastron an der Aminoseite eines Lysinrestes zu spalten, /war enthüll das Ausgangsurogastron zwei Lysinreste, aber es wurde gefunden, daß clic Spaltung vorwiegend an einem der l.ysinreste stattfindet. Aus ^-Urogastron wird ein

Hexapepud, das einen Glutaminsäure-, einen Leucin-, einen Lysin-, zwei Tryptophan- und einen Argininrest enthält, wobei Lysin sich am N-Ende befindet, in Freiheit gesetzt, und aus ;--Urogastron wird ein Pentapeptid, das einen Glutaminsäure-, einen Leucin-, einen Lysin- und zwei Tryptophanreste enthält, wobei Lysin sich am N-Ende befindet, in Freiheit gesetzt. Wenn jedoch etwas schärfere Reaktionsbedingungen angewendet werden, dann kann auch eine Spaltung am anderen Lysinrest stattfinden, was zu einem zweiten Polypeptid im Produkt j führt

Die nach der Abspaltung der Hexa- bzw. Pentapeptide aus/7- bzw.;<-Urogastron übrig bleibenden Polypeptide sind identisch und stellen das erfindungsgemäße Polypeptid dar. Dieses Polypeptid kann aus dem Reaktionsgemisch durch jede herkömmliche Technik für die Abtrennung von Polypeptiden isoliert werden, jedoch ist die Anwendung von Gelchromatografie besonders zweckmäßig. So ist es möglich, das nach der Abspaltung des Hexa- oder Pentapeptids vom ß- oder /-Urogastron erhaltene wäßrige Medium durch eine Kolonne eines vernetzten Dextrangels oder eines Polyacrylamidgels zu filtrieren und die Kolonne mit einem Puffer, der aus Komponenten besteht, die bei Gefriertrocknung unter Hochvakuum flüchtig sind, wie z. B. eine wäßrige Ammoniumacetatlösung mit einem pH-Wert von 7,2, zu eluieren, wobei das gewünschte Produkt erhalten wird, das durch Gefriertrocknen des Eluats isoliert wird.

Wenn das Reduktionsprodukt gewünscht wird, dann wird das erfindungsgemäße Polypeptid zweckmäßig in einem wäßrigen Puffer mit einem pH-Wert von 7 bis 10 unter Ausschluß von Sauerstoff und Licht reduziert Das Produkt kann wiederum unter Verwendung von Gelchromatografie isoliert werden.

Wie oben angegeben, sind das erfindungsgemäße Polypeptid und sein Reduktionsprodukt kräftige Inhibitoren für die Sekretion von saurem Magensaft bei Warmblütlern. Diese Eigenschaft kann dadurch demonstriert werden, daß sie die Sekretion von saurem Magensaft bei Hunden inhibieren, die mit einer Heidenhain-Tasche versehen sind und deren Magensaftsekretion mit Histamin stimuliert worden ist. Dieser Test wird zur Bestimmung der biologischen Wirkung der Produkte verwendet. Die biologische Wirkung wird definiert als die Menge des Produkts, ausgedruckt in μg/kg, die bei Verabreichung durch intravenöse Injektion an einen Hund, der mit einer Heidenhain-Tasche versehen ist und dessen Magensäuresekretion durch Infusion von Histamin auf 60—80% des maximalen Sekretionswerts stimuliert ist, eine 50- bis 70%ige Inhibierung dieser Säuresekretion verursacht Eine gewisse Variation der biologischen Wirkung einer bestimmten Probe wird gefunden, wenn sie zu verschiedenen Gelegenheiten bei verschiedenen Hunden gemessen wird, weshalb das Ergebnis am besten als Dosierungsbereich ausgedrückt wird. Die physiologische Wirkung der Inhibierung der Sekretion des sauren Magensafts ist bei der Behandlung von Duodenalgeschwüren von Wert. Unter den Testbedingungen wurden keine ernst zu nehmenden toxischen Wirkungen festgestellt. Die Polypeptide zeigen außerdem bei einem Standardtest Geschwürheilungseigenschaften.

Bei Verwendung zur Erzielung einer Inhibierung der Sekretion von saurem Magensaft bei Warmblütlern kann eine große Reihe von Dosierungen verwendet werden, wie z.B. von 0,05 bis 10μg/kg, je nach den Umständen und dem Ausmaß der gewünschten Inhibierung. Die Dosis kann durch Injektion, insbesondere intravenöse oder subkutane Injektion, oder durch intravenöse Infusion verabreicht werden. Die Wirkung einer einzigen intravenösen Injektion dr.uert ungefähr 1 '/2 st, und die Wirkung einer Infusion währt ungefähr 1 '/2 st nach Beendigung der Infusion, so daß die Aufrechterhaltung eines niedrigen Aciditätswerts es erfordert, daß entweder die Dosis wiederholt wird oder daß ein Depotpräparat injiziert wird, aus welchem der aktive Bestandteil langsam während einer längeren Zeit in Freiheit gesetzt wird. Bei der Verwendung beim Menschen liegt eine typische Einzeldosis zwischen 5 und 500 μg/Mensch, verabreicht durch injektion oder Infusion.

Das erfindungsgemäße Polypeptid oder Reduktionsprodukt kann in Form einer pharmazeutischen Zusammensetzung verabreicht werden, so daß gemäß der Erfindung weiterhin eine pharmazeutische Zusammensetzung vorgeschlagen wird, die das Polypeptid oder das Reduktionsprodukt, wie sie oben definiert sind, und ein pharmazeutisch zulässiges Verdünnungsmittel oder Trägermittel enthält.

Bevorzugte Zusammensetzungen sind solche, die sich für parenterale Verabreichung eignen, wie z. B. sterile, injizierbare Depotpräparate oder Präparate mit langsamer Abgabe. Eine injizierbare Lösung oder Suspension kann 0,5 bis 500 μg/ml enthalten, wobei die verdünnteren Lösungen durch Infusion verabreicht werden. Ein injizierbares Depotpräparat oder ein Präparat mit langsamer Abgabe kann dagegen bis zu 2 mg des aktiven Bestandteils je Dosis enthalten. Besonders zweckmäßige sterile, injizierbare Lösungen werden in isotonischen Salz- oder isotonischen Dextroselösungen hergestellt, die nötigenfalls auf einen pH-Wert von 5 bis 9 gepuffert sind und 1 bis 100 μg/ml enthalten können.

Die oben erwähnten sterilen, injizierbaren Zusammensetzungen können als solche hergestellt und gelagert werden, oder sie können unmittelbar vor der Verwendung hergestellt werden, indem ein steriles Medium, wie z. B. Wasser, zu einem bekannten Gewicht, wie z. B. 10 bis 200 μg, des sterilen Bestandteils zugegeben wird, der in einem Behälter, wie z. B. einer Phiole oder Ampulle, welche die Sterilität aufrechterhält, eingeschlossen ist. Das bekannte Gewicht an sterilem Bestandteil kann auch ausreichend sterile Dextrose oder ausreichend steriles Natriumchlorid enthalten, so daß nach Verdünnung mit dem sterilen Medium eine isotonische Lösung entsteht.

Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert. Die chromatografischen Materialien sind mit der Bezeichnung des Herstellers benannt: to

ein poröses Polyacrylamidgel: Biogel® P 6
poröses vernetztes Dextrangel:Sephadex®G-25.

Bei den Verfahren, bei denen eine Chroinatografiekolonne verwendet wurde, wurde das Eluat in Fraktionen b5 aus einer bestimmten Anzahl von Tröpfchen gesammelt, wobei ein Ultrorac LKB 7000-Fraktionssammler verwendet wurde und wobei diese Fraktionen durch Messung der UV-Absorption bei 280 ΐπμ auf Peptidmaterial untersucht wurden. Das Material wurde in Fraktionen gesammelt. Die biologische Aktivität wurde wie folgt

bestimmt:

Hunde wurden mit gesonderten entnervten Funduschtaschen versehen, und es wurde eine subkutane Infusion von Istamin verwendet, eine Magensaftsekrektion von annähernd 60—80% der Maximalgeschwindigkeit zu stimulieren (üblicherweise war eine infusion einer Lösung von 600 μg Histamin (ausgedrückt als Base) in 0,48 ml je Stunde ausreichend). Eine bekannte Menge Testmaterial wurde in isotonischer Salzlösung aufgelöst, und nachdem der Hund Magensaft mit stetiger Geschwindigkeit sekretierte, wurde eine einzige intravenöse Injektion dieses Materials verabreicht. Die Inhibierung der Magensaftsekretion wurde für die jeweils getestete Dosis notiert.

Die spezifische Aktivität kann aus den für die verschiedenen Dosen erhaltenen Resultaten bestimmt werden,
ίο Arcvnosäureanalysen wurden unter Verwendung eines Locarte-Aminosäure-Analysators ausgeführt

Alle Kolonnenchromatografien wurden bei 4°C ausgeführt, und alle Pufferlösungen waren mit Toluol gesättigt.

Beispiel 1

Eine Lösung von 1,0 mg /?-Urogastron in einem Gemisch aus 200 μΐ eines 0,1 m Ammoniumcarbonatpuffers mit einem pH-Wert von 8,2 und 50 μΙ einer 0,01 m Magnesiumchloridlösung wurde mit 60 μg AM-Pritease in 200 μΐ Wasser 16 st bei 37° C inkubiert. Die erhaltene Lösung wurde auf eine Kolonne (35 ■ 1 cm) eines porösen vernetzten Dextrangels (Sephadex® G-25) aufgebracht, und die Kolonne wurde mit 0,05 m Ammoniumacetat mit einer Fließgeschwindigkeit von 8 ml/st entwickelt. Fraktionen von 1 ml wurden gesammelt, und peptidisches Material wurde in den Fraktionen 12—20 und 38—52 festgestellt.

Das Material in den Fraktionen 38—52 war biologisch inaktiv, und Proben wurden mit Säure, Base oder Leucinaminopeptidase hydrolysiert Analyse der resultierenden Lösungen zeigte, daß das ursprüngliche Peptid Aminosäuren in den folgenden Verhältnissen enthielt: GIu 1, Leu 1, Lys 1, Trp 2, Arg 1. Dansylierung ergab die Anwesenheit von Lysin am N-Ende.

Das Material aus den Fraktionen 12—20 war biologisch aktiv, und diese Fraktionen wurden vereinigt und lyophilisiert, wobei ein weißes, wasserlösliches, saures Polypeplid mit den folgenden Eigenschaften erhalten wurde:

jo 1. biologische Aktivität bei einer Einzelbest^:mmung: 30% Inhibicrung bei einer Dosis entsprechend 0,7 μg/kg Ausgangsmaterial;

2. Aminosäureverhältnisse bei einer Analyse eines Hydrolysats:

Asp 7,Ser 3,GIu 4, Pro 1,GIy 4, AIa 2, VaI 3,Cys 6, Met 1, He 2, Leu 4,
Tyr5, His 2, Lys l,Arg2;

3. einziger Fleck mit einer Mobilität von 0,90 im Verhältnis zu Phenylalanin bei Papierchromatografie in n-Butanol : Essigsäure : Pyridin : Wasser (30 :6 : 24 : 20);

4. ein »Komet« mit einer Frontmobilität von 1,58 relativ zu f-DMP-Lysin bei Papierelektrophorose in Essigsäure/Ameisensäure mit pH-Wert 2,1 (20 ml Ameisensäure, 80 ml Essigsäure, mit Wasser auf 1 I gebracht);

5. einziger Fleck mit einer Mobilität von 0,81 relativ zu Broniphenolblau bei Acrylamidgelelektrophorese in 0,1 m Tris/Salzsäure-Puffer mit pH-Wert 8,9.

Dansylierung des Produkts zeigte die Anwesenheit von Asparaginsäure am N-Ende, und Digerierung mit Carboxypeptidase A zeigte die Anwesenheit von Leucin am C-Ende.

Dansylierung des Produkts zeigte jedoch die Anwesenheit einer kleinen Menge eines Peptids mit Lysin am N-Ende, woraus sich die Anwesenheit einer kleinen Menge eines Peptids erschließen läßt, das durch Spaltung am zweiten Lysinrest des Ausgangsmaterials gebildet wurde.

B e i s ρ i e I 2

Eine Lösung von 1.8 mg /-Urogastron in einem Gemisch aus 200 μΙ eines 0,1 m Ammoniumcarbonatpuffers mit einem pH-Wert von 8,2 und 20 μΙ 0,1 m Calciumchloridlösung wurde mit 100 μg AM-Protease in 100 μΐ 0,1 m Ammoniumbicarbonatlösung 3 st bei 37⁰C inkubiert. Eine zweite Portion von 100 μg AM-Protease wurde zugegeben, und die Inkubierung wurde weitere 16 st fortgesetzt. Die erhaltene Lösung wurde auf eine Kolonne (35 ■ 1,1 cm) aus porösem vernetzten! Dextrangel (Sephadex® G-25) aufgebracht, und die Kolonne wurde mit 0,05 m Ammoniumacetat bei einer Fließgeschwindigkeit von 17 ml/st entwickelt. Fraktionen von 30 Tropfen wurden gesammelt, und das Peptidmaterial wurde in den Fraktionen 15—24 und 49—65 entdeckt.

Das Material in den Fraktionen 49—65 war biologisch inaktiv, und Analyse von Hydrolysaten zeigte, daß das Material Aminosäure in den folgenden Verhältnissen enthielt: GIu I.Leu l.Lys 1, Trp 2. Dansylierung ergab die Anwesenheit von Lysin am N-Ende.

Das Material aus den Fraktionen 15-24 war biologisch aktiv, und diese Fraktionen wurden vereinigt und lyophilisiert, wobei ein weißes, wasserlösliches, saures Polypeplid, nämlich das gleiche wie in Beispiel 1, erhalten wurde.

Beispiel 3
Eine Lösung von 1.75 ing/Z-Urogasiron in 1.0 ml 0,025 m Ammoniumbicarbonat wurde mit 30 μg AM-Prote;i-

se in 100 μΐ Wasser während 3 st bei 37°C inkubiert. Eine zweite Portion von 20 μg AM-Protciise wurde dann zugegeben, und die Inkubierung wurde weitere löst fortgesetzt. Die resultierende Lösung wurde auf eine Kolonne (100 · 0,9 cm) eines porösen Polyacrylamidgels (Biogel®P 6: 75-40 μηι Durchmesser) aufgegeben, welches mit 0,05 m Ammoniumacetat ins Gleichgewicht gebracht worden war. Die Kolonne wurde mit dieser Lösung bei einer Fließgeschwindigkeit von 5 ml/sl entwickelt. Fraktionen von 1 ml wurden angenommen, und das biologisch aktive Peptidmaterial wurde in den Fraktionen 24—30 entdeckt. Diese wurden vereinigt und lyophilisiert, wobei ein weißes, wasserlösliches, saures Polypeptid mit den gleichen Eigenschaften wie das Produkt von Beispiel 1 erhalten wurde. Es zeigte bei einer Einfachbestimmung eine biologische Aktivität entsprechend einer 67%igen Inhibierung, wenn eine Dosis entsprechend 0,6 μg/kg des Ausgangsmaterials verwendet wurde.

Beispiel 4

Das gesamte in Beispiel 3 erhaltene Polypeptid wurde in Wasser aufgelöst, worauf 100 mg Harnstoff, 1 mg Äthylendiaminteiraessigsäurc und 100μ! 1,5 m Tris/Salzsäure-Puffer mit einem pH-Wert von 8,6 zugegeben is wurden. Die Lösung wurde mit Wasser auf 250 μΙ verdünnt, mit Stickstoff, der keinen Sauerstoff enthielt, gespült und hierauf mit 10 mg Dithiothreit versetzt. Die erhaltene Lösung wurde 20 st im Dunkeln gehalten und dann auf eine Kolonne (100 · 0,9 cm) eines porösen Polyacrylamidgels (Biogel®P 6; 75-40 μτη Durchmesser) aufgebracht, welche mit 0,05 m Ammoniumacetat das 0,0002 m Dithiothreit enthielt, ins Gleichgewicht gebracht worden war. Die Kolonne wurde mit dieser Lösung unter einer Fließgeschwindigkeit von 5 ml/st entwickelt. Fraktionen von 1 ml wurden gesammelt, und das Peptidmaterial wurde in den Fraktionen 24—35 entdeckt. Das Material aus diesen Fraktionen war biologisch aktiv. Diese Fraktionen wurden vereinigt und lyophilisiert, wobei ein Polypeptid erhalten wurde, in welchem die Cystinreste in Cysteinreste reduziert waren und welches die folgenden Eigenschaften besaß:

1. biologische Aktivität bei einer Einfachbestimmung:

59% Inhibierung bei einer Dosis entsprechend 0,6 μg/kg Ausgangsmaterial;

2. Aminosäureverhältnisse bei Analyse eines Hydrolysats:

Asp 7, Ser 3, GIu 4, Pro 1, GIy 4, AIa 2, VaI 3, Cys 6, Met 1, Ue 2, Leu 4, jo

Tyr5,His2,Lysl,Arg2.

Beispiel 5

Das in Beispiel 1 beschriebene Polypeptid oder ein Reduktionsprodukt davon, bei welchem die ursprünglichen Cystinreste in Cystein reduziert sind, wird in einer pyrogenfreien 5°/oigen (G/V) Dextroselösung aufgelöst, so daß eine Endkonzentration von 40 μg/ml erhalten wird. Diese Lösung wird in Mengen von 2,5 ml in Phiolen eingebracht und zwar jeweils durch ein sterilisierendes Membranfiltralionssystem. wie z. B. ein 0,22 πιμ Millipore®-Filter. Der Inhalt einer jeden Phiole wird dann lyophilisiert, und die Phiolen werden unter sterilen Bedingungen verschlossen und zugeschmolzen. Die Phiolen, die ein steriles Gemisch aus Polypeptid und Dextrose enthalten, werden bei 4° C gelagert.

Beispiel 6

In eine Phiole, die gemäß Beispiel 5 hergestellt worden ist, werden unmittelbar vor der Verwendung 2,5 ml steriles Wasser eingebracht, wobei eine sterile, injizierbare Lösung von 40 μg/ml eines Polypeptids in einer 5%igen (G/V) Dextroselösung erhalten wird.

Beispiel 7

10 mg des in Beispiel i beschriebenen Poiypeptids oder eines Redukiionsprcdukis davon, bei welchem die ursprünglichen Cystinreste in Cystein reduziert sind, werden in 50 ml pyrogenfreiem Wasser aufgelöst, und die Lösung wird durch ein sterilisierendes Membranfiltrationssystem filtriert, wie z. B. durch ein 0.22 πιμ Millipore®- Filter, wobei das Filtrieren in Ampullen erfolgt so daß jede Ampulle 0,5 ml aufnimmt. Der Inhalt einer jeden Ampulle wird dann lyophilisiert, und die Ampullen werden unter sterilen Bedingungen verschlossen. Die Ampullen, von denen jede 100 μg des sterilen Polypeptids enthält werden bei —20⁰C gehalten.

Beispiel 8

Der Inhalt einer Ampulle, die wie in Beispiel 7 hergestellt worden ist wird in steriler, pyrogenfreier, 5%iger (GAO Dextroselösung aufgelöst so daß eine Lösung erhalten wird, die 1 bis 5 μg/ml Polypeptid in 5%iger (GA⁷) Dextroselösung enthält Diese Lösung eignet sich für die Verabreichung durch Infusion.

Wenn eine für Injektion geeignete Lösung gewünscht wird, dann wird der Inhalt einer Ampulle mit steriler, pyrogenfreier 5%iger (GAO Dextroselösung verdünnt so daß eine Lösung erhalten wird, die 5—50 μ§/πι1 des Polypeptids enthält Alternativ kann die 5%ige (GAO Dextroselösung durch isotonische Salzlösung ersetzt werden.

Claims (1)

1. Patentansprüche:
   l.(l-47)-Urogastron der Formel

   H-Asn-Ser-Asp-Ser-Glu-Cys-Pro-Leu-Ser-His-Asp-Gly

   ι—Tyr-Met-Cys-Val-Gly-Asp-His-Leu-Cys-iyr

   j I—► Üe-Glu-Ala-Leu-Asp-Lys-Tyr-Ala-Cy s —ι

   ■ Tyr-Gly-Val-Val-Cys-AsiK-l