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CN109825578A - P3h4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法 - Google Patents

P3h4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法 Download PDF

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CN109825578A
CN109825578A CN201811464165.9A CN201811464165A CN109825578A CN 109825578 A CN109825578 A CN 109825578A CN 201811464165 A CN201811464165 A CN 201811464165A CN 109825578 A CN109825578 A CN 109825578A
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CN
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bladder cancer
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郝林
史振铎
韩从辉
韩晓晓
庞慧
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Xuzhou Central Hospital
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Xuzhou Central Hospital
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Abstract

本发明提供一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,通过细胞培养,转染,RNA抽提和荧光定量PCR检测,免疫印迹试验,CCK8增殖检测,transwell迁移和侵袭实验,凋亡流式检测,实现对膀胱癌细胞中P3H4基因的检测,进而由P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,对膀胱癌实现更准确的影响分析。TCGA数据库结果分析显示,在膀胱癌中,P3H4高表达。且低表达P3H4后膀胱癌患者愈后效果更佳。

Description

P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分 析方法
技术领域
本发明涉及一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法。
背景技术
膀胱癌是指发生在膀胱黏膜上的恶性肿瘤。是泌尿系统最常见的恶性肿瘤,也是全身十大常见肿瘤之一。2012年全国肿瘤登记地区膀胱癌的发病率为6.61/10万,列恶性肿瘤发病率的第9位。膀胱癌可发生于任何年龄,甚至于儿童。其发病率随年龄增长而增加,高发年龄50~70岁。男性膀胱癌发病率为女性的3~4倍。膀胱癌的病因复杂,既有内在的遗传因素,又有外在的环境因素。较为明确的两大致病危险因素是吸烟和职业接触芳香胺类化学物质。目前比较公认的观点是病毒或某些化学致癌物作用于人体,使原癌基因激活,抑癌基因失活而致癌。
膀胱癌细胞凋亡与基因的研究,能够有助于研究基因对膀胱癌细胞凋亡的影响,进而对膀胱癌实现更准确的影响分析。目前尚缺乏该方面的准确研究。
发明内容
本发明的目的是提供一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法解决现有技术中存在的如何实现膀胱癌细胞凋亡的预测分析的问题。
本发明的技术解决方案是:
一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,包括以下步骤,
步骤1、细胞培养:膀胱癌细胞EJ、T24购自上海中科院细胞库,使用RPMI-1640培养液于37℃,5%CO2环境下常规培养,血清浓度为10%,青霉素浓度为100U/ml,链霉素为0.1mg/ml;待细胞进入对数生长期时,使用PBS清洗3次,然后用胰酶消化,待细胞变圆之后,重新加入培养液终止消化,反复吹打为单细胞悬液,种植到六孔板中进行后续实验;待孔板中的细胞密度达到80%时,对细胞进行加转染,转染P3H4;
步骤2、转染:按照Lipofectamine2000转染试剂盒说明进行转染,具体为,待六孔板中的细胞长至对数期时,于转染前两小时更换新鲜的完全培养液;脂质体Lipofectamine2000 10ul溶于250ul无血清无抗生素培养基中,轻轻混匀后室温静置5min;将5ul质粒溶于250ul无血清无抗生素培养基中;30min内混合脂质体和质粒混合液,轻轻混匀后室温静置30min;弃去6孔板中的旧培养基,PBS清洗细胞2次;将500ul脂质体和质粒混合液加入每孔细胞中,轻轻混匀,放培养箱中培养;将细胞放入培养箱孵育6h后,更换完全培养液;24h后观察转入质粒表达情况或进行后续实验;
步骤3、RNA抽提和荧光定量PCR检测:使用RNA抽提试剂盒抽提细胞总RNA,反转录形成cDNA后,实时荧光定量PCR检测GGA3的表达效果;
步骤4、免疫印迹试验Western blot:细胞转染质粒48小时后,将六孔板置于冰上,加RIPA裂解液(加蛋白酶抑制剂)裂解提取蛋白,BCA法测定浓度,95℃加热5min;垂直电泳槽内每孔内加入20μg蛋白,SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白样品,转膜至PVDF膜,5%脱脂奶粉封闭1h,一抗4℃孵育过夜,TBST洗3×5min,二抗室温孵育1h,洗膜后加ECL显影;QUANTITY ONE软件扫描灰度值,以GAPDH为内参对照,目的蛋白/内参计算各蛋白的相对表达量;
步骤5、CCK8增殖检测:将转染质粒24小时后的细胞消化计数,制备细胞悬液,取100ul细胞悬液,以每孔1000个细胞的标准种到96孔板中,二氧化碳培养箱中常规培养,每隔24h检测一次细胞活力,检测前每孔加10ul CCK8试剂,37℃培养箱中孵育1.5h,使用酶标仪用450nm激发光检测OD值,绘制增殖曲线;
步骤6、transwell迁移和侵袭实验:将提前过夜融解的Matrigel基质胶100ul(无血清培养液按1:6稀释)加入到24孔板的transwell小室的上室中,晃匀后置于37℃二氧化碳培养箱中静置4-6小时成胶,后吸干培养液,下室中加500ul无血清培养液,静置半小时水化基底膜。将转染质粒24h后的细胞使用无血清培养制备细胞悬液,100ul细胞悬液(1×105个)加入到上室中,下室中加入500ul完全培养液;过夜后,取出小室,棉签擦掉上室中残余的细胞,PBS清洗后,4%多聚甲醛固定30min;0.1%结晶紫染色20min,PBS清洗后,显微镜下随机选取5个视野,拍照观察计数;
步骤7、凋亡流式检测:细胞转染质粒24h后,移去培养基,更换成无血清培养基,常规条件下培养饥饿24h。收集细胞:使用不含EDTA的胰酶消化液消化细胞,收集细胞到离心管中,1000rpm离心5min,再次加入4℃预冷的PBS重悬细胞,再次离心沉淀细胞,小心吸出上清;加入1X结合缓冲液重悬细胞,调节细胞密度为1-5×106/ml;取100ul细胞悬液至于5ml流式管中,加入5ulAnnexin V/FITC混匀后于室温避光孵育5min;加入10ul PI染液,并加400ulPBS后进行检测。
进一步地,步骤3中,实时荧光定量PCR检测GGA3的表达效果,具体为,实验用引物:P3H4:F-5’-CGGGCTGTGAAGCTCTACAA-3’R:5’-GCGTCAGATAGGGCATCCTC-3’,内参:β-actin:F:5’-CCCGAGCCGTGTTTCCT-3’R:5’-GTCCCAGTTGGTGACGATGC-3’,荧光定量PCR程序:95℃5min,95℃30s,循环40次,60℃45s,72℃30min;每组设3个复孔,2-△Ct法计算RBM10的表达量;独立重复三次。
本发明的有益效果是:该种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,能够实现对膀胱癌细胞中P3H4基因的检测,进而由P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,对膀胱癌实现更准确的影响分析。TCGA数据库结果分析显示,在膀胱癌中,P3H4高表达。且低表达P3H4后膀胱癌患者愈后效果更佳。
附图说明
图1是本发明实施例中TCGA数据库结果分析中膀胱癌患者的P3H4的表达情况示意图。
图2是实施例中膀胱癌患者愈后P3H4的表达情况示意图。
图3是实施例的膀胱癌及癌旁组织中P3H4的表达情况示意图。
图4是实施例中P3H4在膀胱癌细胞中的表达效果的鉴定示意图。
图5是实施例中CCK8增殖实验结果示意图。
图6是实施例中Transwell实验结果的示意图。
图7是实施例中流式周期结果示意图。
图8是实施例中流式凋亡结果示意图。
图9是实施例中慢病毒包装后的P3H4干扰质粒,转染膀胱癌细胞的示意图。
图10是实施例中Q-PCR结果显示示意图。
图11是实施例中Western Blot结果示意图。
图12是实施例中裸鼠成瘤实验显示图。
图13是实施例中对成瘤实验中肿瘤切片做免疫组化的示意图。
具体实施方式
下面结合附图详细说明本发明的优选实施例。
实施例
一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,包括以下步骤,
步骤1、细胞培养:膀胱癌细胞EJ、T24购自上海中科院细胞库,使用RP MI-1640培养液于37℃,5%CO2环境下常规培养,血清浓度为10%,青霉素浓度为100U/ml,链霉素为0.1mg/ml;待细胞进入对数生长期时,使用PBS清洗3次,然后用胰酶消化,待细胞变圆之后,重新加入培养液终止消化,反复吹打为单细胞悬液,种植到六孔板中进行后续实验;待孔板中的细胞密度达到80%左右时,对细胞进行加转染,实验组转染P3H4,对照组转染P3H4空载体。
步骤2、转染:按照Lipofectamine2000转染试剂盒说明进行转染,具体为,待六孔板中的细胞长至对数期时,于转染前两小时更换新鲜的完全培养液;脂质体Lipofectamine2000 10ul溶于250ul无血清无抗生素培养基中,轻轻混匀后室温静置5min;将5ul质粒溶于250ul无血清无抗生素培养基中;30min内混合脂质体和质粒混合液,轻轻混匀后室温静置30min;弃去6孔板中的旧培养基,PBS清洗细胞2次;将500ul脂质体和质粒混合液加入每孔细胞中,轻轻混匀,放培养箱中培养;将细胞放入培养箱孵育6h后,更换完全培养液;24h后观察转入质粒表达情况或进行后续实验。
步骤3、RNA抽提和荧光定量PCR检测:使用RNA抽提试剂盒抽提细胞总RNA,反转录形成cDNA后,实时荧光定量PCR检测GGA3的表达效果;其中实验用引物:P3H4:F-5’-CGGGCTGTGAAGCTCTACAA-3’R:5’-GCGTCAGATAGGGCATCCTC-3’,内参:β-actin:F:5’-CCCGAGCCGTGTTTCCT-3’R:5’-GTCCCAGTTGGTGACGATGC-3’,荧光定量PCR程序:95℃5min,95℃30s,循环40次,60℃45s,72℃30min;每组设3个复孔,2-△Ct法计算RBM10的表达量;独立重复三次。
步骤4、免疫印迹试验Western blot:细胞转染质粒48小时后,将六孔板置于冰上,加RIPA裂解液(加蛋白酶抑制剂)裂解提取蛋白,BCA法测定浓度,95℃加热5min;垂直电泳槽内每孔内加入约20μg蛋白,SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白样品,转膜至PVDF膜,5%脱脂奶粉封闭1h,一抗4℃孵育过夜,TBST洗3×5min,二抗室温孵育1h,洗膜后加ECL显影;QUANTITY ONE软件扫描灰度值,以GAPDH为内参对照,目的蛋白/内参计算各蛋白的相对表达量。
步骤5、CCK8增殖检测:将转染质粒24小时后的细胞消化计数,制备细胞悬液,取100ul细胞悬液,以每孔1000个细胞的标准种到96孔板中,二氧化碳培养箱中常规培养,每隔24h检测一次细胞活力,检测前每孔加10ul CCK8试剂,37℃培养箱中孵育1.5h,使用酶标仪用450nm激发光检测OD值,绘制增殖曲线。
步骤6、transwell迁移和侵袭实验:将提前过夜融解的Matrigel基质胶100ul(无血清培养液按1:6稀释)加入到24孔板的transwell小室的上室中,晃匀后置于37℃二氧化碳培养箱中静置4-6小时成胶,后吸干培养液,下室中加500ul无血清培养液,静置半小时水化基底膜。将转染质粒24h后的细胞使用无血清培养制备细胞悬液,100ul细胞悬液(1×105个)加入到上室中,下室中加入500ul完全培养液。过夜后,取出小室,棉签擦掉上室中残余的细胞,PBS清洗后,4%多聚甲醛固定30min。0.1%结晶紫染色20min,PBS清洗后,显微镜下随机选取5个视野,拍照观察计数。
迁移实验步骤类似于侵袭实验,transwell小室无须进行铺胶处理,细胞数目将为5000个。
步骤7、凋亡流式检测:细胞转染质粒24h后,移去培养基,更换成无血清培养基,常规条件下培养饥饿24h。收集细胞:使用不含EDTA的胰酶消化液消化细胞,收集细胞到离心管中,1000rpm离心5min,再次加入4℃预冷的PBS重悬细胞,再次离心沉淀细胞,小心吸出上清。加入1X结合缓冲液重悬细胞,调节细胞密度为1-5×106/ml。取100ul细胞悬液至于5ml流式管中,加入5ulAnnexin V/FITC混匀后于室温避光孵育5min.加入10ul PI染液,并加400ulPBS,后进行上机检测。Flowjo软件对流式结果进行分析处理。
统计分析
采用SPSS18.0统计分析软件对实验数据进行分析。计量资料以均数±标准差(Mean±SD)表示,两组间比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
实施例的实验结果如下:
TCGA数据库结果分析显示,如图1与图2,在膀胱癌中,P3H4高表达。且低表达P3H4后膀胱癌患者预后效果更佳。
图3是实施例的膀胱癌及癌旁组织中P3H4的表达情况,由图3、表1与表2可以看出,在癌组织中高表达。
表1.BLCA中SC65的表达与癌旁组织的比较
表2.BLCA中SC65表达与临床病理参数的关系
图4是P3H4在膀胱癌细胞中的表达效果的鉴定:QPCR结果表明,转染P3H4小干扰1~4 48小时后,si-P3H4-3呈低表达。
图5是实施例中CCK8增殖实验结果示意图,如图5,CCK8增殖实验结果表明,下调P3H4的表达后,能够抑制膀胱癌细胞的增殖。
图6是实施例中Transwell实验结果的示意图,Transwell实验结果表明,下调P3H4的表达后,能够抑制膀胱癌细胞的侵袭结果差异显著(P<0.05),迁移能力也相应受到抑制结果差异显著(P<0.05)。
图7是实施例中流式周期结果示意图,流式周期结果分析表明:下调P3H4的表达可以将细胞周期阻断在G1期,进而抑制癌细胞增殖。
图8是实施例中流式凋亡结果示意图,流式凋亡结果分析表明:下调P3H4的表达可以促进膀胱癌细胞的凋亡。
图9是实施例中慢病毒包装后的P3H4干扰质粒,转染膀胱癌细胞的示意图,在荧光显微镜下观察到其转染效率明显提高到80%以上。
图10是实施例中Q-PCR结果显示示意图,用慢病毒包装后的P3H4干扰质粒转染膀胱癌细胞,转染效率明显提高。
图11是实施例中Western Blot结果示意图,图11表明,用慢病毒包装后的P3H4干扰质粒转染膀胱癌细胞,膀胱癌细胞中细胞周期蛋白的表达明显受到抑制,同时细胞凋亡蛋白及EMT通路相关蛋白也收到影响。即:P3H4表达被抑制后可以不仅可以通过影响EMT信号通路抑制膀胱癌细胞增殖,而且可以促进膀胱癌细胞的凋亡。
图12是实施例中裸鼠成瘤实验显示图,由图12可以看出,P3H4被干扰后裸鼠的成瘤能力明显降低。
图13是实施例中对成瘤实验中肿瘤切片做免疫组化的示意图,结果表明:P3H4干扰后肿瘤阳性率降低。

Claims (2)

1.一种P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,其特征在于:包括以下步骤,
步骤1、细胞培养:膀胱癌细胞EJ、T24购自上海中科院细胞库,使用RP MI-1640培养液于37℃,5%CO2环境下常规培养,血清浓度为10%,青霉素浓度为100U/ml,链霉素为0.1mg/ml;待细胞进入对数生长期时,使用PBS清洗3次,然后用胰酶消化,待细胞变圆之后,重新加入培养液终止消化,反复吹打为单细胞悬液,种植到六孔板中进行后续实验;待孔板中的细胞密度达到80%时,对细胞进行加转染,转染P3H4;
步骤2、转染:按照Lipofectamine2000转染试剂盒说明进行转染,具体为,待六孔板中的细胞长至对数期时,于转染前两小时更换新鲜的完全培养液;脂质体Lipofectamine200010ul溶于250ul无血清无抗生素培养基中,轻轻混匀后室温静置5min;将5ul质粒溶于250ul无血清无抗生素培养基中;30min内混合脂质体和质粒混合液,轻轻混匀后室温静置30min;弃去6孔板中的旧培养基,PBS清洗细胞2次;将500ul脂质体和质粒混合液加入每孔细胞中,轻轻混匀,放培养箱中培养;将细胞放入培养箱孵育6h后,更换完全培养液;24h后观察转入质粒表达情况或进行后续实验;
步骤3、RNA抽提和荧光定量PCR检测:使用RNA抽提试剂盒抽提细胞总RNA,反转录形成cDNA后,实时荧光定量PCR检测GGA3的表达效果;
步骤4、免疫印迹试验Western blot:细胞转染质粒48小时后,将六孔板置于冰上,加RIPA裂解液(加蛋白酶抑制剂)裂解提取蛋白,BCA法测定浓度,95℃加热5min;垂直电泳槽内每孔内加入20μg蛋白,SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白样品,转膜至PVDF膜,5%脱脂奶粉封闭1h,一抗4℃孵育过夜,TBST洗3×5min,二抗室温孵育1h,洗膜后加ECL显影;QUANTITY ONE软件扫描灰度值,以GAPDH为内参对照,目的蛋白/内参计算各蛋白的相对表达量;
步骤5、CCK8增殖检测:将转染质粒24小时后的细胞消化计数,制备细胞悬液,取100ul细胞悬液,以每孔1000个细胞的标准种到96孔板中,二氧化碳培养箱中常规培养,每隔24h检测一次细胞活力,检测前每孔加10ul CCK8试剂,37℃培养箱中孵育1.5h,使用酶标仪用450nm激发光检测OD值,绘制增殖曲线;
步骤6、transwell迁移和侵袭实验:将提前过夜融解的Matrigel基质胶100ul(无血清培养液按1:6稀释)加入到24孔板的transwell小室的上室中,晃匀后置于37℃二氧化碳培养箱中静置4-6小时成胶,后吸干培养液,下室中加500ul无血清培养液,静置半小时水化基底膜。将转染质粒24h后的细胞使用无血清培养制备细胞悬液,100ul细胞悬液(1×105个)加入到上室中,下室中加入500ul完全培养液;过夜后,取出小室,棉签擦掉上室中残余的细胞,PBS清洗后,4%多聚甲醛固定30min;0.1%结晶紫染色20min,PBS清洗后,显微镜下随机选取5个视野,拍照观察计数;
步骤7、凋亡流式检测:细胞转染质粒24h后,移去培养基,更换成无血清培养基,常规条件下培养饥饿24h。收集细胞:使用不含EDTA的胰酶消化液消化细胞,收集细胞到离心管中,1000rpm离心5min,再次加入4℃预冷的PBS重悬细胞,再次离心沉淀细胞,小心吸出上清;加入1X结合缓冲液重悬细胞,调节细胞密度为1-5×106/ml;取100ul细胞悬液至于5ml流式管中,加入5ulAnnexin V/FITC混匀后于室温避光孵育5min;加入10ul PI染液,并加400ulPBS后进行检测。
2.如权利要求1所述的P3H4基因在膀胱癌细胞中的表达及其对膀胱癌凋亡的影响分析方法,其特征在于:步骤3中,实时荧光定量PCR检测GGA3的表达效果,具体为,实验用引物:P3H4:F-5’-CGGGCTGTGAAGCTCTACAA-3’R:5’-GCGTCAGATAGGGCATCCTC-3’,内参:β-actin:F:5’-CCCGAGCCGTGTTTCCT-3’R:5’-GTCCCAGTTGGTGACGATGC-3’,荧光定量PCR程序:95℃5min,95℃30s,循环40次,60℃45s,72℃30min;每组设3个复孔,2-△Ct法计算RBM10的表达量;独立重复三次。
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