CN111135299A - 光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米粒的构建 - Google Patents
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Abstract
本发明属于医药技术领域,涉及光敏剂‑低氧激活前药一体化前药,将光敏剂与低氧激活前药以光诱导电子转移触发断裂的键、活性氧敏感键、既能通过PET断裂又具有ROS敏感的键或非敏感键相连,实现光敏剂和低氧激活前药高效共载和同步递送。本发明以焦脱镁叶绿酸a作为光敏剂,以PR104A作为低氧激活前药,以酮缩硫醇键或单硫醚键或非敏感碳酸酯键相连,合成一体化前药,制备自组装纳米递药系统。本发明制备工艺简单,纳米粒载药量高;粒径小且均一,利于纳米粒通过EPR效应富集于肿瘤部位;进行光动力治疗的同时,通过PET与ROS双模式触发低氧激活前药在肿瘤的选择性释放;光动力治疗促进低氧激活前药的激活,显著提高了光敏剂和低氧激活前药的协同抗肿瘤效果。
Description
技术领域
本发明属于药物制剂新辅料和新剂型领域,涉及光敏剂-低氧激活前药一体化前药及其合成方法,还涉及所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米粒的构建,以及其在药物传递系统中的应用。
背景技术
癌症仍是威胁人类健康的一大病症,目前癌症的治疗仍是以化疗为主,但大部分化疗药是细胞毒性药物,治疗窗窄,肿瘤靶向性较差,导致疗效不佳且毒副作用严重。低氧激活前药是一类本身无毒或毒性较低的前药,能够在肿瘤低氧区被选择性激活成为具有细胞毒活性的抗肿瘤药物,相对于传统化疗药物具有很好的安全性。单一低氧激活前药治疗的治疗效果往往并不理想,而在与其他治疗方式的联合上具有较大潜力。光动力治疗的机制是当光敏剂在肿瘤部位被特定波长的激光激发后,将能量传递给周围的氧气等物质而产生活性氧,活性氧能诱导肿瘤细胞的凋亡。光动力治疗由于消耗氧气,因此往往会加重肿瘤部位的缺氧状态,将光动力治疗与低氧激活前药进行联合,能进一步促进低氧激活前药的激活,发挥高效的协同抗肿瘤作用。因此,低氧激活前药与光动力治疗的联合应用具有良好的临床应用前景。
然而,因低氧激活前药和光敏剂在理化性质和药动学性质上存在差异,如何实现二者的高效同步递药仍是一个亟待解决的难题。传统纳米载体能将低氧激活前药和光敏剂通过物理包埋的方式实现共载,但这种非共价方式的共载策略存在载药量低、稳定性差、药物易在载体中结晶或提前泄漏以及光敏剂的聚集淬灭效应等问题。因此,亟需构建更高效的新型药物传递系统用于低氧激活前药和光敏剂的联合递药。相比于传统纳米载体存在的不足,前药自组装纳米递药系统因前药自身作为纳米结构的主体而使得载药量非常高,高载药量则意味着减小载体材料的用量,减少甚至避免因载体材料的大量使用而导致的辅料相关不良反应。
发明内容
针对现有技术的上述缺陷,本发明拟设计合成光敏剂-低氧激活前药一体化前药,并构建光诱导电子转移与活性氧双模式触发释药的光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米递药系统,通过共价键合的方式实现卟啉类光敏剂和低氧激活前药的高效共载和同步递送。光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米系统具有双模式药物释放作用:一是经激光照射,聚集态的前药纳米粒通过光诱导电子转移触发含硫连接链的断裂促进低氧激活前药的释放以及纳米粒的解聚集;二是纳米粒解聚集后,光动力治疗生成的活性氧进一步促进敏感键的断裂以及低氧激活前药的释放。
本发明设计光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米粒的目的是提高低氧激活前药与光动力治疗的协同治疗效果,并考察该药物递送系统的可控性药物释放及机制、细胞毒性、药动学、组织分布以及抗肿瘤效率。
本发明通过以下技术方案实现上述目的:
光敏剂-低氧激活前药一体化前药,是将低氧激活前药与光敏剂通过光诱导电子转移触发断裂的键、活性氧敏感键、既能通过光诱导电子转移触发断裂又具有活性氧敏感的键或非敏感键相连,所述的光诱导电子转移触发断裂的键为酮缩硫醇键、单硫醚键、二硫醚键、单硒键、二硒键或间隔二硫醚键类含低氧化电位硫或硒原子的连接键,所述的活性氧敏感键为酮缩硫醇键、单硫醚键、二硫醚键、单硒键、二硒键、间隔二硫醚键、芳基硼酸酯键、氨基丙烯酸酯键或过氧草酸酯键,所述的非敏感键为碳酸酯键或氨基甲酸酯键。
优选地,低氧激活前药与光敏剂以既能通过光诱导电子转移触发断裂又具有活性氧敏感的酮缩硫醇键或单硫醚键相连,或以非敏感碳酸酯键相连。
其中,低氧激活前药为一类对正常组织无毒或毒性较低,进入肿瘤低氧微环境后即可被激活产生抗肿瘤活性的药物,优选替拉扎明、TH-302、EO9、AQ4N或PR104A,光敏剂为能产生活性氧的化合物,优选焦脱镁叶绿酸a、二氢卟吩e6、5-氨基酮戊酸、原卟啉、血卟啉单甲醚、竹红菌甲素、金丝桃素、叶绿素衍生物或酞菁类衍生物。
优选以PR104A作为低氧激活前药,以焦脱镁叶绿酸a作为光敏剂的光敏剂-低氧激活前药一体化前药的结构式为:
本发明提供的所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药的合成方法,包括如下步骤:低氧激活前药先与4,4-二甲基-3,5-二硫庚二醇、硫代二乙醇或1,6-己二醇反应成碳酸酯键或氨基甲酸酯键,而后与光敏剂再进行反应,即得。
具体地,本发明提供了光敏剂-低氧激活前药一体化前药合成方法:
将PR104A与三光气溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,将DMAP溶于少量二氯甲烷并逐滴加入到上述混合溶液中,冰浴下反应1-2小时。将4,4-二甲基-3,5-二硫庚二醇、硫代二乙醇或1,6-己二醇加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得到三种中间产物。另外将PPa、N-甲基吗啡啉和HATU溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,冰浴下反应1-2小时。将上述三种中间产物加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药。
本发明还提供了所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米粒,所述的前药纳米粒可以为非PEG化的前药纳米粒、PEG修饰的前药纳米粒和主动靶向的前药纳米粒。
所述的前药自组装纳米粒的制备方法如下:
将一定量的前药或前药与PEG修饰剂的混合物溶解到适量的无水丙酮中,搅拌下,将该溶液缓缓滴加到水中,前药自发形成均匀的纳米粒。最后,采用旋蒸法或透析法除去制剂中的无水丙酮,得到不含有机溶剂的纳米胶体溶液。所述的PEG修饰剂为TPGS-PEG、DSPE-PEG、PLGA-PEG和PE-PEG等,优选的PEG修饰剂为DSPE-PEG。所述PEG的分子量为1000-5000,优选为1000、2000和5000,更优选的PEG分子量为2000。
(1)非PEG化的前药自组装纳米粒的制备方法:将一定量的前药溶解到适量的无水丙酮中,搅拌下,将该溶液缓缓滴加到水中,前药自发形成均匀的纳米粒。
(2)PEG修饰的前药自组装纳米粒的制备方法:将一定量的PEG修饰剂(TPGS-PEG、DSPE-PEG、PLGA-PEG或PE-PEG)和前药溶解到适量的无水丙酮中,搅拌下,将该混合溶液缓缓滴加到水中,前药自发形成均匀的纳米粒。其中,前药与PEG修饰剂的比例为95:5~70:30。
(3)主动靶向的前药自组装纳米粒的制备方法:将一定量的茴香胺修饰的DSPE-PEG(DSPE-PEG-AA)以及前药溶解到适量的无水丙酮中,搅拌下,将该混合溶液缓缓滴加到水中,前药自发形成均匀的纳米粒。所述前药与DSPE-PEG-AA的比例为95:5~70:30。
由于前药自组装纳米粒具有紧密的分子堆砌结构,分子间距离的缩短使得分子间光诱导电子转移的发生成为了可能。在激光照射下,前药自组装纳米粒中的光敏剂与含硫连接链之间发生光诱导电子转移反应,能够触发化学链的断裂、低氧激活前药的释放以及纳米粒的瓦解和聚集淬灭效应的消失。而后光动力治疗产生的活性氧会进一步促进活性氧敏感键的断裂与低氧激活前药的释放。光动力治疗导致的肿瘤部位严重缺氧会进一步激活低氧激活前药产生毒性,实现协同治疗作用。
本发明的光敏剂-低氧激活前药一体化前药首次被发现可以自组装形成均匀的纳米体系。该纳米药物传递系统的优势在于:(1)采用一步纳米沉淀的方法,制备工艺简单,易于产业化;(2)粒径小且均一(~100nm),有利于纳米粒通过EPR效应富集于肿瘤部位;(3)超高的载药量,有利于减小因辅料和生物材料而引发的不良反应;(4)易于表面修饰,可通过PEG和主动靶向修饰有效避免网状内皮系统摄取和提高肿瘤细胞对纳米粒的摄取;(5)激光照射下实现光诱导电子转移与活性氧双模式触发肿瘤部位选择性药物释放;(6)光动力治疗加重肿瘤部位缺氧状态促进低氧激活前药的激活,实现协同治疗作用。
本发明具有以下有益效果:1、设计合成了光敏剂-低氧激活前药一体化前药,合成方法简单易行;2、制备了粒径均匀的前药自组装纳米粒,制备方法简单易行,稳定性好,实现光敏剂和低氧激活前药的高效共载;3、在激光照射下实现光诱导电子转移与活性氧双模式触发肿瘤部位选择性药物释放,并能有效改善光敏剂的聚集淬灭效应;4、PEG修饰的前药自组装纳米粒能有效延长药物在血液中的循环时间,增加在肿瘤部位的蓄积;5、光动力治疗与低氧激活前药具有良好的联合抗肿瘤效果,即协同抗肿瘤作用。
附图说明
图1为本发明实施例1的酮缩硫醇键相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-TK-PPa)的质谱图以及1H NMR谱图。
图2为本发明实施例2的单硫醚键相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-S-PPa)的质谱图以及1H NMR谱图。
图3为本发明实施例3的非敏感碳链相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-PPa)的质谱图以及1H NMR谱图。
图4为本发明实施例4的PEG修饰的前药自组装纳米粒的透射电子显微镜图。
图5为本发明实施例5的PEG修饰的前药自组装纳米粒的胶体稳定性图。
图6为本发明实施例6的PEG修饰的前药自组装纳米粒在体外产生单线态氧以及消耗氧气的检测图。
图7为本发明实施例7的PEG修饰的前药自组装纳米粒体外药物释放图。
图8为本发明实施例7的PEG修饰的前药自组装纳米粒在激光照射下前药分子量变化质谱图。
图9为本发明实施例7的PEG修饰的前药自组装纳米粒在激光照射下硫醇含量的测定图。
图10为本发明实施例7的PEG修饰的前药自组装纳米粒在激光照射下释放机制图(hv代表光照;PET代表光诱导电子转移)。
图11为本发明实施例8的PEG修饰的前药自组装纳米粒和溶液剂的细胞毒性图(+代表接受激光照射)。
图12为本发明实施例9的PEG修饰的前药自组装纳米粒的细胞摄取图(n.s.代表无显著性差异;*,**,***分别代表显著性p<0.05,p<0.01,p<0.001)。
图13为本发明实施例10的PEG修饰的前药自组装纳米粒的血药浓度-时间曲线图。
图14为本发明实施例11的PEG修饰的前药自组装纳米粒的活体分布图。
图15为本发明实施例11的PEG修饰的前药自组装纳米粒的离体组织分布图(H、Li、S、L、K、T分别代表心、肝、脾、肺、肾、肿瘤;*,**,***分别代表显著性p<0.05,p<0.01,p<0.001)。
图16为本发明实施例12的PEG修饰的前药自组装纳米粒的抗肿瘤实验肿瘤体积变化图(+代表接受激光照射;n.s.代表无显著性差异;*,**,***分别代表显著性p<0.05,p<0.01,p<0.001)。
图17为本发明实施例12的PEG修饰的前药自组装纳米粒的抗肿瘤转移统计图(+代表接受激光照射;*,**,***分别代表显著性p<0.05,p<0.01,p<0.001)。
图18为本发明实施例12的PEG修饰的前药自组装纳米粒的抗肿瘤实验小鼠体重变化图(+代表接受激光照射)。
具体实施方式
下面通过实施例的方式进一步说明本发明,但并不因此将发明限制在所述的实施例范围之中。
实施例1:
酮缩硫醇键相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-TK-PPa)的合成
将PR104A与三光气溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,将DMAP溶于少量二氯甲烷并逐滴加入到上述混合溶液中,冰浴下反应1-2小时。将4,4-二甲基-3,5-二硫庚二醇加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得到中间产物。另外将PPa、N-甲基吗啡啉和HATU溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,冰浴下反应1-2小时。将上述中间产物加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得PR104A-TK-PPa。
采用质谱法以及核磁共振氢谱法来确定实施例1中前药的结构,结果如图1所示,核磁共振选用的溶剂为CDCl3,解析结果如下:
HRMS(ESI)m/z:[M+H]+calcd for C55H66BrN8O14S3,1237.30385;found,1237.30869.1H NMR(400MHz,CDCl3,δ):9.45(s,1H),9.34(s,1H),8.58(s,1H),8.53(d,J=2.8Hz,1H),8.47(d,J=2.8Hz,1H),7.98(dd,J=17.8,11.6Hz,1H),7.36(t,J=5.9Hz,1H),6.33–6.13(m,2H),5.26(d,J=21.0Hz,1H),5.10(d,J=19.8Hz,1H),4.55–4.44(m,1H),4.34–4.29(m,1H),4.26(q,J=4.5Hz,4H),4.22(t,J=6.7Hz,2H),4.18–4.09(m,2H),3.68–3.59(m,7H),3.55–3.48(m,2H),3.48–3.42(m,4H),3.41(s,3H),3.20(s,3H),2.92(s,3H),2.82(t,J=6.7Hz,2H),2.72(t,J=6.8Hz,2H),2.70–2.63(m,1H),2.62–2.52(m,1H),2.39–2.23(m,2H),1.83(d,J=7.2Hz,3H),1.67(t,J=7.6Hz,3H),1.51(d,J=5.4Hz,6H),0.36(s,1H),–1.74(s,1H).
实施例2:
单硫醚键相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-S-PPa)的合成
将PR104A与三光气溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,将DMAP溶于少量二氯甲烷并逐滴加入到上述混合溶液中,冰浴下反应1-2小时。将硫代二乙醇加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得到中间产物。另外将PPa、N-甲基吗啡啉和HATU溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,冰浴下反应1-2小时。将上述中间产物加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得PR104A-S-PPa。
采用质谱法以及核磁共振氢谱法来确定实施例2中前药的结构,结果如图2所示,核磁共振选用的溶剂为CDCl3,解析结果如下:
HRMS(ESI)m/z:[M+H]+calcd for C52H60BrN8O14S2,1163.28483;found,1163.28363.1H NMR(400MHz,CDCl3,δ):9.48(s,1H),9.37(s,1H),8.59(s,1H),8.52(d,J=2.8Hz,1H),8.47(d,J=2.8Hz,1H),7.99(dd,J=17.8,11.6Hz,1H),7.42(t,J=5.9Hz,1H),6.33–6.15(m,2H),5.26(d,J=19.8Hz,1H),5.09(d,J=19.8Hz,1H),4.55–4.43(m,1H),4.35–4.30(m,1H),4.26(q,J=5.0Hz,4H),4.21(t,J=6.5Hz,2H),4.15–4.08(m,2H),3.70–3.60(m,7H),3.50(t,J=6.2Hz,2H),3.44(t,J=5.9Hz,4H),3.41(s,3H),3.22(s,3H),2.91(s,3H),2.77–2.65(m,3H),2.64–2.52(m,3H),2.38–2.25(m,2H),1.83(d,J=7.2Hz,3H),1.67(t,J=7.6Hz,3H),0.36(s,1H),–1.72(s,1H).
实施例3:
非敏感碳链相连的PR104A-焦脱镁叶绿酸a前药(PR104A-PPa)的合成
将PR104A与三光气溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,将DMAP溶于少量二氯甲烷并逐滴加入到上述混合溶液中,冰浴下反应1-2小时。将1,6-己二醇加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得到中间产物。另外将PPa、N-甲基吗啡啉和HATU溶于无水二氯甲烷中于低温冰浴孵育,冰浴下反应1-2小时。将上述中间产物加入到该反应液中,室温反应24小时,分离纯化得PR104A-PPa。
采用质谱法以及核磁共振氢谱法来确定实施例3中前药的结构,结果如图3所示,核磁共振选用的溶剂为CDCl3,解析结果如下:
HRMS(ESI)m/z:[M+H]+calcd for C54H64BrN8O14S,1159.34406;found,1159.34726.1H NMR(400MHz,CDCl3,δ):9.46(s,1H),9.35(s,1H),8.58(s,1H),8.55(d,J=2.8Hz,1H),8.49(d,J=2.8Hz,1H),7.98(dd,J=17.8,11.6Hz,1H),7.32(t,J=5.8Hz,1H),6.31–6.13(m,2H),5.25(d,J=19.8Hz,1H),5.09(d,J=19.8Hz,1H),4.56–4.45(m,1H),4.33–4.25(m,5H),4.08(t,J=6.6Hz,2H),4.01–3.93(m,2H),3.70–3.61(m,7H),3.57–3.51(m,2H),3.50–3.44(m,4H),3.40(s,3H),3.20(s,3H),2.92(s,3H),2.75–2.63(m,1H),2.60–2.50(m,1H),2.39–2.21(m,2H),1.83(d,J=7.3Hz,3H),1.67(t,J=7.6Hz,3H),1.52–1.43(m,2H),1.26–1.14(m,4H),0.95–0.79(m,2H),0.36(s,1H),–1.74(s,1H).
实施例4:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的制备
将DSPE-PEG2k(20wt%)和前药(PR104A-TK-PPa、PR104A-S-PPa或PR104A-PPa,4mg)溶解于1mL无水丙酮中。在搅拌下(1000rpm)将混合溶液滴加到4mL去离子水中。在25℃的条件下旋蒸除去纳米制剂中的有机溶剂,即分别得到PTKP纳米粒、PSP纳米粒和PP纳米粒。如表1所示,PR104A和PPa的载药量都很高,实现了光敏剂和低氧激活前药的高效共载。
表1、PEG修饰的前药自组装纳米粒的粒径、粒径分布、表面电位和载药量
通过透射电子显微镜测定实施例4中制备的前药自组装纳米粒的粒径和形态,结果如图4,透射电镜图表明载药纳米粒为均一的球形,粒径在100nm左右。
实施例5:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的胶体稳定性试验
将实施例4中制备的PEG修饰的前药自组装纳米粒PTKP纳米粒、PSP纳米粒和PP纳米粒(0.25mg/mL)在37℃的条件下在含有10%FBS的PBS(pH为7.4)中孵育24h,并且在预定的时间点(0,1,2,4,6,8,12和24h)通过动态光散射法测定其粒径变化。结果如图5所示,PEG修饰的前药自组装纳米粒在24小时内粒径无明显变化,显示出良好的胶体稳定性。
实施例6:
PEG修饰的前药自组装纳米粒在体外产生单线态氧以及消耗氧气的检测
将DPBF的DMSO溶液(5mM)取出5μL加入到3mL的纯水对照、PPa溶液、PTKP纳米粒、PSP纳米粒和PP纳米粒(PPa量为20μg/mL)中,在660nm激光的照射下,每隔1分钟用紫外分光光度计测定410nm附近的吸光度变化,DPBF吸光度的下降表示活性氧的产生。同时,15分钟测定结束后,使用便携式溶氧仪测定纳米粒溶液中的溶解氧浓度。
结果如图6所示,三种纳米粒在激光照射下都能够有效产生活性氧,其中PTKP纳米粒由于能够有效克服聚集淬灭效应,活性氧产生量随时间增加显著。另外,三种纳米粒都能够消耗氧气造成低氧。
实施例7:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的体外释放实验
将实施例4中制备的PTKP纳米粒、PSP纳米粒和PP纳米粒(PR104A量为100μg)于30mL的PBS(pH为7.4)释放介质中,在660nm激光的照射下,在预定的时间点(0,1,5,10,20,30,45和60min)使用高效液相色谱法(HPLC)测定PR104A的药物释放。同时,为了验证药物释放机制,PTKP纳米粒和PSP纳米粒在激光照射5min后使用质谱测定溶液中前药的分子量变化。同时,通过使用硫醇检测试剂盒对不同时间点(5,15和30min)溶液中的游离硫醇进行含量测定,维他命C(VC)作为活性氧清除剂。
药物释放结果如图7,当PSP纳米粒和PTKP纳米粒用660nm激光照射1小时后,PR104A的释放率分别为42.4%和63.7%。而在相同的激光照射下,非敏感的PP纳米粒的药物释放量(<1%)可以忽略不计。如图8质谱结果表明,在PSP纳米粒和PTKP纳米粒接受激光照射后均出现了PR104A-SH的分子量。据研究,硫醚只能被氧化成亚砜和砜,并不能被氧化为游离硫醇,因此,在这里硫醇的生成是由于光诱导电子转移反应产生的。如图9所示,随着激光照射时间的延长,PSP纳米粒和PTKP纳米粒的硫醇含量增加,PTKP纳米粒比PSP纳米粒产生更多的硫醇,主要是由于在PTKP纳米粒中C-S键的裂解速率要快于PSP纳米粒。相比之下,非敏感的PP纳米粒则没有硫醇形成。如图10释放机制所示,总的来说,PTKP纳米粒比PSP纳米粒释放PR104A更快,这是由于PTKP纳米粒具有更快的光诱导电子转移诱导释放以及随后的同样更快的活性氧敏感药物释放。
实施例8:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的细胞毒性实验
将4T1细胞以每孔1000个细胞的密度接种于96孔板中,孵育24小时,然后用梯度浓度的PPa溶液、PR104A和PPa混合溶液、PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒处理细胞。孵育4小时后,用660nm激光照射5min,随后继续培养20小时。孵育结束后,每孔加入20μLMTT(5mg/mL)。孵育4小时后,每孔替换为150μLDMSO。用酶标仪测量570nm波长处的吸光度。除此之外,我们还评估了PR104A溶液在缺氧和常氧条件下对4T1细胞的细胞毒性。
如图11结果所示,缺氧条件下,PR104A对4T1细胞的细胞毒性较常氧条件下强,表明缺氧条件下PR104A被激活进而表现出较强的细胞毒性。此外,在660nm激光照射下,PR104A和PPa混合溶液的细胞杀伤能力相比于单成分溶液剂而言更强,证明两者具有协同细胞毒性。同时,由于PTKP纳米粒释放PR104A的速率最快,因此PTKP纳米粒相比于PSP纳米粒和PP纳米粒表现出更高的协同细胞毒性作用。
实施例9:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的细胞摄取
将4T1细胞以每孔1×105个细胞的密度接种于12孔板中,孵育24小时。然后,用PBS(pH为7.4)清洗细胞,加入含有PPa溶液、PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒(PPa量为2μg/mL)的培养基,孵育4小时。孵育后,用PBS(pH为7.4)清洗细胞、消化细胞并收集悬浮于PBS(pH为7.4)中,通过超声破碎,沉淀蛋白提取样品,采用高效液相色谱法(HPLC)测定PPa或前药的细胞浓度。
实验结果如图12所示,三种前药纳米粒相比于PPa溶液而言具有更高的细胞摄取效率。
实施例10:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的药代动力学研究
雄性Sprague-Dawley大鼠(220-250g)通过尾静脉注射给予PR104A溶液、PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒(PR104A量为2.8mg/kg)。在预定的时间点(0.083,0.5,1,2,4,6,8,12和24h)进行大鼠眼底静脉丛采血,将血样离心获得血浆,沉淀蛋白提取样品,采用高效液相色谱法(HPLC)测定前药和PR104A的血浆浓度。
如图13所示,PR104A溶液剂被迅速从血液中清除,半衰期较短(0.3h)。相比之下,前药纳米粒明显延长了血液循环时间。PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒的药物浓度-时间曲线下面积(AUC)分别比PR104A溶液剂高出321.5倍、374.8倍和410.4倍。此外,由于PSP纳米粒在血液氧化物质存在下稳定性稍差,PSP纳米粒在血液中的清除速度稍快。同时,近90%以上的前药纳米粒在血液中以前药形式存在,避免了对正常组织的毒副作用。
实施例11:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的组织分布实验
将4T1细胞(5×105)注入BALB/c雌性小鼠乳腺脂肪垫中。当肿瘤生长到200-250mm3,通过尾静脉注射给予PPa溶液、PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒(PPa量为3mg/kg)。在4、12、24和36h静脉注射后,将小鼠麻醉并使用小动物成像系统进行成像。注射36h后处死小鼠,收集心、肝、脾、肺、肾、肿瘤等器官,进行体外荧光成像。
结果如图14和图15所示,PPa溶液在给药后被迅速清除,在肿瘤部位蓄积较少。相比较而言,PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒在肿瘤部位蓄积比较明显,并且肿瘤中的荧光信号随着时间的延长而增加。这些结果与药代动力学研究结果一致,前药纳米粒在肿瘤内蓄积量的增加归因于血液循环时间的延长进而通过EPR效应聚集于肿瘤部位。
实施例12:
PEG修饰的前药自组装纳米粒的体内抗肿瘤实验
将4T1细胞(5×105)注入BALB/c雌性小鼠乳腺脂肪垫中构建原位4T1荷瘤小鼠模型。当肿瘤大小约100mm3时,小鼠尾静脉注射生理盐水、PR104A溶液、PPa溶液、PR104A和PPa混合溶液、PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒(PPa量为3mg/kg;PR104A量为2.8mg/kg),给药时间为第0,2,4,6天。在给药24小时后进行660nm激光照射治疗。每两天记录小鼠体重及肿瘤生长情况。第12天处死小鼠,将原位4T1荷瘤小鼠的肺在Bouin’s溶液中固定18h,70%乙醇保存,记录肺叶表面的肿瘤转移数目。
如图16所示,生理盐水对照组肿瘤生长最快,而PSP纳米粒、PTKP纳米粒和PP纳米粒非光照下对肿瘤生长均有一定程度的抑制。PR104A和PPa混合溶液激光照射组与单独PPa溶液激光照射组相比,在肿瘤抑制方面没有显著提升,表明单单依靠溶液剂混合的方式实现两种药物的联合效果比较差。相比之下,激光处理的PTKP纳米粒由于稳定性良好、肿瘤蓄积较高和光触发双模式PR104A释放最快,表现出最好的抗肿瘤效果。PSP纳米粒在激光照射下PR104A的释放速度低于PTKP纳米粒,因此抗肿瘤效果稍差。非敏感的PP纳米粒在激光照射下的抗肿瘤效果比PTKP纳米粒和PSP纳米粒都要差。如图17所示,PTKP纳米粒同样表现出最好的抑制肿瘤转移的能力。如图18所示,除了PR104A和PPa混合溶液光照组外,其余制剂组体重无明显变化,说明这些PEG化的前药自组装纳米粒是安全有效的抗癌药物传递系统。
Claims (10)
1.光敏剂-低氧激活前药一体化前药,其特征在于,将光敏剂与低氧激活前药以光诱导电子转移触发断裂的键、活性氧敏感键、既能通过光诱导电子转移触发断裂又具有活性氧敏感的键或非敏感键相连。
2.如权利要求1所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药,其特征在于,所述的光诱导电子转移触发断裂的键为酮缩硫醇键、单硫醚键、二硫醚键、单硒键、二硒键或间隔二硫醚键类含低氧化电位硫或硒原子的连接键,所述的活性氧敏感键为酮缩硫醇键、单硫醚键、二硫醚键、单硒键、二硒键、间隔二硫醚键、芳基硼酸酯键、氨基丙烯酸酯键或过氧草酸酯键,所述的非敏感键为碳酸酯键或氨基甲酸酯键。
5.如权利要求1或4所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药的合成方法,其特征在于,采用如下步骤制备:
低氧激活前药先与4,4-二甲基-3,5-二硫庚二醇、硫代二乙醇或1,6-己二醇反应成碳酸酯键或氨基甲酸酯键,而后与光敏剂再进行反应,即得。
6.光敏剂-低氧激活前药一体化前药自组装纳米粒,其特征在于,将一定量的前药或前药与PEG修饰剂的混合物溶解到适量的无水丙酮中,搅拌下,将该溶液缓缓滴加到水中,前药自发形成均匀的纳米粒,最后,采用旋蒸法或透析法除去制剂中的无水丙酮,得到纳米胶体溶液。
7.根据权利要求6所述的前药自组装纳米粒,其特征在于,所述的前药自组装纳米粒为非PEG化的前药纳米粒、PEG修饰的前药纳米粒或主动靶向靶头修饰的PEG化前药纳米粒,其中,所述的PEG为TPGS-PEG、DSPE-PEG、PLGA-PEG和PE-PEG,前药与PEG修饰剂的比例为95:5~70:30。
8.权利要求1-4任何一项所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药或权利要求6-7任何一项所述的前药自组装纳米粒在药物传递系统中的应用。
9.权利要求1-4任何一项所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药或权利要求6-7任何一项所述的前药自组装纳米粒在制备抗肿瘤药物中的应用。
10.权利要求1-4任何一项所述的光敏剂-低氧激活前药一体化前药或权利要求6-7任何一项所述的前药自组装纳米粒在制备注射给药、口服给药或局部给药系统中的应用。
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