JP6893635B2 - Methods, devices and computer programs to help predict the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma - Google Patents
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Description
本発明は、肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法に関する。また、本発明は、肝細胞がんの早期再発リスクを判定するための装置及びコンピュータプログラムに関する。 The present invention relates to a method that assists in predicting the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. The present invention also relates to an apparatus and a computer program for determining the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
肝細胞がんは原発性肝がんの一つであり、肝細胞から発生する悪性腫瘍である。肝細胞がんの治療では、がん及びその周囲の組織を手術によって取り除く肝切除術などが行われる。一方、肝切除術などの治療を行っても、肝細胞がん患者全体の再発率は、術後3年で70%以上になることが知られている。 Hepatocellular carcinoma is one of the primary liver cancers and is a malignant tumor that develops from hepatocellular carcinoma. Treatment of hepatocellular carcinoma includes hepatectomy, which removes the cancer and surrounding tissues by surgery. On the other hand, it is known that the recurrence rate of all hepatocellular carcinoma patients is 70% or more 3 years after the operation even if treatment such as hepatectomy is performed.
肝細胞がんの検査では、血液中の腫瘍マーカーの測定と、画像検査(超音波検査、CT及びMRIなど)とを組み合わせて行われている。肝細胞がんのマーカーとして、GPC3(Glypican-3)が知られている。GPC3は、580アミノ酸からなる約60 kDaの糖タンパク質であり、C末端領域でグリコシルホスファチジルイノシトール(GPI)アンカーを介して細胞膜に結合している。GPC3は、肝細胞がん患者の肝臓組織の70〜100%で発現がみられるが、健常人の肝臓組織ではほとんど検出されない。GPC3は、生体内において、Furinと呼ばれる酵素によってR358/S359間で切断され、約40 kDaのN末端側ペプチドと、約30 kDaのC末端側ペプチドとに分かれていると考えられているが、通常、N末端側ペプチド及びC末端側ペプチドは、ジスルフィド結合によって共有結合した状態(全長型)で細胞膜に結合していると考えられている。 Hepatocellular carcinoma is tested by combining the measurement of tumor markers in the blood with imaging tests (ultrasound, CT, MRI, etc.). GPC3 (Glypican-3) is known as a marker for hepatocellular carcinoma. GPC3 is a glycoprotein of about 60 kDa consisting of 580 amino acids, which is bound to the cell membrane via a glycosylphosphatidylinositol (GPI) anchor in the C-terminal region. GPC3 is expressed in 70-100% of the liver tissue of patients with hepatocellular carcinoma, but is rarely detected in the liver tissue of healthy individuals. GPC3 is thought to be cleaved between R358 / S359 by an enzyme called Furin in vivo and divided into an N-terminal peptide of about 40 kDa and a C-terminal peptide of about 30 kDa. Usually, the N-terminal peptide and the C-terminal peptide are considered to be bound to the cell membrane in a state of being covalently bound by a disulfide bond (full-length type).
特許文献1には、GPC3のN末端側ペプチドを認識する2種類の抗体を用いて可溶化GPC3を検出することにより、がんを診断する方法が開示されている。特許文献1の発明者らは、マウス血清中の分泌型GPC3としてはN末端側ペプチドが優位であり、N末端側ペプチドを認識する抗GPC3抗体を用いてGPC3レベルを測定することが、がんの診断においては好ましいと結論付けている。一方、特許文献1では、C末端側ペプチドを認識する抗体を用いた検出系を用いてがんの診断や再発リスクの予測をすることは難しいことを示唆している(Table 1、段落[0138]など)。GPC3のN末端側ペプチドを認識する2種類の抗体を用いた場合、GPC3のN末端側ペプチドと全長型ペプチドとを検出することになる。しかし、特許文献1では、全長型ペプチドが検出限界以下であるため、がんの判定は、N末端側ペプチドの測定結果により行われていると考えられる。 Patent Document 1 discloses a method for diagnosing cancer by detecting solubilized GPC3 using two types of antibodies that recognize the N-terminal peptide of GPC3. The inventors of Patent Document 1 have predominantly N-terminal peptides as secretory GPC3 in mouse serum, and it is possible to measure GPC3 levels using an anti-GPC3 antibody that recognizes N-terminal peptides. We conclude that it is preferable in the diagnosis of. On the other hand, Patent Document 1 suggests that it is difficult to diagnose cancer and predict the risk of recurrence using a detection system using an antibody that recognizes a C-terminal peptide (Table 1, paragraph [0138]. ]Such). When two types of antibodies that recognize the N-terminal peptide of GPC3 are used, the N-terminal peptide of GPC3 and the full-length peptide are detected. However, in Patent Document 1, since the full-length peptide is below the detection limit, it is considered that the cancer is determined based on the measurement result of the N-terminal peptide.
特許文献2には、被検者から得られた体液サンプル中のGPC3レベルを、GPC3のC末端側ペプチドを認識する抗GPC3モノクローナル抗体及びGPC3のアミノ酸配列中の任意の部位を認識する抗GPC3ポリクローナル抗体を用いて測定することにより、被検者の肝細胞がんをスクリーニングする方法が開示されている。特許文献2には、検出されるGPC3の構造について言及されていないが、GPC3測定に用いられる抗体の種類からみて、同文献に記載の検出系では、GPC3のC末端側ペプチド及び全長型ペプチドが検出されると考えられる。なお、特許文献2の段落[0063]及び[0064]には、C末端側ペプチドを抗原としてポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体を作製することが好適であると記載されている。さらに、Exampleでは、C末端側ペプチド抗原を用いてポリクローナル抗体(Example 1)及びモノクローナル抗体(Example 2)を作製し、これらを用いてGPC3を検出している。これらのことから、特許文献2ではC末端側ペプチドを検出対象としていると考えられる。実際、特許文献1では全長型ペプチドが検出限界以下であると記載しており、これを考慮すると特許文献2におけるがんの判定はC末端側ペプチドの測定結果により行われていると考えられる。 Patent Document 2 describes the GPC3 level in the body fluid sample obtained from the subject, the anti-GPC3 monoclonal antibody that recognizes the C-terminal peptide of GPC3, and the anti-GPC3 polyclonal that recognizes any site in the amino acid sequence of GPC3. A method for screening a subject for hepatocellular carcinoma by measurement using an antibody is disclosed. Patent Document 2 does not mention the structure of GPC3 to be detected, but in view of the type of antibody used for GPC3 measurement, in the detection system described in the same document, the C-terminal peptide and the full-length peptide of GPC3 are used. It is considered to be detected. In paragraphs [0063] and [0064] of Patent Document 2, it is described that it is preferable to prepare a polyclonal antibody and a monoclonal antibody using the C-terminal peptide as an antigen. Furthermore, in Example, a polyclonal antibody (Example 1) and a monoclonal antibody (Example 2) are prepared using the C-terminal peptide antigen, and GPC3 is detected using these. From these facts, it is considered that Patent Document 2 targets the C-terminal peptide as a detection target. In fact, Patent Document 1 describes that the full-length peptide is below the detection limit, and considering this, it is considered that the determination of cancer in Patent Document 2 is performed based on the measurement result of the C-terminal peptide.
肝切除術は、肝細胞がんの根治的治療であるが、患者への負担が大きい。そのため、肝細胞がんが、例えば術後1年以内のような早期に再発した場合、患者の状態によっては肝切除術を再び行うことは難しい。もし、肝細胞がんの早期再発を術前に予測できれば、治療計画の策定に際して、肝切除術以外の治療法を選択又は併用することを考慮できる。また、肝切除術を行った場合でも、早期に再発することが予測されていれば、術後の経過観察期間中に検査の頻度を多くするなど、再発に備えた対応を取ることができる。しかし、早期再発の予測を可能にする手段は、現時点では知られていない。 Hepatectomy is a curative treatment for hepatocellular carcinoma, but it is a heavy burden on the patient. Therefore, if hepatocellular carcinoma recurs early, for example, within one year after surgery, it is difficult to perform hepatectomy again depending on the patient's condition. If early recurrence of hepatocellular carcinoma can be predicted preoperatively, it is possible to consider selecting or using a treatment method other than hepatectomy when formulating a treatment plan. In addition, even if hepatectomy is performed, if recurrence is predicted at an early stage, measures can be taken to prepare for recurrence, such as increasing the frequency of examinations during the postoperative follow-up period. However, no means at this time are known to enable the prediction of early recurrence.
本発明者らは、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP(α-fetoprotein)及び/又はPIVKA-II(protein induced by vitamin-K absence or antagonist II)の濃度とに基づいて、再発時期を予測できることを見出して、本発明を完成した。 The present inventors are based on the concentration of GPC3 in the blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of AFP (α-fetoprotein) and / or PIVKA-II (protein induced by vitamin-K absence or antagonist II). The present invention was completed by finding that the recurrence time can be predicted.
よって、本発明は、肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法を提供する。この方法は、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度とを測定する工程と、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ上記マーカーの濃度が上記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、上記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定する工程とを含む。 Therefore, the present invention provides a method for assisting in predicting the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. This method involves measuring the concentration of GPC3 in a blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and when the concentration of GPC3 is above the first threshold. If there is and the concentration of the marker is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker, the step of determining that the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma in the patient is high is included.
さらに、本発明は、肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法を提供する。この方法は、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度とを測定する工程と、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ上記マーカーの濃度が上記マーカーに対応する所定の閾値以上である患者を第1患者群に分類し、上記GPC3の濃度及び上記マーカーの濃度のうち、少なくとも1の濃度が所定の閾値未満である患者を第2患者群に分類する工程とを含む。この方法において、第1患者群は、第2患者群よりも早期再発リスクが高い群である。 Furthermore, the present invention provides a method of assisting in predicting the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. This method involves measuring the concentration of GPC3 in a blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and when the concentration of GPC3 is above the first threshold. Patients who are present and whose concentration of the marker is equal to or higher than the predetermined threshold corresponding to the marker are classified into the first patient group, and at least one of the concentration of GPC3 and the concentration of the marker is less than the predetermined threshold. Includes a step of classifying the patients who are in the second patient group. In this method, the first patient group is a group with a higher risk of early recurrence than the second patient group.
また、本発明は、プロセッサ及び該プロセッサの制御下にあるメモリを含むコンピュータを備える、肝細胞がんの早期再発リスクの判定装置を提供する。この装置のメモリには、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度の測定結果を取得するステップと、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ上記マーカーの濃度が上記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、上記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定するステップと、上記患者の肝細胞がんの早期再発リスクの判定結果を出力するステップとをコンピュータに実行させるためのコンピュータプログラムが記録されている。 The present invention also provides a device for determining the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma, which comprises a processor and a computer including a memory under the control of the processor. In the memory of this device, the step of acquiring the measurement result of the concentration of GPC3 in the blood sample of the hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and the concentration of GPC3 are the first. When the concentration of the marker is equal to or higher than the threshold of 1 and the concentration of the marker is equal to or higher than the predetermined threshold corresponding to the marker, the step of determining that the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma in the patient is high and the hepatocellular carcinoma of the patient. A computer program is recorded to cause the computer to perform steps to output the determination result of the risk of early recurrence of cancer.
さらに、本発明は、肝細胞がんの早期再発リスクの判定をコンピュータに実行させるためのコンピュータプログラムを提供する。このコンピュータプログラムは、コンピュータが読み取り可能な媒体に記録されている。このコンピュータプログラムは、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度の測定結果を取得するステップと、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ上記マーカーの濃度が上記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、上記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定するステップと、上記患者の肝細胞がんの早期再発リスクの判定結果を出力するステップとをコンピュータに実行させるためのコンピュータプログラムである。 Furthermore, the present invention provides a computer program for causing a computer to determine the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. This computer program is recorded on a computer-readable medium. This computer program is a step to obtain the measurement result of the concentration of GPC3 in the blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and the concentration of GPC3 is the first. When it is equal to or higher than the threshold value and the concentration of the marker is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker, the step of determining that the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma in the patient is high and the hepatocellular carcinoma in the patient. It is a computer program for causing a computer to perform a step of outputting the determination result of the risk of early recurrence of.
本発明によれば、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIの少なくとも1つの濃度とに基づいて、肝細胞がんの早期再発リスクを予測することを可能にする。 According to the present invention, it is possible to predict the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma based on the concentration of GPC3 in the blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one of AFP and PIVKA-II. To do.
[1.早期再発リスクの予測を補助する方法]
「肝細胞がんの再発」及び「肝細胞がんが再発する」とは、根治的治療が行われた肝細胞がん患者が、再び肝細胞がんに罹患することをいう。「早期再発リスク」とは、肝細胞がん患者に根治的治療を行った場合に、該治療後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性をいう。該所定の期間は、6ヶ月以上1年以下であり得る。再発までの所定の期間は、具体的には6ヶ月、7ヶ月、8ヶ月、9ヶ月、10ヶ月、11ヶ月又は1年が例示される。
[1. How to help predict the risk of early recurrence]
"Relapse of hepatocellular carcinoma" and "recurrence of hepatocellular carcinoma" mean that a hepatocellular carcinoma patient who has undergone definitive treatment suffers from hepatocellular carcinoma again. The “risk of early recurrence” refers to the possibility that hepatocellular carcinoma will recur within a predetermined period after the treatment when a hepatocellular carcinoma patient is treated radically. The predetermined period can be 6 months or more and 1 year or less. Specifically, the predetermined period until recurrence is exemplified by 6 months, 7 months, 8 months, 9 months, 10 months, 11 months or 1 year.
本実施形態に係る肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法(以下、単に「方法」ともいう)は、肝細胞がん患者に根治的治療を行う前に、早期再発リスクを予測することを可能にする。そのため、本実施形態の方法を実施する時点において、肝細胞がん患者に根治的治療が行われていなくてもよい。また、本実施形態の方法による予測結果を受けて、肝細胞がん患者に根治的治療を行わなくてもよい。この場合、早期再発リスクは、肝細胞がん患者から血液試料を採取したときに該患者に根治的治療を行ったと仮定した場合の再発の可能性と解釈してもよい。上記の再発までの所定の期間は、血液試料を採取した日からの期間である。よって、本実施形態において、早期再発リスクは、肝細胞がん患者から血液試料を採取した後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性であってもよい。 The method for assisting the prediction of the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma according to the present embodiment (hereinafter, also simply referred to as “method”) predicts the risk of early recurrence before performing definitive treatment for a hepatocellular carcinoma patient. Allows you to. Therefore, at the time of implementing the method of the present embodiment, the hepatocellular carcinoma patient may not have been subjected to definitive treatment. In addition, it is not necessary to perform definitive treatment for the hepatocellular carcinoma patient based on the prediction result by the method of the present embodiment. In this case, the risk of early recurrence may be interpreted as the possibility of recurrence if it is assumed that the patient was given definitive treatment when a blood sample was taken from the patient with hepatocellular carcinoma. The predetermined period until the recurrence is the period from the date when the blood sample is collected. Therefore, in the present embodiment, the risk of early recurrence may be the possibility of recurrence of hepatocellular carcinoma within a predetermined period after collecting a blood sample from a hepatocellular carcinoma patient.
本実施形態の方法では、肝細胞がんの早期再発リスクを予測するためのタンパク質マーカーとして、GPC3と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーとの少なくとも2つを用いる。具体的には、肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度とを測定する。本実施形態では、血液試料におけるGPC3の濃度及びPIVKA-IIの濃度を測定することが好ましく、GPC3の濃度、AFPの濃度及びPIVKA-IIの濃度を測定することが特に好ましい。ここで、タンパク質マーカーの「濃度」は、検体の単位体積あたりのタンパク質マーカーの質量であってもよいし、タンパク質マーカーの濃度を反映する値又は指標(例えば、蛍光強度、発光強度など)であってもよい。 In the method of this embodiment, at least two markers, GPC3 and at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, are used as protein markers for predicting the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. Specifically, the concentration of GPC3 in the blood sample of a hepatocellular carcinoma patient and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II are measured. In this embodiment, it is preferable to measure the concentration of GPC3 and the concentration of PIVKA-II in the blood sample, and it is particularly preferable to measure the concentration of GPC3, the concentration of AFP and the concentration of PIVKA-II. Here, the "concentration" of the protein marker may be the mass of the protein marker per unit volume of the sample, or a value or index (for example, fluorescence intensity, emission intensity, etc.) that reflects the concentration of the protein marker. You may.
血液試料は、肝細胞がん患者から得られる血液(全血)、血漿及び血清が挙げられ、好ましくは血清及び血漿である。肝細胞がん患者の全血、血漿又は血清を適切な水性媒体で希釈して得られる希釈物を、血液試料として用いてもよい。そのような水性媒体は、血中タンパク質の濃度測定を妨げない限り特に限定されず、例えば水、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)などが挙げられる。GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度の測定を後述の免疫学的測定法で行う場合は、血液試料を、該測定法に用いるブロッキング液で希釈してもよい。 Blood samples include blood (whole blood), plasma and serum obtained from patients with hepatocellular carcinoma, preferably serum and plasma. A dilution obtained by diluting whole blood, plasma or serum of a hepatocellular carcinoma patient with a suitable aqueous medium may be used as a blood sample. Such an aqueous medium is not particularly limited as long as it does not interfere with the measurement of blood protein concentration, and examples thereof include water, physiological saline, and phosphate buffered saline (PBS). When the concentration of GPC3, AFP and PIVKA-II is measured by the immunological measurement method described later, the blood sample may be diluted with the blocking solution used in the measurement method.
本実施形態の方法で予測される早期再発リスクは、上述のように、肝細胞がん患者の治療方針の決定に有用である。そのため、血液試料は、根治的治療が行われる前の肝細胞がん患者から取得することが好ましい。ここで、肝細胞がんの根治的治療は、肝細胞がんを根本から治すことを目指した治療法であれば特に限定されず、例えば、肝切除術、肝移植、経皮的エタノール注入療法、ラジオ波焼灼療法、及び陽子線や炭素線の重粒子線治療などが挙げられる。 As described above, the risk of early recurrence predicted by the method of this embodiment is useful for determining the treatment policy of hepatocellular carcinoma patients. Therefore, blood samples are preferably obtained from patients with hepatocellular carcinoma before definitive treatment. Here, the curative treatment of hepatocellular carcinoma is not particularly limited as long as it is a treatment method aiming at radically curing hepatocellular carcinoma, and for example, hepatectomy, liver transplantation, and percutaneous ethanol injection therapy. , Radio wave ablation therapy, and heavy ion beam therapy for proton beam and carbon beam.
血液試料は、肝細胞がんの根治的治療の治療効果をより向上させるために該根治的治療の前に行われる補助的又は予備的な治療がなされた患者から取得してもよい。このような補助的又は予備的な治療としては、例えば、肝動脈塞栓術、肝動注化学療法、ワクチンなどの免疫療法などが挙げられる。本実施形態では、補助的又は予備的な治療として肝動脈塞栓術、肝動注化学療法、ワクチンなどの免疫療法などは行われているが、上述の根治的治療が行われていない患者から採取した血液試料も利用することができる。 Blood samples may be obtained from patients who have undergone adjunctive or preliminary treatment prior to the curative treatment to further enhance the therapeutic effect of the curative treatment of hepatocellular carcinoma. Such adjunctive or preliminary treatments include, for example, transcatheter arterial embolization, hepatic arterial infusion chemotherapy, immunotherapy such as vaccines, and the like. In this embodiment, hepatic artery embolization, hepatic arterial infusion chemotherapy, immunotherapy such as vaccine, etc. are performed as adjunctive or preliminary treatment, but collected from a patient who has not undergone the above-mentioned definitive treatment. Blood samples can also be used.
GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度の測定方法は、血液試料中のこれらのタンパク質マーカーの濃度を反映する値又は指標を取得できる方法であれば特に限定されず、当該技術において公知の測定法から適宜選択できる。そのような測定方法としては、抗原抗体反応を利用する免疫学的測定法が好しく、例えば、酵素免疫測定法、化学発光免疫測定法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法、免疫比濁法、免疫沈降法、ウェスタンブロット法、アフィニティクロマトグラフィ法などが挙げられる。それらの中でも、酵素免疫測定法のELISA法、特にサンドイッチELISA法が好ましい。 The method for measuring the concentration of GPC3, AFP and PIVKA-II is not particularly limited as long as it is a method capable of obtaining a value or index reflecting the concentration of these protein markers in the blood sample, and the measurement method known in the art is used. It can be selected as appropriate. As such a measurement method, an immunoassay method using an antigen-antibody reaction is preferable, for example, an enzyme immunoassay method, a chemoluminescence immunoassay method, a fluorescence immunoassay method, a radioimmunoassay method, and an immunoprecipitation method. , Immunoprecipitation method, Western blotting method, affinity chromatography method and the like. Among them, the ELISA method for enzyme immunoassay, particularly the sandwich ELISA method is preferable.
GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度の値は、測定値そのものであってもよいし、測定値を検量線に当てはめて取得される値であってもよい。検量線は、濃度既知の標準物質の希釈系列を調製し、これらを血液試料と同様に測定して得られた値から作成できる。この検量線に基づいて、血液試料中のGPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度を定量することができる。標準物質は、GPC3、AFP及びPIVKA-IIの天然由来のタンパク質であってもよいし、組換え型タンパク質であってもよい。 The concentration values of GPC3, AFP and PIVKA-II may be the measured values themselves, or may be the values obtained by applying the measured values to the calibration curve. The calibration curve can be prepared from the values obtained by preparing a dilution series of standard substances having a known concentration and measuring these in the same manner as in a blood sample. Based on this calibration curve, the concentrations of GPC3, AFP and PIVKA-II in the blood sample can be quantified. The reference substance may be a naturally occurring protein of GPC3, AFP and PIVKA-II, or may be a recombinant protein.
免疫学的測定法には、GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれに特異的に結合する抗体が用いられる。これらの抗体の種類は特に限定されず、モノクローナル抗体でもよいし、ポリクローナル抗体でもよい。抗体の由来は特に限定されず、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ヤギ、ウマ、ラクダなどのいずれの哺乳動物に由来する抗体でもよい。抗体のアイソタイプは、測定法に応じて適宜選択すればよいが、好ましくはIgGである。抗体には、抗体のフラグメント及びその誘導体も含まれ、例えば、Fabフラグメント、F(ab')2フラグメント、Fvフラグメント、一本鎖抗体(scFv)などが挙げられる。これらの抗体及び抗体フラグメントの作製方法は当該技術において公知である。 Antibodies that specifically bind to each of GPC3, AFP and PIVKA-II are used for immunological measurement. The type of these antibodies is not particularly limited, and may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody. The origin of the antibody is not particularly limited, and the antibody may be derived from any mammal such as mouse, rat, hamster, rabbit, goat, horse, and camel. The isotype of the antibody may be appropriately selected depending on the measurement method, but is preferably IgG. The antibody also includes an antibody fragment and a derivative thereof, and examples thereof include a Fab fragment, an F (ab') 2 fragment, an Fv fragment, and a single chain antibody (scFv). Methods for producing these antibodies and antibody fragments are known in the art.
測定に用いる抗体は、必要に応じて、当該技術において公知の標識物質により標識されていてもよい。そのような標識物質は、検出可能なシグナルが生じるかぎり、特に限定されない。例えば、それ自体がシグナルを発生する物質(以下、「シグナル発生物質」ともいう)であってもよいし、他の物質の反応を触媒してシグナルを発生させる物質であってもよい。シグナル発生物質としては、例えば、蛍光物質、放射性同位元素などが挙げられる。他の物質の反応を触媒して検出可能なシグナルを発生させる物質としては、例えば、酵素が挙げられる。酵素としては、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼなどが挙げられる。蛍光物質としては、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)、ローダミン、Alexa Fluor(登録商標)などの蛍光色素、GFPなどの蛍光タンパク質などが挙げられる。放射性同位元素としては、125I、14C、32Pなどが挙げられる。好ましい実施形態では、標識物質は酵素であり、特に好ましくはアルカリホスファターゼ及びペルオキシダーゼである。 The antibody used for the measurement may be labeled with a labeling substance known in the art, if necessary. Such labeling substances are not particularly limited as long as a detectable signal is generated. For example, it may be a substance that generates a signal by itself (hereinafter, also referred to as a “signal generating substance”), or may be a substance that catalyzes the reaction of another substance to generate a signal. Examples of the signal generating substance include fluorescent substances and radioactive isotopes. Examples of substances that catalyze the reaction of other substances to generate a detectable signal include enzymes. Examples of the enzyme include alkaline phosphatase, peroxidase, β-galactosidase, luciferase and the like. Examples of the fluorescent substance include fluorescent dyes such as fluorescein isothiocyanate (FITC), rhodamine and Alexa Fluor (registered trademark), and fluorescent proteins such as GFP. Radioisotopes include 125 I, 14 C, 32 P and the like. In a preferred embodiment, the labeling substance is an enzyme, particularly preferably alkaline phosphatase and peroxidase.
本明細書において、「シグナルを検出する」とは、シグナルの有無を定性的に検出すること、シグナル強度を定量すること、及び、シグナルの強度を半定量的に検出することを含む。半定量的な検出とは、シグナルの強度を、「シグナル発生せず」、「弱」、「中」、「強」などのように段階的に示すことをいう。本実施形態では、シグナルの強度を定量的に検出することが好ましい。 As used herein, "detecting a signal" includes qualitatively detecting the presence or absence of a signal, quantifying the signal intensity, and semi-quantitatively detecting the signal intensity. Semi-quantitative detection means that the signal intensity is indicated stepwise, such as "no signal generated", "weak", "medium", and "strong". In this embodiment, it is preferable to quantitatively detect the signal intensity.
シグナルを検出する方法自体は、当該技術において公知である。本実施形態では、上記の標識物質に由来するシグナルの種類に応じた測定方法を適宜選択すればよい。例えば、標識物質が酵素である場合、該酵素に対する基質を反応させることによって発生する光、色などのシグナルを、分光光度計などの公知の装置を用いて測定することにより行うことができる。 The method itself for detecting a signal is known in the art. In the present embodiment, the measuring method according to the type of the signal derived from the above-mentioned labeling substance may be appropriately selected. For example, when the labeling substance is an enzyme, signals such as light and color generated by reacting a substrate with the enzyme can be measured by using a known device such as a spectrophotometer.
酵素の基質は、該酵素の種類に応じて公知の基質から適宜選択できる。例えば、酵素としてアルカリホスファターゼを用いる場合、基質として、CDP-Star(登録商標)(4-クロロ-3-(メトキシスピロ[1, 2-ジオキセタン-3, 2'-(5'-クロロ)トリクシロ[3. 3. 1. 13, 7]デカン]-4-イル)フェニルリン酸2ナトリウム)、CSPD(登録商標)(3-(4-メトキシスピロ[1, 2-ジオキセタン-3, 2-(5'-クロロ)トリシクロ[3. 3. 1. 13, 7]デカン]-4-イル)フェニルリン酸2ナトリウム)などの化学発光基質、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルリン酸(BCIP)、5-ブロモ-6-クロロ−インドリルリン酸2ナトリウム、p-ニトロフェニルリン酸などの発色基質が挙げられる。また、酵素としてペルオキシダーゼを用いる場合、基質としては、ルミノール及びその誘導体などの化学発光基質、2, 2'-アジノビス(3-エチルベンゾチアゾリン-6-スルホン酸アンモニウム)(ABTS)、1, 2-フェニレンジアミン(OPD)、3, 3', 5, 5'-テトラメチルベンジジン(TMB)などの発色基質が挙げられる。 The substrate of the enzyme can be appropriately selected from known substrates according to the type of the enzyme. For example, when alkaline phosphatase is used as the enzyme, CDP-Star® (4-chloro-3- (methoxyspiro [1, 2-dioxetane-3, 2'-(5'-chloro) trixhiro] [ 3. 3. 1. 13, 7] Decane] -4-yl) disodium phenyl phosphate), CSPD® (3- (4-methoxyspiro [1, 2-dioxetane-3, 2- (5) Chemically luminescent substrates such as'-chloro) tricyclo [3. 3. 1. 13, 7] decane] -4-yl) disodium phenylphosphate), 5-bromo-4-chloro-3-indrill phosphate ( BCIP), 2-sodium 5-bromo-6-chloro-indrill phosphate, p-nitrophenyl phosphate and other color-developing substrates can be mentioned. When peroxidase is used as the enzyme, the substrate is a chemically luminescent substrate such as luminol and its derivatives, 2, 2'-azinobis (3-ethylbenzothiazolin-6-ammonium sulfonate) (ABTS), 1, 2- Coloring substrates such as phenylenediamine (OPD), 3, 3', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB) can be mentioned.
標識物質が放射性同位体である場合は、シグナルとしての放射線を、シンチレーションカウンターなどの公知の装置を用いて測定できる。また、標識物質が蛍光物質である場合は、シグナルとしての蛍光を、蛍光マイクロプレートリーダーなどの公知の装置を用いて測定できる。なお、励起波長及び蛍光波長は、用いた蛍光物質の種類に応じて適宜決定できる。 When the labeling substance is a radioisotope, the radiation as a signal can be measured using a known device such as a scintillation counter. When the labeling substance is a fluorescent substance, the fluorescence as a signal can be measured using a known device such as a fluorescent microplate reader. The excitation wavelength and the fluorescence wavelength can be appropriately determined according to the type of the fluorescent substance used.
測定において、抗体を捕捉するための固相を用いる場合、固相の種類は特に限定されない。例えば、抗体を物理的に吸着する材質の固相、抗体と特異的に結合する分子が固定化されている固相などが挙げられる。抗体と特異的に結合する分子としては、プロテインA又はG、該抗体を特異的に認識する抗体(すなわち二次抗体)などが挙げられる。また、抗体と固相との間を介在する物質の組み合わせを用いて、両者を結合させることもできる。そのような物質の組み合わせとしては、ビオチンとアビジン(又はストレプトアビジン)、グルタチオンとグルタチオン-S-トランスフェラーゼ、ハプテンと抗ハプテン抗体などの組み合わせが挙げられる。例えば、抗GPC3抗体をあらかじめビオチン修飾している場合、アビジン又はストレプトアビジンが固定化された固相によって該抗体を捕捉できる。 When a solid phase for capturing an antibody is used in the measurement, the type of the solid phase is not particularly limited. For example, a solid phase of a material that physically adsorbs an antibody, a solid phase in which a molecule that specifically binds to an antibody is immobilized, and the like can be mentioned. Examples of the molecule that specifically binds to the antibody include protein A or G, an antibody that specifically recognizes the antibody (that is, a secondary antibody), and the like. It is also possible to bind both by using a combination of substances intervening between the antibody and the solid phase. Combinations of such substances include biotin and avidin (or streptavidin), glutathione and glutathione-S-transferase, hapten and anti-hapten antibodies, and the like. For example, if the anti-GPC3 antibody is pre-biotin-modified, the antibody can be captured by a solid phase on which avidin or streptavidin is immobilized.
固相の素材としては、有機高分子化合物、無機化合物、生体高分子などから選択できる。有機高分子化合物としては、ラテックス、ポリスチレン、ポリプロピレン、スチレン−メタクリル酸共重合体、スチレン−グリシジル(メタ)アクリレート共重合体、スチレン−スチレンスルホン酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体、アクリロニトリルブタジエンスチレン共重合体、塩化ビニル−アクリル酸エステル共重合体、ポリ酢酸ビニルアクリレートなどが挙げられる。無機化合物としては、磁性体(酸化鉄、酸化クロム、コバルト及びフェライトなど)、シリカ、アルミナ、ガラスなどが挙げられる。生体高分子としては、不溶性アガロース、不溶性デキストラン、ゼラチン、セルロースなどが挙げられる。これらのうちの2種以上を組み合わせて用いてもよい。固相の形状は特に限定されず、例えば、粒子、マイクロプレート、マイクロチューブ、試験管などが挙げられる。 The solid phase material can be selected from organic polymer compounds, inorganic compounds, biopolymers and the like. Examples of the organic polymer compound include latex, polystyrene, polypropylene, styrene-methacrylic acid copolymer, styrene-glycidyl (meth) acrylate copolymer, styrene-styrene sulfonate copolymer, methacrylic acid polymer, and acrylic acid weight. Examples thereof include coalescence, acrylonitrile butadiene styrene copolymer, vinyl chloride-acrylic acid ester copolymer, and polyvinyl acetate acrylate. Examples of the inorganic compound include magnetic substances (iron oxide, chromium oxide, cobalt, ferrite, etc.), silica, alumina, glass, and the like. Examples of the biopolymer include insoluble agarose, insoluble dextran, gelatin, cellulose and the like. Two or more of these may be used in combination. The shape of the solid phase is not particularly limited, and examples thereof include particles, microplates, microtubes, and test tubes.
免疫学的測定には、非特異反応抑制剤を用いることが好ましい。抗原抗体反応において非特異反応抑制剤が存在することにより、偽陽性の発生を抑えることができる。非特異反応抑制剤としては、測定に用いる抗体と、血液試料に含まれる目的抗原以外の物質(例えばHAMAなどの異好抗体など)との結合を阻害する物質であれば特に制限されない。例えば、マウス血清、ヒツジ血清、ヤギ血清、マウス抗体、ヒツジ抗体、ヤギ抗体などが挙げられる。市販の非特異反応抑制剤を用いてもよく、例えば、TRUBlock(Meridian Life Science社)、ASSAY DEVELOPMENT BLOCKING KIT(SCANTIBODIS LABORATOR社)、THBR2(株式会社特殊免疫研究所)などが挙げられる。 It is preferable to use a non-specific reaction inhibitor for immunological measurement. The presence of a non-specific reaction inhibitor in the antigen-antibody reaction can suppress the occurrence of false positives. The non-specific reaction inhibitor is not particularly limited as long as it is a substance that inhibits the binding between the antibody used for measurement and a substance other than the target antigen contained in the blood sample (for example, a preferred antibody such as HAMA). For example, mouse serum, sheep serum, goat serum, mouse antibody, sheep antibody, goat antibody and the like can be mentioned. Commercially available non-specific reaction inhibitors may be used, and examples thereof include TRUBlock (Meridian Life Science), ASSAY DEVELOPMENT BLOCKING KIT (SCANTIBODIS LABORATOR), and THBR2 (Special Immunology Laboratory Co., Ltd.).
AFP及びPIVKA-IIは、腫瘍マーカーとして公知であり、肝細胞がんの診断補助にも利用されている。そのため、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれを測定するための試薬キットも市販されている。該試薬キットには、AFPに特異的に結合する抗体、及びPIVKA-IIに特異的に結合する抗体が含まれている。本実施形態では、そのような市販の試薬キットを用いて、血液試料におけるAFP濃度及び/又はPIVKA-II濃度を測定してもよい。 AFP and PIVKA-II are known as tumor markers and are also used as diagnostic aids for hepatocellular carcinoma. Therefore, reagent kits for measuring each of AFP and PIVKA-II are also commercially available. The reagent kit contains an antibody that specifically binds to AFP and an antibody that specifically binds to PIVKA-II. In this embodiment, such a commercially available reagent kit may be used to measure the AFP concentration and / or the PIVKA-II concentration in the blood sample.
肝細胞がん患者の血液中には、GPC3のN末端フォーム(例えばGPC3のN末端側のアミノ酸配列の全部又は一部を含み、且つC末端側のアミノ酸配列を含まないペプチド)と、GPC3のC末端フォーム(例えばGPC3のC末端側のアミノ酸配列の全部又は一部を含み、且つN末端側のアミノ酸配列を含まないペプチド)と、N末端フォーム及びC末端フォームから構成される全長型フォームが混在すると考えられている。本実施形態では、GPC3の濃度として、いずれのフォームの濃度を測定してもよいが、GPC3の全長型フォームの濃度を測定することが好ましい。ここで、「GPC3のN末端側のアミノ酸配列」とは、全長GPC3タンパク質が、その全長アミノ酸配列における任意の1つの部位(好ましくは358番目のアミノ酸残基と359番目のアミノ酸残基との間)で切断されて生じる2つのフラグメントのうち、全長GPC3タンパク質のN末端側を構成するフラグメントのアミノ酸配列をいう。「GPC3のC末端側のアミノ酸配列」とは、上記の2つのフラグメントのうち、全長GPC3タンパク質のC末端側を構成するフラグメントのアミノ酸配列をいう。なお、GPC3の全長アミノ酸配列を配列番号1として示す。この配列自体は公知である。 In the blood of patients with hepatocellular carcinoma, the N-terminal form of GPC3 (for example, a peptide containing all or part of the N-terminal amino acid sequence of GPC3 and not the C-terminal amino acid sequence) and GPC3 A full-length foam composed of a C-terminal foam (for example, a peptide containing all or part of the C-terminal amino acid sequence of GPC3 and not containing the N-terminal amino acid sequence), and an N-terminal foam and a C-terminal foam It is believed to be mixed. In the present embodiment, the concentration of any foam may be measured as the concentration of GPC3, but it is preferable to measure the concentration of the full-length foam of GPC3. Here, the "amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3" means that the full-length GPC3 protein is located between any one site (preferably between the 358th amino acid residue and the 359th amino acid residue) in the full-length amino acid sequence. ) Of the two fragments produced by cleaving with), the amino acid sequence of the fragment constituting the N-terminal side of the full-length GPC3 protein. The "amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3" refers to the amino acid sequence of the fragment constituting the C-terminal side of the full-length GPC3 protein among the above two fragments. The full-length amino acid sequence of GPC3 is shown as SEQ ID NO: 1. The sequence itself is known.
本実施形態では、GPC3の濃度は、GPC3のN末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第1の抗体と、GPC3のC末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第2の抗体との両方が結合するGPC3ペプチドの濃度であってもよい。そのような2種の抗体の両方が結合するGPC3ペプチドは、GPC3の全長型フォームに相当する。本発明者らは、そのようなGPC3ペプチドが、肝細胞がんの再発リスクの予測に有用であることをこれまでに見出している。上記のGPC3ペプチドの測定には、第1の抗体と第2の抗体とを用いるサンドイッチELISA法が適している。 In this embodiment, the concentration of GPC3 specifically binds to the first antibody that specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3 and the peptide consisting of the amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3. It may be the concentration of the GPC3 peptide to which both the second antibody binds. The GPC3 peptide to which both of these two antibodies bind corresponds to the full-length form of GPC3. We have previously found that such GPC3 peptides are useful in predicting the risk of recurrence of hepatocellular carcinoma. The sandwich ELISA method using the first antibody and the second antibody is suitable for the measurement of the above GPC3 peptide.
本実施形態では、第1の抗体は、GPC3の1〜358番目のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合するモノクローナル抗体が好ましく、GPC3の301〜358番目のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合するモノクローナル抗体がより好ましい。以下、これらのモノクローナル抗体を「第1モノクローナル抗体」ともいう。そのようなモノクローナル抗体を作製する方法自体は、当該技術において公知である。例えば、Kohler及びMilstein, Nature, vol.256, p.495-497, 1975に記載される方法に従い、GPC3の1〜358番目又は301〜358番目のアミノ酸配列からなるペプチドを用いて、第1モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作製すればよい。 In the present embodiment, the first antibody is preferably a monoclonal antibody that specifically binds to a peptide consisting of the amino acid sequences 1 to 358 of GPC3, and specifically to a peptide consisting of the amino acid sequences 301 to 358 of GPC3. Monoclonal antibodies that bind are more preferred. Hereinafter, these monoclonal antibodies are also referred to as "first monoclonal antibody". The method itself for producing such a monoclonal antibody is known in the art. First monoclonal, for example, using peptides consisting of amino acid sequences 1-358 or 301-358 of GPC3 according to the methods described in Kohler and Milstein, Nature, vol.256, p.495-497, 1975. A hybridoma that produces an antibody may be prepared.
第2の抗体は、GPC3の359〜580番目のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合するモノクローナル抗体が好ましく、GPC3の543〜552番目のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合するモノクローナル抗体がより好ましい。以下、これらのモノクローナル抗体を「第2モノクローナル抗体」ともいう。第2モノクローナル抗体も、GPC3の359〜580番目又は543〜552番目のアミノ酸配列からなるペプチドを用いて免疫すること以外は、第1モノクローナル抗体と同様にして作製できる。 The second antibody is preferably a monoclonal antibody that specifically binds to the peptide consisting of the 359th to 580th amino acid sequences of GPC3, and a monoclonal antibody that specifically binds to the peptide consisting of the 543th to 552nd amino acid sequences of GPC3. More preferred. Hereinafter, these monoclonal antibodies are also referred to as "second monoclonal antibody". The second monoclonal antibody can also be prepared in the same manner as the first monoclonal antibody except that it is immunized with a peptide consisting of the amino acid sequence of positions 359 to 580 or 543 to 552 of GPC3.
サンドイッチELISA法によりGPC3の濃度を測定する場合、第1モノクローナル抗体を、GPC3を捕捉するための抗体(捕捉用抗体)として用い、第2モノクローナル抗体を、GPC3を検出するための抗体(検出用抗体)として用いることが好ましい。 When measuring the concentration of GPC3 by the sandwich ELISA method, the first monoclonal antibody is used as an antibody for capturing GPC3 (capture antibody), and the second monoclonal antibody is used as an antibody for detecting GPC3 (detection antibody). ) Is preferable.
本実施形態において、第1モノクローナル抗体及び第2モノクローナル抗体の両方が結合するGPC3ペプチドは、GPC3の第1番目から第580番目のアミノ酸配列からなる全長タンパク質であってもよいし、GPC3の第301番目から第552番目のアミノ酸配列を含むペプチドでもあってもよい。 In this embodiment, the GPC3 peptide to which both the first and second monoclonal antibodies bind may be a full-length protein consisting of the 1st to 580th amino acid sequences of GPC3, or the 301st of GPC3. It may also be a peptide containing the amino acid sequence from the second to the 552nd.
本実施形態の方法では、測定工程において測定したGPC3の濃度、並びにAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度と、GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれに対応する所定の閾値との比較結果に基づいて、患者の肝細胞がんの早期再発リスクを判定する。以下、GPC3に対応する所定の閾値を「第1の閾値」と呼び、AFPに対応する所定の閾値を「第2の閾値」と呼び、PIVKA-IIに対応する所定の閾値を「第3の閾値」と呼ぶ。 In the method of the present embodiment, the concentration of GPC3 measured in the measuring step, the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and a predetermined threshold value corresponding to each of GPC3, AFP and PIVKA-II are used. Based on the results of the comparison, the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma in patients is determined. Hereinafter, the predetermined threshold value corresponding to GPC3 is referred to as "first threshold value", the predetermined threshold value corresponding to AFP is referred to as "second threshold value", and the predetermined threshold value corresponding to PIVKA-II is referred to as "third threshold value". It is called "threshold value".
例えば、測定工程においてGPC3の濃度及びAFPの濃度を測定したときは、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つAFPの濃度が第2の閾値以上である場合に、患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定することができる。 For example, when the concentration of GPC3 and the concentration of AFP are measured in the measurement step, when the concentration of GPC3 is equal to or higher than the first threshold value and the concentration of AFP is equal to or higher than the second threshold value, the patient's hepatocellular carcinoma is present. It can be determined that the risk of early recurrence is high.
測定工程においてGPC3の濃度及びPIVKA-IIの濃度を測定したときは、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つPIVKA-IIの濃度が第3の閾値以上である場合に、患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定することができる。 When the concentration of GPC3 and the concentration of PIVKA-II are measured in the measurement step, if the concentration of GPC3 is equal to or higher than the first threshold value and the concentration of PIVKA-II is equal to or higher than the third threshold value, the patient's liver It can be determined that the risk of early recurrence of cell cancer is high.
測定工程においてGPC3の濃度、AFPの濃度及びPIVKA-IIの濃度を測定したときは、GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、AFPの濃度が第2の閾値以上であり、且つPIVKA-IIの濃度が第3の閾値以上である場合に、患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定することができる。 When the concentration of GPC3, the concentration of AFP and the concentration of PIVKA-II were measured in the measurement step, the concentration of GPC3 was equal to or higher than the first threshold, the concentration of AFP was equal to or higher than the second threshold, and the concentration of PIVKA-II. When the concentration of is equal to or higher than the third threshold value, it can be determined that the patient has a high risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
一方、測定工程で測定したGPC3の濃度、並びにAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度のうち、少なくとも1の濃度が所定の閾値未満である場合、患者の肝細胞がんの早期再発リスクが低いと判定してもよい。ただし、早期再発リスクは低いとしても、上記の所定の期間よりも後に再発するリスクは否定できない。よって、測定工程で測定したGPC3の濃度、並びにAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度のうち、少なくとも1の濃度が所定の閾値未満である場合、患者は経過観察の必要があると判定してもよい。 On the other hand, when the concentration of GPC3 measured in the measurement step and the concentration of at least one of the concentrations of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II are less than a predetermined threshold value, the patient's hepatocellular carcinoma It may be determined that the risk of early recurrence is low. However, even if the risk of early recurrence is low, the risk of recurrence after the above-mentioned predetermined period cannot be denied. Therefore, if at least one of the GPC3 concentration measured in the measurement step and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II is less than a predetermined threshold value, the patient needs to be followed up. It may be determined that there is.
さらなる実施形態では、上記の測定工程において測定したGPC3の濃度、並びにAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度と、GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれに対応する所定の閾値との比較結果に基づいて、肝細胞がん患者を、早期再発リスクの高さに応じた群に分類してもよい。具体的には、測定工程で測定したGPC3濃度が第1の閾値以上であり、且つ測定工程で測定したAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度が該マーカーに対応する所定の閾値以上である患者を「第1患者群」に分類する。また、測定工程で測定したGPC3の濃度、並びにAFP及びPIVKA-IIから選択される少なくとも1のマーカーの濃度のうち、少なくとも1の濃度が所定の閾値未満である患者を「第2患者群」に分類する。この実施形態において、第1患者群は、第2患者群よりも早期再発リスクが高い群である。 In a further embodiment, the concentration of GPC3 measured in the above measurement step, the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, and a predetermined threshold corresponding to each of GPC3, AFP and PIVKA-II. Hepatocellular carcinoma patients may be grouped according to their high risk of early recurrence based on the results of the comparison. Specifically, the GPC3 concentration measured in the measuring step is equal to or higher than the first threshold value, and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II measured in the measuring step corresponds to the marker. Patients above the threshold are classified into the "first patient group". In addition, among the concentration of GPC3 measured in the measurement step and the concentration of at least one marker selected from AFP and PIVKA-II, patients whose concentration is less than a predetermined threshold are classified into the "second patient group". Classify. In this embodiment, the first patient group is a group with a higher risk of early recurrence than the second patient group.
本実施形態では、上記の判定結果に基づいて、医師などは、肝細胞がん患者について早期再発リスクの予測を補助することが可能になる。 In the present embodiment, based on the above determination result, a doctor or the like can assist in predicting the risk of early recurrence in a hepatocellular carcinoma patient.
本実施形態では、所定の閾値は、特に限定されず、例えば、根治的治療後1年以内に肝細胞がんが再発した患者についてのデータの蓄積により経験的に設定してもよい。あるいは、次のようにして、所定の閾値を設定してもよい。まず、根治的治療が行われる前の複数の肝細胞がん患者から血液試料を採取し、GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度を測定する。これらの患者に根治的治療が行われた後、所定の期間(例えば1年間)、経過を観察する。所定の期間内に患者に肝細胞がんが再発した場合、該患者を早期再発群に分類し、血液試料の採取日及び/又は根治的治療を実施した日から再発が確認された日までの期間を算出する。所定の期間内に患者に肝細胞がんが再発しなかった場合、該患者を非早期再発群に分類する。そして、早期再発群のGPC3濃度と、非早期再発群のGPC3濃度とを最も精度よく区別可能な値を求め、その値を第1の閾値として設定する。AFP及びPIVKA-IIの濃度についても同様に処理して、第2の閾値及び第3の閾値を設定する。閾値の設定においては、感度、特異度、陽性適中率、陰性適中率などを考慮することが好ましく、それらの中でも特異度及び陰性適中率を考慮することがより好ましい。 In the present embodiment, the predetermined threshold value is not particularly limited, and may be set empirically, for example, by accumulating data on a patient who has relapsed hepatocellular carcinoma within one year after the definitive treatment. Alternatively, a predetermined threshold value may be set as follows. First, blood samples are taken from multiple hepatocellular carcinoma patients before definitive treatment and the concentrations of GPC3, AFP and PIVKA-II are measured. After definitive treatment is given to these patients, follow-up is followed for a predetermined period (eg, 1 year). If hepatocellular carcinoma recurs in a patient within a predetermined period, the patient is classified into an early recurrence group, and from the date of blood sample collection and / or the date of definitive treatment to the date of confirmed recurrence. Calculate the period. If a patient does not have a recurrence of hepatocellular carcinoma within a predetermined period of time, the patient is classified as a non-early recurrence group. Then, the GPC3 concentration in the early recurrence group and the GPC3 concentration in the non-early recurrence group are determined with the most accurate value, and the value is set as the first threshold value. The same processing is performed for the concentrations of AFP and PIVKA-II, and the second threshold value and the third threshold value are set. In setting the threshold value, it is preferable to consider sensitivity, specificity, positive predictive value, negative predictive value, etc., and it is more preferable to consider specificity and negative predictive value among them.
上記の第1の抗体及び第2の抗体を用いる免疫学的測定法(例えばELISA法)によってGPC3を測定する場合、第1の閾値は、例えば1 pg/mL以上35 pg/mL以下、好ましくは2 pg/mL以上15 pg/mL以下の範囲から設定できる。特に好ましい第1の閾値は8.0 pg/mLである。免疫学的測定法(例えばELISA法)によってAFPを測定する場合、第2の閾値は、例えば3 ng/mL以上160 ng/mL以下、好ましくは4 ng/mL以上9 ng/mL以下の範囲から設定できる。特に好ましい第2の閾値は7.9 ng/mLである。免疫学的測定法(例えばELISA法)によってPIVKA-IIを測定する場合、第3の閾値は、例えば1 mAU/mL以上290 mAU/mL以下、好ましくは1 mAU/mL以上215 mAU/mL以下の範囲から設定できる。特に好ましい第3の閾値は102 mAU/mLである。 When GPC3 is measured by an immunological measurement method (for example, ELISA method) using the first antibody and the second antibody described above, the first threshold value is, for example, 1 pg / mL or more and 35 pg / mL or less, preferably. It can be set from the range of 2 pg / mL or more and 15 pg / mL or less. A particularly preferred first threshold is 8.0 pg / mL. When measuring AFP by immunoassay (eg, ELISA), the second threshold is, for example, from 3 ng / mL to 160 ng / mL, preferably 4 ng / mL to 9 ng / mL. Can be set. A particularly preferred second threshold is 7.9 ng / mL. When measuring PIVKA-II by immunoassay (eg, ELISA), the third threshold is, for example, 1 mAU / mL or more and 290 mAU / mL or less, preferably 1 mAU / mL or more and 215 mAU / mL or less. Can be set from the range. A particularly preferred third threshold is 102 mAU / mL.
本発明には、肝細胞がんの治療方法が含まれる。この方法は、上述の判定工程によって「早期再発リスクが高い」と判定された患者に対して根治的治療を行う工程;及び、根治的治療後に肝細胞がんの再発リスクを低下させる薬剤を投与する工程を含む。根治的治療については、上述のとおりである。再発リスクを低下させる薬剤としては、公知の薬剤を用いるか、ワクチンなどの新たな薬剤を用いることができ、例えば、肝炎ウイルス陽性肝細胞がんの場合、インターフェロンなどの抗ウイルス薬などが挙げられる。 The present invention includes a method for treating hepatocellular carcinoma. This method is a step of performing definitive treatment for a patient judged to have "high risk of early recurrence" by the above-mentioned determination step; and administering a drug that reduces the risk of recurrence of hepatocellular carcinoma after the definitive treatment. Includes the process of The curative treatment is as described above. As a drug that reduces the risk of recurrence, a known drug or a new drug such as a vaccine can be used. For example, in the case of hepatitis virus-positive hepatocellular carcinoma, an antiviral drug such as interferon can be used. ..
[2.早期再発リスクの判定装置及びコンピュータプログラム製品]
本発明には、肝細胞がんの早期再発リスクの判定装置(以下、単に「判定装置」ともいう)が含まれる。また、本発明には、肝細胞がんの早期再発リスクの判定をコンピュータに実行させるためのコンピュータプログラム製品も含まれる。なお、該コンピュータプログラム製品が備える媒体は、コンピュータプログラムが非一時的に記録され、且つ、コンピュータが読取可能な媒体であってもよい。
[2. Early recurrence risk determination device and computer program products]
The present invention includes a device for determining the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma (hereinafter, also simply referred to as "determining device"). The present invention also includes a computer program product for causing a computer to determine the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. The medium included in the computer program product may be a medium on which the computer program is recorded non-temporarily and the computer can read the program.
以下に、上記の本実施形態の方法を実施するのに好適な装置の一例を、図面を参照して説明する。しかし、本実施形態は、この例に示される形態のみに限定されない。図1を参照して、判定装置11は、測定装置22と、該測定装置22と接続されたコンピュータシステム33とを含んでいる。
Hereinafter, an example of an apparatus suitable for carrying out the method of the present embodiment described above will be described with reference to the drawings. However, this embodiment is not limited to the embodiment shown in this example. With reference to FIG. 1, the
本実施形態において、測定装置の種類は特に限定されず、GFP3、AFP及びPIVKA-IIの測定方法に応じて適宜選択できる。図1に示される例では、測定装置22は、標識抗体を用いるELISA法により生じる化学発光シグナルを検出可能なプレートリーダである。あるいは、捕捉用抗体を固定した磁性粒子及び酵素標識された検出用抗体を用いるサンドイッチELISA法により生じる化学発光シグナルを検出可能な市販の自動免疫測定装置であってもよい。プレートリーダ及び自動免疫測定装置は、用いた標識物質に基づくシグナルの検出が可能であれば特に限定されず、標識物質の種類に応じて適宜選択できる。
In the present embodiment, the type of measuring device is not particularly limited, and can be appropriately selected depending on the measuring method of GFP3, AFP and PIVKA-II. In the example shown in FIG. 1, the measuring
抗原抗体反応を行ったプレートを測定装置22にセットすると、測定装置22は、タンパク質マーカーと特異的に結合した標識抗体に基づく光学的情報として化学発光シグナルを取得し、得られた光学的情報をコンピュータシステム33に送信する。なお、測定装置22に取得される光学的情報には、濃度値の算出ための濃度既知の検体の情報も含まれている。
When the plate on which the antigen-antibody reaction was performed is set in the measuring
コンピュータシステム33は、コンピュータ本体33aと、入力部33bと、検体情報や判定結果などを表示する表示部33cとを含む。コンピュータシステム33は、測定装置22から光学的情報を受信する。そして、コンピュータシステム33のプロセッサは、光学的情報に基づいて、肝細胞がんの早期再発リスクの判定プログラムを実行する。
The
図2を参照して、コンピュータ本体33aは、CPU(Central Processing Unit)330と、ROM(Read Only Memory)331と、RAM(Random Access Memory)332と、ハードディスク333と、入出力インターフェイス334と、読出装置335と、通信インターフェイス336と、画像出力インターフェイス337とを備えている。CPU330、ROM331、RAM332、ハードディスク333、入出力インターフェイス334、読出装置335、通信インターフェイス336及び画像出力インターフェイス337は、バス338によってデータ通信可能に接続されている。
With reference to FIG. 2, the computer
CPU330は、ROM331に記憶されているコンピュータプログラム及びRAM332にロードされたコンピュータプログラムを実行することが可能である。CPU330がアプリケーションプログラムを実行することにより、上述した各機能ブロックが実現される。これにより、コンピュータシステムが、患者の肝細胞がんの早期再発リスクに関する情報を提供するための判定装置としての端末として機能する。
The
ROM331は、マスクROM、PROM、EPROM、EEPROMなどによって構成されている。ROM331には、CPU330によって実行されるコンピュータプログラム及びこれに用いるデータが記録されている。
The
RAM332は、SRAM、DRAMなどによって構成されている。RAM332は、ROM331及びハードディスク333に記録されているコンピュータプログラムの読み出しに用いられる。RAM332はまた、これらのコンピュータプログラムを実行するときに、CPU330の作業領域として利用される。
The
ハードディスク333は、CPU330に実行させるためのオペレーティングシステム、アプリケーションプログラム(肝細胞がんの早期再発リスクの判定のためのコンピュータプログラム)などのコンピュータプログラム及び当該コンピュータプログラムの実行に用いるデータがインストールされている。ハードディスク333には、GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれに対応する所定の閾値など、後述の判定フローに用いられるデータが記録されていてもよい。
The
読出装置335は、フレキシブルディスクドライブ、CD−ROMドライブ、DVD−ROMドライブなどによって構成されている。読出装置335は、可搬型記録媒体340に記録されたコンピュータプログラムまたはデータを読み出すことができる。
The
入出力インターフェイス334は、例えば、USB、IEEE1394、RS−232Cなどのシリアルインターフェイスと、SCSI、IDE、IEEE1284などのパラレルインターフェイスと、D/A変換器、A/D変換器などからなるアナログインターフェイスとから構成されている。入出力インターフェイス334には、キーボード、マウスなどの入力部33bが接続されている。操作者は、当該入力部33bを使用することにより、コンピュータ本体33aにデータを入力することが可能である。
The input /
通信インターフェイス336は、例えば、Ethernet(登録商標)インターフェイスなどである。コンピュータシステム33は、通信インターフェイス336により、プリンタへの印刷データの送信が可能である。測定装置22は、通信インターフェイス336により、コンピュータシステム33への測定データ(光学的情報)の送信が可能である。
The
画像出力インターフェイス337は、LCD、CRTなどで構成される表示部33cに接続されている。これにより、表示部33cは、CPU330から与えられた画像データに応じた映像信号を出力することができる。表示部33cは、入力された映像信号にしたがって画像(画面)を表示する。
The
図3を参照して、判定装置10により実行される、肝細胞がんの早期再発リスクの判定フローについて説明する。ここでは、GPC3及びAFPのそれぞれと特異的に結合した標識抗体に基づく光学的情報(化学発光シグナル)から、GPC3及びAFPの濃度値を取得し、取得した値を用いて判定を行なう場合を例として説明する。しかし、本実施形態は、この例のみに限定されない。この例では、後述のステップS102において、AFPに代えて、PIVKA-IIの濃度値を算出し、GPC3及びPIVKA-IIの濃度値を用いて判定を行ってもよい。 The determination flow of the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma, which is executed by the determination apparatus 10, will be described with reference to FIG. Here, an example is obtained in which the concentration values of GPC3 and AFP are acquired from the optical information (chemiluminescence signal) based on the labeled antibody specifically bound to each of GPC3 and AFP, and the determination is performed using the acquired values. It is explained as. However, this embodiment is not limited to this example. In this example, in step S102 described later, the concentration value of PIVKA-II may be calculated instead of AFP, and the determination may be made using the concentration values of GPC3 and PIVKA-II.
ステップS101において、判定装置11のCPU330は、測定装置22から光学的情報を取得する。ステップS102において、CPU330は、取得した光学的情報からGPC3及びAFPの濃度値を算出し、算出したGPC3及びAFPの濃度値をハードディスク333に記憶する。ステップS103において、CPU330は、算出したGPC3の濃度値と、ハードディスク333に記憶された第1の閾値とを比較する。ここで、GPC3の濃度値が第1の閾値よりも低くないとき(すなわち、GPC3の濃度値が第1の閾値以上であるとき)、処理はステップS104に進行する。ステップS104において、CPU330は、算出したAFPの濃度値と、ハードディスク333に記憶された第2の閾値とを比較する。ここで、AFPの濃度値が第2の閾値よりも低くないとき(すなわち、AFPの濃度値が第2の閾値以上であるとき)、処理はステップS105に進行する。ステップS105において、CPU330は、患者の肝細胞がんの早期再発リスクは高いとの判定結果をハードディスク333に記憶する。
In step S101, the
一方、ステップS103において、GPC3の濃度値が第1の閾値よりも低いとき、処理はステップS106に進行する。また、ステップS104において、AFPの濃度値が第2の閾値よりも低いとき、処理はステップS106に進行する。ステップS106において、CPU330は、患者の肝細胞がんの早期再発リスクは低いとの判定結果をハードディスク313に記憶する。あるいは、患者は経過観察が必要との判定結果をハードディスク333に記憶する。ステップ107において、CPU330は、判定結果を出力し、表示部33cに表示させたり、プリンタに印刷させたりする。これにより、患者の肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する情報を医師などに提供することができる。なお、この例において、ステップS103及びステップS104の処理は、順序を入れ替えることができる。
On the other hand, in step S103, when the concentration value of GPC3 is lower than the first threshold value, the process proceeds to step S106. Further, in step S104, when the concentration value of AFP is lower than the second threshold value, the process proceeds to step S106. In step S106, the
この例では、ステップS104において、AFPの濃度値及び第2の閾値に代えて、PIVKA-IIの濃度値と、ハードディスク333に記憶された第3の閾値とを比較してもよい。この場合、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値よりも低くないとき(すなわち、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値以上であるとき)、処理はステップS105に進行する。あるいは、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値よりも低いとき、処理はステップS106に進行する。
In this example, in step S104, the concentration value of PIVKA-II may be compared with the third threshold value stored in the
図4を参照して、GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれと特異的に結合した標識抗体に基づく光学的情報(化学発光シグナル)から、GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度値を取得し、取得した値を用いて判定を行なう場合を例として説明する。 With reference to FIG. 4, the concentration values of GPC3, AFP and PIVKA-II were obtained from the optical information (chemiluminescence signal) based on the labeled antibody specifically bound to each of GPC3, AFP and PIVKA-II. A case where the determination is performed using the acquired value will be described as an example.
ステップS201において、判定装置11のCPU330は、測定装置22から光学的情報を取得する。ステップS202において、CPU330は、取得した光学的情報からGPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度値を算出し、算出したGPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度値をハードディスク333に記憶する。ステップS203において、CPU330は、算出したGPC3の濃度値と、ハードディスク333に記憶された第1の閾値とを比較する。ここで、GPC3の濃度値が第1の閾値よりも低くないとき(すなわち、GPC3の濃度値が第1の閾値以上であるとき)、処理はステップS204に進行する。ステップS204において、CPU330は、算出したAFPの濃度値と、ハードディスク333に記憶された第2の閾値とを比較する。ここで、AFPの濃度値が第2の閾値よりも低くないとき(すなわち、AFPの濃度値が第2の閾値以上であるとき)、処理はステップS205に進行する。ステップS205において、CPU330は、算出したPIVKA-IIの濃度値と、ハードディスク333に記憶された第3の閾値とを比較する。ここで、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値よりも低くないとき(すなわち、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値以上であるとき)、処理はステップS206に進行する。ステップS206において、CPU330は、患者の肝細胞がんの早期再発リスクは高いとの判定結果をハードディスク333に記憶する。
In step S201, the
一方、ステップS203において、GPC3の濃度値が第1の閾値よりも低いとき、処理はステップS207に進行する。ステップS204において、AFPの濃度値が第2の閾値よりも低いとき、処理はステップS207に進行する。ステップS205において、PIVKA-IIの濃度値が第3の閾値よりも低いとき、処理はステップS207に進行する。ステップS207において、CPU330は、患者の肝細胞がんの早期再発リスクは低いとの判定結果をハードディスク333に記憶する。あるいは、患者は経過観察が必要との判定結果をハードディスク333に記憶する。ステップ208において、CPU330は、判定結果を出力し、表示部33cに表示させたり、プリンタに印刷させたりする。これにより、患者の肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する情報を医師などに提供することができる。なお、この例において、ステップS203、S204及びS205の処理は、順序を入れ替えることができる。
On the other hand, in step S203, when the concentration value of GPC3 is lower than the first threshold value, the process proceeds to step S207. In step S204, when the concentration value of AFP is lower than the second threshold value, the process proceeds to step S207. In step S205, when the concentration value of PIVKA-II is lower than the third threshold value, the process proceeds to step S207. In step S207, the
以下に、本発明を実施例により詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。なお、以下において、「HISCL」は、シスメックス株式会社の登録商標である。 Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to Examples, but the present invention is not limited to these Examples. In the following, "HISCL" is a registered trademark of Sysmex Corporation.
比較例: AFP濃度に基づく早期再発リスクの予測
(1) 血液試料
肝細胞がん患者(38例)から血液を、肝切除術の前に採取した。採取した血液から常法により血清を調製して、血液試料とした。調製した血清は、使用するまで-80℃で凍結保存した。38例のうち27例は、術後4年以内に肝細胞がんの再発が確認され、特に15例は、術後1年以内に再発が確認された。残りの11例は、術後4年以上無再発であった。
Comparative example: Prediction of early recurrence risk based on AFP concentration
(1) Blood sample Blood was collected from hepatocellular carcinoma patients (38 patients) before hepatectomy. Serum was prepared from the collected blood by a conventional method and used as a blood sample. The prepared serum was cryopreserved at -80 ° C until use. Recurrence of hepatocellular carcinoma was confirmed in 27 of the 38 cases within 4 years after surgery, and in particular, recurrence was confirmed in 15 cases within 1 year after surgery. The remaining 11 cases were recurrence-free for more than 4 years after surgery.
(2) AFP濃度の測定
各血液試料におけるAFPの濃度を、アルファーフェトプロテインキットHISCL AFP試薬(シスメックス株式会社)を用いて測定した。具体的な操作は、該キットに添付のマニュアルに従った。測定は、全自動免疫測定装置HISCL-800(シスメックス株式会社)により行った。
(2) Measurement of AFP concentration The AFP concentration in each blood sample was measured using the Alphafet Protein Kit HISCL AFP Reagent (Sysmex Corporation). The specific operation was according to the manual attached to the kit. The measurement was performed by a fully automatic immunoassay device HISCL-800 (Sysmex Corporation).
(3) 再発時期の予測
Youden indexを用いた解析により、AFP濃度の閾値を7.9 ng/mL又は8.0 ng/mLに設定した。測定したAFP濃度が閾値以上であった検体を「陽性」に分類し、閾値未満であった検体を「陰性」に分類した。図5に、閾値を7.9 ng/mLに設定した場合の陽性群及び陰性群について、再発時期をプロットした結果を示す。また、陽性に分類された患者を「1年以内に再発した患者」と判定した場合の感度及び特異度を算出した。結果を表1に示す。
(3) Prediction of recurrence time
Analysis using the Youden index set the AFP concentration threshold to 7.9 ng / mL or 8.0 ng / mL. Specimens whose measured AFP concentration was above the threshold were classified as "positive", and samples whose AFP concentration was below the threshold were classified as "negative". FIG. 5 shows the results of plotting the recurrence time for the positive group and the negative group when the threshold value was set to 7.9 ng / mL. In addition, the sensitivity and specificity when the patients classified as positive were judged as "patients who relapsed within 1 year" were calculated. The results are shown in Table 1.
図5及び表1に示されるように、マーカーとしてAFPのみを用いて1年以内の早期再発を判定した場合、感度は93.3%と十分に高かったが、特異度は50%以下であった。 As shown in FIG. 5 and Table 1, when the early recurrence within 1 year was judged using only AFP as a marker, the sensitivity was sufficiently high at 93.3%, but the specificity was 50% or less.
実施例: GPC3、AFP及びPIVKA-IIの濃度に基づく早期再発リスクの予測
(1) 血液試料
血液試料として、比較例で調製した血清(38例)を用いた。
Example: Prediction of early recurrence risk based on GPC3, AFP and PIVKA-II concentrations
(1) Blood sample As a blood sample, serum (38 cases) prepared in Comparative Example was used.
(2) マーカー濃度の測定
(2.1) GPC3濃度の測定
血液試料中の全長型GPC3の濃度を、GPC3のN末端領域と結合する市販のモノクローナル抗体(以下、第1モノクローナル抗体という)と、GPC3のC末端領域と結合する市販のモノクローナル抗体(以下、第2モノクローナル抗体という)とを用いるサンドイッチELISA法により測定した。なお、第1及び第2モノクローナル抗体のそれぞれが認識するエピトープ領域は、本発明者らの事前検討により明らかにされている。第1モノクローナル抗体のエピトープ領域は、GPC3の301から358番目のアミノ酸配列からなる領域であり、第2モノクローナル抗体のエピトープ領域は、GPC3の543から552番目のアミノ酸配列からなる領域である。測定の具体的な操作は、以下の(i)〜(iv)のとおりである。
(2) Measurement of marker concentration
(2.1) Measurement of GPC3 concentration A commercially available monoclonal antibody (hereinafter referred to as the first monoclonal antibody) that binds the concentration of full-length GPC3 in a blood sample to the N-terminal region of GPC3 and a commercially available that binds to the C-terminal region of GPC3. It was measured by the sandwich ELISA method using the above monoclonal antibody (hereinafter referred to as the second monoclonal antibody). The epitope regions recognized by each of the first and second monoclonal antibodies have been clarified by the prior examination by the present inventors. The epitope region of the first monoclonal antibody is the region consisting of the 301st to 358th amino acid sequences of GPC3, and the epitope region of the second monoclonal antibody is the region consisting of the 543th to 552nd amino acid sequences of GPC3. The specific operation of measurement is as follows (i) to (iv).
(i) 捕捉用抗体の固相化
第1モノクローナル抗体を、終濃度2μg/mLとなるようにPBSで希釈した。MaxiSorp黒色96ウェルイムノプレート(ThermoScientifc社)の各ウェルに、第1モノクローナル抗体溶液を50μLずつ添加し、室温で1時間インキュベートした。抗体溶液を除去し、各ウェルを300μLのHISCL洗浄液(シスメックス株式会社)で9回洗浄した。各ウェルにブロッキングバッファー(150 mM NaCl、10 mg/mL BSA、5mg/mLカゼイン及び0.01%(w/v) NaN3を含むpH 7.4の緩衝液)を250μLずつ添加して、室温で2時間インキュベートした。ブロッキングバッファーを除去し、各ウェルを300μLのHISCL洗浄液(シスメックス株式会社)で9回洗浄した。
(i) Immobilization of capture antibody The first monoclonal antibody was diluted with PBS to a final concentration of 2 μg / mL. 50 μL of the first monoclonal antibody solution was added to each well of the MaxiSorp black 96-well immunoplate (ThermoScientifc), and the mixture was incubated at room temperature for 1 hour. The antibody solution was removed, and each well was washed 9 times with 300 μL of HISCL washing solution (Sysmex Corporation). Add 250 μL of blocking buffer (150 mM NaCl, 10 mg / mL BSA, 5 mg / mL casein and pH 7.4 buffer containing 0.01% (w / v) NaN 3 ) to each well and incubate for 2 hours at room temperature. did. The blocking buffer was removed, and each well was washed 9 times with 300 μL of HISCL wash solution (Sysmex Corporation).
(ii) 検出用抗体の酵素標識
第2モノクローナル抗体を、Alkaline Phosphatase Labeling Kit-SH(同仁化学研究所)を用いてアルカリホスファターゼ(ALP)標識した。標識の具体的な操作は、キットに添付のマニュアルに従った。標識した第2モノクローナル抗体を、終濃度0.1μg/mLとなるように、HISCL用非特異反応抑制剤(シスメックス株式会社)を添加したブロッキングバッファー(以下、希釈バッファーという)で希釈した。
(ii) Enzyme Labeling of Detection Antibody The second monoclonal antibody was labeled with alkaline phosphatase (ALP) using the Alkaline Phosphatase Labeling Kit-SH (Dojin Kagaku Kenkyusho). The specific operation of the sign was according to the manual attached to the kit. The labeled second monoclonal antibody was diluted with a blocking buffer (hereinafter referred to as dilution buffer) to which a non-specific reaction inhibitor for HISCL (Cysmex Co., Ltd.) was added so as to have a final concentration of 0.1 μg / mL.
(iii) 測定試料及標準試料の調製
血液試料を希釈バッファーで2倍に希釈して、測定試料を調製した。また、検量線作成のために、リコンビナント全長型GPC3(R&D systems社)をブロッキングバッファーで段階希釈して、終濃度15〜20,000 pg/mLの標準試料を調製した。
(iii) Preparation of measurement sample and standard sample A blood sample was diluted 2-fold with a dilution buffer to prepare a measurement sample. In addition, in order to prepare a calibration curve, a recombinant full-length GPC3 (R & D systems) was serially diluted with a blocking buffer to prepare a standard sample having a final concentration of 15 to 20,000 pg / mL.
(iv) サンドイッチELISA
第1モノクローナル抗体を固相化した96ウェルプレートの各ウェルに、測定試料を50μLずつ添加して、室温で1時間インキュベートした。測定試料を除去し、各ウェルを300μLのHISCL洗浄液(シスメックス株式会社)で9回洗浄した。各ウェルに、ALP標識した第2モノクローナル抗体の溶液を50μLずつ添加して、室温で1時間インキュベートした。抗体溶液を除去し、各ウェルを300μLのHISCL洗浄液(シスメックス株式会社)で9回洗浄した。各ウェルにHISCL発光基質セット(シスメックス株式会社)を100μLずつ添加し、室温・暗所にて30分間インキュベートした。96ウェルプレートをプレートリーダInfinite F200 PRO(TECAN社)にセットし、発光強度を測定した。標準試料についても同様に測定し、4パラメーターロジスティック回帰法を用いて検量線を作成した。この検量線を用いて、発光強度からGPC3濃度を定量した。
(iv) Sandwich ELISA
50 μL of the measurement sample was added to each well of the 96-well plate on which the first monoclonal antibody was immobilized, and the mixture was incubated at room temperature for 1 hour. The measurement sample was removed, and each well was washed 9 times with 300 μL of HISCL washing solution (Sysmex Corporation). To each well, 50 μL of a solution of ALP-labeled second monoclonal antibody was added, and the mixture was incubated at room temperature for 1 hour. The antibody solution was removed, and each well was washed 9 times with 300 μL of HISCL washing solution (Sysmex Corporation). HISCL luminescent substrate set (Sysmex Corporation) was added to each well in an amount of 100 μL, and the mixture was incubated at room temperature in a dark place for 30 minutes. A 96-well plate was set in a plate reader Infinite F200 PRO (TECAN), and the emission intensity was measured. The standard sample was measured in the same manner, and a calibration curve was prepared using a 4-parameter logistic regression method. Using this calibration curve, the GPC3 concentration was quantified from the emission intensity.
(2.2) AFP濃度及びPIVKA-II濃度の測定
各血液試料におけるAFPの濃度を、比較例と同じキットを用いて測定した。各血液試料におけるPIVKA-IIの濃度を、PIVKA-IIキットHISCL PIVKA-II試薬(エーディア株式会社)を用いて測定した。具体的な操作は、試薬キットに添付のマニュアルに従った。いずれの測定も全自動免疫測定装置HISCL-800(シスメックス株式会社)により行った。
(2.2) Measurement of AFP concentration and PIVKA-II concentration The AFP concentration in each blood sample was measured using the same kit as in the comparative example. The concentration of PIVKA-II in each blood sample was measured using the PIVKA-II kit HISCL PIVKA-II reagent (EIDIA Co., Ltd.). The specific operation was according to the manual attached to the reagent kit. All measurements were performed with a fully automatic immunoassay device HISCL-800 (Sysmex Corporation).
(3) 再発時期の予測
Youden indexを用いた解析により、GPC3濃度の閾値を8.0 pg/mLに設定し、AFP濃度の閾値を7.9 ng/mLに設定し、PIVKA-II濃度の閾値を102 mAU/mLに設定した。各マーカーの組み合わせに応じて、検体を陽性又は陰性に分類して、それぞれの再発時期をプロットした結果を図6〜8に示す。図6では、GPC3濃度が閾値以上であり且つAFP濃度が閾値以上であった検体を「陽性」に分類し、それ以外の検体を「陰性」に分類した。図7では、GPC3濃度が閾値以上であり且つPIVKA-II濃度が閾値以上であった検体を「陽性」に分類し、それ以外の検体を「陰性」に分類した。図8では、GPC3濃度が閾値以上であり、AFP濃度が閾値以上であり且つPIVKA-II濃度が閾値以上であった検体を「陽性」に分類し、それ以外の検体を「陰性」に分類した。各マーカーの組み合わせに応じて陽性に分類された患者を「1年以内に再発した患者」と判定した場合の感度及び特異度を算出した。結果を表2に示す。
(3) Prediction of recurrence time
By analysis using the Youden index, the GPC3 concentration threshold was set to 8.0 pg / mL, the AFP concentration threshold was set to 7.9 ng / mL, and the PIVKA-II concentration threshold was set to 102 mAU / mL. The samples are classified as positive or negative according to the combination of each marker, and the results of plotting the recurrence time of each are shown in FIGS. 6 to 8. In FIG. 6, samples having a GPC3 concentration equal to or higher than the threshold value and an AFP concentration equal to or higher than the threshold value were classified as “positive”, and other samples were classified as “negative”. In FIG. 7, samples having a GPC3 concentration equal to or higher than the threshold value and a PIVKA-II concentration equal to or higher than the threshold value were classified as “positive”, and other samples were classified as “negative”. In FIG. 8, the samples having the GPC3 concentration above the threshold value, the AFP concentration above the threshold value, and the PIVKA-II concentration above the threshold value were classified as “positive”, and the other samples were classified as “negative”. .. The sensitivity and specificity when the patients classified as positive according to the combination of each marker were judged as "patients who relapsed within 1 year" were calculated. The results are shown in Table 2.
図6及び表2に示されるように、GPC3及びAFPの濃度に基づいて再発時期を判定することにより、AFP単独に基づく判定(比較例)よりも特異度が改善した。図7及び表2に示されるように、GPC3及びPIVKA-IIの濃度に基づく再発時期の判定は、感度及び特異度がいずれも高かった。図8及び表2に示されるように、GPC3、AFP及びPIVKA-IIの3つのマーカーの濃度に基づいて再発時期を判定することにより、GPC3及びPIVKA-IIの濃度に基づく判定より、さらに特異度が向上した。これらのことから、GPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIの少なくとも1つの濃度とに基づいて、早期再発リスクを高精度に予測できることが示された。 As shown in FIG. 6 and Table 2, the specificity was improved by determining the recurrence time based on the concentrations of GPC3 and AFP as compared with the determination based on AFP alone (comparative example). As shown in FIG. 7 and Table 2, the determination of recurrence time based on the concentrations of GPC3 and PIVKA-II was highly sensitive and specific. As shown in FIG. 8 and Table 2, by determining the recurrence time based on the concentrations of the three markers GPC3, AFP and PIVKA-II, the specificity is further higher than the determination based on the concentrations of GPC3 and PIVKA-II. Has improved. From these results, it was shown that the risk of early recurrence can be predicted with high accuracy based on the concentration of GPC3 and the concentration of at least one of AFP and PIVKA-II.
図6〜8を参照すると、陽性に分類した患者群には、術後6ヶ月以内に再発した患者が含まれている。そこで、陽性に分類した患者を「6ヶ月以内に再発した患者」と判定した場合の感度及び特異度を上記と同様にして算出した。結果を表3に示す。 With reference to FIGS. 6-8, the group of patients classified as positive includes patients who relapsed within 6 months after surgery. Therefore, the sensitivity and specificity when the patients classified as positive were judged as "patients who relapsed within 6 months" were calculated in the same manner as above. The results are shown in Table 3.
表3に示されるように、GPC3の濃度と、AFP及びPIVKA-IIの少なくとも1つの濃度に基づいて、術後6ヶ月以内の再発リスクを予測できることが示された。特に、GPC3、AFP及びPIVKA-IIの3つのマーカーの濃度を用いることで、より高い特異度で術後6ヶ月以内の再発リスクを予測できることが示された。 As shown in Table 3, it was shown that the risk of recurrence within 6 months after surgery can be predicted based on the concentration of GPC3 and the concentration of at least one of AFP and PIVKA-II. In particular, it was shown that the risk of recurrence within 6 months after surgery can be predicted with higher specificity by using the concentrations of the three markers GPC3, AFP and PIVKA-II.
GPC3、AFP及びPIVKA-IIのそれぞれに対応する閾値について、各患者を「1年以内に再発した患者」として判定した際の陰性適中率が70%以上又は80%以上となるような閾値を解析した。その結果、GPC3については、1 pg/mL〜35 pg/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が70%以上となり、特に2 pg/mL〜15 pg/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が80%となった。また、AFPについては、3 ng/mL〜160 ng/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が70%以上となり、特に4 ng/mL〜9 ng/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が80%となった。さらに、PIVKA-IIについては、1 mAU/mL〜290 mAU/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が70%以上となり、特に1 mAU/mL〜215 mAU/mLの間に閾値を設定すれば陰性適中率が80%となった。 For the threshold values corresponding to GPC3, AFP, and PIVKA-II, analyze the threshold values such that the negative predictive value is 70% or more or 80% or more when each patient is judged as a "patient who has relapsed within 1 year". did. As a result, for GPC3, if the threshold is set between 1 pg / mL and 35 pg / mL, the negative predictive value will be 70% or more, and especially if the threshold is set between 2 pg / mL and 15 pg / mL. The negative predictive value was 80%. For AFP, setting a threshold between 3 ng / mL and 160 ng / mL results in a negative predictive value of 70% or higher, especially if a threshold is set between 4 ng / mL and 9 ng / mL. The negative predictive value was 80%. Furthermore, for PIVKA-II, if the threshold is set between 1 mAU / mL and 290 mAU / mL, the negative predictive value will be 70% or more, and in particular, the threshold will be set between 1 mAU / mL and 215 mAU / mL. Then, the negative predictive value became 80%.
11 肝細胞がんの早期再発リスクの判定装置
22 測定装置
33 コンピュータシステム
33a コンピュータ本体
33b 入力部
33c 表示部
11 Judgment device for early recurrence risk of
Claims (14)
前記GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ前記マーカーの濃度が前記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いことを示唆し、
前記GPC3の濃度が、GPC3のN末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第1の抗体と、GPC3のC末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第2の抗体との両方が結合するGPC3ペプチドの濃度であり、
前記肝細胞がんの早期再発リスクが、前記肝細胞がん患者から血液試料を採取した後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性であり、前記所定の期間が1年以下の期間である、
肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法。 Concentration of GPC3 (Glypican-3) in blood samples of hepatocellular carcinoma patients and at least one marker selected from AFP (α-fetoprotein) and PIVKA-II (protein induced by vitamin-K absence or antagonist II) Including the step of measuring the concentration
When the concentration of GPC3 is equal to or higher than the first threshold value and the concentration of the marker is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker, it is suggested that the patient has a high risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
The first antibody whose GPC3 concentration specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3 and the second antibody which specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3. The concentration of GPC3 peptide that binds to both
The risk of early recurrence of the hepatocellular carcinoma is the possibility that the hepatocellular carcinoma will recur within a predetermined period after collecting a blood sample from the hepatocellular carcinoma patient, and the predetermined period is one year or less. Is the period of
A method to help predict the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
前記GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、前記AFPの濃度が第2の閾値以上であり、且つ前記PIVKAIIの濃度が第3の閾値以上である場合、前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いことを示唆する
請求項1に記載の方法。 In the measurement step, the concentration of GPC3, the concentration of AFP, and the concentration of PIVKA-II were measured.
And the concentration of the previous SL GPC3 least first threshold value, the concentration of the AFP is at least a second threshold value, and when the concentration of the PIVKAII is the third threshold value or more, hepatocellular carcinoma of the patient The method according to claim 1, which suggests that the risk of early recurrence is high.
前記GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ前記マーカーの濃度が前記マーカーに対応する所定の閾値以上である患者を第1患者群に分類し、前記GPC3の濃度及び前記マーカーの濃度のうち、少なくとも1の濃度が所定の閾値未満である患者を第2患者群に分類する工程と
を含み、
前記第1患者群は、前記第2患者群よりも早期再発リスクが高い群であり、
前記GPC3の濃度が、GPC3のN末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第1の抗体と、GPC3のC末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第2の抗体との両方が結合するGPC3ペプチドの濃度であり、
前記肝細胞がんの早期再発リスクが、前記肝細胞がん患者から血液試料を採取した後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性であり、前記所定の期間が1年以下の期間である、
肝細胞がんの早期再発リスクの予測を補助する方法。 Concentration of GPC3 (Glypican-3) in blood samples of hepatocellular carcinoma patients and at least one marker selected from AFP (α-fetoprotein) and PIVKA-II (protein induced by vitamin-K absence or antagonist II) The process of measuring the concentration and
Patients whose GPC3 concentration is equal to or higher than the first threshold value and whose marker concentration is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker are classified into the first patient group, and the GPC3 concentration and the marker concentration are determined. Among them, a step of classifying patients whose concentration of at least 1 is less than a predetermined threshold into a second patient group is included.
The first patient group, Ri group der high early recurrence risk than the second patient group,
The first antibody whose GPC3 concentration specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3 and the second antibody which specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3. The concentration of GPC3 peptide that binds to both
The risk of early recurrence of the hepatocellular carcinoma is the possibility that the hepatocellular carcinoma will recur within a predetermined period after collecting a blood sample from the hepatocellular carcinoma patient, and the predetermined period is one year or less. Is the period of
A method to help predict the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3(Glypican-3)の濃度と、AFP(α-fetoprotein)及びPIVKA-II(protein induced by vitamin-K absence or antagonist II)から選択される少なくとも1のマーカーの濃度の測定結果を取得するステップと、
前記GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ前記マーカーの濃度が前記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定するステップと、
前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクの判定結果を出力するステップと
を前記コンピュータに実行させるためのコンピュータプログラムが記録され、
前記GPC3の濃度が、GPC3のN末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第1の抗体と、GPC3のC末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第2の抗体との両方が結合するGPC3ペプチドの濃度であり、
前記肝細胞がんの早期再発リスクが、前記肝細胞がん患者から血液試料を採取した後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性であり、前記所定の期間が1年以下の期間である、
肝細胞がんの早期再発リスクの判定装置。 A computer comprising a processor and a memory under the control of the processor is provided in the memory in the following steps:
Concentration of GPC3 (Glypican-3) in blood samples of hepatocellular carcinoma patients and at least one marker selected from AFP (α-fetoprotein) and PIVKA-II (protein induced by vitamin-K absence or antagonist II) Steps to get the measurement result of concentration and
When the concentration of GPC3 is equal to or higher than the first threshold value and the concentration of the marker is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker, the step of determining that the patient has a high risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. ,
A computer program for causing the computer to execute a step of outputting the determination result of the early recurrence risk of hepatocellular carcinoma of the patient is recorded .
The first antibody whose GPC3 concentration specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3 and the second antibody which specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3. The concentration of GPC3 peptide that binds to both
The risk of early recurrence of the hepatocellular carcinoma is the possibility that the hepatocellular carcinoma will recur within a predetermined period after collecting a blood sample from the hepatocellular carcinoma patient, and the predetermined period is one year or less. Is the period of
A device for determining the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
前記コンピュータプログラムが、下記のステップ:
肝細胞がん患者の血液試料におけるGPC3(Glypican-3)の濃度と、AFP(α-fetoprotein)及びPIVKA-II(protein induced by vitamin-K absence or antagonist II)から選択される少なくとも1のマーカーの濃度の測定結果を取得するステップと、
前記GPC3の濃度が第1の閾値以上であり、且つ前記マーカーの濃度が前記マーカーに対応する所定の閾値以上である場合、前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクが高いと判定するステップと、
前記患者の肝細胞がんの早期再発リスクの判定結果を出力するステップと
を前記コンピュータに実行させるためのコンピュータプログラムであり、
前記GPC3の濃度が、GPC3のN末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第1の抗体と、GPC3のC末端側のアミノ酸配列からなるペプチドと特異的に結合する第2の抗体との両方が結合するGPC3ペプチドの濃度であり、
前記肝細胞がんの早期再発リスクが、前記肝細胞がん患者から血液試料を採取した後、所定の期間内に肝細胞がんが再発する可能性であり、前記所定の期間が1年以下の期間である、
肝細胞がんの早期再発リスクの判定をコンピュータに実行させるためのコンピュータプログラム。 A computer program that is recorded on a computer-readable medium
The computer program has the following steps:
Concentration of GPC3 (Glypican-3) in blood samples of hepatocellular carcinoma patients and at least one marker selected from AFP (α-fetoprotein) and PIVKA-II (protein induced by vitamin-K absence or antagonist II) Steps to get the measurement result of concentration and
When the concentration of GPC3 is equal to or higher than the first threshold value and the concentration of the marker is equal to or higher than a predetermined threshold value corresponding to the marker, the step of determining that the patient has a high risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma. ,
Ri computer program der for executing the steps to the computer for outputting the judgment result of the early recurrence risk of hepatocellular carcinoma in the patient,
The first antibody whose GPC3 concentration specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the N-terminal side of GPC3 and the second antibody which specifically binds to the peptide consisting of the amino acid sequence on the C-terminal side of GPC3. The concentration of GPC3 peptide that binds to both
The risk of early recurrence of the hepatocellular carcinoma is the possibility that the hepatocellular carcinoma will recur within a predetermined period after collecting a blood sample from the hepatocellular carcinoma patient, and the predetermined period is one year or less. Is the period of
A computer program that allows a computer to determine the risk of early recurrence of hepatocellular carcinoma.
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