DE2360118A1 - Vakzinen gegen ferkel-colibacillose und verfahren zu ihrer herstellung - Google Patents
Vakzinen gegen ferkel-colibacillose und verfahren zu ihrer herstellungInfo
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Description
RECHERCHE ET INDUSTRIE TIIERAPEUTIQUES, R.. Ί.T.,
Genval, Belgien
"Vakzinen gegen Ferkel-Colibacillose und-Verfahren-zu ihrer
Herstellung" ·
Priorität: 4. Dezember 19?2, V.Ot./u, Kr. 511 998.
Die Erfindung betrifft neue Vakzinen gogen Oolibacillose, insbesondere
Vakzinen gegen Ferkel-Golibacillose.
Die neonatale Colibacillose des Schv/eins ist eine wichtige Todes
ursache bei "Ferkeln. Es sind bereits zahlreiche Versuche unternommen,
v/orden, um diese Krankheit durch aktives Immunisieren des
Muttertieres gegen Eseherichia coli entweder durch Tot- oder
Lebendvakzinen oder durch Verabreichen von Eseherichia coli-Anti
seriün an die Schv.'eine zu b
Die aktive Immunisierung; der Mutterschweine iat durch parenterale
Vsrabreichuiif; von Eseherichia eoli-Vakzinen. (vgl. z.B. U.R. VJiI-spri
und J* Svendsen, Amer, J. Vet. Res.,'Bond J2 (1973), Seiten
bis 89S) vorgenommen v/ordon. l>a jedoch der bzw. die zur Ι-ητπι-verv.'eiideten
Eseherichia coli-Stänsme nur spezifische
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Antikörper hervorrufen, während mit einem bestimmten Ausbruch der Krankheit mehrere und'verschiedene Stämme verbunden sein können,
haben diese Versuche zur Vorbeugung auf Basis einer antibakteriellen Immunität widersprechende und im allgemeinen unbefriedigende
Resultate ergeben. Selbst wenn in einigen Fällen ein guter Schutz erhalten wurde, war er auf die in der Vakzine enthaltenen Serotypen
von Escherichia coli beschränkt.
Die Verabreichung von Antiserum (vgl. z.B. O.P. Miniats. Can. Vet,
J., Band 11 (1970), Seiten 52 bis 56) kann keine praktikable Vorbeugung
gegen Ferkel-Üolibacillose gewährleisten. Der durch die Verabreichung von Antiserum erreichte Schutz ist tatsächlich von
kurzer Dauer und erfordert eine kontinuierliche Verabreichung an die Ferkel.
Es wurde nun überraschenderweise gefunden, daß bei Verabreichung
von hitzelabilem (LT) Escherichia coli-Enterotoxin mit einem Adjuvans
an trächtige Mutterschweine 3 bis 6 Wochen vor dem Ferkeln
anstelle der Verabreichung ganzer Zellen von Escherichia coli die geimpften Mutterschweine nicht nur Antikörper in ihrem Kolostrum
und in ihrer .. Milch entwickeln, sondern dadurch auch die Ferkel
gegen die wirkung der Bnterotoxine geschützt werden. Der Schutz
erstreckt sich gegen die Wirkung von Snterotoxinen, die durch Escherichia
coli-Serotypen gebildet v/erden, welche sowohl homolog als auch heterolog zu dem Escherichia coli-Stamm sein können, aus deiu das
hitzelabile (LT) Enterotoxin isoliert wurde. Anders ausgedrückt schützt die Verabreichung des hitzelabilen (LT) Escherichia coli-Enterotoxins
an das Muttertier die Ferkel nicht nur gegen die durch das hitzelabile (LT) Sscherichia coli-Enterotoxin verursachte
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Colibacillosei sondern auch gegen die durch das hitaestabile (ST)
Enterotoxin verursachte Colibacillose.
Aufgabe der"Erfindung war es daher, neue Vakzinen gegen Fer-kel-Colibaeillose
zur Verfügung zu stellen, mit der diese Krankheit zuverlässig bekämpft werden kann. Diese Aufgabe wird durch
die Erfindung gelöst.
Gegenstand der Erfindung sind somit Vakzinen gegen Ferkel-Colibacillose,
die eine wirksame Menge an zellfreiem, hitzelabilen (LT) Escherichia eoli-Enterotoxin und ein Ad.juvans enthalten.
Das vorgenannte hitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin
kann aus jedem enteropathogenen Escherichia coli-Serotyp isoliert
v/erden, der die Ferkel-Colibacillose hervorrufen kann und notwendigerweise das hitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin
enthält. Ein bevorzugtes Beispiel eines solchen enteropathogenen 35scherichia coli-Gerotyps ist der bei der American Type Culture
Collection, Rockville, Maryland, T.St.A. unter der Hummer
ATCC 21 972 hinterlegte Escherichia coli-Stamn.
Die Isolierung des hitzelabilen (LS) Escherichia coli-Enterotoxins
ist bekannt. Sie ist .von GYLE3 und BARNUH (J. Infect. Dis., Band
120 (1969), Seiten 419 bis 426) beschrieben worden;. Variationen
dieses Verfahrens sind'von H.V/. SMITH und CL. GYLES (J. . I-Ied.
Mcrobiol., Band 3 (1970), Seiten 387 bis 401), H.V.'. SMITH und
S. HALLS (J. rath. Bact., Band 93 (196?), Seiten 531 bis 543) und
K.H.· './ILOON, G. GYLES und J. SVEIiIVJE^ (Cand. J. Comp. Med. ,
Band 35 (1971), Seiten 294 bis 297) beschrieben worden. Sämtliche
dieser Verfahren und sämtliche andere, bekannte- .äquivalenbe Vfer-^ .-
409823/1134 . \
8A ORIGINAL '·
fahren können zur Herstellung des erfindungsgemäßen hitzelabilen ' (LT) Escherichia coli-Enterotoxinpräparats verwendet v/erden.
Für die vorliegende Erfindung ist es nicht erforderlich, das hitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin rein herzustellen.
Eine solche Reinigung könnte gegebenenfalls z.B. durch Elektrophorese, .Dichtegradienten-Ultrazentrifugation oder Adsorption/
Elution an hydrophilen vernetzten Dextranen, v/ie Sephadex (ein von Pharmacia Fine Chemicals AB, Uppsala I, Schweden hergestelltes
und vertriebenes Produkt), vorgenommen werden. Für die vorliegende Erfindung ist es im wesentlichen ausreichend, daß das
Enterotoxin freigesetzt und von den Escherichia coli-Zellen abgetrennt
wird und praktisch frei von Lipopolysacchariden ist.
Als Adjuvans, das die Aufgabe hat, eine starke Immunreaktion zu
gewährleisten, kann erfindungsgemäß jedes Produkt oder Gemisch
verwendet werden, von dem man weiß, daß es bei Vakzinen als Adjuvans
wirkt. Spezielle Beispiele adäquater Adjuvantien sind gelförmige Aluminiumverbindungen, wie Aluminiumhydroxid, Aluminiumphosphat
und ALHYDROGEL (Warenzeichen eines von der SUPERFOS Export
Company, Kopenhagen, hergestellten und vertriebenen Aluminiumhydroxid-Gels), und Wasser-in-Öl-Emulsionen, wie das
Adjuvans 65 (eine V/asser-in-öl-Emulsion von Antigen in Erdnußöl,
das durch Mannitmonooleat emulgiert und durch Aluminiummonostearat
stabilisiert ist) und komplettes Freunds Adjuvans (eine V/asser-in-öl-Emulsion
von Paraffinöl, das mit Mannitmonooleat emulgiert ict und abgetötetes Ilycobacterium tuberculosis
enthält).
v/ird eine wirksame Menge dor, hitzelabilen (LT)
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Escherichia coli-Enterotoxinpraparats mit dem Adjuvans an trächtige
Mutterschweine intramuskulär oder subkutan verabreicht. Die Dosiereinheit beträgt mindestens 5 mg und vorzugsweise 10 bis
150 mg gefriergetrockneten Extrakt.
•Die Beispiele erläutern' die Erfindung.
Beispiel 1 .
Züchtungsmedium (fest):
g BACTO-TRYPTOSE-Brühe und I5Q g BACTO-AGAR (BACT0--TRYPTQ3E
und BAGTO-AGAR sind Handelsnaraen von· Produkten, die von den
DIFCO-Laboratorien, Detroit 1, Michigan, V.St.A. vertrieben werden)
werden mit 10 Liter Wasser versetzt. Das Gemisch wird unter .Rühren 60 Minuten auf 121°C erhitzt. 20 g BACTO-DEXTROSE
(Handelsname eines von den DIFCO-Laboratorien hergestellten und vertriebenen Produkts) v/erden in 20 ml destilliertem .Wasser gelöst,
und die Lösung wird durch ein Millipore-Sterilisierfilter (Millipore Corporation, Bedford, Massachusetts, V.St.A.) von
0,45 Mikron filtriert. Die beiden Präparationen werden vereinigt
und in aliquoten Teilen von 110 ml in 500 cm — Roux-Kolben verteilt.
' .
Herstellung der Anzuchtkultür: , · '
Der Stamm Escherichia coli ATCC 21 972 wird mit steriler physiologischer
Kochsalzlösung rehydratisiert und 18 Stunden bei 37°C
in Petri-Schalen inkubiert, die jeweils 20 ml.TRYPTOSE-AGAR-Festmeclium
enthalten, das durch Vermischen von 26 g TRYPTOSE-Brühe■
und 30 g AGAR DIFCO (TRYPTÖGE-Brühe und AGiIR DIFCO sind von den
DIFCO-Laboraborien hergestellte und vertriebene Produkte), Auffüllen
mit Wasser bis zu einem Volumen von 1 Liter und 4-5minüti
4 0 9 8 2 3/1134
ges Erhitzen des Gemisches auf 115°C hergestellt wird.
Sodann wird-ein flüssiges Kulturmedium (als PP^ bezeichnet) wie
nachstehend beschrieben hergestellt: JOgProteose-Pepton Kr. 3
(ein von den DIFCO-Laboratorien hergestelltes und vertriebenes
Produkt), 4 g Hefeextrakt und 5 S Glucose werden in 1 Liter V/asser
bei 600C gelöst. Nach dem Abkühlen wird die Lösung mit 5 G
NaCl, 5»O5 g HapHPCL und 1,2 g KH2PO2, versetzt. Das Medium, dessen
pH-Wert 6,9 bis 7,0 beträgt, wird durch ein Seitz-EKii-I-'ilter filtriert
und in 100 ml—Kulturkolben verteilt.
Die so Kulturkolben werden mit ä.on auf den Petri-3chalen erhaltenen
glatten Kolonien beimpft, wobei eine Kolonie auf 20 ml flüssiges
PP7-Kedium verwendet wird. Die beimpften Kulturkolben v/erden
unter Schütteln auf einer Schub te!einrichtung (22 bis 24
Schutte!bewegungen pro Minute) 6 Stunden bei 37°C inkubiert.
Züchtung von Sscherichia coli: · ■
2 Jeder der das Zuchtungsmedium enthaltenden 500 cm — Eoux-Kolben
v/ird mit einem aliquoten Teil von 4 ail dex· in dem flüssigen
PP7- Medium erhaltenen Escher ichia coli-Kultur, d.h. , mit et v/a
4 χ Kk Bakterien, beimpft. Die Kolben werden unter Schütteln auf
Schütteleinrichtungen mit 22 bis 24 Schüttelbewegungen pro Minute
einen Tag bei 37°C inkubiert. Jede Zellkultur wird in 25 ml
destilliertem Wasser geerntet, und die Ernten aus 15 Roux-Kolben
(eine Serie) werden in 1 Liter-Kolben vereinigt. Aus jeder Serie v/ird eine Probe von 1 ml sur Reinheitsprüfung entnommen.
Hierzu werden 0,5 ml auf TRYPTOoE-AGAR-Brühe in Petri-3chalen
eingesät und 7 Ta^e bei 540C inkubierü. Die restlichen 0,5 ml
409823/113 4
236011B.
werden in Petri-Schalen eingesät, die 20 ml Sabouraud-Dextrose- ■
Agar enthalten, der durch Auflösen von 65 g Sabouraud-Dextrose-Agar
DIFCO (ein von den DIFCO-Laboratorien hergestelltes und
vertriebenes Produkt) in 1 Liter heißem destilliertem Wasser und anschließendem Sterilisieren hergestellt wird. Die Kultur wird
7 Tage bei 22°C inkubiert.
Die Ernten v/erden mit einer sterilen, wäßrigen !prozentigen- Neomycinsulfat-Lösung
(1,2 ml Neomycinsulfat-Lösung pro 100 ml Ernte)
versetzt. Die Zellen werden durch 3Ominütiges Beschallen des Mediums in einem Branson-Europa-Beschallungsgerät Modell J 22
(Branson Europa N.Y., Soest, Niederlande) aufgebrochen, wobei
das Medium in einem schmelzenden Eisbad gehalten wird.
Nach dem Aufbrechen der Zellen wird die Suspension zum Abtrennen
der Zelltrümmer 2 Stunden bei 5 C und -2550 UpM zentrifugiert. Der
überstand wird zunächst durch ein Klärfilter und dann durch ein Ilillipore-Sterilisierfilter (Hillipore .ist ein Vvarenzeichen der
Killipore Corporation, Bedford, Massachusetts, V.St.A.) filtriert«
Das liitrat wird mit zuvor durch Ethylenoxid sterilisiertem Ammoniumsulfat
bis zur 50prozentigen Sättigung (380 g Ammoniumsulfat pro Liter Filtrat) versetzt, und das Gemisch wird 3 Stunden bei
Raumtemperatur stehengelassen. Der erhaltene Niederschlag wird 2 Stunden bei 5°C und 2550 UpH zentrifugiert. Das Sediment wird
in· einen hauptsächlich aus regenerierter Cellulose bestehenden Beutel gegossen und gegen fließendes V/asser dialysiert, bis die
mit Kesslers Reagens bestimmte Konzentration des Ammoniumsulfats
auf 0,1 bis 0,01 Trozent gesunken ist.
409823/1134
Die Sterilisation des Enterotoxinpräparats erfolgt durch Filtrieren
durch ein Millipore-Sterilisierfilter (Millipore ist ein
Warenzeichen der Millipore Corporation) von 0,4-5 Mikron und Gefriertrocknen.
Ein aliquoter Teil von 1 g des in Beispiel 1 erhaltenen gefriergetrockneten
Enterotoxinpräparats wird durch Zugabe von 20 ml
steriler, Phosphat-gepufferter physiologischer Kochsalzlösung
(pH 7Λ) rehydratisiert. Die sterile, Phosphat-gepufferte physiologische
Kochsalzlösung besteht aus 8 g KaCl, 2 g KCl, 11,5 g Na2HrO4,2g KH2PO4, 1,325 g CaCl2 χ 2H2O, 1 g MgCl2 χ 6H2O und
10 Liter destilliertem Wasser.
Die so erhaltene Vakzine wird unter sterilen Bedingungen mit
20 ml sterilen, komplettem Freunds Adjuvans, d.h., mit einer mit
I-iannltmonooleat emulgierten und mit abgetötetem Kyco.bacterium
tuberculosis versetzten IVasser-in-Öl-Smulsion von Paraffinöl,
gründlich vermischt. Die so erhaltene, adjuvanshaltige
Vakzine wird in 1I- ml—Ampullen verteilt, die entweder abgeschmol—
zen oder dicht verschlossen werden und eine (LT) Enterotoxinrnenge
entsprechend 100 mg gefriergetrocknetem Präparat pro Ampulle enthalten.
Der Inhalt jeder Ampulle entspricht einer Vakzine-Dosiereinheit. Die Vakzine wird trächtigen Mutterschweinen 3 bis 6 V/ochen
vor dem Ferkeln intramuskulär oder subkutan verabreicht.
Die adjuvanshaltige Vakzine kann auch in größere Ampullen verteilt
v/erden, wobei ganzzahlige Vielfache der Dosiereinheit und somit die ontsprechenden Vielfach-^oscn-Vakzinepräparate erhalten
worden.
4 0 9.823/ 1 1 34
B e i.'s ρ i e i 3
Das Verfahren wird bis einschließlich der 6stündigen Inkubation von Escherichia coli AICG 21 972 -bei 37°C in flüssigem PP,-Medium
wie in Beispiel 1 beschrieben durchgeführt.
Die Züchtung von Escherichia coli wird dann in einem flüssigen
Züchtungsmedium wie nachstehend beschrieben vorgenommen:
Aliquote Teile von 6 ml der so erhaltenen Escherichia coli-Kultur
(d.h.-, etwa 6 χ ίο" Bakterien) werden in 300 ml flüssiges
ΡΡ,-Medium enthaltende Züchtungskolben eingeimpft. Die Kulturen
werden einen Tag unter Schütteln auf Schiit fceleinriehtungen (22 bis 24 Schüttelbewegungen pro Minute) inkubiert. Die Ernten aus
5 Züchtungskolben (eine Serie) werden -vereinigt. Jede Ernteserie
wird 2 Stunden bei 2550 UpM zentrifugiert, das Sediment wird'in
150 ml destilliertem Wasser suspendiert, und eine Suspensionsprobe wird wie in Beispiel 1 auf Reinheit geprüft.
Die Zellsuspension wird 30 Minuten in einem Branson-Europa-Beschallungsgerät
Modell J 22 beschallt, wobei das. Medium in einem schmelzenden Eisbad gehalten wird. Nach dem Aufbrechen der Zellen
wird die Suspension zum Abtrennen der Zelltrümmer 2 Stunden bei 5O0C und 2550 UpM zentrifugiert. Der überstand wird durch ein
Millipore-Steriiisierfilter von 0,45 Mikron filtriert, wobei
100 ml Filtrat erhalten werden. Der pH-Wert des Filtrats wird
mit η Salzsäure, auf 6,4 eingestellt. Das Filtrat·wird dann mit
Thiomersal bis zu einer Endkonzentration von 0,02 Prozent versetzt
. .
409823/1134
- IO -
Beispiel 4
ml einer 2prozentigen wäßrigen Lösung von ALHYDRCGEL (ein von
SUPERFOS EXPORT Company hergestelltes und vertriebenes Produkt.) •werden gründlich mit 80 ml des in Beispiel 3 erhaltenen Filtrate
vermischt. Die Adsorption des Enterotoxins an dem ALHYiiROGSL
wird mittels des Ausfällungsversuchs mit Trichloressigsäure geprüft.
20 ml des Überstands werden verv/orfen. Das restliche Gemisch
wird in zehn 10 ml—Ampullen -verteilt>
die verschlossen v/erden. Der Inhalt jeder Ampulle (9 nil) entspricht einer Vakzine-Dosiereinheit
von 100 rag (auf Trockengewichtbasis) des hitzelabilen (LT) Escherichia cöli-Enterotoxins.
Die Vakzine v/ird trächtigen Mutterschi/einen 3 bis 6 Wochen vor
dem Ferkeln intramuskulär oder subkutan verabreicht. Die adjuvanshaltige
Vakzine-kann auch in größere Ampullen .verteilt v/erden,
wobei ganzzahlige Vielfache der Dosiereinheit und somit die entsprechenden
Vielfachdosen-Vakzinepräparate erhalten werden.
Das Verfahren wird wie in Beispiel 3 durchgeführt, v/ob ei jedoch
das Gemisch in 100 Glasampullen verteilt v/ird, die verschlossen
v/erden. Der Inhalt jeder Ampulle (0,9 ml) entspricht einer Vakzine-Dosiereinheit
von 10 mg (auf Trockengewichtbasis) des hitzelabilen (LT) Escherichia coll-SnterotoxInextrakts. Die Vakzine
v/ird trächtigen Mutterschweinen 3 bis 6 V/ochen vor dem Ferkeln intramuskulär oder subkutan verabreicht.
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Die Verhütung der Ferkel-Golibacillose durch subkutane Verabreichung
der erfindungsgemäßen hitzelabilen (LT) Escherichia
coli-Enterotoxinpräparate wird durch die nachfolgenden Versuche I5 2 und 3 gezeigt. In jedem dieser Versuche werden die -Mutter-Schweine 3 bis 6 V/ochen vor dem Ferkeln geimpft, und ein Mutterschwein v/ird als Kontrolltier verwendet, 24 Stunden nach der Geburt werden die Ferkel pro kg Körpergewicht mit 400 mg des gemäß Beispiel 1 hergestellten (LI) Escherichia coli-Enterotoxins infiziert, wobei.für die Verabreichung ein Kagenschlauch verwendet v/ird. Bei drei Würfen v/erden einige Ferkel - wie aus den
nachstehenden Tabellen I bis III ersichtlich - mit 660 mg des
aus dem Stamm ATGC 21 972 erhaltenen hitzestabilen (ST) Escherichia coli-Snterotoxin infiziert. Die klinische Entwicklung der · Ferkel wird fachgerecht verfolgt, wobei auf das Auftreten typischer Symptome.der Colibacillose geachtet wird.
coli-Enterotoxinpräparate wird durch die nachfolgenden Versuche I5 2 und 3 gezeigt. In jedem dieser Versuche werden die -Mutter-Schweine 3 bis 6 V/ochen vor dem Ferkeln geimpft, und ein Mutterschwein v/ird als Kontrolltier verwendet, 24 Stunden nach der Geburt werden die Ferkel pro kg Körpergewicht mit 400 mg des gemäß Beispiel 1 hergestellten (LI) Escherichia coli-Enterotoxins infiziert, wobei.für die Verabreichung ein Kagenschlauch verwendet v/ird. Bei drei Würfen v/erden einige Ferkel - wie aus den
nachstehenden Tabellen I bis III ersichtlich - mit 660 mg des
aus dem Stamm ATGC 21 972 erhaltenen hitzestabilen (ST) Escherichia coli-Snterotoxin infiziert. Die klinische Entwicklung der · Ferkel wird fachgerecht verfolgt, wobei auf das Auftreten typischer Symptome.der Colibacillose geachtet wird.
Tn den Tabellen I bis III bedeutet
Vakzine A die Vakzine des Beispiels 2 bei der 100 mg (auf
Trockengewichtbasis) Dosiereinheit,
Vakzine B die Vakzine des Beispiels 4 bei der 100 mg (auf
Vakzine B die Vakzine des Beispiels 4 bei der 100 mg (auf
Trockengewichtbasis) Dosiereinheit und
Vakzine G die Vakzine des Beispiels 5 bei der 10 mg (auf
Vakzine G die Vakzine des Beispiels 5 bei der 10 mg (auf
Trockengewichtbasis) Dosiereinheit.
(x) 48 Stunden nach dem Ferkeln tritt Hastitis auf.
(xx) Gewichfcsverlust 4 Stunden nach dem Auftreten der
Diarrhöe. -
(xx) Gewichfcsverlust 4 Stunden nach dem Auftreten der
Diarrhöe. -
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Tabelle I: Versuch 1
| Mutterschwein | geimpft mit |
Ferkel | Nr. | infi ziert mit |
Diarrhöe | )auer, Stunden • |
Sterb lich keit , |
Gewicht, Prozent (24- Stunden nach der Infektion ) |
| 2-10 | LT | Anzahl der Stunden zwischen Infektion und Aus bruch |
_ | _ | keine Xnderung | |||
| Nr. | 2-11 | LT | _ | . — | - | + 3,5 | ||
| 2-12 | LT | — | — | - | • + 9,5 | |||
| A | 2-15 | LT | - | — | — | keine Xnderung | ||
| 2-14- | ST | — | — | — | + 3,6 | |||
| 2 | 2-15 | ST | — | — | - | keine Änderung | ||
| 2-16 | ST | — | — | - | + 2,8 | |||
| 3-17 | LT | — | — | - | + 10,6 | |||
| 3-18 | LT | — | - | + 11,8. | ||||
| 3-19 | LT | — | — | - | + 6,3 | |||
| A | 3-20 | LT | — | — | - | + 5,8 | ||
| 3-21 | ST | — | — | - | + 10 | |||
| " 3 | 3-22 | ST | — | - | - | + 11,9 | ||
| 3-23 | ST | — | - | - | + 10,4- | |||
| 3-24- | ST | - | — | - | + lö | |||
| 10-01 | LT | - - | 24 | — | - 10 | |||
| 10-02 | LT | 6 | 24 | - | - 10,9 | |||
| 10-03 | LT | 6 bis 12 | 12 | - | - 5,3 | |||
| 10-04- | LT | 6 | 96 | + | - 14-, 7 | |||
| - | 10-05 | LT | 6 | 10 | - | - 7,6 | ||
| 10-06 | ST | 6 bis 12 | - | - | keine Xnderung | |||
| fr10 | 10-07 | ST | - | -3 | - | seine Xnderung | ||
|
(Kon-
trolle) |
10-08 | ST | 1 | — | - | ce ine Änderung· | ||
| 10-09 | ST | — | 12 | - | keine Xnderung | |||
| 6 | ||||||||
409823/1134
Tabelle IIι Versuch 2
| Mutterschwein | geimpft mit |
Nr. | infi ziert mit |
Ferkel | JDauej} Stun den |
Sterb lich keit |
Gewicht $ Prozent, (24 Stunden nach der Infektion) |
| - | 47-12 | LT | Diarrhöe | keine Änderung | |||
| Nr. | 47-13 | LT' | Anzahl der Stunden zwischen Infektion und Ausbruch |
■ - | - | + 9*2 | |
| A | 47-14 | LT | — | - | keine Inderung | ||
| 47-15 | LT | + 6S4 | |||||
| 47 | 47-16 | LT | - | - | + 6,6 | ||
| 48-08 | LT | — | — " | +•5,2 | |||
| B | 48-09 | LT | -«, | + 6,7 | |||
| 48-10 | LT | «, - | + 3,7 | ||||
| 48 | 48-11 | 1 LT | «. | + 10,5 | |||
| 50-01 | LT | - ■ ■ . | 21 | + | - 19,8 | ||
| 50-02 | LT | - | - | - | keine Inderung | ||
| 50-03 | LT | - | - | + 2,6 | |||
| - | - | 50-04 | LT | - | 14-21 | + | - 22,1 |
| 50-05 50-06 |
.LT LT |
- | 48 10 |
r 18,8 - 3,2 |
|||
| 50-07 | LT | 6 | 21 I |
- 28?5 | |||
| (Kon trolle |
14 21 |
||||||
| 6 | |||||||
409823/1134
| • | 13 | * | ir | . 21 | 5eimpf mit |
• | * | * | - | Hr. | : Versuch 3 | 'Ferkel | Bauer, Stun den |
~ 14 - | Sterb lich keit |
Gewicht, Prozent (24 Stunden nach der Infektion) |
|
| • Tabelle III | χ | - | B | 13-119 | Diarrhöe | — | 23601t8 | —- | - + 8,4 | ||||||||
| Mutterschwel | 13-120 | Anzahlder Stunden zwischen Infektion und Aus bruch |
- | - | +. 11,4 | ||||||||||||
| 13-121 | infi ziert mit |
.— | ι — | + 2 | |||||||||||||
| .1Tr. | 13-122 | LT | -■ | — | _ | keine Änderung | |||||||||||
| 13-123 | LT | — | - | — | + 7,1 | ||||||||||||
| 15 | 13-124 | LT | - - — | 2 | — | + 8,1 | |||||||||||
| 13-125 | LT | - | — | — | + 8 | ||||||||||||
| 13-126 | LT | 4 | ■ ~" | - | + 5,8 | ||||||||||||
| 13-127 | LT | — | ;40 | + | - 21 | ||||||||||||
| 13-128 | LT | "* · | : - - | + 8,4 . | |||||||||||||
| σ | 21-110 | LT | 8 | 48 | + | - 15 | |||||||||||
| 21-111 | LT | ■ 6-11 | -" 6,9 | ||||||||||||||
| 20 | 21-112 | LT | 48 | + | - l*,3 | ||||||||||||
| {Kon- , trolle, |
21-114 | LT | 3 ■ - | i - | - - | .- 5,9 | |||||||||||
| 21-115 | LT | 4 | 6 | - | - 6,3 | ||||||||||||
| ■ | 21-116 | LT | '■ — | — | - 3,6 | ||||||||||||
| σ | 21-117 | LT | . 6 | - | - | - 2 | |||||||||||
| 21-118· | LT | — - | - | - 12,5 | |||||||||||||
| 15-129 | LT' | - | ι — | — | + 7,4 | ||||||||||||
| 15-130 | LT | 6 · | — | — | + 4,9 | ||||||||||||
| 15-131 | LT | - | — | + 13,2 | |||||||||||||
| 15-132 | LT | - | — | — | + 16 | ||||||||||||
| 15-133 | LT | — | - | - . | keine Änderung | ||||||||||||
| 20-101 | LT | — | 6 | - 3,6 | |||||||||||||
| 20-102 | LT | - | 6 | — | - 16,5 | ||||||||||||
| 20-103 | LT | - 5 | 4 | — | - 4,5 XX, | ||||||||||||
| 20-104 | LT | 6 | 6 | — | - 5,3 | ||||||||||||
| ?0-105 | LT | 25 | 6 | — | - 4,7 | ||||||||||||
| 0-106 0-107 |
LT | 19 | 4-9 | - | Keine Änderung, - 3,2 |
||||||||||||
| 0-108 | LT j | 6 | '6 | — | ■ - 5i7 | ||||||||||||
| 0-109 | LT | 3 | 6 | - | - 4,2 | ||||||||||||
| LT LT |
6 | ||||||||||||||||
| LT | 6 | ||||||||||||||||
| LT | |||||||||||||||||
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Die Ergebnisse der Versuche zeigen, daß 6 von 7 Würfen von ge^
impften Mutterschweinen gegen die orale Infektion, mit Escheri- '
chia coli-Enterotoxinen geschützt sind. Der erreichte Schutz beträgt
90 Prozent für einen Wurf und 100 Prozent für die 5 anderen
Würfe. Kein von den IControllschweinen stammender liurf ist widerstandsfähig
gegen die gleiche Infektion mit Enterotoxinen; die
Sterblichkeit -und Morbidität unter den Kontrollferkeln beträgt
71,4- bis 8858 Prozent.
In fünf von sieben Würfen von geimpften Mutter Schweinen sind
sämtliche Ferkel vollständig geschützt; in einem Wurf sind 8 von 10 Ferkeln vollständig geschützt. Für die mit IT-Enterotoxin
infizierten und von KontrollSchweinen stammenden Ferkeln werden
folgende Ergebnisse erhalten: In einem Wurf zeigen 5 von 5 Tieren,
im zweiten Wurf 5 von 7 Tieren und im dritten VJurf 8 von >
9 Tieren typische Symptome.
Ein aliquoter Teil von 12 g des gemäß Beispiel 1 hergestellten
und gefriergetrockneten Ent erot oxinpr Spar at s v/ird in 1 Liter
pyrogenfreiem destilliertem V/asser suspendiert. Die Suspension wird.mit einer !Lösung von 20 g ALHYDROGEL (ein von SÜPERF08
EXPORT Company hergestelltes und vertriebenes Produkt) in 1 Liter pyrogenfreiem destilliertem Wasser vermischt. Der pH-Wert ·
wird mit η Salzsäure auf 6 eingestellt, und das Gemisch v/ird · zur Adsorption des Enterotoxins an ALHYDROGEL 40 Stunden im
Dunkeln bei Saumtemperatur stehengelassen, wobei Mn und wieder gerührt wird. Der End-pH-Wert beträgt 6,3.
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Nach dem Zentrifugieren wird der überstand verworfen und das
Sediment durch Zugabe von 2,2 Liter eines 5O:5O-Gemisches aus
physiologischem Serum und Puffer (22 g Na2HPO4 (m/10) und 78 g
KH2PO4 (m/10) und 10 mg Thiomersal auf 100 ml\ pH 6,3) rehydratisiert.
Das Gemisch wird 2 Stunden bei A-0G gerührt und in zwei
1100 ml-Chargen geteilt, die mit A und B bezeichnet werden.
Charge A enthält 5 »4· mg des Enterotoxinpräparats und 9 mg AL-HYDROGEL
pro.ml und wird in aliquote Teile von 5 ml aufgeteilt,
die somit 27 mg des Enterotoxinpräparats enthalten. Die aliquoten
Teile werden"in Glasampullen gefüllt, die anschließend abgeschmolzen werden. Charge B wird verdünnt durch Zugabe von
303 ml eines 5O:5O-Gemisches aus physiologischem Serum und Puffer
(22 g Na2HPO4 (m/10) und 78 g KH2PO4 (m/10) und 10 mg Thiomersal
auf 100 ml; pH 6,3), das mit 2,7 g ÄLHYDROGEL versetzt wurde. Gharge B enthält 4-,3 mg des Enterotoxinpräparats und 9 1^g
ÄLHYDROGEL pro' ml und \tfird in aliquote Teile von 2,5 ml aufgeteilt,
die somit 10,75*ng des Enterotoxinpräparats enthalten.
Die aliquoten. Teile werden in Glasampullen gefüllt, die dann
abgeschmolzen werden.
Die aus den Chargen A und B hergestellten Vakzinepräparate wei-den
v/ie nachstehend beschrieben in Zucht Zentren, die mit durch Colibakterien verursachte Diarrhöe verseucht sind, an Mutterschweinen
geprüft. Hierzu werden die Mutterschweine 3 bis 6 Wochen vor dem Ferkeln subkutan mit einer Einzeldosis an Vakzine
geimpft: 59 Mutterschweine erhalten eine Dosis der Charge A-Vakzine
und 28 Mutterschv/eine eine Dosis der Charge B-Vakzine.
50 Mutterschweine dienen als Kontrolle und erhalten die gleichen
Volumina desselben ALHYDROGEL-Puffergemisches ohne den Entero-
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t oxinext r akt ·,
Sämtliche Ferkel werden auf das Auftreten von Diarrhöe beobaeh-:
tet. Am und nach dem zweiten Tag des klinischen Krankheitssymptoms
werden die Merkel täglich mit Chloramphenicol, Ampicillin oder Sulfadoxin/Trimethoprim behandelt. Die Ergebnisse sind in
Tabelle IV unter Berücksichtigung der Konsistenz der Fäzes, der Dauer der Diarrhöe, der Anzahl der Verabreichungen von Antibiotika
und der Sterblichkeit durch Wasserentzug zusammengestellt.
ν ■
| Vakzine- Dosis |
Zahl der Würfe |
Wurfe mit Di£ Zahl |
schwerer irrhoe (*) Prozent |
Würfe mit S Zahl |
terblichkeit Prozent |
| 5 ml von Charge A |
59 | 15 | 25,4 | 2 | 3,5 |
| 2,5 ml von Charge B |
28 | 10 | 55,7 | 2 | 7,1 |
| Placebo | 50 | 24 | 48 | 8 | * 16 |
(x) Flüssige Fäzes während mehr als zwei Tagen, mehrere Ver- abreichungen
von Antibiotika, mit und ohne Sterblichkeit·
(xx) 25 Mutterschweine erhalten 2,5 ml. und die anderen
25 Mutterschi'/eine 5 ml.
Die in Tabelle IV zusammengestellten Ergebnisse zeigen, daß durch die Verabreichung erfindungsgemäßer Vakzinen der Krankheitsund
Sterblichkeitsprozentsatz beträchtlich herabgesetzt ., wird, wobei bei Verabreichung der 27 mg-Enterotoxin—Dosiereinheit
an die Mutterschweine ein besserer Schutz erhalten wird.
409823/1T34
Claims (6)
- Patentansprüche 23601 Ί 8φ, Vakzinen gegen Ferkel-Colibaeillose, enthaltend" eine wirksame Menge an zellfreiem, hitzelabilem (LT) Escherichia coli-En'terotoxin und ein Adjuvans.
- 2. Vakzinen nacli Anspruch 1, dadurch ge'kennzeichnet, daß das liitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin ein zellfreier und im wesentlichen ναμ Lipopolysacchariden freier Extrakt aus Escherichia coli ist.
- 3. Vakzinen nach- Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß das hitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin aus dem Stamm Escherichia coli A1SGG 21 972 stammt.
- 4-, Vakzinen nach Anspruch 1 bis 3> dadurch gekennzeichnet, daß das Adjuvans ein öliges Adjuvans oder· eine gelförinige Aluminiumverb indung ist.
- 5. Vakzinen nach Anspruch 1 bis 4-, dadurch gekennzeichnet, daß die Enterotoxin-Bosiereinheit 10 bis 150 mg"gefriergetrockneten Extrakt beträgt.
- 6. Verfahren zur Herstellung der Vakzinen nach Anspruch 1 bis 5» dadurch gekennzeichnet, daß man aus Zellen eines hitzelabiles Enterotoxin produzierenden Escherichia coli-Staraiaes das hitzelabile (LT) Escherichia coli-Enterotoxin isoliert und mit einem Adjuvans vermischt,■/409823/1134
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US31199872A | 1972-12-04 | 1972-12-04 |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2360118A1 true DE2360118A1 (de) | 1974-06-06 |
| DE2360118B2 DE2360118B2 (de) | 1980-04-30 |
| DE2360118C3 DE2360118C3 (de) | 1980-12-18 |
Family
ID=23209403
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE2360118A Expired DE2360118C3 (de) | 1972-12-04 | 1973-12-03 | Impfstoff gegen Ferkel-Colibacillose |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5713527B2 (de) |
| BE (1) | BE808122A (de) |
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