DE19506615A1 - Aufschluß von Bakterienzellen durch Phagenlysine - Google Patents
Aufschluß von Bakterienzellen durch PhagenlysineInfo
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Description
Die Erfindung betrifft die Verwendung von Phagenlysinen zum Aufschluß
von Bakterienzellen, sowie Verfahren für den Aufschluß von Bakterien
zellen durch Phagenlysine und Testzusammenstellungen für die Durch
führung dieses Verfahrens.
Für den Nachweis und die Bestimmung von Bakterien dienen neben
extrazellulären Bestandteilen oft zelluläre Bestandteile, z. B. Adenosin
triphosphat (ATP) für den Nachweis von Bakterien oder chromosomale
DNS oder ribosomale RNS als Zielanalyt für Nukleinsäure-Sonden oder für
die Nukleinsäureamplifikation. Zur Untersuchung derartiger zellulären
Bestandteile von Bakterien (z. B. chromosomale DNS, Plasmide, RNS,
Proteine, Lipide, Metabolite) müssen die Zellen möglichst schnell und
schonend aufgeschlossen werden, um die Integrität und Funktionalität der
isolierten Bestandteile und Makromoleküle zu gewährleisten und um die
Analyte zur Steigerung der Nachweisempfindlichkeit in hoher Ausbeute zu
isolieren. Zu den bekannten Methoden gehört die Anwendung von Lyso
zym oder Mutanolysin (lysierendes Enzym aus Streptomyces globisporus).
Auch in Kombination mit Detergenzien erfordert diese Methode erhöhte
Temperaturen und ein alkalisches Medium bei oft langen
Inkubationszeiten. Unter diesen Bedingungen sind viele Analyte instabil.
Für den Nachweis von Bakterien wird in WO 94106 931 vorgeschlagen, die
Bakterienzellen mit Phagen zu lysieren und anschließend beispielsweise
das ATP mittels bekannter Methoden nachzuweisen. Bei der
Durchführung dieses Verfahrens muß mit vermehrungsfähigen Viren
gearbeitet werden; eine Verfahrenweise, die für die Routineanalytik aus
Sicherheitsgründen bedenklich ist. Im übrigen ist die Bakteriolyse bei der
Phageninfektion ein äußerst komplexer Vorgang. In EP 0 168 933 werden
rekombinante Phagen offenbart, die das lux-Gen insertiert enthalten.
Phagenlysine aus verschiedenen phageninfizierten Bakterien wurden
beschrieben. In DE 43 26 617 wird beispielsweise die Verwendung von
Lysinen aus Listeriaphagen als spezifisches Desinfektionsmittel gegen
Listerien offenbart. Die durch Phagenlysine hervorgerufenen Bakteriolyse
kann äußerst spezifisch sein: Einige Bakteriophagen lysieren nur
bestimmte Serotypen von Bakterien. In J. Bact. 107 Seite 499-504
(1971) werden Phagenlysine beschrieben, die spezifisch Zellen der
Bakteriengattung Staphylococcus lysieren. In Chemical Abstracts 84 1596
(1976) wird auf Phagenlysine hingewiesen, die nur bestimmte Clostridien
arten lysieren. Es gibt aber auch Phagenlysine mit wesentlich breiterem
Lysespektrum: So wird beispielsweise in JP 04/141 089 ein Phagolysin
offenbart, das ein ähnlich breites Lysespektrum wie Lysozym aufweist.
Aufgabe der Erfindung ist es, Verfahren bereitzustellen, bei denen
Zielanalyte in guter Ausbeute durch Lyse der Bakterienzellen unter
Bedingungen freigesetzt werden, unter denen diese Zielanalyte
weitgehend stabil sind. Dabei soll die Lyse beispielsweise aus
Sicherheitsgründen ohne Verwendung von kompletten Bakteriophagen
ermöglicht werden.
Es wurde gefunden, daß diese Aufgabe in hervorragender Weise dadurch
gelöst wird, daß man die Bakterienzellen mit Phagenlysinen behandelt.
Durch die Auswahl der Phagenlysine läßt sich die Spezifität der Lyse
reaktion und damit der gesamten Nachweisreaktion beeinflussen.
Gegenstand der Erfindung sind Verfahren zum Nachweis von Bakterien
durch eine Nachweisreaktion auf zelluläre bakterielle Bestandteile in einem
Bakterienlysat, wobei das Lysat durch Einwirkung eines gereinigten
Phagenlysins auf die Bakterien gewonnen wird.
Gegenstand der Erfindung ist weiterhin die Verwendung von Phagen
lysinen für Nachweisverfahren von Bakterien, wobei zelluläre bakterielle
Bestandteile durch die Einwirkung des Phagenlysins freigesetzt und nach
bekannten Methoden nachgewiesen werden.
Gegenstand der Erfindung sind schließlich Reagenzzusammenstellungen
für den Nachweis von Bakterien enthaltend neben üblichen Nachweis
mitteln ein gereinigtes Phagenlysin.
Nachweisverfahren für Bakterien, bei denen zelluläre bakterielle Bestand
teile zur Reaktion gebracht werden, sind in großer Zahl bekannt. Dazu
gehören der Nachweis von Enzymen, die nur bei bestimmten Species oder
Gruppen von Bakterien vorkommen, z. B. Glucosidase oder β-Galacto
sidase. Weiterhin gehören dazu Nachweisreaktionen auf Nukleinsäuren
mittels Nukleinsäuresonden oder Amplifikationsverfahren. Ein weiteres
bekanntes Nachweisverfahren beruht auf dem Nachweis von ATP,
beispielsweise durch die Messung der Lumineszenz, die bei der Luciferin-
Luciferase-Reaktion auftritt. Derartige Verfahren, sowie die Optimierung
von Verfahrensvarianten sind dem Fachmann geläufig und in der Literatur
beschrieben. Erfindungsgemäß werden diese Reaktionen als übliche
Nachweisverfahren zusammengefaßt. Die Reagenzien, die für diese
Nachweisverfahren notwendig sind, werden als übliche Nachweismittel
bezeichnet.
Beispiele für derartige Nachweismittel sind folgende Zusammenstellungen:
- a) für den Nachweis von Enzymen umfassend einen Puffer und ein Enzymsubstrat;
- b) für den Nachweis spezieller Nukleinsäureabschnitte umfassend eine Nukleinsäuresonde, die mittels einer Markierung nachweisbar ist;
- c) für die Amplifikation spezieller Nukleinsäureabschnitte umfassend zwei Nukleinsäureprimer, ein Gemisch der Nukleotidtriphosphate und eine Nukleinsäurepolymerase;
- d) für den Nachweis von ATP umfassend Luciferin und Luciferase beispielsweise aus Leuchtkäfern.
So werden in Infect. Immunity 58, 1943-1950 (1990) für den Nachweis
von Listerien geeignet DNS-Sonden beschrieben. Für den Nachweis von
Listerien geeignete Primer werden in EP 0 576 842 offenbart. Beide
Dokumente offenbaren Einzelheiten über Verfahrensparameter für
derartige Nachweisreaktionen, sowie weitere Literatur, die zugehörige
Verfahrensvarianten offenbart.
Der ATP-Nachweis mit der Luciferin-Luciferase-Reaktion ist nicht
spezifisch für bestimmte Organismen, da ATP in allen lebenden Zellen
vorkommt. Wird dieser Nachweis jedoch mit einem Phagenlysin
kombiniert, das spezifisch für eine bestimmte Bakteriengattung ist, so wird
die Nachweisreaktion insgesamt spezifisch. Wird mittels eines Phagen
lysins mit breitem Wirkungsspektrum DNA freigesetzt und erfolgt der
Nachweis mittels einer spezifischen DNA-Sonde, so ist wiederum die
Nachweisreaktion insgesamt spezifisch.
Phagenlysine sind Enzyme oder Enzymkomplexe, die Lysis von Bakterien
bewirken, und die im Phagengenom codiert sind. Phagenlysine wurden
aus zahlreichen mit Bakteriophagen infizierten Bakterienzellen gewonnen
und aufgereinigt. Beispiele für solche dem Fachmann bekannten Phagen
lysine sind in den bereits genannten Dokumenten offenbart. Zu diesen
bekannten Phagenlysinen gehören solche, die aus Bakterien der Gattung
Listeria isoliert werden können. Auch aus zahlreichen anderen Bakterien
gruppen sind Bakteriophagen und Phagenlysine beschrieben. Diese
Phagenlysine können aus kultivierten phageninfizierten Bakterien
gewonnen werden. Bevorzugterweise werden die Phagenlysine jedoch
aus Kulturen von Bakterien, z. B. Escherichia coli, gewonnen, wobei die
Bakterien durch dem Fachmann bekannte Rekombinationstechniken in die
Lage versetzt werden, die gewünschten Phagenlysine zu produzieren.
Beispielsweise kann aus Phagenlysaten der Listeriaphagen A 511, A 500
oder A 118 ein Phagenlysin (bezeichnet als PLY 511, PLY 500
beziehungsweise PLY 118) hergestellt werden, das eine schnelle (d. h.
innerhalb von 2-6 Minuten) und vollständige (95-100%) Zellwand-
Hydrolyse ermöglicht. Dabei werden neben Bestandteilen des Zellinnern
(chromosomale DNS), Plasmide, RNS, Proteine, etc.) auch sämtliche
Zellwand-assoziierten (nicht-kovalent gebundenen) Proteine freigesetzt.
Alle Makromoleküle liegen anschließend nativ vor, sind aktiv und keiner
chemischen Schädigung ausgesetzt. Erfindungsgemäß verwendbare
Phagenlysine können auch durch Rekombinationstechniken, beispiels
weise aus rekombinanten Stämmen von Escherichia coli, gewonnen
werden, die die Phagolysin-Gene ply 511, ply 500 oder ply 118 (aus den
Phagen A 511, A 500 beziehungsweise A 118) auf einem Expressions
plasmid tragen. Hierbei können die Zellen in hoher Ausbeute (bis zu 20%
des Gesamt-Proteins) Lysine produzieren. Diese rekombinanten Enzyme
lassen sich leichter isolieren und reinigen, und weisen dieselbe Spezifität
bei keiner nachweisbaren Fremdaktivität auf. Die gereinigten Phagenlysine
werden in einem wäßrigen Puffer bei -30°C aufbewahrt.
Die folgenden Beispiele sollen den Erfindungsgedanken näher erläutern;
sie stellen keine Einschränkung des Erfindungsumfanges dar.
Zellen von Listeria monocytogenes (WSLC 1001; serovar 1/2c) werden in
10 ml Tryptose-Nährlösung bei 30°C bis in die spät-logarithmische
Wachstumsphase kultiviert und in 2 ml Portionen durch Zentrifugation bei
15 000 × g (1 Minute) geerntet. Für den Lysetest wird der Zellniederschlag
in 900 µl Puffer (20 mM Tris-HCl, pH 8,0) resuspendiert, auf 30°C
temperiert und mit 100 µl einer Lösung von 10 U PLY 118 versetzt. (Eine
Einheit (U) Phagenlysin verringert in einem Volumen von 1 ml bei einer
Temperatur von 30°C bei einem pH von 8,0 die Extinktion bei 600 nm
einer Suspension von Zellen von Listeria monocytogenes WSLC 1001 um
0,01/min.) Die Lysereaktion wird durch Messung der Trübung bei 600 nm
verfolgt. Nach 8-10 Minuten ist die Lösung klar.
Mit ähnlichem Ergebnis läßt sich der Versuch mit Zellen von Listeria
ivanovii (WSLC 3009; serovar 5) und anderen Listeria-Arten wiederholen.
Zur Isolierung von m-RNS aus Kulturen von Listeria monocytogenes
werden die Zellen in kleinen Volumina (ca. 1-5 ml) durch Zentrifugation
konzentriert, kurz in einem Trockeneis-Ethanol Gemisch eingefroren (ca.
1-5 min.), und in 1/10 Volumen Puffer (Tris-HCl, 20 mM, pH 8,0)
resuspendiert. Nach Zugabe einer geringen Menge des rekombinanten
Lysine (Phagolysin aus Listeriaphage A118, in 20 mM Tris-HCl, pH 7,3,
20 mM NaCl, 0,1% Triton X100) wird etwa 2-5 Minuten bei
Raumtemperatur inkubiert, bis die trübe Suspension fast völlig klar
geworden ist. Nach Deproteinierung der Suspension (mit
Phenol : Chloroform : Isoamylalkohol, 125 : 24 : 1 (V/V), pH 4,2) kann die RNS
durch ethanolische Fällung direkt gewonnen werden. Reste von DNS
können gegebenenfalls durch hydrolytische Spaltung mit DNAse entfernt
werden. Die nun völlig reine RNS steht für weitere Untersuchungen zur
Verfügung.
Claims (8)
1. Verfahren zum Nachweis von Bakterien durch eine Nachweisreaktion
auf zelluläre bakterielle Bestandteile in einem Bakterienlysat, dadurch
gekennzeichnet, daß das Lysat durch Einwirkung eines gereinigten
Phagenlysins auf die Bakterien gewonnen wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Bakterien
der Gattung Listeria nachgewiesen werden, und daß ein Phagenlysin aus
einem Listeriaphagen verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Bakterien
der Species Staphylococcus aureus nachgewiesen werden, und daß ein
Phagenlysin aus einem Staphylococcenphagen verwendet wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß Bakterien
der Species Bacillus cereus nachgewiesen werden, und daß ein Phagen
lysin aus einem Bacillusphagen verwendet wird.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-4, dadurch gekennzeichnet,
daß eine Nukleinsäure durch eine Nukleinsäuresonde nachgewiesen wird.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-4, dadurch gekennzeichnet,
daß eine Nukleinsäure durch eine Amplifikationsreaktion nachgewiesen
wird.
7. Verwendung von Phagenlysinen für Nachweisverfahren von
Bakterien, wobei zelluläre bakterielle Bestandteile durch die Einwirkung
des Phagenlysins freigesetzt und nach bekannten Methoden
nachgewiesen werden.
8. Reagenzzusammenstellung für den Nachweis von Bakterien
enthaltend neben üblichen Nachweismitteln ein gereinigtes Phagenlysin.
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1995106615 DE19506615A1 (de) | 1995-02-24 | 1995-02-24 | Aufschluß von Bakterienzellen durch Phagenlysine |
| AU35227/95A AU3522795A (en) | 1994-09-09 | 1995-09-07 | Decomposition of bacteria cells by phage lysins |
| DE59510532T DE59510532D1 (de) | 1994-09-09 | 1995-09-07 | Aufschluss von bakterienzellen durch phagenlysine |
| EP95932002A EP0781349B1 (de) | 1994-09-09 | 1995-09-07 | Aufschluss von bakterienzellen durch phagenlysine |
| PCT/EP1995/003512 WO1996007756A1 (de) | 1994-09-09 | 1995-09-07 | Aufschluss von bakterienzellen durch phagenlysine |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1995106615 DE19506615A1 (de) | 1995-02-24 | 1995-02-24 | Aufschluß von Bakterienzellen durch Phagenlysine |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE19506615A1 true DE19506615A1 (de) | 1996-08-29 |
Family
ID=7755024
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE1995106615 Withdrawn DE19506615A1 (de) | 1994-09-09 | 1995-02-24 | Aufschluß von Bakterienzellen durch Phagenlysine |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (1) | DE19506615A1 (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2000011472A3 (de) * | 1998-08-20 | 2000-06-22 | Siegfried Scherer | Nachweis von zellen mittels spezifischer zellwand-bindender domänen (cbd) von zellwand-bindenden proteinen |
| WO2004088321A1 (en) * | 2003-04-03 | 2004-10-14 | Profos Ag | Method for the enrichment of target cells by use of cbds |
-
1995
- 1995-02-24 DE DE1995106615 patent/DE19506615A1/de not_active Withdrawn
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2000011472A3 (de) * | 1998-08-20 | 2000-06-22 | Siegfried Scherer | Nachweis von zellen mittels spezifischer zellwand-bindender domänen (cbd) von zellwand-bindenden proteinen |
| WO2004088321A1 (en) * | 2003-04-03 | 2004-10-14 | Profos Ag | Method for the enrichment of target cells by use of cbds |
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| 8127 | New person/name/address of the applicant |
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