[go: up one dir, main page]

CS17291A2 - Recombinantly prepared blood factors, method of stated blood factors expression and also recombinants of virus of vaccine that is used in stated process - Google Patents

Recombinantly prepared blood factors, method of stated blood factors expression and also recombinants of virus of vaccine that is used in stated process Download PDF

Info

Publication number
CS17291A2
CS17291A2 CS91172A CS17291A CS17291A2 CS 17291 A2 CS17291 A2 CS 17291A2 CS 91172 A CS91172 A CS 91172A CS 17291 A CS17291 A CS 17291A CS 17291 A2 CS17291 A2 CS 17291A2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
plasmid
vaccinia virus
promoter
factor
cells
Prior art date
Application number
CS91172A
Other languages
English (en)
Inventor
Falko-Gunter Dr Falkner
Ross T A Macgillivray
Walter Dr Bodemer
Friedrich Ing Scheiflinger
Johann Dr Eibl
Friedrich Prof Ing Dorner
Original Assignee
Immuno Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Immuno Ag filed Critical Immuno Ag
Publication of CS17291A2 publication Critical patent/CS17291A2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/755Factors VIII, e.g. factor VIII C (AHF), factor VIII Ag (VWF)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6429Thrombin (3.4.21.5)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/647Blood coagulation factors not provided for in a preceding group or according to more than one of the proceeding groups
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21005Thrombin (3.4.21.5)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24111Orthopoxvirus, e.g. vaccinia virus, variola
    • C12N2710/24141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/24143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Auxiliary Devices For Machine Tools (AREA)
  • Gear Processing (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

- 1 - i 5( "WT/Vz— j > O( Cj ··<Ϊ Cl -'· í t: c?Xhv, : Γ- í'· i C5 rcΛ. S-
Rekombinantně připravované krevní faktory, postup 'exprese- <·uvedených krevních faktorů a také rekombinanty viru vakcíniepoužívané v uvedeném postupu
Oblast techniky
Tento vynález·se týká rekombinantně připravovaných krev-ních faktorů, zvláště krevních srážecích faktorů závislých navitaminu K, rekombinantů viru vakcínie (neštovic) a způsobuexprese uvedených krevních faktorů. Tento vynález popisujezvláště přípravu rekombinantního protrombinu a trombinu ataké meziproduktů, které jsou tvořeny různými mechanismy o—pracovávání na cestě od protrombinu k různým variantám trom-binu.
Dosavadní stav techniky
Existuje velká potřeba vysoce vyčištěných krevních fak-torů, jako je například Faktor VIII, Faktor II, von Willebran-dův faktor a plasminogen, které nejsou znečištěny jakýmkolivinfekčním nebo toxickým materiálem. Genetické inženýrství na-bízí způsob přípravy takových profylaktických nebo terapeutic-ky významných proteinů v poměrně vysokých výtěžcích a za ne-přítomnosti patogenních virů, jako jsou například viry HIVnebo hepatitidy. Eukaryotické expresní systémy poskytují dal-ší výhodu v tom, že nesou na proteinovém zbytku post-tran-slační modifikace, takže se získávají glykoproteiny, kteréjsou do vysokého stupně srovnatelné nebo jsou identické slátkami produkovanými tělem člověka. V různých rekombinantních systémech bylo expresí připra-veno několik na vitaminu K závislých lidských srážecích fak-torů. Byla popsána exprese lidského srážecího faktoru IX vbuňkách jater a v myších fibroblastech (H. de la Salle a spol.:Nátuře 316« 268 až 270 (1985) a D. S.Auson a spol.: Nátu-ře 515» 685 až 685 (1985).), v buňkách ledvin mláňat křečka(S. Busby a spol.: Nátuře 516, 271 až 273 (1985)·) a v buňkách vaječníků čínského křečka (buňky CHO) (N. J. Jorgensen a spol.!Cell 48, 185 až 191 (198?)·). Z těchto'studií je známo, žepouze některé typy buněk, jako jsou například buněčné linie -odvozené od jater a ledvin, mají účinné karboxylační systémy.Díle bylo zjištěno, že nadexprese faktoru ΙΣ v buňkách CHO .amplifikaeí genu má obvykle za důsledek zvýšené hladiny pro-teinového antigenu, avšak specifická aktivita d.rasticky klesá.Rovněž opracování (procese) z pre-proteinu do maturované formynení dostatečná (A· Balland a spol.í Eur. J· Biochem.’ 172. 565 až 572 (1988).).
Jiný na vitaminu K závislý faktor, lidský protein C, bylzískán expresí v lidském 295 embryonálním ledvinovém buněčnémsystému. V tomto systému bylo dosaženo vysoké úrovně expreseplně karboxylovaného proteinu C (J. D. Walls a spol. í Gene 81.159 až 149 (1989)·)· Nezdá se však, že by buněčná linie 259byla vhodná pro práci ve velkém měřítku a pro fermentaci. '
Rekombinační studie byly prováděny také s protrombinem.
Na vitaminu K závislý srážecí faktor protrombin je plazmovýglykoprotein s molekulovou hmotou asi 72 000. Tento protein,který se syntetizuje v játrech, je obsažen v posledních stup-ních srážení krve. Před sekrecí podléhá několika post—tran-slačním modifikacím^ jako je například glykosylace, na vitaminu ,K závislá karboxylace prvních 10 zbytků kyseliny glutamové naaminovém konci a štěpení pre— a propeptidů. Klonování genupro lidský protrombin a jeho doplňkové DNA (8. J. P. Degen:Biochemistry 26, 6165 až 6177 (1987)·) otevřelo možnost stu-dií exprese v příslušných buněčných systémech. Pokud jde ocDNA protrombinu plné délky včetně oblasti signálního peptidůa pro-sekvence (.kódující prepro-protrombin), lze odkázat naMacGilliv^ray R. Ϊ. A.;, Irwin D. M., Guinto R. E, a Stone J. C.: “Recombinant genetic approaches to functional mappingof thrombin”, Annals of the New York Academy of Sciences485. 75 až 79 (1987). K expresi aktivního lidského protrom-binu dochází v'buňkách CHO (vaječníky čínského křečka) a v - 3 - buňkách BHK (ledvin mladat křečka) (M. J. Jorgensen a spol·: J. Biol. Chem. 262, 6729 až 6734- (1987)*)· Jestliže expreseprotrombinu v buňkách CHO se zeýši ámplifikaci genu, získajíse vysoké hladiny exprese. Avšak jenom 60 % materiálu je do·*statečně karboxylováno. Exprese protrombinu. v buňkách BHK po-skytuje aktivní protrombin. Hladiny exprese jsou však poměrněnízké.
Vektorové systémy založené na viru vakcínia jsou známy,například M. Mackett a spol. v "DNA cloning: A pracical ap-proach”, D. M. Glover (red·), IHL Press, Oxford, str. 191 až211 (1985). V evropském patentu 243 029 je popsán rekombinant—ňí virus vakcínia pro expresi proteinu HIV env.
Virus vakcínia vyvinul svojevlastní transkripční regulač-ní sekvence, které jsou rozeznávány virem kodovanou BNA-poly-merasou vbalenou (pakážovanou) do infekční virové Částice.
Navíc má virus vakcínia velký genom (185 ooo párů nukleotidůdvojvláknové DNA), se kterým nelze pracovat technikami klo·-nování in vitro. Inserce cizí DNA do genomu víru vakcínialže tedy dosáhnout pouze in vivo využitím principu obvyklého(íogní rekombinace. Prokázalo se, že virus vakcínia je užiteč-ným prostředkem pro studie expresu genu v savčích buňkách. Me-zi výhody patří zachování neinfekčnosti, široký rozsah hosti-telů, velká kapacita DNA» přesná syntéza, správné svinutí,opracování a transport proteinů,
Rekombinantní vir vakcínia poskytuje tedy rychlé pro-středky pro testování buněčných linií, které jsou schopny pro-vádět přesné post-translační modifikace. Ve srovnání s přísluš-nými hostitelskými buňkami také účinně sekretují žádaný protein.To je zvláště důležité, jestliže uvažujeme o expresi rozsáhlemodifikovaných sekrečních proteinů, jako jsou na vitaminu Kzávislé srážecí faktory.
Podstata vynálezu Předmětem tohoto vynálezu je získáni expresního systému pro krevní faktory, zvláště pro na vitaminu K závislé krávnísrážecí faktory, jako je například protrombiň a varianty trom-binu, které jsou vylepšeny proti dosud známým expresním sys-témům v tom, že nabízejí vysokou post-translační kapacitu a,díky stabilizovaným rekombinantům, velice reprodukovatelnépodmínky exprese.
Dalším předmětem tohoto vynálezu je získání rekombinant-ně připravených krevních faktorů nebo jejich derivátů, kterémají vysoký poměr biologicky aktivní formy k antigenní formě.
Shora uvedený předmět vynálezu se vyřeší rekomhinantněpřipravenými krevními faktory, které mají poměr biologickyaktivní formy k antigenní formě alespoň asi 5θ s výhodouv rozmezí od 60 % do 90 %, a nejvýhodneji v rozmezí od 70do 80 %« Z těchto krevních faktorů, které mohou obsahovat úplnounebo částečnou aminokyselinovou sekvenci proteinu nebo jehpderivátů vzniklých náhradou, delecí nebo insercí alespoň jed-né aminokyseliny, se lze zmínit o faktoru V, faktoru VII, faktoru XII, faktoru XIII, von Willebrandově faktoru, plasmi-hi// nogenu a ná vitamifK závislých krevních faktorech, jako je na-příklad faktor VII., faktor IX, faktor X, protein G, protein Sa zvláště protrombiň a také jeho varianty.
Tento vynález zahrnuje také insertní plasmidy a rekom-binanty viru vakcínia nutné pro expresi žádaných glykoproteinů
Bylo také navrženo používat jiné rekombiantní viry neš-tovic, například vir drůbežích neštovic.
Insertní plasmidy obsahují sekvenci cizí cDNA kódujícížádaný krevní faktor a alespoň jeden replikon, alespoň jedenselekční markér, násobná klonovací místa, alespoň jeden gpňmo-tor a DNA sekvence z viru vakcínia, které sousedí s promotorema cizí DNA sekvencí. Λ,ίίώ,: - 5 - Výběr virových rekombinantnů nebo buněk se usnadní pou-žitím selekčního markéru» Fxprese tohoto markéru je výhodnáza kontroly silného, stále aktivního promotoru, například P 7·5z viru vakcínie. Příkladem vhodného selekčního markéru je gengpt, který kóduje xanthin-guanin-fgjoforibosylovou transferasu. V kultuře savčích buněk za přítomnosti mykofenolové kyselinyporoste pouze rekombinantní virus, který nese gen gpt (F. G.Falkner a B. Moss: J. Virol. 62, 1849 až 1854 (1988)»). I když je jednou z nejdůležitejších věcí, aby cizí genbyl získáván expresí za kontroly promotoru viru vakcínie,je stejně důležité, aby promotor viru vakcínie, např. promo-tor kravských neštovic (vakcínie), byl v bezprostředním sou-sedství k sekvenci cizího genu, který má být expresí připra-ven. Na četných příkladech bylo ukázáno, že nepřeložené kó-dující oblasti, které jsou umístěny mezi promotor viru vak-cínie a sekvenci cizího genu, který má být připraven expresí,vedou ke snížení hladiny exprese. Zvláštní péče by měla býtvěnována tomu, aby 3'—konec promotoru a 5 -sekvence cizíhogenu byly seřazeny v patřičné čtecí fázi, Čímž se lze vyhnoutnepotřebným oblastem nepřekládaných kodonů. Jednou z možnostíjak toho dosáhnout je vybrat příslušné restrikční místo a mo-difikovat 5'—konec sekvence cizího genu (možná včetně pre-nebo prepro-šekvence) přidáním nebo deleci kodonů tak, aby sevytvořilo identické restrikční místo. Překrytím 5'—koncepromotoru s 5'-koncem cizího genu umožňuje žádoucí uspořádání.
Velikou důležitost má výběr příslušného promotoru v ex-presním systému viru vakcínie. Pro expresi proteinu se ob-vykle používají virové promotory aktivní v pozdní fázi neboaktivní v časné a pozdní fázi infekčního cyklu. Mohou se po-užívat také syntetické promotory pozdní nebo časné a pozdnífáze.
Zvláště výhodný promotor viru vakcínie je pozdní 11K—pro-motor. Tento promotor obsahuje funkčně zachovaný důležitý sek-venční prvek, který se překrývá s transkripčními a translač- 6 nimi iniciačními místy ( viz B. Moss a spol. í Ann. Rev. Im-munol. 2» 305-324 (1987).}· Aby se dosáhlo efektivní exprese,autoři tohoto vynálezu se'rozhodli neměnit oblast. Proto vnásledujícím příkladu cDNA protrombinu byla klonována do při-rozeně se vyskytujícího místa EcoRI bezprostředně po směruvlákna iniciačního kodonu polypeptidu 11K, jak je to uvedenona obrázku 3·
Jak je popsáno později v experimentální části, přesné na-pojení promotoru s oblastí kódující protrombin bylo získánozavedením nového místa EcoRI prostřednictvím oligonukteotidém řízené mutagenese po směru vlákna iniciačního kodonu genu pro-trombinu. Zvolená strategie vede k zavedení dvou dalších ami-nokyselin (Asn a Ser) do signálního peptidu (viz obr. 3). Je-likož signál místa štěpení je umístěn o asi 40 aminokyselindále, tato mutace neinterferuje s přesným opracováním a sesekrecí maturovaného polypeptidového řetězce.
Vzhledem ke skutečnosti, že DNA viru vakcínie je trans-kribována do cytoplasmy, nelze využít aparát střihu hostitel-ské buňky. Při konstrukci virového rekombinantnu se tedy musípoužít bezintronová DNA nebo cDNA. Pro efektivní expresi asekreci je výhodné, aby tato DNA obsahovala také signální sek-vence.
Pro některé účely může být žádoucí vložit do rekombinant-ního viru pouze část sekvence nebo pozměněnou sekvenci ze sek-vence cizí DNA, která má být expresí připravena. Tímto způso-bem se získávají deriváty nebo mutanty nebo aktivované formykrevních faktorů.
Insertní plasmidy dále obsahují lemující sekvence DNAviru vakcínia, které mohou odpovídat genu thymidin-kinašy ne-bo sekvencím hemaglutininu a nebo jakékoliv nepodstatné ob-lasti v DNA viru vakcínie. - 7 -
Vhodným vektorem otevřené Čtecí fáze pro insercí cizícDNA je pTKgpt-oFls, jak popisuje F. G. Falkner a B. Moss: J. Virol. 62, 1849 až 1854 (1988).
Pomocí tohoto vektoru otevřené čtecí fáze se připravíinsertní plasmid pTKgpt-PTHBa a pTKgpt—pTHBb (obr. 1 a 2).Podobným způsobem jak bylo shora popsáno pro^trombin můžebýt vložen do plasmidu pTKgpt-oFLs do těsné blízkosti promoto-ru Pil jakýkoliv jiný žádoucí cizí gen kódující krevní faktor.Š takovými insertními plasmidy se rekombinanty vir vakcíniezískávají in vivo homologní rekombinací se standardním viremvakcínie. Rekombinanty viru vakcínie popsané v experimentálníčásti pro expresi trotrombinu jsou vPTHBa a vPTHBb (obrázky1 a 2) a také vPT6/2, vTKemc—PT2, vHA—PTa a.vHA-PTb',· kterébudou popsány níže. Těmito inokulaČními viry se potom infektuje kulturasavčích buněk, načež se testuje na schopnost exprese žáda-ného glykoproteinu»’
Pokud jde o buňky savčího hostitele, jsou výhodnými buň-kami buňky jater a ledvin, jelikož nabízejí nejvhodnějšípost-tránslační modifikace. Bylo by však možné ukázat, ženejvýhodnějšími hostitelskými buňkami jsou buňky Věro, CV1,BSC1 a BHK, pokud se bere v úvahu úroveň exprese a post—tran-slační modifikace.
Jinými užitečnými hostitelskými buňkami jsou buňky RK15,Tyto buňky nevylučují žádný protein do supernatantu, ale majíschopnost expresí poskytovat protein ve velkých množstvích. V takovém případě se buňky musí rozbít, aby se protein isolo-val. V tomto případě je tedy výhodné, aby se exprese žádanéhoproteinu prováděla bez jakékoliv signální sekvence.
Postup přípravy žádaných rekombinantních krevních fakto-rů se s výhodou provádí v přítomnosti vitaminu K, aby se zís-kaly proteiny s vysokou biologickou účinností.
Dalšího vylepšení expresního systému lze dosáhnout tím,že se pozoruje fáze buněk v době, když se infektují. Bylo pro-kázáno, že se nejlepší výsledky získají tehdy, když buňky předinfektováním dosáhnou konfluence.
Pokud jde o množství rekombinantů viru vakcínia nutnýchpro infektování hostitelských buněk, toto množství leží v roz-mezí od 0,1 do 20 pfu (plak tvořících jednotek),, nej výhodně jiv rozmezí od 0,1 do 1 pfu.? Vyšší množství virových rekombinan—tů použitých pro infektování neposkytuje dále zvýšené hladinyexprese. Expresní hladiny lze dále zvýšit použitím systémů o -vysoké hustotě, jako jsou například kultury na mikronosičíchnebo systémy s dutými vlákny.
Takto připravené proteinové materiály lze isolovat zbuněčného supernatantu nebo z buněk jakoukoliv vhodnou těch*·nikou známou odborníkům. Potom se vyčistí obvyklými způsobypoužívanými v chemii proteinů.
Rekombinanty viru vakcínie mají významnou výhodu protirekombinantním systémům známým z odborné literatury v tom,že umožňují rychlé analyzování buněčných linií na efektiv-nost sekrece a správné post-translační modifikace. Tímtozpůsobem lze snadno zjistit, které buněčné linie jsou schop-ny sekretovat velká množství aktivního proteinu, zatímco· jinémohou akumulovat velká množství ve své cytoplasmě, a kterébuněčné linie poskytují nejaktivnější proteiny díky jejichsprávné post-translační modifikaci. Je tedy užitečné, aby sepřed zkonstruováním transformované buněčné linie, analyzovalyrůzné buněčné typy na žádoucí funkce studiemi infekcí rekom-binahtů viru vakcínie.
Rekombinantně produkovaný lidský protrombin, kterýneobsahuje viry nesené krví, jako je např. HIV nebo virushepatitidy NANB, je možné použít pro léčení některých poruch,koagulačního systému (lidský trombin připravený z protrombinu),jako je například septický šok. Lidský trombin a/nebo synergická Μ· Μ směs lidský trombin - trombomodulin a protein C jsou považo-vány za užitečná léčiva při antikoagulační terapii a při sep—tickém šoku»
Další aplikací je použití trombinu připraveného z lidské-ho rekombinantního protrombinu ve fibrinovém utěsňovacím pro-středku místo běžně používaného hovězího trombinu. Tak fibri-nový utěsňovací pr<?bředek je široce používán v některýchoblastech chirurgie. Náhradou hovězího trombinu lidským trom—binem lze snížit risiko jistých virových infekcí a také něk-terých alergických reakcí.
Tento vynález je dále ilustrován obrázky 1 až 7.
Obrázek 1 ukazuje konstrukci insertního vektorupTKgpt-PTHBa viru vakcínie. Tento insertní plasmid byl použitpro in vivo rekombinace vedoucí ke zkonstruování rekombi—nantního viru pTHBa. Význam zkratek je následující: pTHBznamená sekvence protrombinu, tetr znamená gen tetracykli—nové resistence, ssDNá znamená jednovláknovou LNA, tk znamenásekvence thymidin-kinssy viru vakcínie, gpt znamená gen xan-thin-guanin-fosforibosyl—transferasy E. coli, Pil znamenápromotor hlavního pozdního polypeptidu 11K viru vakcínie, P 7.5 znamená promotor polypeptidu o molekulové hmotě 7500viru vakcínie a MGS znamená násobná klonovací místa. Šipkyukazují směry transkripce.
Obrázek 2 znamená konstrukci insertního vektorupTKgpt-PTHBb viru vakcínie. Tento insertní plasmid byl po-užit pro zkonstruování virového rekombinantnu vPTHBb viruvakčínie·' Zkratky znamenají stejně jako shora uvedeno v pří-kladu 1.
Obrázek 5 ukazuje napojení kódující oblasti protrombinus pozdním promotorem Pil (pil WT) viru vakcínie. Kódujícíoblast lidského protrombinu v rekombinantech vPTHBa avPTHBb viru vakcínie je napojena přesně za iniciační kodontranslace polypeptidu 11 K. Díky inserci nového místa ště-pení restrikční endonukleasou EcoRI oligonukleotidem řízenoumutagenesí obsahuje signální peptid protrombinu dvě další Μ 10 — aminokyseliny (Asn a Ser). V rekombinantnu vPTHBb byly odstra-něny také póly (A)-konec (60 A-zbytky přítomné v cLNA a v re—kombinantnu vPTHBa) a oligo(C)~prodloužení zbytku se 14ato-my uhlíku insercí druhého místa EcoRI a následujcím štěpením.
Obrázek 4 je konstrukční schéma insertních plasmidúpHAgpt—oFa a pHAgpt-oFb viru vakcínie. HA znamená hernaglu—tinin. Další zkratky lze odvodit z předcházejících obrázků.
Pro restrikční endonukleasy byly použity obvyklé zkratky»
Pro další vysvětlení viz také příklad 3»
Obrázek 5 ukazuje konstrukční schéma insertních plasmidúpHAgpt—PTa a pHAgpt-PTb viru vakcínie. Pro další vysvětlenízkratek viz předchozí obrázky.
Obrázek 6 ukazuje konstrukční schéma pTKemc-PT2 viruvakcínie. Amr znamená gen rezistence na ampicilin,encznamená vedoucí (leader) sekvenci sekvence viru encefalomyo—karditidy, T7P znamená sekvenci polymerasy T7. Pro vysvětlenídalších zkratek viz předcházející obrázky a příklad 4.
Obrázek 7 udává srovnání hladin exprese indukovanýchrůznými virovými rekombinanty, které expresí v buňkách Věroposkytují protrombin: V pokusu byly buňky hostitele infek-továny 1 pfu na buňku příslušným virovým rekombinantem. (vpřípadě vektorů založených na T7 1 pfu viru poskytujícíhopolymerasu T7 a viru promotoru T7 cílového genu) a nechányrůst v mediu bez sera za přítomnosti vitaminu £1. Supernatan-ty byly isolovány po sedmdesáti dvou hodinách. Biologickéaktivity byly stanoveny jak popsáno v příkladu 1. V následující části jsou popsány pokusy přípravyinsertních plasmidú viru vakcínie, virových rekombinantů,exprese krevního srážecího faktoru protrombinu a pokusyoptimalizace této exprese. Následující pokusy slouží jakodalší ilustrace tohoto vynálezu bez toho, aby tento vynálezomezovaly. 11 Příklady provedení vynálezu. Příklad 1 Příprava rekombinantů viru vakcínie (W) vPTHBa a vPTHBb aexprese protrombinu 1, Konstrukce insertních plasmidú viru vakcínie a) Konstrukce pTKgpt-PTHBa
Podfragmenfc Pstl o 1600 nukleotidech cDNA protrombinu(vyštěpený z plasmidú pIIH15, jak popsal R. T. A** MacGilli-vray, D· M. Irwin, R. E* Guinto a J. 0» Stone v "Recombinantgenetic approaches to functional mápping of thrombin”, Annalsof the New York Academy of Sciences 485, 75 až 79 (1987).),byl klonován do jednovláknového fága M13mpl8* Místo EcoRIbylo zavedeno oligonukleotidem řízenou mutagenesí použitímpostupu mutagenese na gji^adě fosforothionátu (Amersham·, Inc·)·Pro mutagenesí byl použit nukleotid oPTl (5*to'Í'CG GAC GTG G&amp;CGGA ATT CAT AGT GTG TCA-3") (místo EcoRI je podtrženo).Oligonukleotid oPT2 (5'-CŤG TGC ACA AGG CTA CAG -5') je nmí-stěn asi 60 párů nukleotidů po směru vlákna a slouží jako se*-kvenční primer pro kontrolu mutace· Nový fragment EcoRI-Pstlbyl pak klonován do otevřené čtecí fáze expresního vektorupTKgpt—oFis, který byl popsán F. G. Falknerem a B. Mossem vJ· Virol. 62, 1849 až 1854 (1988). Pro zkompletování kódujícíoblasti protrombinu se podfřagment Pstl o 400 nukleotidechcDNA protrombinu klonuje do jednoduchého místa Pstl mezipro-duktového plasmidú pTKgpt—PTHB1. Získá se tak plasmidpTKgpt-PTHBa. Konstrukce tohoto insertního plasmidú je sche-maticky znázorněna na obrázku 1. b) Konstrukce pTKgpt-PTHBb
V tomto případě se podfřagment Pstl o 400 nukleotidechcDNA protrombinu (vy štěpený z plIHlJ a obsahující signálnía pro—sekvence) klonuje do Ml5mpl8· Místo EcoRI se zavedeoligonukleotidem řízenou mutagenesí 70 párů nukleotidů posměru vlákna přerušovacího kodonu (stop kodonu). mutagenesíbyl použit oligonukleotid oPT3 (5*—GTT TCT AAA ACT AGA ATT - 12 CGC AAT AAA AGT-y.). Oligonukleotid 0PT5 (5'-áTT GTG GGC TCCTGG A-3'), umístěný asi 60 párů nukleotidů po směru vláknamutace, sloužil jako sekvenční primer pro kontrolu mutace.Modifikovaný fragment Pstl o 400 nukleotidech byl klonovándo jediného místa Pstl meziproduktového plasmidu pTKgpt-PTHBl(viz shora popsanou konstrukci pTKgpt-PTHBa)· FragmentEcoRI o 2000 nukleotidech obsahující cDNA' protrómbinu bezpóly(4)-sekvence byl klonován do jediného místa EcoRIpTKgpt-oFls. Získá se tak plasmid pTKgpt-PTEBb· Konstrukcetohoto plasmidu je schematicky znázorněna na obrázku 2. V obou shora popsaných fiasmidech je oblast kódující pro-trombin přesně napojena za iniciační kodon polyj^tidu 11 K*Schéma, jak získat toto přesné napojení, je uvedeno na obrázku5. Jak lze odvodit z obrázku ý, strategie vybraná pro zavede-ní nového místa ExoRI oligonukleotidem řízenou mutagenesívedla k inkorporaci dvou dalších aminokyselin (4sn a Ser)do signálního peptidu protrombinu. Jelikož místo štěpenísignálního pept^idu je umístěno asi 40 aminokyselin odtud,tato mutace pravděpodobně neinterferúje se správným opracová-ním a sekrecí maturovaného polypeptidového řetězce. Z obrázku 3 lze dále odvodit, že v pTKgpt-PTHBb poly(A)-konec cDNA protrombinu a G/C sekvence o 14 párech nukleotidůse odstraní zavedením druhého místa EcoRI na 3*-konec, genuprotrombinu s následujícím štěpením, zatímco v pTKgpt-PTHBaje póly(Λ)-konec a G/C sekvence o 14 párech nukleotidů ještěpřítomná· 2. Konstrukce řekombinantů vPTHBa a vPTHBb viru vakcínie. Při in vivo rekombinaci byl použit' postup popsaný MuMacketem a spol-· (v ”The construction and characterization ofvaccinia virus recombinant expressing foreign genes", D. M.Glover (red.) v "DNA cloningí A practical approach"; IRL Press,Oxford (1985), strany 191 až 211.) s následujícími modifi- .kacemi:'5.10 buněk CV1 (konfluentní monovrstvy) bylo infek-továno 0,2 pfu/bunku standardním typem viru vakcínie. Dvě - 13 - hodiny po infekci se k buňkám přidá 1 ml kalcinovaného DNADNA precipitátu (sestávající z 5/uS nadšroubovicové plasmido-vé DNA pTKgpt-PTHBa, nebo pTKgpt-PTHBb, 1 ^ug standardníDNA viru neštovic a 14 ^ug nastříhané sledí spermální DNA).
Po 15 minutové inkubaci za teploty místnosti se přidá 9 mlmedia (DMEM, 8 % FBS s antibiotiky)· Medium bylo po 4 hodi-nách vyměněno a v inkubaci bylo pokračováno dalších 48 hodin·.Buňky byly isolovány a suspendovány v 1 ml media. Byl tak při-praven virový surový zásobní roztok. 3· Selekce rekombinantú gpt+ viru vakcínie
Pro isolaci mutantů gpt+ byl připraven plakový test bu- něk BSC1 následujícím způsobem! Konfluentní buňky BSC1 sepředinkubují v mediu selektivním pro gpt (DMEM, 2,5 % FBS,antibiotika, 25 yug/ml MPA, 250 yug/ml xanthinu a 15 /Ug/mlhypoxanthinu) 14 až 24 hodin· Pro infektování buněk BSC1 bylapoužita zředění 10 -,10 a 10 y virového zásobního roztoka(0,5 ml suspendovaných buněk bylo třikrát zrmazeno a roztáto,byl přidán stejným objem trypsinu (0,25 mg/ml), směs bylaštěpena 30 minut při 37 °θ a sonikováha 20 sekund)· Po 1,5 hinkubace při 37 °C byly buňky převrstvený mediem selektivnímna gpt obsahujícím 1 % nízkotající agarosy. Po 2 dnech inku-bace byly buňky obarveny neutrální Červení. Po inkubaci přesnoc byly plaky snadno viditelné. Plaky. byly vyčištěny způsobempopsaným P. G. Falkneremí J. Virol. 62, 1849 až 1854 (1988). 4. Testování rekombinantního viru, který expresí poskytujeprotrombin a) Infektování buněk virům
Buňky ledvin opice (buňky CV1 a Věro) byly nechány růst.v DMEM s 10 % plodového telecího sera, antibiotiky a glutami-nem. Den před dosažením konfluence se přidá vitamin K1 nakonečnou koncentraci 20 /Ug/ml (vitamin KL byl získán odfirmy Sigma, č. V-3501, skladován při + 4 °C jako zásobníroztok 5 mg/ml vethanolu). Když monovrstvy dosáhly konfluence,byly dvakrát promyty fosforečnan pufrovaným solným roztokemobsahujícím Mg^+ a Ca^+ , potom byly infektovány 0,1 až 10 pfu 14 - vyčištěného viru. Po jednohodinové adsorpci viru se přidá me-dium (DMEM) bez sera a vitamin K.
Buňky byly nechány růst dva dny. Proteiny byly vysráženyz buněčných supernatantů a analyzovány Westernovým blotováníms protilátkou proti lidskému protrombinu spojenku s aialic-kou fosfatasou jak je to dále popsáno· b) Vysrážení supernatantů buněčné kultury acetonem
Supernatanty byly odstřelovány 10 minut při 3000 x g, abyse odstranily zbytky buněk, vysráženy dvěma objemy acetonu ainkubovány 5θ minut v ledu· Po odstřelování 10 minut při8000 x g se peleta znovu rozpustí v 0,25 ml 0,01N hydroxidusodného, zahřívá se tři minuty na 70 °C a odstřeňuje se, aby.se odstranil nerozpuštěný materiál. Supernatant se zneutrali-zuje 20 /ul 1M Tris-HCl, pH 7>0, a opět se vy sráží dvěma ob-jemy acetonu. Výsledná peleta se rozpustí ve 40 yul SDD-pu-fr. Na gel se nasadí obvykle 10 yul· c) Analýza Westernovým blotováním
Postupuje se v podstatě tak, jak popsal H. Towbin a spolčí
Proč. Nati. Acad. Sci. USA 8J5, 6672 až 6676 (1979) s následu-*
jícími modifikacemi: Proteiny se oddělí na 10% SDS—polyakryl-amidovém gelu a blotují sena nitrocelulosové membráně (Amer—sham Hybond C) jednu hodinu při 200 mA v elektroforesní ‘ jed-notce Hoefer TE series Transphor Electrophoresis unit vtransferovém pufru obsahujícím 12,5 mM Tr^i, 96 mM glycinu,pH 8,5, a 10 % methanolu· Membrána se nechá nasáknout, 5 x 20minut ve Westernově pufru (WB, fosforečnanem pufrováný solnýroztok, 0,1% Tween 20) a předem se inkubují ve 20 ml WB ob-sahujícím 10 % normálního ovčího sera. Po jedné hodiněse přidá 40 yul ovčí proti-lidské protrombinové protilátky,navázané na alkalickou fosfatasu (Serotec ΑΗΡ 06A) (výsled-né zředění antisera je 1 s 500) a v inkubaci se pokračujepřes noc. Membrána se promyje 5 x 10 minut ve WB, 1 x 5 v .pufru (O,1M Tris-HCl, pH 9,5, 0,1 M ŇaOl, 5 mM MgCip alka-lické fosfatasy (AP) a pak se vyvíjejí v 10 ml pufru AP - 15 - obsahujícím 66 ^ul tetrazoliové nitromodře (NBT, 50 yug/mlv 70% dimethylformamidu) a 55 ýul 5**hrom-4—chlor-5*-andolyl—fosfátu (BGiPj 50 yug/ml v dimethylformamidu) 5 až 10 minut·
Ve všech vzorcích byl pás nového proteinu snadno viditelnýjak migruje společně s vyčištěným protrombinem (kontrola),při čemž tento pás chyběl v neinfektováných buňkách nebo ustandardních infektovaných buněk· Na základě tohoto testo-vacího stupně byly vypěstovány ve velkém měřítku a vyčištěnypositivní viry vPTHBa a vPTHBb. d) Genomová charakterizace virových rekombinantů
Aby bylo možné zkontrolovat přítomnost integrační části,genu protrombinu v rekombinantním viru, bylo provedeno štěpe··ní restrikČnimi enzymy a následující analýza Southernovýmibloty. DNA vyčištěných rekomb&amp;ntů vPTHBa a vPTHBb se rozště1-pí působením restrikčních endonukleas HindlII a BcoBI, elek··troforesuje se na 1% agarosovém gelu a blotuje se na nitro—celulosový filtr. Filtr se nejdříve hybridizuje sondou thy-midin-kinasy (tk-s ondá) a potom sondou genu protrombinu(PTHB-sonda). '
Ve vzorcích rozštěpených působením HindlII a hybridizo-vaných tk—sondou byl Hind III J —fragment standardního viru,který obsahoval gen thymidin-kinasy, viditelný jako pás o asi5000 nukleotidech· Oba rekombinantní viry obsahovaly předví- .daný pás o asi 6000 nukleotidech a menší pás o asi 1000 nukle-otidech, který obsahoval tk—sekvence· S protrombinovou sondoubyl viditelný pouze pás se 6000 nukleotidy· Tyto získanévzorky pov/Črzují integraci cDNA protrombinu do virového ^ísta.
Ve vzorcích rozštěpených působením EcoRI a hybridizo-vaných tk-sondou byl gen thymidin-kinasy standardního virurozštěpen na dva fragmenty o asi 7θ00 a 0000 nukleotidech·.
Ve vzorku vPTHBa (díky integraci genu protrombinu) se obje-vily dva převídaně fragmenty o asi 9000 a 10 000 nukleotidech. - 16
Do vPTHBb bylo zavedeno druhé místo EcoEI, které vedlo k vy-štěpení genu protrombinu po rozštěpení působením EcoEI» Vzo-rek vPTHBb tedy vykazuje fragment o 10 ooo nukleotidech (ta-ké nalezen ve vzorku vPTHBa) a fragment o 7 000 nukleotidech(také nalezen ve standardní DNA)· Sondou protrombinu byl vvPTHBa detegován očekávaný fragment o 9000 nukleotidech av případě vPTHBb vy štěpený gen protrombinu o 2000 nukleotidech·tato analýza potvrdila očekávanou integraci vzorku ve dvou re—kombinantních virech·' 5» Výběr výhodných buněčných linií sekretujících protrombin
Potenciál buňky pro jisté funkce, například pro růst,adhesi na substrátech, sekreci a postí-translačni modifikace.,se mění podle toho kterého typu buňky· Následující pokusyslouží pro testování a identifikaci buněčných linií, kteréleží v mezích hostitelů viru vakcínia, mají přijatelné cha-rakteristiky růstu a jsou schopny sekretovat aktivní na vi-taminu K závislé proteiny·
Protrombinová aktivita byla stanovena srážecím testempomocí plasmy deficitní na protrombin. Pro přípravu standardníkřivky byl použit lidský protrombin o známé koncentraci (Im-muno PII, IX, X-CPK standard)·
Pro pokusy hveděné v tabulce I se buňky infektují vPTHBa*isolují se po 48 hodinách a analyzují se elektroforesou náSDS-polyakrylamidovém gelu. Vyhodnocení se provede vzhledemke známým množstvím vyčištěného protrombinu v gelech obarve-ných Coomasie modří.
Bylo ukázáno, že vedle buněčných linií ledvin (Hep G2 aH4-11-E—Cj5) také buňky ledvin (např.. BHK a MDCK) a buňky va-jéČníků (CHO) produkují aktivní gama-kařboxylováné pro-řiny.
Na základě známých vlastností těchto buněčných linií a poža-davků na expresi biologicky aktivního protrombinu byly prostudia expresí protrombinu vybrkány buněčné linie uvedené vtabulce I» - 17 -
Tabulka I Výběr buněčných linií pro sekreci protrombinu buněčná linie zdroj 48 h intrabun· karboxyláce BSC1 ledviny, AGM(CC1 26) +++ + n.s. CV1 ledviny, AGM(CCL 70) +++ ++ ano Věro ' ledviny, AGM(CCL 81) -é++ + ano RK 13 ledviny, králík(CCL 37) + +++ n. s. 143B osteosarkom (CEL 8303) + n.s. 293 ledviny, člověk(CEL 1573) + + ano BHK-21 ledviny, křeček + ++ ano (CGL 10) + znamená viditelný pás protrombinu (asi 5θ ng) ++ znamená dobře viditelný pás protrombinu (asi 5θθ až 100 ng)+++ znamená silný pás protrombinu (více než 200 ng) - znamená žádný pás protrombinu AGM znamená africká zelená opice n.s. znamená nestanovováno Z tabulky I je možno vidět, že nejúčinněji sekretujíprotrombin buněčné linie BSC1, GV1 a Věro ledvin africkézelené opice· Buněčná linie EK13 ledvin králíka akumulujívelká množství proteinu uvnitř buněk· Sekrece a akumulaceprotrombinu byla zjištěna také u buněčných, linií 293a. BHE1ledvin, jestliže byly infektovány rekombinantním virem po-dle tohoto vynálezu·
Bekombinanty viru vakcinie podle vynálezu umožňují ry-chlé testování buněčných linií na expresi krevních faktorů,zvláště na vitaminu K závislých krevních srážecích faktorů. - 18
Na základě migrace v oblasti stejných velikostí lze předpo-kládat, že rekombinantní protrombin odvozený od buněk infek-tovaných virem vakcínie je glykosylován do podobného stupnějako protein odvozený z krve. 6· Optimalizace exprese biologicky aktivního protrombinu. jelikož shora uvedený pokus ukazuje, že hladiny protrom- binu v supernatantech infektováných buněk CV1 a Věro byly ,podstatně vyšší než u jiných takových buněčných linií a je-likož předběžné testy koagulace ukazují, že tyto superna-tanty byly biologicky vysoce aktivní, byly pro další pokusyvybrány tyto dvě buněčné linie· a) V prvním pokusu byla stanovována závislost aktivity super-natantů buněčné kultury na dávce infekce virem, který produ-kuje protrombin. Lze ukázat,, že v rozmezí od 0,1 do 20 pfuvPTHBa neby vPTHBb se hladiny protrombinu v supernatantechpo 48 hodinách nijak významně neliší· Z toho lze vyvodit, že postačující pro získání maximálního množství sekretovanéhofaktoru II jak v buňkách CV1 tak v buňkách Věro je 0,1 až 3»s výhodou 0,1 až 1 plak tvořících jednotek na buňku (pfu). b) Následující pokus se týká akumulace sekretovaného proteinu se zvyšující se dobou inkubace· Supernatanty buněk infektova-ných buněk CV1 byly studovány po 12 , 24 , 48, 60 , 72 a 96 ho- dinách od infekce. V časovém období až do'72 hodin bylo po-zorováno kontinuální zvyšování sekretovaného proteinu. Tytotesty byly doprovázeny gelovou elektroforesou a analýzouWesternovými bloty· Bylo zjištěno, že během prodloužení do-by došlo v gelech ke zvýšené sekreci také jiných proteinů·Maximum sekretovaného protrombinu se pohybuje v Časovémobdobí 60 a 72 hodin. c) Exprese protrombinu v závislosti na cyklu buňky’
Jiným podstatným parametrem, který je důležitý pro to,aby exprese v systému podle vynálezu byla efektivní, je fázebuněčného c^klu infektovaných buněk. Pro tento pokus byly 19 buňky CV1 nechány růst v přítomnosti vitaminu EL dokud nedo-sáhly konfluence nebo byly nechány růst další Jeden, dva nebotři dny před infektováním. U supernatantů byla sledována ak-tivita faktoru II v době 48 a 72 hodin po infektování.
Byl© zjištěno, že provádí-li se infektování bezprostřed-ně po tom, co buňky dosáhnou konfluence (1 den), získá se .mírná hladina aktivity. Jestliže se však'zvyšuje stáří kon-fluentní monovrstvy, lze pozorovat nepřetržité stoupání protrombinu. Maximální protrombinové aktivity se dosáhne potom, co infektované buňky CV1 dosáhly konfluence. V opakovanýchpokusech bylo ukázáno, že buňky, které jsou před infektovánímuzavřen^ ve stacionární fázi, poskytují nej lepší výsledky.
Zvýšené hladiny exprese existují zčásti proto, že existujezvýšená hustota buněk. Avšak zvýšená hustota buněk sama plněnevysvětluje celkové zvýšení exprese. 7» Výpočet hladin exprese
Bylo zjištěno, že hladiny exprese, které byly získány po-dle shora popsaných pokusů u buněk CV1 a BSC1, pokrytují až8,0 /Ug/ml protrombinového antigenu. 8. Stanovení biologické aktivity
Bylo zjištěno, že biologická aktivita rekombinantního pro-trombinu leží v oblasti 50 až'70 milíjednotek na mililitr kul-tivačního media. Získá se tak rekombinantní protrombin s po-měrem biiogicky aktivní formy k antigenní formě u buněk Věroaž 70 %, u buněk CV1 až 60 %. Příklad 2
Konstrukce rekombinantu vPT6/2 viru vakcíriie a exprese pro-trombinu Při konstruování rekombinantního vektoru viru vPT6/2se insertní plasmid pTKgpt-PTHBb uvedený.na obrázku 2 rekombinujes virem vakcínie kmen WP6/2 (Moss a spol.í“Deletion óf 9000.bp segment of the vaccinia virus genome thát encodes non-es- — 20 — sential polypeptid.es”, J. Virol. 40, 387 až 395 (1981), tentokmen viru vakcínie jé veřejně dostupný ód. NTIS.). Tento kmen .je atenuovanější (10 -krát u myšího modeluj Buller a spol.:“Decreased viruleňce of recombinant vaccinia virus expressionvectors is associated with a thymidine kinase negative phe-notype”, Nátuře 317> 813 až 815 (1985).) než obvykle používa-ný kmen B a je pró účely přípravy bezpečnějším vektorem.
Podobně jako je shora popsáno v příkladu 1, byl vPT6/2používán pro expresi protrombinu. Výtěžky biologické aktivityprotrombinu v buňkách VĚRO lze odvodit z obrázku 7. Pro dalšíviz legendu u obrázku 7· Příklad 3
Plasmidy pro inserci cDNA protrombinu do hernaglutininovéhomísta viru vakcínie V rekombinantech, které expresí poskytují protrombin jakshora popsáno v příkladech 1 a 2, byla cDNA protrombinu inte-grována do virového místa thymidin-kinasý. Jelikož inaktivacevirového tk-genu atenuuje (zeslabuje) virus, lze předpokládat^že tato atenuace může vést ke snížení hladin exprese cizíchgenů, které mají být získávány expresí. Byly proto zkonstruo-vány dva virové rekombinanty, které mají do místa hernaglu-tininu viru vakcínie integrován cizí gen. 1. Konstrukce insertních plasmidů pHAgpt-oFa a pHAgpt-oFbviru vakcínie
Tento základní vektor, pHA, byl zkonstruován ligacífragmentu Hincll o 1600 nukleotidech genu hernaglutininu vak-cínie (Shida H.: “Nučleotide sequency of the vaccinia virushemagglutinen gene”, Virology 150. 451 až 562·) s velkýmvektorovým fragmentem PvuII plasmidů pTZ19R (Pharmacia, Inc0).Zdrojem HA—genu byl plasmid pVY5 (získaný od'Β» Mosse). Dojediného místa Nrul pHA se vloží kazeta genu Hpal—Dral o - 21 1700 nukleotidech plasmidu pTKgpt-oFls (Falkner F* G., MossB.i "Escherichia coli gpt gene provides dominant selectionfor vaccinia virus open reading frame expression vectors", J. Virol. 62, 1849 až 1854 (1988).). Tato kazeta sestává'zpromotoru Pil včetně násobného klonovaciho místa a genu gptřízeného promotorem P7.5 viru vakcínie. Dvě možné orientacebyly označeny pHAgpt-oFa a pRAgpt-oFb. Tyto plasmidy jsouuvedeny na obrázku 1. 2. Konstrukce insertních plasmidů pHAgpt-PTa a phágpt-PTbviru vakcínie '·
Plasmid pHAgpt*>PTa byl zkonstruován vložením fragmentuBcoEI o 2000 nukleotidech a pTKgpt-PTHBb do plasmidu pHágpt-oFalinearizóvaného působením EcoRl a zpracovaného s fosfatasou.
Podobně byl zkonstruován plasmid pHAgpt-PTb vložením u-vedeného fragmentu EcoKI o 2000 nukleotidech do plasmidupHAgpt^oFb linearizováného působením EcoKI·
Shora uvedené plasmidy, které jsou na obrázku 5> bylypoužity pro získání rekombinantních virů vRA-PTa a vRA-PTbin vivo rekombinací standardním virem vakcínie. *
Buňky Věro byly infektovány shora uvedenými rekombinant—ními viry podobným způsobem jako je popsáno v příkladu 2.Hladinu exprese protrombinu ve srovnání s jinými virovýmirekombinanty lze odvodit z obrázku 7. Příklad 4
Konstrukce rekombinantu vTKemc-PT2 viru vakcínie a jeho pou-žití pro expresi protrombinu
Pro zlepšení úrovně exprese protrombinu byl zkonstruovánnový rekombinant viru vakcínie, který je založen na velmi ,výhodném hybridním expresním viru vakcínie. V tomto systémujeden virus poskytuje expresí bakteriofágovou polymerasu T7, 22 druhý virus poskytuje expresí cílový gen (protrombin) za kon-troly promotoru T7 následovaný leader sekvencí viru encefalo-myokarditidy (EMC) (Elroy—Stein a spol.: "Cap-independenttranslation of mRNA conferred by encephalómyocyrditis virus5 'sequencs improves the performance of the vaccinia virus//bacteriophage T7 hybrid expression systém”, Proč. Nati. Acad.Sci. USA 86, 6126 až 6I3O (1989).). Tento EMC leader udělujena čepičce nezávisející translaci transkriptům T7 a tedyzvyšuje efektivitu translace. 1. Konstrukce insertního plasmidu pTKemc-PT2 viru vakcínie
Fragment EcoRI o 2000 nukleotidech plasmidu pTKgpt-pTHBb(obrázek 2) obsahující cDNA protrombinu byl vložen do jedinéhomísta EcoRI vektoru pTM3. Do výsledného plasmidu pTKemc-PTxse cDNA protrombinu vloží mimo rámec za startovací kodon ini-ciace poskytnutý vektorem pTM3« Aby se kódující oblast sprá-vně napojila na startovací kodon, provede se oligonukleoti-dem řízená mutagenese s jedno vláknovou DNA pTKemc-PTx a oli—gonukleotidem 0PT9 (5**-AGC CTC GGA CGT GCG CCA TGG TAT TATCGT-3*)· Jodnovláknbvá DNA byla získána z pTKemc-PTx transfekcíplasmidu do E. coli kmene NM 522 a superinfektováním pomoc-ným fágem Ml3 K07. Přesná primární struktura místa napojeníkolem iniciačního kodonu ve výsledném plasmidu pTKemc-PT2byla potvrzena sekvenováním s primerem oPT2 (5*~CTG TGC ACAAGG CTA CAC-2*).
Podle tohoto měření je v plasmidu pTKemc-PT2 restauro-vána přírodní sekvence protrombinu.
Rekombinantní virus vTKemc-PT2 byl tedy získán in vivorekombinačními technikami jak shora popsáno v příkladu 1 anásledující dominantní selekcí rekombinantního viru. - 21 Λ-- (.5 800 páru nukleotidů) -do M13mpl8 vložit fragment -
Pstl PTHB o 1600 nukleotidech
-isolovat jednovláknovou DNA (.9 100 párů nukleotidů) vložit fragment
Pstl PTBH o 400 nukleo- tidech
Popisy obrázků:
Obrázek 1
jedno vláknová DMA (.8 700 párů nukleo-tidů) - oligonukleotidem řízená mutagenese — testování/sekvenování vložit modifikovanýfragment o 1600 nuk-leotidech dopTKgpt-oPls (.8 600 párů nukleotidů) (7 100 párů nukleotidů)
Obrázek 2 (5 800 párů nukleotidů) - vložit fragment Pstl PTHBo 400 nukleotidech doM13mpl8
- srolovat jedno vláknovou DNA - oligonukleotidem řízená mu-tagenese - testování (7 600 párů nukleotidů) (.9 000 párů nukleotidů) ' - vložit fragment EcoRI o 2000 nukleotidech domísta EcoRI plasmidupTKgpt-oPlš (9 100 párů nukleotidů) — vložit modifikovaný fragment PTHB o 400 nuk-leotidech do místa Pstlplasmidu pTKgpt-PTHBi (8 700 párů nukleotidů)
Obrázek 3 souhlas pozdního promotoru vakcíniecDNA protrombinu
Obrázek 4
Schéma konstrukcí insertních plasmidů pHAgpt-oFa a pHAgpt-oFbviru vakcínie (4 100 nukleotidů) (7 100 nukleotidů)
Klonování fragmentu Hpal-Dral o 1700 nukleotidech z pTKgpt-oFlsdo plašmidu pHA, který b^l rozštěpen působením Nru· <5 800 nukleotidů) (5 800 nukleotidů) počátek replikace fl počátek replikace fl
Obrázek 5
Schéma konstrukcí insertních plasmidů pHAgptPta a pHAgptPTb (5 800 nukleotidů) (9 000 nukleotidů) (5 počátek replikace fl
Klonování fragmentu EcoSI o 2000nukleotidech z pTKgpt-PTHBb do .restrikčního místa EcoSI plasmi-du pHAgpt-ofa (7 800 nukleotidů) 800 nukleotidů) (9 000 nukleotidů)počátek replikačé fl
Klonování fragmentu EcoSI o2000 nukleotidech zpTKgpt-PTHBb do resifikčníhomísta EcóEI plasmidůpHAgpt-ofb (7 800 nukleotidů)
Obrázek 6
Schéma konstrukcí insertního plasmidů pTKemc-PT2 viru vakcínie(7 400 nukleotidů) (9 000 nukléótidů) počátek replikace fl
*· vložit fragment EcoSI PTHB o 2000 nukleo*·tidech do pTMJ počátek replikace fl (9 400 nukleotidů)
- připravit jednovláknovou DNA - spojit ATG leaderu emc s oblastí kódujícícDNá protrombinu počátek replikace fl (9 400 nukleotidů)
Obrázek 7
Srovnání exprese indukované virovými rekombinanty proexpresi protrombinu v buňkách VĚRO. Hodnota 100 % (45 mu/ml)odpovídá biologické aktivitě ze 72«-hodinovýchsuperňatantúbuněk VĚRO infektovaných vPTHBb % aktivity · · · · . . rekombinanty viru vakcínie

Claims (33)

  1. - 23 - PATENTOVÉ NÁROKY Λ v Λ$> -" x->7\. '. Λ'/ ' "> z / .¾ X •V
    1, Rekombinantně produkované krevní faktory a také., jeJie.ii χ· 7' deriváty získané náhradou, delecí nebo insercí alespoňjedné aminokyseliny, vyznačující se t í m,/že uvedené krevní faktory mají poměr biologicky aktivníformy k antigenní formě alespoň 5θ %·
  2. 2. Krevní faktory podle bodu 1, vyznačující setím, že uvedený poměr je v rozmezí od 60 do 90 %· 3· Krevní faktory podle bodu 1, vyznačující se tím, že uvedený poměr je v rozmezí 70 až 80 %«
  3. 4. Krevní faktor podle kteréhokoliv z bodů 1 až 3» vyzna-čující se tím, že znamená úplnou nebo částeč-nou sekvenci protrombinu.
  4. 5. Krevní faktor podle kteréhokoliv z bodů 1 až 3, vyzna-čující se tím, že znamená úplnou nebo částeč-nou sekvenci na vitaminu K závislého krevního faktoruvybraného ze skupiny sestávající z faktoru VII, faktoruIX, faktoru X, proteinu C a proteinu S, 6» Krevní faktory podle kteréhokoliv z bodů 1 až 3» vy-značující se tím, že znamená úplnou nebočástečnou sekvenci faktoru V, faktoru VIII, faktoru XII,faktoru XIII, von Willebrandova faktoru nebo plasmino-genu. 7· Insertní plasmid, vyznačující se tím, že obsahuje sek-venci cizí cDNA kódující krevní faktor podle bodů 1 až6 a - alespoň jeden replikon, alespoň jeden selekční mar-kér, klonovací místa a alespoň jeden promotor, při čemžuvedený promotor a cizí cDNA je obklopena sekvencemiDNA viru vakcínie. 24
  5. 8. Plasmid podle bodu 7»vyznačující se ti, m,že lemující DNA sekvence odpovídají nepodstatným oblas-tem viru vakcínie·
  6. 9. Plasmid podle bodu 7, vyznačující se tím,že lemující DNA sekvence viru vakcínie odpovídají sek-vencím thymidin-kinasy·
  7. 10. Plasmid podle bodu 7»vyznačující se tím,že lemující DNA sekvence viru vakcínie odpovídají sek-vencím hemoglutininu.
  8. 11. Plasmid podle bodu 7,vyznačující se tím,že uvedený promotor znamená pozdní promotor viru vakcínie
  9. 12. Plasmid podle bodu 11,vyznačující se tím,že uvedený promotor viru vakcínie znamená pozdní 11K—pro-motor.
  10. 15. Plasmid podle bodu 11, vyznačující se tím,že uvedený promotor viru vakcínie znamená syntetickýpozdní promotor.
    14. Plasmid podle bodu 11, vyznačující se tím,že uvedený promotor viru vakcínie znamená syntetickýčasný a pozdní promotor.
    15. Plasmid podle kteréhokoliv z bodů 7 až 14, vy z n a č ující se t í m, že cizí DNA je vložena po směruvlákna a do bezprostřední blízkosti promotoru polypep—tidu 11K nebo jakéhokoliv promotoru podle bodů 7 až 14.
  11. 16. Způsob přípravy plasmidu podle kteréhokoliv z bodů 7 až 15, vyznačující se tím, že 5"-konecpromotoru viru neštovic a 5'“konec po směru vláknasekvence cizí DNA, která má být expresí získávána, jsouuvedeny do bezprostřední blízkosti tak, že 5'“konec ........ - 25 - sekvence cizí DNA je rozšířen nebo zkrácen o jednu nebovíce nukleotidů nebo kodonů, takže tvoří restrikční mís-to, které odpovídá identicky sestrojenému nebo přírodnímurestrikčnímu místu na konci promotoru viru neštovic· 17· Plasmid podle bodů 7 až 15, vyznačující setím, že sekvence cizí cDNA kóduje krevní faktorpodle bodu 1 až 6.
  12. 18. Plasmid podle bodu 17,vyznačující se tím,že sekvence cizí cDNA kóduje protrombin nebo jeho funk- ční ekvivalent. 19· Plasmid podle bodu 15,vyznačující se tím,že obsahuje nové místo štěpení restrikční endonukleasouEcoRI změnou signální sekvence protrombinu tak, že ob-sahuje příslušnou inserci sekvence DNA kódující dvě dal-ší aminokyseliny Asn a Ser na 5^-konci.
  13. 20. Plasmid podle bodu 19, vyznačující se tím, že obsahuje následující sekvenci částečný promotor-cizícDNA: TATAA ATG AAT TCC GCGCAG—- / /—TAG—XXXTTC—6QA-14C.
  14. 21. Plasmid podle bodu 19,vyznačující se tím,že obsahuje následující sekvenci částečný promotor—cizícDNA: TATAA ATG AAT TCC GCGCAC—/ /—TAG—GAATTC—.
  15. 22. Plasmid podle bodu 19,vyznačující se tím,že sekvence cizí cDNA kódující proteiny podle bodů 1 až 6 byla. klonována do otevřené čtecí fáze plasmidupTKgpt-oPls v bezprostřední blízkosti promotoru.’
  16. 25. Plasmid pTKgpt-PTHBa, vyznačující se tím,že má strukturu uvedenou na obrázku 1.
    24. Plasmid pTKgpt-PTHBb, vyznačující se t í mtže má strukturu uvedenou na obrázku 2. - 26 25 · Plasmidy pHAgpt-oFa a pHAgpt-oFb, vy zna č u j ícíse t í in, že mají strukturu uvedenou na obrázku 4. 26· Plasmidy podle bodu 25» vy zna č u j í c í s e t í m, že sekvence cizí cDNA kódující proteiny podlebodů 1 až 6 je klonována do otevřené čtecí fáze v bez-prostředním sousedství promotoru, který kontrolujeoizí DNA, jež má být expresí připravena.
  17. 27. Plasmidy pHAgpt-PTa a pHAgpt-PTb, vyznačujícíse t i m, že mají strukturu uvedenou na obrázku 5·
  18. 28. Plasmid pTKemc-PT2, vyznačující se tím,že máátrukturu uvedenou na obrázku 6.
  19. 29. Rekombinantní virus vakcínie, vyznačující setím, že ho lze získat in vivo homologní rekombinacístandardního vzorku viru vakcínie s plasmidem podle bodů7 až 15 a 17 až 28.
  20. 30. Rekombinantní viry vakcínie vPTHBa vPTHBh, vyznač u—jí c í se tím, že je lze získat in vivo homo-logní rekombinací standardního viru vakcínie s plasmidypodle bodů 23 a 24.
  21. 31. Rekombinantní virus vakcínie vPT6/2,, vyznačují-cí se tím, že ho lze získat in vivo homolognírekombinací kmene WR6/2 viru vakcínie s plasmidy podlebodů 7 až 15 a 17 až 28.
  22. 32. Rekombinantní virus vakcínie vTKemc-PT2, vyznaču-jící se tím, že ho lze získat in vivo homo-logní rekombinací standardního viru vakcínie s plasmidempodle bodu 28.
  23. 33. Obratlovcova buněčná kultura pro expresi krevních faktorů - 27 podle bodů 1 až 6, vyznačující se tím,že ji lze získat infektováním hostitelské buňky rekombi-nantním virem vakcínie podle bodů 29 až 32»
  24. 34. Buněčná kulturg podle bodu 33» vyznačujícís e t í m, že se jako hostitelská buňka používásavčí játrová nebo ledvinová buňka. 35· Buněčná kultura podle bodu 34, vyznačujícíse tím, že se jako hostitelské buňky používajíbuňky Věro, CV1, BSC1, BHK nebo REL3. '
  25. 36. Způsob přípravy rekombinantu krevního faktoru podle kteréhokoliv z bodů 1 až 6, vyznačující setím, že se savčí hostitelské buňky infektují rekom-binantním virem vakcínie podle bodů 29 až 32, uvedenébuňky se kultivují, expresí se získá žádaný krevní fak·*tor a tento faktor se isoluje. 37· Způsob podle bodu 36, vyznačující setím, že se jako hostitelské buňky používají buňkyVěro, CV1, BSC1, BHK nebo JSKlý.
  26. 38. Způsob podle bodu 37» vyznačující se t í m, že se jako hostitelské buňky používají buňkyRK13 a cizímu genu chybí signální sekvence.
  27. 39. Způsob podle bodu 3£, vyznačující setím, že buňky byly před infektováním ve stavu kon-fluence.
  28. 40. Způsob podle bodu36 at i m, že hostitelskés výhodou 0,1 až 1 pfu
  29. 41. Způsob podle bodu 36, 39» vyznačující sebuňky se infektují 0,1 až 20,rekombinantního viru vakcínie. vyznačující - 28 tím, že se kultivace buněk a/nebo exprese žádanéhokrevního faktoru provádí v přítomnosti vitaminu K.
  30. 42. Způsob podle bodu 36» vyznačující setím, že se kultivace infektovaných buněk provádí vsystému o vysoké hustotě.
  31. 43. Způsob podle bodu J6, vyznačující setím, že se kultivace infektovaných buněk provádí vkultuře s mikronosičem nebo v systému dutých vláken.
  32. 44. Způsob podle bodu $6, vyznačující s.etím, že se žádaný krevní faktor isoluje z buněknebo supernatantu.
  33. 45. Způsob podle bodu vyznačující se t í m, že se krevní faktor isoluje po 48 až 96 hodi-nách, s výhodou po 60 až 72 hodinách od'infektování. Zastupuje:
CS91172A 1990-01-26 1991-01-25 Recombinantly prepared blood factors, method of stated blood factors expression and also recombinants of virus of vaccine that is used in stated process CS17291A2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP90101623 1990-01-26

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS17291A2 true CS17291A2 (en) 1991-09-15

Family

ID=8203546

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS91172A CS17291A2 (en) 1990-01-26 1991-01-25 Recombinantly prepared blood factors, method of stated blood factors expression and also recombinants of virus of vaccine that is used in stated process

Country Status (12)

Country Link
EP (1) EP0512011B1 (cs)
JP (1) JP2549224B2 (cs)
AT (1) ATE103982T1 (cs)
CA (1) CA2073859A1 (cs)
CS (1) CS17291A2 (cs)
DE (2) DE69101634T4 (cs)
DK (1) DK0512011T3 (cs)
ES (1) ES2052368T3 (cs)
FI (1) FI923347A0 (cs)
HU (1) HUT63459A (cs)
NO (1) NO922953L (cs)
WO (1) WO1991011519A1 (cs)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69229390T2 (de) * 1991-08-26 1999-11-11 Immuno Ag, Wien Direkt molekuläre Klonierung eines modifizierten Genoms eines Chordopocken-Virus
US5476777A (en) * 1991-12-31 1995-12-19 Zymogenetics, Inc. Methods for producing thrombin
US5527692A (en) * 1991-12-31 1996-06-18 Zymogenetics, Inc. Methods for producing thrombin
AU1096595A (en) * 1993-11-12 1995-05-29 Gilead Sciences, Inc. Thrombin mutants
US7060484B1 (en) 1993-11-12 2006-06-13 Gilead Sciences, Inc. Polypeptides and coagulation therapy
DE4430204A1 (de) * 1994-08-26 1996-02-29 Behringwerke Ag Arzneimittel, welches als Gegenmittel für Blut-Antikoagulanzien geeignet ist und seine Verwendung
AT403167B (de) * 1994-11-14 1997-11-25 Immuno Ag Selektion und expression von fremdproteinen mittels eines selektions-amplifikations-systems
AT404357B (de) * 1995-06-13 1998-11-25 Immuno Ag Prothrombin-derivate
DE59712322D1 (de) * 1996-03-20 2005-06-30 Baxter Ag Pharmazeutisches Präparat zur Behandlung von Blutgerinnungsstörungen
US6747003B1 (en) 1997-10-23 2004-06-08 Regents Of The University Of Minnesota Modified vitamin K-dependent polypeptides
US7247708B2 (en) 1997-10-23 2007-07-24 Regents Of The University Of Minnesota Modified vitamin K-dependent polypeptides
EP2319541A1 (en) 2000-02-11 2011-05-11 Bayer HealthCare LLC Factor VII or VIIA-like conjugates
EP1136553A1 (en) * 2000-03-22 2001-09-26 Octagene GmbH Production of recombinant blood clotting factors in human cell lines
EP1266006B1 (en) * 2000-03-22 2005-12-07 Octagene GmbH Production of recombinant muteins of blood clotting factor viii in human cell lines
US7812132B2 (en) 2000-04-28 2010-10-12 Regents Of The University Of Minnesota Modified vitamin K-dependent polypeptides
US7220837B1 (en) 2000-04-28 2007-05-22 Regents Of The University Of Minnesota Modified vitamin K-dependent polypeptides
US20030211094A1 (en) 2001-06-26 2003-11-13 Nelsestuen Gary L. High molecular weight derivatives of vitamin k-dependent polypeptides
BR0309576A (pt) 2002-04-30 2005-02-09 Maxygen Holdings Ltd Variante de polipeptìdeo do fator vii (fvii) ou fator viia (fviia), sequência de nucleotìdeo, vetor de expressão, célula hospedeira, composição farmacêutica, uso de uma variante, e, método para tratar um mamìfero que tenha uma doença ou um distúrbio em que a formação de coágulo é desejável
ES2386010T3 (es) 2003-03-20 2012-08-07 Bayer Healthcare Llc Variantes de FVII o FVIIa
KR101191779B1 (ko) 2003-06-19 2013-01-14 맥시겐 홀딩스 엘티디 인자 ⅶ 또는 ⅶ에이 지엘에이 도메인 변종들
JP6245299B2 (ja) * 2016-04-27 2017-12-13 バクスアルタ ゲーエムベーハー 組換え安定細胞クローン、その産生およびその使用

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8508845D0 (en) * 1985-04-04 1985-05-09 Hoffmann La Roche Vaccinia dna
AU8339187A (en) * 1986-11-17 1988-06-16 New England Medical Center Hospitals, Inc., The Enhancing gamma-carboxylation of recombinant vitamin k-dependent proteins
WO1989012685A1 (en) * 1987-05-18 1989-12-28 Integrated Genetics, Inc. Improved protein c molecules and method for making and activating same
FR2619314B1 (fr) * 1987-08-11 1990-06-15 Transgene Sa Analogue du facteur viii, procede de preparation et composition pharmaceutique le contenant
DE3813093A1 (de) * 1988-04-19 1989-11-09 Immuno Ag Rekombinantes plasmid, verfahren zum herstellen eines rekombinanten avipoxvirus, rekombinantes avipoxvirus und dessen verwendung
FR2638643B1 (fr) * 1988-11-09 1991-04-12 Transgene Sa Sequence d'adn codant pour le facteur ix humain ou une proteine analogue, vecteur d'expression, cellules transformees, procede de preparation du facteur ix et produits obtenus correspondants

Also Published As

Publication number Publication date
HU9202435D0 (en) 1992-10-28
WO1991011519A1 (en) 1991-08-08
FI923347A7 (fi) 1992-07-23
EP0512011B1 (en) 1994-04-06
DE69101634T2 (de) 1994-08-18
FI923347L (fi) 1992-07-23
NO922953D0 (no) 1992-07-24
HUT63459A (en) 1993-08-30
DK0512011T3 (da) 1994-05-09
NO922953L (no) 1992-09-04
ES2052368T3 (es) 1994-07-01
JP2549224B2 (ja) 1996-10-30
EP0512011A1 (en) 1992-11-11
DE69101634D1 (de) 1994-05-11
FI923347A0 (fi) 1992-07-23
DE69101634T4 (de) 1994-12-01
ATE103982T1 (de) 1994-04-15
CA2073859A1 (en) 1991-07-27
JPH05507401A (ja) 1993-10-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CS17291A2 (en) Recombinantly prepared blood factors, method of stated blood factors expression and also recombinants of virus of vaccine that is used in stated process
CA2076839C (en) Direct molecular cloning of a modified eukaryotic cytoplasmic dna virus genome
AU625584B2 (en) Recombinant poxvirus host selection system
US5225336A (en) Recombinant poxvirus host range selection system
KR101005630B1 (ko) 수두 바이러스 게놈내로 삽입된 상동 유전자를 발현하는재조합 수두 바이러스
Tomalski et al. A baculovirus homolog of aCu/Znsuperoxide dismutase gene
Banerjea et al. High-level synthesis of biologically active reovirus protein σ1 in a mammalian expression vector system
JPH05192165A (ja) 組換え鶏痘ウイルス
JP2936201B2 (ja) ヒト第▲ix▼因子または類似の蛋白質をコードするdna配列、発現ベクター、形質転換された細胞、第▲ix▼因子の製造方法および得られた対応する生成物
CA2094821A1 (en) Vaccinia vectors, vaccinia genes and expression products thereof
JPH0365191A (ja) スフェロイジン単離dnaおよび組み換え昆虫ポックスウィルス発現ベクター
Li et al. Expression of the M gene of vesicular stomatitis virus cloned in various vaccinia virus vectors
WO1990012101A1 (en) Vaccinia vectors, vaccinia genes and expression products thereof
Mathur et al. Expression of L protein of vesicular stomatitis virus Indiana serotype from recombinant baculovirus in insect cells: requirement of a host factor (s) for its biological activity in vitro
Falkner et al. High level expression of active human prothrombin in a vaccina virus expression system
US10208101B2 (en) Recombinant fibrinogen high-production line and method for producing same
Takehara et al. Secretion of recombinant rat annexin 5 by insect cells in a baculovirus expression system
CA2515166C (en) Direct molecular cloning of a modified eukaryotic cytoplasmic dna virus genome
CA2558864C (en) Direct molecular cloning of a modified eukaryotic cytoplasmic dna virus genome
Himly et al. Defective vaccinia virus as a biologically safe tool for the overproduction of recombinant human secretory proteins
CA2617830C (en) Direct molecular cloning of a modified eukaryotic cytoplasmic dna virus genome
SK277781B6 (en) Peptides and polypeptides, vaccines and nucleous acid
IE60641B1 (en) Human protein s, a plasma protein regulator of hemostasis
JPH02156883A (ja) 組み換えワクチニアウイルス